JPS6196989A - D‐α‐アミノ酸アミドの相応するD‐α‐アミド酸への酵素加水分解法 - Google Patents
D‐α‐アミノ酸アミドの相応するD‐α‐アミド酸への酵素加水分解法Info
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- JPS6196989A JPS6196989A JP60225014A JP22501485A JPS6196989A JP S6196989 A JPS6196989 A JP S6196989A JP 60225014 A JP60225014 A JP 60225014A JP 22501485 A JP22501485 A JP 22501485A JP S6196989 A JPS6196989 A JP S6196989A
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- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/78—Hydrolases (3) acting on carbon to nitrogen bonds other than peptide bonds (3.5)
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利用分野
本発明は、D−α−アミノ−アミドの相応するD−α−
アミノ酸への酵素加水分解法に関する。
アミノ酸への酵素加水分解法に関する。
従来の技術
アルノベス・オブΦミクロバイオロ)−(A−rchi
ves of Microbiology、第138巻
、第315〜320頁、1984年、スプリンジャ−(
Spr inger )版〕には、アミド基を有する基
質に対し加水分解作用を有する酵素の効果が記載されて
いる。酵素は、微生物のブレピノζクテリウム(Bre
vibacter ium sp−)から得られる。
ves of Microbiology、第138巻
、第315〜320頁、1984年、スプリンジャ−(
Spr inger )版〕には、アミド基を有する基
質に対し加水分解作用を有する酵素の効果が記載されて
いる。酵素は、微生物のブレピノζクテリウム(Bre
vibacter ium sp−)から得られる。
米国特許第400 t o s’を号明細書によれば、
この微生物はモ/ペリエ(Montpellier)
cDxコール・ナショナル拳アグロノミック(εcol
eNationale Agronomique )の
遺伝学講座の収集物のA R312及びデ/L=7 ト
(Delft + ノセントラル・ビューロ俸フール1
177メルカルチヤーズ(Centraal Bure
au VOOr Schimme−Icuttures
)でのA CBS 717.73に登録されている。
この微生物はモ/ペリエ(Montpellier)
cDxコール・ナショナル拳アグロノミック(εcol
eNationale Agronomique )の
遺伝学講座の収集物のA R312及びデ/L=7 ト
(Delft + ノセントラル・ビューロ俸フール1
177メルカルチヤーズ(Centraal Bure
au VOOr Schimme−Icuttures
)でのA CBS 717.73に登録されている。
基質のプロピオ/アミドに対しそは、酵素の最高相対比
活性度100が記載されている。更にこの文献には、基
質のD−α−アミノプロピオ/アミ)’CD−アラニン
アミドフに対しては、相対比活性度2.5が記載されて
いる。
活性度100が記載されている。更にこの文献には、基
質のD−α−アミノプロピオ/アミ)’CD−アラニン
アミドフに対しては、相対比活性度2.5が記載されて
いる。
酵素の立体特異性作用に関しては記載されてはいない。
基質としての他のD−α−アミノ−アミドは、前記文献
には記載されていない。酵素はアセトアミダーゼと呼ば
れ、EC3,5,1,4,に分類されている(アシルア
ミドアミドヒドロラーゼJ0 ジャーナル・オプ・ジ峻アメリカン・ケミカル・ソサイ
アテイ(Journal of the Ameri−
can Chemical 5ociety )、第7
9巻、第4538頁(1957年)からは、D−α−ア
ミノ−アミドを相応するD−α−アミノ酸に酸性又は塩
基性加水分解によって変換することは公知である。か−
る方法の欠点は、所望のアミノ酸のラセミ化及び/又は
熱分解が生じることである。化学的加水分解の付加的欠
点は、アミノ酸が生成し、これは酸性又は塩基性の中和
物に容易に溶解する場合に生じる。中和氷解物からの所
望のアミノ酸の有効な分離は極めて困難であることが判
明した。酸性又は塩基性加水分解後にこの分離問題を解
決する1つの方法は、強塩基性又は酸性のイオン交換剤
の使用である。使用し之酸又は塩基は大モルの過剰量で
使用されるので、相応する大モル量の高価なイオン交換
剤が必要である。
には記載されていない。酵素はアセトアミダーゼと呼ば
れ、EC3,5,1,4,に分類されている(アシルア
ミドアミドヒドロラーゼJ0 ジャーナル・オプ・ジ峻アメリカン・ケミカル・ソサイ
アテイ(Journal of the Ameri−
can Chemical 5ociety )、第7
9巻、第4538頁(1957年)からは、D−α−ア
ミノ−アミドを相応するD−α−アミノ酸に酸性又は塩
基性加水分解によって変換することは公知である。か−
る方法の欠点は、所望のアミノ酸のラセミ化及び/又は
熱分解が生じることである。化学的加水分解の付加的欠
点は、アミノ酸が生成し、これは酸性又は塩基性の中和
物に容易に溶解する場合に生じる。中和氷解物からの所
望のアミノ酸の有効な分離は極めて困難であることが判
明した。酸性又は塩基性加水分解後にこの分離問題を解
決する1つの方法は、強塩基性又は酸性のイオン交換剤
の使用である。使用し之酸又は塩基は大モルの過剰量で
使用されるので、相応する大モル量の高価なイオン交換
剤が必要である。
本発明の目的は、D−α−アミノ−アミドの相応するし
一α−アミノ酸への立体特異性加水分解が可能のα−ア
ミノアシルアミダーゼ活性を有する調製物を見出し、使
用することである。
一α−アミノ酸への立体特異性加水分解が可能のα−ア
ミノアシルアミダーゼ活性を有する調製物を見出し、使
用することである。
α−アミノアシルアミダーゼ活性(アミダーゼ活性とも
呼ばれる)を有する多くの酵素は、クリーンシュタイン
及ヒビイニイソ(Greens−tein &、 Wi
nitz ) :”ケミ、Xトリーーオブ健ジ・アミノ
アシド(Chemistry of t、he Am1
n。
呼ばれる)を有する多くの酵素は、クリーンシュタイン
及ヒビイニイソ(Greens−tein &、 Wi
nitz ) :”ケミ、Xトリーーオブ健ジ・アミノ
アシド(Chemistry of t、he Am1
n。
Ac1dン″、第3巻、第1778〜1781貞にュー
・B−り、1961年]に記載されている。しかしなが
らこれらの酵素は、L形のα−アミノ−アミドに対して
だけ加水分解作用を示す。
・B−り、1961年]に記載されている。しかしなが
らこれらの酵素は、L形のα−アミノ−アミドに対して
だけ加水分解作用を示す。
本発明によるD−α−アミノ−アミドの酵素力日永分解
法は、D−α−アミノはアミド水溶液を、アミノアシル
アミダーゼを含有しロドコクスΦエリトロポリス(Rh
odococcus erythr−opol is
)又はその突然変異体の培養から得られた調製物と接触
させ、D−α−アミノ酸をこのようにして侍られた氷解
物から回収することを特徴とする。
法は、D−α−アミノはアミド水溶液を、アミノアシル
アミダーゼを含有しロドコクスΦエリトロポリス(Rh
odococcus erythr−opol is
)又はその突然変異体の培養から得られた調製物と接触
させ、D−α−アミノ酸をこのようにして侍られた氷解
物から回収することを特徴とする。
この方法でD−α−アミノ−アミドの酵素加水分解は立
体特異性で進行し、生成したD−α−アミノ酸を氷解物
から簡単な方法で回収することが達成される。回収は公
知方法で、例えば蒸発によるか又はm規模では得られた
加水分解混合物のスプレー乾燥によって行なってもよい
。この方法で加水分解で生成したアンモニアは氷解物か
ら除去し、一定の時間後に所望のD−α−アミノ酸の結
晶が生成する。
体特異性で進行し、生成したD−α−アミノ酸を氷解物
から簡単な方法で回収することが達成される。回収は公
知方法で、例えば蒸発によるか又はm規模では得られた
加水分解混合物のスプレー乾燥によって行なってもよい
。この方法で加水分解で生成したアンモニアは氷解物か
ら除去し、一定の時間後に所望のD−α−アミノ酸の結
晶が生成する。
D−α−アミノ酸は、例えは製薬生成物及び除草剤の合
成に使用することができる。
成に使用することができる。
(Aberdeen )在の例先代ナショナル・コレク
ション・オプ・インダストリアル・ノ々クチリア(Na
tional Co11ection of 1nd
us−trialBacter ia J < NC
I B ) にA 1 15 3 8 、11539及
び11540で登録されたロドコクス・エリトロポリス
(Rhodococcus erythropo+ i
s)から得ることができる。
ション・オプ・インダストリアル・ノ々クチリア(Na
tional Co11ection of 1nd
us−trialBacter ia J < NC
I B ) にA 1 15 3 8 、11539及
び11540で登録されたロドコクス・エリトロポリス
(Rhodococcus erythropo+ i
s)から得ることができる。
不発゛明によるα−アミノアシルアミダーゼ活性を有す
る調製物を製造するための特に適当な微生物は、ロドコ
クス・エリトロポリス(Rho−dococcus
erythropol is ) NCI BのA 1
1540の突然変異体< NCI Bの茄12019で
登録)である。
る調製物を製造するための特に適当な微生物は、ロドコ
クス・エリトロポリス(Rho−dococcus
erythropol is ) NCI BのA 1
1540の突然変異体< NCI Bの茄12019で
登録)である。
ロドコクスΦエリトロホリス< Rhodococcu
serythropol is )は、酵母−マルトグ
ルツースを含有しなかんずく痕跡量の元素を添加した培
地で培養することができる。
serythropol is )は、酵母−マルトグ
ルツースを含有しなかんずく痕跡量の元素を添加した培
地で培養することができる。
α−アミノアフルアミダーゼ活性を有する酵素は、細胞
内である。酵素を使用するためには、冷凍されていても
いなくても全細胞全使用することができる。その上、細
胞壁は、常法で加水分解が有効に進行するように浸透性
にすることができる。更に、細胞を有しない抽出物を使
用することができる。所望により、酵素は公知方法で細
胞を有しない抽出物から精製形で回収することができる
。酵素の前述の使用の場合には、例えばアプライド・ビ
オケミストリー・アミド・ビオエンジ= 71J 7グ
(Appl ied Bioche−mistry a
nd Bioengineering ) (第1巻(
1976年〕及び第4巻(1983年)、アカデミ−プ
レス〕に記載されている公知固定技術を使用することが
できる。微生物又は精製酵素を固定形で使用する場合に
は、生触媒の回収は、例えば濾過によって比較的簡単で
ある。
内である。酵素を使用するためには、冷凍されていても
いなくても全細胞全使用することができる。その上、細
胞壁は、常法で加水分解が有効に進行するように浸透性
にすることができる。更に、細胞を有しない抽出物を使
用することができる。所望により、酵素は公知方法で細
胞を有しない抽出物から精製形で回収することができる
。酵素の前述の使用の場合には、例えばアプライド・ビ
オケミストリー・アミド・ビオエンジ= 71J 7グ
(Appl ied Bioche−mistry a
nd Bioengineering ) (第1巻(
1976年〕及び第4巻(1983年)、アカデミ−プ
レス〕に記載されている公知固定技術を使用することが
できる。微生物又は精製酵素を固定形で使用する場合に
は、生触媒の回収は、例えば濾過によって比較的簡単で
ある。
加水分解は温度0〜60℃、好ましくは20〜45℃及
びpH6〜10で行なうことができる。
びpH6〜10で行なうことができる。
それというのもこの条件下で加水分解が最も迅速に進行
するからである。
するからである。
加水分解の時間は、例えば1〜24時間で変動してもよ
い。
い。
基質としては、好ましくはC原子3〜6個を有するD−
α−アミノ−アミド、特にD−アラニンアミド、D−バ
リンアミド、D−アミノ酪酸アミド、D−ロイシンアミ
ド、D−セリンアミド及びD−スレオニンアミドを使用
する。
α−アミノ−アミド、特にD−アラニンアミド、D−バ
リンアミド、D−アミノ酪酸アミド、D−ロイシンアミ
ド、D−セリンアミド及びD−スレオニンアミドを使用
する。
実施例
本発明に使用した微生物は、地及び廃物から富化作用に
よって得られた。次の性質全測定した。
よって得られた。次の性質全測定した。
形態:
1次菌糸体は、GYEA(グルコース−酵母−抽出物−
寒天)上で直ちに杆状体とコックス(C0C5)とに分
離する。
寒天)上で直ちに杆状体とコックス(C0C5)とに分
離する。
ジx7(GYEA )及びソート/ズ(5autons
+寒天培地上のコロニーは形状が不規則で、色は橙赤色
である。微生物は好気性、不動性及び1部分耐酸性であ
り、内部胞子金肩しない。
+寒天培地上のコロニーは形状が不規則で、色は橙赤色
である。微生物は好気性、不動性及び1部分耐酸性であ
り、内部胞子金肩しない。
温度の必要条件:
4−40℃で生長。最適30℃。
酵素活性:
ウレアーゼ、ホスファターゼ、カタラーゼ、硝酸塩還元
、ニドl)ラーゼ陽性。更に、微生物はアミノアシルア
ミダーゼ活性を有する。
、ニドl)ラーゼ陽性。更に、微生物はアミノアシルア
ミダーゼ活性を有する。
退化試1験:
アデニ:y (0,5%重量/容量(W/VJ)及びL
−チロシン(0,5係W/Vl陽性。
−チロシン(0,5係W/Vl陽性。
発酵試験:
クリセロール、ノルピット、トレノ・ロース及びシュク
ロースから酸が生成するが、アドニノト、アラビノース
、セロビオース、ガラクトース、グリコーゲン、イヌリ
ン、メレジトース、ラムノース又はキシロースから酸は
生成しない。
ロースから酸が生成するが、アドニノト、アラビノース
、セロビオース、ガラクトース、グリコーゲン、イヌリ
ン、メレジトース、ラムノース又はキシロースから酸は
生成しない。
ゾルのC−源(1チW/VJ:
エネルギー及び生長のためのゾルのC−源としてのグル
コース、グリセロール、メゾーイノジット、ソルビット
、トレハロース、イヌリン、マルトース、マンニット、
アシヘート、クルコ不−ト、ラクテート、マレエート、
ピルベート、セハ//酸、サクンネート及びテストステ
ロンで生長するが、グリコーゲン、イノジット、ラムノ
ース、ベンズアミド、m−0H−安息香酸、マロ、t−
一ト又はタルトレートで生長アしない。
コース、グリセロール、メゾーイノジット、ソルビット
、トレハロース、イヌリン、マルトース、マンニット、
アシヘート、クルコ不−ト、ラクテート、マレエート、
ピルベート、セハ//酸、サクンネート及びテストステ
ロンで生長するが、グリコーゲン、イノジット、ラムノ
ース、ベンズアミド、m−0H−安息香酸、マロ、t−
一ト又はタルトレートで生長アしない。
ゾルのC−及びN−源二
セリン又はトリメチレンジアミンで生長しない。
次のものべ存在で生長:
クリスタルノ々イオレット(1ppm W/V J及び
アジ化、ナトリウム(0,02%W/V)陽性。
アジ化、ナトリウム(0,02%W/V)陽性。
脂質の性質:
微生物はC原子36〜48個を有する遊離ミコリン酸を
有し、イソプレン単位8個及び水素添加二重結合1個を
有するメナキノンを有する。
有し、イソプレン単位8個及び水素添加二重結合1個を
有するメナキノンを有する。
ミコノ々クチン又はノコノζクチンは存在しない。
DNAのG十C組成:
G+Cは、Tmで61〜67モルチである。
存在:
地及び廃物。
前述の特性に基づいて、単離菌株はグウドフエOウ<
M、 Goodfel IOW J及びアルダ/lz
77(G 、 Alderson ) (:ジャーナル
・オブ・ゼネラル・アンド・アプライド・ミクロバイオ
ロジー(Journal of General
and Appl ied Mic−rOb!OlOg
)/Js第100巻(1977年)、第99〜122頁
〕のロドコクス・エリトロポリス属 (Rhodococcus erythropol i
s)に屈する。単1離菌株は、NClBで屋NCl81
1538.11539及び11540によって登録され
ている。
M、 Goodfel IOW J及びアルダ/lz
77(G 、 Alderson ) (:ジャーナル
・オブ・ゼネラル・アンド・アプライド・ミクロバイオ
ロジー(Journal of General
and Appl ied Mic−rOb!OlOg
)/Js第100巻(1977年)、第99〜122頁
〕のロドコクス・エリトロポリス属 (Rhodococcus erythropol i
s)に屈する。単1離菌株は、NClBで屋NCl81
1538.11539及び11540によって登録され
ている。
高アミノアシルアミダーゼ活性を有するロドコクス・エ
リトロポリy、 (Rhodococcus ery−
thropolis)NClB 11540の突然変
異体菌株は、突然変異処理によって得られる。このため
に、N−メチル−N′−二トローN−ニトロソグアニジ
/(NMG)の結晶を、グラフトプレート(酵母−炭素
基質で寒天1.5係を添加した100ゴ当りKNO30
,781を有する培地)の中心に置き、30℃で6時間
培養した。このプレートからのコロニーを、自然のま\
の系に記載したのと同じ特性に対して試験した。突然変
異体は、自然のまXの系NCl3 11540と同じ特
性を有するが、著しく大きいアミノア・/ルアミダーゼ
活性を有していた。この突然変異体は、NClBでA
120 t 9で登録されている。
リトロポリy、 (Rhodococcus ery−
thropolis)NClB 11540の突然変
異体菌株は、突然変異処理によって得られる。このため
に、N−メチル−N′−二トローN−ニトロソグアニジ
/(NMG)の結晶を、グラフトプレート(酵母−炭素
基質で寒天1.5係を添加した100ゴ当りKNO30
,781を有する培地)の中心に置き、30℃で6時間
培養した。このプレートからのコロニーを、自然のま\
の系に記載したのと同じ特性に対して試験した。突然変
異体は、自然のまXの系NCl3 11540と同じ特
性を有するが、著しく大きいアミノア・/ルアミダーゼ
活性を有していた。この突然変異体は、NClBでA
120 t 9で登録されている。
ロドコクスーエリトロポリス(Rhodococcus
erythropo+ 1s)NCI B 1154
0の培養物の調製。
erythropo+ 1s)NCI B 1154
0の培養物の調製。
本発明で使用した微生物は、傾斜管でいわゆる酵母−炭
素を基質〔ディフコ(DifcoJ)とし、100m1
当りにNo30.78 r ’に添加した寒天培地で1
0℃で保存した。
素を基質〔ディフコ(DifcoJ)とし、100m1
当りにNo30.78 r ’に添加した寒天培地で1
0℃で保存した。
微生物を有する前記培地から予培養物200mを、同じ
であるが、寒天を有しない培地にうえた。これを30℃
で72時間培養した。培地のpHは7.2であった。
であるが、寒天を有しない培地にうえた。これを30℃
で72時間培養した。培地のpHは7.2であった。
10Lの醗酵器を次のようにして満たした:(1) 2
tの蒸溜水(pH7,2)にとがした酷母抽出物50
ftl 20℃で20分間滅菌し、冷却した。
tの蒸溜水(pH7,2)にとがした酷母抽出物50
ftl 20℃で20分間滅菌し、冷却した。
(2)麦芽抽出物toor、バクトペプトンsoy。
KNOsy、グルコース40?及び痕跡元素〔ハントナ
ー金属(Huntners metals)]10−を
有する蒸溜水8tf添加した。最大pHは7.2であっ
た。全体を更に110℃で30分間滅菌した。
ー金属(Huntners metals)]10−を
有する蒸溜水8tf添加した。最大pHは7.2であっ
た。全体を更に110℃で30分間滅菌した。
(3)予培養物全部を添加した。
(4) アセトニトリ# (0,02%W/V)f、
滅菌条件下に添加した。
滅菌条件下に添加した。
醗酵器の培養物を、一定のpH7,2で30℃で40時
間維持した。培養後の湿性細胞の収量は約2701であ
った。この細胞から、細胞懸濁液をセーレンセ/燐酸塩
緩衝液(pH7,21で調製し、これに70容量係のグ
リセロールを添加し、全体を一20℃で保存した。
間維持した。培養後の湿性細胞の収量は約2701であ
った。この細胞から、細胞懸濁液をセーレンセ/燐酸塩
緩衝液(pH7,21で調製し、これに70容量係のグ
リセロールを添加し、全体を一20℃で保存した。
例1
グリセロール細胞懸濁液の遠心分離後に、細胞’i p
)−17,2の燐酸塩緩衝液(セーレノセン)で洗浄し
、次いで再び遠心分離した。ロドコクス++jl−リト
ロポリス(Rhodococcus erythrop
o−lis)に’)菌#、Nc+8 11540から、
湿性細胞200my”k、D−バリンアミド2pH7,
2の燐酸塩緩衝液(セーレ/セ/ンにとかした20.0
重量係の溶液5rnlに加えた。60分間の間培養を恒
温反応器中で30℃で行なった。反応のpH(7,2)
は殆んど変化しなかった。反応時間が経過した後に、反
応混合物からt、o r ’i取出し、蒸溜水tooy
に添加した。l0N−NaOH1−の添加後、生成した
アノモニアの量を、オリオン(Orion>アノモニア
選択電極で測定した。
)−17,2の燐酸塩緩衝液(セーレノセン)で洗浄し
、次いで再び遠心分離した。ロドコクス++jl−リト
ロポリス(Rhodococcus erythrop
o−lis)に’)菌#、Nc+8 11540から、
湿性細胞200my”k、D−バリンアミド2pH7,
2の燐酸塩緩衝液(セーレ/セ/ンにとかした20.0
重量係の溶液5rnlに加えた。60分間の間培養を恒
温反応器中で30℃で行なった。反応のpH(7,2)
は殆んど変化しなかった。反応時間が経過した後に、反
応混合物からt、o r ’i取出し、蒸溜水tooy
に添加した。l0N−NaOH1−の添加後、生成した
アノモニアの量を、オリオン(Orion>アノモニア
選択電極で測定した。
アミダーゼ活性度(生成したアノモニアの量で表わされ
る)は、変換した基質の量に等しく、乾燥基質の2当り
90単位(毎分のミクロ七ル)であった。
る)は、変換した基質の量に等しく、乾燥基質の2当り
90単位(毎分のミクロ七ル)であった。
列2
0ドコクス・エリトロ−リス(Rhodococcus
erythropol is ) tD突然変異体菌株
NGI812019の洗浄細胞を、列1のようにして試
験した。この突然変異体のD−パリノアミドの変換のア
ミダーゼ活性度は、乾燥基質17当り250単位(毎分
のミクロモルノであった。
erythropol is ) tD突然変異体菌株
NGI812019の洗浄細胞を、列1のようにして試
験した。この突然変異体のD−パリノアミドの変換のア
ミダーゼ活性度は、乾燥基質17当り250単位(毎分
のミクロモルノであった。
汐1]3
D−ノζす/アミド(比旋光度〔α)D=−11,5゜
(C== 2.0 ; H2O) ) 4.O重t%(
r含有f ろ水溶液200Pe、ロドコクス・エリトロ
ポリス(Rhodococcus erythropo
lis )NClB 11540の遠心分離した洗浄
細胞102と室温て15分間攪拌した。
(C== 2.0 ; H2O) ) 4.O重t%(
r含有f ろ水溶液200Pe、ロドコクス・エリトロ
ポリス(Rhodococcus erythropo
lis )NClB 11540の遠心分離した洗浄
細胞102と室温て15分間攪拌した。
次いで細胞を遠心分離し、水で洗浄し、再び遠心分離し
た。水層を合し、活囲炭0.52で50℃で脱色し、真
空下に40℃で蒸発させた。
た。水層を合し、活囲炭0.52で50℃で脱色し、真
空下に40℃で蒸発させた。
残渣を、真空乾燥オーブン中で40℃で乾燥した。
純粋D−バリンの収量は、(薄層クロマトグラフィー(
TLCIによって測定) 7.6 ?であった。収率は
95%であった。D−パリ/:〔α〕D= −28,
0° (C=8.O; 6 N −HCz ン
。
TLCIによって測定) 7.6 ?であった。収率は
95%であった。D−パリ/:〔α〕D= −28,
0° (C=8.O; 6 N −HCz ン
。
囮j4
0トコクス・エリトロポリス(Rhodococcus
erythropolis) NGIB 11540
tD細胞10r’i、フルギン酸カルシウムに固定し、
このようにして得られた小球体(i7、D−アラニノア
ミ ド (〔α )p=−7,1°(Q=2!、Q
; )−120ン ノの5.咳量係の水溶液250
グと室温で攪拌した。
erythropolis) NGIB 11540
tD細胞10r’i、フルギン酸カルシウムに固定し、
このようにして得られた小球体(i7、D−アラニノア
ミ ド (〔α )p=−7,1°(Q=2!、Q
; )−120ン ノの5.咳量係の水溶液250
グと室温で攪拌した。
24時間後に、アルギン酸塩小球体を戸数し、水で洗浄
した。2つの水相を合し、次いで列3のようにして処理
した。得られた純粋のD−アラニ/の量(TLCで測定
)は、11.91 (収率=95.2係)であった。
した。2つの水相を合し、次いで列3のようにして処理
した。得られた純粋のD−アラニ/の量(TLCで測定
)は、11.91 (収率=95.2係)であった。
比旋光度は〔α)D = −14,8°(C二10:6
N−HCAIであった。
N−HCAIであった。
例5
砂に固定化したロドコクス・エリトロポリス(Rhod
ococcus erythropolis)NClB
t t540の細胞52をカラムに装入し、D−ロ
イシンアミド(〔α’)0=−7,5°(C=2.0
:H2O))の2.5重量係の水溶液300?を、カラ
ムに室温で20時間循環させた。その後に、溶液中には
T L C1g1l定によれば原料は存在していなかっ
た1、列3のようにして処理した後に、純粋のl) −
。
ococcus erythropolis)NClB
t t540の細胞52をカラムに装入し、D−ロ
イシンアミド(〔α’)0=−7,5°(C=2.0
:H2O))の2.5重量係の水溶液300?を、カラ
ムに室温で20時間循環させた。その後に、溶液中には
T L C1g1l定によれば原料は存在していなかっ
た1、列3のようにして処理した後に、純粋のl) −
。
イ/77.02(収率= 93.3係)(TLCにより
測定)が得られた。〔α〕υ””15.0°(C=4.
0; 5 +’J −+cz )。
測定)が得られた。〔α〕υ””15.0°(C=4.
0; 5 +’J −+cz )。
比較列
D−パリ/アミド11.6 ii’ (0,1モル)を
、水36rnlにとかした溶液に96重量係の硫酸20
ゴを攪拌しながら添加し、溶液を攪拌しながら4時間加
熱(100℃)した。40℃に冷却後、酸性加水分解混
合吻全25重量係のアノモニアで中和してpH=5.o
の酸性度にすると共に、攪拌し、冷却した。中和後に、
水溶液の硫酸アンモニウム含量は4重量係であった。
、水36rnlにとかした溶液に96重量係の硫酸20
ゴを攪拌しながら添加し、溶液を攪拌しながら4時間加
熱(100℃)した。40℃に冷却後、酸性加水分解混
合吻全25重量係のアノモニアで中和してpH=5.o
の酸性度にすると共に、攪拌し、冷却した。中和後に、
水溶液の硫酸アンモニウム含量は4重量係であった。
このようにして東成した結晶性D −A IJンを、ガ
ラスフィルターで40℃で濾過して単離した。
ラスフィルターで40℃で濾過して単離した。
(洗液:水5rnlX3及びアセトン5m1X3J。
乾燥(0,016パール;50℃;8時間)後のD−バ
リンの収量<TLCにより純粋;硫液塩を含まないノは
、7.97(収率67.5%)であった。D−バリンの
比旋光度:〔α:l □ = −27,9゜(C=8.
O: 6N−HCA)。
リンの収量<TLCにより純粋;硫液塩を含まないノは
、7.97(収率67.5%)であった。D−バリンの
比旋光度:〔α:l □ = −27,9゜(C=8.
O: 6N−HCA)。
TLC測定によれば、99チ以上のD−・々リンアミド
が加水分解してD−バリンが得られた。
が加水分解してD−バリンが得られた。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、D−α−アミノ酸アミドの相応するD−α−アミノ
酸への酵素加水分解法において、D−α−アミノ戚アミ
ド水溶液を、アミノアシルアミダーゼを含有しロドコク
ス・エリトロポリス(Rhodococcus ery
thropolis)又はその突然変異体の培養から得
られた調製物と接触させ、D−α−アミノ酸をこのよう
にして得られた水解物から回収することを特徴とする、
D−α−アミノ酸アミドの相応するD−α−アミノ酸へ
の酵素加水分解法。 2、加水分解を、pH6〜10及び温度20〜45℃で
行なう、特許請求の範囲第1項記載の方法。 3、ロドコクス・エリトロポリス(Rhodococ−
cus erythropolis)又はその突然変異
体を湿性細胞の形で使用する、特許請求の範囲第1項又
は第2項記載の方法。 4、適当なキャリアーに固定したロドコクス・エリトロ
ポリス(Rhodococcus erythrop−
olis)又はその突然変異体を使用する、特許請求の
範囲第1項又は第2項記載の方法。 5、NClBのNo.11538、11539又は11
540で登録したロドコクス・エリトロポリス(Rho
dococcus erythropolis)を使用
する、特許請求の範囲第1項から第4項までのいずれか
1項記載の方法。 6、NClBのNo.12019で登録したロドコクス
・エリトロポリス(Rhodococcus eryt
−hropolis)の突然変異体を使用する、特許請
求の範囲第1項から第4項までのいずれか1項記載の方
法。 7、原子3〜6個を有するD−α−アミノ酸アミドを出
発化合物として使用する、特許請求の範囲第1項から第
6項までのいずれか1項記載の方法。 8、D−α−アミノ−アミドとして、D−アラニンアミ
ド、D−バリンアミド、D−アミノ酪酸アミド、D−ロ
イシンアミド、D−セリンアミド又はD−スレオニンア
ミドを使用する、特許請求の範囲第1項から第7項まで
のいずれか1項記載の方法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
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NL8403093 | 1984-10-11 | ||
NL8403093A NL8403093A (nl) | 1984-10-11 | 1984-10-11 | Werkwijze voor de enzymatische hydrolyse van d-alfa-aminozuuramiden. |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
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Country | Link |
---|---|
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EP (1) | EP0179523B1 (ja) |
JP (1) | JPS6196989A (ja) |
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CA (1) | CA1245590A (ja) |
DE (1) | DE3576522D1 (ja) |
DK (1) | DK461985A (ja) |
ES (1) | ES8605581A1 (ja) |
IL (1) | IL76649A0 (ja) |
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Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2002253294A (ja) * | 2001-03-02 | 2002-09-10 | Mitsubishi Gas Chem Co Inc | 光学活性脂肪族アミノ酸アミドの製造法 |
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---|---|---|---|---|
GB8618559D0 (en) * | 1986-07-30 | 1986-09-10 | Genetics Int Inc | Rhodococcus bacterium |
DE3719872A1 (de) * | 1987-06-13 | 1988-12-29 | Basf Ag | Verfahren zur herstellung von d-alanin aus l-chlorpropionsaeure |
CA1336414C (en) * | 1988-03-24 | 1995-07-25 | Hideki Kawasaki | D-amidase and process for producing d--alanine and/or l--alanineamide |
US5252470A (en) * | 1988-03-24 | 1993-10-12 | Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. | D-amidase and process for producing D-α-alanine and/or L-α-alanineamide |
DE3816063A1 (de) * | 1988-05-06 | 1989-11-23 | Schering Ag | Verfahren zur herstellung von l-aminosaeuren und aminosaeure-amiden |
EP0383403A1 (en) * | 1989-02-16 | 1990-08-22 | Stamicarbon B.V. | Process for preparation of organic chemicals |
JP3009421B2 (ja) * | 1990-02-28 | 2000-02-14 | 秀明 山田 | 有機酸の生物学的製造法 |
US5593871A (en) * | 1990-09-20 | 1997-01-14 | E. I. Du Pont De Nemours And Company | Process for the preparation of enantiometric 2-alkanoic acid amides from nitriles |
US6133002A (en) | 1997-09-25 | 2000-10-17 | Dsm N.V. | Process for preparing optically active 2-amino-ω-oxoalkanoic acid derivatives |
AT412092B (de) * | 2003-02-27 | 2004-09-27 | Dsm Fine Chem Austria Gmbh | Verfahren zur herstellung chiraler alpha-hydroxycarbonsäuren durch enzymatische hydrolyse von chiralen cyanhydrinen |
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
LU74142A1 (ja) * | 1976-01-08 | 1977-07-22 | ||
US4211840A (en) * | 1977-06-08 | 1980-07-08 | Ajinomoto Company, Incorporated | Method for producing D-α-amino acid |
CA1215924A (en) * | 1983-07-27 | 1986-12-30 | David W. Bewick | Process for producing optically active aryloxypropionic acids and derivatives thereof useful as herbicides |
NL8400312A (nl) * | 1984-02-02 | 1985-09-02 | Stamicarbon | Optisch aktief gesubstitueerd boterzuuramide alsmede werkwijze voor de optische scheiding van gesubstitueerd boterzuuramide. |
-
1984
- 1984-10-11 NL NL8403093A patent/NL8403093A/nl not_active Application Discontinuation
-
1985
- 1985-09-25 US US06/779,851 patent/US4705752A/en not_active Expired - Fee Related
- 1985-10-09 AT AT85201638T patent/ATE51022T1/de not_active IP Right Cessation
- 1985-10-09 DE DE8585201638T patent/DE3576522D1/de not_active Expired - Lifetime
- 1985-10-09 EP EP85201638A patent/EP0179523B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1985-10-09 DK DK461985A patent/DK461985A/da not_active Application Discontinuation
- 1985-10-09 CA CA000492594A patent/CA1245590A/en not_active Expired
- 1985-10-10 IL IL76649A patent/IL76649A0/xx unknown
- 1985-10-10 ES ES547765A patent/ES8605581A1/es not_active Expired
- 1985-10-11 JP JP60225014A patent/JPS6196989A/ja active Pending
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2002253294A (ja) * | 2001-03-02 | 2002-09-10 | Mitsubishi Gas Chem Co Inc | 光学活性脂肪族アミノ酸アミドの製造法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EP0179523B1 (en) | 1990-03-14 |
ES547765A0 (es) | 1986-03-16 |
CA1245590A (en) | 1988-11-29 |
DK461985A (da) | 1986-04-12 |
EP0179523A1 (en) | 1986-04-30 |
NL8403093A (nl) | 1986-05-01 |
US4705752A (en) | 1987-11-10 |
DE3576522D1 (de) | 1990-04-19 |
ATE51022T1 (de) | 1990-03-15 |
DK461985D0 (da) | 1985-10-09 |
IL76649A0 (en) | 1986-02-28 |
ES8605581A1 (es) | 1986-03-16 |
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