JPS6196985A - 細胞クロ−ンの製造方法 - Google Patents
細胞クロ−ンの製造方法Info
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- JPS6196985A JPS6196985A JP59218678A JP21867884A JPS6196985A JP S6196985 A JPS6196985 A JP S6196985A JP 59218678 A JP59218678 A JP 59218678A JP 21867884 A JP21867884 A JP 21867884A JP S6196985 A JPS6196985 A JP S6196985A
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K16/00—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
- C07K16/18—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans
- C07K16/26—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against hormones ; against hormone releasing or inhibiting factors
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、被免疫動物に対して、ホルモン、酵素、その
他の生体活性物質等の一般に免疫学的寛容状態にあると
考えられる物質に対しても特異的に反応する抗体を産生
ずる能力を有するハイブリドーマ細胞株を樹立する方法
に関する。
他の生体活性物質等の一般に免疫学的寛容状態にあると
考えられる物質に対しても特異的に反応する抗体を産生
ずる能力を有するハイブリドーマ細胞株を樹立する方法
に関する。
WIIS細胞(5pleen Ca1ls)および骨
髄腫細胞(myeloma Ce1ls )tf)細
胞融合法ニヨるハイブリドーマ細胞に特貫抗体を産生さ
せる方法は、ケーラー(Kohler)及びミルシュタ
イ7 (Mtlstein)によシ報告され(Kohl
er。
髄腫細胞(myeloma Ce1ls )tf)細
胞融合法ニヨるハイブリドーマ細胞に特貫抗体を産生さ
せる方法は、ケーラー(Kohler)及びミルシュタ
イ7 (Mtlstein)によシ報告され(Kohl
er。
G、、and Mtlstein、G、 (197
5)Nature 2互6:495参照〕、その後の
種々の改良がなされて、現在に至っているCGa1−f
ra、G、、Rows、S、C,、MilatttnC
,、BlLtchar、G、Ii’、、and How
ard。
5)Nature 2互6:495参照〕、その後の
種々の改良がなされて、現在に至っているCGa1−f
ra、G、、Rows、S、C,、MilatttnC
,、BlLtchar、G、Ii’、、and How
ard。
J、C,(1977)Natsra 266:5sO
1Galfra、G、、Milatein、C,、an
dFright、 B、 (1979)Natur
tt 277: 131、Shulman、M、、a
nd Kohler。
1Galfra、G、、Milatein、C,、an
dFright、 B、 (1979)Natur
tt 277: 131、Shulman、M、、a
nd Kohler。
C,(1978)NatlLyg 276:269等参
照〕。しかし被免疫動物に対して免疫学的寛容物質、即
ち免疫担当細胞に自己と認識されてしまう物質に対して
は、生体は一般に抗体を産生じ得えないことが知られて
いる。かように、既知の方法によっては、生体活性物質
その他の特殊な物質に対しては、特異抗体を産生ずるハ
イブリドーマ細胞は産生じ得ないか極めて低率にしか産
生じ得ないのが現状である。
照〕。しかし被免疫動物に対して免疫学的寛容物質、即
ち免疫担当細胞に自己と認識されてしまう物質に対して
は、生体は一般に抗体を産生じ得えないことが知られて
いる。かように、既知の方法によっては、生体活性物質
その他の特殊な物質に対しては、特異抗体を産生ずるハ
イブリドーマ細胞は産生じ得ないか極めて低率にしか産
生じ得ないのが現状である。
かかる実情に鑑みて、本発明者は、被免疫動物として、
自己免疫疾患状態にあるか又は遺伝的に自己免疫疾患に
なりやすい動物を用いることに着目し、かかる病的状態
にあるマウスを用いることによシ、マウスに免疫学的寛
容物質であることが知られているマウス乳癌フィルス(
MMTV)F)外殻たんばく質の一つであるGP52(
分子量521O00の糖蛋白質0hno、T、、Mes
a −Tejada、 R,、Keyder、
1.、Eamana−rayanan、M、、Bawa
ch、 J、、 and2464参照〕に対す参照
体産生バイブリド−?臂細胞の産生の技術を確立するに
至1)、GP52に特異的に反応するモノクローナル抗
体の継続的な・収得に成功した。さらに、酵素であるエ
クオリン(Attqw−orin )及びホルモンであ
るインスリンを抗原として、これに対する抗体産生に成
功し、本発明を完成するに至った。
自己免疫疾患状態にあるか又は遺伝的に自己免疫疾患に
なりやすい動物を用いることに着目し、かかる病的状態
にあるマウスを用いることによシ、マウスに免疫学的寛
容物質であることが知られているマウス乳癌フィルス(
MMTV)F)外殻たんばく質の一つであるGP52(
分子量521O00の糖蛋白質0hno、T、、Mes
a −Tejada、 R,、Keyder、
1.、Eamana−rayanan、M、、Bawa
ch、 J、、 and2464参照〕に対す参照
体産生バイブリド−?臂細胞の産生の技術を確立するに
至1)、GP52に特異的に反応するモノクローナル抗
体の継続的な・収得に成功した。さらに、酵素であるエ
クオリン(Attqw−orin )及びホルモンであ
るインスリンを抗原として、これに対する抗体産生に成
功し、本発明を完成するに至った。
しかして、本発明によれば、自己免疫疾患状態にあるか
又は遺伝的に自己免疫疾患になりやすい動物を該動物と
同一種の正常な動物に対しては免疫学的寛容状態にある
物質で免疫し、この免疫動物から抗体産生細胞を取得し
て骨髄腫細胞とのノ・イブリドーマを形成させ、次いで
このノ・イブリド−マをクローン化することにより、上
記免疫学的寛容状態にある物質に対して特異性を示す抗
体を産生ずる細胞クローンを選択することを特徴とする
、免疫学的寛容状態にある物質に対して特異性を示す抗
体を産生ずる細胞クローンの製造方法が提供される。
又は遺伝的に自己免疫疾患になりやすい動物を該動物と
同一種の正常な動物に対しては免疫学的寛容状態にある
物質で免疫し、この免疫動物から抗体産生細胞を取得し
て骨髄腫細胞とのノ・イブリドーマを形成させ、次いで
このノ・イブリド−マをクローン化することにより、上
記免疫学的寛容状態にある物質に対して特異性を示す抗
体を産生ずる細胞クローンを選択することを特徴とする
、免疫学的寛容状態にある物質に対して特異性を示す抗
体を産生ずる細胞クローンの製造方法が提供される。
本明細書において、「自己免疫疾患状態」とは生体の病
的状態のひとつで、自己と非自己とを識別する生体の認
識機構が不完全である状態であシ、本来なら自己と免疫
担当細胞系に認識されて決して抗体産生を見ない物質に
対しても抗体を産生じてしまう様になる生体の病的状態
をいい、この自己免疫疾患についてのさらに詳しい情報
に関しては、例えばTHEOFILOPOULO5,A
、。
的状態のひとつで、自己と非自己とを識別する生体の認
識機構が不完全である状態であシ、本来なら自己と免疫
担当細胞系に認識されて決して抗体産生を見ない物質に
対しても抗体を産生じてしまう様になる生体の病的状態
をいい、この自己免疫疾患についてのさらに詳しい情報
に関しては、例えばTHEOFILOPOULO5,A
、。
DIXON、F、(1982)Am、J。
pothol、108:321−365を参照されたい
。
。
また、「遺伝的に自己免疫疾患になりやすい」動物とは
、該動物種において実験用近文系動物系(兄妹交配によ
って遺伝的に純化された系統)として系統育成されてい
る動物で、その90%以上の個体が自己免疫疾患になる
動物をいう。
、該動物種において実験用近文系動物系(兄妹交配によ
って遺伝的に純化された系統)として系統育成されてい
る動物で、その90%以上の個体が自己免疫疾患になる
動物をいう。
モノクローナル抗体の産生q技術において、抗原物質で
まづ動物を免疫する必要がある。被免疫動物としては、
マウスことにB A L B / c系マウスが一般に
用いられている。これは細胞融合法を行なう上で骨髄腫
細胞と同系同種のマウス(BALB/c’)からの胛細
胞を用いるのが良いと一般的に信じられているからであ
る。本発明者は、このBALE/c、系マウスを用いて
、マウス乳癌ウィルスMMTV−gp52によって免疫
してこのMMTV−gp52に対する特異抗体を産生ず
るハイブリドーマ細胞を得るととを試みた結果、360
0ハイブリドーマ細胞を検索して71゛クローンを得た
のみであった。
まづ動物を免疫する必要がある。被免疫動物としては、
マウスことにB A L B / c系マウスが一般に
用いられている。これは細胞融合法を行なう上で骨髄腫
細胞と同系同種のマウス(BALB/c’)からの胛細
胞を用いるのが良いと一般的に信じられているからであ
る。本発明者は、このBALE/c、系マウスを用いて
、マウス乳癌ウィルスMMTV−gp52によって免疫
してこのMMTV−gp52に対する特異抗体を産生ず
るハイブリドーマ細胞を得るととを試みた結果、360
0ハイブリドーマ細胞を検索して71゛クローンを得た
のみであった。
本発明において、自己免疫疾患状態にあるか又は遺伝的
に自己免疫疾患になりやすい動物として、遺伝的に自己
免疫異常に陥るマウス系NZBとNzr系ffウス+7
)−代雑種(7’+ ): (NZB×NZW)Fl
、又はNZE系、BXSB系、MRL/l系、MRL/
%等のマウス(以下このようなマウスを「自己免疫異常
マウス」という)を免疫胛細胞を得るための被免疫動物
として用いることによシ、極めて高率に抗MMTV−g
p52抗体を産生ずるハイブリドーマ細胞を産生じ得る
ことが見い出された。
に自己免疫疾患になりやすい動物として、遺伝的に自己
免疫異常に陥るマウス系NZBとNzr系ffウス+7
)−代雑種(7’+ ): (NZB×NZW)Fl
、又はNZE系、BXSB系、MRL/l系、MRL/
%等のマウス(以下このようなマウスを「自己免疫異常
マウス」という)を免疫胛細胞を得るための被免疫動物
として用いることによシ、極めて高率に抗MMTV−g
p52抗体を産生ずるハイブリドーマ細胞を産生じ得る
ことが見い出された。
この自己免疫異常マウスはヒトの自己免疫疾患の一つで
あるSLE(Systemic LupusEryt
hgmatosss )全身性紅斑性狽唐/全身性エリ
テマトーデスと極めて遅遅した症状を呈する実験動物系
であることが知られている。本発明では、これら動物が
自然に発病して来る退会の1〜2週令退会マウスを用い
、この自己免疫異常マウスに対して、免疫学的寛容状態
にある物質を抗原として免疫を開始し、抗体力価が充分
に高くなるまで免疫を繰シ返し、例えば数回の追加免疫
′を行なったのち、最終免疫の3日後に免疫動物から抗
体産生細胞、例えば胛細胞を取得し、これを骨髄腫細胞
との細胞融合法によシ融合させて、免疫学的寛容状態に
ある物質に対して特異性を示す抗体を産生ずる牌、細胞
と骨髄腫細胞とのハイブリドーマを形成させる。胛細胞
と骨髄腫細胞との融合はそれ自体公知の細胞融合法、例
えば前述のクーラー及びミルシュタインによシ報告され
た方法により容易に行なうことができる。その際、EA
T選択培地のような融合細胞(ハイブリドーマ細胞)の
みが生存する限定選択培地と用いることによシ、ハイブ
リドーマ細胞を高収率で取得することができる。
あるSLE(Systemic LupusEryt
hgmatosss )全身性紅斑性狽唐/全身性エリ
テマトーデスと極めて遅遅した症状を呈する実験動物系
であることが知られている。本発明では、これら動物が
自然に発病して来る退会の1〜2週令退会マウスを用い
、この自己免疫異常マウスに対して、免疫学的寛容状態
にある物質を抗原として免疫を開始し、抗体力価が充分
に高くなるまで免疫を繰シ返し、例えば数回の追加免疫
′を行なったのち、最終免疫の3日後に免疫動物から抗
体産生細胞、例えば胛細胞を取得し、これを骨髄腫細胞
との細胞融合法によシ融合させて、免疫学的寛容状態に
ある物質に対して特異性を示す抗体を産生ずる牌、細胞
と骨髄腫細胞とのハイブリドーマを形成させる。胛細胞
と骨髄腫細胞との融合はそれ自体公知の細胞融合法、例
えば前述のクーラー及びミルシュタインによシ報告され
た方法により容易に行なうことができる。その際、EA
T選択培地のような融合細胞(ハイブリドーマ細胞)の
みが生存する限定選択培地と用いることによシ、ハイブ
リドーマ細胞を高収率で取得することができる。
なお、本明細書において使用する「免疫学的寛容状態に
ある物質」とは、正常状態にある生体では、すべての生
体の構成要素と産生物に対して、生体の免疫担尚細胞系
はこれを自己と認識して、これらの物質には抗体を産生
じない、たとえば生体の産生ずるホルモンや神経伝達因
子、酵素などは一般には生体にとって自己と認識されて
これに対する抗体は産生されない一心^÷9物質のこと
を言う。
ある物質」とは、正常状態にある生体では、すべての生
体の構成要素と産生物に対して、生体の免疫担尚細胞系
はこれを自己と認識して、これらの物質には抗体を産生
じない、たとえば生体の産生ずるホルモンや神経伝達因
子、酵素などは一般には生体にとって自己と認識されて
これに対する抗体は産生されない一心^÷9物質のこと
を言う。
但しヒトとマウスの間のように種が異なると同様の活性
を有している物質でもその構造がまったく異なる物質で
あれば、この限シではない。即ち抗体は産生される訳で
ある。しかし一般的に言って、上記のホルモンや酵素等
は種が異っても物質の構造上の相違は極めて僅かなのが
一般的でらシ、そのために種が異なる場合にも、これら
の物質に対して抗体を産生させることは極めて困難であ
る場合が多い。
を有している物質でもその構造がまったく異なる物質で
あれば、この限シではない。即ち抗体は産生される訳で
ある。しかし一般的に言って、上記のホルモンや酵素等
は種が異っても物質の構造上の相違は極めて僅かなのが
一般的でらシ、そのために種が異なる場合にも、これら
の物質に対して抗体を産生させることは極めて困難であ
る場合が多い。
上記の如くして調製されるハイブリドーマ細胞群からは
次いで、免疫に用いた抗原物質(免疫学的寛容状態にあ
る物質)に対して特異反応性を示す抗体を産生ずる能力
のある細胞を検索しクローニングする。この検索及びク
ローニングはそれ自体公知の方法で行なうことができ〔
例えば、xohter、 Mit、1ltain ら
による前述の文献参照〕、例えば、ELISA法によシ
検索し、これを限界希釈法によってクローニングするこ
とによシ、モノクロ〒ナル抗体産生株化細胞を取得する
ことができる。
次いで、免疫に用いた抗原物質(免疫学的寛容状態にあ
る物質)に対して特異反応性を示す抗体を産生ずる能力
のある細胞を検索しクローニングする。この検索及びク
ローニングはそれ自体公知の方法で行なうことができ〔
例えば、xohter、 Mit、1ltain ら
による前述の文献参照〕、例えば、ELISA法によシ
検索し、これを限界希釈法によってクローニングするこ
とによシ、モノクロ〒ナル抗体産生株化細胞を取得する
ことができる。
この場合の細胞融合の技術は融合細胞の培養によシ均質
な、いわゆるモノクローナル抗体を連続的に生産せしめ
ることを可能にする技術でsb、その生産方法の一般的
な概要自体はすでに公知であシ〔例えばKohltr、
Milsteinらによる前述の文献参照〕、本発明に
おいてもその方法をその1ま利用することができるので
、ここでは該文献の引用を以って詳細な説明を省略する
。
な、いわゆるモノクローナル抗体を連続的に生産せしめ
ることを可能にする技術でsb、その生産方法の一般的
な概要自体はすでに公知であシ〔例えばKohltr、
Milsteinらによる前述の文献参照〕、本発明に
おいてもその方法をその1ま利用することができるので
、ここでは該文献の引用を以って詳細な説明を省略する
。
以上述べた本発明の方法は、自己免疫異常系のマウスを
免疫寛容物質で免疫することによシ、免疫学的寛容状態
を簡単に破壊し得ることを証明したものであシ、シかし
て本発明の方法によれば、生体活性物質等従来の方法で
は抗体を産生ずることが極めて困難であると考えられて
いた免疫学的寛容状態にある物質に対する抗体産生細胞
系を樹立することができる。
免疫寛容物質で免疫することによシ、免疫学的寛容状態
を簡単に破壊し得ることを証明したものであシ、シかし
て本発明の方法によれば、生体活性物質等従来の方法で
は抗体を産生ずることが極めて困難であると考えられて
いた免疫学的寛容状態にある物質に対する抗体産生細胞
系を樹立することができる。
かようにして取得された抗体産生細胞系は試験管内で又
は動物の腹腔内で増殖することが可能であシ、その培地
又は腹水からモノクローナル抗体を取得することができ
る。例えば、NZBxNZr、p、マウス又はMRL/
l系マウスの肝細胞とマウス骨髄腫細胞(#、5−x)
とのハイブリドーマ細胞はすべてB A L B /
c系マウスの腹腔内で増殖が可能でアシ、宿主マウスの
腹水中にモノクローナル抗体を産出する。
は動物の腹腔内で増殖することが可能であシ、その培地
又は腹水からモノクローナル抗体を取得することができ
る。例えば、NZBxNZr、p、マウス又はMRL/
l系マウスの肝細胞とマウス骨髄腫細胞(#、5−x)
とのハイブリドーマ細胞はすべてB A L B /
c系マウスの腹腔内で増殖が可能でアシ、宿主マウスの
腹水中にモノクローナル抗体を産出する。
例えば、試験管内での増殖は、完全培地CRPMl−1
640H2mMグルタミン、1mMピルシリン(5G1
L%its/ゴ)及び15%馬血清(5creened
)を補充したもの〕のような増殖培地中で、37℃、5
%CO,インキュペター中にて培養することができる。
640H2mMグルタミン、1mMピルシリン(5G1
L%its/ゴ)及び15%馬血清(5creened
)を補充したもの〕のような増殖培地中で、37℃、5
%CO,インキュペター中にて培養することができる。
また、このようにして培養されたバイブI)−t−’−
マ細胞は2 X 10’〜1×10?細胞をマウス腹腔
内に接種することもできる。この場合接種に用いるマウ
スは、あらかじめ(1〜2週間前)0.5−のpris
tane(Pfaltz & Bawer社製)を腹
腔内に注入して前処理をほどこしておくことが望ましい
。接鍾後一般に4日〜10日で腹水採取が可能となる。
マ細胞は2 X 10’〜1×10?細胞をマウス腹腔
内に接種することもできる。この場合接種に用いるマウ
スは、あらかじめ(1〜2週間前)0.5−のpris
tane(Pfaltz & Bawer社製)を腹
腔内に注入して前処理をほどこしておくことが望ましい
。接鍾後一般に4日〜10日で腹水採取が可能となる。
腹水中にはハイブリドーマ細胞とハイブリドーマ細胞の
産生じた抗体とが含まれており、この中のハイブリドー
マ細胞を遠心分離によって除去した後抗体原液として使
用することができる。
産生じた抗体とが含まれており、この中のハイブリドー
マ細胞を遠心分離によって除去した後抗体原液として使
用することができる。
以上に述べた方法で産生されるモノクローナル抗体は従
来の文献に未載の新規且つ極めて有用な物質であり、か
かるモノクローナル抗体を用いれば、例えば、ホルモン
や酵素等の生体活性物質の超微量定量方法(μli−s
g)を確立することができる。さらに、インスリンは糖
尿病治療には必須の物質であるが、現在用いられている
インスリン製剤はブタ由来のものをアミノ酸を変換する
ことによってヒト化して用いられているが、純粋にヒト
由来のものに比して長期使用時に患者がこれに対して抗
体を作ってしまい、インスリンでの治療が行えなくなる
という症例がある。この場合の原因はブタのインスリン
をヒト化したものが有害なのか、該製剤中に微量に含ま
れる不純物によるものか不明であるが、本発明の方法を
応用すれば、各種の抗インスリン抗体を得ることができ
、この抗インスリン抗体を用いれば上記の原因を解明す
ることがで□きる。さらに抗インスリン抗体を用いてア
フイニテイカラムを作成すれば、上記の不純物を効率良
く除去する方法の開発も可能となる。
来の文献に未載の新規且つ極めて有用な物質であり、か
かるモノクローナル抗体を用いれば、例えば、ホルモン
や酵素等の生体活性物質の超微量定量方法(μli−s
g)を確立することができる。さらに、インスリンは糖
尿病治療には必須の物質であるが、現在用いられている
インスリン製剤はブタ由来のものをアミノ酸を変換する
ことによってヒト化して用いられているが、純粋にヒト
由来のものに比して長期使用時に患者がこれに対して抗
体を作ってしまい、インスリンでの治療が行えなくなる
という症例がある。この場合の原因はブタのインスリン
をヒト化したものが有害なのか、該製剤中に微量に含ま
れる不純物によるものか不明であるが、本発明の方法を
応用すれば、各種の抗インスリン抗体を得ることができ
、この抗インスリン抗体を用いれば上記の原因を解明す
ることがで□きる。さらに抗インスリン抗体を用いてア
フイニテイカラムを作成すれば、上記の不純物を効率良
く除去する方法の開発も可能となる。
また、本発明の方法に従えば、各種の免疫学的寛容状態
にある物質に対する特異性モノクローナル抗体の入手が
可能となシ、それらの特異性モノクローナル抗体を用い
ることによってかかる物質の生体内での局在を明らかに
することによシ種々の病気の診断に役立てることができ
、さらに、該特異性モノクローナル抗体を用いてアフイ
ニテイカラムを作成することによシ、免疫学的寛容状態
にらる微量の生体活性物質を多量にn製することが可能
となシ各種の難病の治療処置に利用することができる。
にある物質に対する特異性モノクローナル抗体の入手が
可能となシ、それらの特異性モノクローナル抗体を用い
ることによってかかる物質の生体内での局在を明らかに
することによシ種々の病気の診断に役立てることができ
、さらに、該特異性モノクローナル抗体を用いてアフイ
ニテイカラムを作成することによシ、免疫学的寛容状態
にらる微量の生体活性物質を多量にn製することが可能
となシ各種の難病の治療処置に利用することができる。
次に実施例を掲げて本発明の方法をさらに詳しく説明す
る。
る。
実施例 1: MMTV−gp52及びp4Bに対す
るモノクローナル抗体産生細 胞の作製 1VZB×NZW、F、5退会の雄(7)−Fウスに、
マウス乳癌ウィルス(MMTV)−gp52及びgp5
2から酵素処理によって糖鎖を除去した蛋白質248(
分子量48,000 )を抗原として、初回免疫に各3
0μy1第2回免疫に15/j、9゜最終免疫に10μ
Iをそれぞれ注射した。マウスから免疫胛細胞を最終免
疫終了の日から3日後に採取して、マウス骨髄腫細胞M
S−1との融合細胞をEAT選択培地を用いるpEG法
によって作製した。ここで用いたPEG法の詳細につい
ては、Ga1fre、G、、Howr、S、C,、Mi
la−tein、 C,、Butcher、 G、
F、、 andHoward、J、C,(1977)
Natsre266:550、参照。また、HAT選択
培地とはヒボキサンチン(hypoxanthine
) 7ミノプテリン(atninoptgrin)とチ
ミジン(thymidine )を含む培地ノコとで、
コノ培地中では、細胞融合の結果形成されたハイブリド
ーマ細胞のみが増殖し、もとの骨髄腫細胞は死滅する選
択培地である。
るモノクローナル抗体産生細 胞の作製 1VZB×NZW、F、5退会の雄(7)−Fウスに、
マウス乳癌ウィルス(MMTV)−gp52及びgp5
2から酵素処理によって糖鎖を除去した蛋白質248(
分子量48,000 )を抗原として、初回免疫に各3
0μy1第2回免疫に15/j、9゜最終免疫に10μ
Iをそれぞれ注射した。マウスから免疫胛細胞を最終免
疫終了の日から3日後に採取して、マウス骨髄腫細胞M
S−1との融合細胞をEAT選択培地を用いるpEG法
によって作製した。ここで用いたPEG法の詳細につい
ては、Ga1fre、G、、Howr、S、C,、Mi
la−tein、 C,、Butcher、 G、
F、、 andHoward、J、C,(1977)
Natsre266:550、参照。また、HAT選択
培地とはヒボキサンチン(hypoxanthine
) 7ミノプテリン(atninoptgrin)とチ
ミジン(thymidine )を含む培地ノコとで、
コノ培地中では、細胞融合の結果形成されたハイブリド
ーマ細胞のみが増殖し、もとの骨髄腫細胞は死滅する選
択培地である。
融合細胞作製から2〜3週間後に、EAT選択培地中に
生育してきたハイブリドーマ細胞が30株得られた(第
1表)。
生育してきたハイブリドーマ細胞が30株得られた(第
1表)。
このハイブリドーマ細胞の産生ずる抗体の特異性につい
て酵素抗体法(ELISA)で検討した結果を下記第2
表に示す。抗原物質であるyp52に特異的に結合する
抗体産生細胞株が6種分離された。またp48に対する
抗体産生細胞は3株であった。しかも、この内ヒトの乳
癌細胞と交叉反応を示す抗体を産生ずる細胞をgp52
の場合3株、p48の場合にも1株産生ずることに成功
した。
て酵素抗体法(ELISA)で検討した結果を下記第2
表に示す。抗原物質であるyp52に特異的に結合する
抗体産生細胞株が6種分離された。またp48に対する
抗体産生細胞は3株であった。しかも、この内ヒトの乳
癌細胞と交叉反応を示す抗体を産生ずる細胞をgp52
の場合3株、p48の場合にも1株産生ずることに成功
した。
実施flJ 2: MMTV及(jMMTV−Qp
52に対するモノクローナル抗体産生 細胞の作製 IylRL/lマウスを被免疫動物として用い、抗原物
質としてマウス乳癌ウィルス(MMTV)及びAIMT
V−gp52を用い、実施例1と同様にして、免疫肝細
胞を得てPEG法によってノ1イプリドーマ細胞を作製
した。下記の第3表に示すように(Jp52を抗原とし
て、3000種のハイブリドーマ細胞を得、MMTVに
対して2100種の細胞を得た。この各細胞株を酵素抗
体法によって特異抗体産生能の有無について検討した結
果、σp52に反応する抗体産生株72、陽性率z4す
る抗体の反応性の特異性を検討した結果を下記第4表に
示す。GP52を抗原とした場合にヒト乳癌細胞株T4
’7Dと反応するもの10種、ヒト乳癌細胞株MCI’
rと反応するもの11種、さらに手術切片の病理標本(
パラフィン組織切片)上で乳癌細胞と反応するもの2種
であった。
52に対するモノクローナル抗体産生 細胞の作製 IylRL/lマウスを被免疫動物として用い、抗原物
質としてマウス乳癌ウィルス(MMTV)及びAIMT
V−gp52を用い、実施例1と同様にして、免疫肝細
胞を得てPEG法によってノ1イプリドーマ細胞を作製
した。下記の第3表に示すように(Jp52を抗原とし
て、3000種のハイブリドーマ細胞を得、MMTVに
対して2100種の細胞を得た。この各細胞株を酵素抗
体法によって特異抗体産生能の有無について検討した結
果、σp52に反応する抗体産生株72、陽性率z4す
る抗体の反応性の特異性を検討した結果を下記第4表に
示す。GP52を抗原とした場合にヒト乳癌細胞株T4
’7Dと反応するもの10種、ヒト乳癌細胞株MCI’
rと反応するもの11種、さらに手術切片の病理標本(
パラフィン組織切片)上で乳癌細胞と反応するもの2種
であった。
JIMTVを抗原とした場合の結果は、抗原に特異反応
性を示すもの35株、この内ヒト乳癌細胞T4qD、M
CFTと反応するもの3株であった。
性を示すもの35株、この内ヒト乳癌細胞T4qD、M
CFTと反応するもの3株であった。
さらに組織切片中の乳癌細胞と反応するもの1株という
結果を得ている。
結果を得ている。
以上の3株について、さらに2回の限界希釈法によるク
ローニングののち、5X1G’〜10?個のハイブリド
ーマ細胞をB A L E / 6マウスの腹腔に注入
することによシ腹腔内で1〜3週間増殖させ、高濃度の
モノクローナル抗体を含む腹水を得ることに成功した。
ローニングののち、5X1G’〜10?個のハイブリド
ーマ細胞をB A L E / 6マウスの腹腔に注入
することによシ腹腔内で1〜3週間増殖させ、高濃度の
モノクローナル抗体を含む腹水を得ることに成功した。
なお、上記限界希釈法によるクローニングの手順は次の
とおシである:滅菌した96大のマイクロタイタープレ
ートを使用して、ハイプリードーマの細胞数を0.1/
100μl、 O1s/l 00μ!。
とおシである:滅菌した96大のマイクロタイタープレ
ートを使用して、ハイプリードーマの細胞数を0.1/
100μl、 O1s/l 00μ!。
1/100μlの三段階に希釈して各濃度の細胞液を1
00μlづり2行のウェル(24クエル)に分注する。
00μlづり2行のウェル(24クエル)に分注する。
その後37℃、5%CO,インキュベイターで増殖せし
める。
める。
こののち増殖してきた細胞群のうち最も希釈度の高い、
細胞を分注した行のウェルか≦4胞は単一の細胞を親細
胞として増殖してきた細胞であると、93%以上の確か
らしさて考えることができる。
細胞を分注した行のウェルか≦4胞は単一の細胞を親細
胞として増殖してきた細胞であると、93%以上の確か
らしさて考えることができる。
との抗体のELISA法による反応の代表的な例として
、抗GP52抗体(2−2C9F10C4)と抗MMT
〆抗体(4−6E3,410)の?ウス乳癌ウィルスに
対する反応性(2種のエピトープ抗体のELISA滴定
による;プレートはC3E−M M 7’ j’ /
Mq 5 M 7’ / (1’ % 粒子テコF シ
fl−ものを使用)のグラフを第1図に示す。また、同
様の検定をヒト乳癌組織からの抽出物について行った結
果(ヒト乳ガン抗原の2種のモノクローナル・エピトー
プのELISAでの交叉反応性;プレートはヒト乳ガン
組織抽出液でコートしたものを使用)を第2図に示す。
、抗GP52抗体(2−2C9F10C4)と抗MMT
〆抗体(4−6E3,410)の?ウス乳癌ウィルスに
対する反応性(2種のエピトープ抗体のELISA滴定
による;プレートはC3E−M M 7’ j’ /
Mq 5 M 7’ / (1’ % 粒子テコF シ
fl−ものを使用)のグラフを第1図に示す。また、同
様の検定をヒト乳癌組織からの抽出物について行った結
果(ヒト乳ガン抗原の2種のモノクローナル・エピトー
プのELISAでの交叉反応性;プレートはヒト乳ガン
組織抽出液でコートしたものを使用)を第2図に示す。
さらに、この抗体は5DS−pAGE(SDS−ポリア
クリルアミt”・ゲル電気泳動法)によって分離された
抗原物質に対しても反応性を有することが証明された。
クリルアミt”・ゲル電気泳動法)によって分離された
抗原物質に対しても反応性を有することが証明された。
第3図はA例にヒト乳癌細胞抽出物、B例にはマウス乳
癌ウィルスが電気泳動されたものを、ニトロセルロース
フィルターにプロットしたものでろムこれにモノクロー
ナル抗体を作用させ、抗マワスIQG抗体に酵素標識し
たもので検出した結果である。この結果明らかなように
、MMT〆ではGP52と反応していることが証明され
た。ヒトの乳癌細胞中にも同様の物質が存在する。
癌ウィルスが電気泳動されたものを、ニトロセルロース
フィルターにプロットしたものでろムこれにモノクロー
ナル抗体を作用させ、抗マワスIQG抗体に酵素標識し
たもので検出した結果である。この結果明らかなように
、MMT〆ではGP52と反応していることが証明され
た。ヒトの乳癌細胞中にも同様の物質が存在する。
実施例 3: エフオリy (Agqwori)に対す
るモノクローナル抗体産生細胞 の産生 エクオリンはクラゲAequorgαから分離された特
殊々発光蛋白質で、Cα イオン分子・と結合すると特
異蛍光を発することで知られている(Johnson、
F、、Shimotnurα、O0Cα の定量など筋
肉収縮の機構解明に有用な物質であシ、これに対する特
異抗体はこれらの研究上有効な手段を我々に与えるもの
である。
るモノクローナル抗体産生細胞 の産生 エクオリンはクラゲAequorgαから分離された特
殊々発光蛋白質で、Cα イオン分子・と結合すると特
異蛍光を発することで知られている(Johnson、
F、、Shimotnurα、O0Cα の定量など筋
肉収縮の機構解明に有用な物質であシ、これに対する特
異抗体はこれらの研究上有効な手段を我々に与えるもの
である。
精製されたエクオリンを抗原として、NZB×NZW、
F、マウスを免疫して抗体産生能を検討した。このとき
、NZB×NZW、F、マウスの免疫時の退会及び同一
の抗原物質を従来一般にモも試みた。
F、マウスを免疫して抗体産生能を検討した。このとき
、NZB×NZW、F、マウスの免疫時の退会及び同一
の抗原物質を従来一般にモも試みた。
抗原エクオリンを初回20μm1第2回10μ最終回5
μgをそれぞれ3群のマウスに注射した。
μgをそれぞれ3群のマウスに注射した。
被免疫動物はNZB×NZW’、F、マク退会週令と同
系のマウス11週令とBALB/Cマウス5週令の3群
である。
系のマウス11週令とBALB/Cマウス5週令の3群
である。
退会終了ののちそれぞれから胛細胞を得て、マウス骨髄
腫細胞MS−1とpEG法″によって細胞融合せしめて
、EAT選択培地中に増殖してきたハイブリドーマを得
た。その結果は下記第5表に示すように、5週令のNZ
E×NZWSFHマウス群から116株、11週↑のN
ZB×NZW、F。
腫細胞MS−1とpEG法″によって細胞融合せしめて
、EAT選択培地中に増殖してきたハイブリドーマを得
た。その結果は下記第5表に示すように、5週令のNZ
E×NZWSFHマウス群から116株、11週↑のN
ZB×NZW、F。
マウス群から27株、BALB/cマウス群ではハイブ
リドーマ形成率は高(,662株であった。
リドーマ形成率は高(,662株であった。
しかしB A L B / cマウス群の場合の特異抗
体の産生率は5株、α7%にすぎない。これに対して5
週令のNZB×NZW7.F、マウスを用いた例では2
2株、19.0%ときわめて高率であった。
体の産生率は5株、α7%にすぎない。これに対して5
週令のNZB×NZW7.F、マウスを用いた例では2
2株、19.0%ときわめて高率であった。
NZE×NZW、Flでの加令の影響を示唆する。
結果で、111週令マウスでは〕・イブリドーマ形成率
も特異抗体産生率も共に低下の傾向を示している。即ち
、特異抗体産生株は5例、19.5%と低値を示した。
も特異抗体産生率も共に低下の傾向を示している。即ち
、特異抗体産生株は5例、19.5%と低値を示した。
さらに酵素抗体法(ELISA)によって陽性を見た抗
体について、エクオリンの生化学的活性が中和されるか
否かを検討した結果を下記第6表に示す。C4+1イオ
ンと結合してエクオリンが特異蛍光を発するのを阻止す
る能力を有する抗体分子を産生ずるハイブリドーマが得
られたのは5週令のNZExNZTi7.F1マウス群
を用いた場合が最も高く6株、111週令マウス群の場
合には1例得られたがBALB/cマウス群によっては
1例も得られなかつ九。
体について、エクオリンの生化学的活性が中和されるか
否かを検討した結果を下記第6表に示す。C4+1イオ
ンと結合してエクオリンが特異蛍光を発するのを阻止す
る能力を有する抗体分子を産生ずるハイブリドーマが得
られたのは5週令のNZExNZTi7.F1マウス群
を用いた場合が最も高く6株、111週令マウス群の場
合には1例得られたがBALB/cマウス群によっては
1例も得られなかつ九。
実施例 4: インスリンに対するモノクローナル抗体
産生細胞の産生 インスリンは比較的低分子の蛋白性のホルモンでヒトと
ブタのインス寧リンはきわめて類似点が高いことが知ら
れている。
産生細胞の産生 インスリンは比較的低分子の蛋白性のホルモンでヒトと
ブタのインス寧リンはきわめて類似点が高いことが知ら
れている。
この両者を抗原として4週令のNZBxNZIF’。
Fiマウスを用いて、初回50μ11第2回25μl、
最終回3μiの各インスリンを注射して免疫した。最終
免疫の3日後に各群のマウスから肝細胞を得てマウス骨
髄腫細胞とEAT選択培地を用いるpEG法(実施例1
と同様)によシ細胞融合させた。EAT選択培地に増殖
してきたノ・イブリドーマ細胞株について、各々の抗原
に対する特異反応性を検討した結果を下記の第7表に示
す。
最終回3μiの各インスリンを注射して免疫した。最終
免疫の3日後に各群のマウスから肝細胞を得てマウス骨
髄腫細胞とEAT選択培地を用いるpEG法(実施例1
と同様)によシ細胞融合させた。EAT選択培地に増殖
してきたノ・イブリドーマ細胞株について、各々の抗原
に対する特異反応性を検討した結果を下記の第7表に示
す。
ヒトのインスリンを抗原としてNZB×NZW。
Flを免疫した場合には220株のハイブリドーマを得
、このうち酵素抗体法(ELISA)によつて陽性と認
められた細胞株は32株、14.5%・の陽性率であっ
た。また、ブタ(porcing )のインスリンを抗
原とした場合には、ハイブリドーマ細胞を200株得九
0この中で反応特異性を示したのは64株、320%の
陽性率を示した。
、このうち酵素抗体法(ELISA)によつて陽性と認
められた細胞株は32株、14.5%・の陽性率であっ
た。また、ブタ(porcing )のインスリンを抗
原とした場合には、ハイブリドーマ細胞を200株得九
0この中で反応特異性を示したのは64株、320%の
陽性率を示した。
第1図は、抗GP52抗体J(こ2−2CfF10(’
4 )と抗MMTV抗体(5−6E3,410)のマウ
ス乳癌ウィルスに対す名反応性を示すグラフであシ、 第2図は、第1図と同様の検定をヒト乳癌組織からの抽
出物について行なった結果を示すグラフであシ、 第3図はモノクローナル抗体2−2C9F10C;によ
るヒト乳癌細胞抽出物及びマウス乳癌ウィルスのニトロ
セルロースフィルI’−上−1:(DSDS−ポリアク
リルアミド・ゲル電気泳動後の抗原の検出状態をプロッ
トした図である。 AS A: lZ)季しがン神記aT47D CIB : M
MTV C3H/Mrn5mt/clモノクローナル城
体: 2−2C9FIOC4第3図
4 )と抗MMTV抗体(5−6E3,410)のマウ
ス乳癌ウィルスに対す名反応性を示すグラフであシ、 第2図は、第1図と同様の検定をヒト乳癌組織からの抽
出物について行なった結果を示すグラフであシ、 第3図はモノクローナル抗体2−2C9F10C;によ
るヒト乳癌細胞抽出物及びマウス乳癌ウィルスのニトロ
セルロースフィルI’−上−1:(DSDS−ポリアク
リルアミド・ゲル電気泳動後の抗原の検出状態をプロッ
トした図である。 AS A: lZ)季しがン神記aT47D CIB : M
MTV C3H/Mrn5mt/clモノクローナル城
体: 2−2C9FIOC4第3図
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、自己免疫疾患状態にあるか又は遺伝的に自己免疫疾
患になりやすい動物を、該動物と同一種の正常な動物に
対しては免疫学的寛容状態にある物質で免疫し、この免
疫動物から抗体産生細胞を取得して骨髄腫細胞とのハイ
ブリドーマを形成させ、次いでこのハイブリドーマをク
ローン化することにより、上記免疫学的寛容状態にある
物質に対して特異性を示す抗体を産生する細胞クローン
を選択することを特徴とする、免疫学的寛容状態にある
物質に対して特異性を示す抗体を産生する細胞クローン
の製造方法。 2、自己免疫疾患状態にあるか又は遺伝的に自己免疫疾
患になりやすい動物とはNZB×NZWの第一代雑種(
F_1)マウス、又はNZB系、BXSB系、MRL/
l系もしくはMRL/n系マウスである特許請求の範囲
第1項記載の方法。 3、骨髄腫細胞とはマウス骨髄腫細胞である特許請求の
範囲第2項記載の方法。 4、特許請求の範囲第1項記載の方法で製造された抗体
産生細胞クローンを、試験管内で又は動物の腹腔内で増
殖させ、培地又は腹水から免疫学的寛容状態にある物質
に対して特異性を示す抗体を取得することを特徴とする
免疫学的寛容状態にある物質に対して特異性を示す抗体
の産生方法。 5、免疫学的寛容状態にある物質が、ホルモン又は酵素
である特許請求の範囲第1〜4項のいずれかに記載の方
法。
Priority Applications (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP59218678A JPS6196985A (ja) | 1984-10-19 | 1984-10-19 | 細胞クロ−ンの製造方法 |
EP85306855A EP0179576A3 (en) | 1984-10-19 | 1985-09-26 | Monoclonal antibody |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP59218678A JPS6196985A (ja) | 1984-10-19 | 1984-10-19 | 細胞クロ−ンの製造方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6196985A true JPS6196985A (ja) | 1986-05-15 |
Family
ID=16723703
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP59218678A Pending JPS6196985A (ja) | 1984-10-19 | 1984-10-19 | 細胞クロ−ンの製造方法 |
Country Status (2)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP0179576A3 (ja) |
JP (1) | JPS6196985A (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH02490A (ja) * | 1987-04-27 | 1990-01-05 | Konica Corp | モノクローナル抗体の製造方法 |
JP2009256385A (ja) * | 2002-09-04 | 2009-11-05 | Chugai Pharmaceut Co Ltd | MRL/lprマウスを用いた抗体の作製 |
Families Citing this family (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1993012145A1 (en) * | 1991-12-19 | 1993-06-24 | Baylor College Of Medicine | Pva or peg conjugates of peptides for epitope-specific immunosuppression |
US5578496A (en) * | 1991-12-19 | 1996-11-26 | Board Of Regents, Baylor College Of Medicine | Detection of autoantibodies associated with the disease myasthenia gravis |
LT3150B (en) | 1992-10-16 | 1995-01-31 | Fermentas Biotech Inst | Hybridoma which produces murine monoclonal antibodies to insuline |
WO1996032087A2 (en) * | 1995-04-06 | 1996-10-17 | Dalhousie University | Transgenic fish in the treatment of diabetes |
CN1850863B (zh) * | 2006-05-23 | 2012-07-04 | 中国科学院生物物理研究所 | 针对自身抗原和/或种属间高度保守抗原的抗体及其制备方法 |
Family Cites Families (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE3411472A1 (de) * | 1983-03-29 | 1984-10-18 | The United States Of America, Represented By The Secretary, U.S. Department Of Commerce, Springfield, Va. | Verfahren zum bestimmen der anwesenheit von insulin, antiinsulinantikoerper, verfahren zur bestimmung des menschlichen insulinniveaus und verfahren zur bestimmung von humaninsulin |
JPS60188327A (ja) * | 1984-03-08 | 1985-09-25 | Sekisui Chem Co Ltd | ブタインスリンもしくはヒトインスリンに対する単クロ−ン性抗体およびその製造方法 |
-
1984
- 1984-10-19 JP JP59218678A patent/JPS6196985A/ja active Pending
-
1985
- 1985-09-26 EP EP85306855A patent/EP0179576A3/en not_active Withdrawn
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH02490A (ja) * | 1987-04-27 | 1990-01-05 | Konica Corp | モノクローナル抗体の製造方法 |
JP2009256385A (ja) * | 2002-09-04 | 2009-11-05 | Chugai Pharmaceut Co Ltd | MRL/lprマウスを用いた抗体の作製 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EP0179576A2 (en) | 1986-04-30 |
EP0179576A3 (en) | 1987-05-27 |
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