JPS60224627A - 動物遊離細胞のカプセル化方法 - Google Patents
動物遊離細胞のカプセル化方法Info
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- JPS60224627A JPS60224627A JP59080164A JP8016484A JPS60224627A JP S60224627 A JPS60224627 A JP S60224627A JP 59080164 A JP59080164 A JP 59080164A JP 8016484 A JP8016484 A JP 8016484A JP S60224627 A JPS60224627 A JP S60224627A
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- JP
- Japan
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- cells
- aqueous solution
- sodium alginate
- mol
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-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01J—CHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
- B01J13/00—Colloid chemistry, e.g. the production of colloidal materials or their solutions, not otherwise provided for; Making microcapsules or microballoons
- B01J13/02—Making microcapsules or microballoons
- B01J13/06—Making microcapsules or microballoons by phase separation
- B01J13/08—Simple coacervation, i.e. addition of highly hydrophilic material
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- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Dispersion Chemistry (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Manufacturing Of Micro-Capsules (AREA)
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、動物の遊離細胞のアルギン酸カルシウム（二
よるカプセル化（−関するものであり、より詳しくは、
動物細胞の培養０適した液状培地（＝、アルギン酸ソー
ダを溶解せしめ、これら細胞の活性維持のため仔クシな
どの血清及び／又はホルモンを添加してなる水溶液（一
対して、動物の遊離細胞を混合比１４０．０１〜１：１
で混合・懸濁し、その粘度を１〜１００ｐｓ （３７℃
）としたものをカルンクムイオン水溶液中（＝滴下、凝
固せしめることを特徴とする動物細胞のカプセル化方法
（＝関するものであり、生理活性物質の製造、人工臓器
などの分野で利用価値の高いものである。
よるカプセル化（−関するものであり、より詳しくは、
動物細胞の培養０適した液状培地（＝、アルギン酸ソー
ダを溶解せしめ、これら細胞の活性維持のため仔クシな
どの血清及び／又はホルモンを添加してなる水溶液（一
対して、動物の遊離細胞を混合比１４０．０１〜１：１
で混合・懸濁し、その粘度を１〜１００ｐｓ （３７℃
）としたものをカルンクムイオン水溶液中（＝滴下、凝
固せしめることを特徴とする動物細胞のカプセル化方法
（＝関するものであり、生理活性物質の製造、人工臓器
などの分野で利用価値の高いものである。
従来から各種の細胞や微生物を固定化するための方法の
１つとしてカプセル化が行なわれ、主として実験室的Ｃ
二利用されて来たが、その主な方法は細胞や微生物を懸
濁せしめた七ツマー溶液を低温重合（＝より、該細胞や
微生物をポリアクリルアミド系ゲル中（＝分散、固定化
せしめ、これを破砕（例えばＡｐｐｌ、Ｍｉｃｒｏｂｉ
ｏｌ、、 ２７ 、 ８７８ （１９７４））、または
網目からの押出しく例えばＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌ 。
１つとしてカプセル化が行なわれ、主として実験室的Ｃ
二利用されて来たが、その主な方法は細胞や微生物を懸
濁せしめた七ツマー溶液を低温重合（＝より、該細胞や
微生物をポリアクリルアミド系ゲル中（＝分散、固定化
せしめ、これを破砕（例えばＡｐｐｌ、Ｍｉｃｒｏｂｉ
ｏｌ、、 ２７ 、 ８７８ （１９７４））、または
網目からの押出しく例えばＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌ 。
Ｂｉｏｅｎｇ、、 １８ 、 ２１７ （１９７６））
によって粒状または棒状物とするものである。
によって粒状または棒状物とするものである。
しかしこれらの方法（二よって成形した粒状または棒状
物表面の細胞または微生物の多くは、成形の際に大なり
小なりの損傷を受け、特に細胞の場合は殆どのものが死
滅するし、微生物の場合は剥脱するものやカプセル化剤
を被らずむき出しになるものも生じる。また、破砕して
製造した粒状物においては、形状およびサイズが著しく
不揃いとなることが避けられず、この２つの理由から、
得られる粒状物または棒状物の表面（＝おける細胞や微
生物の生物学的活性は、部分的（＝低下して不均一性を
生じ、さら（二それら粒状物や棒状物の表面で死滅した
細胞や微生物による培地や粒状物などの汚染を防止する
ことも困難である。
物表面の細胞または微生物の多くは、成形の際に大なり
小なりの損傷を受け、特に細胞の場合は殆どのものが死
滅するし、微生物の場合は剥脱するものやカプセル化剤
を被らずむき出しになるものも生じる。また、破砕して
製造した粒状物においては、形状およびサイズが著しく
不揃いとなることが避けられず、この２つの理由から、
得られる粒状物または棒状物の表面（＝おける細胞や微
生物の生物学的活性は、部分的（＝低下して不均一性を
生じ、さら（二それら粒状物や棒状物の表面で死滅した
細胞や微生物による培地や粒状物などの汚染を防止する
ことも困難である。
これらの点を改良する目的で蒸留水（ニアルギン酸ソー
ダを溶かした水溶液（＝細胞や微生物を混合し、その懸
濁液を塩化カルシウム水溶液中（二部下して球形のカプ
セル化物を得るとか、さら（二この表面をポリアミドな
どでコーティングし、中のアルギン酸カルシウムから成
るゲル化物屓を薬液１：より再溶解し、この外側；二形
成した該ポリアミドなどから成るコーティング層内（＝
おいて封入した細胞や微生物を流動状態にする方法（例
えば８ｃ １−ｅｎｃｅ 、 ２１０ 、９０８ （１
９８０） ）などが提案されている。しかし蒸留水又は
生作食塩水イ：アルギン酸ソーダのみを溶解した水溶液
（−細胞や微生物を懸濁せしめ、塩化カルシウム水溶液
中（二部下してカプセル化した場合は、該細胞や微生物
の生存時間が著しく短くなるという欠点があった。
ダを溶かした水溶液（＝細胞や微生物を混合し、その懸
濁液を塩化カルシウム水溶液中（二部下して球形のカプ
セル化物を得るとか、さら（二この表面をポリアミドな
どでコーティングし、中のアルギン酸カルシウムから成
るゲル化物屓を薬液１：より再溶解し、この外側；二形
成した該ポリアミドなどから成るコーティング層内（＝
おいて封入した細胞や微生物を流動状態にする方法（例
えば８ｃ １−ｅｎｃｅ 、 ２１０ 、９０８ （１
９８０） ）などが提案されている。しかし蒸留水又は
生作食塩水イ：アルギン酸ソーダのみを溶解した水溶液
（−細胞や微生物を懸濁せしめ、塩化カルシウム水溶液
中（二部下してカプセル化した場合は、該細胞や微生物
の生存時間が著しく短くなるという欠点があった。
本発明の目的とするところは、均一な粒径と、均一、緻
密で滑らかな半硬質表面を有する球形であり、被カプセ
ル化動物細胞がカプセル化の際に損傷されたり、未コー
ト状のままでカプセル表面セ残留することが無く、該カ
プセルを液状培地中Ｃ二て攪拌し、又はカラム（二充填
して代謝を行なわせた場合１：も、カプセルの形状が安
定しており。
密で滑らかな半硬質表面を有する球形であり、被カプセ
ル化動物細胞がカプセル化の際に損傷されたり、未コー
ト状のままでカプセル表面セ残留することが無く、該カ
プセルを液状培地中Ｃ二て攪拌し、又はカラム（二充填
して代謝を行なわせた場合１：も、カプセルの形状が安
定しており。
細胞の生存率の維持と高い代謝活性の保持が容易な動物
細胞のカプセル化方法を提供する（＝ある。
細胞のカプセル化方法を提供する（＝ある。
本発明者らはこれらの点を改良すべく鋭意研究を行なっ
た結果、動物細胞の培養（二連した液状培地をペースに
し、アルギン酸ソーダを溶かした後滅菌し、これの１／
１００〜１／２容の別（＝滅菌したウマ血清、ウシ血清
、仔つン血清、ウシ胎児血清、１０ 〜１０ ｍｏｌ／
Ｊのイン／（リン、及び１０〜１０ｍｏ ｌ／ｌのデキ
サメサゾンの一種又は二種以上を添加し、この水溶液の
１：０．０１〜１：１容の動物細胞を混合し、この懸濁
液の粘度を１〜１００ｐｓ （３７℃）とした上でカル
ンクムイオン水溶液中り＝滴下することにより、緻密で
半硬質の表面と均一な粒径な有する球型のカプセル化物
とすることができ、且つカプセル化した細胞の生存率及
び代謝能の維持にも最適であることを発見して、この発
明な完成する（＝至ったものである。
た結果、動物細胞の培養（二連した液状培地をペースに
し、アルギン酸ソーダを溶かした後滅菌し、これの１／
１００〜１／２容の別（＝滅菌したウマ血清、ウシ血清
、仔つン血清、ウシ胎児血清、１０ 〜１０ ｍｏｌ／
Ｊのイン／（リン、及び１０〜１０ｍｏ ｌ／ｌのデキ
サメサゾンの一種又は二種以上を添加し、この水溶液の
１：０．０１〜１：１容の動物細胞を混合し、この懸濁
液の粘度を１〜１００ｐｓ （３７℃）とした上でカル
ンクムイオン水溶液中り＝滴下することにより、緻密で
半硬質の表面と均一な粒径な有する球型のカプセル化物
とすることができ、且つカプセル化した細胞の生存率及
び代謝能の維持にも最適であることを発見して、この発
明な完成する（＝至ったものである。
即ち本発明は、細胞又は微生物をアルギン酸ソーダ水溶
液（＝懸濁せしめ、これをカルシウムイオン水溶液中（
二部下し凝固せしめること（＝よって、細胞又は微生物
をカプセル化する方法（＝おいて。
液（＝懸濁せしめ、これをカルシウムイオン水溶液中（
二部下し凝固せしめること（＝よって、細胞又は微生物
をカプセル化する方法（＝おいて。
細胞は動物の遊離細胞であり、アルギン酸水溶液はＭＥ
Ｍ、郁、ＨａｍのＦ−１２もしくはＦ −１９９。
Ｍ、郁、ＨａｍのＦ−１２もしくはＦ −１９９。
Ｌｅｉｂｏｖｉｚ−１５、又はＷａｙｍｏｕｔｈ’ｓ
ＭＢ ７５１／２の群から選んだ一種の液状培地にアル
ギン酸ソーダを溶解せしめた溶液１００部（；、１〜５
０部のウマ頭清。
ＭＢ ７５１／２の群から選んだ一種の液状培地にアル
ギン酸ソーダを溶解せしめた溶液１００部（；、１〜５
０部のウマ頭清。
クシ血清、仔クシ血清、ウシ胎児血清、ｌＯ〜１０ｍｏ
ｌ／７１のインスリン、及び１０〜１０ ｍｏｌ／ｌの
デキサメサゾンの一種又は二種以上を添加して成り、こ
れ（二対する動物の遊離細胞の混合比がｌ：０．０１〜
ｌ：１であり、アルギン酸ソーダ水溶液（二動物の細胞
を混合して成る懸濁液の粘度を１〜１ｏｏｐｓ（３７℃
）としたことを特徴とする。動物遊離細胞のカプセル化
方法である。
ｌ／７１のインスリン、及び１０〜１０ ｍｏｌ／ｌの
デキサメサゾンの一種又は二種以上を添加して成り、こ
れ（二対する動物の遊離細胞の混合比がｌ：０．０１〜
ｌ：１であり、アルギン酸ソーダ水溶液（二動物の細胞
を混合して成る懸濁液の粘度を１〜１ｏｏｐｓ（３７℃
）としたことを特徴とする。動物遊離細胞のカプセル化
方法である。
本発明で言うところの動物遊離細胞とは、動物の肝臓を
酵素で処理して得られる遊離肝細胞、動物の膵臓を酵素
で処理して得られるランゲルハンス島細胞（Ｌａｎｇｅ
ｒｈａｎｓ−）等である。
酵素で処理して得られる遊離肝細胞、動物の膵臓を酵素
で処理して得られるランゲルハンス島細胞（Ｌａｎｇｅ
ｒｈａｎｓ−）等である。
本発明（二おいて用いられる遊離肝細胞は、公知の方法
（例えばＭｅｔｈｏｄｓ Ｃｅ１ｌ Ｂｉｏｌ 、、１
３ 、 ２９（１９７６））−二従って、蛋白質分解酵
素を動物肝臓にインンテエー（ｉｎ ５ｉｔｕ ）に潅
流して取出した後、Ｈａｎｋｓ液を用いて洗浄したもの
を使用することができ、このよう；ニジて得た遊離肝細
胞は直ちＣ：カプセル化してもよいし、特許請求範囲の
項（二記した各種の液状培地を用いて数時間〜数日間初
代培養した上でカプセル化してもよく、何れの場合も同
様に活性な細胞のカプセル化物を得ることができる。
（例えばＭｅｔｈｏｄｓ Ｃｅ１ｌ Ｂｉｏｌ 、、１
３ 、 ２９（１９７６））−二従って、蛋白質分解酵
素を動物肝臓にインンテエー（ｉｎ ５ｉｔｕ ）に潅
流して取出した後、Ｈａｎｋｓ液を用いて洗浄したもの
を使用することができ、このよう；ニジて得た遊離肝細
胞は直ちＣ：カプセル化してもよいし、特許請求範囲の
項（二記した各種の液状培地を用いて数時間〜数日間初
代培養した上でカプセル化してもよく、何れの場合も同
様に活性な細胞のカプセル化物を得ることができる。
本発明Ｃ：おいて用いられる劇、邸、Ｈａｍ のＦ −
１２もしくはＦ −１９９、Ｌｅｉｂｏｖｉｔｚ −１
５、Ｗａｙｍｏｕｔｈ’ｓ ＭＢ ７５１／２ の液状
培地は、組織培養に用いる液状培地のうちで肝細胞の生
存率及び代謝活性の維持、及び本発明によるカプセル化
の工程（二最適のものであるが、これらは何れも単独で
用いた場合、カプセル化した肝細胞の生存率及び代謝活
性の維持能はなお不充分であるため、種々検討を行なっ
た結果、この性能を向土させるためクマ、ウシ、仔ウシ
又はウシ胎児の血清の新鮮なものもしくは凍結保存した
ものの他、インスリンもしくはデキサメサゾンのホルモ
ンから選んだ一種又は二種以上を併用することによって
、良好な結果が得られることを見出したものである。こ
れら血清の添加量は、何れも１部以下では効果が極めて
小さく、５０部以上では効果が飽和するため、この添加
量は１〜５０部とすることが必要であり、ホルモンの添
加量としては同様の理由から、インスリンは１０〜ＩＱ
ｍｏｌ／ｌ、デキサメサゾンはｉｏ”〜１０”’ ｍ
ｏｌ、４’とする必要がある。
１２もしくはＦ −１９９、Ｌｅｉｂｏｖｉｔｚ −１
５、Ｗａｙｍｏｕｔｈ’ｓ ＭＢ ７５１／２ の液状
培地は、組織培養に用いる液状培地のうちで肝細胞の生
存率及び代謝活性の維持、及び本発明によるカプセル化
の工程（二最適のものであるが、これらは何れも単独で
用いた場合、カプセル化した肝細胞の生存率及び代謝活
性の維持能はなお不充分であるため、種々検討を行なっ
た結果、この性能を向土させるためクマ、ウシ、仔ウシ
又はウシ胎児の血清の新鮮なものもしくは凍結保存した
ものの他、インスリンもしくはデキサメサゾンのホルモ
ンから選んだ一種又は二種以上を併用することによって
、良好な結果が得られることを見出したものである。こ
れら血清の添加量は、何れも１部以下では効果が極めて
小さく、５０部以上では効果が飽和するため、この添加
量は１〜５０部とすることが必要であり、ホルモンの添
加量としては同様の理由から、インスリンは１０〜ＩＱ
ｍｏｌ／ｌ、デキサメサゾンはｉｏ”〜１０”’ ｍ
ｏｌ、４’とする必要がある。
これらの液状培地を含有するアルギン酸ソーダ水溶液に
対する動物遊離肝細胞の混合比は１：０．０１〜１：１
として、両者を混合して成る懸濁液の粘度を特（＝１〜
１００ｐｓ （３７℃）とする。この組成物の粘度を１
００ｐａより高くすると、ノズルを通して凝固浴中に滴
下せしめること（二より生成するカプセル化物の粒径な
２闘以下とすることが極めて困難となり、また、粘度を
ｌｐｓ （３７℃）以下にすると、凝固浴中に滴下した
瞬間にゲル化物は無定形となり、球型のカプセルを得る
ことが困難となるほか、これを液状培地中で攪拌し、培
養を続けると溶失し易くなるため、この懸濁液の粘度は
１〜１００ｐｓ （３７℃）とすることが必要である。
対する動物遊離肝細胞の混合比は１：０．０１〜１：１
として、両者を混合して成る懸濁液の粘度を特（＝１〜
１００ｐｓ （３７℃）とする。この組成物の粘度を１
００ｐａより高くすると、ノズルを通して凝固浴中に滴
下せしめること（二より生成するカプセル化物の粒径な
２闘以下とすることが極めて困難となり、また、粘度を
ｌｐｓ （３７℃）以下にすると、凝固浴中に滴下した
瞬間にゲル化物は無定形となり、球型のカプセルを得る
ことが困難となるほか、これを液状培地中で攪拌し、培
養を続けると溶失し易くなるため、この懸濁液の粘度は
１〜１００ｐｓ （３７℃）とすることが必要である。
以上述べたよう（＝、本発明は動物の遊離細胞を、均−
且つ緻密な表面を有し、均一な粒径を有する真球に近い
形状のカプセルに封入する方法を提供するもので、該細
胞を損傷することなくカプセル化することを可能にした
ものであり、更Ｃ二生成したカプセルはカラムへの充填
（二基える硬さを有すると同時に、内部の動物細胞の長
時間の生存率及び高い代謝活性の維持を実現したもので
、産業及び医療面への応用性が極めて高いものである。
且つ緻密な表面を有し、均一な粒径を有する真球に近い
形状のカプセルに封入する方法を提供するもので、該細
胞を損傷することなくカプセル化することを可能にした
ものであり、更Ｃ二生成したカプセルはカラムへの充填
（二基える硬さを有すると同時に、内部の動物細胞の長
時間の生存率及び高い代謝活性の維持を実現したもので
、産業及び医療面への応用性が極めて高いものである。
実施例１゜
ＭＦＭにアルギン酸ソーダ粉末を添加して磁気攪拌ｓＩ
（二より攪拌して均一（−溶解してからオートクｖ−プ
滅ｍし、ペニシリン１００１Ｊ／ｍｌ、ストレプトマイ
シン１００μＶづ を加えた粘稠溶液１００部（二対し
、孔径０．２２μｍのフィルターでｒ過した仔りシ血清
□□□部を混合し、ｐＨを７゜２（二調整したアルギン
酸ソーダ水溶液１００部に対し、常法（二従って調製し
たラット遊離肝細胞をＨａｎｋｓ液を用いて低速遠心法
で精製したものを４部の割合で混合した。懸濁液の、Ｂ
型粘度針により３７℃で測定した粘度は３．３ｐｓであ
った。別（二１００ｆ７ｔ７！の蒸留水（二１．５ｇの
塩化カルシウムを溶解し、１０００７ｍのペニシリンと
１００μ！Ｉ／ｆｎｌのストレプトマイシンを添加した
後、０．２２μｍのフィルターでｒ過した凝固液（二対
して、１８Ｇの注射針から加圧下に滴下して造粒し、半
硬質で緻密な表面を有する粒径１．５ ｍｌの球型カプ
セル化物を得た。
（二より攪拌して均一（−溶解してからオートクｖ−プ
滅ｍし、ペニシリン１００１Ｊ／ｍｌ、ストレプトマイ
シン１００μＶづ を加えた粘稠溶液１００部（二対し
、孔径０．２２μｍのフィルターでｒ過した仔りシ血清
□□□部を混合し、ｐＨを７゜２（二調整したアルギン
酸ソーダ水溶液１００部に対し、常法（二従って調製し
たラット遊離肝細胞をＨａｎｋｓ液を用いて低速遠心法
で精製したものを４部の割合で混合した。懸濁液の、Ｂ
型粘度針により３７℃で測定した粘度は３．３ｐｓであ
った。別（二１００ｆ７ｔ７！の蒸留水（二１．５ｇの
塩化カルシウムを溶解し、１０００７ｍのペニシリンと
１００μ！Ｉ／ｆｎｌのストレプトマイシンを添加した
後、０．２２μｍのフィルターでｒ過した凝固液（二対
して、１８Ｇの注射針から加圧下に滴下して造粒し、半
硬質で緻密な表面を有する粒径１．５ ｍｌの球型カプ
セル化物を得た。
１００ＱＩのＭＥ２１４に１０ｆ７Ｉｌの仔ウシ血清及
び１００Ｕ／ｍＪ のペニシリンと１００μＶ−のスト
レプトマイシンを添加後、孔径０．２２μｍのフィルタ
ーでｒ過し、Ｐｏ！を１００ＱＩｇとした液状培地中３
７℃で、このカプセル化物２０−を磁気攪拌機により攪
拌しながら加え、更Ｃ′−塩化アンモニウムの濃厚水溶
液を加え、１０４ｍｏｌ／ｌの塩化アンモニウム水溶液
としてアンモニア代謝能を調べると共に、カプセルをク
エン酸ソーダ水溶液で溶解して細胞の生存率変化を追跡
し、結果をまとめて第１表に示した。
び１００Ｕ／ｍＪ のペニシリンと１００μＶ−のスト
レプトマイシンを添加後、孔径０．２２μｍのフィルタ
ーでｒ過し、Ｐｏ！を１００ＱＩｇとした液状培地中３
７℃で、このカプセル化物２０−を磁気攪拌機により攪
拌しながら加え、更Ｃ′−塩化アンモニウムの濃厚水溶
液を加え、１０４ｍｏｌ／ｌの塩化アンモニウム水溶液
としてアンモニア代謝能を調べると共に、カプセルをク
エン酸ソーダ水溶液で溶解して細胞の生存率変化を追跡
し、結果をまとめて第１表に示した。
実施例２．五 比較例１．２゜
実施例１と全く同様の方法で実施した実施例及び比較例
（二ついて、その詳細と試験結果を第工表（：まとめた
。
（二ついて、その詳細と試験結果を第工表（：まとめた
。
本発明を実施した実施例１〜３）二おいては、半硬質の
緻密な表面を有する球型カプセル化物が得られ、実施例
１の培養条件で試験した結果、良好な細胞生存率及び代
謝能の維持が可能であり、浮遊培養のほか充填塔の形で
も使用可能であったのに対して、比較例においては何れ
も致命的な欠陥を有することが明らかになった。これら
の結果から判断して、本発明は極めて有意義な発明であ
るということができる。
緻密な表面を有する球型カプセル化物が得られ、実施例
１の培養条件で試験した結果、良好な細胞生存率及び代
謝能の維持が可能であり、浮遊培養のほか充填塔の形で
も使用可能であったのに対して、比較例においては何れ
も致命的な欠陥を有することが明らかになった。これら
の結果から判断して、本発明は極めて有意義な発明であ
るということができる。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 細胞又は微生物をアルギン酸ソーダ水溶液（＝懸濁せし
め、これをカルシクムイオン水溶液中（２滴下し凝固せ
しめること（二よって、細胞又は微生物をカプセル化す
る方法電；おいて、細胞は動物の遊離細胞であり、アル
ギン酸ソーダ水溶液は最小栄養培地（Ｍｌｎｉｍｕｍ
Ｅｓ５ｅｎｔｉａｌ Ｍｅｄｉｕｍ 、以下蔵と略記）
、Ｗ目Ｈａｍｓ Ｅ （以下舅と略記）、ＨａｍのＦ−
１２もしくはＦ −１９９、Ｌｅｉｂｏｖｉｚ −１５
、又はＷａｙｍｏｕｔｈ’ｓ ＭＢ ７５１／２の群か
ら選んだ一種の液状培地にアルギン酸ソーダを溶解せし
めた溶液１００部（容量部、以下同じ）（咥 １〜５０
部のクマ血清、ウシ血清、仔ウシ血清、クシ胎児血清、
１０−７〜１０−’。ｍｏｌ／Ｊのインスリン、及び１
０″〜１０−’ ｍｏｌ／ｌのデキサメサゾンの一種又
は二種以上を添加してなり、これＣ二対する動物の遊離
細胞の混合比（容量比、以下同じ）が１ ： ０．０１
〜１：１であり。 アルギン酸ソーダ水溶液に動物の細胞を混合してなる懸
濁液の粘度を１〜１ｏｏｐｓ （３７℃）としたことを
特徴とする、動物遊離細胞のカプセル化方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP59080164A JPS60224627A (ja) | 1984-04-23 | 1984-04-23 | 動物遊離細胞のカプセル化方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP59080164A JPS60224627A (ja) | 1984-04-23 | 1984-04-23 | 動物遊離細胞のカプセル化方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS60224627A true JPS60224627A (ja) | 1985-11-09 |
| JPH0533981B2 JPH0533981B2 (ja) | 1993-05-20 |
Family
ID=13710674
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP59080164A Granted JPS60224627A (ja) | 1984-04-23 | 1984-04-23 | 動物遊離細胞のカプセル化方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS60224627A (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2002520151A (ja) * | 1998-07-15 | 2002-07-09 | マックス−プランク−ゲゼルシャフト・ツア・フェルデルング・デア・ヴィッセンシャフテン・エー・ファオ | 生物学的テンプレート上の高分子電解質 |
-
1984
- 1984-04-23 JP JP59080164A patent/JPS60224627A/ja active Granted
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2002520151A (ja) * | 1998-07-15 | 2002-07-09 | マックス−プランク−ゲゼルシャフト・ツア・フェルデルング・デア・ヴィッセンシャフテン・エー・ファオ | 生物学的テンプレート上の高分子電解質 |
| JP4650976B2 (ja) * | 1998-07-15 | 2011-03-16 | マックス−プランク−ゲゼルシャフト・ツア・フェルデルング・デア・ヴィッセンシャフテン・エー・ファオ | 生物学的テンプレート上の高分子電解質 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0533981B2 (ja) | 1993-05-20 |
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