JPS58216700A - レシチン:コレステロールアシルトランスフエラーゼを用いる全コレステロール分析 - Google Patents
レシチン:コレステロールアシルトランスフエラーゼを用いる全コレステロール分析Info
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-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/10—Transferases (2.)
- C12N9/1025—Acyltransferases (2.3)
- C12N9/1029—Acyltransferases (2.3) transferring groups other than amino-acyl groups (2.3.1)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/60—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving cholesterol
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
技術分野
本発明はコレステロールエステル及びit Mltコレ
ステロールを含む液体中の全コレステし?−ルを分析す
るのに有用な方法及び組成物に関する。 従来技術 (2) 」レスラーロールは、血清又は+In 漿のような生体
水性液体中に、一部遊離の形で一部コレスチロールエス
テルの形で存在している。全コレステロ−)Iy (T
i1l ’13 、M Mlt 及ヒエステル化コレス
テロールからの二lレステし1−ル寄与和)の公知の定
量分析は、腐蝕性化学薬剤、例えばK OIIを使用し
てコレステI:I−ルエステルを遊離コレステロールに
加水分解し、次いで溶液中で全iii離コレステロール
を分析する方法を含む。 最近、コレステし1−ル及びコレステロールエステルを
検知可能な生成物に転化するのに酵素が使用されている
。これらの方法では、通常、コレステl」−ルエステル
ヒドラーゼ酵素とも呼ばれる、コレステロールエステラ
ーゼ酵素を使用して最初にコレステロールエステルを遊
離のコレステロールに転化−uしめている。この方法に
おけるコレステロールエステラーゼ酵素の使用は197
5年3月 40のグツドヒユー等の米国特許第3136
9349号及び1976年9月28日のグツドヒユー等
の米国特許第3983005号に記載されている。これ
らの酵素はコレ(3) ステロールエステルに対して水性媒質に於りるコレステ
ロールエステルのコレステロールハ・の加水分解を促進
する特別の活性を示す。「エステラーゼ」及び[エステ
ルヒドラーゼ」なる用語は、酵素の存在下に水分子がコ
レステlコールエステル分子のエステル部分と反応する
加水分解反応を触媒する酵素を意味する。 」レスチロールエステルのエステラーゼ1亢進加水分解
の間又は後、遊離コレステロールはニルステロン及び過
酸化水素に転化し、そして過酸化水素をパーオキシダー
ゼの存在下に色素前駆体とカップリングさせるごとによ
り検知する。 λ吸Δ亘肛 本発明の第一の目的は、コレステロールエステルを遊A
llコレステロールに転化せしめる別の方法を利用して
、コレステロールエステル及び’rW %IIlコレス
テロール含有水性液体(又は流体)中の全コレステロー
ルを分析する別の方法を提(J(することにある。 本発明の第二の目的は、前記方法を実施するた(4) めの組成物を提供Jることにある。 全一1!!J−(7)朋膚 本発明に従えば、前記第一の目的は、コレステ1、J−
ルエステル及び遊離コレステし】−ル含有水性液体中の
全コレステロールを分析するに当り、(a)前記液体の
試料中の実質」二すべでのコレステ1コールエステル類
をコレステロールに転化せしめるのに十分な量のりゾレ
シヂン及びレシチン:コレステロールアシルトランスフ
ェラーセ(LCAT)活性を示す酵素を含む組成物と前
記液体試料とを接触せしめ、 (b)コレステロールエステル類への転化以外の手段に
より前記試料からコレステロールを除去し、そして (C)前記除去コレステロールの量を分析する工程を含
んで成ることを特徴とするコレステロールエステル及び
′tf離コレステロール含有水性液体中の全コレステロ
ールの分析方法を提供することにより達成される。 本発明に従えば、前記第二の目的は、 (5) (a)コレステI」−ルエステル及び遊離コレステロー
ル含自水性液体の試料中の実質」二すべでのコレステロ
ールエステル類をコレステロールに転化−已しめるのに
十分な量のレシチン:コレステl」−ルアジルトランス
フェラーゼ(L(JT)活性を示す酵素及びリヅレシヂ
ンを含む試薬組成物並びに(b)コレステロールニスう
一ル類への転化以外の手段により前記試料から」レステ
1」−ルを除去する手段 を含んで成るコレステロールエステル及び遊Mlt m
lレスチロール含有水性液体中の全コレステ1」−ル分
析用組成物を提供することによって達成される。 光調の具体的温調− 前記工程(b)に於りるコレステ1」−ルの除去は、例
えばコレステロールとコレステl」−ルオキシダーゼと
の反応により過酸化水素を生成−1しめるなどの各種の
方法によって実施される。全コレステロールの測定は、
例えば前記過酸化水素をパーオキシダーゼ−色素カップ
ル試薬との相互反応により着色色素に転化−uしめるこ
とによって実施(6) される。 本発明の好ましい態様においては、リゾレシチンはレシ
チン及びレシチンのりゾレンチンへの転化を触媒するこ
とのできる酵素により補助又は置換される。レシチンは
、追加試薬成分又は人間の血lI′#のようなある種の
液体サンプル中にお&Jる自然的存在のいずれによって
も供給される。 前述の方法において、十分量のLCAT及びリゾレシチ
ンと試料との接触は試$4からのコレステロールの除去
を伴っておこなわれる。後者の工程が不存在の、場合、
又はLCI’lTもしくはりゾレシチンの存在量が不充
分の場合には、コレステロールエステルの遊81[コレ
ステl」−ルへの転化があまり進行しない。従って、全
コレステロール定量分析工程において、得られる結果は
全コレステロールの真のレベルより小さくなる。 全コレステロールの上に規定したLCATによる定量方
法は、溶液中においC1又は実質」二乾式(即し非液体
含有)型の臨床分析素子内において、実施する。 (7) 本発明に係る全」レステU−ルの定量方法は、いくつか
の好ましい特長を呈する。コレステ1」−ルエステラー
肴又は」レステI−ノールエステルヒドラーゼを包含す
る公知の酵素的アブl、フーチに対する経済的に魅力あ
る代替法である。この方法は、また、コレステロールコ
ースチルのコレステLJ−)レー・の実質」二完全な転
化を供し、それによって全コレステロールの正確且つ高
制度の分析が可能となり、分析結果か迅速に得られ、そ
して溶液分析及び1旨触乾燥状態の臨床分析素子への適
合性が良好になる。 本発明の実施に際しては、コレステロールエステル及び
リゾレシチン源の存在下に、レシチン:コレステロール
アシルトランスフェラーゼ活性を呈する酵素を使用する
。LCAT酵素はよく知うしたコレステロールエステラ
ーゼ又はコレステロールエステルヒドラーセ^ゲ素とは
いくつかの点で異なる。コレステロールエステラーゼ又
はコレステロールエステルヒドラーゼは、水が前記反応
の間に放出されるアシル基のアクセプター分子と(8) して作用する水性媒質中において、コレステロールコー
スチルを加水分解するのに機械学的に作用する。−・方
、1、CATはニルステロール分1’1%! シない。 LCATは、本発明において使用するように、アシル基
のアクセプターとしーζ水よりむしろリゾレシチンの存
在を必要とする。ICATを含有するニルステロールエ
ステル水溶液中にリヅレシ(−ンが存在しない場合には
、水の存在にも拘わらず、コレステ1」−ルへの転化は
起らない。 LC八へl’iゲ素源は人の血清又は血漿などである。 血 1/NLCATは、グし!ムセノトJ.A.の,
j,Lipid Res+ 9巻。 155−167頁(1968) ;ガストウE.等の
Scand.J.CIin。 lab.Invest.+38巻, Suppl 、
150+ 15頁(1978) 、K。 キタハクケ等の旧ocl+.eL Biophy,Ac
ta,573t445−154頁( 1979)及びフ
ィールディングC.J.+ Scand。 J.CIin. Lab.Invest.+33巻,
Suppl.137.15−17頁( 1974)に開
示のように、単1i111され、精製され、性化される
。 好ましいLCATは微生物の培養」二層液から得られる
ものであり、特に、ビプリオナセエf1、並びに 2
(9) マソクインティレ,S.,1〜ラス1〜,T.J.、ハ
ックレイ、、1。 T,のJ.Bacterjo屓, 139巻, 132
− 136頁(1979) に開示され一ζいるよ・)
なスタフィロニ1ノカス・アラレ久ん又はに、バーIー
レソI− 、 M.J.キード及びE.^.マーザー,
Pl+oLo轄cm−isLry+ 13Q+1
107−1113頁(1.974)に開示されているよ
うなフィコマイヒスLス■次ノJニゴ貞不ノーからの微
生物が好ましい微生物源である。最も々rましいL C
A TはA.T.C.C. (米 ゛国メリー
ランド用ロックウィル)から供給される二ど一□壬(、
−史モナス・ハイーY男Z/−艷≧□へT(、C907
1の培養」二IPi液から痔られるものである。 微生物からの血清LCATに関する、及びGC/ITに
関する上記文献は、」レステし1−ルのコレステロール
エステルへの転化についてのjj適用可能であるという
これらの酵素の機構を引用している。これ ・らの引
用文献には、これらの酵素が逆様式、即しコレステl:
l − /レニIーステルのJレスチロールへの転化に
使用して全コレステロールの定量分析を容易にすること
ができることは報告されていないし、示唆もされていな
い。 (10) 血清中のLCATの屋は英国特許第1501561号に
従って測定される。この反応組成物は、コレステロール
及び血清試料からのLCATと共に、界面活性剤及びレ
シチンを含む。しかしなから、試料中のコレステし1−
ル1ステルは、存在していたとしても、J分別の一ルス
テ
ステロールを含む液体中の全コレステし?−ルを分析す
るのに有用な方法及び組成物に関する。 従来技術 (2) 」レスラーロールは、血清又は+In 漿のような生体
水性液体中に、一部遊離の形で一部コレスチロールエス
テルの形で存在している。全コレステロ−)Iy (T
i1l ’13 、M Mlt 及ヒエステル化コレス
テロールからの二lレステし1−ル寄与和)の公知の定
量分析は、腐蝕性化学薬剤、例えばK OIIを使用し
てコレステI:I−ルエステルを遊離コレステロールに
加水分解し、次いで溶液中で全iii離コレステロール
を分析する方法を含む。 最近、コレステし1−ル及びコレステロールエステルを
検知可能な生成物に転化するのに酵素が使用されている
。これらの方法では、通常、コレステl」−ルエステル
ヒドラーゼ酵素とも呼ばれる、コレステロールエステラ
ーゼ酵素を使用して最初にコレステロールエステルを遊
離のコレステロールに転化−uしめている。この方法に
おけるコレステロールエステラーゼ酵素の使用は197
5年3月 40のグツドヒユー等の米国特許第3136
9349号及び1976年9月28日のグツドヒユー等
の米国特許第3983005号に記載されている。これ
らの酵素はコレ(3) ステロールエステルに対して水性媒質に於りるコレステ
ロールエステルのコレステロールハ・の加水分解を促進
する特別の活性を示す。「エステラーゼ」及び[エステ
ルヒドラーゼ」なる用語は、酵素の存在下に水分子がコ
レステlコールエステル分子のエステル部分と反応する
加水分解反応を触媒する酵素を意味する。 」レスチロールエステルのエステラーゼ1亢進加水分解
の間又は後、遊離コレステロールはニルステロン及び過
酸化水素に転化し、そして過酸化水素をパーオキシダー
ゼの存在下に色素前駆体とカップリングさせるごとによ
り検知する。 λ吸Δ亘肛 本発明の第一の目的は、コレステロールエステルを遊A
llコレステロールに転化せしめる別の方法を利用して
、コレステロールエステル及び’rW %IIlコレス
テロール含有水性液体(又は流体)中の全コレステロー
ルを分析する別の方法を提(J(することにある。 本発明の第二の目的は、前記方法を実施するた(4) めの組成物を提供Jることにある。 全一1!!J−(7)朋膚 本発明に従えば、前記第一の目的は、コレステ1、J−
ルエステル及び遊離コレステし】−ル含有水性液体中の
全コレステロールを分析するに当り、(a)前記液体の
試料中の実質」二すべでのコレステ1コールエステル類
をコレステロールに転化せしめるのに十分な量のりゾレ
シヂン及びレシチン:コレステロールアシルトランスフ
ェラーセ(LCAT)活性を示す酵素を含む組成物と前
記液体試料とを接触せしめ、 (b)コレステロールエステル類への転化以外の手段に
より前記試料からコレステロールを除去し、そして (C)前記除去コレステロールの量を分析する工程を含
んで成ることを特徴とするコレステロールエステル及び
′tf離コレステロール含有水性液体中の全コレステロ
ールの分析方法を提供することにより達成される。 本発明に従えば、前記第二の目的は、 (5) (a)コレステI」−ルエステル及び遊離コレステロー
ル含自水性液体の試料中の実質」二すべでのコレステロ
ールエステル類をコレステロールに転化−已しめるのに
十分な量のレシチン:コレステl」−ルアジルトランス
フェラーゼ(L(JT)活性を示す酵素及びリヅレシヂ
ンを含む試薬組成物並びに(b)コレステロールニスう
一ル類への転化以外の手段により前記試料から」レステ
1」−ルを除去する手段 を含んで成るコレステロールエステル及び遊Mlt m
lレスチロール含有水性液体中の全コレステ1」−ル分
析用組成物を提供することによって達成される。 光調の具体的温調− 前記工程(b)に於りるコレステ1」−ルの除去は、例
えばコレステロールとコレステl」−ルオキシダーゼと
の反応により過酸化水素を生成−1しめるなどの各種の
方法によって実施される。全コレステロールの測定は、
例えば前記過酸化水素をパーオキシダーゼ−色素カップ
ル試薬との相互反応により着色色素に転化−uしめるこ
とによって実施(6) される。 本発明の好ましい態様においては、リゾレシチンはレシ
チン及びレシチンのりゾレンチンへの転化を触媒するこ
とのできる酵素により補助又は置換される。レシチンは
、追加試薬成分又は人間の血lI′#のようなある種の
液体サンプル中にお&Jる自然的存在のいずれによって
も供給される。 前述の方法において、十分量のLCAT及びリゾレシチ
ンと試料との接触は試$4からのコレステロールの除去
を伴っておこなわれる。後者の工程が不存在の、場合、
又はLCI’lTもしくはりゾレシチンの存在量が不充
分の場合には、コレステロールエステルの遊81[コレ
ステl」−ルへの転化があまり進行しない。従って、全
コレステロール定量分析工程において、得られる結果は
全コレステロールの真のレベルより小さくなる。 全コレステロールの上に規定したLCATによる定量方
法は、溶液中においC1又は実質」二乾式(即し非液体
含有)型の臨床分析素子内において、実施する。 (7) 本発明に係る全」レステU−ルの定量方法は、いくつか
の好ましい特長を呈する。コレステ1」−ルエステラー
肴又は」レステI−ノールエステルヒドラーゼを包含す
る公知の酵素的アブl、フーチに対する経済的に魅力あ
る代替法である。この方法は、また、コレステロールコ
ースチルのコレステLJ−)レー・の実質」二完全な転
化を供し、それによって全コレステロールの正確且つ高
制度の分析が可能となり、分析結果か迅速に得られ、そ
して溶液分析及び1旨触乾燥状態の臨床分析素子への適
合性が良好になる。 本発明の実施に際しては、コレステロールエステル及び
リゾレシチン源の存在下に、レシチン:コレステロール
アシルトランスフェラーゼ活性を呈する酵素を使用する
。LCAT酵素はよく知うしたコレステロールエステラ
ーゼ又はコレステロールエステルヒドラーセ^ゲ素とは
いくつかの点で異なる。コレステロールエステラーゼ又
はコレステロールエステルヒドラーゼは、水が前記反応
の間に放出されるアシル基のアクセプター分子と(8) して作用する水性媒質中において、コレステロールコー
スチルを加水分解するのに機械学的に作用する。−・方
、1、CATはニルステロール分1’1%! シない。 LCATは、本発明において使用するように、アシル基
のアクセプターとしーζ水よりむしろリゾレシチンの存
在を必要とする。ICATを含有するニルステロールエ
ステル水溶液中にリヅレシ(−ンが存在しない場合には
、水の存在にも拘わらず、コレステ1」−ルへの転化は
起らない。 LC八へl’iゲ素源は人の血清又は血漿などである。 血 1/NLCATは、グし!ムセノトJ.A.の,
j,Lipid Res+ 9巻。 155−167頁(1968) ;ガストウE.等の
Scand.J.CIin。 lab.Invest.+38巻, Suppl 、
150+ 15頁(1978) 、K。 キタハクケ等の旧ocl+.eL Biophy,Ac
ta,573t445−154頁( 1979)及びフ
ィールディングC.J.+ Scand。 J.CIin. Lab.Invest.+33巻,
Suppl.137.15−17頁( 1974)に開
示のように、単1i111され、精製され、性化される
。 好ましいLCATは微生物の培養」二層液から得られる
ものであり、特に、ビプリオナセエf1、並びに 2
(9) マソクインティレ,S.,1〜ラス1〜,T.J.、ハ
ックレイ、、1。 T,のJ.Bacterjo屓, 139巻, 132
− 136頁(1979) に開示され一ζいるよ・)
なスタフィロニ1ノカス・アラレ久ん又はに、バーIー
レソI− 、 M.J.キード及びE.^.マーザー,
Pl+oLo轄cm−isLry+ 13Q+1
107−1113頁(1.974)に開示されているよ
うなフィコマイヒスLス■次ノJニゴ貞不ノーからの微
生物が好ましい微生物源である。最も々rましいL C
A TはA.T.C.C. (米 ゛国メリー
ランド用ロックウィル)から供給される二ど一□壬(、
−史モナス・ハイーY男Z/−艷≧□へT(、C907
1の培養」二IPi液から痔られるものである。 微生物からの血清LCATに関する、及びGC/ITに
関する上記文献は、」レステし1−ルのコレステロール
エステルへの転化についてのjj適用可能であるという
これらの酵素の機構を引用している。これ ・らの引
用文献には、これらの酵素が逆様式、即しコレステl:
l − /レニIーステルのJレスチロールへの転化に
使用して全コレステロールの定量分析を容易にすること
ができることは報告されていないし、示唆もされていな
い。 (10) 血清中のLCATの屋は英国特許第1501561号に
従って測定される。この反応組成物は、コレステロール
及び血清試料からのLCATと共に、界面活性剤及びレ
シチンを含む。しかしなから、試料中のコレステし1−
ル1ステルは、存在していたとしても、J分別の一ルス
テ
【」−ルにはあまり転化されず、そしてそれらの全量
は未知のままである。この特許はl CA T及びリゾ
レシチンを全コレステロールを定けするのに十分な量で
使用することを教えてもいなりれば、示唆もしていない
。 リゾレシチンと共に試1′−1中の実質」−すべでのコ
レステ12−ルエステルをコレステロールに転化−已し
めるのに十分なLCATの量は幾つかの因子に依存する
。そのような量は、試薬−試料混合物(以下反応混合物
と言う)、即も溶液分+Ji′におりる試料−+−aA
:薬溶液の全容債又は乾式分析素子で実施される分JJ
i’におりる試薬ゾーンに到達されるとI庄定される試
(゛」容積中のLCATの濃度により好都合に規定され
る。従って、この基準に基づけば、LC;ATの濃度は
例えば約30〜55国降車位(IU)/#の範囲で変動
し、約20単位/lの場合に血lPj試料に於て好まし
い結果が得られる。乾式分JJi素子に塗布する場合に
はL CA 1’酵素は被覆中の起り得る活性の低下を
補うために可なり過剰の呈で使y1目−るのが好ましい
。好ましい被rRNは250〜75011’位/rJテ
アル。(用イル1.cATa& ハ約2 X 10−5
′単位/pの正’+”I’+゛の血清LCATIA度で
シャープなコンI・ラス1−を示し、従って英国特許第
15(]15GIMの反応混合物の濃度より遥かに高い
濃度である。)本発明のコレステロールエステルのコレ
ステロールへの転化反応工程においてはりゾレシチンの
アシル受容体としての存在が必須である。リゾレシチン
はシグマケミカルカンパニー(米国ミズリー州センl−
ルイス)から市販の商品L−α−リソポスファチジルコ
リンのような市販品を使用することができる。或いは、
リゾレシチンはホスホリパーゼA−2のような加水分解
酵素の存在下にレシチンを酵素的に脱アシル化するごと
によっても得ることができる。かかる点からすれば、リ
ゾレシチンは高tilliな物質であるので、本発明に
従って使用される=1−ステル試薬組成物はし・シチン
をレシチンのりヅレノチンへの加水分解を触媒する酵素
と絹め合わけ′C包含するごとがてきる。この組合上は
分)ハ“条()1下において其の場でリゾレシチンを生
成−已しめる。更に、レシチンは:ルステロール二1−
スラールとり゛ゾレシチンとのコレステ1」−ル生成反
応の副へに物として生成するものであるから、生成レソ
ーy−ンはレシヂンー加水分解酵素の存在下にリゾレシ
チンに加水分解して戻すことができる。 (ト記反応式1参照)。従って、し・シチンー加水分解
酵素の使用による実用的特長は、レシチンの当初の必要
量を減少さ・lることであり、反応式Iの過程で十分な
雫のレシチンが形成される。 席1剣式」− 1、、CA T 」Jレスラ用−I (リヅレシチンーーートレンチン−
÷−コレスチレンチン加水分M酵素 除去 所望なら、少量のりヅレシチンをLCAT−促進反応(
l 3) の開始を補助するためにレシチン及び加水分h1:酵素
と一緒に使用することもできる。 反応混合物中の好ましいりゾレシチン濃度は、0.1〜
1.0ミリモル濃度である。リゾレシチンの別の源を使
用した場合には、上記濃度を供することのできるように
する。 好ましいレノチンー加水分解酵素はア一孔兄−千−尤ス
・ハ・イ1只汀う−の培養」二層液から回収されるよう
なボスポリパーMA−2である。−レシチン−加水分)
W酵素のその他の例はレシチナーゼ及びホスファタイド
2−アシルヒ1ラーゼである。同一の上riillνか
らLCATも回収することができるので、アー11コモ
ナス・ハイド1コフイラから回収した酵素製斉1肋り最
も々了まし2い。この内ゲ素はしCATの舟の1〜10
倍量で存在するのが々rましい。 人の血清試料を分析する場合には、当該試料中に自然に
存在するレシチンで、ア活−ヒ汚ヲニス・ハ浜tどノン
ー之−の培養−上層液から回収されるホスホリパーゼA
−2のようなレシヂンー加水分解酵素の存在下にリゾレ
ノチンの1もの場での生成を開始(I4) するのに十分である。従って、本発明の方法は、(a)
:コレステ1」−ル、コレステロールエステル及びレシ
チンを含む人の血清のような水性の試料と、試料中の実
質−にすべてのコレステ1」−ルエステルをτルーステ
1コールに転化セしめるのに十分な量の1.CAT酵素
及びレシチン加水分解酵素とを接触・uしめ、 (l〕)コレステロールエステルへの転化以外の手段に
より前記試料からコレステロールを除去し、そして (C)前記除去二lレスチロールの量を分析することに
よっても実施される。 LCAT及びレシチン−加水分解酵素がともに微41:
。 物ア弐ど汚ブス・ハイ−じ盟7−エラーに由来するもの
であるのが好ましく、このようにして回収された酵素製
剤は両方の酵素活性を有する。 ニルステl」−ルエソ、ヲールのコレステロールへのエ
ステル−刺激転化の場合には、全Jレスチロール分析中
の試料から」レステし1−ルを除去する工程が使用され
る。前述の如く、コレステ1コールエステルの化学m論
的(即ち実質」一完全な)転化はコレステロール除去工
程の不存在下には行なえない。この目的のために、コレ
ステ[1−ルを除去スる任意の手段が、コレステロール
がレシチンと相互反応してコレステし!−ルを生成して
(前記反応式10)逆反応)コレステロールを利用不可
11とにしない限り、適当である。従って、例えばコレ
スプロールを適当な物質との錯体化によって物理的に除
去することができる。代表的な錯化剤は、例えば莢国ハ
ンプシャー州ハハント、ボームウェル(PO911EF
)のインダストリアル オボヂュニティー社刊行の[
リジ°−チディスクロージャー」137巻、項目137
39に記載されているようなジギトニンである。錯化後
、錯体は例えば濾過によって試料から除去することがで
き、そしてコレステ1:l −ルは、脱11(化して、
」レステ1」−ルの化学的除去に関連して)j11述し
たようにして定♀するが、或いは重量分析的に定量する
。 或イハ、そして好ましくは、コレステロ−ル心。1それ
をコレスプロールエステル以外の生成物に化?的に変化
さu′ることによって除去する。化学的除去の々fまし
い態様においては1.:Iレステに2−ルは、−Iレス
テ1:1−ルと反Li; シて前記生成物に生成−uし
めるのに必要な第」−の^ゲ素及び試薬(例えば緩1子
j剤、活性化剤等)からなる第二の試薬組成物でもって
^ゲ素的に転化さ・Uることによって前記したような生
成物に変化せしめる。 ニルステI:J−ルの除去は、水性液体と液体及びリヅ
レノチンとの接触と同時に又は該接触に引き続き開始さ
れる。 一ルステロール除去工程において使用される好ましい第
二の酵素はコレステl」−ルオキンダー七である。この
酵素は以下の反応式に17jって酸素の存在士にコレス
テ1−1−ルエステルの分解を触媒する。 唄司曳D− 」レスチロール+酸素→コレステノン+過酸化水素コレ
ステロール オキシダーセ 上記反応の結果として生成する反応生成物の−っ(l
7) である過酸化水素は第二の酵素の存在トに第二、の反応
試薬を各種の周知技術によって検知可能な生成物に転化
−1しめるのに使用される。前記した各種の周知技術と
しては、例えばC,T、グツトヒユー等の1976年9
月281J発jjの米国特許第3983005 ’;3
に開示のカラー形成性物質をカラー指示系で着色物に転
化せしめるものがある。 本発明の好ましい態様に従えば、コレステし1−ル分析
はコレステ[1−ルの酵素的酸化によって生成する過酸
化水素の量を定量する指示組成物を使用して達成される
。酵素的に発生した過酸化水素を検知する有用な指示組
成物は当業界において、特にグルコース及び尿酸のbゲ
素的検知におりる指示組成物として周知である。米国特
許第3092465号及び同第2981606号は本発
明の成功裡の実施に杓用な指示組成物を開示している。 過酸化水素指示組成物は、一般には、過酸化的活性を有
する物質、好ましくはパーオキソダーゼ、並びに過酸化
水素及び酸素の存在下に色形成又は色変化をする指示物
質を含む。 (18) パーオキシダーゼは過酸化水素が他の物質を酸化するの
を触媒する酵素である。パーオキシダーゼは、一般に、
鉄ポルフィリンを含む複合蛋白質である。パーオキシダ
ーゼはわさび、ポテト、いもら′くの木の(A(液及び
かぶら(11u物パーオキシダーゼ)、ミルク(ラクト
パーオキシダーゼ)、並びに自+m球(ベルl−パーオ
キシダーゼ)に存在する。或種の合成パーオキシダーゼ
、例えばセオレル及びマエリーの帖±す坤訓が9樵、4
巻、422−434頁(1!150)に開示の合成パー
オキシダーゼも有用である。更に、ヘミン、メトヘモグ
ロビン、オキソヘモグし】ビン、ヘモグロヒン、ヘモク
l」モゲン、アルカリンヘマチン、ヘミン誘導体及び過
酸化作用又はパーオキシダーゼのような活性を示す、即
ら過酸化水素もしくは他の過酸化物による別の物質の酸
化を触媒する能力を有するその他の化合物も有用である
。 酵素ではないが、パーオキシダーゼのような活性を示す
その他の物質は、シリカゲルなどに吸収さ−Uたクロム
塩(例えば硫酸クロムカリウム)、鉄ノ、ルボソアネ−
1・、1失タンネート、フエ1:1シアン化第−鉄など
である。 或いは、指示組成物は、過酸化水素及びパーオキシダー
ゼのイi在下に酸化によって実質的に色変化は起さない
が、酸化された形でカラー形成1(1もしくは色変化性
物質と反応して化学反応の可視定量測定種を生じる、一
種もしくはそれ以上の物質を含む。そのようなカラー指
示組成物は特に米国特許第2981606号に詳細に記
載されている。後者のカラー形成性組成物、即し中間生
成物によって又はカラーカップリング反応によってカラ
ーを生成するものが本発明の実施に好ましい。 本発明のカラー指示組成物は、好ましくは、(a)その
酸化形態で自己カップリングする4−メトキシ−1−ナ
フトール、又は (b)I、7−ジしドUキソナフタレン及び4−アミノ
アンヂピリン(IIcI)の組合せを含む。 本発明は、溶液、即r)試薬成分が試薬水溶液として供
される「湿式−化学」モー1−の分析に容易に適合する
。所定割合の試薬溶液を分析すべき血清の如き水性液体
試料と接触せしめる。しかしながら、好ましい態様では
、試薬成分は乾式素子中に絹み入れる。このような素子
は、分析すべき水性液体と接触するまでは、実質−1−
液体を含まない。 適当な素子は、一般的な吸収性のディップ−アンドーリ
−1′型の素子を含むが、拡散層、−もしくはそれ以上
の試薬層及び任意的な支持体を含んで成る分析素子が最
も好ましい。そのような分析素子は、例えばプルツィビ
ロウィノ等の米国特許第3992158号及びグツドヒ
ユー等の同第3983005号に記載されている。 後記の例においては、以−トの物質を使用した。 レシチン;コレステロールアシル1−ランスフエラーナ
’ffi (LCAT)は八、TyC,C,’ (米国
メリ、−ラント州ロノクヴイル)から入手したアエr:
2モナス・ハイ1゛ロフイラ^TCC9071から得た
。この酵素ば729135巻、 402−407頁(1
978)に記載の方法に従って精製し、部分的に特性化
した(分子量500000)。 (21) アコニロモナス・ノ入イド1コフィラの培痒ハ、1%グ
ルコース、1%イーストエキス、0.1%に211PO
4゜1.5%アガール(寒天)及び1%(v/v)!恭
溶液からなる栄養斜面培地で実施した。前記塩/8液は
、0.INの塩酸中に0.1モルMg5(14,0,0
1モルFeSO4,0,01モルNaCl、 0.01
モルトInSO4,0,4ミリモルNa2MoO4,O
,1ミリモルZnSO4,及び0.6ミリモルCaCl
2を溶解さ−Uて使用した。バクテリア培養培地成分は
米国ミシガン州デI・ロイドのディフコカンパニーより
購入し、アガール(ABar)は英国1ηントンのAノ
クスフォードリミデノドより購入した。 コレステロールオキシダーゼ(COD > はス1−
レプ1−マイセス・ビオラセンス及びノカルディア・コ
レステロールノ・力・らtQた。 パーオキシダーゼはポースラディシュ(わさび)タイプ
11.152プルプロガリン単位/mg固体を使用した
。その他の成分はウシ血清アルブミン、17−α−リソ
ポスファヂシルコリン(タイプ1卵黄からのりゾレシヂ
ン)及びN−2−ヒドロキシ(22) コニチルピペリジン−N′−2−エタンスルホン酸(1
汁円is )緩i÷i刑を含む。これらの成分はシグマ
ヶ\カルカンパニー(米国ミズリー州センI・ルイス)
から得た。 その他のJべての薬剤は米国ニューヨーク州ロチェスタ
ーのイースI−マンニ1ダノクプJンパニーから供給さ
れているものである。 嵯−娑−人乞町−少4す■倶11町」吠則裂(Δ)二J
レステl:l −)レエステルのM l1il!のコレ
ステ11−ルへの転化が完結するのに要する時間は以下
のようにして求めた。 ニルステ1:J−ルリル−トストノクl容〆/l(6,
93ミリモル1度)を15%トライ1−ンX−100□
からなる水溶液に調製して酵素レシチン;コレステl:
I −)レアジルトランスフェラーゼ(LCAT)の基
質として作用せしめた。この溶液から各種濃度の基質(
0,35,0,07,1,1及び1.4ミリモル濃度)
を調製した。各溶液のサンプルを試薬組成物を含む独立
のキュヘノ1〜に加え、得られた反応混合物(試薬−(
−サンプル)は1.5重量%トライトンX−100,0
,4,62ミリモルリヅレシチン、22 ×10単位1、CA1’(このrIv素の添加前にキュ
ヘットは37℃で10分間プレコンディショニングした
)及び全量1.Omlにする0、83m1の緩衝剤試薬
を含んでいた。前記6t fii剤試薬は、pH7,0
で50ミリモルIIIミP 14 Sの緩由液50m1
中に調製した、パーオキシダーゼ1.4 mg、0−ジ
アニシジン(指示薬)4ITIl?、コレステ1」−ル
オキシダーセ12単位及びCaci214 mgを含む
ものであった。LCATを除く上記すべての成分を含む
ブランクは前記基質と同様に処理した。430 nmで
の吸光度の変化を分光光度計において約40分間監視し
た。反応は約30分間で実質上完結した。このことは吸
光度の−に昇が認められないことにより確認された。 (B)全コレステロールの測定用標準曲線は以下のよう
にして作製した。 各サンプルのく30分後の)全吸光度変化を測定してコ
レステリルリル−トの濃度の関数としてブロン]・シた
。これらの濃度はコレステロール6濃度と化学量論的に
関連しているので、30分後の吸光度変化を濃度既知の
コレステロールエステルにグ・1し′ζプし1ノドして
得られた曲線は全コレステ1」−ル測定用標準曲線とし
て機能した。 大−施桝 例1−14 本発明方法と対11<4力法との比較(?a l&分析
)」6記コレステリルリル−トの終点分析を血清サンプ
ル中の全コレステロ−ル分析に適用した。 対照分析としてはウメ−シントン・エンザイマティノク
・」レステ1:J−ル・キソl−(米国ニューシャーシ
ー州フリーポールl−のWorthingLon Bi
o−chemical Corp、)を使用した。この
分析はコレステロールオキシダーセ反応をパーオキシダ
ーゼ反応と結合さ−Vるものである。上記(Δ)におい
て述べた試薬組成物に記載した成分を含む14本のキュ
ヘットを37℃でIO分間プレコンディシロニングした
。次に、血清サンプルを添加して各キュヘノ1−の最終
容積を1.Omlとした。430 nmでの30分後の
吸光度の変化を、」二記(■3)の標準曲線の値と比較
して各サンプル中の全コレステロ(25) −ル濃度(mm、ol)を求めた。結果(fJ’T、−
位をmmo Iからmgに変換した)を第1表に示す。 第1表の結果は本発明方法とり]照方法との間の優れた
相関関係を示している。 以下余白 (26) 第1表 1[111青ニルステ1コール中のコレステロ]!駁4
!槌3の/!!11−覆二−舌準男1イU=で\/りと
λ−1、CA ’r絹合−U分析結果 タ1照分析結果
例 (mg) (++
+g)1 0.029’l O,030
(i2 0、0282 0.030 G3
0、03 G 3 0.03604
(1,03660,036050、03940,
0404 G O,04020,040470、0557
0,0548 80、05490,0548 90,04020,0410 100,02200,0205 110,02010,0183 120、03940,0365 130、02960,0306 ] 4 0.0293 0.0306例1
5 本発明のLCATCA相成物使用の乾式分析素子以下の
構造を自する乾式多層分)バ素子を製造した。 □厘□−1j’j −−−−−、−−−−−−−一−分
−−−jlJ、p−房/ n(、、、−」二部 1.
CATア:にロモナス・試薬 ハイ11」フィシ
5.1111’j位コレステ【−1−ルオキ
シダーゼ 2400単位トライトンX−100
8g肛P1シS緩衝剤 pl+
7.0拡散 TiO250g 酢酸セノl/l二7−ス 7gエスタ
P(ポリウレタン) 1.h−ト塗 ポリN
−イソプl−1ピル アクリルアミt” 0.32gゲル
ゼラチン 5.4゜パッド
アルカノールX−C■ 0.05gII
E P IE S緩衝剤 pH7,0
(以下、次頁に続く) 屓 成 −−−−−−−−一一一匁X−−−
−−−−−−−捗」1」/](−下部 4−イソプI
コボキシー1−ナフ1−−ル 0.9gi氏薬 5,
5−ジメチル−1,3−ツクl:I−”、キザンジオン
0.21gヒス(ヒニルスルポニルメチル
) Jニーチル 0.32gヒス(n
−ブチルメタクリレ−1−− m1−−スチレン−:I −2−アクリルアミ1−2−
メチルプロパン)スル ボン酸(50: 40: 10重里) 5.
2gパーオキソダーゼ 16000単位It
E pIシS緩(+i剤
pH7,0支持体 ポリ (エチレン)テレフタ
レート以りの素子4よコレステロール及びコレステロー
ルエステルを含む血/I!?試料中の仝」レスチロール
を分JJi’するのに使用した。ごれらの血清試料は、
更に、レシチン(血清成分中に自然に存在するものとし
て)を含ん7でおり、このレシチンはL CA T(j
舌−1浜モナス・ハモ↓Pツlプ)製剤に存在す(29
) るレシチン加水分解酵素ホスホリパーゼΔ−2によって
其の場でリゾレシチンに加水分解された。 得られた結果は全ニルステし1−ルの標1114分)バ
ー値と相関していた。 特許出願人 イースI〜マン コダノク カンパニー特許出願代理人 弁理士 青 木 朗 弁理士西舘和之 弁理士 石 1」1 敏 弁理士 山 Ll 昭 之 (30)
は未知のままである。この特許はl CA T及びリゾ
レシチンを全コレステロールを定けするのに十分な量で
使用することを教えてもいなりれば、示唆もしていない
。 リゾレシチンと共に試1′−1中の実質」−すべでのコ
レステ12−ルエステルをコレステロールに転化−已し
めるのに十分なLCATの量は幾つかの因子に依存する
。そのような量は、試薬−試料混合物(以下反応混合物
と言う)、即も溶液分+Ji′におりる試料−+−aA
:薬溶液の全容債又は乾式分析素子で実施される分JJ
i’におりる試薬ゾーンに到達されるとI庄定される試
(゛」容積中のLCATの濃度により好都合に規定され
る。従って、この基準に基づけば、LC;ATの濃度は
例えば約30〜55国降車位(IU)/#の範囲で変動
し、約20単位/lの場合に血lPj試料に於て好まし
い結果が得られる。乾式分JJi素子に塗布する場合に
はL CA 1’酵素は被覆中の起り得る活性の低下を
補うために可なり過剰の呈で使y1目−るのが好ましい
。好ましい被rRNは250〜75011’位/rJテ
アル。(用イル1.cATa& ハ約2 X 10−5
′単位/pの正’+”I’+゛の血清LCATIA度で
シャープなコンI・ラス1−を示し、従って英国特許第
15(]15GIMの反応混合物の濃度より遥かに高い
濃度である。)本発明のコレステロールエステルのコレ
ステロールへの転化反応工程においてはりゾレシチンの
アシル受容体としての存在が必須である。リゾレシチン
はシグマケミカルカンパニー(米国ミズリー州センl−
ルイス)から市販の商品L−α−リソポスファチジルコ
リンのような市販品を使用することができる。或いは、
リゾレシチンはホスホリパーゼA−2のような加水分解
酵素の存在下にレシチンを酵素的に脱アシル化するごと
によっても得ることができる。かかる点からすれば、リ
ゾレシチンは高tilliな物質であるので、本発明に
従って使用される=1−ステル試薬組成物はし・シチン
をレシチンのりヅレノチンへの加水分解を触媒する酵素
と絹め合わけ′C包含するごとがてきる。この組合上は
分)ハ“条()1下において其の場でリゾレシチンを生
成−已しめる。更に、レシチンは:ルステロール二1−
スラールとり゛ゾレシチンとのコレステ1」−ル生成反
応の副へに物として生成するものであるから、生成レソ
ーy−ンはレシヂンー加水分解酵素の存在下にリゾレシ
チンに加水分解して戻すことができる。 (ト記反応式1参照)。従って、し・シチンー加水分解
酵素の使用による実用的特長は、レシチンの当初の必要
量を減少さ・lることであり、反応式Iの過程で十分な
雫のレシチンが形成される。 席1剣式」− 1、、CA T 」Jレスラ用−I (リヅレシチンーーートレンチン−
÷−コレスチレンチン加水分M酵素 除去 所望なら、少量のりヅレシチンをLCAT−促進反応(
l 3) の開始を補助するためにレシチン及び加水分h1:酵素
と一緒に使用することもできる。 反応混合物中の好ましいりゾレシチン濃度は、0.1〜
1.0ミリモル濃度である。リゾレシチンの別の源を使
用した場合には、上記濃度を供することのできるように
する。 好ましいレノチンー加水分解酵素はア一孔兄−千−尤ス
・ハ・イ1只汀う−の培養」二層液から回収されるよう
なボスポリパーMA−2である。−レシチン−加水分)
W酵素のその他の例はレシチナーゼ及びホスファタイド
2−アシルヒ1ラーゼである。同一の上riillνか
らLCATも回収することができるので、アー11コモ
ナス・ハイド1コフイラから回収した酵素製斉1肋り最
も々了まし2い。この内ゲ素はしCATの舟の1〜10
倍量で存在するのが々rましい。 人の血清試料を分析する場合には、当該試料中に自然に
存在するレシチンで、ア活−ヒ汚ヲニス・ハ浜tどノン
ー之−の培養−上層液から回収されるホスホリパーゼA
−2のようなレシヂンー加水分解酵素の存在下にリゾレ
ノチンの1もの場での生成を開始(I4) するのに十分である。従って、本発明の方法は、(a)
:コレステ1」−ル、コレステロールエステル及びレシ
チンを含む人の血清のような水性の試料と、試料中の実
質−にすべてのコレステ1」−ルエステルをτルーステ
1コールに転化セしめるのに十分な量の1.CAT酵素
及びレシチン加水分解酵素とを接触・uしめ、 (l〕)コレステロールエステルへの転化以外の手段に
より前記試料からコレステロールを除去し、そして (C)前記除去二lレスチロールの量を分析することに
よっても実施される。 LCAT及びレシチン−加水分解酵素がともに微41:
。 物ア弐ど汚ブス・ハイ−じ盟7−エラーに由来するもの
であるのが好ましく、このようにして回収された酵素製
剤は両方の酵素活性を有する。 ニルステl」−ルエソ、ヲールのコレステロールへのエ
ステル−刺激転化の場合には、全Jレスチロール分析中
の試料から」レステし1−ルを除去する工程が使用され
る。前述の如く、コレステ1コールエステルの化学m論
的(即ち実質」一完全な)転化はコレステロール除去工
程の不存在下には行なえない。この目的のために、コレ
ステ[1−ルを除去スる任意の手段が、コレステロール
がレシチンと相互反応してコレステし!−ルを生成して
(前記反応式10)逆反応)コレステロールを利用不可
11とにしない限り、適当である。従って、例えばコレ
スプロールを適当な物質との錯体化によって物理的に除
去することができる。代表的な錯化剤は、例えば莢国ハ
ンプシャー州ハハント、ボームウェル(PO911EF
)のインダストリアル オボヂュニティー社刊行の[
リジ°−チディスクロージャー」137巻、項目137
39に記載されているようなジギトニンである。錯化後
、錯体は例えば濾過によって試料から除去することがで
き、そしてコレステ1:l −ルは、脱11(化して、
」レステ1」−ルの化学的除去に関連して)j11述し
たようにして定♀するが、或いは重量分析的に定量する
。 或イハ、そして好ましくは、コレステロ−ル心。1それ
をコレスプロールエステル以外の生成物に化?的に変化
さu′ることによって除去する。化学的除去の々fまし
い態様においては1.:Iレステに2−ルは、−Iレス
テ1:1−ルと反Li; シて前記生成物に生成−uし
めるのに必要な第」−の^ゲ素及び試薬(例えば緩1子
j剤、活性化剤等)からなる第二の試薬組成物でもって
^ゲ素的に転化さ・Uることによって前記したような生
成物に変化せしめる。 ニルステI:J−ルの除去は、水性液体と液体及びリヅ
レノチンとの接触と同時に又は該接触に引き続き開始さ
れる。 一ルステロール除去工程において使用される好ましい第
二の酵素はコレステl」−ルオキンダー七である。この
酵素は以下の反応式に17jって酸素の存在士にコレス
テ1−1−ルエステルの分解を触媒する。 唄司曳D− 」レスチロール+酸素→コレステノン+過酸化水素コレ
ステロール オキシダーセ 上記反応の結果として生成する反応生成物の−っ(l
7) である過酸化水素は第二の酵素の存在トに第二、の反応
試薬を各種の周知技術によって検知可能な生成物に転化
−1しめるのに使用される。前記した各種の周知技術と
しては、例えばC,T、グツトヒユー等の1976年9
月281J発jjの米国特許第3983005 ’;3
に開示のカラー形成性物質をカラー指示系で着色物に転
化せしめるものがある。 本発明の好ましい態様に従えば、コレステし1−ル分析
はコレステ[1−ルの酵素的酸化によって生成する過酸
化水素の量を定量する指示組成物を使用して達成される
。酵素的に発生した過酸化水素を検知する有用な指示組
成物は当業界において、特にグルコース及び尿酸のbゲ
素的検知におりる指示組成物として周知である。米国特
許第3092465号及び同第2981606号は本発
明の成功裡の実施に杓用な指示組成物を開示している。 過酸化水素指示組成物は、一般には、過酸化的活性を有
する物質、好ましくはパーオキソダーゼ、並びに過酸化
水素及び酸素の存在下に色形成又は色変化をする指示物
質を含む。 (18) パーオキシダーゼは過酸化水素が他の物質を酸化するの
を触媒する酵素である。パーオキシダーゼは、一般に、
鉄ポルフィリンを含む複合蛋白質である。パーオキシダ
ーゼはわさび、ポテト、いもら′くの木の(A(液及び
かぶら(11u物パーオキシダーゼ)、ミルク(ラクト
パーオキシダーゼ)、並びに自+m球(ベルl−パーオ
キシダーゼ)に存在する。或種の合成パーオキシダーゼ
、例えばセオレル及びマエリーの帖±す坤訓が9樵、4
巻、422−434頁(1!150)に開示の合成パー
オキシダーゼも有用である。更に、ヘミン、メトヘモグ
ロビン、オキソヘモグし】ビン、ヘモグロヒン、ヘモク
l」モゲン、アルカリンヘマチン、ヘミン誘導体及び過
酸化作用又はパーオキシダーゼのような活性を示す、即
ら過酸化水素もしくは他の過酸化物による別の物質の酸
化を触媒する能力を有するその他の化合物も有用である
。 酵素ではないが、パーオキシダーゼのような活性を示す
その他の物質は、シリカゲルなどに吸収さ−Uたクロム
塩(例えば硫酸クロムカリウム)、鉄ノ、ルボソアネ−
1・、1失タンネート、フエ1:1シアン化第−鉄など
である。 或いは、指示組成物は、過酸化水素及びパーオキシダー
ゼのイi在下に酸化によって実質的に色変化は起さない
が、酸化された形でカラー形成1(1もしくは色変化性
物質と反応して化学反応の可視定量測定種を生じる、一
種もしくはそれ以上の物質を含む。そのようなカラー指
示組成物は特に米国特許第2981606号に詳細に記
載されている。後者のカラー形成性組成物、即し中間生
成物によって又はカラーカップリング反応によってカラ
ーを生成するものが本発明の実施に好ましい。 本発明のカラー指示組成物は、好ましくは、(a)その
酸化形態で自己カップリングする4−メトキシ−1−ナ
フトール、又は (b)I、7−ジしドUキソナフタレン及び4−アミノ
アンヂピリン(IIcI)の組合せを含む。 本発明は、溶液、即r)試薬成分が試薬水溶液として供
される「湿式−化学」モー1−の分析に容易に適合する
。所定割合の試薬溶液を分析すべき血清の如き水性液体
試料と接触せしめる。しかしながら、好ましい態様では
、試薬成分は乾式素子中に絹み入れる。このような素子
は、分析すべき水性液体と接触するまでは、実質−1−
液体を含まない。 適当な素子は、一般的な吸収性のディップ−アンドーリ
−1′型の素子を含むが、拡散層、−もしくはそれ以上
の試薬層及び任意的な支持体を含んで成る分析素子が最
も好ましい。そのような分析素子は、例えばプルツィビ
ロウィノ等の米国特許第3992158号及びグツドヒ
ユー等の同第3983005号に記載されている。 後記の例においては、以−トの物質を使用した。 レシチン;コレステロールアシル1−ランスフエラーナ
’ffi (LCAT)は八、TyC,C,’ (米国
メリ、−ラント州ロノクヴイル)から入手したアエr:
2モナス・ハイ1゛ロフイラ^TCC9071から得た
。この酵素ば729135巻、 402−407頁(1
978)に記載の方法に従って精製し、部分的に特性化
した(分子量500000)。 (21) アコニロモナス・ノ入イド1コフィラの培痒ハ、1%グ
ルコース、1%イーストエキス、0.1%に211PO
4゜1.5%アガール(寒天)及び1%(v/v)!恭
溶液からなる栄養斜面培地で実施した。前記塩/8液は
、0.INの塩酸中に0.1モルMg5(14,0,0
1モルFeSO4,0,01モルNaCl、 0.01
モルトInSO4,0,4ミリモルNa2MoO4,O
,1ミリモルZnSO4,及び0.6ミリモルCaCl
2を溶解さ−Uて使用した。バクテリア培養培地成分は
米国ミシガン州デI・ロイドのディフコカンパニーより
購入し、アガール(ABar)は英国1ηントンのAノ
クスフォードリミデノドより購入した。 コレステロールオキシダーゼ(COD > はス1−
レプ1−マイセス・ビオラセンス及びノカルディア・コ
レステロールノ・力・らtQた。 パーオキシダーゼはポースラディシュ(わさび)タイプ
11.152プルプロガリン単位/mg固体を使用した
。その他の成分はウシ血清アルブミン、17−α−リソ
ポスファヂシルコリン(タイプ1卵黄からのりゾレシヂ
ン)及びN−2−ヒドロキシ(22) コニチルピペリジン−N′−2−エタンスルホン酸(1
汁円is )緩i÷i刑を含む。これらの成分はシグマ
ヶ\カルカンパニー(米国ミズリー州センI・ルイス)
から得た。 その他のJべての薬剤は米国ニューヨーク州ロチェスタ
ーのイースI−マンニ1ダノクプJンパニーから供給さ
れているものである。 嵯−娑−人乞町−少4す■倶11町」吠則裂(Δ)二J
レステl:l −)レエステルのM l1il!のコレ
ステ11−ルへの転化が完結するのに要する時間は以下
のようにして求めた。 ニルステ1:J−ルリル−トストノクl容〆/l(6,
93ミリモル1度)を15%トライ1−ンX−100□
からなる水溶液に調製して酵素レシチン;コレステl:
I −)レアジルトランスフェラーゼ(LCAT)の基
質として作用せしめた。この溶液から各種濃度の基質(
0,35,0,07,1,1及び1.4ミリモル濃度)
を調製した。各溶液のサンプルを試薬組成物を含む独立
のキュヘノ1〜に加え、得られた反応混合物(試薬−(
−サンプル)は1.5重量%トライトンX−100,0
,4,62ミリモルリヅレシチン、22 ×10単位1、CA1’(このrIv素の添加前にキュ
ヘットは37℃で10分間プレコンディショニングした
)及び全量1.Omlにする0、83m1の緩衝剤試薬
を含んでいた。前記6t fii剤試薬は、pH7,0
で50ミリモルIIIミP 14 Sの緩由液50m1
中に調製した、パーオキシダーゼ1.4 mg、0−ジ
アニシジン(指示薬)4ITIl?、コレステ1」−ル
オキシダーセ12単位及びCaci214 mgを含む
ものであった。LCATを除く上記すべての成分を含む
ブランクは前記基質と同様に処理した。430 nmで
の吸光度の変化を分光光度計において約40分間監視し
た。反応は約30分間で実質上完結した。このことは吸
光度の−に昇が認められないことにより確認された。 (B)全コレステロールの測定用標準曲線は以下のよう
にして作製した。 各サンプルのく30分後の)全吸光度変化を測定してコ
レステリルリル−トの濃度の関数としてブロン]・シた
。これらの濃度はコレステロール6濃度と化学量論的に
関連しているので、30分後の吸光度変化を濃度既知の
コレステロールエステルにグ・1し′ζプし1ノドして
得られた曲線は全コレステ1」−ル測定用標準曲線とし
て機能した。 大−施桝 例1−14 本発明方法と対11<4力法との比較(?a l&分析
)」6記コレステリルリル−トの終点分析を血清サンプ
ル中の全コレステロ−ル分析に適用した。 対照分析としてはウメ−シントン・エンザイマティノク
・」レステ1:J−ル・キソl−(米国ニューシャーシ
ー州フリーポールl−のWorthingLon Bi
o−chemical Corp、)を使用した。この
分析はコレステロールオキシダーセ反応をパーオキシダ
ーゼ反応と結合さ−Vるものである。上記(Δ)におい
て述べた試薬組成物に記載した成分を含む14本のキュ
ヘットを37℃でIO分間プレコンディシロニングした
。次に、血清サンプルを添加して各キュヘノ1−の最終
容積を1.Omlとした。430 nmでの30分後の
吸光度の変化を、」二記(■3)の標準曲線の値と比較
して各サンプル中の全コレステロ(25) −ル濃度(mm、ol)を求めた。結果(fJ’T、−
位をmmo Iからmgに変換した)を第1表に示す。 第1表の結果は本発明方法とり]照方法との間の優れた
相関関係を示している。 以下余白 (26) 第1表 1[111青ニルステ1コール中のコレステロ]!駁4
!槌3の/!!11−覆二−舌準男1イU=で\/りと
λ−1、CA ’r絹合−U分析結果 タ1照分析結果
例 (mg) (++
+g)1 0.029’l O,030
(i2 0、0282 0.030 G3
0、03 G 3 0.03604
(1,03660,036050、03940,
0404 G O,04020,040470、0557
0,0548 80、05490,0548 90,04020,0410 100,02200,0205 110,02010,0183 120、03940,0365 130、02960,0306 ] 4 0.0293 0.0306例1
5 本発明のLCATCA相成物使用の乾式分析素子以下の
構造を自する乾式多層分)バ素子を製造した。 □厘□−1j’j −−−−−、−−−−−−−一−分
−−−jlJ、p−房/ n(、、、−」二部 1.
CATア:にロモナス・試薬 ハイ11」フィシ
5.1111’j位コレステ【−1−ルオキ
シダーゼ 2400単位トライトンX−100
8g肛P1シS緩衝剤 pl+
7.0拡散 TiO250g 酢酸セノl/l二7−ス 7gエスタ
P(ポリウレタン) 1.h−ト塗 ポリN
−イソプl−1ピル アクリルアミt” 0.32gゲル
ゼラチン 5.4゜パッド
アルカノールX−C■ 0.05gII
E P IE S緩衝剤 pH7,0
(以下、次頁に続く) 屓 成 −−−−−−−−一一一匁X−−−
−−−−−−−捗」1」/](−下部 4−イソプI
コボキシー1−ナフ1−−ル 0.9gi氏薬 5,
5−ジメチル−1,3−ツクl:I−”、キザンジオン
0.21gヒス(ヒニルスルポニルメチル
) Jニーチル 0.32gヒス(n
−ブチルメタクリレ−1−− m1−−スチレン−:I −2−アクリルアミ1−2−
メチルプロパン)スル ボン酸(50: 40: 10重里) 5.
2gパーオキソダーゼ 16000単位It
E pIシS緩(+i剤
pH7,0支持体 ポリ (エチレン)テレフタ
レート以りの素子4よコレステロール及びコレステロー
ルエステルを含む血/I!?試料中の仝」レスチロール
を分JJi’するのに使用した。ごれらの血清試料は、
更に、レシチン(血清成分中に自然に存在するものとし
て)を含ん7でおり、このレシチンはL CA T(j
舌−1浜モナス・ハモ↓Pツlプ)製剤に存在す(29
) るレシチン加水分解酵素ホスホリパーゼΔ−2によって
其の場でリゾレシチンに加水分解された。 得られた結果は全ニルステし1−ルの標1114分)バ
ー値と相関していた。 特許出願人 イースI〜マン コダノク カンパニー特許出願代理人 弁理士 青 木 朗 弁理士西舘和之 弁理士 石 1」1 敏 弁理士 山 Ll 昭 之 (30)
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、コレステロールエステル及び遊離コレステし2一ル
含有水性液体中の全コレステロールを分析するに当り、 (a)前記液体の試料中の実質上すべてのコレステロー
ルエステル類をコレステ1コールに転化−已しめるのに
十分な量のりヅレシチン及びレシチン:コレステロール
アンルトランスフエラーセ(LCAT)活性を示す酵素
を含む組成物と前記液体試料とを接触・lLシめ、 (b)コレステロールエステル類への転化以外の手段に
より前記試料からコレステロールを除去し、そして (C)前記除去コレステロールの量を分析する工程を含
んで成ることを特徴とするコレステロールエステル及び
遊離コレステロール含有水性液体(1) 中の全コレステロールの分析力法。 2、(a)コレステL】−ルエステル及び遊離コレステ
ロール含有水性液体の試料中の実質」−すべてのニルス
テロールエステル 転化・uしめるのにト分な量のレシチン;コレステロー
ルアシル1−ランスフェラーゼ(1、CAT) 活1i
[−示す酵素及びリゾレシチンを含む試薬組成物並びに (b)コレステl」−ルエステル類への転化以外の手段
により前記試料からコレステ1コールを除去する手段 を含んで成るコレステロールエステル及び遊離コレステ
ロール含有水性液体中の全コレステIコール分析用組成
物。
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1983
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