JPH11146783A - リボ核酸の抽出方法 - Google Patents
リボ核酸の抽出方法Info
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- JPH11146783A JPH11146783A JP31529597A JP31529597A JPH11146783A JP H11146783 A JPH11146783 A JP H11146783A JP 31529597 A JP31529597 A JP 31529597A JP 31529597 A JP31529597 A JP 31529597A JP H11146783 A JPH11146783 A JP H11146783A
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Abstract
核酸を含有する試料からリボ核酸を抽出可能な方法を提
供する。 【解決手段】(a)リボ核酸を含む試料に、カオトロピ
ック物質を含む中性溶解液および核酸結合性固相担体を
添加し混合して、リボ核酸を担体上に吸着させた後、必
要に応じてカオトロピック物質を含む溶液にて洗浄し、
(b)次に、上記リボ核酸が吸着した担体を水あるいは
低塩濃度緩衝液からなる洗浄液にて洗浄し、(c)最後
に、上記担体を水あるいは低塩濃度緩衝液からなる溶出
液中に接触させた後、加熱することにより、リボ核酸を
上記担体から溶出液中に溶出させることを特徴とするリ
ボ核酸の抽出方法ならびに該抽出法に使用する試薬キッ
ト。
Description
法およびそのための試薬キットに関し、さらに詳しく
は、リボ核酸を含有する試料から、核酸結合性固相担体
を用いてリボ核酸を簡便に、かつ再現性良く抽出する方
法ならびにそのための試薬キットに関する。また、本発
明は自動核酸抽出装置にも応用しうる。
酸(DNA)とともに、それを含んでいる細胞および生
物を特徴づける生体成分であることから、その検出、解
析は現在、最も重要な遺伝子工学技術の1つである。こ
のリボ核酸の検出、解析手段としては、従来よりノーザ
ンブロット解析が用いられてきたが、近年、RNAをD
NAに変換後、このDNAを増幅する逆転写ポリメラー
ゼ・チェイン・リアクション(RT−PCR)法が開発
されたことにより、ノーザンブロット解析では検出でき
ない程度のごく微量のRNAを迅速に、かつ比較的簡便
に検出、解析することが可能となった。これにより多数
のサンプルを一度に処理することが可能となり、今日の
臨床検査の分野においては、特にレトロウイルス(RN
Aウイルス)の検出方法として応用され、感染症の診断
に必須の技術となっている。
リボ核酸を迅速にかつ簡便に、さらに再現性良く生体材
料から抽出する方法が強く望まれている。また、特に輸
血用血液中の感染性ウイルスの有無を見るような場合に
は、処理数からも、また抽出操作中の安全性の面からも
自動化が可能な抽出方法が望まれている。
出するには、まず、リボ核酸を含んでいる細胞、あるい
はウイルス粒子を破壊する必要があり、その段階でリボ
核酸は、タンパク質、脂質、糖、デオキシリボ核酸など
との混合物となる。リボ核酸は生体中に普遍的に存在す
るリボヌクレアーゼにより容易に分解されるため、この
破壊反応(溶解反応)は通常、蛋白質であるリボヌクレ
アーゼを変性失活させることができる強力なタンパク質
変性剤中にて行われる。従って、最終的に酵素反応に供
しうるリボ核酸を抽出するには、混在するタンパク質、
脂質、糖、デオキシリボ核酸などとの分離に加えて、こ
のタンパク質変性剤を完全に除くことも重要である。こ
れらの分離に用いられる方法としては、フェノール等の
有機溶媒で抽出し、その後、アルコールによって核酸を
塩析させる(アルコール沈殿)方法や、核酸結合性固相
担体を用いて核酸を特異的に固相に吸着後、回収する方
法がある。
nidine Phenol Chlorohorm) 法[Analytical Biochemist
ry 162, 156-159 (1987)] が広く一般的に用いられてい
る。この方法は、(1)生体材料をグアニジンチオシア
ン酸、フェノール、クロロホルムを含む酸性溶液中で処
理することにより、生体構造の破壊及びタンパク質の変
性を行い、(2)変性したタンパク質およびデオキシリ
ボ核酸を遠心分離により有機溶媒相および有機溶媒相と
水相の中間相に分配し、(3)リボ核酸のみを分取し、
(4)この水相に対してイソプロパノールを添加するこ
とにより、リボ核酸を不溶化させ(イソプロパノール沈
殿法)、(5)最後に、遠心分離によって不溶化したリ
ボ核酸をペレットとして回収する方法である。
用するリボ核酸抽出法と比較して、特殊な設備が不要で
あり、デオキシリボ核酸をほとんど含まない純度の高い
リボ核酸が得られるという長所がある。しかし、その一
方で毒劇物であるフェノールやクロロホルムを使用しな
ければならず、また、遠心分離や水相の移し替えという
煩雑な操作や、イソプロパノール沈殿法という長時間を
要するステップが必要である。そのため、臨床診断など
多サンプルを迅速に解析する必要のある場合には、より
簡便かつ短時間でリボ核酸が抽出できる方法が要求され
る。
て、シリカ粒子等の核酸結合性固相担体とカオトロピッ
ク剤を用いて、生体材料からより簡便に核酸を抽出する
方法が、Boomらにより報告されている。[J.Clin.Microb
iol.,28(3),495-503(1990)] 。この方法は、(1)生体
材料にグアニジンチオシアン酸塩、EDTA、トリトン
X−100よりなる溶解液および核酸結合性固相(シリ
カ粒子)を混合し、該固相に核酸を吸着させたのち、
(2)核酸が結合した固相を液相から分離し、(3)該
固相をグアニジンチオシアン酸塩を含む洗浄液で洗浄
し、(4)次に70%エタノ−ル水溶液にて該固相を洗
浄し、(5)さらにアセトンにて該固相を洗浄した後、
固相を加熱により乾燥し、(6)最後に溶出液にて核酸
を該固相から溶出し、核酸を回収する方法である。この
方法は、フェノールなどの毒性の強い試薬を用いること
なく、また、遠心分離による有機溶媒相と水相の分離、
水相の移し替え等の煩雑な操作を行うことなく核酸の抽
出が行える点が特徴である。さらに、核酸は最終的に少
量の水あるいは低塩濃度緩衝液からなる溶出液中に回収
されるため、アルコール沈殿等による脱塩、遠心濃縮操
作を行うことなく、回収液(抽出液)を直接次の酵素反
応に用いることができる。
ず、シリカ等の核酸結合性固相担体とカオトロピック剤
を用いて核酸を担体に吸着させ、抽出する方法は、一般
に以下のような欠点、問題点が存在する。この方法によ
る抽出工程は、主に、(1)カオトロピック剤存在下、
シリカ粒子に核酸を吸着させる工程(吸着工程)、
(2)非特異的に結合した夾雑物及びカオトロピック剤
を除くため、洗浄液にて核酸の吸着したシリカを洗浄す
る工程(洗浄工程)、および(3)水あるいは低塩濃度
緩衝液にて核酸をシリカ粒子から溶出させる工程(溶出
工程)の3工程からなる。ここで(2)の洗浄液として
は、カオトロピック剤を溶かし込み、さらに、洗浄時に
おける核酸のシリカ粒子からの溶出を防ぐため、従来か
ら、水溶性有機溶媒、特にエタノールを50〜80%程
度の割合で含む水あるいは低塩濃度緩衝液が用いられて
いる。
(3)の工程に残留した場合、抽出液を酵素処理する際
に酵素反応が阻害されるため、通常、エタノールを含む
水溶液での洗浄後は、必要に応じて100%エタノー
ル、あるいは、さらに揮発性の高いアセトン等で洗浄
し、その後、加熱乾燥によりその有機溶媒を系から完全
に取り除くことが行われている。この乾燥は長時間を要
するのみでなく、乾燥時間が不十分であればエタノール
の残留につながり、過度の場合には、核酸が強固に担体
に結合しすぎるために溶出が困難になり、結果的に核酸
回収量の低下や再現性の低下に繋がることが知られてい
る。このように有機溶媒の使用は、その乾燥の程度を見
極めにくいのみならず、エタノールやアセトンといった
有機溶媒は引火性及び揮発性を有するため、特に操作の
自動化を考えた場合には、出火等の危険性も考えられ
る。そこで、これらの問題点を克服した方法が必要とさ
れている。
材料から有機溶媒を使用することなく、簡便に、短時間
に、さらに安全に、かつ再現性よくリボ核酸を抽出する
方法並びにそのための試薬を提供することである。
の抽出方法として核酸結合性固相担体を用いた核酸の抽
出方法に着目し、上記問題点を解決するために鋭意検討
した結果、リボ核酸の場合、デオキシリボ核酸とは異な
り、担体に吸着させた後、エタノール等の有機溶媒を全
く含まない低塩濃度緩衝液にて洗浄しても、容易には担
体から溶離せず、加熱することによって初めて溶離が促
進されることを見いだした。本発明は、この新しい知見
に基づいて完成されたものである。
試料に、カオトロピック物質を含む中性溶解液および核
酸結合性固相担体を混合して、リボ核酸を担体上に吸着
させた後、必要に応じてカオトロピック物質を含む溶液
にて洗浄し、(b)リボ核酸が吸着した担体を水あるい
は低塩濃度緩衝液からなる洗浄液にて洗浄し、(c)該
担体を水あるいは低塩濃度緩衝液からなる溶出液中に接
触させた後、加熱することにより、リボ核酸を該担体か
ら溶出液中に溶出させることを特徴とするリボ核酸の抽
出方法である。
塩、0〜5%の非イオン性界面活性剤、0〜0.2mM
のEDTA、0〜0.2Mの還元剤を含有する中性溶解
液、核酸結合性固相担体、4〜7Mのグアニジン塩、0
〜5%の非イオン性界面活性剤を含む第1の洗浄液、水
あるいは100mM以下の低塩濃度緩衝液からなる第2
の洗浄液、及び水あるいは100mM以下の低塩濃度緩
衝液からなる溶出液を含むリボ核酸の抽出用試薬キット
である。
とは、血清、血漿、血液、尿、唾液、体液などの生体材
料である。また、リボ核酸とは、ウイルス、細菌あるい
は真菌等の外来性寄生生物由来のリボ核酸に加えて、こ
れらの生体材料を産する生物に由来する内在性のリボ核
酸をも含みうる。
ボ核酸を含む試料に、カオトロピック物質を含む中性溶
解吸着液および核酸結合性固相担体を添加、混合し、リ
ボ核酸を担体上に吸着させる。
オトロピック物質を含むpH6〜8の中性溶液を用い
る。ここでカオトロピック物質としては、一般にカオト
ロピック物質として知られているような、水溶液中でカ
オトロピックイオン(イオン半径の大きな1価の陰イオ
ン)を生成し、疎水性分子の水溶性を増加させる作用を
有しており、核酸の固相担体への吸着に寄与するもので
あれば、特に限定されない。具体的には、グアニジンチ
オシアン酸塩、グアニジン塩酸塩、ヨウ化ナトリウム、
ヨウ化カリウム、過塩素酸ナトリウム等が挙げられる
が、これらのうち、リボ核酸を分解するリボヌクレアー
ゼに対する阻害効果の大きいグアニジンチオシアン酸塩
あるいはグアニジン塩酸塩の使用が最も好ましい。これ
らのカオトロピック物質の使用濃度は、用いられるカオ
トロピック物質により異なり、例えば、グアニジンチオ
シアン酸塩を使用する場合には、3〜5.5Mの範囲
で、グアニジン塩酸塩を使用する場合は、5M以上で使
用するのが好ましい。
いは細胞中に含まれるタンパク質を変性させる目的で界
面活性剤を含有させてもよい。この界面活性剤として
は、一般に細胞等からの核酸抽出に使用されるものであ
れば特に限定されないが、具体的には、トリトン系界面
活性剤及び、ツイーン系界面活性剤などの非イオン性界
面活性剤、N‐ラウロイルサルコシンナトリウム等の陰
イオン界面活性剤が挙げられる。本発明においては、特
に非イオン性界面活性剤を、0.1〜2%の範囲となる
ように使用するのが好ましい。さらに、溶解吸着液に
は、サンプル中に含まれる蛋白質、特にリボヌクレアー
ゼを変性・失活させる目的で、2−メルカプトエタノー
ルあるいはジチオスレイトール等の還元剤を含有させる
ことが好ましい。
としては、カオトロピックイオンの存在下で、核酸を吸
着すなわち可逆的な物理的結合により保持することがで
きる親水性表面を有する固体であれば、特に限定されな
い。具体的には、二酸化珪素、すなわちシリカが好まし
く用いられる。さらに、二酸化珪素を主成分とする他の
物質、例えばガラス、珪藻土、あるいはこれらを化学的
修飾により表面処理を施したものや、超常磁性金属酸化
物等の他の物質との複合体も含まれる。化学的修飾によ
り表面処理を施す場合は、核酸との可逆的な結合を妨げ
ない程度に、適度な陽性電荷を帯びさせてもよい。
ては、粒子、フィルター、反応容器等が具体的に挙げら
れるが、特に限定されない。これらのうち、吸着と溶出
の効率を考慮すると粒子の形態がより好ましい。さら
に、その場合の粒径は、0.05〜500μm、好まし
くは1〜100μm、特に1〜10μmがより好適であ
る。
る工程において、担体が粒子の場合は、ボルテックスミ
キサーなどにて攪拌し、溶液と担体とを均一に分布させ
ることが好ましい。ここで、試料中にリボ核酸とともに
デオキシリボ核酸が含まれている場合、両核酸がともに
担体に結合する条件であってもよい。また結合させた後
には、必要に応じて、核酸の結合した担体をカオトロピ
ック物質を含む溶液にて洗浄することが好ましい。これ
によって非特異的に担体に吸着した核酸以外の夾雑物
を、核酸−担体複合体から完全に洗い去ることが可能で
ある。
工程によりリボ核酸が吸着した担体を、カオトロピック
物質等を除く目的で、低塩濃度緩衝液からなる洗浄液に
て洗浄する工程である。ここでいう低塩濃度緩衝液から
なる洗浄液とは、エタノール等の有機溶媒およびカオト
ロピック物質を全く含まない緩衝液を指し、緩衝液とし
てはトリス系緩衝液が好ましいが、特に限定されない。
溶出工程に残留した場合においても、RT−PCR反応
などの酵素反応に影響を与えない程度の塩濃度を指し、
単なる水も含まれる。本発明においては、100mM以
下の緩衝液が好ましい。また、この溶液は界面活性剤を
含有しても良く、pHは特に限定されない。
合した担体を洗浄液と接触させ、再び分離することによ
り、生物材料、溶解液、核酸結合性固相の混合物から、
リボ核酸が吸着した核酸結合性固相以外の物質を可能な
限り除去する操作である。本発明における具体的な分離
手段としては、使用する核酸結合性固相担体の形態によ
り異なり、核酸結合性固相担体が粒子の形態である場合
には、遠心分離、ろ過分離及びカラム操作等が好まし
い。さらには、粒子内に超常磁性金属酸化物を含ませて
おいたものを担体として使用すれば、磁石等を用いた簡
便な磁気分離法が可能となり、より好適である。
る。溶出工程は、リボ核酸が吸着した核酸結合性固相か
ら該リボ核酸を溶離させる工程である。従って、本発明
において用いられる溶出液としては、固相からのリボ核
酸の溶離を促進するものであれば、特に限定されない。
例えば、水あるいはトリス−EDTA緩衝液[10mM
トリス塩酸緩衝液、1mM EDTA、pH8.0]が
好ましい。
せることが必要である。加熱温度は、リボ核酸に悪影響
を及ぼさない程度であれば、特に限定されないが、50
〜70℃が好ましい。加熱時間は、30秒〜10分間程
度である。このようにして溶出したリボ核酸は、透析や
エタノール沈殿法等の脱塩、濃縮操作を施すことなく、
逆転写酵素等を使用した酵素反応に直接使用することが
できる。
含む試料に、4〜7Mのグアニジン塩、0〜5%の非イ
オン性界面活性剤、0〜0.2mMのEDTA、0〜
0.2Mの還元剤を含有する中性溶解液および核酸結合
性固相担体を混合して、リボ核酸を担体上に吸着させ、
(b)次いで、4〜7Mのグアニジン塩、0〜5%の非
イオン性界面活性剤を含む第1の洗浄液にてリボ核酸−
担体複合体を洗浄し、(c)さらに、リボ核酸−担体複
合体を水あるいは100mM以下の低塩濃度緩衝液から
なる第2の洗浄液にて洗浄し、(d)最後に、上記担体
を水あるいは100mM以下の低塩濃度緩衝液からなる
溶出液中に接触させた後、加熱することにより、リボ核
酸を上記担体から溶出液中に溶出させることを特徴とす
るリボ核酸の抽出方法である。
ジン塩、0〜5%の非イオン性界面活性剤、0〜0.2
mMのEDTA、0〜0.2Mの還元剤、例えば2−メ
ルカプトエタノールを含有する中性溶解液、核酸結合性
固相担体、4〜7Mのグアニジン塩、0〜5%の非イオ
ン性界面活性剤を含む第1の洗浄液、水あるいは100
mM以下の低塩濃度緩衝液からなる第2の洗浄液、及び
水あるいは100mM以下の低塩濃度緩衝液からなる溶
出液を含む。
出方法は、フェノール等の危険な有機溶媒および揮発
性、引火性を有するエタノール、アセトン等の水溶性有
機溶媒を全く必要とせず、かつ単純なステップから構成
されるため、リボ核酸抽出キットや、固相の分離操作や
試薬分注操作を自動化した核酸抽出装置へ容易に応用し
うることは明らかである。また、本発明の方法により得
られたリボ核酸はRT−PCRまたはNASBA (例え
ば、EP0329822 号明細書記載) などの核酸増幅法の鋳型
として使用可能である。
結合性固相担体の洗浄液として、エタノール等の有機溶
媒を全く含まない低塩濃度緩衝液を用いることにある。
従来、このような洗浄液としては、洗浄時における核酸
の担体からの溶離を防ぐために、エタノール等の水溶性
有機溶媒を50〜80%含む、溶液の極性を下げた水あ
るいは低塩濃度緩衝液が用いられている。しかし、本発
明では、洗浄液としてエタノール等の有機溶媒を全く含
まない低塩濃度緩衝液を用いても、リボ核酸は、デオキ
シリボ核酸に比べて、固相担体から溶離しにくいため、
リボ核酸を固相担体上に保持することができる。さら
に、この洗浄により、デオキシリボ核酸が担体より溶出
されるため、デオキシリボ核酸の混入のより少ないリボ
核酸サンプルの調製が可能となる。
明する。実施例1 大腸菌を含むサンプルからのリボ核酸の抽出 (1)大腸菌サンプルの調製 大腸菌JM109株をLB寒天培地(1%ポリペプト
ン、0.5%イーストエキストラクト、1%塩化ナトリ
ウム)にて37℃で1昼夜培養し、次に、そのシングル
コロニーをLB液体培地にて37℃、12時間培養し
た。吸光度、OD660を測定後、大腸菌を遠心にて回
収し、7%牛血清アルブミン(BSA)を含んだリン酸
緩衝液(PBS)(−)〔137mM塩化ナトリウム、
2.7mM塩化カリウム、4.3mMリン酸水素二ナト
リウム、1.4mMリン酸二水素カリウム(pH7.
4)〕にて、吸光度、OD660が0.5になるように
再度、大腸菌を懸濁し、サンプルとした。
溶解吸着液〔5.0Mグアニジンチオシアン酸塩、2%
TritonX−100、25mM EDTA、0.1
M 2−メルカプトエタノール、50mM トリス−塩
酸緩衝液(pH7.0)]を加えて溶解した。これに
0.4g/mlに調製した磁性シリカ(粒径1〜10μ
m、四三酸化鉄粒子30%含有、比表面積280m2 /
g、細孔容積0.025ml/g、表面細孔直径2〜6
nm:鈴木油脂社製)懸濁液を50μl添加し、室温で
10分間ボルテックスミキサーにて混合した。その後、
マイクロチューブを磁気スタンド(MPC-M:ダイナル社
製)に設置して、磁性シリカ粒子を集め、上清を除去し
た。
らはずし、1mlの洗浄液I[6.5M グアニジンチ
オシアン酸塩、50mM トリス−塩酸(pH6.
4)]を加えて十分に混合した後、同様に、磁気スタン
ドに設置して、上清を除去することにより、粒子を洗浄
した。この洗浄操作をもう一度繰り返した後、同様に、
1mlの洗浄液II〔5mM トリス−塩酸(pH6.
4)〕にて2回粒子を洗浄した。最後に、これに60μ
lの溶出液〔ジエチルピロカーボネイト処理をした滅菌
水〕を添加し、粒子を懸濁した後、65℃で5分間加熱
し、磁気スタンドに設置して磁性シリカ粒子を集め、上
清を回収した。回収液量はおよそ50μlであった。
を用いて、同じサンプルを処理し、核酸の抽出を行っ
た。すなわち、(1)にて調製した大腸菌サンプルに9
00μlの溶解吸着液[4.7M グアニジンチオシア
ン酸塩、1.2%TritonX−100、20mM
EDTA、50mM トリス−塩酸緩衝液(pH6.
4)]を加えて溶解した。これに0.4g/mlに調製
した磁性シリカ(粒型1〜10μm、四三酸化鉄粒子3
0%含有、比表面積280m2 /g、細孔容積0.02
5ml/g、表面細孔直径2〜6nm:鈴木油脂社製)
懸濁液を50μl添加し、室温で10分間混合した。次
に、マイクロチューブを磁気スタンド(MPC-M:ダイナ
ル社製)に設置して磁性シリカ粒子を集め、上清を除去
した。次いで、マイクロチューブを磁気スタンドからは
ずし、1mlの洗浄液[5.3M グアニジンチオシア
ン酸塩、50mM トリス−塩酸(pH6.4)]で2
回、1mlの70%エタノールで2回、アセトンで1回
粒子を洗浄した。上清を除去した後、マイクロチューブ
を55℃にて加熱し、残ったアセトンを完全に蒸発除去
させ、粒子を乾燥させた。最後に、これに100μlの
溶出液〔ジエチルピロカーボネイト処理をした滅菌水〕
を添加し、粒子を懸濁した後に、55℃で10分間加熱
し、磁気スタンドに設置して磁性シリカ粒子を集め、上
清を回収した。回収液量はおよそ80μlであった。
した核酸の解析 本発明方法またはBoomらの方法によって大腸菌JM10
9より抽出した核酸溶液9μlと色素液(50%グリセ
ロール、0.25%ブロモフェノールブルー)1μlを
混合し、1%アガロースゲル電気泳動に供した。泳動は
1×TBE緩衝液にて100V、30分間行った。電気
泳動終了後、ゲルをエチジウムブロミド溶液に15分間
浸せきし、紫外線照射下、写真撮影を行った。
中、レーン1は、サイズマーカー(ラムダファージDN
Aを制限酵素HindIII で消化したもの)、レーン2
は、本発明方法により調製された核酸抽出物、レーン3
はBoomらの方法により調製された核酸抽出物の電気泳動
像を示す。図1から明らかなように、本発明方法により
得られた抽出液は、Boomらの方法により調製された核酸
抽出物に比べて、ゲノムDNAの混入がきわめて少な
く、かつRNAの収量はBoomらの方法とほとんど差がな
いことがわかる。
NAのRT−PCRによる検出 (1)血清サンプルの調製およびHCV−RNAの抽出 106 コピー/mlのHCVが含まれているC型肝炎患
者血清を正常陰性血清を用いて順次10倍希釈し、10
〜106 コピー/mlの希釈系列をつくり、これらを抽
出材料とした。各希釈系列の血清サンプル100μl
(1〜105 コピー相当)を使用して、実施例1と同様
の方法によりRNAの抽出を行った。
の増幅 上記(1)にて得られた回収液に対して、HCV−RN
Aの非翻訳領域をターゲットにRT−PCRをおこなう
ことにより、回収液中のHCV−RNAの検出を試み
た。RT−PCRは、岡本等の方法〔J. Exp. Med., 6
0, 215-222(1990)〕に従い、市販の試薬キット、RT−
PCR high(東洋紡績社製)を用いて実施した。
まず、上記(1)にて得られた回収液のうち、5μlに
M−MLV逆転写酵素、逆転写用プライマー、リボヌク
レオチドインヒビターおよび反応用緩衝液を含む逆転写
用試薬を加え、最終液量を20μlとし、これを42
℃、60分間保温して逆転写反応をおこなった。次に、
耐熱性DNAポリメラーゼを含むPCR用試薬に逆転写
反応後の反応液2.5μlを加え、最終液量を25μl
とした後、DNA サーマルサイクラー(Perkin Elmer
Cetus社製)にて、94℃30秒間、53℃30秒間、
72℃1分間の温度サイクルを38サイクル実施した。
次に、この反応にて得られた増幅産物1μlを、さらに
内側のプライマーを含むPCR用反応試薬に加え、最終
液量30μlにて、94℃30秒間、50℃1分間、7
2℃1分間を28サイクル実施し、二段階のPCRをお
こなった。
産物の検出 PCR増幅産物9μlに色素液(50%グリセロール、
0.25%ブロモフェノールブルー)1μlを混合し、
1%アガロースゲル電気泳動に供した。泳動は1×TB
E緩衝液にて100V、20分間行った。電気泳動終了
後、ゲルをエチジウムブロミド溶液に15分間浸せき
し、紫外線照射下、写真撮影を行った。写真撮影した結
果を図2に示す。
DNAのHincII消化物からなるサイズマーカー、レ
ーン2〜4は本実施例に示す方法により抽出精製された
RNAのRT−PCR増幅産物の泳動パターンであり、
レーン2は1×104 コピー、レーン3は1×103 コ
ピー、レーン4は1×102 コピー相当のHCVを含む
血清サンプルを使用したときの結果を示す。図2から1
03 コピー相当のHCVを含む血清サンプルについて増
幅産物が見られ、本発明の方法により血清サンプルから
HCV−RNAの抽出が可能で、直ちにRT−PCRに
よる解析に使用できることが確認できた。
物材料から迅速、簡便かつ安全にリボ核酸の抽出が可能
となる。該抽出法によって抽出したリボ核酸は直ちに、
RT−PCR等の核酸増幅法に使用できる。該抽出法で
は、有機溶媒を一切使用せず、また担体を加熱乾燥させ
る必要もないのため、従来法に比べ、安全かつ簡便で、
抽出処理に要する時間も大幅に短縮することができ、か
つ再現性の高い確実な結果が得られる。
腸菌サンプルから抽出されたリボ核酸のアガロースゲル
電気泳動パターンを示す図面に代わる写真である。
出されたリボ核酸を、RT−PCRによって増幅した増
幅産物のアガロースゲル電気泳動結果を示す図面に代わ
る写真である。
Claims (4)
- 【請求項1】 (a)リボ核酸を含む試料に、カオトロ
ピック物質を含む中性溶解液および核酸結合性固相担体
を混合して、リボ核酸を担体上に吸着させた後、必要に
応じてカオトロピック物質を含む溶液にて洗浄し、
(b)リボ核酸が吸着した担体を水あるいは低塩濃度緩
衝液からなる洗浄液にて洗浄し、(c)該担体を水ある
いは低塩濃度緩衝液からなる溶出液中に接触させた後、
加熱することにより、リボ核酸を該担体から溶出液中に
溶出させることを特徴とするリボ核酸の抽出方法。 - 【請求項2】 核酸結合性固相担体が超常磁性金属酸化
物を含む担体であって、さらに、磁力を利用して核酸結
合性固相担体と液相を分離する工程を含むことを特徴と
する請求項1記載のリボ核酸の抽出方法。 - 【請求項3】 (a)リボ核酸を含む試料に、4〜7M
のグアニジン塩、0〜5%の非イオン性界面活性剤、0
〜0.2mMのEDTA、0〜0.2Mの還元剤を含有
する中性溶解液、及び核酸結合性固相担体を混合して、
リボ核酸を担体上に吸着させ、(b)次いで、4〜7M
のグアニジン塩、0〜5%の非イオン性界面活性剤を含
む第1の洗浄液にてリボ核酸−担体複合体を洗浄し、
(c)さらに、リボ核酸−担体複合体を水あるいは10
0mM以下の低塩濃度緩衝液からなる第2の洗浄液にて
洗浄し、(d)最後に、上記担体を水あるいは100m
M以下の低塩濃度緩衝液からなる溶出液中に接触させた
後、加熱することにより、リボ核酸を上記担体から溶出
液中に溶出させることを特徴とするリボ核酸の抽出方
法。 - 【請求項4】 4〜7Mのグアニジン塩、0〜5%の非
イオン性界面活性剤、0〜0.2mMのEDTA、0〜
0.2Mの還元剤を含有する中性溶解液、核酸結合性固
相担体、4〜7Mのグアニジン塩、0〜5%の非イオン
性界面活性剤を含む第1の洗浄液、水あるいは100m
M以下の低塩濃度緩衝液からなる第2の洗浄液、及び水
あるいは100mM以下の低塩濃度緩衝液からなる溶出
液を含むリボ核酸の抽出用試薬キット。
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