JPH1075778A - プロトロンビンおよびトロンビンに結合するペプチド - Google Patents
プロトロンビンおよびトロンビンに結合するペプチドInfo
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Abstract
結合するペプチドリガンド及びトロンビンを精製するた
めにアフィニティークロマトグラフィー法に使用する方
法を開示する。 【解決手段】 ペプチドの配列としてGln-Leu-Trp-Gly-
Ser-His,Arg-Gln-Leu-Trp-Gly-Ser-His,His-Gln-Leu-
Trp-Gly-Ser-HisおよびTyr-Phe-Pro-Gly-Pro-Tyr-Leuの
配列を有するペプチド及びそのアフィニティークロマト
グラフィーへの使用が提供される。
Description
質−リガンド相互作用の同定、そして具体的にはプロト
ロンビンおよびその活性化状態であるトロンビンに結合
し、かつこれらのタンパク質のアフィニティー精製法に
使用できるペプチドリガンドに関する。
ーゼチモーゲンであるプロトロンビンの活性化状態であ
り、タンパク質中のArg−Gly結合に高い特異性を有す
る。α-トロンビンは、その内皮細胞レセプター、血漿
凝固調節プロテインC、凝固V、VIIIおよびXIII因子、
ならびに血液凝固の主要タンパク質であるフィブリノー
ゲンを含む多くの生理学的基質を有する。α-トロンビ
ンによるフィブリノーゲンのフィブリンへの開裂は、フ
ィブリンの血液凝固への重合を生じる。トロンビンは、
典型的にはフィブリングルーまたは封止材と呼ばれる止
血用の調製物において商業的に使用されている。
ーン画分IIIを出発材料として使用して、Fentonら(197
1)ならびにMillerおよびCopeland(1965)の研究から引用
されるようにFentonら(1977)に記載された。この方法は
アルカリ塩沈殿および陽イオン交換クロマトグラフィー
を含むが、高純度のα-トロンビンを生成した。
(プロトロンビン複合体濃縮物:prothrombin complex c
oncentrate:PTCとも言う)から調製することもでき、こ
れは典型的には全血漿を陰イオン交換樹脂へ吸着させ、
そして溶出させることにより調製される(Coanら、1981
に要約されている)。この画分を、プロトロンビン(II
因子)、VII、IXおよびX因子、プロテインCならびにプ
ロテインSを含む数種のビタミン−K依存性プロテアー
ゼのチモーゲン形に濃縮する。続く処理は典型的には、
陽イオン交換クロマトグラフィーが必要である(Walzお
よびSeegers、1974;Downingら、1975)。
物から、または陽イオン交換クロマトグラフィーにより
調製された下流の中間体から、血漿α-トロンビンを高
純度濃縮するために導入された。トロンビンはアフィニ
ティー相互作用のために利用された構造的特徴、すなわ
ち触媒部位、陰イオン-結合部位(フィブリノーゲン-結
合エキソサイトIとしても知られている)、およびヘパリ
ン−結合部位(エキソサイトII)を有する。有用なリガ
ンドは、例えばクロロベンジルアミン(Thompson、197
6:ThompsonおよびDavie、1971)およびp-アミノベンザ
ミジン(Lorneら、1989:Khamlichiら、1990)のような合
成インヒビター、および触媒部位に結合するL-アルギニ
ルメチルエステル(Yuら、1986)のような基質類似体を含
む。ヘパリンおよび陽イオンクロマトグラフィー樹脂
は、ヘパリン−結合部位(エキソサイトII)に結合する
(Miller-Andersonら、1980:NgaiおよびChang、1991)。
より開裂されると知られているタンパク質の部位に由来
する多数のペプチド配列があるが、本発明者はプロトロ
ンビンまたはトロンビンのアフィニティー精製に関し
て、そのようなペプチドを利用する参考文献が無いこと
を知っている。Petersら(1993)は、セリンプロテアーゼ
サーミターゼの精製のために、セリンプロテアーゼイン
ヒビターと認識されているペプチジルメチルケトンを使
用することにより、修飾ペプチドリガンドの有用性を実
証した。
ンビンの陰イオン結合部位で相互作用する結合配列(約
55−65残基)を有する(Krstenanskyら、1987)。
て、本発明で見いだされたペプチドQLWGSH(配列
番号1)は、トロンビンの既知の機能に関するタンパク
質に明らかな配列相同性を持たない。例えば、データベ
ース中のタンパク質に対する相同性配列では、QLWG
SHに対して同一のものは無いが、ハロバクテリウムハ
ロビウム(Halobacterium halobium)由来のスーパーオ
キシドジスムターゼ、大腸菌(E.Coli)由来のウラシル-D
NAグリコシラーゼ(EC3.2.2.-)およびソラナム チューベ
ロサム(Solanum tuberosum)(ジャガイモ)由来の4-アル
ファ-グルカノトランスフェラーゼ(EC2.4.1.25)と、6
つ連続残基の中に5つの同一性が明らかになった。
QLWGSHの変異体(HQLWGSH、配列番号2
1)は、トロンビンの既知の機能に関与するタンパク質
と明らかな配列相同性を持たない。データベースの調査
では、HQLWGSHとの同一のものは導かれなかった
が、レイシュマニア ドノバニ(Leishmania donovani)由
来の多剤耐性P-グリコプロテインは、7つの中に5つ
の同一連続残基を有することが判明した。この調査では
また、すでに述べたQLWGSHの配列も明らかになっ
た。QLWGSH変異体と同一の配列に関するデータベ
ースの調査では、RQLWGSH(配列番号20)が同
じものを持たないことが明らかになった。7つの連続同
一アミノ酸の中の5つを持つ2つの配列が見いだされ
た:それはヒトアデノウイルス由来の初期E2A DN
A 結合タンパク質およびマウスポリオーマウイルス由
来の小T抗原である。
に関する配列相同性の調査では、トロンビンの既知の機
能に関与するタンパク質と配列類似性が無いことが明ら
かとなった。7つの非連続的な同一残基の中の5つを持
つ3つのタンパク質が、データベース調査により見いだ
された:ムス ムスカラス(Mus musculus)由来のパラオ
キソナーゼ、ソルガム ビカラー(Sorghum bicolor)由
来の澱粉シンターゼ(EC2.4.1.11)およびコリストネウラ
フミフェローナ(Choristoneura fumiferona)由来の遺
伝子p74タンパク質である。
ロンビンに結合する能力を特徴とするペプチドの一群を
見いだした。この群には以下のペプチドアフィニティー
リガンドを含む:QLWGSH、RQLWGSH、HQ
LWGSHおよびYFPGPYL(それぞれ配列番号
1、20、21、19)。好適なリガンドはQLWGS
H(配列番号1)およびYFPGPYL(配列番号1
9)である。また出願人は、プロトロンビンおよびトロ
ンビンの精製法も記載し、この方法はタンパク質含有溶
液を、定めた配列のペプチドアフィニティーリガンドを
結合している基質上に通し、そして次にプロトロンビン
またはトロンビンを溶出することを含んで成る。
は、アメリカン ダイアグノスティカ(American Diagno
stica:グリーンウィッチ、コネチカット州)から購入
した。第二抗体結合体であるヤギ抗−マウスIgG-アルカ
リホスファターゼおよび色素基質NBT/BCIPおよびFast R
ed TRは、ピアス化学社(Pierce ChemicalCo.:ロックフ
ォード、イリノイ州)から購入した。ヒトのトロンビン
はエンザイム リサーチ ラボズ(Enzyme Research Lab
s:サウスベンド、イリノイ州)から購入した。Fmocア
ミノ酸は、ノボビオケム(Novobiochem:ラジョラ、カ
リフォルニア州)から購入した。他の全ての化学品は試
薬級以上であった。
わせペプチドライブラリーのスクリーニング(Buettner
ら、1996)は、2.1mm×15cmのカラム内でミクロボア(mic
robore)HPLC(ミクローム バイオリソースイズ:Mic
rome Bioresources、オバーン、カリフォルニア州)で行
った。ペプチドおよび6-merの組み合わせライブラリー
は、Buettnerら(1996)により記載されたように、標準的
なFmoc化学を使用して、4,7,10-トリオキサ-1,13-トリ
デカンジアミン(Totda:アルドリッチ;Aldritch、セント
ルイス、モンタナ州)で修飾したToyopearl AF Chelate
650M(トーソーハース:TosoHaas、モンゴメリービル、ペ
ンシルバニア州)で合成した。ペプチドはギルソン(Gi
lson)AMS 422を使用することにより、ロボットで合成し
た。上記の方法で達成されたペプチドの密度は、典型的
には0.2−0.5ミリモル/g樹脂の範囲であった。
ペプチドをスクリーニングするためには、ペプチド−ペ
プチド相互作用および1つのペプチドにトロンビンが結
合する立体障害の危険性を減少させるために、低いペプ
チド密度が望ましい。これらは許容量および特異性の減
少を生じ得る。そのような望ましい密度は、アフィニテ
ィークロマトグラフィーの通常の技術で実施されている
ような0.05−0.2ミリモル/g樹脂(10−40mg/ml樹脂)の
範囲となるだろう。Totdaリンカー上に合成されたペプ
チド密度を制御するために、Fmoc-L-アラニン対t-Boc-L
-アラニンの変動比率を含む混合物を、Totda-Toyopearl
にカップリングした。以下の混合物を作成した:100% F
moc-L-アラニン;20% Fmoc-L-アラニン/80%t-Boc-L-
アラニン;10% Fmoc-L-アラニン/90%t-Boc-L-アラニ
ン;4% Fmoc-L-アラニン/96%t-Boc-L-アラニン;お
よび1%Fmoc-L-アラニン/99%t-Boc-L-アラニン。全
アミノ酸濃度([Fmoc-L-アラニン]に[t-Boc-L-アラ
ニン]を加える)は、約2.5ミリモル/g樹脂(Totdaの
5倍)で一定に保たれた。当該技術分野で実施されてい
る標準的なFmoc条件を使用して、混合物をカップリング
した後、Fmoc保護基はアルカリにより離脱されるが、ア
ルカリ耐性t-Bocは離脱されなかった。残っているt-Boc
-誘導化L-アラニンは第一アミンを欠き、そしてさらな
るペプチド合成に利用できなかった。次にペプチドは、
Fmoc-誘導化-アミノ酸を使用して樹脂上に合成され、続
いて酸性条件下で脱保護することにより合成した(これ
は残存t-Bocも外した)。バッチ樹脂に関するペプチド
密度は、標準的な手法により乾燥、測定した全アミノ酸
分析により決定した。最適なペプチド密度は、10%Fmoc
-L-アラニン/90%t-Boc-L-アラニンの混合物を用いて
達成され、約0.1−0.2ミリモル/g樹脂の密度を生じ
た。
ペプチドが可溶性の結合リガンドとして必要な時の合成
に使用した。ペプチドを開裂し、そして脱保護し、次に
調製用の逆相HPLCにより精製した。あるいはアフィ
ニティークロマトグラフィーに必要なペプチドの中に
は、N-末端Fmoc基の除去無しで、脱保護そしてRink樹脂
から開裂され、逆相HPLCにより精製され、そして適
当なアフィニティー樹脂にカップリングされたものもあ
る。可溶性ペプチドの純度は、分析用逆相HPLCによ
り評価し、そして分子量はFABマススペクトロメトリ
ーで確認した。
リルアミドゲル電気泳動(SDS-PAGE)を、8%または12%
ポリアクリルアミドゲル(ノベックス:Novex、サンディ
エゴ、カリフォルニア州)で、Laemmli(1970)の手法に
従い行った。ゲルからのタンパク質の転写はTowbinら(1
979)の方法により、未使用の膜結合部位をブロックする
ためにカゼイン(ピアスケミカル社)を使用して行った。
結合した抗体は化学発光物質CSPD(トロピックス:
Tropix、ベッドフォード、マサチューセッツ州)を使用
し、そしてXARフィルム(イーストマンコダック:East
man Kodak、ロチェスター、ニューヨーク州)に暴露し
て検出した。
計、モデルBNAを使用することにより、ベーリングベ
ルケ社(Behringwerke AG)(マールブルグ、独国)から
購入したアッセイキットを用いて行った。
he-Pip-Arg-p-ニトロアラニン・2HCl)(ファルマシア:Pha
rmacia、フランクリン、オハイオ州)を使用して測定し
た。
明細書に編入する)に使用されたものに類似するアッセ
イを、プロトロンビンおよびα-トロンビンの両方に結
合するペプチドを推定するために使用した。簡単に説明
すると、組み合わせペプチドライブラリーを、約0.4ミ
リモル/g樹脂の最終ペプチド密度で、トーソーハース
クロマトグラフィー樹脂、Toyopearl AF Chelate 650M
(Buettnerにより修飾)上に直接合成した。ライブラリー
はFmoc-化学を使用して、20の天然アミノ酸の中の18個
を用いて合成した(システインおよびメチオニンは含ま
なかった)。
平衡化緩衝液(10mM HEPES、pH6.8および0.1M NaCl、0.
1mM EGTAおよび0.1容量/容量% Tween-20)、そして次
に洗浄緩衝液(1M NaClを含む平衡化緩衝液)であっ
た。これに続いて連続的に樹脂を検出系の個々の成分と
接触させた。これらの成分は、すなわちマウスで作成さ
れた抗−ヒトトロンビン抗体、次にアルカリホスファタ
ーゼと結合したヤギ抗−マウスIgG抗体であり、そし
てBCIP/NBT発色系(青)を用いて染色した。第二の接触
は、平衡化緩衝液中の1μM α-トロンビン(全1ナノモ
ル)で開始し、続いて検出系、そしてFast Redによる染
色を上記に概説し、そしてBuettnerら(1996)に詳細にさ
らに記載されているように行った。
ビーズは、0.1%未満でカラム全体に均一に見いだされ
た:10個のビーズが赤く染まった。個々の赤いビーズを
手で単離し、そして不溶性の赤色色素を除去するために
20分間、メタノール中で超音波処理を行った。固定化し
たペプチドをエドマン分解によりシークエンシングし、
そしてそれを表1に与える。曖昧な信号があるサイクル
については、最高の応答を有するアミノ酸を第一ライン
に掲載し、そしてより低い応答のアミノ酸を続くライン
に掲載した。
樹脂の最終置換密度で、Totdaに続いてアラニン残基を
用いて修飾したToyopearl 650 M Chelate樹脂(A-Totda
-Toyopearl)に、直接合成した個々のペプチド配列を使
用して、ミクロボアHPLCに関するカラムクロマトグ
ラフィーの形式で行った。これらの樹脂の接触には、
A)平衡化緩衝液(上記のような)、洗浄緩衝液(上記
のような)、高塩濃度緩衝液(3M NaClを含有する平衡
化緩衝液)、そして溶出緩衝液(2.5%酢酸)のみ;
B)平衡化緩衝液中のヒト血清アルブミン(hSA;0.5m
g)、続いて洗浄、高塩濃度、そして溶出緩衝液、C−
E)平衡化緩衝液中に段階的な精製α-トロンビンの付
加量(50、100および200μg)、続いて洗浄、高塩濃度、
そして溶出緩衝液を含んだ。終点は、トロンビン接触物
中の酸溶出液中の添加量−依存的増加であり、そして定
量は280nm吸収の積算によった。すべてのペプチド樹脂
からの溶出液の積算を、表2に与える。
ビーズに由来する数種の配列が、添加量依存的な様式で
トロンビンに結合した(表2)。溶出は大部分、NaClでは
なく低pH処理を使用することにより行なわれ、結合の
相互作用がヒルジン-誘導化ペプチドよりも明らかに強
いことを示唆していた。トロンビンに結合したこれらの
ペプチドは、QLWGSH(ならびにQの前にさらにR
またはHが挿入された変異体)、PFPYGW(および
すべての変異体、VFPYGW、PFPYAW、VFP
YAW、PFPYVWおよびVFPYVW)、YTPF
AV(しかし第一位でVまたはLをYへ置換する変異体
ではない)、LFAPTL(しかしPFAPTLではな
い)、SVRPFL、FEPANP、GFRKGP(お
よびGFRNGP)、ERPYKG(しかしERPYH
Gではない)およびYFPGPYLであった。PFPY
VWを含有するペプチド樹脂はトロンビンに結合する
が、添加量依存的様式ではなかった(配列番号について
は表2を参照にされたい)。
を、さらなる実験に使用するために選択した。精製α-
トロンビン(50、100および200μg)の結合および溶出プ
ロフィールは、図1に表す。酸溶出液中に、添加量依存
的な増加があった(図1C、DおよびE)。画分は、発
色物質S2238を使用するトロンビン活性のアッセイのた
めに集められた。添加したα-トロンビンエステラーゼ
活性の約64−79%が、酸溶出液のpHを中性に調整した後
に回収された(表3)。より少ない活性量が非結合画分中
(示さず)および3M NaCl溶出液中に溶出した。アルギ
ニンおよびヒスチジンのアミノ末端への点付加で、結合
を強化できた(配列番号20および21)。
9)を、図5に示す精製α-トロンビンおよびhSA
(0.5容量/容量%)の混合物に関する結合および溶出
プロフィールに基づくさらなる実験のために選択した。
酸溶出液中に、添加量依存的な増加があった(図5C、
DおよびE)。
活性化プロトロンビン複合体(PTC)溶出物からのα
-トロンビンの精製 ヒトのプール血漿を、標準的な製造技法によりPTC溶
出物に処理した。簡単に説明すると、DEAE-Sephadex樹
脂を寒冷沈殿の溶出後に加え、そしてゆるく結合したタ
ンパク質を低塩緩衝液を用いて洗い流した。高濃度のNa
Clは、プロトロンビンおよびビタミンK-依存的凝固プロ
テアーゼチモーゲン(VII、IX、X因子、プロテインCお
よびプロテインS)を含むPTCと呼ばれる画分を溶出
した。PTC溶出物の試料を25(重量/重量)%のクエ
ン酸ナトリウムの存在下で4日間、室温で活性化した。
約1.0mlの活性化PTC溶出物を、ペプチド樹脂QLW
GSH-A-Totda-Toyopearlに注入した(図2のA)。カ
ラムは、1.0M NaClを含有する平衡化緩衝液(10mM HEPE
S、pH6.8、1.0mM EGTAおよび0.1(容量/容量)%Tween
-20)で洗浄し、そして次に3.0M NaClを含有する平衡化
緩衝液でさらに洗浄した。酸処理(2.5%酢酸)は、タ
ンパク質をペプチド樹脂から外すために使用した。
性化PTC溶出物からのタンパク質に結合した(図2の
A)。少量のタンパク質が、樹脂に結合し、これはNaCl
または酸処理のいずれかにより放出された。SDS-PAGEお
よびウエスタンブロッティング(図3のAおよびB)に
より、活性化PTC溶出物はカラムを通過することによ
りトロンビンが減った(レーン5、非結合画分を参照に
されたい)。1M NaClおよび2.5%酢酸の両方が、高度
に濃縮されたトロンビンを含んでいた(図3のAおよび
B、レーン6および7)。同量のトロンビンが3M NaCl
で溶出した(示さず)。約42,000の見かけ上の分子量を持
つ第二ポリペプチド(SDS-PAGEの移動度により決定する
ような)は、トロンビンと同時に溶出するが、トロンビ
ンに対する抗体とは反応しなかった。このポリペプチド
のN−末端配列分析は、識別しうる配列を生じなかっ
た。これはQLWGSHがトロンビンに結合し、そして
濃縮することを示唆している。
プロトロンビン複合体(PTC)溶出物からのプロトロ
ンビンの精製 ヒトのプール血漿を、実施例1に示したように標準的な
製造技法によりPTC溶出物を処理した。約1.0mlのP
TC溶出物をペプチド樹脂QLWGSH-A-Totda-Toyo
pearlに注入した(図2のB)。カラムは、1.0M NaClそし
て次に3.0M NaClをを含有する平衡化緩衝液で洗浄し
た。酸処理(2.5%酢酸)はタンパク質をペプチド樹脂
から離すために使用した。
活性化PTC溶出物からのタンパク質に結合した。全タ
ンパク質の大部分(A280による)が、1M NaClにより放
出され(図2のB)、これはSDS-PAGEおよびウエスタン
ブロッティング分析により、プロトロンビンを濃縮した
(図4のAおよびB)。少量のプロトロンビンが3MNaC
lにより放出された(図2のBおよび図4Aおよび
B)。酸溶出は少なくとも3つのポリペプチドを遊離
し、そのいずれもトロンビンに対する抗体とは反応しな
かった。これらの結果は、プロトロンビンがペプチドQ
LWGSHに結合し、そして1M NaCl含有の溶出緩衝液
により、濃縮された純度でペプチドから外されることが
できることを実証した。
る、活性化プロトロンビン複合体(PTC)溶出物から
のα-トロンビンの精製 ヒトのプール血漿を、実施例1に示すように標準的な製
造技法によりPTC溶出物を処理した。PTC溶出物の
試料を50mM CaCl2の存在下で6日間、4℃で活性化し
た。300μgのα-トロンビンでスパイクした約1mlの活
性化PTC溶出物を、ペプチド樹脂YFPGPYL-Tot
da-Toyopearlに注入した(図6)。カラムは、A280がベ
ースラインに戻るまで平衡化緩衝液(10mM HEPES、pH6.
5、10mM CaCl2、500mM NaCl、0.1(容量/容量)%PEG-
400)で洗浄した。次にペプチドに結合したα-トロンビ
ンを放出するために、このペプチドカラムを1mM クエ
ン酸ナトリウム、pH7.0で洗浄した。酸処理(2%酢
酸)は、カラムに未だに結合しているタンパク質を除去
するために、クリーニング工程として使用した。
opearlは、α-トロンビン-スパイク-PTC溶出物から
のタンパク質を結合した。全タンパク質のほとんどが
(A280による)カラムを素通りし、そしてより少量が、
1mM クエン酸ナトリウム、pH7.0により放出された
(図6)。1mM クエン酸ナトリウム、pH7.0により放出
されたタンパク質は、SDS-PAGEの定量的スキャンニング
分析により示されるように、少なくとも72%のトロンビ
ンであった(図7)。他の少ない混入物は分子量がより
高く、そしてトロンビンの分解生成物とは思われない。
酸処理で少量のトロンビンおよび高分子量タンパク質種
を除去した。これらの結果により、活性化セリンプロテ
アーゼトロンビンはYFPGPYLに結合し、そしてペ
プチドから特別な様式で外し、濃縮できることが実証さ
れた。
た組み合わせライブラリーをスクリーニングすることに
より、アフィニティークロマトグラフィーに有用な結合
ペプチドを見いだした。ペプチドリガンドQLWGSH
(配列番号1)を含むアフィニティー樹脂は、タンパク
質の起源に依存してプロトロンビンまたはトロンビンの
いずれかに結合し、そして精製できる。ペプチドリガン
ドYFPGPYL(配列番号19)を含むアフィニティ
ー樹脂は、活性化PTC溶出物からのトロンビンを結合
し、そして精製した。
樹脂への結合および保持は、ヒト血漿画分に混入の可能
性がある包膜化ウイルスを不活性化するために有用な非
-イオン性界面活性剤であるTween-20の存在下で起こっ
た。これはこの樹脂が調製中にプロ(トロンビン)から
ウイルス不活性化界面活性剤を除くためにも有用であ
り、あるいはさらに(プロ)トロンビンをアフィニティ
ー樹脂に結合させながら、ウイルスを不活性化するため
の界面活性剤を用いた(プロ)トロンビンの処理に有用
である。
図し、そして当業者は変更態様を作成するであろうと考
えられる。したがって本発明の範囲は上記の請求項によ
ってのみ限定されることを意図する。
96)。
6(1981)。
84(1994)。
906(1975)。
229:26-32(1971)。
-3598(1977)。
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- (1987)。
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omatog.376:429-435(1986)。
るペプチド 整理番号:9705082 出願日:平成9年6月24日 優先権番号:08/672,805 優先権日:平成8年6月28日 配列の数:21 配列番号1: 配列の長さ:6 配列の型:アミノ酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列番号2: 配列の長さ:6 配列の型:アミノ酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列番号3: 配列の長さ:6 配列の型:アミノ酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列番号4: 配列の長さ:6 配列の型:アミノ酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列番号5: 配列の長さ:6 配列の型:アミノ酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列番号6: 配列の長さ:6 配列の型:アミノ酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列番号7: 配列の長さ:6 配列の型:アミノ酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列番号8: 配列の長さ:6 配列の型:アミノ酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列番号9: 配列の長さ:6 配列の型:アミノ酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列番号10: 配列の長さ:6 配列の型:アミノ酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列番号11: 配列の長さ:6 配列の型:アミノ酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列番号12: 配列の長さ:6 配列の型:アミノ酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列番号13: 配列の長さ:6 配列の型:アミノ酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列番号14: 配列の長さ:6 配列の型:アミノ酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列番号15: 配列の長さ:6 配列の型:アミノ酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列番号16: 配列の長さ:6 配列の型:アミノ酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列番号17: 配列の長さ:6 配列の型:アミノ酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列番号18: 配列の長さ:6 配列の型:アミノ酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列番号19: 配列の長さ:7 配列の型:アミノ酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列: Tyr Phe Pro Gly Pro Tyr Leu 1 5 配列番号20: 配列の長さ:7 配列の型:アミノ酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列: Arg Gln Leu Trp Gly Ser His 1 5 配列番号21: 配列の長さ:7 配列の型:アミノ酸 鎖の数:一本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列: His Gln Leu Trp Gly Ser His 1 5
のクロマトグラフィー分離の溶出プロフィールを表す
(280nmでの吸収)。(配列番号1)A)緩衝液、タンパ
ク質無し;B)0.5mg hSA;C)50μgトロンビン;D)
100μg トロンビン;E)200μg トロンビン。タンパク
質は約17μl/分で10分間添加し、そして次にカラムを平
衡化緩衝液で865μl/分にて、4分間洗浄した。これに
続いて1.0M NaClを含む平衡化緩衝液で5分間、3.0M Na
Clでさらに5分間、そして0.1M でさらに5分間洗浄し
た。タンパク質は2%酢酸を使用して30分から35分の間
に溶出した。
ドQLWGSH-A-Totda-Toyopearlでのクロマトグラ
フィー分離の溶出プロフィールを表す(280nmでの吸
収)。A)活性化PTC溶出物;B)非活性化PTC溶
出物。操作条件は図1に記載の通り。
a-Toyopearlでクロマトグラフィー分離した画分のSDS-P
AGE(8%ポリアクリルアミドゲル電気泳動)の結果を
ウエスタンブロット分析した結果を示す図に代わる写真
である。パネルA:クーマシー−染色ゲル、パネルB:
α-トロンビンに対する抗体を使用したウエスタンブロ
ット。レーン1および9、分子量標準;レーン2、プロ
トロンビン標準;レーン3および8、α-トロンビン標
準;レーン4、活性化PTC溶出物;レーン5、非結合
画分;レーン6、1M NaCl洗浄画分;レーン7、2%酢
酸溶出物。
グラフィー分離したPTC溶出物のSDS-PAGE(8%ポリ
アクリルアミドゲル電気泳動)の結果をウエスタンブロ
ット分析した結果を示す図に代わる写真である。パネル
A:クーマシー−染色ゲル、パネルB:α-トロンビン
に対する抗体を使用したウエスタンブロット。レーン1
および10、分子量標準;レーン2、プロトロンビン標
準;レーン3および9、α-トロンビン標準;レーン
4、PTC溶出物;レーン5、非結合画分;レーン6、
1M NaCl洗浄画分;レーン7、3M NaCl洗浄画分;レー
ン8、2%酢酸溶出物。
列番号19)でクロマトグラフィー分離した溶出プロフ
ィールを表す(280nmでの吸収)。A)緩衝液、タンパク
質無し;B)0.5mg hSA;C)0.5mg hSA+50μgトロン
ビン;D)0.5mg hSA+100μg トロンビン;E)0.5mg
hSA+200μg トロンビン。操作条件は図1に記載の通
り。
-Totda-Toyopearlでクロマトグラフィー分離した溶出プ
ロフィールを表す(280nmでの吸収)。平衡(10mM HEPES
pH6.5、10mM CaCl2、0.1(容量/容量)% PGE-400、50
0mM NaCl)は、0.01mlから18.6ml;1mMクエン酸ナトリ
ウム pH7.0は18.6mlから34.1ml;2%酢酸は34.1mlから
43.4mlである。
ラフィー分離した活性化PTC溶出物のクーマシー−染
色SDS-PAGE(12%ポリアクリルアミドゲル電気泳動)の
結果を示す図に代わる写真である。レーン1、300μgα
-トロンビンでスパイクした、6日目のCaCl2-活性化P
TC溶出物。レーン2および8、分子量標準;レーン
3、プロトロンビン標準(MW〜71,600);レーン4、
非結合画分;レーン5、1mM クエン酸ナトリウム pH7.
0画分;レーン6、2%酢酸画分;レーン7、α-トロン
ビン標準(MW〜37,000)。
Claims (2)
- 【請求項1】 Gln-Leu-Trp-Gly-Ser-His,Arg-Gln-Leu
-Trp-Gly-Ser-His,His-Gln-Leu-Trp-Gly-Ser-Hisおよ
びTyr-Phe-Pro-Gly-Pro-Tyr-Leuから成る群から選択さ
れる特定の配列を有するペプチドを含んで成る組成物。 - 【請求項2】 プロトロンビンおよびトロンビンから成
る群から選択されるタンパク質の精製法であって、タン
パク質が基質に結合するために十分な条件下でタンパク
質を含む水溶液を基質と接触させることを含んで成り、
基質が支持体マトリックスに結合する、Gln-Leu-Trp-Gl
y-Ser-His,Arg-Gln-Leu-Trp-Gly-Ser-His,His-Gln-Le
u-Trp-Gly-Ser-HisおよびTyr-Phe-Pro-Gly-Pro-Tyr-Leu
から成る群から選択される特定の配列のペプチドを含ん
で成る、上記精製法。
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