JPH09248200A - グルコース測定用試薬 - Google Patents
グルコース測定用試薬Info
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- JPH09248200A JPH09248200A JP5611996A JP5611996A JPH09248200A JP H09248200 A JPH09248200 A JP H09248200A JP 5611996 A JP5611996 A JP 5611996A JP 5611996 A JP5611996 A JP 5611996A JP H09248200 A JPH09248200 A JP H09248200A
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- Japan
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- reagent
- glucose
- coenzyme
- mutarotase
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Abstract
(57)【要約】
【課題】 グルコース脱水素酵素を利用したグルコース
の測定において、試薬中の酵素や補酵素を長期間安定な
状態で保存でき、しかも試料を測定する際には反応時の
ｐＨを至適範囲に設定できるグルコース測定用試薬を提
供する。 【解決手段】 ムタロターゼを含みｐＨが７〜９の第１
試薬と、グルコース脱水素酵素と補酵素を含みｐＨが４
〜６の第２試薬とからなるグルコース測定用試薬であっ
て、試料を測定する際の反応ｐＨを６．９〜７．７に設
定する。
の測定において、試薬中の酵素や補酵素を長期間安定な
状態で保存でき、しかも試料を測定する際には反応時の
ｐＨを至適範囲に設定できるグルコース測定用試薬を提
供する。 【解決手段】 ムタロターゼを含みｐＨが７〜９の第１
試薬と、グルコース脱水素酵素と補酵素を含みｐＨが４
〜６の第２試薬とからなるグルコース測定用試薬であっ
て、試料を測定する際の反応ｐＨを６．９〜７．７に設
定する。
Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】本発明はグルコース脱水素酵
素を用いたグルコース測定用試薬に関し、より詳しくは
試薬溶液を長期間安定に保存することができるグルコー
ス測定用試薬に関する。
素を用いたグルコース測定用試薬に関し、より詳しくは
試薬溶液を長期間安定に保存することができるグルコー
ス測定用試薬に関する。
【０００２】
【従来の技術】試料中のグルコースの定量測定におい
て、特異性と感度に優れ、あまり有害な試薬を使用しな
くてすむことから酵素を用いる測定が現在もっとも利用
されている。酵素法の中でもグルコース脱水素酵素を利
用したグルコースの測定は特異性も高く注目されている
測定方法の１つである。これは共役酵素のムタロターゼ
で試料中のグルコースをβ−グルコースへ変旋光させ、
主酵素のグルコース脱水素酵素の触媒下で酸化し、その
際のＮＡＤ→ＮＡＤＨの変化に伴う吸光度の上昇を追跡
する紫外部測定法である。
て、特異性と感度に優れ、あまり有害な試薬を使用しな
くてすむことから酵素を用いる測定が現在もっとも利用
されている。酵素法の中でもグルコース脱水素酵素を利
用したグルコースの測定は特異性も高く注目されている
測定方法の１つである。これは共役酵素のムタロターゼ
で試料中のグルコースをβ−グルコースへ変旋光させ、
主酵素のグルコース脱水素酵素の触媒下で酸化し、その
際のＮＡＤ→ＮＡＤＨの変化に伴う吸光度の上昇を追跡
する紫外部測定法である。
【０００３】近年、検査技術の進歩とともに、検査の自
動化が進み、ほとんどの試料は自動分析装置を利用して
測定するようになってきている。このため試薬形態も従
来の調製が必要な凍結乾燥試薬から、予め調製された試
薬溶液（以下液状試薬と呼ぶ。）での供給が求められて
いる。試薬供給を溶液で行う際に問題になるのが酵素を
長期間安定させることである。
動化が進み、ほとんどの試料は自動分析装置を利用して
測定するようになってきている。このため試薬形態も従
来の調製が必要な凍結乾燥試薬から、予め調製された試
薬溶液（以下液状試薬と呼ぶ。）での供給が求められて
いる。試薬供給を溶液で行う際に問題になるのが酵素を
長期間安定させることである。
【０００４】従来、グルコース脱水素酵素を利用した測
定方法として、Klin.Chem.Klin.Biochem.13.Jahrg.1975
に記載がある。この試薬は、第一試薬にムタロターゼ、
第二試薬にグルコース脱水素酵素、第三試薬に補酵素の
β−ＮＡＤを用いた３試薬系になっている。これは保存
条件をそれぞれに合わすことができるので比較的安定に
供給できるが、試薬構成が３試薬系のために操作が煩雑
になることから自動分析装置に適応しにくい。また、自
動分析装置に適応した２試薬系のものとしてBergmeyer
Methods of Enzymatic Analysis に記載されている試薬
がある。これは、緩衝液としてｐＨ７．６の１２０ｍＭ
リン酸緩衝液を用い、第一試薬にムタロターゼと補酵素
のβ−ＮＡＤを、第二試薬にグルコース脱水素酵素を使
用している。溶液中でのムタロターゼの安定なｐＨは７
〜９であり、補酵素のβ−ＮＡＤの安定なｐＨは酸性で
あり、グルコース脱水素酵素の安定なｐＨは５〜８であ
る。このように安定なｐＨが各々異なるため、第一試薬
および第二試薬ともにｐＨを７．６とした試薬溶液中で
は、第１試薬中のβ−ＮＡＤの有効反応量が著しく低下
することが分かった。このため、溶液として長期間保存
した試薬を用いた場合、試薬中の補酵素が不足して試薬
性能を十分維持できなかった。
定方法として、Klin.Chem.Klin.Biochem.13.Jahrg.1975
に記載がある。この試薬は、第一試薬にムタロターゼ、
第二試薬にグルコース脱水素酵素、第三試薬に補酵素の
β−ＮＡＤを用いた３試薬系になっている。これは保存
条件をそれぞれに合わすことができるので比較的安定に
供給できるが、試薬構成が３試薬系のために操作が煩雑
になることから自動分析装置に適応しにくい。また、自
動分析装置に適応した２試薬系のものとしてBergmeyer
Methods of Enzymatic Analysis に記載されている試薬
がある。これは、緩衝液としてｐＨ７．６の１２０ｍＭ
リン酸緩衝液を用い、第一試薬にムタロターゼと補酵素
のβ−ＮＡＤを、第二試薬にグルコース脱水素酵素を使
用している。溶液中でのムタロターゼの安定なｐＨは７
〜９であり、補酵素のβ−ＮＡＤの安定なｐＨは酸性で
あり、グルコース脱水素酵素の安定なｐＨは５〜８であ
る。このように安定なｐＨが各々異なるため、第一試薬
および第二試薬ともにｐＨを７．６とした試薬溶液中で
は、第１試薬中のβ−ＮＡＤの有効反応量が著しく低下
することが分かった。このため、溶液として長期間保存
した試薬を用いた場合、試薬中の補酵素が不足して試薬
性能を十分維持できなかった。
【０００５】
【発明が解決しようとする課題】従来このような試薬成
分の劣化に対しては劣化量を考慮した試薬成分の添加が
行われてきたが、酵素や補酵素は原料費に大きく影響す
ることから、最小限に抑えて試薬の初期性能を保持させ
ることが強く望まれていた。本発明は上記事情に鑑みて
なされたもので、グルコース脱水素酵素を利用したグル
コースの測定において試薬中の酵素や補酵素を長期間安
定な状態で保存でき、しかも試料を測定する際には反応
時のｐＨを至適範囲に設定できるグルコース測定用試薬
を提供することを目的とする。
分の劣化に対しては劣化量を考慮した試薬成分の添加が
行われてきたが、酵素や補酵素は原料費に大きく影響す
ることから、最小限に抑えて試薬の初期性能を保持させ
ることが強く望まれていた。本発明は上記事情に鑑みて
なされたもので、グルコース脱水素酵素を利用したグル
コースの測定において試薬中の酵素や補酵素を長期間安
定な状態で保存でき、しかも試料を測定する際には反応
時のｐＨを至適範囲に設定できるグルコース測定用試薬
を提供することを目的とする。
【０００６】
【課題を解決するための手段】本発明はグルコース脱水
素酵素を利用して試料中のグルコースを測定する試薬で
あって、ムタロターゼを含みｐＨが７〜９の第一試薬
と、グルコース脱水素酵素と補酵素を含みｐＨが５〜６
の第二試薬とからなるグルコース測定用試薬である。ま
た本発明は試料を測定する際の反応時のｐＨが６．９〜
７．７に設定されてなるグルコース測定用試薬である。
素酵素を利用して試料中のグルコースを測定する試薬で
あって、ムタロターゼを含みｐＨが７〜９の第一試薬
と、グルコース脱水素酵素と補酵素を含みｐＨが５〜６
の第二試薬とからなるグルコース測定用試薬である。ま
た本発明は試料を測定する際の反応時のｐＨが６．９〜
７．７に設定されてなるグルコース測定用試薬である。
【０００７】本発明における第一試薬は、緩衝液とムタ
ロターゼから構成される。ムタロターゼの添加は反応を
スムーズに行わせるためのものであるから、第１試薬の
成分は緩衝液のみであってもよい。緩衝液としては、保
存中の冷温時にはアルカリ側にあり、反応時の加温（３
７℃）によって中性付近にｐＨが変化するような、温度
によるｐＨの変化が大きい緩衝液を使用する。このよう
な緩衝液としては、２５℃前後におけるｐＨが７．０〜
９．０で緩衝能を有するものを使用する。この範囲を越
えると酵素活性は著しく低下する。緩衝液成分として
は、Ｔｒｉｓ, トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタ
ン、Ｂｉｓ−Ｔｒｉｓ, ビス（２−ヒドロキシエチル）
イミノトリス（ヒドロキシメチル）メタン、ＴＡＰＳ,
Ｎ−トリス（ヒドロキシメチル）メチル−３−アミノプ
ロパンスルホン酸、ＴＡＰＳＯ，２−ヒドロキシ−Ｎ−
トリス（ヒドロキシメチル）メチル−３−アミノプロパ
ンスルホン酸、ＴＥＳ，Ｎ−トリス（ヒドロキシメチ
ル）メチル−２−アミノエタンスルホン酸、ＣＡＰＳ,
Ｎ−シクロヘキシル−３−アミノプロパンスルホン酸、
ＣＡＰＳＯ，Ｎ−シクロヘキシル−２−ヒドロキシ−３
−アミノプロパンスルホン酸、ＣＨＥＳ, Ｎ−シクロヘ
キシル−２−アミノエタンスルホン酸等が挙げられる。
緩衝液濃度としては、２０ｍＭ〜１Ｍであることが望ま
しく、第２試薬との組合せにおいて反応ｐＨが６．９〜
７．７の範囲になるような緩衝液濃度を選択する。
ロターゼから構成される。ムタロターゼの添加は反応を
スムーズに行わせるためのものであるから、第１試薬の
成分は緩衝液のみであってもよい。緩衝液としては、保
存中の冷温時にはアルカリ側にあり、反応時の加温（３
７℃）によって中性付近にｐＨが変化するような、温度
によるｐＨの変化が大きい緩衝液を使用する。このよう
な緩衝液としては、２５℃前後におけるｐＨが７．０〜
９．０で緩衝能を有するものを使用する。この範囲を越
えると酵素活性は著しく低下する。緩衝液成分として
は、Ｔｒｉｓ, トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタ
ン、Ｂｉｓ−Ｔｒｉｓ, ビス（２−ヒドロキシエチル）
イミノトリス（ヒドロキシメチル）メタン、ＴＡＰＳ,
Ｎ−トリス（ヒドロキシメチル）メチル−３−アミノプ
ロパンスルホン酸、ＴＡＰＳＯ，２−ヒドロキシ−Ｎ−
トリス（ヒドロキシメチル）メチル−３−アミノプロパ
ンスルホン酸、ＴＥＳ，Ｎ−トリス（ヒドロキシメチ
ル）メチル−２−アミノエタンスルホン酸、ＣＡＰＳ,
Ｎ−シクロヘキシル−３−アミノプロパンスルホン酸、
ＣＡＰＳＯ，Ｎ−シクロヘキシル−２−ヒドロキシ−３
−アミノプロパンスルホン酸、ＣＨＥＳ, Ｎ−シクロヘ
キシル−２−アミノエタンスルホン酸等が挙げられる。
緩衝液濃度としては、２０ｍＭ〜１Ｍであることが望ま
しく、第２試薬との組合せにおいて反応ｐＨが６．９〜
７．７の範囲になるような緩衝液濃度を選択する。
【０００８】本発明における第二試薬は、緩衝液とグル
コース脱水素酵素と補酵素（β−ＮＡＤ）から構成され
る。緩衝液としては、２５℃前後におけるｐＨが４．０
〜６．０であることが好ましい。ｐＨが４以下あると、
第１試薬との組合せから希薄になる緩衝液のｐＨが保存
期間中に変化を起こしやすく、ｐＨ６以上では補酵素の
安定なｐＨからはずれ、保存期間中に有効反応量の減少
が起こるため望ましくない。緩衝液成分としては、クエ
ン酸−クエン酸ナトリウム、クエン酸−リン酸二ナトリ
ウム、クエン酸−リン酸二カリウム、リン酸、コハク
酸、フタル酸などが挙げられる。緩衝液濃度としては、
２０ｍＭ〜１Ｍであることが望ましく、第１試薬の組合
せにおいて反応ｐＨが６．９〜７．７の範囲になるよう
な緩衝液濃度を選択する。
コース脱水素酵素と補酵素（β−ＮＡＤ）から構成され
る。緩衝液としては、２５℃前後におけるｐＨが４．０
〜６．０であることが好ましい。ｐＨが４以下あると、
第１試薬との組合せから希薄になる緩衝液のｐＨが保存
期間中に変化を起こしやすく、ｐＨ６以上では補酵素の
安定なｐＨからはずれ、保存期間中に有効反応量の減少
が起こるため望ましくない。緩衝液成分としては、クエ
ン酸−クエン酸ナトリウム、クエン酸−リン酸二ナトリ
ウム、クエン酸−リン酸二カリウム、リン酸、コハク
酸、フタル酸などが挙げられる。緩衝液濃度としては、
２０ｍＭ〜１Ｍであることが望ましく、第１試薬の組合
せにおいて反応ｐＨが６．９〜７．７の範囲になるよう
な緩衝液濃度を選択する。
【０００９】本発明における試料の測定は、自動分析装
置及び恒温装置を用い、３７℃前後の温度で行う。ま
た、試料を測定する際の反応条件として、３７℃におけ
るｐＨが６．９〜７．７であることが好ましい。前記範
囲を越えると反応時の酵素活性は著しく損なわれ、十分
な反応が行えない。このような第１試薬（Ｒ１）と第２
試薬（Ｒ２）との混合比率としては、Ｒ１：Ｒ２＝１〜
７：１〜３が好ましい。よって範囲内に調製されるよう
に第一試薬および第二試薬の各緩衝液の濃度、種類およ
びｐＨを選択する。
置及び恒温装置を用い、３７℃前後の温度で行う。ま
た、試料を測定する際の反応条件として、３７℃におけ
るｐＨが６．９〜７．７であることが好ましい。前記範
囲を越えると反応時の酵素活性は著しく損なわれ、十分
な反応が行えない。このような第１試薬（Ｒ１）と第２
試薬（Ｒ２）との混合比率としては、Ｒ１：Ｒ２＝１〜
７：１〜３が好ましい。よって範囲内に調製されるよう
に第一試薬および第二試薬の各緩衝液の濃度、種類およ
びｐＨを選択する。
【００１０】
【発明の実施の形態】以下実施例により本発明をさらに
詳細に述べる。 〔実施例１〕ｐＨを５〜９に調製した０．１ＭのＴｒｉ
ｓ−リン酸緩衝液を用いて、３単位／ｍｌになるようム
タロターゼ（Hog Kidney由来、天野製薬社製）を添加し
た。各調製液を２５℃で１週間保存した後の酵素活性値
を分光光度計（日立Ｕ−３２１０）で測定した。この結
果を図１に示す。なお図中の横軸は調製液のｐＨを示
し、縦軸は１週間後の残存活性値を％で示したものであ
る。
詳細に述べる。 〔実施例１〕ｐＨを５〜９に調製した０．１ＭのＴｒｉ
ｓ−リン酸緩衝液を用いて、３単位／ｍｌになるようム
タロターゼ（Hog Kidney由来、天野製薬社製）を添加し
た。各調製液を２５℃で１週間保存した後の酵素活性値
を分光光度計（日立Ｕ−３２１０）で測定した。この結
果を図１に示す。なお図中の横軸は調製液のｐＨを示
し、縦軸は１週間後の残存活性値を％で示したものであ
る。
【００１１】この結果よりムタロターゼはｐＨ７より酸
性側において酵素活性値の著しい低下が認められる。こ
れより、ムタロターゼの保存条件はｐＨ７以上のアルカ
リ側が好ましいと言える。
性側において酵素活性値の著しい低下が認められる。こ
れより、ムタロターゼの保存条件はｐＨ７以上のアルカ
リ側が好ましいと言える。
【００１２】〔実施例２〕ｐＨを４〜８に調製した０．
１Ｍのクエン酸緩衝液を用いて、３０単位／ｍｌになる
ようグルコース脱水素酵素（Bacillus sp.由来、天野製
薬社製）を添加した。各調製液を４０℃で２週間保存し
た後の酵素活性値を分光光度計（日立Ｕ−３２１０）で
測定した。この結果を図１に示す。なお図中の横軸は調
製液のｐＨを示し、縦軸は２週間後の残存酵素活性値を
％で示したものである。
１Ｍのクエン酸緩衝液を用いて、３０単位／ｍｌになる
ようグルコース脱水素酵素（Bacillus sp.由来、天野製
薬社製）を添加した。各調製液を４０℃で２週間保存し
た後の酵素活性値を分光光度計（日立Ｕ−３２１０）で
測定した。この結果を図１に示す。なお図中の横軸は調
製液のｐＨを示し、縦軸は２週間後の残存酵素活性値を
％で示したものである。
【００１３】この結果よりグルコース脱水素酵素はｐＨ
７以上のアルカリ側では酵素活性値が低下する傾向が認
められる。これより、グルコース脱水素酵素の保存条件
はｐＨ７以下の弱酸性側が好ましいと言える。
７以上のアルカリ側では酵素活性値が低下する傾向が認
められる。これより、グルコース脱水素酵素の保存条件
はｐＨ７以下の弱酸性側が好ましいと言える。
【００１４】〔実施例３〕ｐＨを５〜８に調製した０．
１Ｍのクエン酸緩衝液を用いて、１０ｍｇ／ｍｌになる
ようβ−ＮＡＤ（ニコチンアミドアデニシンジヌレオチ
ド酸化型）を添加した。各調製液を４０℃で２週間保存
した後のβ ＮＡＤ量を分光光度計（日立Ｕ−３２１
０）で測定した。この結果を図１に示す。なお図中の横
軸は調製液のｐＨを示し、縦軸は２週間後の残存量を％
で示したものである。
１Ｍのクエン酸緩衝液を用いて、１０ｍｇ／ｍｌになる
ようβ−ＮＡＤ（ニコチンアミドアデニシンジヌレオチ
ド酸化型）を添加した。各調製液を４０℃で２週間保存
した後のβ ＮＡＤ量を分光光度計（日立Ｕ−３２１
０）で測定した。この結果を図１に示す。なお図中の横
軸は調製液のｐＨを示し、縦軸は２週間後の残存量を％
で示したものである。
【００１５】この結果より補酵素のβ−ＮＡＤはｐＨ６
よりアルカリ側において補酵素量の著しい低下が認めら
れる。これより補酵素であるβ−ＮＡＤの保存条件はｐ
Ｈ６以下の酸性側が好ましいと言える。
よりアルカリ側において補酵素量の著しい低下が認めら
れる。これより補酵素であるβ−ＮＡＤの保存条件はｐ
Ｈ６以下の酸性側が好ましいと言える。
【００１６】〔実施例４〕反応ｐＨの至適範囲の検討を
おこなった。ｐＨを６．８、６．９、７．１、７．７、
７．９に調製した０．１ＭのＴｒｉｓ−ＨＣＬ緩衝液を
用いて、２単位／ｍｌのムタロターゼ（Hog Kidney由
来、天野製薬社製）、１０単位／ｍｌのグルコース脱水
素酵素（Bacillus sp.由来、天野製薬社製）、５ｇ／ｍ
ｌのβ−ＮＡＤ（ニコチンアミドアデニシンジヌレオチ
ド酸化型）を調製した。この試薬成分に０．０００５ｇ
／ｍｌの防腐剤、０．００１ｇ／ｍｌの非イオン界面活
性剤を添加して測定試薬とした。測定試料としてグルコ
ース１２００ｍｇ／ｄｌを含む溶液を生理食塩水を用い
て５段階に稀釈したものを用意し、これと前記試薬を３
７℃で１０分間反応させ、３４０ｎｍにおける吸光度を
測定した。この結果を図２に示す。なお、図中の横軸は
試料の稀釈倍率を示し、縦軸は反応後の吸光度(Abs) を
示す。
おこなった。ｐＨを６．８、６．９、７．１、７．７、
７．９に調製した０．１ＭのＴｒｉｓ−ＨＣＬ緩衝液を
用いて、２単位／ｍｌのムタロターゼ（Hog Kidney由
来、天野製薬社製）、１０単位／ｍｌのグルコース脱水
素酵素（Bacillus sp.由来、天野製薬社製）、５ｇ／ｍ
ｌのβ−ＮＡＤ（ニコチンアミドアデニシンジヌレオチ
ド酸化型）を調製した。この試薬成分に０．０００５ｇ
／ｍｌの防腐剤、０．００１ｇ／ｍｌの非イオン界面活
性剤を添加して測定試薬とした。測定試料としてグルコ
ース１２００ｍｇ／ｄｌを含む溶液を生理食塩水を用い
て５段階に稀釈したものを用意し、これと前記試薬を３
７℃で１０分間反応させ、３４０ｎｍにおける吸光度を
測定した。この結果を図２に示す。なお、図中の横軸は
試料の稀釈倍率を示し、縦軸は反応後の吸光度(Abs) を
示す。
【００１７】実施例４より反応時のｐＨが６．９〜７．
７の範囲においては比較的安定な感度で測定が行えてい
る。この傾向は血清中のグルコース濃度が高くなるにつ
れ、顕著に現れてくることがわかる。
７の範囲においては比較的安定な感度で測定が行えてい
る。この傾向は血清中のグルコース濃度が高くなるにつ
れ、顕著に現れてくることがわかる。
【００１８】
【発明の効果】本発明のグルコース測定用試薬を用いる
と、液状試薬中の酵素や補酵素の酵素活性は長期間安定
に維持される。そして試料を測定する際の反応ｐＨも至
適範囲に調製されているため、精度の良い測定が行える
ようになる。また、試薬が２薬系の液状試薬であるた
め、定量や溶解などの手間もなく取り扱いが非常に簡便
であり、自動分析装置などにもそのまま利用できるなど
の利点がある。
と、液状試薬中の酵素や補酵素の酵素活性は長期間安定
に維持される。そして試料を測定する際の反応ｐＨも至
適範囲に調製されているため、精度の良い測定が行える
ようになる。また、試薬が２薬系の液状試薬であるた
め、定量や溶解などの手間もなく取り扱いが非常に簡便
であり、自動分析装置などにもそのまま利用できるなど
の利点がある。
【図１】本発明のグルコース測定用試薬中の各酵素の保
存ｐＨと酵素活性の残量の関係を示す。
存ｐＨと酵素活性の残量の関係を示す。
【図２】本発明のグルコース測定用試薬の稀釈倍率と反
応時の吸光度の関係を示す。
応時の吸光度の関係を示す。
Claims (2)
- 【請求項１】 グルコース脱水素酵素を利用して試料中
のグルコースを測定る試薬であって、ムタロターゼを含
みｐＨが７〜９の第一試薬と、グルコース脱水素酵素と
補酵素を含みｐＨが４〜６の第二試薬とからなるグルコ
ース測定用試薬。 - 【請求項２】 試料を測定する際の反応時のｐＨが６．
９〜７．７に設定されてなる請求項１記載のグルコース
測定用試薬。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP5611996A JPH09248200A (ja) | 1996-03-13 | 1996-03-13 | グルコース測定用試薬 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP5611996A JPH09248200A (ja) | 1996-03-13 | 1996-03-13 | グルコース測定用試薬 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH09248200A true JPH09248200A (ja) | 1997-09-22 |
Family
ID=13018193
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP5611996A Pending JPH09248200A (ja) | 1996-03-13 | 1996-03-13 | グルコース測定用試薬 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH09248200A (ja) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2005532796A (ja) * | 2002-05-16 | 2005-11-04 | エフ ホフマン−ラ ロッシュ アクチェン ゲゼルシャフト | 再生不能の酵素−補酵素複合体を有する方法および試薬システム |
| JP2012231737A (ja) * | 2011-04-28 | 2012-11-29 | Arkray Inc | 乳酸脱水素酵素測定用試験片 |
| CN103088108A (zh) * | 2012-11-16 | 2013-05-08 | 李立和 | 葡萄糖脱氢酶法检测葡萄糖的试剂盒及制备方法 |
-
1996
- 1996-03-13 JP JP5611996A patent/JPH09248200A/ja active Pending
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2005532796A (ja) * | 2002-05-16 | 2005-11-04 | エフ ホフマン−ラ ロッシュ アクチェン ゲゼルシャフト | 再生不能の酵素−補酵素複合体を有する方法および試薬システム |
| US7341830B2 (en) | 2002-05-16 | 2008-03-11 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | Method and reagent system having a non-regenerative enzyme-coenzyme complex |
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