JPH0920682A - ベクターとして鳥類ヘルペスウイルスを用いた鳥類用組換え生ワクチン - Google Patents
ベクターとして鳥類ヘルペスウイルスを用いた鳥類用組換え生ワクチンInfo
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Abstract
た鳥類用組換え生ワクチン 【解決手段】 CMV 即時初期プロモータの制御下にORF
UL55のATG とUL とそれに隣接する繰り返し領域の接合
点との間の領域に挿入された、鳥類の病原物質の抗原ポ
リペプチドをコードし且つ発現する塩基配列を少なくと
も1つ含む鳥類ヘルペスウィルスをベクターとして含む
鳥類用組換え生ワクチンと、異なる配列が挿入されたワ
クチンを少なくとも2種類含む多価ワクチン製剤。ベク
ターはマレック病ウィルス(MDV およびHVT)、感染性喉
頭器官炎ウィルスILTVおよびアヒルのヘルペスウィルス
からなる群の中から選択するのが好ましい。
Description
よって鳥類の病原物質の抗原ポリペプチドをコードし且
つ発現する少なくとも1つの塩基配列をワクチンを接種
した動物が病原物質から効果的に保護される免疫を獲得
するような条件で挿入した、鳥類ヘルペスウィルス、特
にマレック病(Marek's disease) ウィルス(MDV) 、特に
HVTウィルス(七面鳥のヘルペスウィルス)をベースと
した鳥類用の組換え生ワクチンに関するものである。本
発明は感染性喉頭器官炎ウィルス(ILTV)およびアヒルの
ヘルペスウィルスにも適用される。
ス(MDV) 、ニューカッスル病ウィルス(NDV) 、感染性喉
頭器官炎ウィルス(ILTV)、ガンボロ病ウィルス(感染性
滑液嚢炎ウィルスIBDV) 、感染性気管支炎ウィルス(IBV
)および鳥類の貧血症ウィルス(CAV) を含む病原性ウィ
ルスに対して鳥類に予防接種を行うための鳥類の組換え
生ベクターは既にいくつか提案されている。そのために
用いられる生ベクターはアヴィポックスウィルス(avipo
x viruses)特に鶏痘ウィルス(欧州特許第0,517,292
号;H. G. Heine 達、 Arch. Virol.1993. 131. 277-29
2;D.B. Boyle達, Veterinary Microbiology 1994. 41.
173-181 ;C.D. Bayliss達, Arch. Virol. 1991. 120.
193-205)、血清型が2および3のマレック病ウィルス
(HVT)(WO-A-87 04463 号;WO-A-89 01040 号;WO-A-93-
25665 号;欧州特許第 513,921号; J. McMillen, Poul
try Condemnation Meeting, 1994年10月, 359-363 ;P.
J.A. Sondermeijer 達, Vaccine 1993. 11. 349-357 ;
R.W. Morgan 達, Avian Diseases 1992. 36. 858-870、
1993, 37, 1032-1040)またはILTVおよび鳥類のアデノ
ウィルスである。
合、特定の事例でかなりの防御効果が示されることが稀
にはあるが、これらの組換えウィルスによって誘導され
る防御レベルは変化し易く、一般には弱いか、部分的な
ものである。鳥類用組み換え生ワクチンによる予防の中
で最も困難なものはガンボロ病ウィルスまたはIBDVウィ
ルスである。すなわちこれらの病気に対しては従来の不
活化または弱毒化生ワクチンが効果的であるが、組換え
生ワクチンで適当な効果を示すものはない。カンボロ病
ウィルスのゲノムは二重鎖RNAで構成されており、そ
の最大断片(断片A)は115kDaのポリプロテインをコー
ドする。このポリプロテインはさらに3つの蛋白質VP2
(41kDa)、VP4(28kDa)、VP3(32kDa)に分裂する。VP4 は1
15kDaのポリプロテインの成熟に関与するプロテアーゼ
であると言われている。VP2 とVP4 との間の分裂箇所に
ついては大体の位置しか分かっていない(M. Jagadish,
J. Virol. 1988, 62, 1084-1087)。蛋白質VP2 は中和抗
体を出す免疫源であり、ガンボロ病に対する防御を誘導
する。
を各種の生ベクターに挿入する方法は既に提案されてい
る:欧州特許第 517,292号(VP2 またはポリプロテイン
をコードする配列をアヴィポックスに挿入);上記のC.D.
Bayliss 1991, H.-G. Heine1993およびD.B. Boyle 199
4 (VP2 を鶏痘に)。 マレック病ウィルスも既に提案されている:WO-A-90 02
802 およびWO-A-90/02803 号(gC、TK、PR1,PR2 の各種
挿入部位)、フランス国特許出願第90/03105号(PR2) お
よび第90/11146号 (US3)および WO-A-87/04463号および
WO-A-89/01040号(BamHI#16および#19)および WO-A-93
/25655(US3) 。 R.J. Isfort 達(Virology 1994. 203. 125-133) は HVT
ゲノムにレトロウィルスを組み込むための組み込み部位
の数を決定しており、これらの部位はBamHI 制限酵素断
片F、AおよびI上に位置している。
従来技術の各種構成で利用されている。すなわちPRV gX
プロモータ、HCMV IE (ヒトのCMV 即時初期)プロモー
タ、ヘルペス単純ウィルスのα−4プロモータ、FPV P.
E/L プロモータ(鶏痘プロモータ)(H.Heine et al., Ar
ch. Virol. 1993. 131. 277-292)、RSV(Rous sarcomavi
rus)のLTR 配列に由来する痘疹ウィルスの P7.5 (C. Ba
yliss et al., Arch.Virol. 1991. 120. 193-205)およ
びP11 (D. Boyle et al., Vet. Microb. 1994.41. 173-
181)プロモータ、SV40の初期プロモータ、さらにMDV ま
たはHVT プロモータ、例えばgB、gC、TK、RR2 などの遺
伝子のプロモータがあるが、一貫したパターンは現れて
いない。特にHVT における構成の場合。いくつかのプロ
モータ配列は組換えHVT またはMDV ベクターの複製を禁
止する(D. R. Marshall et al.,J. Vir. Meth. 1992. 4
0. 195-204 およびVirology1993. 195. 638-648) 。上
記プロモータのいくつか、例えばSV40、LTR RSV および
PRV gXは、マレックウィルスのいくつかの遺伝子本来の
プロモータ、特に血清タイプ3と同様に何らかの効力を
示す。
ベクターに鳥類の免疫原、特にIBDVの蛋白質VP2 をコー
ドする配列を少なくとも1つ挿入したものをベースとす
る組換え生ワクチンを開発することにある。VP2 をコー
ドする配列を組み込んだワクチンは動物をガンボロ病か
ら十分に防御することができ、死亡およびファブリシウ
ス滑液嚢炎から守ることができる。
ーとして鳥類の病原物質の抗原ポリペプチドをコードし
且つ発現する塩基配列を少なくとも1つ含む鳥類ヘルペ
スウィルスを含む鳥類用組換え生ワクチンであり、上記
塩基配列は、即時初期 CMVプロモータの制御下に、ORF
UL55のATG と隣接する繰り返し領域を有するUL の接合
点との間の領域に挿入されている。この挿入領域は HVT
では Bam HI 断片Iに相当し、MDV ではBamHI 断片K+
Hに相当する。このことはブックマスター(A. E. Buckm
aster)の J. Gen. Virol.1988. 69. 2033-2042)に記載
されている。
レック病ウィルス、特に HVT、感染性喉頭器官炎ウィル
スILTV、アヒルのヘルペスウィルスであるのが好まし
く、マレック病ウィルス、特に HVTウィルスが好まし
い。HVT のBamHI 制限断片Iは複数の ORFと3個の遺伝
子間領域とを有し、さらに本発明の挿入領域として複数
の好ましい挿入領域、好ましくは3つの遺伝子間領域
1、2および3と ORF UL55 とを含んでいる。挿入領域
への挿入とは、欠失を伴わない挿入、遺伝子間領域の複
数の塩基を欠失させて行う挿入、ORF を完全または部分
的に欠失させて行う挿入あるいは欠失させずに行う挿入
を意味する。CMV 即時初期プロモータ(CMV immediate e
arly promoter, IE)とは例に挙げた断片およびそれと同
じプロモータ活性を保持するサブ断片を意味する。CMV
IEプロモータはヒトのプロモータ(HCMV IE) またはネズ
ミのプロモータ(MCMV IE) あるいは由来の異なるCMV IE
プロモータ、例えばラットまたはモルモット由来のプロ
モータにすることができる。
塩基配列は鳥類の病原物質の抗原ポリペプチドすなわち
本発明で実現される好適な条件のもとで発現された時
に、予防接種をした動物が病原物質から効果的に防御さ
れるような免疫を獲得できるようなポリペプチドをコー
ドする任意の配列にすることができる。従って、所定の
病気の対象となる抗原をコードする塩基配列を本発明の
条件下で挿入することができる。本発明の組換え体は、
卵の状態での予防接種や生後1日目のヒナの予防接種、
さらに大きなヒナや成鳥の予防接種で使用することがで
きる。本発明は特にIBDVウィルスのVP2 ポリペプチドを
適切にコードする塩基配列の挿入に使用することができ
る。これによって得られる組換え生ワクチンはマレック
病に対する防御に加えてガンボロ病に対して完全に防御
できる。必要な場合には、別のIBDV抗原、例えばVP3 や
ポリプロテインVP2 +VP4 +VP3 などをコードする配列
を挿入することもできるが、これらの挿入は好ましくな
い。
の投与量当り10〜104pfuの濃度で与えるのが好ましい。
本発明の他の好ましいケースはマレック病ウィルスの抗
原をコードする塩基配列、特にgB、gC、gDおよびgH+gL
遺伝子(PCT特許公開第90/02803号)、ニューカッス
ル病ウィルスの抗原をコードする塩基配列、特にFおよ
びHN遺伝子、感染性気管支炎ウィルス(IBV) の抗原をコ
ードする塩基配列、特にSおよびM遺伝子 (M. Binns e
t al., J. Gen. Virol. 1985. 66. 719-726; M. Bours
nell etal., Virus Research 1984. 1. 303-313) 、鳥
類の貧血症ウィルス(CAV) の抗原をコードする塩基配
列、特にVP1(52kDa)+VP2(24kD) (N.H.M.Noteborn et a
l.,J. Virol. 1991. 65. 3131-3139)および感染性喉頭
器官炎ウィルス(ILTV)の抗原をコードする塩基配列、特
にgB(PCT特許公開第90/02802号)、gC、gDおよびgH
+gLを挿入したものである。
のと同じにするのが好ましい。本発明の有利な展開は、
CMV IEプロモータを別のプロモータにヘッドツーテイル
(Head-to-tail)の向きで連結し、2つの塩基配列は一方
はCMV IEのプロモータの制御下に挿入し、もう一方は該
プロモータに連結されたプロモータの制御下に挿入じき
るようにすることである。この構成はCMV IEプロモー
タ、特にそのエンハンサー部分によって連結されたプロ
モータによって誘導される転写が活性化されるという点
で特筆すべきものである。連結されるプロモータとして
好ましいものはマレック1.8 RNA プロモータであり、そ
の転写活性はこれらの条件下で4.4倍になることが分か
っている。本発明の典型的なケースは、CMV IEの制御下
にIBDV VP2をコードする配列を含み、別のプロモータの
制御下にもう1つの鳥類疾患の抗原、特に上記のものを
コードする塩基配列を含むワクチンである。
ーテイルの向きに並べることも可能である。特に、マレ
ック病、ニューカッスル病、感染性喉頭器官炎、感染性
気管支炎および鳥類の貧血症に対するワクチンについて
は、1.8RNAプロモータをCMV IEプロモータの代わりに単
独で使用することもできる。本発明の他の対象は、異な
る病原体に由来する異なる配列を挿入された上記定義の
組換え生ワクチンを少なくとも2種含む、混合物または
混合用の多価ワクチン製剤にある。本発明は、さらに、
上記定義の組換え生ワクチンまたは多価ワクチン製剤を
投与する鳥類の予防接種法に関するものである。本発明
は特に卵の状態での予防接種、生後1日またはそれ以上
のヒナおよび成鳥の予防接種を行うための方法を対象に
する。
げて本発明をより詳細に説明する。図は遺伝子間部位で
の構成図と配列のリストである。 遺伝子間部位での構成用配列リスト 配列 NO.1 HVTBam HI 断片Iの配列 配列 NO.2 オリゴヌクレオチドEL102 配列 NO.3 オリゴヌクレオチドEL161 配列 NO.4 オリゴヌクレオチドEL147 配列 NO.5 オリゴヌクレオチドEL162 配列 NO.6 オリゴヌクレオチドEL154 配列 NO.7 オリゴヌクレオチドEL163 配列 NO.8 オリゴヌクレオチドEL164 配列 NO.9 オリゴヌクレオチドEL165 配列 NO. 10 オリゴヌクレオチドEL132
brook)達の Molecular Cloning:A Laboratory Manual.
第2版、Cold Spring Harbor Laboratory. Cold Sprin
gHarbor. New York. 1989) に記載の分子生物学の標準
的手法で行った。本発明で使用した全ての制限酵素断片
はジェネクリーン(Geneclean) キット (BIO 101 Inc. L
a Jolla, CA)を用いて単離した。親ウィルスとして使用
したウィルスは七面鳥ヘルペスウィルス(HVT) のFC126
株で、地域家禽研究所 (Regional Poultry Research La
boratory USDA, EastLansing, Michigan)のウィッタ
博士が23週齢の七面鳥群から単離されたものである(Wri
tter R. L. et. al., Am. J. Vet. Res. 1970.31. 525-
538)。このウィルスの培養条件はフランス国特許出願第
90/03105号に記載のものを用いた。
染14日後に血液の全量を注射器を用いて抗凝結物質(10
0IU/mlのヘパリン溶液)上に回収した。次いでこの血液
を室温で15分間、30gで遠心分離した。軟膜と供に血漿
を除去し、無菌のPBS を用いて最終量が10mlとなるよう
に希釈した。150 gで15分間遠心分離した後、細胞ペレ
ットを2%の牛胎児血清(FCS) を含む199 培地(ギブコ
−BRL カタログ番号042-01183M)2mlに再懸濁した。次
に、感染させたリンパ球の全DNAをR. Morgan 達の方
法 (Avian Diseases1990. 34. 345-351)に従って抽出し
た。これはPCR 試験の鋳型として直接使用することがで
きる。MDV ウィルスのゲノム断片をクローニングするた
めに、RB1B株をCEF 上で培養し、リー(Lee Y.)達の方法
(J. Gen. Virol. 1980. 51. 245-253)に従って精製した
ウィルス粒からウィルスのDNAを調製した。
ムDNAの調製 米国タイプカルチャーコレクション(Type Culture Coll
ection, Rockville,Maryland, USA)からMCMVウィルス
のSmith 株を入手した(ATCC No. VR-194) 。このウィル
スをBalb/Cマウスの胎児細胞上で培養し、このウィルス
のウィルスDNAをエベリング達(Ebeling A. et al.,
J. Virol. 1983. 47. 421-433)の方法で精製した。
ムDNAの調製 トランスフェクション試験に用いるウィルスDNAはモ
ルガン(R.Morgan)達のAvian Diseases. 1990. 34. 345-
351 に記載の方法でHVT ウィルスのFC126 株に感染させ
た二次培養CEC(CEC II) から調製した。
arashi T. et al., J.Gen. Virol. 1989. 70. 1789-180
4)を Genecleanを用いて単離し、ベクターpBS-SK+ のBa
mHI 部位にクローニングしてプラスミドpEL037を作製し
た。この断片の配列の全体(5838bp)H 確定している(図
1〜4、配列 NO.1)。この配列では6個のオープンリ
ーディングフレーム(ORF) が同定されている。これらの
ORF によってコードされる可能性のある蛋白質を研究し
た結果、これらの蛋白質のいくつかが他のαヘルペスウ
ィルス内に存在するORF によってコードされる蛋白質と
の間に相同性を示すことが明らかになった。第1番目の
ORF (ORF1) (配列 NO.1の676 〜1209の位置) は HSV-1
UL55 のORF 、EHV-1 遺伝子4のORF およびVZV 遺伝子
5のORF との間に相同性を示し、178 アミノ酸(aa)の理
論上の蛋白質HVT UL55をコードする。 ORF2 は配列 NO.
1の1941〜1387の位置にあって ORF EHV-1遺伝子3によ
ってコードされる蛋白質と相同な185aa の蛋白質をコー
ドする。 ORF3は不完全である。これは配列 NO.1の58
38〜3573の位置にあってMDV の ORF21との間に相同性を
示す(Ross No. et al. Virus Genes. 1993. 7. 33-51)
。この配列で同定される他3つの ORFすなわち ORF4
(1403 〜1957まで)(185aa の蛋白質)、ORF5(3081〜22
87まで)(265aa の蛋白質)およびORF6(不完全;479 〜
1まで)は、配列ライブラリー中に相同なものを持たな
い。HVT ウィルスのBam HI断片Iのゲノムは外部遺伝子
の発現のためのカセットの挿入部位として使用可能な遺
伝子間領域が3箇所存在する構成をしている。
L55 とORF HVT 遺伝子3との間に存在する。第2の遺伝
子間領域(遺伝子間領域2)はORF HVT 遺伝子3と 265
-aaORF との間に存在する。第3の遺伝子間領域(遺伝
子間領域3)は265-aaORF とORF21 との間に存在する。
これら3つの領域は、得られた組換え HVTウィルスのin
vivo での複製に影響を与えずに、発現カセットの挿入
のために使用することができる。以下、この遺伝子間領
域1、2および3のためのドナープラスミドの作製例を
説明する。
2672-bp と2163-bp のBamHI-EcoRI 断片を単離した。こ
れらの断片を予めBamHI とEcoRI で処理したベクターpB
S-SK+ に導入して 5167bp のプラスミド pEL039 と、61
04bpのプラスミド pEL040 とをそれぞれ得た。プラスミ
ドpEL039(図5)をBamHI およびPstIで処理して997bp
のBamHI-PstI断片(断片A)を得た。下記のオリゴヌク
レオチドおよび鋳型pEL039を用いてPCRにより420-bp
の断片を作製した: EL102 (配列 NO.2) 5'CATTATAAGACCAACGTGCGAGTC
3' EL161 (配列 NO.3) 5'GTTCACGTCGACAATTATTTTATTTA
ATAAC 3' この断片を PstI と SalI とで処理して250-bpのPstI-S
alI 断片(断片B)を単離した。断片AおよびBを予め
BamHI とSalIとで処理したベクターpBSII-SK+(ストラ
タジーン社)に導入して4160-bp のプラスミドpEL077
(図6)を得た。プラスミド pEL039 をBstBI およびSc
aIで処理して(ブラントエンドを有する)475-bpのBstB
I-ScaI断片(断片C)を単離した。
用いて715-bpのPCR断片を作製する: EL147 (配列 NO.4) 5'AAGATAATGGGCTCCCGCTGTTC 3' EL162 (配列 NO.5) 5' TAATTGTCGACCCCGGGGAATTCGTTTAATGTTAGTTTATTC 3' この断片をBstBI とSal I とで処理して465-bpのBstBI-
SalI断片(断片D)を単離した。断片Cおよび断片Dを
予めApaIで処理してクレノーポリメラーゼで修復した
後、SalIで処理したプラスミッドpEL077に導入して5082
-bp のプラスミドpEL079(図7)を得た。このプラスミ
ドは遺伝子間部位1にEcoRI-SmaI-SalI ポリリンカーを
含んでいる。
理して715-bpのBstBI-PstI断片(断片A)を単離した。
下記オリゴヌクレオチドと鋳型pEL039を用いてPCRを
行って500-bpのPCR断片を作製した: EL154 (配列 NO.6) 5'GAAATGCAAACTAACATTATTGTC
3' EL163 (配列 NO.7) 5'GTGTAAATAGTCGACAATATAGATAA
CGGGC 3' この断片をBstBI とSalIとで処理し、430-bpのBstBI-Sa
lI断片(断片B)を単離した。断片AとBを予めPstIと
SalIとで処理したベクターpBSII-SK+ に導入して4081-b
p のプラスミドpBL076(図8)を得た。
用いて565-bpのPCR断片を作製した: EL164 (配列 NO.8) 5'CTATATTGTCGACCCCGGGGAATTCATCGACATGATTAAATAC 3' EL165 (配列 NO.9) 5' CAATGAAGAAATATTTTCTTTGTTCCTTGAAATGC 3' この断片をSalIおよびSspIとで処理して535-bpのSalI-S
spI 断片を単離した。この断片を、あらかじめApaIで処
理してクレノーポリメラーゼで修復後にSalIで処理した
プラスミドpEL076に導入して、4598-bp のプラスミドpE
L078(図9)を作製した。このプラスミドは、遺伝子間
領域2にEcoRI-SmaI-SalI ポリリンカーを含んでいる。
して1468-bp のNcoI-SphI 断片を単離した。この断片を
予めNcoIとSphIで処理したプラスミドpUC BM20(ベーリ
ンガーマンハイム、カタログ番号1219235 )に導入して
4182-bp のプラスミドpEL054(図10)を作製した。プラ
スミドpEL040をEcoRI およびSphIで処理して614-bpのEc
oRI-SphI断片を単離した。この断片を予めEcoRI とSphI
とで処理したプラスミドpUC BM20に導入して3263-bp の
プラスミド pEL055 (図11)を得た。プラスミド pEL05
5 をEcoRI で処理し、クレノーポリメラーゼを用いて修
復し、それをつなぎ、HindIII で処理し、クレノーポリ
メラーゼで修復し、最後にそれをつないで3279-bp のプ
ラスミドpEL062(図12)を得た。プラスミドpEL054をNc
oIとSalIとで処理して1492-bp のNcoI-SalI 断片(断片
A)を単離した。下記2種類のオリゴヌクレオチドを互
いにハイブリダイズさせて24-bp のSalI-SphI 断片(断
片B)を得た:
3' EL133 (配列 NO. 11) 5' TCGACACGTAAGCTTATATGAATT
CGGCATG 3' 断片AとBを予め NcoI と SphI とで処理したプラスミ
ドpEL062に導入して、4787-bp のプラスミドpEL066(図
13)を得た。このプラスミドは遺伝子間領域3にEcoRI-
HindIII-SalIポリリンカーを含んでいる。
スミドpEL004(=フランス国特許出願第92/013109 号に
記載のプラスミド pGH004 に等しい)を BamHIとXbaIと
で処理して1140-bp のBamHI-XbaI断片(切り出されたVP
2 遺伝子)を単離した。この断片を予めXbaIおよびBamH
I で処理したベクターpBS-SK+ にクローニングして4052
-bp のプラスミドpEL022(図14)を得た。このベクター
pBS-SK+をEcoRV とXbaIとで処理し、次いでそれをつな
いでpBS-SK+ (変性されたもの)を得た。プラスミドpE
L004をKpnIとHindIII で処理して、完全なIBDV VP2を含
有する1387-bp のKpnI-HindIII断片を単離した。この断
片を予めKpnIとHindIII で処理したベクターpBS-SK* に
クローニングして 4292bp のプラスミドpEL023(図15)
を得た。プラスミドpEL022をBamHI およびNotIで処理し
て1122-bp のBamHI-NotI断片(断片A)を単離した。
して333-bpのBamHI-NotI断片を単離した(断片B)。断
片AとBを予め NotI で処理してアルカリホスファター
ゼで処理したベクターpBS-SK+ に導入して4369-bp のプ
ラスミドpEL024(図16)を得た。プラスミドpEL024をNc
oIで処理して1145-bp のNotI-NotI 断片を単離した。こ
の断片を予め NotI で処理したプラスミドpCMVβ(クロ
ンテック カタログ番号6177-1)に導入して 5096-bpの
プラスミド pEL026 (図18)を得た。プラスミドpEL026
を EcoRI、SalIおよびXmnIで処理して 2428-bpのEcoRI-
SalI断片を単離した。この断片を予め EcoRIおよび Sal
I で処理したプラスミドpEL079(実施例5)に導入し
て、7514-bp のプラスミドpEL090(図19)を得た。この
プラスミドによって、HCMV-IE/IBDV VP2発現カセットを
HVT ウィルスの遺伝子間部位1に挿入することが可能と
なる。
鎖状プラスミドpEL090+5μgのHVT ウィルスDNA を 3
00μlのOptiMEM 培地(ギブコ BRL カタログ番号041-
01985H)に入れたものと、100 μgのLipofectAMINE を
300 μlの培地に希釈したものとの混合物(混合物の最
終量は600 μl)を用いて感染させた。この600 μlを
3ml(最終量)の培地に希釈して3×106 のCECI上に播
いた。混合物を細胞と接触させた状態で5時間保ち、そ
の後取り除いて5mlの培養培地で置き換える。その後細
胞を37℃で3日間培養し、その後プロナーゼ処理して、
新鮮なCECII と混合し(3:1で混合)、さらに再び96
ウェルのプレート1個に播く。このプレートを3日間培
養し、その後細胞をプロナーゼ処理し、新鮮なCEFII と
混合し、再び2枚の96ウェルプレートに播く(元の1つ
のウェルから2つの姉妹ウェルを得る)。
れるようになるまで培養した。72時間培養後、2枚の96
−ウェルプレートのうち一方を95%のアセトン中で30分
間固定し、抗VP2 モノクロナル抗体を用いて間接蛍光抗
体(IIF) 反応を行い、蛋白質VP2 を発現するプラークを
調べた。IIF で陽性のプラークを示すカップの「シスタ
ーカップ」をプロナーゼ処理し、新鮮なCEFII と混合
し、限定的な希釈で96ウェルのプレートに塗布した。3
日間培養後、細胞変性効果を示したカップをプロナーセ
処理し、CEF IIと混合して、再び96−ウェルのプレート
に播いた(元の1つのウェルから2つの姉妹ウェルを得
る)。3日後、蛋白質VP2 を発現しているプラークを、
再び、前回と同様IIF によって2つのシスタープレート
のうち一方について試験した。
の回収、再播付け、IIF によるモニタリング、シスター
カップの継代培養等) を行うことによって子孫全てが特
異的な蛍光を示す組換えウィルスを得ることができる。
抗VP2 モノクロナル抗体を用いたIIF によって100 %の
陽性プラークを与えるウィルスプラークをvHVT16と命名
した。この組換えウィルスのゲノムDNAについて適当
なオリゴヌクレオチドおよびDNAプローブを用いた標
準的なPCRおよびサザンブロット法によって分子レベ
ルでの特徴付けを行った。
遺伝子並びにVS40ウィルスの後期遺伝子のポリアデニレ
ーションシグナルを含む3679-bp のSalI-SmaI断片を単
離した。この断片を予めSalIとEcoRV とで処理したベク
ターpBS-SK+ に挿入して6625-bp のプラスミドpCD002
(図20)を得た。このプラスミドはlacZレポータ遺伝子
を含むが、この遺伝子の下流に位置するプロモータはな
い。実施例2に従ってMCMVウィルスのウィルスゲノムD
NAを調製し、PstIで処理して2285-bp のPstI-PstI 断
片を得た。この断片を予めPstIで処理したアルカリホス
ファターゼで処理したベクター pBS-SK+にクローニング
してプラスミド pCD004 を得た。プラスミドpCD004をHp
aIとPstIで処理して1389-bp のHpa-PstI断片を得た。こ
の断片はネズミのサイトメガロウィルス(MCMV)の即時初
期遺伝子のプロモータ/アクチベータ領域を含む(Dorsc
h-Hasler K. et al., Proc. Natl. Acad. Sci.1985. 8
2. 8325-8329 、WO-A-87/03905 号)。この断片を予めP
stIとSmaIとで処理したプラスミド pCD002 にクローニ
ングして8007-bp のプラスミドpCD009(図21)を得た。
ダイゼーションを行って2本鎖のオリゴヌクレオチドを
作製した: MB070 (配列 NO. 12) 5' CGAATTCACTAGTGTGTGTCTGCAGGCGGCCGCGTGTGTGTCGACGG
TAC 3' MB071 (配列 NO. 13) 5' CGTCGACACACACGCGGCCGCCTGCAGACACACACTAGTGAATTCGA
GCT 3'
とSacIで処理したベクターpBS-SK+に導入してプラスミ
ドpEL067を得た。プラスミド pCD009 を PstI と SpeI
で処理して1396-bp のPstI-SpeI 断片を単離した。この
断片を予めPstIとSpeIとで処理したプラスミドpEL067に
導入して4297-bp のプラスミドpEL068(図22)を得た。
プラスミド pEL026 (実施例8参照)をHindIII および
SalIで処理して235-bpのHindIII-SalI断片(断片B)を
単離した。断片AとBを同時に予めNotIとSalIで処理し
たプラスミドpEL068に導入して 5908-bpプラスミドpEL0
70(図23)を得た。プラスミド pEL070 を EcoRI、SalI
およびXmnIで処理して3035-bp のEcoRI-SalI断片を単離
した。この断片を予めEcoRI とSalIで処理したプラスミ
ドpEL079(実施例5参照)に導入して 9109-bpのプラス
ミドpEL091(図24)を得た。このプラスミドによってHV
T ウィルスの遺伝子間部位1にMCMV-IE/IBDV VP2発現カ
セットを挿入することが可能になる。プラスミドpEL091
およびHVT ウィルスのゲノムDNAを用いて実施例8に
記載の同時形質転換(cotransfection)を行って組換え体
vHVT17の単離および精製を行った。
Aの3.9-kbp のEcoRI-SalI断片〔この配列はロス(Ross
N.) 達が開示している (J. Gen. Virol. 1989.70. 1789
-1804)〕を予めEcoRI とSalIで処理したベクターpUC13
に導入してプラスミドpCD007を得た。このプラスミドを
SacI およびXhoIで処理して2260-bp のSacI-XhoI 断片
(gB遺伝子の中央部位=断片A)を単離した。下記のオ
リゴヌクレオチドと鋳型pCD007を用いてPCRを行いて
222-bpのPCR断片を作製した: CD001 (配列 NO. 14) 5'GACTGGTACCGCGGCCGCATGCACTTTTTAGGCGGAATTG 3' CD002 (配列 NO. 15) 5'TTCGGGACATTTTCGCGG 3' この断片をKpnIとXbaIで処理して190-bpのkpnI-XbaI 断
片(gB遺伝子の5’末端=断片B)を単離した。下記オ
リゴヌクレオチドと鋳型pCD007とを用いて195-bpのPC
R断片を作製した: CD003 (配列 NO. 16) 5' TATATGGCGTTAGTCTCC 3' CD003 (配列 NO. 17) 5' TTGCGAGCTCGCGGCCGCTTATTACACAGCATCATCTTCTG 3'
のSacI-SacII断片(gB遺伝子の3’末端=断片C)を単
離した。断片A、BおよびCを同時に予めKpnIおよびSa
cIで処理したベクターpBS-SK+ に導入して5485-bp のプ
ラスミドpCD011(図25)を得た。プラスミドpCD011をNo
tIで処理して2608-bp のNotI-NotI 断片(MDV gB遺伝子
全体)を単離した。この断片を予めNotIで処理してアル
カリホスファターゼで処理したプラスミドpCMVβに導入
して6299-bp のプラスミドpCD020(図26)を得た(この
プラスミドではlacZ遺伝子がMDV gB遺伝子に置き代って
いる)。プラスミドpCD020をEcoRI とSalIで処理して36
48-bp のEcoRI-SalI断片を得た。この断片を予めEcoRI
とSalIとで処理したプラスミドpEL079(実施例5参照)
に導入して8718-bp のプラスミドpEL092(図27)を得
た。このプラスミドによって、HVTウィルスの遺伝子間
部位1にHCMV-IE/MDV gB発現カセットを挿入することが
可能となる。プラスミドpEL092とHVT ウィルスのゲノム
DNAを用いて実施例8に記載の同時形質転換(cotrans
fection)を行って組換え体vHVT18の単離・精製をした。
64. 1441-1450) に従ってニューカッスル病ウィルス(N
DV) テキサス株のゲノムに対して相補的なDNAのライ
ブラリーを作製した。フュージョン遺伝子(F) の末端、
赤血球凝集素ノイラミニダーゼ(HN)遺伝子の全体および
ポリメラーゼ用の遺伝子の開始点を含むpBR322クローン
をpHN01 として同定した。このクローン内に存在するND
V HN遺伝子の配列を図28、29(配列 NO. 18)に示す。プ
ラスミドpHN01 をSphIおよびXbaIで処理して2520-bp の
SpaI-XbaI 断片を単離した。この断片を予めSpaIとXbaI
で処理したベクターpUC19 に導入して5192-bp のプラス
ミドpHN02 を得た。プラスミドpHN02 をClaIとPstIで処
理して700-bpのClaI-PstI 断片(断片A)を単離した。
用いてPCRを行って270-bpのPCR断片を作製した: EL071 (配列 NO. 19) 5'CAGACCAAGCTTCTTAAATCCC
3' EL073 (配列 NO. 20) 5'GTATTCGGGACAATGC 3' この断片をHindIII とPstIで処理して220-bpのHindIII-
PstI断片(断片B)を単離した。断片Aと断片Bを同時
に予め ClaI および HindIIIで処理したベクターpBS-SK
+ に導入して3872-bp のプラスミドpEL028(図30) を得
た。プラスミドpHN02 をBsphI とClaIで処理して 425-b
p のBsphI-ClaI断片(断片C)を単離した。下記のオリ
ゴヌクレオチドと鋳型pHN02 を用いて425-bpのPCR断
片を作製した: EL074 (配列 NO. 21) 5' GTGACATCACTAGCGTCATCC 3' EL075 (配列 NO. 22) 5' CCGCATCATCAGCGGCCGCGATCGGTCATGGACAGT 3'
のBsphI-NotI断片(断片D)を単離した。断片Cおよび
Dを同時に予めClaIおよびNotIで処理したベクターpBS-
SK+に導入して3727-bp のプラスミドpEL029bis (図3
1)を得た。プラスミドpEL028をClaIとSacII で処理し
て960-bpのClaI-SacII断片(断片E)を単離した。プラ
スミドpEL029bis をClaIとNotIで処理して820-bpのClaI
-NotI 断片(断片F)を得た。断片EとFを同時に予め
NotIとSacIで処理したベクターpBS-SK+ に導入して4745
-bp のプラスミドpEL030(図32)を得た。プラスミドpE
L030をNotIで処理して1780bpのNotI-NotI 断片(NDV HN
遺伝子の全体)を単離した。この断片を、lacZの代わり
に予めNotIで処理してアルカリホスファターゼで処理し
たプラスミド pCMV βに導入して5471-bp のプラスミド
pEL032(図33)を得た。プラスミドpEL032をEcoRI とCl
aIで処理して1636-bp のEcoRI-ClaI断片(断片G)を単
離した。プラスミドpEL032をClaIとSalIで処理して1182
-bp のClaI-SalI 断片(断片H)を単離した。断片Gお
よびHを予めEcoRI とSalIとで処理したプラスミドpEL0
79(実施例5参照)に導入して7890-bp のプラスミドpE
L093(図34) を得た。このプラスミドによってHVT ウィ
ルスの遺伝子間部位1にHCMV-IE/NDV HNを挿入すること
が可能となる。プラスミドpEL093とHVT ウィルスのゲノ
ムDNAを用いて実施例8に記載の同時形質転換を行っ
て組換え体vHVT19の単離・精製を行った。
ライブラリー(実施例11参照)に由来するフュージョン
遺伝子(F) の全体を含むクローンをpNDV81とした。この
プラスミドは公知であり、このクローン中に存在するND
V F 遺伝子の配列は既に発表されている(Taylor J. et
al. J. Virol. 1990. 64. 1441-1450)。プラスミドpNDV
81をNarIとPstIで処理して1870-bp のNarI-PstI 断片
(断片A)を単離した。下記オリゴヌクレオチドと鋳型
pNDV81を用いてPCRを行って160-bpの断片を作製し
た: EL076 (配列 NO. 23) 5'TGACCCTGTCTGGGATGA 3' EL077 (配列 NO. 24) 5'GGATCCCGGTCGACACATTGCGGCCGCAAGATGGGC 3'
PstI-SalI 断片(断片B)を単離した。断片Aと断片B
を同時に予めClaIおよびSalIで処理したベクターpBS-SK
+ に導入して4846-bp のプラスミドpEL033(図35)を得
た。プラスミドpEL033をNotIで処理して1935-bp のNotI
-NotI 断片(F遺伝子全体)を単離した。この断片を予
めNotIで処理してアルカリホスファターゼで処理したプ
ラスミドpCMBβに導入して5624-bp のプラスミドpEL034
(lacZ遺伝子がNDV F 遺伝子で置き換えられている)を
得た(図36)。プラスミド pEL034 をEcoRI とKpnIで処
理して866-bpのEcoRI-KpnI断片(断片C)を単離した。
プラスミドpEL034をKpnIとSalIで処理して2114-bp のKp
nI-SalI 断片(断片D)を単離した。断片Cと断片Dを
同時に予めEcoRI およびSalIで処理したプラスミドpEL0
79(実施例5参照)に導入して、8043-bp のプラスミド
pEL094(図37)を得た。このプラスミドによって、HVT
ウィルスの遺伝子間部位1にHCMV-IE/NDV F の発現カセ
ットを挿入することが可能となる。プラスミドpEL094と
HVTウィルスのゲノムDNAを用いて実施例8に記載の
同時形質転換を行って組換え体vHVT20の単離・精製を行
った。
ドレー達によって報告されている(Bradley G. et al.,
J. Virol. 1989. 63. 2534-2542)(図38および配列 NO.
25)。下記オリゴヌクレオチドを用いてMDV のRB1B株に
感染したニワトリから得られるリンパ球から抽出したD
NAについてPCR増幅を行った: MB047 (配列 NO. 26) 5' GGTCTACTAGTATTGGACTCTGGTGCGAACGC 3' MB048 (配列 NO. 27) 5' GTCCAGAATTCGCGAAGAGAGAAGGAACCTC 3' 得られた163-bpのPCR断片をEcoRI とSpeIで処理した
後、予めEcoRI とSpeIで処理したプラスミドpCD002(実
施例9参照)に導入して6774-bp のプラスミドpBS002
(図39)を得た。プラスミドpBS002は lacZ 遺伝子の上
流にクローニングされたMDV の1.8-kbp RNA 遺伝子のプ
ロモータを含んでいる。
いてPCRを行った: MB047 (配列 NO. 26)および MB072 (配列 NO. 28) 5' GTGTCCTGCAGTCGCGAAGAGAGAAGGAACCTC 3' 得られたPCR断片をPstIとSpeIで処理して200bp のPs
tI-SpeI 断片を単離した。この断片を予め PstI および
SpeIで処理したプラスミドpEL067(実施例9参照)に導
入してプラスミドpEL069(図40)を得た。プラスミドpC
D007(実施例10参照)をEcoRI およびXbaIで処理して26
70-bp のEcoRI-XbaI断片(断片A)を単離した。プラス
ミドpCD011(実施例10参照)を NotI およびXbaIで処理
して180-bpのNotI-XbaI 断片(断片B)を単離した。プ
ラスミドpEL069をNotIとSpeIで処理して180-bpのNotI-S
peI 断片(断片C)を単離した。
SpeIで処理したプラスミド pEL067(実施例9)に導入
して5939-bp のプラスミドpEL080(図41)を得た。プラ
スミドpEL070(実施例9)をKpnIとSpeIで処理して1345
-bp のKpnI-SpeI 断片(断片D)を単離した。プラスミ
ド pEL070 も KpnI とSalIで処理して1658-bp のKpnI-S
alI 断片(断片E)を単離した。断片DおよびEを一緒
に予めSalIとSpeIで処理したプラスミド pEL080 に導入
して8938-bp のプラスミドpEL081(図42)を得た。プラ
スミドpEL081をEcoRI とSalIで処理して6066-bp のEcoR
I-SalI断片を得た。この断片を予めEcoRI とSalIとで処
理したプラスミド pEL079 (実施例5参照)に導入して
最終的に11139-bpのプラスミドpEL095(図43を得た)。
このプラスミドによってHVT ウィルスの遺伝子間部位1
にVP2/HCMV-IE//1.8-kbp RNA/MDVgBの二重発現カセット
を挿入することが可能となる。プラスミドpEL095とHVT
ウィルスのゲノムDNAを用いて実施例8に記載の同時
形質転換を行って組換え体vHVT21の単離・精製を行っ
た。
理して3040-bp のEcoRI-SalI断片(1.8-kbp RNA/MDV gB
カセット)を単離した。この断片を予めEcoRIとSalIで
処理したプラスミドpEL079(実施例5参照)に導入して
8140-bp のプラスミドpEL098(図44)を得た。このプラ
スミドによってHVT ウィルスの遺伝子間部位1に1.8-kb
p RNA/MDV gBのカセットを挿入することが可能となる。
プラスミドpEL098とHVT ウィルスのゲノムDNAを用い
て実施例8に記載の同時形質転換を行って組換え体vHVT
21の単離・精製を行った。
カセットを挿入するためのドナープラスミドの作製 発現カセット(HCMV-IE またはMCMV-IE プロモータある
いはMCMV-IE//1.8-kbpRNA 二重プロモータの制御下に置
かれた遺伝子)を遺伝子間部位1に挿入するための上記
方法に従って、鳥類の感染性気管支炎ウィルス(IBV) の
膜(M) 蛋白質またはスパイク(S) 蛋白質を高レベルで発
現する組換えHVT ウィルスを作製することができる。IB
VS遺伝子がHCMV-IE プロモータまたはMCMV-IE プロモー
タの制御下にある構成あるいはIBV M およびIBV S 遺伝
子がMCMV-IE/1.8-kbp RNA 二重プロモータと一緒に遺伝
子間部位1に挿入され、M遺伝子が1.8-kbp RNA プロモ
ータの制御下にあり、S遺伝子がMCMV-IE プロモータの
制御下にあるような構成にすることができる。この構成
では1.8-kbp RNA プロモータがMCMV-IE プロモータのア
クチベータ領域によって活性化される。
る組換えHVT ウィルスの作製 遺伝子間部位2および3に外部遺伝子発現のためのカセ
ットが挿入された組換えHVT ウィルスを実施例8〜14に
記載の方法に従って作製したが、特異的なドナープラス
ミドを作製するために実施例8〜14で用いたプラスミド
pEL079に代えてプラスミドpEL078(遺伝子間部位2)お
よびpEL066(遺伝子間部位3)をそれぞれ使用した。
法、例えばローラボトル培養で調製することができる。
ニワトリの初期の胚細胞 200×106 を植えつけたローラ
ボトル(175 cm2 )を37℃で24時間培養した後、ボトル
に105pfu/ml の力価を有する組み換えHVT ウィルスのウ
ィルス溶液1mlを接種した。37℃で4日間培養後、上澄
み液を除去してトリプシン/ヴェルセン溶液で細胞を剥
がし、その後に回収する。次いで、感染した細胞を遠心
分離する。上澄みを除去し、凍結乾燥安定剤(例えばSP
GAスクロース、リン酸塩、グルタメート、アルブミン)
を含む溶液20mlに再懸濁する。次いで、この混合物を超
音波処理し、1ml画分ずつバイヤルに分配して最後に凍
結乾燥する。必要な場合にはワクチンを凍結乾燥でなく
分配後に凍結させることもできる。
現する組換えウィルスを用いて生後1日のヒナに筋肉注
射で免疫処理した。このヒナに対して生後21日後にガン
ボロ病のウィルスを用いて攻撃(病原菌投与)した。攻
撃から11日後、ワクチン処理された群とワクチン未処理
の対照群との間で死亡とファブリシウス滑液嚢炎とを比
較して防御効果を評価した。このワクチン処理/攻撃プ
ロトコルの結果、本発明のワクチンは高レベルの防御を
示すことが確認された。
Claims (16)
- 【請求項1】 CMV 即時初期プロモータの制御下に、OR
F UL55のATG と隣接する繰り返し領域を有するUL の接
合点との間の領域に挿入された、鳥類の病原物質の抗原
ポリペプチドをコードし且つ発現する塩基配列を少なく
とも1つ含む鳥類ヘルペスウィルスをベクターとして有
する鳥類用組換え生ワクチン。 - 【請求項2】 ベクターがマレック病ウィルス(MDV お
よびHVT)、感染性喉頭器官炎ウィルスILTVおよびアヒル
のヘルペスウィルスからなる群の中から選択される請求
項1に記載の鳥類用組換え生ワクチン。 - 【請求項3】 ベクターがHVT ウィルスであり、BamHI
断片Iに挿入される請求項2に記載の鳥類用組換え生ワ
クチン。 - 【請求項4】 遺伝子間領域1、2および3またはBamH
I 断片のORF UL55に挿入される請求項3に記載の鳥類用
組換え生ワクチン。 - 【請求項5】 CMV 即時初期プロモータがヒトのプロモ
ータHCMV IE またはネズミのプロモータMCMV IE である
請求項1〜4のいずれか一項に記載の鳥類用組換え生ワ
クチン。 - 【請求項6】 CMV 即時初期プロモータの制御下に挿入
される塩基配列がガンボロ病の抗原、マレック病の抗
原、ニューカッスル病の抗原、感染性気管支炎の抗原、
感染性喉頭器官炎の抗原および鳥類の貧血症の抗原より
成る群の中から選択される抗原をコードする塩基配列で
ある請求項1〜5のいずれか一項に記載の鳥類用組換え
生ワクチン。 - 【請求項7】 CMV 即時初期プロモータの制御下に挿入
される塩基配列がIBDVウィルスのポリペプチドVP2 をコ
ードする塩基配列である請求項1〜6のいずれか一項に
記載の鳥類用組換え生ワクチン。 - 【請求項8】 CMV 即時初期プロモータにヘッドツーテ
イル状に連結された他のプロモータを含み、2つの塩基
配列が一方はCMV 即時初期プロモータの制御下に、もう
一方は該プロモータと組み合わせて使用されるプロモー
タの制御下に、それぞれ挿入領域に挿入される請求項1
〜7のいずれか一項に記載の鳥類用組換え生ワクチン。 - 【請求項9】 組み合せて使用されるプロモータがマレ
ックの1.8RNAプロモータである請求項8に記載の鳥類用
組換え生ワクチン。 - 【請求項10】 CMV即時初期プロモータの制御下に挿入
される塩基配列がIBDVウィルスのポリペプチドVP2 をコ
ードする塩基配列であり、組み合わせて使用されるプロ
モータの制御下に挿入される塩基配列が別の鳥類疾患の
抗原をコードする塩基配列である請求項8または9に記
載の鳥類用組換え生ワクチン。 - 【請求項11】 別の鳥類疾患の抗原をコードする塩基
配列がマレック病の抗原、ニューカッスル病の抗原、感
染性気管支炎の抗原、感染性喉頭器官炎の抗原および鳥
類の貧血症の抗原より成る群の中から選択される請求項
10に記載の鳥類用組換え生ワクチン。 - 【請求項12】 組み合わせて使用されるプロモータが
由来の異なるCMV 即時初期プロモータである請求項8に
記載の鳥類用組換え生ワクチン。 - 【請求項13】 挿入される塩基配列が下記遺伝子: 1) ガンボロ病ウィルスのVP2 、VP3 およびVP2 +VP4
+VP3 、 2) マレック病ウィルスのgB、gC、gD及びgH+gL、 3) 鳥類の貧血症ウィルスのVP1(52kDa)+VP2(24kDa)、 4) 感染性気管支炎ウィルスのSおよびM、 5) 感染性喉頭気管炎ウィルスのgB、gC、gDおよびgH+
gL をコードする配列の群の中より選択される請求項1〜12
のいずれか一項に記載の鳥類用組換え生ワクチン。 - 【請求項14】 CVM即時初期プロモータの代わりに1.8
RNA プロモータを使用する請求項1〜6のいずれか一項
に記載の鳥類用組換え生ワクチン。 - 【請求項15】 異なる配列が挿入された請求項1〜14
のいずれか一項に記載の鳥類用組換え生ワクチンを少な
くとも2種含む混合物または混合用の多価ワクチン製
剤。 - 【請求項16】 挿入される異なる塩基配列が異なる病
原体に由来する請求項15に記載の多価ワクチン製剤。
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