JPH08511419A

JPH08511419A - 組成物およびＣＤ４４ｖ６に対するモノクローナル抗体を用いる診断方法

Info

Publication number: JPH08511419A
Application number: JP6523607A
Authority: JP
Inventors: ヤルカネン、シルパ; サルミ、マルコ
Original assignee: ヤルカネン、シルパ; サルミ、マルコ
Priority date: 1993-06-18
Filing date: 1994-06-16
Publication date: 1996-12-03
Also published as: ZA944383B; EP0703989A1; CA2165461A1; WO1995000658A1; AU678487B2; GR3025759T3; DE69406664T2; ES2110764T3; AU6972694A; DE69406664D1; ATE159953T1; DK0703989T3; US5616468A; EP0703989B1; IL110070A0

Abstract

(57)【要約】エクソンｖ６によりコードされるアミノ酸配列を含有するＣＤ４４の型と結合するが、ＣＤ４４の９０キロダルトン標準リンパ球型には結合しないモノクローナル抗体（ＤＭＣＡＣＣ２１３１）および動物またはヒト由来の扁平上皮細胞が悪性転換しているかどうかを検出するため、上皮起源の悪性細胞の転移能力を測定するため、および患者における炎症性の疾病を検出するために組織または細胞中のＣＤ４４ｖ６の存在を検出するための前記抗体の用途。

Description

【発明の詳細な説明】組成物およびＣＤ４４ｖ６に対するモノクローナル抗体を用いる診断方法本発明の分野は、免疫学的試薬および特定の抗原の発現の検出方法に関する。とくに、本発明は膜糖タンパク質ＣＤ４４の変異体を検出するモノクローナル抗体に関する。本発明の免疫学的試薬は、悪性転換の検出、転移能力評価および炎症性疾病の診断のための診断の道具として有用である。発明の背景細胞−細胞および細胞−マトリックス相互作用は、多細胞動物では成長、分化のコントロールにおいておよび細胞の転移において、根本的に重要である。ＣＤ４４は、これらの接着依存プロセスに関与することが知られる分子のひとつである。ＣＤ４４は、以下のものに関与する多機能糖タンパク質である；リンパ球− 内皮細胞相互作用、細胞外マトリックスタンパク質への細胞接着、リンホ造血（ lymphohemotopoiesis）、ホモタイプ接着、Ｔ細胞活性化および接着、サイトカイン放出、細胞の転移および外側移動（late ral movement）⁽¹⁾。ＣＤ４４は、白血球のすべてのサブセット、赤血球、多くのタイプの上皮細胞、繊維芽細胞、平滑筋細胞および中枢神経系のグリア細胞を含む、いくつかの造血性および非造血性の細胞の間に広く分布している⁽¹⁾。ほとんどの造血性細胞、繊維芽細胞およびグリア細胞は、圧倒的にＣＤ４４の９０ｋＤ型を発現する。リンパ球も、９０ｋＤバックボーンのコンドロイチン硫酸修飾を表す１８０ｋＤ型を発現する⁽²⁾。対照的に、上皮細胞系におけるＣＤ４４抗原はかなり大きく（１４０−１６０ｋＤ）、さらに大きな形、２３０ｋＤまでが記述されている^(3、4、5)。最近、生化学的に異なる形のＣＤ４４の根底にある分子的基礎が解明された。リンパ系からのヒトＣＤ４４の分子クローニングにより、Ｎ末端細胞外領域、短い疎水性膜貫通領域および細胞質テールを有する完全な膜糖タンパク質をコードする遺伝子が明らかになった^(6、7)。ついで、ケラチノサイトおよびカルチノーマ細胞系由来の上皮型の１５０ｋＤの構造が分析された^(3、8)。上皮型は、リンパ球および上皮型の双方に共通のペプチドバックボーンの膜近位（membrane pro ximal part）部分中に挿入された１３２アミノ酸の延長部分を含有することが分かった。同じ１３２アミノ酸配列またはそのさらに短い部分を含有する型は、造血性細胞においても見つかっている⁽⁹⁾。ラットおよびヒトの双方において、５つの異なるアミノ酸配列エレメント（もしくは“ドメイン”）が同定され、それらはＣＤ４４タンパク質の９０ｋＤコアの部分として発現されることが見いだされるかもしれない^{(10、11、12、13)}。これらのドメインは少なくとも１０個の異なるｖ１〜ｖ１０と名づけられたエクソンによってコードされている⁽¹⁴⁾。共通のタンパク質バックボーン中にこれらのエクソンの１またはそれ以上を含有するＣＤ４４分子は、主要９０ｋＤリンパ球型（標準）からそれらを区別するため、変異型と呼ばれる。ここでは、エクソンｖ６という語は、ヒトＣＤ４４の知られている最大の型のヌクレオチド１１４０−１２６７に対して用いられる⁽¹¹⁾。ＣＤ４４の異性型（isoform）は、腫瘍の浸潤および転移において重要でかつ弁別的な役割を果たしている。標準９０ｋＤリンパ球型は、明らかにヒト中の非ホジキンリンパ腫の転移能力に貢献している^(15、16)。リンパ球型も、局所リンパ腫形成およびヌードマウスモデル中にトランスフェクトされたリンパ腫細胞の転移能力を促進するが、１５０ｋＤ上皮型（エクソン命名法によるエクソンｖ８ −ｖ１０を含む）は違う⁽¹⁷⁾。上皮型の発現はカルチノーマ細胞系中で増加するが、これは組織浸潤性における役割を示唆するのかもしれない⁽⁷⁾。ついに、ラット変異体ＣＤ４４を認識するモノクローナル抗体を用いて、ヘルリッチ（Herr lich）らが国際特許出願１９９１年１７２４８号パンフレット中にＣＤ４４発現とアデノカルチノーマ細胞の間の直接的な相互関係を報告した。⁽¹⁰⁾も参照のこと。ヒトにおいては、ＣＤ４４の変異型の発現パターンの分析は、細胞中に存在するＣＤ４４変異ｍＲＮＡの研究に限られていた⁽¹¹⁾。これは、ヒトにおける標準ＣＤ４４と変異ＣＤ４４の間の区別をすることができる使用可能なモノクローナル抗体がなかったためである。今は、ヒト変異エクソンｖ６配列を担う融合タンパク質に対して作られたポリクローナル抗体を用いた、ヒト結腸直腸の新形成（ colorectal neoplasia）および正常ヒト組織におけるＣＤ４４変異糖タンパク質についての報告がひとつある⁽¹⁸⁾。著者はここで、正常結腸上皮は主として陰性であったが、すべての転移（metastase）は陽性であったことを示している。他の論文⁽¹⁹⁾は、同一の融合タンパク質に対するモノクローナル抗体、およびヒトリンパ細胞および組織上さらに非ホジキンリンパ腫上の変異ＣＤ４４糖タンパク質の発現の研究への該モノクローナル抗体の使用を報告している。これらの研究は転移能力と関連した変異ＣＤ４４の発現のアップレギュレーションについての早期の報告を裏付けている。欧州特許公開ＥＰ５３８７５４号は、ラット変異体ＣＤ４４に対して作られたモノクローナル抗体がラットにおいて免疫抑制効果を有するという驚くべき事実を開示している。図面の簡単な説明図１モノクローナル抗体（ＭＡｂ）Ｖａｒ３．１は、ヒトＣＤ４４のエクソンｖ６に特異的である。モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１、Hermes-３および３Ｇ６（陰性のコントロール）の、ｖ６特異的ペプチドに対する結合および関係のないペプチドに対する結合を測定した。結果は、２つの独立したＥＬＩＳＡ実験の３重（triplicate）サンプルからの正味の吸光度（平均±標準偏差）（正味の吸光度＝ｖ６特異的ペプチドへの吸光度−コントロール・ペプチドへの吸光度）として表した。図２（Ａ−Ｃ）モノクローナル抗体（Ｍａｂ）Ｖａｒ３．１エクソンｖ６を担う組換えタンパク質を認識する。Ａ）ＨａＣａｔ細胞由来ＣＤ４４ｖ６の増幅に用いたＰＣＲ戦略を図式的に表したもの（詳細は本文を参照のこと）。箱部分はＣＤ４４の変異部分を表し、エクソンｖ６およびｖ７はダークにした領域として目立たせてある。ヌクレオチドの番号づけは、参考文献１１中にあるデータに基づいている。Ｂ）ＩＰＴＧ誘導ののちの、形質転換細菌の、まるごとの細胞の溶菌物のクーマシー・ブルー染色。レーン１：ｐＧＥＸ−２Ｔで形質転換された細胞（矢印：親ベクターの−２８ｋＤ産物）、レーン２：ｐＧＥＸ−２Ｔ−Ｖａｒで形質転換された細胞（矢印：ｖ６を含む−６０ｋＤ融合タンパク質）、Ｃ）同じ溶菌物のイムノブロッテイング。ｐＧＥＸ−２Ｔ−Ｖａｒで形質転換されたＩＰＴＧ誘導細菌の、まるごとの細胞の溶菌物（レーン１および３）、およびｐＧＥＸ−２Ｔで形質転換されたＩＰＴＧ誘導細菌の、まるごとの細胞の溶菌物（レーン２および４）で、モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１で（レーン１および２）および３Ｇ６で（陰性のコントロール、レーン３および４）染色した。モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１は−６０ｋＤ融合タンパク質を染色した（レーン１、矢印）が、ｐＧＥＸ−２Ｔの産物は染色しなかった（レーン２）。双方のｍＡｂｓ（モノクローナル抗体）とも−３８ｋＤ分子に非特異的に反応した。ＭＷ＝分子量標準のｋＤ。図３ＣＤ４４ｖ６の分子量。Hermes-３反応性物質を、親和性カラムを用いてリューコフェレシス（leukopheresis）サンプルから単離し、ＳＤＳ−ＰＡＧＥにて分解およびブロットした。モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１およびHermes −３との反応性を、イムノペルオキシダーゼ法を用いて分析した。レーン１はHermes−３、レーン２はｖａｒ３．１、レーン３は３Ｇ６（陰性のコントロール）。分子量標準（ｋＤ）は、右側に示す。図４（Ａ−Ｅ）ヒトにおけるｖ６およびHermes−３エピトープ含有型ＣＤ４４の組織分布。（Ａ）モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１で染色した扁桃腺切片。表面上皮の扁平細胞において陽性のイムノペルオキシダーゼ反応が見られる。中部および上部層の顕著な染色に注目のこと。リンパ球は陰性である。（Ｂ）モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１で染色した扁桃腺の拡大。（Ｃ）ＣＤ４４ｖ６の発現は、上部（high）内皮細脈上では不均質である。いくつかの上部内皮細脈は、鮮やかな陽性である（黒の矢印）が一方、他は陰性かまたは弱い陽性である（白の矢印）。（Ｄ）平行してHermes−３で染色した扁桃腺切片。この抗体も表面上皮のすべての層を染色したが、発現は基底層に最も顕著である。リンパ領域中のリンパ球は鮮やかな陽性である。（Ｅ）Hermes−３エピトープは上部内皮細脈には存在しない（矢印は輝く表面（ luminal surface）を指す）。ｅは表面上皮、ｌａはリンパ領域。尺度線（scale bar）は１５μｍ。図５（ＡおよびＢ）ｖ６が扁平上皮細胞上に発現されている。（Ａ）扁桃腺の層状になった扁平上皮における表面細胞の原形質膜は、モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１で濃く染色された。細胞のより表面の側（矢印）ほど、整然とより強く染色されていることに注目のこと。ペルオキシダーゼ反応。（Ｂ）金で標識した２次抗体を用いると、金粒子は原形質膜に沿って局在化した。コントラストをつけないストレプトアビジン−金、白い外郭線（矢印）は原形質膜。図６（ＡおよびＢ）血液リンパ球上のＣＤ４４ｖ６の発現。（Ａ）新鮮ＰＢＬ（ＰＥＲＭ−、左側カラム）はその表面上ではＣＤ４４ｖ６を発現しないが、Ｈｅｒｍｅｓ−３は鮮やかである。染色の前に細胞を１％ホルムアルデヒドおよびアセトンで浸透性化すると（ＰＥＲＭ＋、右側カラム）、多くの細胞がＣＤ４４ｖ６陽性になる。Ｘ軸はｌｏｇ目盛りでの相対蛍光であり、Ｙ軸は細胞数である。（Ｂ）イムノ蛍光顕微鏡検査（immunofluorescence microscopy）では、浸透性化されたＰＢＬはＣＤ４４ｖ６に対して、細胞の周辺に選択的に局在する内部染色を示す。上：モノクローナル抗体３Ｇ６（陰性のコントロール）、中：モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１、下：Hermes−３。尺度線は１０μｍ。図７ｖ６特異的ＲＮＡが、ヒトＰＢＬ中に存在する。ＲＮＡをＰＢＬおよびＨａＣａｔ細胞から単離し、ｃＤＮＡへ逆転写し、プライマーＢおよびＣを用いてＰＣＲで増幅し（図２Ａ参照）、アガロースゲル中で分離、ナイロン膜上に移し、ｖ６特異的プローブとハイブリダイズさせた（プローブＧ、図２Ａ）。レーン１はリンパ球、レーン３はＨａＣａＴ細胞。レーン２（リンパ球）および４（ＨａＣａＴ）は、逆転写酵素をｃＤＮＡ合成反応中に加えないことを除いてはレーン１および３に見られるのと同一の、陰性コントロールを表す。図８（Ａ−Ｆ）ＣＤ４４ｖ６は細胞骨格に関連する。固定化し浸透性化したＨａＣａＴ細胞を、モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１を用いた（Ａ、Ｃ）、Herm es− ３を用いた（Ｂ、Ｄ）および３Ｇ６を用いた（陰性のコントロール、Ｅ、Ｆ）イムノ蛍光染色の前に、０．５％ＮＰ−４０処理しない（Ａ、Ｂ）または処理した（Ｃ−Ｆ）。有意な量のＶａｒ３．１反応性物質が、ＮＰ−４０処理抵抗性であり、一方処理後にHermes−３染色は大いに減少した。尺度線は１０μｍ。図９（Ａ−Ｈ）腫瘍におけるＣＤ４４ｖ６の発現。良性皮膚パピローマは、モノクローナル抗体ｖａｒ３．１（Ａ）およびモノクローナル抗体Hermes−３（Ｂ）の双方に陽性であった。皮膚の扁平細胞カルチノーマは、ＣＤ４４ｖ６発現の大きな減少を示す（Ｃ）が、鮮やかなHermes−３陽性を保っている（Ｄ）。（Ｅ）Ｃの拡大。（Ｆ）Ｄの拡大。（Ｇ）扁平細胞カルチノーマ由来転移性細胞は、実質上モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１陰性であるが、（Ｈ）それらは依然としてHermes−３エピトープを含有している。尺度線は１５μｍ。図１０慢性炎症（リウマチ性関節炎）を患う患者の血清におけるＣＤ４４ｖ６の存在。代表的な実施例として、リウマチ性関節炎の患者２人および正常被験者１人の血清の連続希釈液（１／１０から１／３２００まで）中のＣＤ４４ｖ６およびHermes−３エピトープの存在を示す。レーンＡ−Ｃ：正常被験者、Ａ：He rmes−３、Ｂ：Ｖａｒ３．１、Ｃ：３Ｇ６、陰性のコントロール。レーンＤ−Ｆ：患者＃１、Ｄ：Hermes−３、Ｅ：Ｖａｒ３．１、Ｆ：３Ｇ６。レーンＧ−Ｈ：患者＃２、Ｇ：Hermes-３、Ｈ：３Ｇ６。Hermes-３染色は陰性であった。ＢＳＡ、コントロール・ウェルは５０μｇＢＳＡを含有する。図１１ＣＤ４４のエクソンｖ６のヌクレオチド配列。太字で示したヌクレオチドは、免疫化のために用いる合成ペプチドを調製するのに用いられるアミノ酸をコードする配列である。ヌクレオチドの番号づけは、参考文献１１に報告されたデータに基づく。発明の概要本発明はエクソンｖ６によりコードされるアミノ酸配列を含有するＣＤ４４変異体に、特異性をもって反応することができるモノクローナル抗体を指向するものである。本発明はまた、ＣＤ４４の特定の変異型が細胞中で発現されているかどうかを測定することにより、病理学的状態を検出する方法を指向するものでもある。好ましい実施態様においては、細胞、とくに扁平上皮細胞の悪性転換や、悪性転換の起こったそれらの細胞の転移能力を検出するのに、細胞表面ＣＤ４４ｖ６の発現の消失を用いる。さらに好ましい実施態様においては、ＣＤ４４ｖ６の消失の検出に用いる試薬は、モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１である。別の好ましい実施態様では、本発明は血清サンプル中のＣＤ４４ｖ６測定により、個体における炎症状態の検出を指向する。この方法を用いて検出できる炎症性疾病には、リウマチ性関節炎および炎症性腸疾病が含まれる。発明の詳細な説明定義：以下のように定義する：１．ＣＤ４４：ＣＤ４４は多くの細胞表面上に見られる多機能糖タンパク質であり、接着依存プロセスに関与する。本タンパク質には、いくつかの異なる型があり、これを「異性型」と呼ぶ。９０ｋＤ型は、標準またはリンパ球型と呼ばれる。１５０ｋＤ型もあり、これは上皮細胞や他の細胞に見られる。２．ＣＤ４４変異体：ＣＤ４４の９０ｋＤリンパ球型以外のすべての型を変異体と呼ぶ。変異体は９０ｋＤリンパ球ＣＤ４４タンパク質を含むが、そのうえにさらなるアミノ酸配列エレメント（「ドメイン」）を有する。そのＣＤ４４変異体を形成するドメインは、ＣＤ４４遺伝子を含んでなる少なくとも１０個のエクソンの異なるスプライシングの結果である。３．ＣＤ４４ｖ６：エクソン６によりコードされるアミノ酸配列を一次構造中に含むＣＤ４４変異体を「ＣＤ４４ｖ６」と呼ぶ。４．エクソンｖ６：エクソンｖ６は、ヒトＣＤ４４遺伝子のヌクレオチド１１４０〜１２６７（参考文献１１および１４）と定義される。エクソンｖ６の配列は、図１１に示す。５．Hermes-３：Hermes-３は、ＣＤ４４のすべての型に存在する９０ｋＤリンパ球タンパク質上の部位を認識するモノクローナル抗体である。６．Ｖａｒ３．１：Ｖａｒ３．１は、インターナショナル・デポシタリー・オーソリティー（International Depositary Authority）ＤＭＳ、ドイチェ・サムルング・フォン・ミクロオルガニスメン・ウント・ゼルクルツレン・ケーエムベーハー（Deutsche Sammlung Von Mikroorganismen und Ze llkullturen GmbH）、所在地マシェローデ・ベク１ベー、デー−３３００ブラウシュベイク（Mascherode Weg 1B,D-3300 Braunschweig）、ドイツ、に寄託されたモノクローナル抗体である。寄託は１９９３年６月４日に行い、受領番号ＤＭＳＡＣＣ２１３１をえた。本抗体は、エクソン６によりコードされるアミノ酸配列を含むＣＤ４４の型に特異的である。７．省略形「ＰＢＬ」は、「末梢血リンパ球（peripheral blood lymphocytes）」を表し、ｍＡｂは「モノクローナル抗体」を表し、ＦＣＳは「ウシ胎児血清」を表し、ＰＢＳは「リン酸塩緩衝化生理食塩水」を表す。８．炎症性疾病：炎症性疾病は、炎症に関連する細胞性および組織学的反応によって特徴づけられる疾病である。炎症の典型的な兆候は、赤み、局所的な温熱感、腫れ、痛み、およびときには正常機能の喪失である。９．転移能力：転移能力は、腫瘍性転換した細胞が体の１つの部分から別の部分へ転移する傾向と定義される。典型的には、転移能力は新しい部位にコロニー形成する細胞総数のパーセンテージとして表される。１０．悪性転換：悪性転換は、正常細胞のガン細胞への変化である。悪性転換が起こったことを示す主な特徴は、無制御の細胞増殖および分化機能の消失である。エクソンｖ６によりコードされるアミノ酸配列に特異的なモノクローナル抗体本発明は、エクソンｖ６（図１１）によりコードされるアミノ酸配列要素をその一次構造中に含むＣＤ４４の型と特異的に反応するモノクローナル抗体を指向する。特定の抗原に特異的なモノクローナル抗体を作る方法は、この技術分野においてよく知られている。ＣＤ４４エクソンｖ６によりコードされるペプチドへのモノクローナル抗体の作成に適用した手順は、以下の実施例Ｉに述べる。実施例で作成した抗体にはＶａｒ３．１と名付け、インターナショナル・デポシタリー・オーソリティーＤＭＳドイチェ・サムルング・フォン・ミクロオルガニスメン・ウント・ゼルクルツレン・ゲーエムベーハー、所在地マシェローデ・ベク１ベー、デー−３３００ブラウシュベイク、ドイツ、に寄託した。寄託は、１９９３年６月４日に行い、受領番号ＤＭＳＡＣＣ２１３１をえた。本発明は、一般にエクソンｖ６特異的抗体、およびとくにＶａｒ３．１の種々の用途を意図する。すべてのばあいにおいて、抗体−抗原複合体の検出は標識された２次抗体、すなわちエクソンｖ６にコードされた抗原に結合する抗体中に存在するイムノグロブリン鎖を認識する抗体を用いても、あるいは１次抗体を直接標識することによっても行うことができる。そのような目的に典型的に用いられる標識の例には、放射性標識（たとえば¹²⁵Ｉ、¹³¹Ｉ、¹⁴Ｃもしくは³Ｈ）、ビオチン、蛍光標識（たとえばフルオレセイン（fluorescein）、ローダミン（rho damine）もしくはフィコエリスリン（phycoerythrin））または酵素（たとえばホースラディシュ・ペルオキシダーゼ、アルカリン・ホスファターゼもしくはウレアーゼ）が含まれる。そのような標識を抗体中へ取り込む技術および標識された抗体−抗原複合体を検出する技術は、この技術分野においてよく知られている（たとえばフード（Hood）ら、イムノロジー（immunology）、第２版、第３章（ 1984）を参照のこと）。モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１は、ヒトＣＤ４４ｖ６をエクソンｖ６をもたないＣＤ４４の型から区別することができる。これおよび同様に方向づけられた（directed）モノクローナル抗体の研究目的の使用は、本発明の範囲に含まれ、以下に説明される。正常および疾病状態におけるＣＤ４４ｖ６発現を調べた結果、この抗原の発現と悪性転換、転換された細胞の転移能力およびヒトにおける炎症性疾病の存在の間には相互関係があるという結論をえた。ＣＤ４４ｖ６の正常細胞中での発現Ｖａｒ３．１を用いて正常細胞中での抗原の発現を調べる研究は、実施例Ｉに詳細に延べるが、以下に概要を示す。これらの研究はこの抗体を研究の目的に用いうる方法を説明している。さらに、のちの悪性転換したサンプルまたは炎症性疾病を有する患者からのサンプルでえられた結果と比較するとき、正常サンプルからえられた結果から、ＣＤ４４ｖ６抗原の発現は診断の目的に用いることができることが示される。ＣＤ４４ｖ６は、異なる型の上皮細胞、樹状細胞および血管内皮細胞中に存在することが分かった。もっとも豊富に発現が見られるのは扁平上皮細胞中であり、そこでは、Ｖａｒ３．１エピトープが細胞の表面側に集中して現れる。モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１とＣＤ４４分子の一定領域に結合する抗原であるHermes−３との間の発現パターンの比較により、いくつかの興味深い特徴が明らかになった（表１にまとめた）。扁桃腺の表面上皮では、Ｖａｒ３．１およびHermes−３反応性は異なる。Ｖａｒ３．１では上皮の中部および上部層の細胞が最もよく染色されるが、基底層はモノクローナル抗体Hermes−３に最大の反応性を示す。結合組織構成要素は、Hermes−３に強く反応するが、モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１では染色されない。一方、血管の上部（ｈｉｇｈ）内皮は、Ｖａｒ３．１陽性だがHermes−３陰性である。ＣＤ４４ｖ６は、２次リンパ器官のリンパ細胞上または末梢血リンパ球上には存在しない。しかしながら、これらすべての白血球集団は、モノクローナル抗体 Hermes−３で鮮やかに染色される。したがって、エクソンｖ６の発現は２、３の分化した細胞型に限られるが、Hermes−３エピトープは幅広くいろいろな細胞上に存在する。インビボにおける上皮細胞の表面上の発現とは対照的に、末梢血白血球およびいくつかの上皮細胞系は、ＣＤ４４ｖ６を細胞内にのみ発現する。それは明らかに膜関連型としておよび細胞質中拡散型としての双方で分布する。モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１染色は、扁桃腺のアセトン固定された切片上と固定されていないクリオスタット（cryostat）切片上とで同じ反応パターンを形成するので、アセトン処理（透過性化のために用いられる）自体はＶａｒ３．１エピトープのモノクローナル抗体への到達可能性には必要でない。したがって、アセトンは細胞膜の何らかの脂質組成を溶解することによりＶａｒ３．１エピトープを暴露するものではない。かなりの量のＣＤ４４ｖ６はＮＰ−４０不溶性の型で存在し、そのため細胞骨格タンパク質と連結している可能性が非常に高い。標準ＣＤ４４の細胞質テールは、マウスＴリンパ腫細胞中でアクチンとホドリン（fodrin）を膜貫通タンパク質につなげているアンキリン（ankyrin）と関連していることが知られている⁽²⁶ ⁾ 。ＣＤ４４はＷＩ−３８中のビメチン（vimetin）および３Ｔ３細胞中のアクチンとともに分布している（colocalized）^(27、28)。さらに、Ａ３Ｄ７およびHerm es-１（ＣＤ４４の一定部分に対する別の抗ＣＤ４４抗体）反応性物質がヒトＴ細胞中にＮＰ−４０不溶解性型で存在することが示されている⁽²⁹⁾。この結果は、ＣＤ４４ｖ６が少なくとも部分的にはこれらの以前に述べられたＣＤ４４の洗剤不溶性型の説明をすることができることを示唆する。ＣＤ４４ｖ６発現は悪性転換の診断および腫瘍細胞の転移能力評価に用いることができるＣＤ４４ｖ６の発現は、良性の上皮腫では変わらなかった。対照的に、悪性転換はＣＤ４４ｖ６のダウンレギュレーションに関連していた。さらに、変異ＣＤ４４ｖ６は転移性細胞には事実上存在しなかった。対照的に、悪性の大部分はHe rmes-３陽性のままであった。これらの観察は３７上皮腫瘍研究の材料における真実を支持するものである（実施例Ｉ参照）。この結果は、エクソンｖ６が上皮扁平カルチノーマの浸潤および転移には責任がないことを示唆する。むしろその発現は、上皮細胞の制御された正常分化および増殖に関連するものと思われる。その発現は悪性転換の間は抑制されている。上記の結果は文献に報告されている結果と一致する。インビボモデルにおける腫瘍成長についての標準および上皮ＣＤ４４異性型の効果についての最近の研究では、標準８０ｋＤ−９０ｋＤ型は腫瘍の浸潤および転移活性を促進したが、上皮型は促進しなかった⁽¹⁷⁾。非ホジキンリンパ腫についての研究では、Hermes− ３の表面の発現は、転移の優勢（prevalence）に明確に関係していた^(15、16)。我々はいずれの白血球細胞サブセットまたは細胞系の表面上にもエクソンｖ６を検出できなかったので、同様に標準型が最も非ホジキンリンパ腫の転移挙動を媒介している可能性が高い。ＣＤ４４ｖ６発現の消失は上皮細胞における悪性転換および転移能力増加に関係しているが、異なる起源の細胞が転換をうけたばあいには他の変化が起こりうーマ細胞系におけるＣＤ４４の変異型の発現は転移特性の獲得を招くことを見いだした⁽¹⁰⁾。エクソンｖ６の発現はこのプロセスの中心的役割を有することが示唆された。異なる細胞起源の悪性材料は異なる観察を説明するであろう可能性は非常に高いと思われる。前記のＶａｒ３．１についての研究は、ヒトケラチン生成細胞由来カルチノーマを用いたが、ラットモデルでの研究には２つのアデノカルチノーマおよびそれらの誘導体／変異体が用いられた⁽¹⁰⁾。アデノカルチノーマ標本上のＶａｒ３．１を用いたヒトサンプルにおける予備研究では、特定のばあいに、エクソンｖ６は悪性転換の間アップレギュレーションされることを示す。最近の文献では、ＰＣＲおよびハイブリダイゼーションによって分析すると、ヒトの胸および結腸の悪性腫瘍において、大きな分子量の交互にスプライシングされた（alternatively spliced）変異体が過剰生産されていることが報告された⁽²⁴⁾。したがって、ＣＤ４４の腫瘍転移における役割は種、カルチノーマのタイプまたは宿主の微小環境によって異なるのであろう。ここにクレームされる発明によって、エクソンｖ６によりコードされたエピトープに対して特異的なモノクローナル抗体は悪性転換および転移能力の検出に用いることができる。悪性転換のばあいには、悪性であることが疑われる組織のサンプルは、標準的なバイオプシーの技術によりえる。ついでモノクローナル抗体を用いて、バイオプシーサンプル中に存在するＣＤ４４ｖ６の量を、同じタイプの組織であって正常であることが分かっている個体からえられた基準（referenc e）サンプルに存在する量と比較する。アッセイに用いた全く同じ手順は、実施例Ｉに述べた免疫組織化学手順にしたがうことも可能であり、また他の標準的診断イムノアッセイの形を採ることもできる。上皮起源の組織において、悪性転換は正常組織に比べてエクソンｖ６抗原の消失をともなう。細胞の転移能力の評価の目的で行われるアッセイは、比較がバイオプシーサンプルと、悪性転換しているが転移性でないことが知られている細胞との間で行われることを除いては、悪性転換の検出のためのアッセイと同様である。また、サンプルおよび基準組織は、組織タイプにしたがって合致させるべきである。たとえば、肝臓サンプルは肝臓起源の基準サンプルと比較すべきである。扁平上皮起源の組織のばあいには、増加した転移能力はＣＤ４４ｖ６抗原の存在に逆相関している。ＣＤ４４ｖ６発現は炎症性疾病の診断に用いることができる正常個体由来および慢性炎症性疾病（リウマチ性関節炎または炎症性腸疾患のいずれでも）を患っている個体由来の血清サンプルを採取し、Ｖａｒ３．１抗体を用いてＣＤ４４ｖ６の存在を調べた。実施例Ｉに述べたドット・ブロット法を用いて行ったアッセイにより、炎症性疾病の患者由来のサンプルは抗体に対して強い反応性を示したが、正常個体からえられたサンプルは反応性を示さないかまたは弱い反応性を示した。これらの結果は、ＣＤ４４ｖ６エピトープは炎症性疾病の診断に用いることができることを示す。炎症性腸疾病を有することが疑われる患者由来の血清サンプルを正常個体由来の血清サンプルと比較する。全く同じ手順は、実施例Ｉに述べたドット・ブロット法または他の通常用いられるいかなるイムノアッセイ法にしたがうこともできる。炎症性の疾病の存在は、採取されたサンプル中に正常基準サンプルに比べて増加した抗体反応性として検出される。本発明を一般的に説明してきたが、さらにこれを特定の実施例をあげて説明する。この実施例は説明のみを目的とするもので、とくに述べない限り、限定を目的とするものではない。実施例Ｉヒト変異体ＣＤ４４のエクソンｖ６に対するモノクローナル抗体の作成エクソンｖ６は、ラットアデノカルチノーマ細胞の転移付着（deposit）の展開に重要な役割を演じることが報告されている⁽¹⁰⁾。ヒトにおけるＣＤ４４ｖ６の発現を研究するため、エクソンｖ６由来合成ポリペプチドに対するモノクローナル抗体を作成した。ヒト変異ＣＤ４４のエクソンｖ６由来の１６アミノ酸配列（ＳＴＴＥＥＴＡＴＱＫＥＱＷＦＧＮ⁽¹¹⁾；カップリングの目的でさらにＣ末端システインを含む）を表す合成ペプチドを、自動ペプチド合成機（モデル４３１Ａ、アプライド・バイオシステムズ（Applied Biosystems）、カリフォルニア）を用いて作成した。ペプチドの精製は、逆相カラムを用いた調製用ＨＰＬＣ（アプライド・バイオシステムズ）にて行い、その純度は分析用ＨＰＬＣを用いて確認した。そのペプチドは、独立に配列決定も行い（オンラインＰＴＨアミノ酸アナライザ−１２０Ａを装備したモデル４７７Ａ、アプライド・バイオシステムズ）、正しいことが分かった。不完全フロインド・アジュバント（Freund's Adjuvant）中１００μｇのペプチドを、ＳＰＦ（特定病原菌フリー）のＢａｌｂ／ｃマウスの足（foot p ad）に、１週間の間隔で３回注射した。と殺後、膝窩リンパ節からリンパ球を単離し、標準的手順を用いてＮＳ−１ミエローマ細胞と融合させた。抗原として合成ペプチドを用いてハイブリドーマ上清をＥＬＩＳＡ（以下を参照のこと）でテストした。 Hermesシリーズの抗ＣＤ４４モノクローナル抗体の作成は、以前に述べた⁽²¹⁾ 。Hermes−３は、ＣＤ４４の一定領域の近位膜外部分にあるエピトープを認識する⁽⁶⁾。３Ｇ６、マウス抗トリＴ細胞モノクローナル抗体を陰性のコントロールとて用いた。すべての抗体を、血清フリー上清として、または硫酸アンモニウム沈殿濃縮物として用いた。ハイブリドーマを、ＥＬＩＳＡを用いてスクリーニングした：エクソンｖ６由来合成ペプチドおよびコントロールペプチド（ＤＥＬＰＱＶＴＬＰＨＰＮＬＨＧＰＥＩＬＤＶＰＳＴ）を、一晩３７℃にてマイクロタイター・ウェル（ダイナテック・ラボラトリーズ（Dynatech Laboratories）、アレキサンドリア、バージニア）の底に吸収させた（１０μｇ／ウェル）。洗浄したのち、残っている結合部位を１％ゼラチンでブロックし、洗浄したのち１次抗体を２時間加えておいた。アルカリンホスファターゼにコンジュゲートしたヤギ抗マウスＩｇＧおよびＩｇＭ（テイゴ（Tago）、バーリンゲイム、カリフォルニア）を２次抗体として、ｐ−ニトロフェニルホスフェートを基質とて用いた。マルチスキャン（Multisca n）（ラブシステム（Labsystems）、ヘルシンキ、フィンランド）で、４０５ｎｍにて吸光度を測定した。１つのハイブリドーマからの上清が、免疫化に用いたペプチドを特異的に認識した（図１）。このエクソンｖ６特異的モノクローナル抗体（モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１と呼ぶ）を、限定希釈による２回のサブクローニングののち、さらなる研究のために選択した。モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１のモノクローナル抗体アイソタイプは、ＩｇＧ₁であった。実施例II ヒト変異体ＣＤ４４のエクソンｖ６を含有する抗原タンパク質の調製および精製ＣＤ４４のエクソンｖ６を含有する型は、ＨａＣａＴから逆転写酵素ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）により増幅し、融合タンパク質作成のためにｐＧＥＸ− ２Ｔベクター⁽²²⁾中にクローン化した。ＰＣＲプライマーは以下の通り：グアニジン・イソシアネート−フェノール抽出法により、ＨａＣａＴのＲＮＡを単離した。総量１．５μｇのＲＮＡ、オリゴ（ｄＴ）プライマーおよびＭ−ＭＬＶ逆転写酵素を用いて、製造者（パーキン・エルマー・シータス（Perkin Elm er Cetus）、ノルウォーク、コネチカット）の指示にしたがって第１鎖ｃＤＮＡ合成を行った。ＨａＣａＴ細胞はいくつかの型のＣＤ４４（非公開ＰＣＲデータ、Ｋ．Ｇ−Ｖ．、Ｍ．Ｓ．、Ｓ．Ｊ．）を有するので、図２Ａに図式的に説明したように、２つの別々のＰＣＲ増幅反応で２セットのプライマーを用いることにより、ＰＣＲ産物中のｖ６の存在を確実にした。１つの反応（１ａ）でプライマーＡおよびＢを用い、もう一方の反応（１ｂ）ではプライマーＣおよびＤを用いた。その後で、それぞれＢａｍＨ１およびＥｃｏＲ１テールを含有するプライマーＥおよびＦを用いる反応において、前記産物を結合させた。０．９５ｋｂＰＣＲ産物中のエクソンｖ６の存在は、Ｐ³²標識をしたプローブＧを用いるドット・ブロット・ハイブリダイゼーションにより、および配列決定により確かめた。１．５％アガロースゲルから０．９５ｋｂ断片（エクソンｖ６〜ｖ１０を含有する）単離し、ＢａｍＨ１およびＥｃｏＲ１で消化し、Ｔ４リガーゼ（ストラタジーン（Stratagene））でｐＧＥＸ−２Ｔ発現ベクター中につないだ^(23、22)。これより０．９５ｋｂのｖ６を含有するプラスミドｐＧＥＸ−２Ｔインサートを、ｐＧＥＸ−２Ｔ−Ｖａｒと呼ぶ。ＣａＣｌ₂法を用いて、ｐＧＥＸ−２Ｔ−Ｖａｒでバクテリア（大腸菌ＤＨ５α株）を形質転換させた。イソプロピルβ−Ｄ −チオガラクドピラノサイド（ＩＰＴＧ）を用いて融合タンパク質の産生を誘導し、そののちバクテリアをペレット化し、２％ＳＤＳ含有レムリスサンプル緩衝液（Laemmli's sample buffer）中で溶菌させた。リウマチ性関節炎を患う患者のリューコフェレシスサンプル由来の末梢血細胞を、前に述べたようにＣＤ４４抗原単離に用いた⁽²⁰⁾。要するに、リンパ球（２５ｍｌ充填（packed）細胞）を溶菌緩衝液（１％ＮＰ−４０、０．１５ＭＮａＣｌ、０．０１ＭＴｒｉｓ、１．５ｍＭＭｇＣｌ₂、１ｍＭＰＭＳＦ、ｐｈ７．０）中で細胞溶解させた。浄化した細胞溶解液をまずセファロースＣＬ−４Ｂ（ファルマシア（Pharmacia）、ウップサラ、スウェーデン）カラムに、ついで続けて正常マウス血清で、関係のないモノクローナル抗体で、およびHermes−３モノクローナル抗体で（５ｍｇ／ｍｌ、カラム容積３ｍｌ）派生化した（Derivatized）３つのＣＮＢｒ活性化されたセファロース４Ｂ（ファルマシア）カラムに付した。カラムを徹底的に溶菌緩衝液で洗浄した。そののち、 Hermes-３カラムに結合した物質を５０ｍＭトリエチルアミンで溶出させ、凍結乾燥した。単離されＣＤ４４をＳＤＳ−ＰＡＧＥに付し、０．１％Ｔｗｅｅｎ− ２０で３時間および５％ＡＢ血清（フィンランド赤十字社（Finnish Red Cross ）、ヘルシンキ、フィンランド）で膜をブロックしたことを除いて以下に述べるのと同様にブロッティングを２次抗体に加えた。血液供給者からえたＰＢＬからおよびＨａＣａＴ細胞から、グアニジン・イソシアネート法を用いて全ＲＮＡを単離し、ｃＤＮＡに逆転写した。これらの細胞にエクソンｖ６を含有するｍＲＮＡが存在するかどうか調べるため、プライマーＢおよびＣ（図２Ａ）をＰＣＲに用いた。標準的サザンブロッティングの方法にしたがって、ＰＣＲ産物を１．５％アガロースゲル中で分離し、ナイロン膜（ゼタ−プローブ（Zeta-Probe）、バイオラド（Bio Rad））上にブロッティングさせ、Ｐ³²標識したエクソンｖ６由来オリゴヌクレオチドプローブ（図２Ａ中のプローブＧ）とハイブリダイズさせた。コントロールとして、逆転写酵素を除いたすべての試薬を用いて、同じ反応を行った。実施例III モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１の特異性実施例IIでえたヒトｖ６を含有する組換えタンパク質に反応することを示すことによって、モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１の特異性を証明した。ｐＧＥＸ− ２Ｔ−ＶａｒおよびｐＧＥＸ−２Ｔ（コントロール）形質転換体のまるごとの細胞溶解液由来のサンプルを、５−１２．５％ＳＤＳ−ＰＡＧＥにかけた。電気泳動ののち、トランスフォー（Transphor）器具（ホエファー（Hoefer）、サンフランシスコ、カリフォルニア）中で１Ａにて１．５時間ブロッティングすることにより、タンパク質をニトロセルロース膜（シュライチャ−シュエル（Schleich er-Schuell）、ダッセル、ドイツ）上に写した。つぎに、その膜を、０．１％Ｔｗｅｅｎ−２０および１％無脂肪ミルクパウダーを含有するＰＢＳ中に４８時間浸した。ＰＢＳ中で洗浄したのち、ペルオキシダーゼをコンジュゲートしたウサギ抗マウスＩｇ（ダコパットＡ／Ｓ（Dakopatt A/S）、グロストラップ、デンマーク）を含有するＰＢＳ中で３時間インキュベートした。徹底的に洗浄したのち、１６％メタノール、０．５ｍｇ／ｍ１４−クロロ−１−ナフトール（シグマ（ Sigma））および０．０１％過酸化水素を含有するＰＢＳ中で、前記の膜を展開させた。同量のサンプルを同じゲルにかけ、４０％メタノールおよび１０％酢酸で続いて固定化し、クーマシー・ブリリアント・ブルーで染色した（図２Ｂ）。モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１は、≒６０ｋＤ融合タンパク質とは反応するが、親ベクターのみには反応しないことが分かった。陰性コントロールのモノクローナル抗体は、≒６０ｋＤ分子を染色しない。合わせると、ＥＬＩＳＡの結果および融合タンパク質アッセイの結果から、明らかにモノクローナル抗体はヒトのＣＤ４４のｖ６を認識することが示される。リューコフェレシス・サンプルからHermes−３精製されたＣＤ４４抗原のイムノブロッティング分析（実施例II参照のこと）から、非還元条件では、モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１は２つの主要なバンド（≒２２０および３００ｋＤ）ならびに１つの弱い大きなバンドを認識することが分かった（図３）。この実験から、モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１は精製されたＣＤ４４にエピトープを認識することが示される。モノクローナル抗体Hermes−３では、精製されたＣＤ４４材料から非常にさまざまな大きさのタンパク質（７０−３００ｋＤ）が染色される（図３）。実施例IV 正常組織におけるＣＤ４４ｖ６の発現ＣＤ４４の異なる型の組織分布をイムノペルオキシダーゼ染色を用いて決定した。外科的および皮膚パンチ・バイオプシー標本を液体チッ素中でかちかちに凍結させた（snap frozen）。凍結標本を５μｍに切断し、風乾してアセトン固定した。切片を、湿箱（humidified chamber）中、モノクローナル抗体上清で覆い、３０分間室温にてインキュベートした。ＰＢＳ中で２回洗浄したのち、５％ＡＢ血清を含有するＰＢＳ中のペルオキシダーゼとコンジュゲートさせたウサギ抗マウスＩｇを加えた。最後に、０．０３％過酸化水素を含有するＰＢＳ中の３，３−ジアミノベンゼン（ポリサイエンス社（Poly sciences Inc.）、ワリントン、ペンシルベニア）を添加することにより、反応を展開させた。染色ののち、切片をヘマトキシン（シグマ・ケミカルズ（Sigma Chemicals）、セントルイス、ミズーリ）中で対比染色をし、乾燥し、キシレン中で洗浄してデペックス（DePex）（ビーデイエイチ・リミテッド（BDH Limited ）、プール、ドーセット、英国）中で恒久標本にした。免疫電子顕微鏡検査（immunoelectronmicroscopy）のために、液体チッ素で冷却したフレオン２２中でヒト扁桃腺由来サンプルをかちかちに凍結させた。約１５μｍ凍結切片を、直ちにまたは−２０℃アセトン中での短期固定化ののちにのいずれかで、染色した。イムノペルオキシダーゼ染色は、前記のように行った。反応ののち、リン酸塩緩衝液２％グルタルアルデヒド中で固定化した。そののち、代表的切片を光学顕微鏡検査し、適当な領域を選択した。パラレル切片の対応領域を切り出し、切片をリン酸塩緩衝液２％オスミウムテトロキサイド中で後固定を行い、乾燥し、逆さにしたＢＥＥＭカプセルの開口端でエポン（epon）中に包埋した。そうする代わりに、モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１、ビオチン化したウマ抗マウスＩｇ（ベクターラボラトリーズ（Vector Laboratories）、バーリンゲイム、カリフォルニア）および凝集ストレプトアビジン−金溶液（ザイムド（Zymed）、サンフランシスコ、カリフォルニア）とともに、順にインキュベートすることによって、金標識を行った。反応産物を肉眼化するため銀増強（si lver intensification）を用いてオスミウム・テトロオキサイド固定を省いた他は、イムノペルオキシダーゼ反応について述べたのと同様にして、スライドを処理した。ウラニル・アセテートおよびクエン酸鉛を用いて薄い切片を２重染色し、ついでＪＥＭ１００電子顕微鏡で検査した。１次または２次抗体なしで、２重染色ありおよびなしで処理したスライドをコントロールとした。扁桃腺では、表面の上皮がモノクローナル抗体Ｖａｒ３．１により強く染色された（図４ａおよびｂ）。反応性は、層状の扁平上皮の中部および上部層において比較的強かった（上層刺状部（upper stratum spinosum）および顆粒層（stra tum granulosum））が、基底層の細胞は弱い染色を示した。網状クリプト（reti culated crypt）上皮も、モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１で明らかに染色された。扁桃腺リンパ球はモノクローナル抗体Ｖａｒ３．１と反応しなかった。結合組織構成要素も陰性であった（図４ａ）。胚中心において、モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１は、樹状形態の細胞と弱く反応した。上部（ｈｉｇｈ）上皮細脈を含有するいくつかの血管の輝く表面も、モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１で染色された（図４ｃ）。比較すると、扁桃腺表面上皮上でのHermes−３エピトープの発現が最も顕著で、基本的に明らかに発現が少ないのは上部層であった（図４ｄ）。モノクローナル抗体Hermes-３は、胚中心の外側の事実上すべてのリンパ球と強く反応し、繊維芽細胞は隔膜（septae）において強い陽性であった。一方、ほとんどの血管の上皮層およびすべての上部（high）上皮細脈はHermes−３陰性であった（図４ｅ）。電子顕微鏡検査において、扁平上皮細胞の原形質膜はペルオキシダーゼ調製により均一に濃く染色され、通常その染色は表面側の細胞ほど強かった。（図５ａ）。金調製において、金粒子は表面扁平細胞の表面に沿って局在した（図５ｂ）。モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１およびHermes−３によりえられた発現パターンは、扁桃腺においても他のいくつかの組織においても明確に弁別的なものであった。皮膚において、陰性であったケラチン化した表面層（データは示していない）を除いて、ＣＤ４４ｖ６は皮膚の上層に著しく局在していた。真皮において、繊維芽細胞およびほかの基質要素は陰性であったが、毛包および汗腺はモノクローナル抗体Ｖａｒ３．１により明らかに染色された。表皮におけるHermes−３エピトープの発現が、基底に非常に顕著であったが、真皮においては、Hermes− ３エピトープは繊維芽細胞に豊富に存在していた。腸では、腸内細胞がモノクローナル抗体Ｖａｒ３．１によって明らかに染色された。パイエル板の樹状細胞で弱い反応性が見られたが、ＣＤ４４ｖ６は他の構造には存在しなかった。モノクローナル抗体Hermes−３は腸内細胞をさらに強く染色し、Hermes−３エピトープは腸のリンパ、平滑筋および結合組織細胞にも存在した。ＣＤ４４ｖ６は脳の白質または灰白質のニューロンにもグリア細胞にも存在しなかった。末梢神経もまたこの分子を欠いていた。対照的に、白質のグリア細胞はHermes−３に強い陽性であった。実施例Ｖ血液白血球および細胞系におけるＣＤ４４ｖ６の細胞内配置健康な成人ボランティアからおよび慢性炎症性疾病を患う患者から、フィコール勾配（Ficoll gradient）（フィコール−ハイパック（Ficoll-hypaque）、ファルマシア）遠心分離を用いて、ヒトＰＢＬを単離した。ＰＢＬは、新鮮で用いるか、または活性化ブラスト細胞をえるため、３日間、３７ ℃にて１０％ＦＣＳ、グルタミン、Ｈｅｐｅｓ、ピルビン酸ナトリウム、ペニシリンおよびストレプトマイシンを補ったＲＰＭＩ１６４０（ギブコ）中でＰＨＡとＰＷＭ（ギブコ（Gibco）、グランド・アイランド、ニューヨーク）の組合せで刺激して用いた。アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション（ロックビル、メリーランド）より、ヒト細胞系ＨｅＬａ（上皮カルチノーマ）、ＫＧ−１、ＫＧ−１ａ、Ｋ −５６２（白血病細胞）、Ａ５４９（肺カルチノーマ）をえた。Ｕ１６９０（ヒト肺カルチノーマ細胞系）をヒボネン博士（Dr.H.Hirvonen）（医学生化学部、ツルク大学、フィンランド）から、親切にいただいた。ＨａＣａＴ、自発的に不死化した非腫瘍形成性ケラチン生成細胞系は、フセニグ教授（Prof.N.E.Fusenig ）（ドイツガン研究センター、ハイデルベルグ、ドイツ）から、親切にいただいた。すべての接着細胞系は、１０％ヒトＡＢ血清、１０ｍＭＨｅｐｅｓおよび抗生物質を補ったダルベッコ変形最小必要培地（ギブコ）中で培養し、トリプシン−ＥＤＴＡ（ベーリンガー・マンハイム（Boehringer-Mannheim）、ドイツ）を用いて培養（passage）した。血液細胞および接着細胞系（Ｃａ²⁺、Ｍｇ²⁺ フリーＨＢＳＳ中５ｍＭＥＤＴＡではがす）を懸濁液中で染色した。細胞は固定化せずに、または固定化および透過性化（ＰＢＳ中１％ホルムアルデヒド（１０分）、ついで氷冷アセトン（５分）、ついでＰＢＳによる洗浄２回）ののちに染色した。細胞を１次抗体で４℃にて２０分間インキュベートし、５％ＦＣＳ１ｍＭアジ化ナトリウムを含有するＰＢＳ中で２回洗浄した。つぎに、５％ヒトＡＢ血清を含有するＰＢＳ中ＦＩＴＣでコンジュゲートしたヒツジ抗マウスＩｇＧ（シグマ）を２０分間加えた。そののち、細胞を２回洗浄し、１％ホルムアルデヒドを含有するＰＢＳ中で固定化した。ファクスキャン・サイトメーター（FACScan cytometer）（ベクトン・デキンソン（Becton Dickinson）、マウンテン・ビュー、カリフォルニア）を用いて分析を行った。免疫蛍光顕微鏡検査のため、サイトスピン２サイトセントリフュージ（Cytospin 2 cytocentrifuge ）（シャンドン・サザン（Shandon Southern）、サレイ、英国）で細胞を顕微鏡スライド上にスピンさせ、１０％ＰＢＳを含有するグリセロール中スライドに載せた。またはそうする代わりに、接着細胞はグラス・カバースリップ上に増殖させた。そののち、はがすことなくそれらに前記の免疫蛍光顕微鏡検査の手順を行った。ＣＤ４４ｖ６は、ＦＡＣＳ分析で測定したように、ＰＢＬ、単核細胞および顆粒球の表面に存在しなかった（図６）。ＰＷＭ／ＰＨＡ誘導されたイムノブラストおよびプラズマ細胞も、この型のＣＤ４４を発現していなかった。また、インビボで活性化されたＰＢＬ（慢性炎症）は、モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１で表面陰性であった。しかしながら、細胞を免疫蛍光染色の前に透過性化に付すと、非活性化および活性化された細胞の大部分がＶａｒ３．１エピトープを発現した（図６）。陽性細胞の数は、異なる個体において５０から１００％の間であった。蛍光顕微鏡検査において、明らかな反応性が細胞の外縁に顕著に局在しており、さらに細胞質全体に散らばった弱い染色が検出された（図６ｂ）。ＣＤ４４ｖ６は、ＲＮＡレベルでもリンパ球に存在した（図７）。対照的に、Herm es−３エピトープは、ＦＡＣＳおよび免疫蛍光顕微鏡検査で確認されたようにすべての血液白血球サブタイプの表面に豊富に出現されていた（図６）。Ｖａｒ３．１およびHermes−３の洗剤耐性を調べる際に、ガラススライド上に増殖したＨａＣａＴ細胞およびＰＢＬのサイトセントリフュージ調製物を用いた。細胞を前記のようにまず固定化し、透過性化した。そののち、０．５％ＮＰ− ４０含有または非含有ＰＢＳ中で４℃にて５分間細胞をインキュベートし、２回洗浄した。つぎに、細胞を前記のように免疫蛍光で染色し、蛍光顕微鏡を用いて分析した。細胞をまず染色したのちに洗剤で処理したばあいには、同様の結果がえられた。ＣＤ４４は細胞骨格に関連していることが知られているので、我々はＣＤ４４ｖ６も細胞骨格タンパク質に連結しているかどうかを決定した。０．５％非イオン性洗剤ＮＰ−４０含有または非含有ＰＢＳ中で透過性化されたＨａＣａＴ細胞をインキュベートし、免疫蛍光で染色した（図８）。免疫蛍光顕微鏡検査により、かなりの量のＣＤ４４ｖ６がＮＰ−４０非溶解性の形であることが示された。対照的に、ＮＰ−４０処理の間にHermes−３含有型のＣＤ４４のかなりの量が消失した。ＰＢＬを分析したばあいにも、同様の結果がえられた。ＨａＣａＴ細胞のＮＰ−４０細胞溶解物からは、ウエスタン・ブロッティングまたは３５Ｃ−メチオニン、３５Ｓ−システイン、３５硫酸塩および１４Ｃ−グルコサミン標識後の免疫沈降でＣＤ４４ｖ６に対する分子集団（molecular mass）はえられなかった。おそらく、これらの細胞でＣＤ４４ｖ６のＮＰ−４０溶解性が乏しいせいであろう。さらに、モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１も沈降性の乏しい抗体であることがわかった。しかしながら、ＳＤＳ溶解されたＨａＣａＴ細胞のイムノブロッティングにおいて、弱い≒２００ｋＤバンドが見られた（データは示していない）。ヒトケラチン生成細胞（ＨａＣａＴ）、上皮カルチノーマ（ＨｅＬａ、Ｕ１６９０、Ａ５４９）および造血性（ＫＧ−１、ＫＧ−１ａ、Ｋ５６２）細胞系は、すべて表面上にＣＤ４４ｖ６を欠いていた。しかし、それらすべては透過性化ののち調べると（ＨａＣａＴ、ＨｅＬａ、Ｕ１６９０）、モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１に明確な細胞内染色を示した。ＣＤ４４ｖ６とは対照的に、すべての細胞系は細胞表面および細胞質双方にHermes−３反応性を示した。実施例VI ヒト腫瘍におけるＣＤ４４ｖ６のダウンレギュレーション悪性の拡張における異なるＣＤ４４型の役割は、現在論争中である。したがって、我々は良性（７パピローマ）および悪性（合計３０：５転移性、５グレード III、１０グレードIIおよび１０グレードＩ頭および首の偏平細胞カルチノーマ）上皮腫瘍をＣＤ４４ｖ６の発現に対して染色した。これらの実験から、良性腫瘍のすべての上皮細胞は、隣接する健康な組織の正常同等細胞と同様に、モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１で染色されることが示された。驚いたことに、悪性の領域におけるすべてのカルチノーマサンプルで、ＣＤ４４ｖ６の発現はダウンレギュレーションされていた。一般に、より分化したカルチノーマほど、分化していないものよりも、モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１により強い反応性を示した。例として、良性パピローマおよび偏平細胞カルチノーマの染色パターンを図９に示す。偏平カルチノーマすべての遠隔転移病巣は、実質的にモノクローナル抗体Ｖａｒ３．１に陰性であった。対照的に、これらの標本において、Hermes-３はすべての良性および転移性付着を含む大部分の悪性細胞タイプを鮮やかに染色した（図９）。実施例VII 炎症性疾病患者の血清中ＣＤ４４ｖ６レベルドット・ブロットアッセイを用いて、正常被験者および慢性の炎症性疾病を患う患者由来の血清サンプルからの一連の希釈を分析した。血清サンプルまたはＢＳＡ（コントロールとして５０μｇ／ウェル）の連続希釈を、ドット・ブロット器具を用いてニトロセルロース膜（シュライシャ・シュエル）上に移した。１％無脂肪ミルク中で室温にて２時間ブロッキングを行い、ついでＰＢＳ中で２回洗浄した。そののち、膜を短冊状に切って、その短冊をウエスタン・ブロッティングで述べたように染色した。正常血清は、モノクローナル抗体Ｖａｒ３．１と反応性を示さなかった。対照的に、慢性疾病患者由来の血清はＣＤ４４ｖ６特異的モノクローナル抗体に強く染色される物質を含有していた（図１０）。Hermes−３反応物質はこの方法では検出されなかった。

【手続補正書】特許法第１８４条の８第１項【提出日】１９９５年５月１９日【補正内容】請求の範囲（請求の範囲第１〜１０項を以下のように補正する。）１．エクソンｖ６によりコードされるアミノ酸配列を含有するＣＤ４４の型と結合するが、ＣＤ４４の９０キロダルトン標準リンパ球型には結合しないモノクローナル抗体であって、インターナショナル・デポシタリー・オーソリティーＤＭＳ、ドイチェ・サムルング・フォン・ミクロオルガニスメン・ウント・ゼルクルツレン・ゲーエムベーハーに受領番号ＡＣＣ２１３１として寄託されたハイブリドーマ細胞系により産生されたＶａｒ３．１であるモノクローナル抗体。２．請求の範囲第１項記載の抗体と組織または細胞を反応させる、組織または細胞中のＣＤ４４ｖ６の存在を検出する方法。３．前記組織または細胞がヒト起源のものである、請求の範囲第２項記載の方法。４．動物またはヒト由来の扁平上皮細胞が悪性転換しているかどうかを検出する方法であって、ａ）バイオプシーまたは外科手術によりアッセイすべき組織サンプルをえること、ｂ）前記組織サンプルを、エクソンｖ６によりコードされるアミノ酸配列を含有するＣＤ４４の型と結合するが、ＣＤ４４の９０キロダルトン標準リンパ球型には結合しないモノクローナル抗体と反応させることにより、組織中に存在するＣＤ４４ｖ６の量を測定すること、ｃ）工程ｂ）でえられた結果を、正常であることが分かっている基準サンプルを用いて同様の反応を行った結果と比較すること、ｄ）基準サンプルに比べて、組織サンプル中のＣＤ４４ｖ６の間の差が統計的に有意に減少しているものを、悪性転換組織であると同定することを特徴とする検出方法。５．上皮起源の悪性細胞の転移能力を測定する方法であって、ａ）バイオプシーまたは外科手術によりアッセイすべき腫瘍サンプルをえること、ｂ）前記腫瘍サンプルを、請求の範囲第１項記載のモノクローナル抗体と反応させることにより、腫瘍サンプル中に存在するＣＤ４４ｖ６の量を測定すること、ｃ）工程ｂ）でえられた結果を、前記腫瘍サンプルと同じタイプの腫瘍細胞であるが、転移性でないことが分かっている基準サンプルを用いて同様の反応を行った結果と比較すること、ｄ）基準サンプルに比較して、組織サンプル中のＣＤ４４ｖ６のレベルが統計的に有意に減少しているものを、高度な転移能力をもつ腫瘍であると同定すること特徴とする検出方法。６．患者における炎症性の疾病を検出する方法であって、ａ）前記患者から血清サンプルをえること、ｂ）前記腫瘍サンプルを、エクソンｖ６によりコードされるアミノ酸配列を含有するＣＤ４４の型と結合するが、ＣＤ４４の９０キロダルトン標準リンパ球型には結合しないモノクローナル抗体と反応させることにより、存在するＣＤ４４ｖ６の量を測定すること、ｃ）工程ｂ）でえられた結果を、正常個体由来の血清サンプルを用いて同様の反応を行った結果と比較すること、ｄ）正常個体由来の血清サンプルにおけるＣＤ４４ｖ６の量に比較して、その血清サンプル中のＣＤ４４ｖ６が統計的に有意に増加している個体を、炎症性疾病があると同定することを特徴とする検出方法。７．前記モノクローナル抗体が請求の範囲第１項記載の抗体である、請求の範囲第６項記載の方法。８．前記炎症性疾病がリウマチ性関節炎または炎症性結腸疾病である請求の範囲第６〜７項のいずれかに記載の方法。９．ＣＤ４４ｖ６の量をドット・ブロット・アッセイにより測定する、請求の範囲第６〜８項のいずれかに記載の方法。 10．イムノペルオキシダーゼ染色を用いてＣＤ４４ｖ６の存在を検出する、請求の範囲第２〜８項のいずれかに記載の方法。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁶ 識別記号庁内整理番号ＦＩＣ１２Ｒ 1:91） (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＴ，ＡＵ，ＢＧ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＨＵ，ＪＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＵ，ＬＶ，ＮＬ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＥ，ＳＩ，ＳＫ，ＵＡ，ＵＳ，ＵＺ (72)発明者サルミ、マルコフィンランド共和国、フィン―20500 ツルクベヘ―ヘメーンカツ 12 アーベー 30

Claims

【特許請求の範囲】１．エクソンｖ６によりコードされるアミノ酸配列を含有するＣＤ４４の型と結合するが、ＣＤ４４の９０キロダルトン標準リンパ球型には結合しないモノクローナル抗体であって、インターナショナル・デポシタリー・オーソリティーＤＭＳ、ドイチェ・サムルング・フォン・ミクロオルガニスメン・ウント・ゼルクルツレン・ゲーエムベーハーに受領番号ＡＣＣ２１３１として寄託されたＶａｒ３．１であるモノクローナル抗体。２．請求の範囲第１項記載の抗体と組織または細胞を反応させる、組織または細胞中のＣＤ４４ｖ６の存在を検出する方法。３．前記組織または細胞がヒト起源のものである、請求の範囲第２項記載の方法。４．動物またはヒト由来の組織が悪性転換しているかどうかを検出する方法であって、ａ）バイオプシーまたは外科手術によりアッセイすベき組織サンプルをえること、ｂ）前記組織サンプルを、エクソンｖ６によりコードされるアミノ酸配列を含有するＣＤ４４の型と結合するが、ＣＤ４４の９０キロダルトン標準リンパ球型には結合しないモノクローナル抗体と反応させることにより、組織中に存在するＣＤ４４ｖ６の量を測定すること、ｃ）工程ｂ）でえられた結果を、正常であることが分かっている基準サンプルを用いて同様の反応を行った結果と比較すること、ｄ）基準サンプルに比べて、組織サンプル中のＣＤ４４ｖ６の間の差が統計的に有意に減少しているものを、悪性転換組織であると同定することを特徴とする検出方法。５．前記組織が扁平上皮組織である、請求の範囲第４項記載の方法。６．悪性細胞の転移能力を測定する方法であって、ａ）バイオプシーまたは外科手術によりアッセイすべき腫瘍サンプルをえること、ｂ）前記腫瘍サンプルを、請求の範囲第１項記載のモノクローナル抗体と反応させることにより、腫瘍サンプル中に存在するＣＤ４４ｖ６の量を測定すること、ｃ）工程ｂ）でえられた結果を、前記腫瘍サンプルと同じタイプの腫瘍細胞であるが、転移性でないことが分かっている基準サンプルを用いて同様の反応を行った結果と比較すること、ｄ）基準サンプルと組織サンプル中のＣＤ４４ｖ６のレベルの差が統計的に有意であるものを、高度な転移能力をもつ腫瘍であると同定することを特徴とする検出方法。７．前記腫瘍サンプルが上皮起源であって、高度な転移能力は、基準サンプルに比べて統計的に有意なＣＤ４４ｖ６の減少により示されるものである請求の範囲第６項記載の方法。８．減少患者における炎症性の疾病を検出する方法であって、ａ）前記患者から血清サンプルをえること、ｂ）前記腫瘍サンプルを、エクソンｖ６によりコードされるアミノ酸配列を含有するＣＤ４４の型と結合するが、ＣＤ４４の９０キロダルトン標準リンパ球型には結合しないモノクローナル抗体と反応させることにより、存在するＣＤ４４ｖ６の量を測定すること、ｃ）工程ｂ）でえられた結果を、正常個体由来の血清サンプルを用いて同様の反応を行った結果と比較すること、ｄ）正常個体由来の血清サンプルにおけるＣＤ４４ｖ６の量に比較して、その血清サンプル中のＣＤ４４ｖ６が統計的に有意に増加している個体を、炎症性疾病があると同定することを特徴とする検出方法。９．前記モノクローナル抗体が請求の範囲第１項記載の抗体である、請求の範囲第８項記載の方法。 10．前記炎症性疾病がリウマチ性関節炎または炎症性結腸疾病である請求の範囲第８〜９項のいずれかに記載の方法。 11．ＣＤ４４ｖ６の量をドット・ブロット・アッセイにより測定する、請求の範囲第２〜１０項のいずれかに記載の方法。 12．イムノペルオキシダーゼ染色を用いてＣＤ４４ｖ６の存在を検出する、請求の範囲第２〜１０項のいずれかに記載の方法。