JPH08509808A

JPH08509808A - 神経糸状タンパク質遺伝子発現およびアルツハイマー病の検出

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Publication number: JPH08509808A
Application number: JP6523556A
Authority: JP
Inventors: デ・ラ・モンテ，スザンヌ・エム; ワンズ，ジャック・アール
Original assignee: ザ・ジェネラル・ホスピタル・コーポレーション
Priority date: 1993-04-20
Filing date: 1994-04-20
Publication date: 1996-10-15
Anticipated expiration: 2019-03-31
Also published as: JP2004097227A; AU674581B2; DK0697893T3; EP1564293B1; WO1994023756A1; DE69434844D1; ATE406444T1; NZ266072A; KR100392244B1; JP3513859B2; ES2255054T3; CA2161097A1; EP0697893A1; ES2312913T3; EP1564293B9; EP0697893B1; EP1564293A1; DE69435136D1; AU6666994A; DE69434844T2

Abstract

(57)【要約】本発明は、アルツハイマー病、神経外胚葉腫瘍、悪性アストロサイトーマ、およびグリオブラストーマに関連する新しいタンパク質を発現する組換え宿主に関する。本発明は、特に、神経糸状タンパク質をコードする遺伝子を含む組換え宿主およびベクターに関する。本発明は、実質的に純粋な神経糸状タンパク質、神経糸状タンパク質の存在を検出するための免疫診断法ならびに分子診断法、および遺伝子治療における神経糸状タンパク質をコードする核酸配列の使用に関する。

Description

【発明の詳細な説明】神経糸状タンパク質遺伝子発現およびアルツハイマー病の検出発明の技術分野本発明は、遺伝子工学および分子生物学の分野に関する。この発明は、アルツハイマー病、神経外胚葉性腫瘍、悪性星状細胞腫（アストロサイトーマ）、および膠芽細胞腫（グリオサイトーマ）に付随する新規タンパク質を発現する組換え宿主に関する。この発明は、詳しくは、神経糸状タンパク質（neural thread pr oteins）をコードする遺伝子を含む組換え宿主およびベクターに関する。この発明はまた、実質的に純粋な神経糸状タンパク質、神経糸状タンパク質の存在を検出するための免疫診断および分子診断法、および遺伝子療法における神経糸状タンパク質をコードする核酸配列の使用に関する。発明の背景アルツハイマー病アルツハイマー病（ＡＤ）は米国における痴呆の最も頻度の高い原因であり、毎年、２００万人以上の人が該疾患に罹患している。それは、記憶の喪失、錯乱、および漸進的な身体劣化を特徴とする退行性の脳疾患である。それは、第四の一般的死因である。この疾患の病因はわかっていないが、種々のウイルス、毒素、重金属、並びに遺伝的欠損などが挙げられている。この疾患は現在のところ不治である。ごく最近までアルツハイマー病は、老人性痴呆として分類される症例の比較的少数の原因であると考えられてきた。繰り返し性の穏やかな発作、甲状腺異常、アルコール中毒、およびある種のビタミンの不足を含む他の要因がかかる状態に導きうるが、これらの多くは潜在的に治癒しうるものである。それゆえ、アルツハイマー病に特異的な診断試験は、これら状態のすべてに共通する兆候を表す患者の臨床診断および適切な臨床治療に非常に有用であることが理解される。アルツハイマー病を有する個体の脳は、ニューロン細胞体内の神経原線維のもつれ（neurofibrillary tangles）、および神経炎性（または老年）斑として生じるコンゴ親和性の（congophilic）繊維状物質の病的な蓄積を特徴とする。神経原線維のもつれはまた、ある種の脳血管壁にも認められる。神経原線維のもつれの主要な有機的構造成員は、対をなしたらせん状のフィラメントである。定性的に区別できないアミロイドの沈着はまた正常人の老年の脳にも生じるが、その数ははるかに少なく、地誌的な分布も限られたものである。アルツハイマー病および他の神経学的疾患の神経炎性斑および神経原線維のもつれに認められるタンパク質の特徴付けに関し、近年、相当の研究活動がなされている。グレナー（Glenner）らによって最初に記載されたアミロイドタンパク質の一つはクローニングされ、配列が決定されている（グレナーら、Biochem.Bi ophys.Res.Commun.１２０：１１３１〜１１３５（１９８４）；米国特許第４,６６６,８２９号）。神経炎斑および血管中に認められるＡ４アミロイドタンパク質は、グリコシル化された細胞表面レセプターとして機能すると提唱されているタンパク質である６９５アミノ酸前駆体の成員であることが決定されている（マスターズ（Masters）ら、Proc.Natl.Acad.Sci.ＵＳＡ８２：４２４５〜４２４９（１９８５）、カング（Kang）ら、Nature３２５：７３３〜７３６（１９８７））。加えて、このアミロイドタンパク質は、細胞接着分子として、およびカルシウムイオンチャネルタンパク質として機能することが提唱されている（フーパー（Hooper）、Ｊ.ＮＩＨ Res.４：４８〜５４（１９９２）；レンズバーガー（Re nsberger）、Wayward Protein Molecule May Be Elusive Killer of Brain Cell s、ワシントンポスト紙、１９９３年１月２５日、Ａ３の谷１（１９９３））。Ａ４をコードする遺伝子は第２１染色体上に位置するが（カングら、上記文献；ゴールドガバー（Goldgaber）ら、Science２３５：８７７〜８８０（１９８７）；タンジ（Tanzi）ら、Science２３５：８８０〜８８５（１９８７）；セント・ジョージーヒスロプ（St.George−Hyslop）ら、Science２３５：８８５〜８８９（１９８７））、家族性の該疾患とは関係がないように思われる（バン・ブロークホーベン（Van Broekhoven）ら、Nature３２９：１５３〜１５５（１９８７））。アミロイドＡ４およびβタンパク質、その高分子量前駆体、および膵臓糸状タンパク質（pancreatic thread protein）（ＰＴＰ）との間にタンパク質配列の相同性は、もしあったにしても殆どないと思われる（グロス（Gross）ら、J.Clin.Invest.７６：２１１５〜２１２６（１９８５））。ユビキチン、ＡＬＺ−５０、微小管結合タンパク質τおよびＭＡＰ２、およびニューロフィラメントタンパク質を含む多くの他のタンパク質が該疾患に関係していると考えられた（たとえば、マネット（Manetto）ら、Proc.Natl.Acad.Sci. ＵＳＡ８５：４５０２〜４５０５（１９８８）；ウォロジン（Wolozin）ら、Sci ence２３２：６４８〜６５１（１９８６）；セルコエ（Selkoe）、Neurobiol.Ag ing７：４２５〜４３２（１９８６）；ペリー（Perry）ら、Alterations of the Neuronal Cytoskeleton in Alzheimer's Disease、プレナム、ニューヨーク、１３７〜１４９頁（１９８７）参照）。さらに最近では、α₁−アンチ−キモトリプシン（α₁−anti-chymotrypsin）と呼ばれるセリンプロテアーゼインヒビターがアルツハイマー病のアミロイド沈着物中に認められている（アブラハム（Ab raham）ら、Cell５２：４８７〜５０１（１９８８））。現在のところ、臨床的に使われているものでアルツハイマー病の診断試験に有用なものはない。信頼性のある診断は、死後または生存中に脳の生検を取り、該疾患を特徴付ける特徴的な斑、もつれ、対のらせん状フィラメント、および他の脳血管沈着を明らかにすることによってのみ可能である。そのような侵入性の外科的手段は本来危険であり、それゆえ利用されることはまずない。その結果、アルツハイマー病の臨床における誤診断は約２０％〜３０％と推定されている。糸状タンパク質（Thread Proteins）原型となる糸状タンパク質分子は膵臓糸状タンパク質（ＰＴＰ）であり、このタンパク質は中性のｐＨで不溶性のフィブリルを形成するが酸性またはアルカリ性のｐＨでは高度に可溶性であるという異常な物理特性を有する（グロスら、上記文献）。ＰＴＰは非常に広く分布し、膵臓の胞状細胞によって合成され、膵液中に１ｍｇ／ｍｌを越える濃度で分泌される（同上）。ＰＴＰに対するモノクローナル抗体を用い、糸状タンパク質の免疫反応性が増加することがアルツハイマー病の病変を有する脳で示されている（オズターク（Ozturk）ら、Proc.Natl. Acad.Sci.ＵＳＡ８６：４１９〜４２３（１９８９））。加えて、非常の高感度の前（forward）サンドイッチ放射免疫（immunoradiometric）アッセイを用い、ＰＴＰと脳における関連タンパク質とに共通する少なくとも３つの異なる抗原性エピトープが存在することが示された（同上）。このような類似性にも拘わらず、膵臓糸状タンパク質と神経糸状タンパク質とは殆ど確実に異なるものである。というのは、そのｍＲＮＡ分子およびタンパク質はサイズが異なり、膵臓糸状タンパク質中に存在する抗原性エピトープの多くは脳組織では検出されないからである（ド・ラ・モント（de la Monte）ら、J.Clin.Invest.８６：１００４〜１０１３（１９９０）；ド・ラ・モントら、J.Neurol.Sci.１１３：１５２〜１６４（１９９２）；ド・ラ・モントら、Ann.Neurol.３２：７３３〜７４２（１９９２））。糸状タンパク質の中枢神経系の形態（以下、「神経糸状タンパク質」（ＮＴＰ）と称する）は、アルツハイマー病およびダウン症候群の脳組織中で同定されている（ウォンズ（Wands）ら、国際出願公開第ＷＯ９０／０６９９３号）。ＮＴＰは、該疾患に特徴的な神経病理学的変化が存在する研究されたすべてのアルツハイマー病の脳で認められている（同上）。食塩水で抽出可能な可溶性の画分は、約１７〜２０ｋＤの分子量を有する（同上）。アルツハイマー病の脳の種々の領域におけるＮＴＰ免疫反応性を定量したところ、対照の脳の相当領域が１〜１１ｎｇ／ｇ組織（平均＝５ｎｇ／ｇ組織）であるのに比べて、１２〜２９５ｎｇ／ｇ組織（平均＝１１６ｎｇ／ｇ組織）のレベルであることが明らかとなった（同上）。ＰＴＰの膵臓形態に対して向けられたモノクローナル抗体を用いて行った免疫細胞化学は、ＮＴＰがアルツハイマー病およびダウン症候群の両方の脳において細胞内、神経網内の微細な突起内に局在するか、または細胞外性であることを示した（同上）。２つの型の細胞：すなわちニューロンおよび星状細胞がＮＴＰを含有する（同上）。罹患したニューロンは大きなピラミッド状の形態であり、アルツハイマー病の脳においてよく知られている神経原線維のもつれを一般に含有する（同上）。ニューロン内でのＮＴＰの蓄積が本質的に重要でありアルツハイマー病の病変の発生に必然的に関連しているということは、ダウン症候群の脳ではＮＴＰの免疫標識の同一のパターンが存在するのに対照の脳には存在しないことによって確証される（同上）。アルツハイマー病と同じ構造上の異常が、痴呆の有無を問わずダウン症候群の中年の個体すべての脳に認められることに注意することは重要である。ダウン症候群の患者の家族においてはアルツハイマー病の発症率も高い。さらに、ＮＴＰを含有するニューロン密度の領域における差異は、アルツハイマー病およびダウン症候群の両者において神経原線維のもつれの密度分布と一致する。このこともまた、ＮＴＰがアルツハイマー病の病理と密接な関係にあるという証拠をさらに提供する。ＮＴＰが異所性の細胞代謝または輸送の結果としてニューロンの核周囲部細胞体内に蓄積するのかどうかについては、まだわかっていない。発明の要約アルツハイマー病に罹患しているかまたはその危険のあると思われる個体に行うことのできる信頼性のある診断試験に対する必要性が存在する。本発明は、そのような必要性を満たすものであり、さらに利点を提供する。これら目的および他の目的が本発明によって実現される仕方は、以下に記載する要約および詳細な記載から明らかとなるであろう。特に定義しない限り、本明細書において使用する術語は、本発明が属する当該技術分野においてよく理解されているのと同じ意味を有する。引用した刊行物はすべて、参照のため本明細書中に引用する。この発明は、アルツハイマー病、神経外胚葉性腫瘍、悪性星状細胞腫、および膠芽細胞腫に付随する新規タンパク質を発現する組換え宿主に関する。この発明はとりわけ、約８ｋＤａ、１４ｋＤａ、１７ｋＤａ、２１ｋＤａ、２６ｋＤａまたは４２ｋＤａの分子量を有する神経糸状タンパク質（ＮＴＰ）をコードする遺伝子を含有する組換え宿主およびベクターに関する。この発明はまた、実質的に純粋な神経糸状タンパク質、神経糸状タンパク質の存在を検出するための免疫診断および分子診断法、および遺伝子療法における神経糸状タンパク質をコードする核酸配列の使用に関する。とりわけ、本発明は、（ａ）検出可能なレベルのＮＴＰを含有すると思われるヒト個体から採取した生物学的試料を該ＮＴＰと結合しうる分子と接触させ、ついで（ｂ）該ＮＴＰに結合した該分子を検出することを特徴とする、ヒト個体におけるＮＴＰの検出または定量法を包含する。本発明はさらに、該結合分子が（ａ）天然の不純物を実質的に含まない抗体、（ｂ）モノクローナル抗体および（ｃ）（ａ）または（ｂ）の断片よりなる群から選ばれたものである、上記方法を包含する。本発明はさらに、該検出分子が検出可能なように標識されており、そのような結合分子の組み合わせを用いる上記方法を包含する。本発明はさらに、本発明の組換えヒトＮＴＰに由来するポリヌクレオチドプローブを用いた、生物学的試料中のＮＴＰをコードする遺伝子配列の存在を検出する方法を包含する。本発明はさらに、ヒト個体における状態の存在を決定する方法を包含し、該状態は、アルツハイマー病、神経外胚葉性腫瘍の存在、悪性星状細胞腫の存在、および膠芽細胞腫の存在よりなる群から選ばれたものが含まれるが、これらに限られるものではない。本発明はさらに、アルツハイマー病に罹患していると思われるヒト個体におけるアルツハイマー病の存在の診断方法であって、（ａ）ＮＴＰを有していると思われる該個体から採取した生物学的試料をＮＴＰを同定しうる分子とともにインキュベートし、ついで（ｂ）該試料中の結合した該分子を検出する（該検出は該個体がアルツハイマー病に罹患していることを示す）ことを特徴とする方法を包含する。本発明はさらに、神経外胚葉性腫瘍に罹患していると思われるヒト個体における神経外胚葉性腫瘍の存在の診断方法であって、（ａ）ＮＴＰを有していると思われる該個体から採取した生物学的試料をＮＴＰを同定しうる分子とともにインキュベートし、ついで（ｂ）該試料中の結合した該分子を検出する（該検出は該個体が神経外胚葉性腫瘍に罹患していることを示す）ことを特徴とする方法を包含する。本発明はさらに、悪性星状細胞腫に罹患していると思われるヒト個体における悪性星状細胞腫の存在の診断方法であって、（ａ）ＮＴＰを有していると思われる該個体から採取した生物学的試料をＮＴＰを同定しうる結合分子の存在下でインキュベートし、ついで（ｂ）該試料中の結合した該分子を検出する（該検出は該個体が悪性星状細胞腫に罹患していることを示す）ことを特徴とする方法を包含する。本発明はさらに、膠芽細胞腫に罹患していると思われるヒト個体における膠芽細胞腫の存在の診断方法であって、（ａ）ＮＴＰを有していると思われる該個体から採取した生物学的試料をＮＴＰを同定しうる結合分子の存在下でインキュベートし、ついで（ｂ）該試料中の結合した該分子を検出する（該検出は該個体が膠芽細胞腫に罹患していることを示す）ことを特徴とする方法を包含する。本発明はさらに、生物学的試料を該分子に接触させる前に該試料をヒト個体から採取する上記方法を包含する。本発明はさらに、該タンパク質に結合した該分子の検出をインシトゥ造影により行う上記方法を包含する。本発明はさらに、該タンパク質に結合した該分子の検出をインビボ造影により行う上記方法を包含する。本発明はさらに、該生物学的試料と該結合分子との反応を該タンパク質の存在および分布を決定するのに充分な仕方および条件下で行う上記方法を包含する。本発明はさらに、ＮＴＰを検出しうるように標識した結合分子をヒト個体に投与する上記方法を包含する。本発明はさらに、該結合分子が該タンパク質にインビボで結合する上記方法を包含する。本発明はさらに、ＮＴＰが実質的に天然の不純物を含まず、約４２ｋＤａの分子量を有する上記方法を包含する。本発明はさらに、ＮＴＰが実質的に天然の不純物を含まず、約２６ｋＤａの分子量を有する上記方法を包含する。本発明はさらに、ＮＴＰが実質的に天然の不純物を含まず、約２１ｋＤａの分子量を有する上記方法を包含する。本発明はさらに、ＮＴＰが実質的に天然の不純物を含まず、約１７ｋＤａの分子量を有する上記方法を包含する。本発明はさらに、ＮＴＰが実質的に天然の不純物を含まず、約１４ｋＤａの分子量を有する上記方法を包含する。本発明はさらに、ＮＴＰが実質的に天然の不純物を含まず、約８ｋＤａの分子量を有する上記方法を包含する。本発明はまた、とりわけ、イムノアッセイが固相支持体に結合した２つの異なる抗体と、それと組み合わせた溶液中の検出しうるように標識した第三の異なる抗体を含む上記方法を包含する。本発明はまた、（ａ）ＮＴＰをコードするヒト遺伝子を含む組換え宿主を培養し、ついで（ｂ）該宿主から該ＮＴＰを単離することを特徴とする、ＮＴＰの製造方法に関する。本発明はさらに、該方法によって得られた実質的に純粋なＮＴＰに関する。本発明はまた、ＮＴＰ核酸配列には相補的であるがＰＴＰ核酸配列には非相同である１５−〜３０−マーのアンチセンスオリゴヌクレオチド、並びに該オリゴヌクレオチドおよび薬理学的に許容しうる担体を含む医薬組成物に関する。本発明はまた、ＮＴＰ核酸配列には相補的であるがＰＴＰ核酸配列には非相同である標的配列を含むリボザイム、並びに該リボザイムおよび薬理学的に許容しうる担体を含む医薬組成物に関する。本発明はまた、許容しうる担体または発現ベクターによりＮＴＰ分子の脳への薬物送達（輸送）を行う方法に関する。本発明はまた、種々のＮＴＰ遺伝子（核酸配列）と三重鎖領域を形成し、ＰＴＰ核酸配列には非相同であるオリゴデオキシヌクレオチド、並びに該オリゴデオキシヌクレオチドおよび薬理学的に許容しうる担体を含む医薬組成物に関する。本発明はまた、アルツハイマー型のニューロン変性の痴呆を緩和または改善するためのＮＴＰ由来分子またはその断片の治療学的使用に関する。本発明はまた、散発性および家族性のアルツハイマー病の識別診断法に関する。図面の簡単な記載図１（パネルＡ−Ｊ）は、中枢神経系由来の腫瘍における神経糸状タンパク質の免疫反応性を示す。図２は、前サンドイッチモノクローナル抗体ベースの放射免疫アッセイ（Ｍ− ＩＲＭＡ）により測定したＰＮＥＴＩ、ＰＮＥＴ２、Ａ１７２、Ｃ６、およびＨｕｈ７肝細胞癌腫細胞中の神経糸状タンパク質レベルを示すグラフを示す。図３は、Ｔｈ９モノクローナル抗体を用いた免疫沈降およびウエスタンブロット分析により決定したＳＨ−Ｓｙ５ｙ、Ａ１７２、およびＣ６細胞中の神経糸状タンパク質の分子サイズを示す。図４は、³⁵Ｓ−メチオニンを用いたパルスチェイス代謝標識、およびＴｈ９モノクローナル抗体を用いた免疫沈降（左パネル）により示された、ＰＮＥＴ１細胞（ａ）およびＣ６膠芽細胞腫細胞（ｂ）中の神経糸状タンパク質の分子サイズを示す。分子量は８、１４、１７、２１、２６および４２ｋＤａである（矢印）。図５は、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ／Ｍ−ＩＲＭＡにより、ＳＨ−Ｓｙ５ｙ、ＰＮＥＴ１、Ａ１７２、およびC６細胞中の２１ｋＤａおよび１７ｋＤａ神経糸状タンパク質の存在およびＨｕｈ７細胞中の該タンパク質の不在を示す５つの一連のグラフを示す。図６は、Ｃ６膠芽細胞腫細胞中の２１ｋＤａ神経糸状タンパク質がリン酸化されていることを示すゲルを示す。図７は、増殖期のＰＮＥＴ１細胞における変化した神経糸状タンパク質発現を示す棒グラフを示す。図８（パネルＡ−Ｆ）は、細胞増殖が停止し一夜血清飢餓（欠乏）させたＰＮＥＴ１細胞の変化した表現型を示す。図９は、１−９ａ部分ｃＤＮＡ配列を示し、図９ａは該１−９ａｃＤＮＡの５'領域に対応する第二の５'アンカーＰＣＲ産物の部分配列（ＷＰ５'配列）を示す。図１０は、１−９ａとヒトＰＴＰおよびＲｅｇ遺伝子（ヒトＰＴＰのゲノムクローンに対応する核酸配列）との部分配列のアラインメントを示す。図１０ａは、１−９ａとヒトＲｅｇ遺伝子のエクソン２とのアラインメント、および１−９ａの第一の５'アンカ−ＰＣＲ産物（ＷＰ０３−４１７）とエクソン２およびＲｅｇとのアラインメントを示す。図１０ｂは、１−９ａおよびその第二の５'アンカーＰＣＲ産物（ＷＰ５'）とＡＤ３−４およびＡＤ２−２ｃＤＮＡとのアラインメントを示す。図１１は、ＨＢ４ｃＤＮＡの部分核酸配列およびそれから導かれたアミノ酸配列並びにタンパク質親水性ウインドウプロット（protein hydrophilicity win dow plot）を示す。図１１ａは、ＨＢ４とヒトＰＴＰとのアラインメントを示す。図１１ｂは、ＨＢ４とヒトＲｅｇ遺伝子とのアラインメントを示す。図１２（パネルＡ−Ｃ）は、神経外胚葉性腫瘍細胞株およびラット膵臓における１−９ａ中枢神経系神経糸状タンパク質ｃＤＮＡ配列に対応するｍＲＮＡ分子の発現を示す。図１３（パネルＡおよびＢ）は、ヒト脳における１−９ａ中枢神経系神経糸状タンパク質ｃＤＮＡ配列に対応するｍＲＮＡ転写物を示す。この図はまた、老年の匹敵対照に比べてアルツハイマー病の脳において一層高レベルの１−９ａ中枢神経系神経糸状タンパク質関連ｍＲＮＡを示している（パネルＡ）。パネルＢは、老年の対照に比べてアルツハイマー病において分子サイズの小さなｍＲＮＡが豊富な４つの異なる転写物を示す。図１４（パネルＡ−Ｃ）は、神経外胚葉性細胞株におけるＲＴ／ＰＣＲ由来ｃＤＮＡの１−９ａサザーンブロット分析を示す。神経外胚葉細胞株における１− ９ａｍＲＮＡのＡ−およびＢ−ＰＣＲ増幅、新生のラット（ＮＢ）脳、アルツハイマー病の脳、および老年対照脳を使用。パネルＡはパネルＢよりも長く暴露したものである。パネルＣはＯ１８ラットＰＴＰプローブを用いた同ブロットのハイブリダイゼーションを示す。図１５（パネルＡおよびＢ）（ＳＥ−ＲＴ／ＰＣＲ）は、ｍＲＮＡを逆転写し、１−９ａ部分ｃＤＮＡの既知配列に対応するプライマーを用いて増幅することによってＳＨ−Ｓｙ５ｙ細胞から単離した幾つかのクローンとの１−９ａおよびＯ１８プローブのハイブリダイゼーションを示す。図１６、１６ａおよび１６ｂは、アルツハイマー病の脳ライブラリーから単離したＡＤ２−２ｃＤＮＡの部分核酸配列を示す。図１６はまた、ＡＤ２−２Ｔ７の親水性ウインドウプロットを示す。図１６ｃ、１６ｄ、１６ｅおよび１６ｆは、アルツハイマー病の脳ライブラリーから単離したＡＤ３−４ｃＤＮＡの部分核酸配列を示す。図面１６ｃはまた、ＡＤ３−４の親水性ウインドウプロットを示す。図１６ｇ、１６ｈおよび１６ｉは、アルツハイマー病の脳ライブラリーから単離したＡＤ４−４ｃＤＮＡの部分核酸配列を示す。図１６ｊは、アルツハイマー病の脳ライブラリーから単離したＡＤ１６ｃ（ＡＤ１０−７とも称する）ｃＤＮＡの部分核酸配列を示す。図面１６ｊはまた、ＡＤ１６ｃ−Ｔ７の親水性ウインドウプロットを示す。図１６ｋは、アルツハイマー病のライブラリーから単離したＡＤ１０−７ｃＤＮＡクローンの完全ヌクレオチド配列を示す。図１６ｌは、アルツハイマー病の脳ライブラリーから単離したＡＤ１６ｃｃＤＮＡの完全核酸配列を示す。図１７は、ＡＤ２−２とヒトＲｅｇ遺伝子との部分配列のアラインメントを示す。図１７ａは、ＡＤ２−２とＲｅｇのエクソン１およびラットＰＴＰとの部分配列のアラインメントを示す。図１７ｂは、ＡＤ２−２と１−９ａとの部分配列のアラインメントを示す。図１７ｃは、ＡＤ２−２とＡＤ１６ｃとの部分配列のアラインメントを示す。図１８は、ＡＤ３−４（ＡＤ５−３とも称する）とＲｅｇ遺伝子との部分配列のアラインメントを示す。図１８ａは、ＡＤ３−４と１−９ａｍＲＮＡの５'アンカーＰＣＲ産物（ＷＰＯ３−５および１８−４と称する）との部分配列のアラインメントを示す。図１８ｂは、ＡＤ３−４とＧ２ａ−ａＥｃｏＲＩ／ＰｓｔＩゲノムクローンとの部分配列のアラインメントを示す。図１９は、ＡＤ４−４とＡＤ２−２および１−９ａ（１−９ａと同一のＰＣＲクローンに対応してＳＥ−４とも称する）との部分配列のアラインメントを示す。図２０は、ＡＤ１６ｃとＲｅｇ遺伝子との部分配列のアラインメントを示す。図２０ａは、ＡＤ１６ｃとヒトＰＴＰとの部分配列のアラインメントを示す。図２０ｂは、ＡＤ１６ｃとＡＤ２−２との部分配列のアラインメントを示す。図２１（パネルＡ）は、プローブとしてＡＤ３−４を用いたゲノムサザーンブロット分析を示す。図２１（パネルＢ）は、プローブとしてＡＤ２−２を用いたゲノムサザーンでの同様のハイブリダイゼーションパターンを示す。図２１（パネルＣ）は、プローブとしてＡＤ３−４を用いた神経外胚葉性腫瘍細胞株のノーザンブロット分析を示す。ＡＤ３−４転写物を示す４つの細胞株は表現型がニューロン性である。Ｃ６神経膠腫細胞のｍＲＮＡはＡＤ３−４プローブとハイブリダイズしなかった。図２１（パネルＤ）は、ＡＤ３−４プローブを用いたヒトアルツハイマー病および老年対照の脳側頭葉組織のノーザン分析を示し、老年対照脳（Ｃのレーン）に比べてアルツハイマー病（Ａのレーン）においては対応遺伝子が過剰発現していることを示している。図２２、２２ａ、２２ｂ、２２ｃ、２２ｄ、２２ｅ、２２ｆ、２２ｇおよび２２ｈは、４つのゲノムクローン（プローブとして１−９ａｃＤＮＡおよびＰＴＰＯ−１８ｃＤＮＡの両者を使用して単離）の部分配列を示す。図２３および２３ａは、Ｇ２ａ−２ＰｓｔＩの部分配列とＲｅｇ遺伝子とのアラインメントを示す。図２３ｂは、Ｇ２ａ−２ＰｓｔＩ−ＥｃｏＲＩ配列とＲｅｇ遺伝子およびラットＰＴＰとのアラインメントを示す。図２３ｃおよび２３ｄは、Ｇ５ｄ−１ＰｓｔＩ配列とＲｅｇ遺伝子とのアラインメントを示す。図２４は、１−９ａｃＤＮＡ（パネルＡ）およびＧ２ａ−２ＰｓｔＩゲノムクローン（パネルＢ）による神経糸状タンパク質の発現を示す。パネルＣおよびＤは、それぞれ、Ｇ５ｄ−１ＥｃｏＲＩ／ＰｓｔＩゲノムクローン、およびｐ Bluescript（クローン化挿入物を欠く）による陰性発現を示す。図２５は、アルツハイマー病の脳および老年対照脳におけるＡＤ１６ｃｍＲＮＡのノーザンブロット分析を示す。これらデータは、老年匹敵対照では６のうち１であるのに比べてアルツハイマー病では９のうち６というふうに、ＡＤ１６ｃｍＲＮＡの発現レベルが上昇した。図２６は、発現した標識タンパク質に対するモノクローナル抗体（Ｔ７−標識したマウスモノクローナル抗体）を用いたＡＤ１０−７融合タンパク質のウエスタンブロット分析を示す。図２７（パネルＡおよびＢ）は、初期アルツハイマー病のヒト脳組織切片へのセンスおよびアンチセンスｃＲＮＡプローブのインシトゥハイブリダイゼーションの明野および暗野顕微鏡分析を示す。定義以下の記載において、組換えＤＮＡ技術において使用される多数の術語が広範に用いられる。かかる術語によって与えられる範囲を含めて本明細書および請求の範囲の明快かつ首尾一貫した理解を得るため、以下に定義を記載する。クローニングベクター宿主細胞中で自律複製することができ、１または少数の制限エンドヌクレアーゼ認識部位であってベクターの必須の生物学的機能を失うことなく決定しうる仕方で切断される部位を有することを特徴とし、ＤＮＡ断片を複製およびクローニングするために該ＤＮＡ断片をスプライシングする、プラスミドまたはファージＤＮＡまたは他のＤＮＡ配列。クローニングベクターはまた、該クローニングベクターでトランスフォームされた細胞の同定に用いるのに適したマーカーをさらに含有していてよい。マーカーは、たとえば、テトラサイクリン耐性またはアンピリシン耐性を付与する。発現ベクタークローニングベクターと同様のベクターであるが、宿主にトランスフォームした後に、クローニングした遺伝子の発現を促進しうるものである。クローニングする遺伝子は、通常、プロモーター配列などのある種の制御配列の制御下に置かれる（すなわち、機能的に連結）。プロモーター配列は、構成的であっても誘導的であってもよい。実質的に純粋本明細書においては、所望の精製したタンパク質が、ポリアクリルアミド−ドデシル硫酸ナトリウムゲル電気泳動後に単一のバンドによって示されるように、混入性の細胞成分（該細胞成分は、天然では該所望のタンパク質と結合している）を本質的に含まないことを意味する。混入性の細胞成分としては、タンパク質性の不純物、炭水化物性の不純物、または脂質性の不純物が挙げられるが、これらに限られるものではない。「実質的に純粋」なる語は、さらに、当業者によって用いられる１または２以上の純度または均一性特性によって均一である分子を意味する。たとえば、実質的に純粋なＮＴＰは以下のパラメータに関して標準実験偏差内で一定かつ再現性の特性を示すであろう：分子量、クロマトグラフ移動、アミノ酸組成、アミノ酸配列、ブロックしたまたはブロックしていないＮ末端、ＨＰＬＣ溶出プロフィル、生物学的活性、および他のパラメータ。しかしながら、この語は、該因子と他の化合物との人為的または合成の混合物を排除することを意図するものではない。加えて、この語は組換え宿主から単離したＮＴＰ融合タンパク質を排除することを意図するものではない。組換え宿主本発明によれば、組換え宿主とは、発現ベクターまたはクローニングベクター上の所望のクローニング遺伝子を含有する原核または真核細胞である。この語はまた、その染色体またはゲノム中に所望の遺伝子を遺伝子工学により組み込んだ原核または真核細胞をも包含する。組換えベクター所望のクローニング遺伝子を含むクローニングベクターまたは発現ベクター。宿主複製しうる発現ベクターまたはクローニングベクターの受け入れ側である原核または真核細胞。本明細書において用いる「宿主」なる語はまた、よく知られた方法によって所望の遺伝子をその染色体またはゲノム上に含まれるように遺伝子工学により組み込むことのできる原核または真核細胞をも包含する。そのような宿主の例については、サンブルック（Sambrook）ら、モレキュラー・クローニング：ア・ラボラトリー・マニュアル（Molecular Cloning：A Laboratory Manual ）、第２版、コールドスプリングハーバーラボラトリー、コールドスプリングハーバー、ニューヨーク（１９８９）を参照。プロモーター開始コドンの近位に位置し、遺伝子の５'領域として一般に記載されるＤＮＡ配列。隣接する遺伝子の転写はプロモーター領域で開始される。プロモーターが誘導性プロモーターである場合は、転写速度は誘導因子に応答して増加する。対照的に、プロモーターが構成的プロモーターである場合は、転写速度は誘導因子によって制御されない。遺伝子ポリペプチドまたはタンパク質を発現するための情報を含むＤＮＡ配列。構造遺伝子メッセンジャーＲＮＡ（ｍＲＮＡ）に転写され、ついでこれが特定のポリペプチドに特徴的なアミノ酸配列に翻訳されるＤＮＡ配列。アンチセンスＲＮＡ遺伝子／アンチセンスＲＮＡ真核生物ではｍＲＮＡはＲＮＡポリメラーゼIIによって転写される。しかしながら、特定のｍＲＮＡに相補的な配列を有するが通常は翻訳されないＲＮＡ配列が転写されるようなＲＮＡポリメラーゼII鋳型を含む遺伝子を構築することができることも知られている。そのような遺伝子構築物を本明細書では「アンチセンスＲＮＡ遺伝子」と称し、そのようなＲＮＡ転写物を「アンチセンスＲＮＡ」と称する。アンチセンスＲＮＡは、該アンチセンスＲＮＡ配列中に翻訳停止コドンが存在するために通常は翻訳されることはない。アンチセンスオリゴヌクレオチド特定のｍＲＮＡのヌクレオチド配列に相補的なヌクレオチド配列を有するＤＮＡまたはＲＮＡ分子。アンチセンスオリゴヌクレオチドは特定のｍＲＮＡ中の相補的な配列に結合し、該ｍＲＮＡの翻訳を抑制する。アンチセンス療法対応タンパク質の発現を抑制するために、患者にアンチセンスオリゴヌクレオチドを投与する治療方法。相補的ＤＮＡ（ｃＤＮＡ）「相補的ＤＮＡ」または「ｃＤＮＡ」遺伝子は、ｍＲＮＡの逆転写によって合成され、ｍＲＮＡから介在配列（イントロン）が除かれた組換え遺伝子をいう。発現発現とは、構造遺伝子からポリペプチドが製造されるプロセスである。このプロセスには、該遺伝子のｍＲＮＡへの転写および該ｍＲＮＡのポリペプチドへの翻訳が含まれる。相同／非相同２つの核酸分子が、ＨＡＳＨ−コードアルゴリズムによって決定されるように（ウイルバー（Wilber,W.J.）およびリップマン（Lipman,D.J.）、Proc.Natl.Ac ad.Sci.８０：７２６〜７３０（１９８３））、ヌクレオチド配列が５０％を越える類似性を有する場合にはこれら核酸分子は「相同」であるという。２つの核酸分子が５０％未満のヌクレオチド配列の類似性を有する場合には「非相同」であるという。リボザイムリボザイムは、触媒中心を含むＲＮＡ分子である。この語は、ＲＮＡ酵素、自己スプライシングＲＮＡ、および自己開裂ＲＮＡを包含する。リボザイム療法標的ｍＲＮＡの翻訳を抑制するために患者にリボザイムを投与する治療方法。断片ＮＴＰなどの分子の「断片」とは、該分子のポリペプチド部分集合をいう。機能性誘導体「機能性誘導体」なる語は、該分子の「変異体」、「類似体」または「化学的誘導体」を包含する。ＮＴＰなどの分子の「変異体」とは、分子の全体かまたはその断片のいずれかと実質的に類似の天然分子をいう。ＮＴＰなどの分子の「類似体」とは、分子の全体またはその断片と実質的に類似の非天然分子をいう。ある分子と他の分子とが実質的に同じアミノ酸配列を有し、かつ同様の生物学的活性を有する場合に、これら両分子は「実質的に類似」であるといわれる。それゆえ、これら分子が同様の生物学的活性を有することを条件として、たとえこれら分子の一方が他方にはないアミノ酸をさらに含んでいても、あるいはアミノ酸残基の配列が同一ではないとしても、これら両分子は本明細書において使用する意味において変異体であると考えられる。本明細書において、ある分子が他の分子の一部として通常含まれない化学残基をさらに有する場合に、該分子は該他の分子の「化学的誘導体」であるといわれる。そのような残基は、分子の溶解度、吸収、生物学的半減期などを改善する。これら残基はまた、該分子の毒性を減少させ、該分子の望ましくない副作用を除去または弱める。そのような効果を媒体する残基の例は、レミングトンズ・ファーマシューティカル・サイエンスィズ（Remington's Pharmaceutical Sciences ）（１９８０）に開示されており、当業者には明らかであろう。ＮＴＰ「ＮＴＰ」なる語は、神経糸状タンパク質のファミリーをいう。ＮＴＰファミリーには、本明細書において記載するように、約８ｋＤａ、１４ｋＤａ、１７ｋＤａ、２１ｋＤａ、２６ｋＤａおよび４２ｋＤａの分子量を有するタンパク質が含まれる。イムノ−複製連鎖反応特異的抗体−ＤＮＡ結合体を用いて抗原を検出する方法。この方法によれば、ＤＮＡと抗体とに対して２特異的な結合親和性を有するリンカー分子を用い、ＤＮＡ分子を抗原−抗体複合体に特異的に結合させる。その結果、特異的な抗原− 抗体−ＤＮＡ結合体が生成する。結合したＤＮＡは、適当なオリゴヌクレオチドプライマーを用いて複製連鎖反応（ＰＣＲ）により増幅することができる。特異的なＰＣＲ産物の存在はＤＮＡ分子が抗原−抗体複合体に特異的に結合したことを示し、それゆえ抗原の存在を示している（サノ（Sano）ら、Science２５８：１２０〜１２２（１９９２））。たとえば、上記サノらは、ビオチンおよび免疫グロブリンＧに対して特異的結合親和性を有するストレプトアビジン−プロテインＡキメラを構築した。このキメラ（すなわち、「リンカー分子」）を用い、ビオチン化したＤＮＡを、マイクロタイタープレートウエル上に固定化した抗原−モノクローナル抗体複合体に特異的に結合させた。結合したＤＮＡの部分を引き続きＰＣＲにより増幅した。発明の詳細な記載この発明は、神経糸状タンパク質（ＮＴＰ）、ＮＴＰｍＲＮＡまたはアンチセンスｍＲＮＡをコードする遺伝子配列、該遺伝子配列を含む発現ベクター、該発現ベクターでトランスフォームした組換え宿主、およびそのようなトランスフォームされた組換え宿主の発現によって産生されたＮＴＰおよびアンチセンスＲＮＡに関する。この発明はさらに、ＮＴＰリボザイム、およびＮＴＰリボザイムおよびＮＴＰアンチセンスオリゴヌクレオチドをコードする組換えＤＮＡ分子に関する。この発明はさらに、ＮＴＰに対して向けられた抗体、並びに生物学的試料中のＮＴＰの存在を検出するためのＮＴＰ抗体およびＮＴＰ核酸配列の使用に関する。本発明はさらに、遺伝子療法におけるＮＴＰコード配列の使用に関する。Ｉ．神経糸状タンパク質をコードするＤＮＡ配列の単離ＮＴＰをコードするＤＮＡ配列は、種々の採取源から得ることができる。これら採取源としては、ゲノムＤＮＡ、ｃＤＮＡ、合成ＤＮＡ、およびその組み合わせが挙げられる。当該技術分野でよく知られた方法により（たとえば、サンブルックら、モレキュラー・クローニング：ア・ラボラトリー・マニュアル、第２版、コールドスプリングハーバーラボラトリー、コールドスプリングハーバー、ニューヨーク（１９８９）参照）、ヒトＮＴＰゲノムＤＮＡをあらゆるヒト細胞または組織から抽出および精製することができる。本発明のＮＴＰゲノムＤＮＡは、天然のイントロンを含んでいてもよいし含んでいなくてもよい。さらに、そのようなゲノムＤＮＡは、ＮＴＰ遺伝子配列の５'プロモーター領域および／または３'翻訳終止領域が結合した状態で得てもよい。さらに、そのようなゲノムＤＮＡは、ＮＴＰｍＲＮＡの５'非翻訳領域をコードするＤＮＡ配列および／または３'非翻訳領域をコードする遺伝子配列が結合した状態で得てもよい。宿主細胞がｍＲＮＡおよびタンパク質の発現に付随して転写および／または翻訳制御シグナルを認識することができる程度にて、該天然遺伝子の５'および／または３'非転写領域、および／または該ｍＲＮＡの５'および／または３'非翻訳領域が転写および翻訳制御のために保持され用いられてよい。別法として、ＮＴＰを発現する細胞からＮＴＰｍＲＮＡを単離し、当該技術分野でよく知られた手段により（たとえば、サンブルックらの上記文献参照）ｃＤＮＡを製造するのに用いることができる。ｍＲＮＡ調製物は、天然のまま大量のＮＴＰを産生する細胞から単離することにより、またはインビトロでショ糖密度遠心分離などのような特定の配列についてｍＲＮＡ調製物を富ませるために通常用いる技術により、またはその両者により、ＮＴＰをコードするｍＲＮＡに富んでいるのが好ましい。ＮＴＰｍＲＮＡは、哺乳動物のニューロン組織から、または該組織に由来する細胞株から得ることがでできる。ヒトｃＤＮＡライブラリーは、１７〜１８週の胎児脳、２歳の側頭葉新皮質、末期アルツハイマー病の大脳皮質、またはヒトニューロン組織由来の細胞株から構築する。そのような細胞株としては、中枢神経系初期神経外胚葉性腫瘍細胞（本明細書に記載するＰＮＥＴ１またはＰＮＥＴ２など）、神経芽腫細胞（本明細書に記載するＳＨ−Ｓｙ５ｙなど）、または神経膠腫細胞（Ａ１７２：ＡＴＣＣＣＲＬ１６２０など）が挙げられるが、これらに限られるものではない。別法として、ラット神経膠腫細胞、たとえばＣ６ラット神経膠腫細胞（ＡＴＣＣＣＣＬ１０７）から単離したｍＲＮＡからラットｃＤＮＡライブラリーを調製することができる。ベクター中にクローニングするには、適当なＤＮＡ調製物（ゲノム由来かまたはｃＤＮＡ）をそれぞれランダムに切断または酵素により開裂し、適当なベクター中にライゲートして組換え遺伝子（ゲノム由来かまたはｃＤＮＡ）ライブラリーを生成させる。ＮＴＰをコードするＤＮＡ配列は、ライゲーションのための平滑末端または付着末端、適当な末端を提供するための制限酵素消化、付着末端の適当な充填、望まない結合を回避するためのアルカリ性ホスファターゼ処理、および適当なリガーゼを用いたライゲーションを含む、常法に従ってベクター中に挿入することができる。そのような操作技術はサンブルックらの上記文献に開示されており、当該技術分野でよく知られている。ＮＴＰクローンを含有するライブラリーのスクリーニングおよびＮＴＰクローンの同定は、たとえば、（１）該タンパク質のＤＮＡに特異的な配列を有する適当な核酸プローブを用いたハイブリダイゼーションによる、または（２）天然のｍＲＮＡが当該クローンにハイブリダイズし、インビトロで翻訳され、ついで翻訳産物をさらに特徴付ける、ハイブリダイゼーション−選択した翻訳分析による、または（３）クローニングしたＤＮＡ配列自体がｍＲＮＡを発現しうる場合には、該クローンを含有する宿主によって産生された翻訳ＮＴＰ産物の免疫沈降による、などのＮＴＰＤＮＡを特異的に選択する手段によって行うことができる。ＮＴＰのクローンを同定するのに用いることのできるＮＴＰに特異的なオリゴヌクレオチドプローブは、対応ＮＴＰのアミノ酸配列またはＰＴＰの相同領域に関する知見から設計することができる。別法として、オリゴヌクレオチドプローブはまた、ＰＴＰのヌクレオチド配列に関する知見から設計することができる（ド・ラ・モントら、J.Clin.Invest.８６：１００４〜１０１３（１９９０））。ＮＴＰ遺伝子の断片をコードしうる適当なオリゴヌクレオチドまたはオリゴヌクレオチドのセット（またはかかるオリゴヌクレオチドまたはオリゴヌクレオチドのセットに相補的なもの）は、当該技術分野でよく知られた方法（たとえば、サンブルックらの上記文献参照）により合成することができる。核酸ハイブリダイゼーションおよびクローン同定の技術はサンブルックらの上記文献に開示されている。ついで、そのようなハイブリダイゼーションをしうると認められた上記遺伝子ライブラリーの成員を分析し、これら成員に含まれるＮＴＰコード配列の程度および性質を決定する。所望のＮＴＰコード配列の検出を容易にするため、上記ＤＮＡプローブを検出可能な基で標識する。そのような検出可能な基は、検出可能な物理的または化学的特性を有するものであればいかなる物質であってもよい。そのような物質は核酸ハイブリダイゼーションの分野でよく開発されており、一般にそのような方法に用いるほとんどの標識を本発明において用いることができる。特に有用なものは、³²Ｐ、³Ｈ、¹⁴Ｃ、¹²⁵Ｉなどの放射性標識である。適切なシグナルを与え、充分な半減期を有するものであればいかなる放射性標識も用いることができる。ＤＮＡプローブは、当該技術分野でよく知られた他の方法のなかでもとりわけ、たとえば、ニックトランスレーションにより、Ｔ４ＤＮＡポリメラーゼ置換合成により、またはランダムプライミングにより標識することができる（サンブルックらの上記文献参照）。別法として、ＤＮＡプローブは、ビオチン、酵素または蛍光基などの非放射性のマーカーで標識することができる。ＮＴＰＤＮＡ配列をクローニングする別の方法において、本明細書に記載するように３'−および５'−ＲＡＣＥ法を用い、細胞株および脳組織からｃＤＮＡを直接クローニングすることによりＮＴＰｃＤＮＡを得ることができる。ヒト神経外胚葉性腫瘍細胞株またはアルツハイマー病の脳組織をｍＲＮＡの採取源として用いるのが好ましい。 II．ＮＴＰをコードする遺伝子の発現それゆえ、上記方法は、ＮＴＰまたはその断片をコードするＤＮＡ配列を同定することができる。そのようなＤＮＡ配列をさらに特徴付けるため、および組換えタンパク質を製造するため、該ＤＮＡ配列がコードするタンパク質を発現させるのが望ましい。ＮＴＰを発現するには、適当な宿主によって認識されうる転写および翻訳シグナルが必要である。上記方法により得られたクローニングしたＮＴＰＤＮＡ配列（好ましくは二本鎖の形態）を発現ベクター中での転写発現を制御する配列に「機能的に連結」し、原核もしくは真核の宿主細胞中に導入して組換えＮＴＰを産生させることができる。該ＮＴＰコード配列のいずれの鎖が転写発現を制御する配列に機能的に連結されているかにより、ＮＴＰのアンチセンスＲＮＡを発現させることも可能である。異なる宿主中でのＮＴＰの発現は異なる翻訳後修飾という結果となり、このことによってＮＴＰの特性が変化しうる。好ましくは、本発明は、真核細胞、とりわけ哺乳動物、昆虫、および酵母細胞中でのＮＴＰの発現を包含する。特に好ましい真核細胞宿主は哺乳動物細胞である。哺乳動物細胞は、折り畳みおよび／またはリン酸化を含む翻訳後修飾を組換えＮＴＰに与える。最も好ましくは、哺乳動物細胞は、ヒト中枢神経系の初期神経外胚葉性腫瘍細胞、ヒト神経芽腫細胞、ヒト神経膠腫細胞、またはラット神経膠腫細胞を包含する。特に好ましい初期神経外胚葉性腫瘍細胞としてはＰＮＥＴ１およびＰＮＥＴ２が挙げられ、特に好ましいヒト神経芽腫細胞としてはＨｇ１６およびＨｇ１７が挙げられ、特に好ましいヒト神経膠腫細胞としてはＡ１７２が挙げられ、特に好ましいラット神経膠腫細胞としてはＣ６が挙げられる（実施例１参照）。別法として、ＮＴＰは原核宿主細胞中で発現させることもできる。組換えＮＴＰは、本明細書に記載するように、かかる細胞によって融合タンパク質として発現されるのが好ましい。特に好ましい原核宿主は大腸菌である。好ましい大腸菌株としては、Ｙ１０８８、Ｙ１０８９、ＣＳＨ１８、ＥＲ１４５１、およびＥＲ１６４７が挙げられる（たとえば、モレキュラー・バイオロジー・ラブファックス（Molecular Biology LabFax）、ブラウン（Brown,T.A.）編、アカデミックプレス、ニューヨーク（１９９１）参照）。他の好ましい宿主はバシラス・サチリス（Bacillus subtilus）であり、ＢＲ１５１、ＹＢ８８６、ＭＩ１１９、ＭＩ１２０、およびＢ１７０などの株を含む（たとえば、ハーディー（Hardy）、ＤＮＡクローニング：ア・プラクティカル・アプローチ（ＤＮＡ Cloning：A Pr actical Approach）、ＩＲＬプレス、ワシントン、ＤＣ（１９８５）中の「バシラス・クローニング・メソッズ（Bacillus Cloning Methods）」を参照）。ＤＮＡなどの核酸分子は、それが発現制御配列を含み、該配列が転写制御情報を含み、そして該配列がタンパク質をコードするヌクレオチド配列に「機能的に連結されている」場合にポリペプチドを「発現しうる」ということができる。ある核酸分子の２つの配列は、両配列が同じＲＮＡ転写物に転写されるか、または一方の配列で開始されたＲＮＡ転写が第二の配列に伸長していくかのいずれかの仕方で互いに連結している場合に、機能的に連結しているということができる。それゆえ、プロモーター配列および他の「第二の」ＤＮＡまたはＲＮＡ配列などの２つの配列は、該プロモーター配列で開始された転写が該機能的に連結された第二の配列のＲＮＡ転写物を生成する場合に、機能的に連結しているという。機能的に連結しているためには、２つの配列は互いに密に隣接している必要はない。本発明のプロモーター配列は、原核細胞のもの、真核細胞のもの、またはウイルスのものであってよい。適当なプロモーターは、抑制性、構成的、または誘導性のものである。適当な原核細胞プロモーターとしては、Ｔ４ポリメラーゼを認識しうるプロモーター（マリク（Malik）ら、J.Biol.Chem.２６３：１１７４〜１１８１（１９８４）；ローゼンバーグ（Rosenberg）ら、Gene５９：１９１〜２００（１９８７）；シネドリング（Shinedling）ら、J.Molec.Biol.１９５：４７１〜４８０（１９８７）；ヒュー（Hu）ら、Gene４２：２１〜３０（１９８６））；Ｔ３、Ｓｐ６およびＴ７を認識し得るプロモーター（チャンバーリン（ Chamberlin）ら、Nature２２８：２２７〜２３１（１９７０）；ベイリー（Bail ey）ら、Proc.Natl.Acad.Sci．（ＵＳＡ）８０：２８１４〜２８１８（１９８３）；ダバンルー（Davanloo）ら、Proc.Natl.Acad.Sci．（ＵＳＡ）８１：２０３５〜２０３９（１９８４））；バクテリオファージラムダのＰ_RおよびＰ_Lプロモーター（ザ・バクテリオファージ・ラムダ（The Bacteriophage Lamda）、ハーシー（Hershey,A.D.）編、コールドスプリングハーバープレス、コールドスプリングハーバー、ニューヨーク（１９７３）；ラムダII （Lamda II）、ヘンドリックス（Hendrix,R.W.）編、コールドスプリングハーバープレス、コールドスプリングハーバー、ニューヨーク（１９８０））；大腸菌のｔｒｐ、ｒｅｃＡ、熱ショック、およびＬａｃＺプロモーター；バシラス・サチリスのα−アミラーゼプロモーター（ウルマネン（Ulmanen）ら、J.Bacteriol .１６２：１７６〜１８２（１９８５））およびデルタ−２８−特異的プロモーター（ギルマン（Gilman）ら、Gene３２：１１〜２０（１９８４））；バシラスのバクテリオファージのプロモーター（グリクザン（Gryczan）、ザ・モレキュラー・バイオロジー・オブ・ザ・バシライ（The Molecular Biology of the Bac illi）、アカデミック・プレス、ニューヨーク（１９８２））；ストレプトマイセス（Streptomyces）のプロモーター（ウォード（Ward）ら、Mol.Gen.Genet.２０３：４６８〜４７８（１９８６））；バクテリオファージラムダのｉｎｔプロモーター；ｐＢＲ３２２のβ−ラクタマーゼ遺伝子のｂｌａプロモーター、およびｐＢＲ３２５のクロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼ遺伝子のＣＡＴプロモーターなどが挙げられる。原核細胞のプロモーターについては、グリック（Glick）、J.Ind.Microbiol.１：２７７〜２８２（１９８７）；セナチエンポ（Cenatiempo）、Biochimie６８：５０５〜５１６（１９８６）；ワトソン（Watson）ら、モレキュラー・バイオロジー・オブ・ザ・ジーン（Molecular Bi ology of the Gene）、第４版、ベンジャミン・カミンズ、メンロパーク、カリフォルニア（１９８７）；ゴッテスマン（Gottesman）、Ann.Rev.Genet.１８：４１５〜４４２（１９８４）；およびサンブルックらの上記文献に概説されている。好ましい真核細胞プロモーターとしては、マウスメタロチオネインＩ遺伝子のプロモーター（ハマー（Hamer）ら、J.Mol.Appl.Gen.１：２７３〜２８８（１９８２））；ヘルペスウイルスのＴＫプロモーター（マックナイト（McKnight）、 Cell３１：３５５〜３６５（１９８２））；ＳＶ４０初期プロモーター（ベノイスト（Benoist）ら、Nature（ロンドン）２９０：３０４〜３１０（１９８１））；および酵母ｇａｌ４遺伝子プロモーター（ジョンストン（Joh nston）ら、Proc.Natl.Acad.Sci.（ＵＳＡ）79:6971〜6975（１９８５）；シルバー（Silver）ら、Proc.Natl.Acad.Sci．（ＵＳＡ）８１：５９５１〜５９５５（１９８４））が挙げられる。上記文献をすべて参照のため本明細書に引用する。強力なプロモーターは、本発明の最も好ましいプロモーターである。そのような好ましいプロモーターの例は、Ｔ３、ＳＰ６およびＴ７ポリメラーゼプロモーターを認識するもの；バクテリオファージラムダのＰ_Lプロモーター；ｒｅｃＡプロモーターおよびマウスメタロチオネインＩ遺伝子のプロモーターである。原核細胞中で発現させるのに最も好ましいプロモーターは、Ｔ７ポリメラーゼプロモーターを認識しうるものである。そのようなポリメラーゼ認識配列の配列は、ワトソンら、モレキュラー・バイオロジー・オブ・ザ・ジーン、第４版、ベンジャミン・カミンズ、メンロパーク、カリフォルニア（１９８７）に開示されている。哺乳動物細胞中で発現させるのに最も好ましいプロモーターは、ＳＶ４０である（ゴーマン（Gorman）ら、ＤＮＡ Cloning：A Practical Approach、II巻、ＩＲＬプレス、ワシントン、ＤＣ、１４３〜１９０頁（１９８５）中の「ハイ・エフィシャンシー・ジーン・トランスファー・イントゥ・ママリアン・セルズ（High Efficiency Gene Transfer into Mammalian cells）」）。 III．ＮＴＰの検出方法この発明は、ＮＴＰ遺伝子または転写物にハイブリダイズしうる核酸プローブまたはＮＴＰに特異的な抗体を用いた、ヒト個体における神経学的疾患の検出方法に関する。「神経学的疾患」とは、アルツハイマー病（ＡＤ）、またはアルツハイマー型の病因変化を有する他の神経変性疾患（たとえば、アルツハイマー病型の神経変性を伴うパーキンソン病）、並びに神経外胚葉性腫瘍、悪性星状細胞腫、および膠芽細胞腫を意味する。「ヒト個体」とは、あらゆるヒト、または出生前のヒト胚もしくは胎児などの発達形態を意味する。本発明の診断方法は、神経組織の侵入性の除去を必要としない。本発明はさらに、光学もしくは電子顕微鏡による組織学、造影、放射性もしくは酵素ベースのアッセイなどを用いて細胞中またはヒト個体の生物学的流体中のＮＴＰの存在を検出するための、核酸ハイブリダイゼーションアッセイおよびイムノアッセイの両アッセイに関する。ａ．核酸ハイブリダイゼーションアッセイ核酸ハイブリダイゼーションアッセイを用いてＮＴＰについて組織試料を試験するに際して、ＲＮＡの組織からの単離は、クリオスタット上で切片化し、ＳＤＳなどの界面活性剤およびＥＤＴＡなどのキレート化剤を用いて該切片を溶解し、場合によりプロテイナーゼＫ（５０μｇ／ｍｌ）で一夜消化することにより行うことができる。そのような組織は、剖検および生検により得ることができる。好ましい組織量は、１〜１０ｍｇの範囲である。タンパク質をフェノールおよびクロロホルム抽出により取り除き、核酸をエタノールで沈殿させる。オリゴｄＴカラム上でのクロマトグラフィーにかけ、そこから溶出することによってＲＮＡを単離する。当業者によく知られた方法に従い、さらに分画することもできる。モレキュラーハイブリダイゼーションのための多くの技術が、組織中のＤＮＡまたはＲＮＡ配列の検出のために用いられる。これら技術は、それぞれ利点および欠点を有する。多量の組織が利用できる場合には、ハイブリダイゼーション動力学の分析により、存在するＤＮＡまたはＲＮＡの量を正確に定量し、並びにプローブと同一ではないが密接に関連した配列を識別し、相同性のパーセントを決定する機会が得られる。反応は、プローブの再会合の速度が最適となるようなハイブリダイゼーション条件下（温度は２５℃）で行う（ウエットマー（Wetmur）ら、J.Mol.Biol.３１：３４９〜３７０（１９６８））。反応の動力学は、組織中の配列がプローブの配列と同一である場合には二次反応である。しかしながら、プローブ配列が組織中の配列と部分的な相同性を有する場合には、反応は複雑な動力学を示す（シャープ（Sharp）ら、J.Mol.Biol.８６：７０９〜７２６（１９７４））。細胞ＲＮＡに対するプローブの比は、所望の感度により決定する。細胞当たり一つの転写物を検出するには、全細胞ＤＮＡまたはＲＮＡ１μｇ当たり約１００ｐｇのプローブが必要であろう。これら核酸を混合し、変性させ、適当な塩濃度および温度とし、種々の時間ハイブリダイズさせる。再会合の速度は、ヒドロキシアパタイトクロマトグラフィー（ブリッテン（Britten）ら、Science１６１：５２９〜５４０（１９６８））かまたはＳ１ヌクレアーゼ消化（サットン（Su tton）、Biochim.Biophys.Acta２４０：５２２〜５３１（１９７１））のいずれかによりハイブリダイズしたプローブの量を定量することによって決定することができる。もっと順応性のあるハイブリダイゼーション法は、ノーザンブロット法である。この方法は、ハイブリダイゼーション反応の厳格さにおける変化、並びに分析下の試料中のレトロウイルス配列の状態の決定をもたらす。ノーザン分析は、本明細書に記載するようにして行うことができる。ＤＮＡまたはＲＮＡ配列のハイブリダイゼーション分析に関連して主として考慮しなければならないのは、研究下の試料中に存在する配列に対してプローブが有する関連性の程度である。このことはブロッティング法では重要である。というのは、ハイブリダイゼーションの非厳格条件下での中程度の配列相同性が、プローブと試料中に存在する配列とが非相同な遺伝子を表す場合においてさえも強いシグナルを生じうるからである。特定のハイブリダイゼーション法は本発明にとって本質的なことではなく、当該技術分野で通常用いられるあらゆる方法が本発明の範囲に包含される。典型的なプローブ法はファルコウ（Falkow）らの米国特許第４,３５８,５３５号に記載されている（参照のため本明細書に引用する）。たとえば、ハイブリダイゼーションは、６×ＳＳＣ（１０×ＳＳＣ：１.５Ｍ塩化ナトリウム、０.１５Ｍクエン酸ナトリウム、ｐＨ７.０）、５×デンハルト（１×デンハルト：０.２％ウシ血清アルブミン、０.２％ポリビニルピロリドン、０.０２％フィコール４００）、１０ｍＭＥＤＴＡ、０.５％ＳＤＳおよび約１０⁷ｃｐｍのニックトランスレーションしたＤＮＡを含有する溶液中、６５℃にて１６時間行うことができる。上記標識プローブは、組織中のＮＴＰの検出のための一般的な診断法を提供する。この方法は、適度に速く、プロトコールが簡単であり、標準化可能で市販のキットとして提供される試薬を有し、多数の試料の迅速なスクリーニングを可能とする。本手順を行う一つの方法において、ＲＮＡ転写物を含有する臨床単離物を支持体上に固定する。固定された核酸を、該ＮＴＰ遺伝子のコード鎖に相補的または相同な塩基配列を有する標識ポリヌクレオチドと接触させる。本発明のハイブリダイゼーションアッセイは、キットの形態の製造および商品化に特に適している。該キットは、１または２以上のコンテナー手段（バイアル、試験管等）を受け入れるべく密に詰め込まれた担体手段を含み、各担体手段はハイブリダイゼーションアッセイに使用する別々の要素を一つ有する。たとえば、コンテナー手段には、「ニックトランスレーション」（標準的な方法については、たとえば、サンブルックらの上記文献を参照）により標識するのに適したＮＴＰｃＤＮＡ分子、または標識したＮＴＰｃＤＮＡまたはＲＮＡ分子が含まれていてよい。別のコンテナー手段には、ＤＮＡポリメラーゼＩ／ＤＮＡアーゼおよび非標識のデオキシリボヌクレオチド（すなわち、ｄＣＴＰ、ｄＴＴＰ、ｄＧＴＰ、およびｄＡＴＰ）からなる、ＮＴＰｃＤＮＡのニックトランスレーションのための標識溶液が含まれていてよい。ＮＴＰＲＮＡの存在は、被験組織中のプローブと関連したＲＮＡの出現および／または量の変化により決定する。この発明のＤＮＡプローブはまた、遺伝性または家族性のアルツハイマー病と非遺伝性または散発性のアルツハイマー病との識別診断にも用いることができる。家族性のアルツハイマー病は、しばしば一層若年の年齢で生じ、家族内のダウン症候群と関連している。それゆえ、家族性のアルツハイマー病の遺伝子試験によって家族の遺伝子カウンセリングが可能となる。家族性のアルツハイマー病の遺伝子マーカーを特徴付けるべく多大の努力がなされているにもかかわらず（グセラ（Gusella）、ＦＡＳＥＢＪ３：２０３６〜２０４１（１９８９）；フーパー（Hooper）、ＪＮＩＨ Res.４：４８〜５４（１９９２））、遺伝子連鎖分析によっては遺伝子マーカー配列が同定されるのみでゲノム配列の機能に関する知見については得られていない。対照的に、本明細書に記載され散発性アルツハイマー病の個体から得られたｃＤＮＡプローブは既知の機能を有する既知のタンパク質をコードしており、これがアルツハイマー病の患者の脳組織で過剰発現される。アルツハイマー病については家族性の症例も多く記録されてはいるものの（グセラ、上記文献；ハリソンズ・プリンシプルズ・オブ・インターナショナル・メディスン（Harrison's Principles of International Medicine）、ブラウンウォルト（Braunwald）ら編、第１１版、マックグロー−ヒル・ブック・カンパニー、ニューヨーク、２０１２〜２０１３頁（１９８７））、ほとんどの症例は散発性であるように思われる。家族性のアルツハイマー病を有する患者は、散発性のアルツハイマー病の患者と違って該疾患にかかりやすくさせる変異を生殖細胞を通じて受け継いでいる。家族性の症例の幾つかは、常染色体の優性遺伝パターンに従うことが示されている（同上）。それゆえ、家族性のアルツハイマー病を有する患者のＤＮＡは、散発性のアルツハイマー病の患者のＤＮＡでは存在しない受け継がれた遺伝子変化を有するであろう。ヒト個体における散発性および家族性のアルツハイマー病の識別法には、アルツハイマー病を有すると思われるヒト個体から生物学的試料を得ることが含まれる。ついで、該生物学試料からＤＮＡを精製する。最後に、得られたＤＮＡをハイブリダイゼーション条件下でＮＴＰＤＮＡプローブと接触させる。家族性のアルツハイマー病は該プローブとＤＮＡとのハイブリッド形成の検出によって示され、一方、散発性のアルツハイマー病はハイブリダイゼーションの検出の不在によって示される。たとえば、生物学試料は血液試料であってよく、これを分別遠心分離にかけて回収の３日以内に白血球を富ませる（パーク（Park）、ＰＣＲプロトコールズ（ＰＣＲ Protocols）、イニス（Innis）ら編、アカデミックプレス、ニューヨーク、４０７〜４１５頁（１９９０）中の「ＰＣＲ・イン・ザ・ダイアグノーシス・オブ・レチノブラストーマ（ＰＣＲ in the Diagnosis of Retinoblastoma）」）。ＤＮＡ試料の調製は、Ｎ−ラウロイルサルコシンナトリウム−プロテイナーゼＫ、フェノール、およびＲＮＡアーゼ法（サンブルックら、上記文献）を用いて行うことができる。ＤＮＡ分析は、ＤＮＡ試料（好ましくは５μｇ）を制限エンドヌクレアーゼ（ＨｉｎｄIIIなど）で消化することによって行うことができる。ついで、消化したＤＮＡを、好ましくは８９ｍＭトリス−ＨＣｌ（ｐＨ８）、８９ｍＭ硼酸ナトリウムおよび２ｍＭＥＤＴＡを含有する緩衝液中でアガロースゲル電気泳動（好ましくは１％水平アガロースゲル）を１８時間行うことにより分画する（グセラら、Nature３０６：２３４〜２３８（１９８３））。サザーン分析を常法（サンブルックら、上記文献）を用いて行うことができ、標識したアルツハイマー病のｃＤＮＡプローブを上記条件下でハイブリダイズさせることができる。この識別診断法のために好ましいＤＮＡプローブとしては、１ −９ａ、ＡＤ３−４、ＡＤ４−４およびＧ２−２ＰｓｔＩが挙げられる。ｂ．イムノアッセイ本発明に従って、ＮＴＰに対する抗体を用い、ＡＤを検出および診断することができる。また本発明では、免疫組織化学的染色法などの種々の組織学的染色法を用いることもできる。銀染色法もまたＮＴＰを視覚化する方法のひとつである。その他の本発明に有用な染色法は当業者にとって熟知されているものであり、当業者であれば、その定量を適切に行えるであろう［たとえば一般に、「A Text book of Histology」，ブルーム（Bloom）およびファウセット（Faucett）編,ダブリュー・ビー・ソーンダース（Sounders）・カンパニー，フィラデルフィア（１９６４年）を参照］。得られた化合物がＮＴＰ官能性誘導体であるかどうかを決定するためのスクリーニング法のひとつに、たとえばラジオイムノアッセイ（ＲＩＡ）または酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）法などの、ＮＴＰに対する特異的抗体（モノクローナルまたはポリクローナル）の産生に基づくイムノアッセイが挙げられる。これらのアッセイ用の生体試料は、静脈穿刺（血液）、脊髄穿刺（大脳脊髄液（ＣＳＦ））、尿およびその他の分泌液（汗および涙など）から得られる。たとえば、ＲＩＡの一形態においては、放射標識された抗原の存在下、試験に付す物質を希釈した抗血清と混合する。この方法においては、試験物質の濃度は、特異的抗体に結合した放射標識抗原の量に反比例し、遊離の放射標識抗原の量に直線的に比例する。当業者であれば、その他の適当なスクリーニング法を容易に想像しうるであろう。また本発明は、標本または検体中のＮＴＰまたはその官能性誘導体の検出方法に関する。ＮＴＰまたはその官能性誘導体に対する特異的抗体を検出可能にするために、たとえば放射性同位体、酵素、蛍光標識、常磁性標識またはフリーラジカルなどの適当なマーカーで標識することができる。別法として、イムノポリメラーゼ鎖反応の技術によって、ＮＴＰまたはその官能性誘導体に対する特異的抗体をＤＮＡで標識してもよい［サノ（Sano）らのSc ience,２５８：１２０〜１２２（１９９２年）］。該ポリメラーゼ鎖（ＰＣＲ）操作では、変性、オリゴヌクレオチドプライマーのアニーリング、およびＤＮＡポリメラーゼによる該プライマーの伸長などの一連の手順を通して特異的核酸配列が増幅される［たとえば、ミュリス（Mullis）らの米国特許第４６８３２０２号；ミュリスらの米国特許第４６８３１９５号；ロー（Loh）らのScience,２４３：２１７（１９８８年）を参照］。このようなステップを何回も繰り返し、オリジナルの特異的配列のコピーである多量の増幅物が得られる。ひとつのＤＮＡ配列のシングルコピー程度の配列を増幅して何百という数のナノグラム産物を得ることができる［リー（Li）らのNature,３３５：４１４（１９８８年）］。その他の公知の核酸増幅操作としては、転写に基づく増幅システム［クゥオー（Kw oh）らのProc.Natl.Acad.Sci.USA,８６：１１７３（１９８９年）；ジンゲラス（Gingeras）らのＷＯ８８／１０３１５］、および得られる“ジオリゴヌクレオチド”の配列を有する核酸標的の存在下に２つ（またはそれ以上）のオリゴヌクレオチドを連結し、それによって該ジオリゴヌクレオチドを増幅するという“リガーゼ鎖反応”が挙げられる［ウー（Wo）らのGenomics,４：５６０（１９８９年）；バックマン（Backman）らのＥＰ３２０３０８；ウォーレス（Wallace）のＥＰ３３６７３１；オーゲル（Orgel）のＷＯ８９／０９８３５］。たとえば、様々な量の試験物質をマイクロタイターウエルの表面に固定化して該イムノＰＣＲアッセイを行うことができる［サンゾらの前記文献の１２２頁脚注７を参照］。次いでＮＴＰモノクローナル抗体を加えて該ウエルをインキュベートし、洗浄し、さらにストレプトアビジン−タンパク質キメラに複合したビオチン化ＮＴＰＤＮＡ分子を加えてインキュベートする［同上文献］。このキメラはストレプトアビジン部分を介してビオチンに結合し、タンパク質Ａ部分を介して免疫グロブリンＧ分子のFc部に結合する［同上文献の１２２頁；サンゾらのBio/Technology,９：１３７８（１９９１年）］。次いでウエルを洗浄して非結合複合体を除去する。試験物質中に存在する幾らかのＮＴＰに、ＮＴＰモノクローナル抗体が結合し、さらにビオチン化ＮＴＰＤＮＡ−ストレプトアビジン−タンパク質Ａ複合体のタンパク質Ａ部分が結合する。次いでＰＣＲによって該ＮＴＰＤＮＡ配列を増幅する。簡単にいうと、デオキシリボヌクレオチド三リン酸塩、ＮＴＰオリゴヌクレオチドプライマーおよびTaqＤＮＡポリメラーゼを加えたマイクロタイターウエルをインキュベートするということである［サンゾらの同上文献の１２２頁脚注１１を参照］。自動熱循環器（ＰＴＣ−１００−９６Thermal Cycler,ＭＪ・リサーチ・インコーポレイテッド製など）を用いて標準的条件下でＰＣＲを行うことができる［同上文献］。次いで臭化エチジウムで染色した後、アガロースゲル電気泳動法でＰＣＲ産物を分析する。このような検出可能に標識された抗体またはその官能性誘導体を製造し、検出する方法は、当業者には公知であり、下記文献に記載されている。免疫学の一般的原理について述べている標準的参考文献として、クレイン（Klein）の「免疫学：自己−非自己の識別」，ジョン・ウイリー・アンド・サンズ，ニューヨーク（１９８２年）；ケネット（Kennett）らの「モノクローナル抗体とハイブリドーマ:生物学的分析の新次元」,プレナム・プレス,ニューヨーク（１９８０年）; キャンベル（Campbell）の“モノクローナル抗体テクノロジー”,「生化学と分子生物学における実験室テクニック」,１３巻（バードン（Burdon,R.）ら編），エルセビア，アムステルダム（１９８４年）中；およびエイゼン（Eisen）の「マイクロバイオロジー」,第３版,デービス（Davis）ら,ハーパー・アンド・ロウ ,フィラデルフィア（１９８０年）が挙げられる。語句「抗体」とは、実質的にホモ集団であるモノクローナル抗体およびヘテロ集団であるポリクローナル抗体の両方を意味する。ポリクローナル抗体は抗原で免疫感作した動物の血清から誘導される。特異的抗原に対するモノクローナル抗体（mAbs）は、当業者に公知の方法で得ることができる。たとえば、ケーラー（ Kohler）およびミルシュタイン（Milstein）のNature,２５６：４９５〜４９７（１９７５年）および米国特許第４３７６１１０号を参照。このような抗体は、Ｉg Ｇ，ＩgＭ，ＩgＥ，ＩgＡ，ＩgＤおよびそれらのサブクラスなどからなる免疫グロブリンクラスのいずれかに属する。本発明に用いたモノクローナル抗体、特にmAbs Ｔh７，Ｔh９およびＴh１０は、下記文献の記載に従って製造することができる［グロス（Gross）らのJ.Clin. Invest.,７６：２１１５〜２１２６（１９８５年）；オツーク（Otzturk）らのP roc.Natl.Acad.Sci.USA,８６：４１９〜４２３（１９８９年）；デラモンテ（de la Monte）らのJ.Clin.Invest.,８６：１００４〜１０１３（１９９０年）；デラモンテらのJ.Neurol.Sci.,１１３：１５２〜１６４（１９９２年）；デラモンテらのAnn.Neurol.,３２：７３３〜７４２（１９９２年）］。Ｔhモノクローナル抗体は、精製すい臓型糸状タンパク質に対して産生された［同上文献］。ＮＴＰ特異的ポリクローナルおよびモノクローナル抗体を、組換え宿主から単離された実質的に純粋なＮＴＰに対して産生させることもできる［たとえば、キャロル（Carroll）らの“β-ガラクトシダーゼ融合タンパク質の外来セグメントに対するポリクローナル抗体の産生と精製”,「ＤＮＡクローニング：実用的アプローチ」，ＩＩＩ巻，ＩＲＬ・プレス，ワシントンＤＣ，８９〜１１１ｐｐ（１９８７年）；モール（Mole）らの“大腸菌で産生された融合タンパク質に対するモノクローナル抗体の産生”，「ＤＮＡクローニング：実用的アプローチ」，ＩＩＩ巻，ＩＲＬ・プレス，ワシントンＤＣ，１１３〜１１３９ｐｐ（１９８７年）」を参照］。別法として、ＮＴＰ特異的ポリクローナルおよびモノクローナル抗体を、公知の技術を用いて、脳組織および細胞系などの生体物質から単離された実質的に純粋なＮＴＰに対して産生することができる。たとえば、分子量がおよそ８，１４，１７，２１，２６kＤaおよび４２kＤaである種々のＮＴＰ分子に対して特異的なモノクローナル抗体を、組換え誘導タンパク質から製造してもよく、それらはcＤＮＡ（すなわち１−９ａ）、ゲノムクローン（Ｇ２−２ＰstＩ）およびＡＤ−ＮＴＰ３−４cＤＮＡクローンから発現、単離および精製される。これらのＮＴＰ分子を、上記cＤＮＡおよびゲノムクローンから誘導し、挿入し、適当な発現ベクター中で製造する（図２Ａおよび図２Ｂを参照）。１−９aＮＴＰおよびＰＴＰの５'末端において、６０〜７０％相同である領域が存在するので、ＮＴＰ組換えタンパク質に特異的に結合し、すい臓型タンパク質に結合しないモノクローナル抗体を、通例の分画スクリーニングを行うことによって得ることができる［デラモンテらのJ.Clin.Invest.,８６：１００４〜１０１３（１９９０年）を参照］。ＮＴＰおよびＰＴＰの両方に結合するモノクローナル抗体が存在する可能性はあるけれども、種々の形体のＮＴＰ分子（たとえば８，１４，１７，２１，２６および４２kＤa）の間には実質的配列分化があり、エピトープは僅か６〜８アミノ酸によって決定されるため、ＮＴＰ特異的モノクローナル抗体を生産することは可能である。また語句「抗体」は、完全分子およびそれらのフラグメント（断片）、たとえばＦabおよびＦ(ab')₂などの両方を包含し、それらは抗原に結合可能である。Ｆ abおよびＦ(ab')₂フラグメントは、完全分子からＦcフラグメントを除いたものであり、より速やかに循環から除去され、完全分子よりも非特異的組織結合性が弱い［ワール（Wahl）らのJ.Nucl.Med.,２４：３１６〜３２５（１９８３年）］。ＡＤを検出および診断するために、本明細書に記載の方法に従って、完全抗体を用いる場合と同様な方法で、本発明に有用なＦabおよびＦ(ab')₂および抗体の他のフラグメントを用いてＮＴＰを検出および定量しうることが認められるであろう。このようなフラグメントを生産する代表的な方法は、タンパク質分解的切断であり、パパイン（Ｆ_abフラグメントが生じる）あるいはペプシン（Ｆ(ab')₂ フラグメントが生じる）などの酵素を使用する。抗体が、ある分子と特異的に反応して該分子を抗体に結合することが可能であるならば、その抗体はその分子に対して”結合可能”であるという。語句「エピトープ」とは、その分子において、抗体が結合することが可能かつ抗体が認識しうる部分を意味する。エピトープ決定基は通常、分子の化学的に活性な表面存在基（アミノ酸または糖側鎖など）からなり、特殊な３次元構造および特殊な荷電特性を有している。「抗原」とは、抗体が結合可能な分子であり、さらに言えば、動物において抗原のエピトープを結合しうる抗体の産生を誘発しうるものである。抗原は１つあるいはそれ以上のエピトープを有する。これまでに述べた「特異的反応」とは、抗原が、高度な選択性のもとにその対応する抗体と反応し、他の抗原によって産生を喚起される多数の他の抗体とは反応しないことを意味する。本発明に有用な抗体あるいは抗体フラグメントを用いて、ＮＴＰ抗原を含む細胞の存在を定量的または定性的に検出することができる。したがって、本発明に有用な抗体あるいは抗体フラグメントを組織学に応用して、ＮＴＰの存在を検出または視覚化することができる。このようなＮＴＰ検出アッセイは、通例、ＮＴＰを同定することができる検出可能に標識された結合分子（たとえば抗体）の存在下、ＮＴＰが存在する状態にあるとの疑いのある検体からの生体試料をインキュベートし、試料に結合する該結合分子を検出することから構成される。したがって、本発明のこの態様においては、まず生体試料をニトロセルロース、または細胞，細胞粒子または可溶性タンパク質を固定しうるような他の固相支持体で処理する。次いで該支持体を適当な緩衝液で洗浄し、次いで検出可能に標識されたＮＴＰ特異的抗体で処理する。次いで固相支持体を緩衝液でもう一度洗浄して非結合の抗体を除去する。次いで支持体担体上に結合した標識の量を常套の手段で検出する。「固相支持体」は、抗原または抗体を結合することができる支持体ならばどのようなものでもよい。公知の支持体または担体としては、ガラス、ポリスチレン、ポリプロピレン、ポリエチレン、デキストラン、ナイロン、アミラーゼ、天然および修飾セルロース、ポリアクリルアミド、アガロースおよびマグネタイトなどが挙げられる。該担体の性質は、本発明の目的のために、ある程度までの可溶性であってもよいし、または不溶性であってもよい。支持体物質は、結合した分子が抗原または抗体に結合可能である限り、実際どのような構造的形状であってもよい。したがって、支持体の形状は、ビーズのような球体、試験管の内側表面またはロッドの外側表面などの円筒体であってよい。また、シート状、試験片などの平面であってもよい。好ましい支持体はポリスチレンビーズである。当業者ならば、モノクローナル抗体または抗原を結合するための適当な担体をその他に数多く想当し、通例の実験を行うことができよう。ＮＴＰを含む生体試料における本発明の診断アッセイのひとつの具体例は、（ａ）検出可能に標識されたＮＴＰ特異的抗体を固相支持体と接触させて該ＮＴＰ特異的抗体またはそのフラグメントの固定化を行い；（ｂ）ＮＴＰを含む疑いのある試料を該固相支持体と接触させ；（ｃ）該検出可能に標識されたＮＴＰ特異的抗体を該支持体とともに、固定化されたＮＴＰ特異的抗体がＮＴＰに結合するに十分な時間インキュベートし；（ｄ）ステップ（工程）ｃで得られたインキュベーション混合物から固相支持体を分離し；および（ｅ）結合した標識を検出し、それによってＮＴＰを検出し、定量することからなる。別法として、試料中の標識ＮＴＰ特異的抗体／ＮＴＰ複合体を、免疫グロブリンに対して特異的な固定化抗体またはタンパク質（たとえばスタフィロコッカス・タンパク質Ａ、スタフィロコッカス・タンパク質Ｇ、抗ＩgＭまたは抗ＩgＧ抗体など）と接触させることによって反応混合物から分離してもよい。このような抗免疫グロブリン抗体はポリクローナルであるが、モノクローナル抗体が好ましい。次いで固相支持体を適当な緩衝液で洗浄して、固定化ＮＴＰ／標識ＮＴＰ特異的抗体複合体を得る。次いで標識を検出してＮＴＰの測定を行うことができる。この態様における本発明は、（ａ）ＮＴＰを含む疑いのある試料を、ＮＴＰに結合するＮＴＰ特異的抗体またはそのフラグメントと接触させ；および（ｂ）複合体が形成されるかどうかを検出することからなる試料中のＮＴＰまたはそのフラグメントの検出法に関する。本発明は、さらに（ｃ）ステップａで得られた混合物を、固相支持体上に固定化されている、ＮＴＰ特異的抗体に特異的な抗体であるスタフィロコッカス・タンパク質Ａまたはスタフィロコッカ・スタンパク質ＧなどのＦc結合分子と接触させ、抗体複合体に固定化されたＮＴＰ／ＮＴＰ特異的抗体を得；（ｄ）ステップｃで得られた固相支持体を洗浄して非結合のＮＴＰ／ＮＴＰ特異的抗体複合体を除去し；および（ｅ）該固相支持体に結合した標識を検出することからなる試料中のＮＴＰの検出法に関する。もちろん、検出可能に標識された抗体およびＮＴＰの特定の濃度、インキュベーションの温度と時間、およびその他のアッセイ条件は、試料中のＮＴＰの濃度、試料の性質などの種々の因子に応じて変化させてよい。得られたロットの結合活性は公知の方法に従って決定する。当業者ならば、通例の実験を行って各測定に対する有効な最適アッセイ条件を決定することができよう。通例に従って、あるいは個々の状況に必要な場合、洗浄、攪拌、振とう、濾過などのその他のこのようなステップを該アッセイに付加することができる。ＮＴＰ特異的抗体を検出可能になるように標識しうる方法のひとつは、該抗体を酵素に結合することである。この酵素は、後でその基質に触れさせたときに、該基質と反応して、分光光度法、蛍光法または視覚的手段などによって検出しうる化学的部位となる。ＮＴＰ特異的抗体を検出可能に標識するのに用いる酵素としては、リンゴ酸デヒドロゲナーゼ、スタフィロコッカスヌクレアーゼ、デルタ −Ｖ−ステロイドイソメラーゼ、酵母アルコールデヒドロゲナーゼ、グリセロール−３−リン酸デヒドロゲナーゼ、トリオースリン酸イソメラーゼ、西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、アスパラギナーゼ、グルコースオキシダーゼ、β−ガラクトシダーゼ、リボヌクレアーゼ、ウレアーゼ、カタラーゼ、グルコース−ＶＩ−ホスフェートデヒドロゲナーゼ、グルコアミラーゼおよびアセチルコリンエステラーゼなどが挙げられるが、これらに限定されるものではない。検出は、色々なイムノアッセイのどれかを用いて行う。たとえばＮＴＰ特異的抗体または抗体フラグメントを放射標識することによって、ラジオイムノアッセイ法を用いてＮＴＰを検出することが可能となる。ラジオイムノアッセイに関しては、ワーク（Work）らの「分子生物学における実験技術および生化学」，ノース・ホランド・パブリッシング・カンパニー，ニューヨーク（１９７８年）、特にチャード（Chard）による“ラジオイムノアッセイおよび関連技術入門”と題する章に、優れた記載がある。この文献は本明細書の参考文献である。放射性同位体は、ガンマ線カウンターまたはシンチレーションカウンターなどの手段またはオートラジオグラフィーによって検出することができる。本発明の目的に特に有用な同位体は、³Ｈ，¹²⁵Ｉ，¹³¹Ｉ，³⁵Ｓ，¹⁴Ｃであり、¹²⁵Ｉが好ましい。蛍光化合物でＮＴＰ特異的抗体を標識することもできる。蛍光標識した抗体を適当な波長の光を照射すると、蛍光を発するのでその存在を検出することができる。最も一般的に用いられる蛍光標識化合物は、フルオレセインイソチオシアネート、ローダミン、フィコエリセリン、フィコシアニン、アロフィコシアニン、ｏ−フタルデヒドおよびフルオレサミンである。 ¹²⁵Ｅｕまたは他のランタニド系列の金属などの蛍光発光金属を用いてＮＴＰ特異的抗体を検出可能に標識することもできる。これらの金属は、ジエチレントリアミン五酢酸（ＤＴＰＡ）またはエチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）などの金属キレート基を用いてＮＴＰ特異的抗体に付加することができる。化学発光化合物にカップリングさせることによってＮＴＰ特異的抗体を検出可能に標識することもできる。次いで化学反応中に発生する発光の存在を検出することによって、化学発光化合物付加ＮＴＰ特異的抗体の存在を測定する。特に有用な化学発光標識化合物の例としては、ルミノール、イソルミノール、セロマチックアクリジニウムエステル、イミダゾール、アクリジニウム塩およびオキサレートエステルが挙げられる。ビオチンでＮＴＰ特異的抗体を標識し、次いでアビジンと反応させてもよい。ビオチン標識ＤＮＡフラグメントは、アビジンブリッジを介してＮＴＰビオチン化モノクローナル抗体に結合する。次いで特定のプライマーを用いたＤＮＡフラグメントのＰＣＲ増幅を行い、ＮＴＰ分子を検出する［サノらのScience,２５８：１２０〜１２２（１９９２年）］。同様に、生物発光化合物を用いて、本発明のＮＴＰ特異的抗体を標識してもよい。生物発光は、生物に発見された化学発光のひとつであり、触媒タンパク質が化学発光反応の効率を高める。発光の存在を検出することによって、生物発光タンパク質の存在を測定する。標識するという目的にとって重要な生物発光化合物はルシフェリン、ルシフェラーゼおよびアクオリンである。たとえば検出可能な標識がガンマ線放出ならばシンチレーションカウンターを用い、または該標識が蛍光物質ならばフルオロメーターを用いてＮＴＰ特異的抗体の検出を行ってもよい。酵素標識の場合、その酵素に対する基質を用いる比色法によって検出を行うことができる。同様に調製した標準と基質との酵素反応の範囲を視覚的に比較することによって検出を行ってもよい。このような検出可能に標識された抗体の分布の中心を検出することは、前述の疾患または機能不全状態の指標となる。本発明アッセイによって、生体試料中に存在するＮＴＰを検出することができる。ＮＴＰを含むどのような試料でも使用することができる。しかし、本発明診断法の利点のひとつは、組織切除などの組織の損傷を与えることなく診断しうることである。それゆえに、試料は、大脳髄液、羊水、血液、血清および尿などの体液であることが好ましい。しかし、本発明は、これらの試料を用いたアッセイに限定されるものではなく、当業者であれば、他の試料を用いうるような適当な条件を決定することが可能である。たとえば、３部位のモノクローナル抗体イムノラジオメトリックアッセイ（mo noclonal antibody-based immunoradiometric assays:Ｍ−ＩＲＭＡ）を用いて体液（ＣＳＦなど）のＮＴＰ濃度を測定してもよい。ＡＤの疑いがある個体から通例の方法に基づいた髄液穿刺によってＣＳＦを得ることができる。したがって、この非侵入性イムノアッセイによってＡＤの診断を簡単に行うことでき、ＡＤ患者のＮＴＰ濃度が正常者のものよりも非常に高いことが示される。上記具体例では、体液試料を取り出し、該試料を検出可能に標識された抗体（または抗体フラグメント）の存在下でインキュベートすることによってＡＤ検査が行われる。この技術が、磁気造影、フルオログラフィーなどの非侵入性の方法で行われるのが好ましい。標識抗体（または抗体フラグメント）を被験者に投与するインビボ造影技術を用いてＮＴＰを有する細胞の検出を行い、あらかじめ組織試料を取り出すことなくＮＴＰの存在を検出するのが好ましい。このようなインビボ検出操作は、他の検出方法よりも侵入性が少ないという利点を持ち、さらに、脳組織などの容易に患者から取り出せない組織注のＮＴＰの存在を検出することができる。ＡＤ患者では脳全体からＮＴＰが検出されるが、脳腫瘍の場合は分散した沈着物中にＮＴＰが局在するので、インビボ造影技術を用いてＡＤと脳腫瘍を区別することができる。たとえば、ＡＤ患者の脳では、ＮＴＰは側頭皮質、頭頂皮質および前頭皮質、ならびに扁桃体および海馬において発見される。星状細胞腫が発生しやすい部位は、小脳、視床、視神経交叉および脳橋［ペテルスドルフ（Pete rsdorf）らの「Harrison's Principles of Internal Medicine」,第１０版、マックグロー−ヒル・ブック・カンパニー，ニューヨーク，ｐ２０７６（１９８３年）］および多形グリア芽腫は、主として大脳に局在する［同上文献，ｐ２０７５］。当業者には公知のインビボ標識およ標識方法は多数ある。本発明に用い得る標識の例としては、放射性同位体および常磁性同位体が挙げられる。当業者であれば、本発明に用いた抗体を結合するための他の適当な標識を承知しているか、あるいは通例の実験法を用いてそれらを確認しえるであろう。さらに、これらの標識の抗体への結合は、当業者には一般的である標準の技術を用いて行うことができる。インビボ診断用の放射性核種を選択する際の重要な因子は、放射性核種の半減期が、標的による最大アップテイク時にまだ検出可能である程度には長く、一方宿主に対する有害な放射線を最小にするために充分短いことである。インビボ造影に用いる放射性核種は、粒子は放射しないが、常套のガンマ線カメラで容易に検出しうるような１４０〜２００keＶの範囲の多数の光子を放出するものが理想的である。インビボ診断を行うために、放射性核種を抗体に直接的または仲介官能基を用いて間接的に結合する。金属イオンとして存在する放射性同位体の結合にしばしば用いられる仲介官能基は、ＤＴＰＡおよびＥＤＴＡである。免疫グロブリンに結合しうるイオンの典型例は^99mＴｃ，¹²³Ｉ，¹¹¹Ｉｎ，¹³¹Ｉ，⁹⁷Ｒｕ，⁶⁷Ｃｕ，⁶⁷Ｇａ，¹²⁵Ｉ，⁶⁸Ｇａ，⁷²Ａｓ，⁸⁹Ｚｒおよび²⁰¹Ｔｌである。診断用インビボ造影をするために、利用できる検出装置の型が、放射性核種の選択における主要な因子となる。選択する放射性核種は、その検出装置で検出可能なタイプの崩壊をするものでなければならない。診断用造影を視覚化する常套の方法は概していずれも本発明に利用することができる。たとえば、ＰＥＴ，ガンマ，ベータおよびＭＲＩ検出器を用いて診断用造影を視覚化することができる。インビボ診断を行うために、本発明に有用な抗体を常磁性同位体で標識することもできる。磁気共鳴造影（ＭＲＩ）において特に有用な元素は、¹⁵⁷Ｇｄ，⁵⁵ Ｍｎ，¹⁶²Ｄｙおよび⁵⁶Ｆｅである。本発明に有用な抗体（または抗体フラグメント）は、身体組織、体液（ＣＳＦなど）あるいは細胞抽出液中のＮＴＰの存在を検出するインビトロイムノアッセイにも特に適している。このようなイムノアッセイにおいては、抗体（または抗体フラグメント）は液相で、あるいは好ましくは前述した固相担体に結合させて用いることができる。当業者であれば、本発明に従って、他の利用しうる適当な標識について理解できよう。当業者には公知の標準的技術を用いて、これらの標識を抗体あるいは抗体フラグメントヘ結合することができる。代表的な技術は、ケネディー（Kenned y）らのClin.Chim.Acta,７０：１〜３１（１９７６年）およびスカース（Schurs ）らのClin.Chim.Acta,８１：１〜４０（１９７７年）に記載されている。後者に開示されたカップリング技術は、グルタールアルデヒド法、過ヨウ素酸塩法、ジマレイミド法、ｍ−マレイミドベンジル−Ｎ−ヒドロキシ−スクシンイミドエステル法である。すべての方法は本明細書において参考とされる。患者の組織学的標本を切除し、本発明の標識抗体を組み合わせて該標本に適用し、インシトゥ検出を行ってもよい。標識抗体（またはフラグメント）を生体試料に塗布するかまたは抗体で試料を被覆することによって適用するのが好ましい。このような操作を行うことによって、ＮＴＰの存在ばかりでなく、被検組織におけるＮＴＰの分布状態も測定することができる。当業者であれば、多種多様な組織学的方法（染色法など）のいずれの方法でも、適当な変更を加えることにより、本発明インシトゥ検出に適用できることが容易に理解されよう。本発明の結合分子を、“ツーサイト”または“サンドイッチ”アッセイとしても知られる免疫測定アッセイにおいて利用してもよい。典型的な免疫測定アッセイにおいては、ある量の非標識抗体（または抗体フラグメント）を被検液体（ＣＳＦなど）に不溶である固相支持体に結合し、ある量の検出可能に標識された可溶性抗体を加え、固相抗体、抗原および標識抗体の間で形成された３成分複合体を検出および／または定量する。代表的かつ好ましい免疫測定アッセイは、固相に結合した抗体が最初に被検試料と接触し、固相抗体−抗原からなる２成分複合体を形成することによって該試料から抗原を抽出する“前進（forward）”アッセイである。適当な時間インキュベーションを行った後、該固相支持体を洗浄して未反応の抗原（もし存在するなら）を含む液体試料の残りを除去し、次いで未知量の標識抗体（“リポーター分子”として機能する）を含む溶液と接触させる。第２のインキュベーションを行って標識抗体を、非標識抗体を介して固相支持体に結合した抗原と複合させた後、固相支持体に第２の洗浄を行い、未反応の標識抗体を除去する。このタイプの前進サンドイッチアッセイは、抗原が存在するかどうかを測定する単純な“イエス/ノー”アッセイであるかまたは標識抗体の測定結果を、既知量の抗原を含む標準試料から得られた結果と比較して定量を行うものである。このような“ツーサイト”または“サンドイッチ”アッセイは、ワイド（Wide）によって「ラジオイムノアッセイ法」，カーカム（Kirkham）およびハンター（Hunter）編,イー・アンド・エス・リビングストーン，エジンバラ（１９７０年）のｐ１９９〜２０６に記載されている。これもまた本発明の抗原に使用しうる、別のタイプの“サンドイッチ”アッセイにおいては、いわゆる“同時（simultaneous）”および“逆行（reverse）” アッセイが用いられる。同時アッセイは、固相支持体に結合した抗体と標識抗体の両方を被検試料に同時に加えるという一回のインキュベーションステップからなる。インキュベーション完了後、固相支持体洗浄して液体試料の残りおよび未複合の標識抗体を除去する。次いで固相支持体に会合した標識抗体の存在を常套の“前進”サンドイッチアッセイで測定する。 “逆行”アッセイにおいては、最初、液体試料に標識抗体の溶液を段階的に加え、次いで適当な時間インキュベーションを行った後、固相支持体に結合した非標識抗体を加える。第２のインキュベーション後、固相を常套の方法で洗浄して被検試料の残りおよび未反応の標識抗体を除去する。次いで固相支持体に会合した標識抗体の定量を“同時”および“前進”アッセイで行う。これまでに述べたインビトロまたはインビボ検出法を用いて組織を切除せずにＡＤを検出および診断することができる。このような検出法を用い、生体試料中のＮＴＰの濃度を算定し、比較することは、ＡＤにおける神経学的退行の測定の援助となる。診断試薬（抗体または抗体フラグメントなど）の有効量とは、所望の区別が得られる診断結果に到達する量であり、患者の年令、健康状態、性別、疾患の程度、もしあれば対立指標、および医師によって判断されるべきその他の変数などの因子に応じて変化するものである。診断試験において代表的に使用される量は、一般的に０.１〜５mg、好ましくは０.１〜０.５mgである。本発明のアッセイは、キットの製造にも適する。このようなキットは、閉じた境界内に受容するように仕切りをつけた担体手段、およびバイアル、チューブなどのひとつ以上のコンテナ手段からなり、該コンテナ手段にはそれぞれ別のイムノアッセイ成分が含まれる。たとえば、固相支持体に固定化された第１の抗体の入ったコンテナ手段、および溶液中に第２の検出可能に標識された抗体の入った次のコンテナ手段である。さらなるコンテナ手段には検出されるべきＮＴＰの濃度連続希釈液を含む標準溶液を入れる。ＮＴＰの標準溶液を用いて、横座標にＮＴＰ濃度をプロットし、縦座標に検出シグナルをプロットして標準曲線を作成する。ＮＴＰ含有試料から得られた結果は、標準曲線から内挿法によってＮＴＰ濃度を算出する。ＩＶ．ＮＴＰの分離本発明のＮＴＰタンパク質または断片は、既述の組換えＤＮＡからの発現によって得ることができる。あるいはまた、ＮＴＰは生物材料から精製することができる。本発明の目的において、以下の工程からなる精製法を例示するが、これに制限されるものではない。ＮＴＰ精製の最初の工程には、尿素、ギ酸、界面活性剤、もしくはチオシアネートの様な可溶化剤を含むかまたは含まない緩衝液中で、脳組織もしくはＣＳＦの様な生物試料からＮＴＰ分画を抽出することが含まれる。第二の工程には、可溶化物質をＭｏｎｏ−ＱまたはＭｏｎｏ−Ｓカラム（ＰｈａｒｍａｃｉａＬＫＢＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｉｎｃ；Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ，ＮＪ）イオン交換クロマトグラフィーにかけることが含まれる。同様に、可溶化物質は、分子を例えば荷電密度、荷電分布、および分子サイズに応じて分離することができるいかなる他の方法によっても分離することができる。イオン交換樹脂からのＮＴＰの溶離は、Ｍ−ＩＲＭＡの様なイムノアッセイによって各分画ごとにモニターする。次いで免疫反応のピークを透析し、凍結乾燥し、分子ふるいもしくはゲルクロマトグラフィーにかけることになろう。分子ふるいまたはゲルクロマトグラフィーは、分子サイズに基づいて分離を行う分別クロマトグラフィーの１種である。この種の分離には通常、デキストラン、ポリアクリルアミド、およびアガロースゲルを用いる。本発明において有用なゲルは、セファロース１２（ＰｈａｒｍａｃｉａＬＫＢＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｉｎｃ．）である。しかし、当業者に知られた他の方法を用いてサイズに基づいて効率的に分子を分離することができる。ＮＴＰの精製プロトコールにおける第四の工程には、ドデシル硫酸ナトリウム −ポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）による免疫反応性ピークの分析、さらなるゲルクロマトグラフィーによる精製工程、および例えば銀染色の様な染色が含まれる。精製法の第五工程には、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ後に得られるＮＴＰをアフィニティークロマトグラフィーか、または分離される物質とこの物質が特異的に結合することができる分子の親和性に基づく他の何らかの方法にかけることが含まれる。ＮＴＰをさらに精製するためには、抗ＮＴＰｍＡｂｓ（Ｔｈ９または実質的に純粋なＮＴＰに対して生じたｍＡＢｓのような）が結合したセファロースアフィニティークロマトグラフィーを用いることができる。逆相ＨＰＬＣの様な別の方法、または良好なピーク解像度を有する急速分離を特徴とする他の方法が有用である。ＮＴＰを精製するための別の方法では、ＡＤ患者から得られた濃縮ＣＳＦを使用することができる。この方法では、凍結乾燥またはＡｍｉｃｏｎ濾過などによって３０〜４０ｍＬに濃縮し、二次元ゲル電気泳動にかける。タンパク質をｐＨグラジエント中で荷電によって一方向に分離し、次いで他の方向のポリアクリルアミドゲル電気泳動による分子ふるいクロマトグラフィーにかける。ＮＴＰ免疫反応性断片はウエスタンブロット分析を用いるＴｈモノクローナル抗体（例えばＴｈ９）によって、スポットとして確認される。ゲルを切り出し、ゲルからＮＴＰタンパク質を溶離する。この方法で精製されるＮＴＰは、配列を調べるか、または新しいモノクローナル抗体を作製するために使用することができる。上記の好ましい方法の代わりに他の精製工程も使用し得ることは理解できよう。当業者は過度の実験を行うことなくこれに代わる精製工程を工夫することができよう。Ｖ．アンチセンスオリゴヌクレオチドおよびリボザイムを用いる遺伝子治療アンチセンスオリゴヌクレオチドは、原核生物（Ｍｉｚｕｎｏらの、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８１：１９６６−１９７０（１９８４））ならびに真核生物（Ｈｅｙｗｏｏｄの、ＮｕｃｌｅｉｃＡｃｉｄｓＲｅｓ．１４：６７７１−６７７２（１９８６））において、遺伝子発現を抑える天然の生物学的阻害剤であると記載されて来た。おそらく、これらの配列は相補的なｍＲＮＡ配列とハイブリダイズすることによって機能し、翻訳のハイブリダイゼーション停止をもたらす（Ｐａｔｅｒｓｏｎらの、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，７４：４３７０−４３７４（１９８７））。アンチセンスオリゴヌクレオチドは、特定の遺伝子またはＲＮＡメッセージと相補的となるように製造された短い合成ＤＮＡまたはＲＮＡヌクレオチド分子である。標的とするＤＮＡまたはｍＲＮＡ配列に対するこれらのオリゴマーの結合によって、当該遺伝子の転写または翻訳を選択的に阻害することができ、当該遺伝子によって生じた疾患の過程を停止させることができる（例えば、ＪａｃｋＣｏｈｅｎの、Ｏｌｉｇｏｄｅｏｘｙｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ，ＡｎｔｉｓｅｎｓｅＩｎｈｉｂｉｔｏｒｓｏｆＧｅｎｅＥｘｐｒｅｓｓｉｏｎ，ＣＲＣＰｒｅｓｓ（１９８９）を参照のこと）。ｍＲＮＡの細胞質における局在は、細胞に入り込むアンチセンスオリゴヌクレオチドに容易に接近できると思われる標的を提供するため、当該分野の多くの研究が標的となるＲＮＡに絞られてきている。一般に、アンチセンスオリゴヌクレオチドの使用は、インビトロおよび細胞培養における遺伝子発現の調節を研究するための有用な手段となる（Ｒｏｔｈｅｎｂｅｒｇらの、Ｊ．Ｎａｔｌ．ＣａｎｃｅｒＩｎｓｔ．８１：１５３９− １５４４（１９８９））。アンチセンス治療とは、細胞内に局在する標的ポリヌクレオチドに結合する外因性オリゴヌクレオチドを投与することである。例えば、抗癌療法において、アンチセンスオリゴヌクレオチドを全身的に投与することができる（Ｓｍｉｔｈの、国際出願公開番号ＷＯ９０／０９１８０）。本明細書に記載したごとく、ＮＴＰ関連タンパク質は神経外胚葉腫瘍細胞、悪性アストロサイトーマ細胞ならびにグリオブラストーマ細胞によって産生され、またＡＤ患者の脳組織中に比較的高濃度（すなわち、対照に比較して）に産生される。したがって、本発明のＮＴＰアンチセンスオリゴヌクレオチドは、神経外胚葉腫瘍、悪性アストロサイトーマならびにグリオブラストーマ、およびＡＤに対する治療において活性を持ち得る。本発明のＮＴＰアンチセンスオリゴヌクレオチドには、Ｓ−オリゴヌクレオチド（ホスホロチオエート誘導体またはＳ−オリゴ、既述のＪａｃｋＣｏｈｅｎを参照のこと）の様な誘導体が含まれる。Ｓ−オリゴ（ヌクレオシドホスホロチオエート）は、リン酸基の架橋していない酸素原子が硫黄原子で置き換えられているオリコヌクレオチド（Ｏ−オリゴ）の等電性類似体である。本発明のＳ−オリゴは、対応するＯ−オリゴを硫黄伝達試薬である３Ｈ−１，２−ベンゾジチオール−３−オン−１，１−ジオキシドで処理することによって製造することができる。Ｉｙｅｒらの、Ｊ．Ｏｒｇ．Ｃｈｅｍ．５５：４６９３−４６９８（１９９０）、およびＩｙｅｒらの、Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．１１２：１２５３ −１２５４（１９９０）を参照のこと（これらの開示は本明細書の一部を構成する）。本明細書に示すＮＴＰｃＤＮＡクローンの配列分析が示すように、ＮＴＰはＰＴＰＤＮＡ配列と相同性でない配列を含んでいる（図９を参照のこと）。したがって、本発明のＮＴＰアンチセンスオリゴヌクレオチドは、ＮＴＰに特異的なそのような配列と相補的で、またそのような配列と安定してハイブリダイズするＲＮＡおよびＤＮＡであろう。ＰＴＰを特定するｍＲＮＡとはハイブリダイズせずＮＴＰｍＲＮＡと選択的にハイブリダイズするために、この領域に相補的なオリゴヌクレオチドを使用することができる。好ましくは、本発明のＮＴＰアンチセンスオリゴヌクレオチドは：１．５’−ＣＣＧＡＴＴＣＣＡＡＣＡＧＡＣＣＡＴＣＡＴ−３’［配列番号：１］、２．５’−ＣＣＡＡＣＡＧＡＣＣＡＴＣＡＴＴＣＣＡＣＣ−３’［配列番号：２］、３．５’−ＣＣＡＡＡＣＣＧＡＴＴＣＣＡＡＣＡＧＡＣＣ−３’［配列番号：３］、およびの様なＡＤ３−４ｃＤＮＡの非相同性配列をコードするアンチセンスＤＮＡ分子の１５〜３０量体断片である。そのようなアンチセンスオリゴヌクレオチド（３０量体）の例には：１．５’−ＣＣＴＧＧＧＣＡＡＣＡＡＧＡＧＣＧＡＡＡＡＣＴＣＣＡＴＣＴＣ−３’［配列番号：４］、２．５’−ＡＴＣＧＣＴＴＧＡＡＣＣＣＧＧＧＡＧＧＣＧＧＡＧＧＴＴＧＣＧ−３’［配列番号：５］、および３．５’−ＧＧＧＧＡＧＧＣＴＧＡＧＧＣＡＧＧＡＧＡＡＴＣＧＣＴＴＧＡＡ−３’［配列番号：６］が含まれる。本発明には、本発明の少なくとも１種類のＮＴＰアンチセンスオリゴヌクレオチドの有効量と医薬的に許容される担体との組み合せからなる医薬組成物も同様に含まれる。１つの態様として、単一のＮＴＰアンチセンスオリゴヌクレオチドを利用する。別の態様として、ＮＴＰゲノムの近傍領域に相補的な２種類のＮＴＰアンチセンスオリゴヌクレオチドを利用する。当該ゲノムの近傍領域に相補的な２種類のＮＴＰアンチセンスオリゴヌクレオチド、またはそれに対応するｍＲＮＡを投与して、ＮＴＰゲノムの転写もしくはｍＲＮＡの翻訳をより効率的に阻害し、ＮＴＰ産生をより効果的に阻害することができるであろう。ＮＴＰアンチセンスオリゴヌクレオチドを、アンチセンス分子の細胞への取り込みを増強する薬剤と共に投与することが好ましい。例えば、ＮＴＰアンチセンスオリゴヌクレオチドを、リポソームの形であってもよい脂肪親和性のカチオン化合物と組み合わせることができる。細胞内にヌクレオチドを導入するためのリポソームの使用については、例えば米国特許番号４，８９７，３５５および４，３９４，４４８に示されている（これらの開示は本明細書の一部を構成する）。生物材料を含むリポソームを製造するための一般的方法については、米国特許番号４，２３５，８７１、４，２３１，８７７、４，２２４，１７９、４，７５３，７８８、４，６７３，５６７、４，２４７，４１１、および４，８１４，２７０も参照のこと。あるいはまた、ＮＴＰアンチセンスオリゴヌクレオチドは、コレステロール、コーレート、およびデオキシコール酸を含む多くのステロールのいずれとも組み合わせることができる。好ましいステロールはコレステロールである。さらに、ＮＴＰアンチセンスオリゴヌクレオチドは細胞が取り込むペプチドと結合させることができる。有用なペプチドの例には、ペプチドホルモン、抗原もしくは抗体、およびペプチド毒素が含まれる。新生物性細胞が選択的に取り込むペプチドを選択することによって、アンチセンス薬剤の特異的な輸送を行うことができる。次いで、選択するペプチドは、アミノおよびスルフィドリル反応性ヘテロ２機能性試薬を介して、活性化ＮＴＰアンチセンスオリゴヌクレオチドと共有結合することができる。後者は、選択するペプチド中に存在するシステイン残基と結合する。選択するペプチドに結合するペプチドＮＴＰアンチセンスオリゴヌクレオチドに対する細胞のばく露において、ペプチヂルアンチセンス薬剤はエンドサイトーシスによって取り込まれ、ＮＴＰアンチセンスオリゴヌクレオチドは標的ＮＴＰｍＲＮＡと結合して翻訳を阻害する（Ｈａｒａｌａｍｂｉｄらの、ＷＯ８９０３８４９、Ｌｅｂｌｅｕらの、ＥＰ０２６３７４０）。本発明のＮＴＰアンチセンスオリゴヌクレオチドおよびその医薬組成物は、その意図する目的を達成するためのいかなる方法によっても投与することができる。例えば、非経口的、皮下、静脈内、筋肉内、腹腔内、または経皮経路により投与することができる。投与する用量は、レシピエントの年齢、健康、および体重、併用治療の種類（もしあれば）、治療頻度、および所望する効果の性質によるであろう。本発明の範囲内の組成物には、対象癌細胞の増殖阻害および／または分化刺激を達成するか、またはＡＤを軽減するために有効な量のＮＴＰアンチセンスオリゴヌクレオチドを含有するすべての組成物が含まれる。個々の要求は異なるが、各成分の有効量の最適範囲の決定は当業者が行う。一般には、ＮＴＰアンチセンスオリゴヌクレオチドは、哺乳動物（例えばヒト）に、１日当たり、体重に応じて０．００５〜１ｍｇ／ｋｇの用量で投与することができる。また、それ相当する量のその医薬的に許容される塩を投与してもよい。あるいはまた、アンチセンスオリゴヌクレオチドは２本鎖ＤＮＡ（イントロン、エクソン、またはその両方を含む）の転写領域に結合し、三重らせんを形成することによってＮＴＰ遺伝子の転写と干渉するように計画して製造することができる（Ｆｒｏｅｈｌｅｒらの、ＷＯ９１／０６６２６；Ｔｏｏｌｅの、ＷＯ９２／１０５９０）。三重らせんを形成するための好ましいオリゴヌクレオチドは、当該オリゴヌクレオチドの少なくとも２領域の極性が逆転しているオリゴヌクレオチドである（同上）。その様なオリゴヌクレオチドは、Ｌがオリゴヌクレオチド間の０〜１０塩基のオリゴヌクレオチド結合を表す３'---５'-Ｌ-５'---３'、または５'---３'-Ｌ-３'---５'のような極性が反対であるタンデム配列を特徴とする。極性が逆になった形は、エキソヌクレアーゼによる分解に対して１本鎖オリゴヌクレオチドを安定化する（Ｆｒｏｅｈｌｅｒら、既述）。好ましい三重らせんを形成するオリゴヌクレオチドは配列番号１〜３に基づいている：１．３’−ＴＡＣＴＡＣＣＡＧＡＣＡＡＣＣＴＴＡＧＣＣ−５’−Ｌ− ５’−ＣＣＧＡＴＴＣＣＡＡＣＡＧＡＣＣＡＴＣＡＴ−３’［配列番号：７］、２．３’−ＣＣＧＡＴＴＣＣＡＡＣＡＧＡＣＣＡＴＣＡＴ−５’−Ｌ− ５’−ＴＡＣＴＡＣＣＡＧＡＣＡＡＣＣＴＴＡＧＣＣ−３’［配列番号：８］、３．３’−ＣＣＡＣＣＴＴＡＣＴＡＣＣＡＧＡＣＡＡＣＣ−５’−Ｌ− ５’−ＣＣＡＡＣＡＧＡＣＣＡＴＣＡＴＴＣＣＡＣＣ−３’［配列番号：９］、４．３’−ＣＣＡＡＣＡＧＡＣＣＡＴＣＡＴＴＣＣＡＣＣ−５’−Ｌ− ５’−ＣＣＡＣＣＴＴＡＣＴＡＣＣＡＧＡＣＡＡＣＣ−３’［配列番号：１０］、５．３’−ＣＣＡＧＡＣＡＡＣＣＴＴＡＧＣＣＡＡＡＣＣ−５’−Ｌ− ５’−ＣＣＡＡＡＣＣＧＡＴＴＣＣＡＡＣＡＧＡＣＣ−３’［配列番号：１１］、および６．３’−ＣＣＡＡＡＣＣＧＡＴＴＣＣＡＡＣＡＧＡＣＣ−５’−Ｌ− ５’−ＣＣＡＧＡＣＡＡＣＣＴＴＡＧＣＣＡＡＡＣＣ−３’［配列番号：１２］。したがって、三重らせんを形成するオリゴヌクレオチド１および２は、それぞれ３’［配列番号：１］５’−Ｌ−５’［配列番号：１］３’、および５’［配列番号：１］３’−Ｌ−３’［配列番号：１］５’で表される。三重らせんを形成するオリゴヌクレオチド３および４は、それぞれ３’［配列番号：２］５’−Ｌ −５’［配列番号：２］３’、および５’［配列番号：２］３’−Ｌ−３’［配列番号：２］５’で表される。三重らせんを形成するオリゴヌクレオチド５および６は、それぞれ３’［配列番号：３］５’−Ｌ−５’［配列番号：３］３’、および５’［配列番号：３］３’−Ｌ−３’［配列番号：３］５’で表される。もちろん、同様な三重らせんを形成するオリゴヌクレオチドは配列番号：４〜６またはその断片を用いて製造することができる。治療的応用において、三重らせん形成オリゴヌクレオチドは、既述した全身または局所投与を含む様々な投与法のために医薬製造物として製剤化することができる。本発明のアンチセンスオリゴヌクレオチドは、既述のごとく当該分野の通常の技術を有する者によく知られたいずれの方法で製造してもよい。リボザイムはｍＲＮＡ機能を阻害する別の方法を提供する。リボザイムはＲＮＡ酵素、自己スプライシングＲＮＡ、および自己開裂ＲＮＡであってよい（Ｃｅｃｈらの、ＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｉｏｌｏｇｉｃａｌＣｈｅｍｉｓｔｒｙ２６７：１７４７９−１７４８２（１９９２））。ある標的配列の途中に対するエンドヌクレアーゼ活性を有する新たなリボザイムを構築することができる。これらのリボザイムは様々な配列に作用することができるので、リボザイムは実質的にいかなるＲＮＡ基質のためにも計画することができる。したがって、リボザイムは特定の遺伝子の発現を阻害するための非常に融通性のある道具である。クロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼｍＲＮＡに対するリボザイムの構築に成功している（Ｈａｓｅｌｏｆｆらの、Ｎａｔｕｒｅ３３４：５８５−５９１（１９８８）；Ｕｈｌｅｎｂｅｃｋらの、Ｎａｔｕｒｅ３２８：５９６−６００（１９８７））。このリボザイムには３つの構造ドメインが含まれる：１）開裂部位の５’方向の隣の高度に保存された配列、２）リボソームの自然発生する開裂ドメインを含む、塩基対ステム（軸）を形成する高度に保存された配列、および３）開裂部位の両側の隣にある、その開裂部位に関連するリボザイムの正確な配列および基質ならびに酵素の結合を確実にする領域。インビトロでＲＮＡ配列に特定の開裂を生じさせるのに適した、このモデルに従って構築されたＲＮＡ酵素がすでに提供されている（Ｈａｓｅｌｏｆｆら、既述）。あるいはまた、活性部位がタバコ輪紋（ｒｉｎｇｓｐｏｔ）ウイルスの付随ＲＮＡのマイナス鎖から誘導されるヘアピンリボザイムを用いてもよい（Ｈａｍｐｅｌらの、Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ２８：４９２９−４９３３（１９８９））。最近、ヒト免疫不全ウイルス１型のＲＮＡを開裂させるヘアピンリボザイムが計画された（Ｏｊｗａｎｇらの、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８９：１０８０２−１０８０６（１９９２））。他の自己開裂ＲＮＡ活性は肝炎デルタウイルスに関連している（Ｋｕｏらの、Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．６２：４４２９−４４４４（１９８８））。既述の通り、ＮＴＰリボザイムの好ましい標的は、ＰＴＰ配列と相同性でないヌクレオチド配列である。好ましくは、本発明のＮＴＰリボザイム分子は、既述のクロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼリボザイムまたはヘアピンリボザイムに基づいて計画される。あるいはまた、ＮＴＰリボザイム分子は、化学的および酵素的分解に対する安定性が増強され、治療薬として有用な、触媒的活性を有するリボザイム構造を開示しているＥｃｋｓｔｅｉｎらの記載（国際公開番号ＷＯ９２／０７０６５）に従って計画される。別の研究方法において、外部ガイド配列（ＥＧＳ）を、内在性リボザイムのＲＮアーゼＰを細胞性リボザイムによって実質的に開裂される細胞内ＮＴＰｍＲＮＡに作用させるように構築することができる（Ａｌｔｍａｎらの、米国特許番号５，１６８，０５３）。ＮＴＰＥＧＳには、ＮＴＰｍＲＮＡ、およびＮがプリンであることが好ましい３’−ＮＣＣＡヌクレオチド配列に相補的な１０〜１５ヌクレオチド配列が含まれることが好ましい（同上）。ＮＴＰＥＧＳ分子を以下に既述するごとく細胞に供給してＮＴＰｍＲＮＡと相補性ＮＴＰＥＧＳ配列の間に塩基対を形成し、さらに塩基対形成領域の５’側のヌクレオチドにおいてＲＮアーゼＰによるＮＴＰｍＲＮＡの開裂を促進することによって、この分子を標的とするＮＴＰｍＲＮＡと結合させる（同上）。本発明には、本発明の少なくとも１種類のＮＴＰリボザイムまたはＮＴＰＥＧＳの有効量と医薬的に許容される担体との組み合わせとを含む医薬組成物も含まれる。ＮＴＰリボザイムまたはＮＴＰＥＧＳは、本リボザイムまたはＮＴＰＥＧＳ分子の細胞への取り込みを増強する薬剤と併用投与することが好ましい。例えば、ＮＴＰリボザイムまたはＮＴＰＥＧＳは、既述したようにリポソームの形であってよい脂肪親和性カチオン化合物と組み合わせることができる。あるいはまた、ＮＴＰリボザイムまたはＮＴＰＥＧＳはコレステロール、コーレート、およびデオキシコール酸を含む多くのステロールのいずれかのような脂肪親和性担体とも組み合わせることができる。本発明のＮＴＰリボザイムもしくはＮＴＰＥＧＳ、および医薬組成物は、その意図する目的を達成するための如何なる方法により投与してもよい。例えば、非経口、皮下、静脈内、筋肉内、腹腔内、または経皮経路で投与することができる。投与する用量は、レシピエントの年齢、健康ならびに体重、もしあれば併用処置の種類、治療頻度、および所望する効果の性質に依存するであろう。例えば、７００ｍｇものアンチセンスオリゴヌクレオチドが、毒性徴候を示すことなく１０日間のクールにわたって患者に静脈内投与されている（すなわち、０．０５ｍｇ／ｋｇ／時）（Ｓｔｅｒｌｉｎｇの、「ＴａｙｓｔｅｍｉｃＡｎｔｉｓｅｎｓｅＴｒｅａｔｍｅｎｔＲｅｐｏｒｔｅｄ」ＧｅｎｅｔｉｃＥｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇＮｅｗｓ１２（１２）：１，２８（１９９２））。本発明の範囲内の組成物には、対象癌細胞の増殖を阻害し、ならびに／もしくはその癌細胞の分化を促進するか、またはＡＤを軽減するのに有効な量のＮＴＰリボザイムまたはＮＴＰＥＧＳを含有するすべての組成物が含まれる。個々の要求は異なるが、各成分の有効量の最適範囲の決定は当業者が行う。溶液中の未加工の化学薬品としてＮＴＰアンチセンスオリゴヌクレオチド、リボザイム、またはＮＴＰＥＧＳを投与することに加えて、この治療分子を、ＮＴＰアンチセンスオリゴヌクレオチド、リボザイム、またはＮＴＰＥＧＳを加工処理して医薬的に使用し得る製造物治療分子とするのを促進する賦形剤および補助剤を含む適切な医薬的に許容される担体を含有する医薬製造物の一部として投与することができる。非経口投与に適した製剤には、水溶性の形のＮＴＰアンチセンスオリゴヌクレオチド、リボザイム、ＮＴＰＥＧＳ（例えば水溶性塩）の水溶液が含まれる。さらに、活性化合物の懸濁液を適切な油状注射用懸濁液として投与することができる。適切な脂肪親和性溶媒またはビークルには、脂肪油（例えば、ゴマ油）または合成脂肪酸エステル（例えばエチルオレエートもしくはトリグリセリド）が含まれる。水性注射用懸濁液は、例えばナトリウムカルボキシメチルセルロース、ソルビトール、および／またはデキストランを含む、この懸濁液の粘性を増大させる物質を含有することができる。この懸濁液には安定化剤が含まれていることがあってもよい。あるいはまた、ＮＴＰアンチセンスＲＮＡ分子、ＮＴＰリボザイム、およびＮＴＰＥＧＳは、好ましくはインビボで複製することができないビリオンの形で投与されるＤＮＡ構築物にコードされることができる（例えば、Ｔａｙｌｏｒの、ＷＯ９２／０６６９３を参照のこと）。例えば、そのようなＤＮＡ構築物は、ヘルペスを基礎としたウイルスを用いて投与することができる（Ｇａｇｅらの、米国特許番号５，０８２，６７０）。あるいはまた、ＮＴＰアンチセンスＲＮＡ配列、ＮＴＰリボザイム、およびＮＴＰＥＧＳはレトロウイルスの様なビリオンの形で投与されるＲＮＡ構築物にコードされることができる。レトロウイルスベクターの製造法は当該分野でよく知られている（例えば、Ｂｒｏｗｎらの、「ＲｅｔｒｏｖｉｒａｌＶｅｃｔｏｒｓ，」ｉｎＤＮＡＣｌｏｎｉｎｇ：ＡＰｒａｃｔｉｃａｌＡｐｐｒｏａｃｈ，第３巻，ＩＲＬＰｒｅｓｓ，Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ，Ｄ．Ｃ．（１９８７）を参照のこと）。中枢神経系における遺伝子発現の特異性は、細胞特異的エンハンサーおよびプロモーターの様な適切な細胞特異的調節配列を用いることによって与えることができる。例えば、そのような配列には、ＪＣウイルスのオリゴデンドログリア特異的な発現、プロテオリピッドタンパク質のグリア特異的な発現、およびグリア線維性酸性タンパク質遺伝子を調節する配列が含まれる（Ｇａｇｅら、既述）。タンパク質のリン酸化は神経調節において重要であるため（Ｋｅｎｎｅｄｙの、「ＳｅｃｏｎｄＭｅｓｓｅｎｇｅｒｓａｎｄＮｅｕｒｏｎａｌＦｕｎｃｔｉｏｎ，」ｉｎＡｎＩｎｔｒｏｄｕｃｔｉｏｎｔｏＭｏｌｅｃｕｌａｒＮｅｕｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，Ｈａｌｌ，Ｅｄ．，ＳｉｎａｕｅｒＡｓｓｏｃｉａｔｅｓ，Ｉｎｃ．（１９９２））、プロテインキナーゼプロモーター配列を用いて十分なレベルのＮＴＰ遺伝子発現を得ることができる。したがって、遺伝子療法を用いてＮＴＰが特定の形で不適切に発現するのを阻害することによりＡＤを軽減することができる。さらに、遺伝子療法を用いてＮＴＰの特定の形の適切な発現レベルをもたらすことによりＡＤを軽減することができる。この場合には、特定のＮＴＰ核酸配列を、既述したウイルスの形で投与するＤＮＡまたはＲＮＡ構築物にコードすることができる。あるいはまた、「ドナー細胞」を、ＮＴＰ配列を含むウイルスもしくはレトロウイルスベクターを用いるか、または外来ＤＮＡを細胞内に導入するための他のよく知られた技術を用いてインビトロで修飾することができる（例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、既述、を参照のこと）。そのようなドナー細胞には、線維芽細胞、神経細胞、グリア細胞、および結合組織細胞が含まれる（Ｇａｇｅら、既述）。遺伝子操作後、ドナー細胞を中枢神経系に移植し、遺伝的に修飾した細胞に治療型のＮＴＰを提供する（既述）。さらに、そのようなビリオンは、脳に輸送するために血流中に導入することができる。これは血液脳関門の浸透性を破壊した後にビリオンを投与することによって成し遂げられる（例えば、Ｎｅｕｗｅｌｔの、米国特許番号４，８６６，０４２を参照のこと）。血液脳関門はマンニトール、アラビノース、またはグリセロールの様な医薬的に活性な無毒性の高張溶液を投与することによって破壊することができる（既述）。大腸菌中の以下のクローンは、ブダペスト条約に従って、ＡｍｅｒｉｃａｎＴｙｐｅＣｕｌｔｕｒｅＣｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（１２３０１ＰａｒｋｌａｗｎＤｒｉｖｅ，Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ，Ｍａｒｙｌａｎｄ，２０８５２）に寄託された：Ｇ２−２ＰｓｔＩ−ＤＨ５（ＡＴＣＣＮｏ．６９２５７）；Ｇ５ｄ−ＰｓｔＩ−ＤＨ５（ＡＴＣＣＮｏ．６９２５８）；１−９ａ−ＬＸ−１ｂｌｕｅ（ＡＴＣＣＮｏ．６９２５９）；ＡＤ３−４−ＤＨ１（ＡＴＣＣＮｏ．６９２６０）；ＨＢ４−ＸＬ−ｂｌｕｅ（ＡＴＣＣＮｏ．６９２６１）；ＡＤ１０−７−ＤＨ１（ＡＴＣＣＮｏ．６９２６２）；ＡＤ２−２−ＤＨ１−（ＡＴＣＣＮｏ．６９２６３）；Ｇ５ｄ−１ＰｓｔＩ−ＥｃｏＲＩ−ＤＨ５（ＡＴＣＣＮｏ．６９２６４）；およびＧ２−２ＰｓｔＩ−ＥｃｏＲＩ-ＤＨ５（ＡＴＣＣＮｏ．６９２６５）。本発明における一般的な記載は、例示のために示された以下の実施例に対する引用例によってより容易に理解されるであろうが、これらは特に示さない限り本発明を制限することを意図するものではない。実施例１細胞株におけるＮＴＰ免疫反応性の発現中枢神経系由来の細胞株７株について、膵臓型の糸状タンパク質に対して生じた（Ｇｒｏｓｓらの、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．７６：２１１５−２１２６（１９８５））、脳組織および脳脊髄液中に存在する糸状タンパク質と交差反応する（Ｏｚｔｕｒｋらの、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８６：４１９−４２３（１９８９）；ｄｅｌａＭｏｎｔｅらの、Ｌ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．８６：１００４−１０１３（１９９０）；ｄｅｌａＭｏｎｔｅらの、Ｊ．Ｎｅｕｒｏｌ．Ｓｃｉ．１１３：１５２−１６４（１９９２）；ｄｅｌａＭｏｎｔｅらの、Ａｎｎ．Ｎｅｕｒｏｌ．３２：７３３−７４２（１９９２））Ｔｈ９モノクローナル抗体を用いて、糸状タンパク質に対する免疫反応性を発現することを確認した。それらの中には以下のものがあった：初期神経外胚葉腫瘍（ＰＮＥＴ）細胞株２株、ＰＮＥＴ１およびＰＮＥＴ２；グリオブラストーマ細胞株３株、Ｈｇｌ１６、Ｈｇｌ１７、およびＣ６；グリア細胞株Ａ１７２；および神経芽細胞腫細胞株ＳＨ−Ｓｙ５ｙ。グリオブラストーマ細胞株およびＡ１７２細胞はＡｍｅｒｉｃａｎＴｙｐｅＣｕｌｔｕｒｅＣｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）から得た。ＳＨ−Ｓｙ５ｙ細胞はＳｌｏａｎ−Ｋｅｔｔｅｒｉｎｇ記念病院のＤｒ．Ｂｉｅｄｌｅｒから得た。ＰＮＥＴ細胞株は以前に記載されており（Ｔｈｅらの、Ｎａｔｕｒｅｇｅｎｅｔｉｃｓ３：６２−６６（１９９３）、ＭＧＨ癌センターのＤｒ．Ｒｅｎｅ’Ｂｅｒｎａｒｄｓから得た。すべての細胞株は１０％ウシ胎児血清添加、抗生物質不含Ｅａｒｌ変法Ｅａｇｌｅ培地中で維持した。細胞の糸状タンパク質および他の免疫反応性を試験するために、２ｍＭＥＤＴＡを含むリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）（１３７ｍＭＮａＣｌ、２．７ｍＭＫＣｌ、４．３ｍＭＮａ₂ＨＰＯ₄、１．４ｍＭＫＨ₂ＰＯ₄（ｐＨ７．３））中に回収し、スライド当り１０⁵細胞を用いてサイトスピン標本を作製した。サイトスピン標本を１００％メタノール（−２０℃）中で速やかに固定し、風乾し、使用するまで−８０℃に保存した。スライドを室温で平衡化し、ＰＢＳで水和した後、免疫染色を行った。非特異的な抗体結合を３％非免疫ウマ血清でブロックした。同じ培養からの複製サイトスピン標本を、一次抗体５または１０μｇ／ｍＬと４℃で一夜インキュベーションした。免疫反応の証明は、ＶｅｃｔａｓｔａｉｎＥｌｉｔｅｋｉｔ（ＶｅｃｔｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｂｕｒｌｉｎｇａｍｅ，ＣＡ）をメーカーのプロトコールに従って用い、さらにクロモゲンとして３−３’ジアミノベンジジン（０．５ｍｇ／ｍＬ＋０．０３％過酸化水素）を用いるアビジン−ビオチンホースラディッシュパーオキシダーゼ法によって行った。次に、細胞をヘマトキシリンで対比染色し、段階的アルコール溶液中で脱水し、キシレンで透徹して、Ｐｅｒｍｏｕｎｔ（ＦｉｓｈｅｒＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を用いてカバーグラス下に保存した。各細胞株のサイトスピン標本を糸状タンパク質モノクローナル抗体Ｔｈ９、Ｔｈ７、Ｔｈ１０、Ｔｈ２９、Ｔｈ３４、ＴＨ４６、Ｔｈ６７、およびＴｈ９０を用いて免疫染色した。さらに、複製スライドを陽性（ニューロフィラメント、グリア線維性酸性タンパク質（ＧＦＡＰ）、ならびにビメンチン）および陰性（デスミン、Ｂ型肝炎表面抗原−５Ｃ３）対照モノクローナル抗体によって免疫染色した。発明者の研究室で作製した５Ｃ３（Ｆｕｊｉｔａらの、Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ９１：１３５７−１３６３（１９８６））を除く対照抗体は購入した（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ−Ｍａｎｎｈｅｉｍ）。すべての血清学的試薬は１％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）を含むＰＢＳで希釈し、一次抗体を除くすべてのインキュベーションは加湿チャンバー内で室温で行った。スライドは各工程の間でＰＢＳを３回交換して洗浄した。ＰＮＥＴ１細胞およびＰＮＥＴ２細胞は共に、高分子量ならびに中分子量のニューロフィラメントタンパク質を発現し、グリア線維性酸性タンパク質またはビメンチンはほどんどあるいは全く発現しなかった。ＰＮＥＴ１、ＰＮＥＴ２、およびＳＨ−Ｓｙ５ｙ細胞は、未成熟ニューロンおよび再生細胞増殖を受けたニューロン中に高度に発現する豊富なカルモジュリン結合リンタンパク質であるＧＡＰ −４３を発現した（Ｂｅｎｏｗｉｔｚらの、Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．３：２１５３−２１６３（１９８３）；ＤｅＧｒａａｎらの、Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．Ｌｅｔｔ．６１：２３５−２４１（１９８５）；Ｋａｌｉｌらの、Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．６：２５６３−２５７０（１９８６））。Ａ１７２細胞およびＣ６細胞はＧＦＡＰおよびビメンチンを発現した。しかし、Ａ１７２はニューロフィラメントに対する免疫反応性をも示し、それが純粋にグリア細胞の性状を持つかに対する疑問が生じた。いずれの細胞株もデスミンまたはＢ型肝炎表面抗原に対するモノクローナル抗体との免疫反応性を生じなかった。陰性対照細胞株として肝細胞癌細胞株Ｈｕｈ７も同様に免疫染色し、既述の抗体との免疫反応性を示さないことが示された。しかし、Ｈｕｈ細胞は、本細胞株の陽性対照として用いられるインスリン受容体基質タンパク質のＩＲＳ−１に対するモノクローナル抗体（Ｓａｓａｋｉらの、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６８：１−４（１９９３））との免疫反応性を示した（データ示さず）。Ｔｈ９モノクローナル抗体を用いて、糸状タンパク質に対する免疫反応性を、原発性ＰＮＥＴ（Ａ）、原発性グリオブラストーマ（Ｆ）、ＰＮＥＴ１（Ｂ）、およびＣ６細胞（Ｇ）において検出したが、肝細胞癌細胞株では検出されなかった（図１）。さらに、Ｔｈ９免疫反応性を、試験した原発性ヒトＣＮＳＰＮＥＴ８〜９株および原発性ヒトグリオブラストーマ５株すべての組織切片において検出した（図１）。細胞株５株はすべてＴｈ９モノクローナル抗体との強い免疫反応性を示したが、これら細胞株の他のＴｈモノクローナル抗体に対する免疫反応性に差がみられた。Ｔｈ１０（Ｃ、Ｈ）、Ｔｈ７（Ｄ、Ｉ）、またはＴｈ４６モノクローナル抗体によって生じる免疫染色反応は、ＰＮＥＴ１（Ｃ−Ｅ）およびＣ６（Ｈ−Ｊ）において低レベル（Ｃ、Ｄ）であるか、または欠如していた（Ｈ、Ｉ、Ｅ、Ｊ）。ＰＮＥＴ２細胞はＴｈ７およびＴｈ２９と低レベルの免疫反応性しか示さず、他のＴｈモノクローナル抗体では免疫染色されなかった。Ａ１７２、Ｃ６、およびＳＨ−Ｓｙ５ｙ細胞はＴｈ９以外のＴｈモノクローナル抗体とほとんどまたは全く免疫反応性を示さなかった。Ｈｕｈ７細胞は使用した如何なる糸状タンパク質モノクローナル抗体とも免疫応答性を示さなかったが、ヒト膵臓組織は精製膵臓型糸状タンパク質に対して生じたＴｈ抗体すべてと免疫反応性を示した（Ｇｒｏｓｓの、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．７６：２１１５−２１２６（１９８５））。実施例２モノクローナル抗体に基づく免疫放射測定アッセイ（Ｍ−ＩＲＭＡ）による糸状タンパク質の分析培養細胞をＰＢＳで洗浄し、２ｍＭＥＤＴＡを含むＰＢＳ中に回収した。細胞を１０００×ｇ、１５分間遠心して沈さとし、さらに５０ｍＭトリス−ＨＣｌ（ｐＨ７．５）、１％ＴｒｉｔｏｎＸ−１００、２ｍＭＥＧＴＡ、１０ｍＭＥＤＴＡ、１００ｍＭＮａＦ、１ｍＭＮａ₄Ｐ₂Ｏ₇、２ｍＭＮａ₃ＶＯ₄、１００μｇ／ｍＬフェニルメチルスルホニルフロリド、１μｇ／ｍＬアプロチニン、１μｇ／ｍＬペプスタチンＡ、および１μｇ／ｍＬロイペプチンを含む溶解緩衝液中に再浮遊させた。溶解物を１４，０００×ｇ、１０分間遠心して得た上清分画をウエスタンブロット分析、免疫沈降試験、およびＭ−ＩＲＭＡに用いた。タンパク質濃度はローリー比色分析法によって測定した。試料は−４０℃に保存した。Ｍ−ＩＲＭＡは、細胞溶解物、組織培養液、組織ホモゲネート、および体液中のｐモラーのＮＴＰを定量することができる高感度の２または３部位前方サンドイッチアッセイである（Ｏｚｔｕｒｋらの、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８６：４１９−４２３（１９８９）；ｄｅｌａＭｏｎｔｅらの、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．８６：１００４−１０１３（１９９０）；ｄｅｌａＭｏｎｔｅらの、Ｊ．Ｎｅｕｒｏｌ．Ｓｃｉ．１１３：１５２−１６４（１９９２）；ｄｅｌａＭｏｎｔｅらの、Ａｎｎ．Ｎｅｕｒｏｌ．３２：７３３−７４２（１９９２）；Ｇｒｏｓｓらの、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．７６：２１１５−２１２６（１９８５））。さらに、ＳＤＳ−ＰＡＧＥと組み合わせると、Ｍ−ＩＲＭＡを用いて糸状タンパク質および関連タンパク質の分子サイズを決定することができる（Ｏｚｔｕｒｋらの、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８６：４１９−４２３（１９８９）；ｄｅｌａＭｏｎｔｅらの、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．８６：１００４−１０１３（１９９０）；ｄｅｌａＭｏｎｔｅらの、Ｊ．Ｎｅｕｒｏｌ．Ｓｃｉ．１１３：１５２ −１６４（１９９２）；ｄｅｌａＭｏｎｔｅらの、Ａｎｎ．Ｎｅｕｒｏｌ．３２：７３３−７４２（１９９２））。Ｍ−ＩＲＭＡには、固相マトリックスに固定したモノクローナル抗体Ｔｈ７およびＴｈ１０を用いて生物試料中に存在する免疫反応性糸状タンパク質を捕捉し、次いで当該タンパク質に対する第三放射能標識トレーサーモノクローナル抗体（Ｔｈ９）を用いて捕捉した抗原を検出することが含まれる。簡単には、１／４”ポリスチレンビーズ（ＰｒｅｃｉｓｉｏｎＢａｌｌ，Ｉｎｃ）を糸状タンパク質（通常Ｔｈ７＋Ｔｈ１０）に対する１または２種類のモノクローナル抗体でコートした。細胞溶解物または組織ホモゲネートの上清分画（Ｏｚｔｕｒｋらの、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８６：４１９−４２３（１９８９）；ｄｅｌａＭｏｎｔｅらの、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．８６：１００４−１０１３（１９９０）；ｄｅｌａＭｏｎｔｅらの、Ｊ．Ｎｅｕｒｏｌ．Ｓｃｉ．１１３：１５２−１６４（１９９２）；ｄｅｌａＭｏｎｔｅらの、Ａｎｎ．Ｎｅｕｒｏｌ．３２：７３３ −７４２（１９９２））を当該コートしたビーズと一夜インキュベーションし、試料中に存在する糸状タンパク質を捕捉する。このビーズをＰＢＳで５回洗浄し、次いでトレーサーとして¹²⁵Ｉ標識Ｔｈ９とインキュベーションし、捕捉された糸状タンパク質を検出する。細胞溶解物または組織ホモゲネート中の糸状タンパク質濃度を、既知量の精製糸状タンパク質によって作製した標準曲線から決定した。この高感度のアッセイは溶液中のわずか１０ｐモルもの糸状タンパク質を検出することができる。ＳＤＳ−ＰＡＧＥで分画した糸状タンパク質をアッセイするために、湿潤したゲルを２ｍｍ間隔でスライスし、当該タンパク質をＰＢＳ０．５ｍＬ中で室温で２４時間振とうすることにより溶離した。この溶離物中の糸状タンパク質をＭ−ＩＲＭＡによって直接アッセイした。Ｔｈ７、Ｔｈ１０、Ｔｈ３４、およびＴｈ２９によるＰＮＥＴ１細胞の広範な免疫細胞化学染色に対応するこれらの細胞の糸状タンパク質に対する免疫反応性をＭ−ＩＲＭＡによって容易に測定した。換言すれば、Ｔｈ７、Ｔｈ１０、Ｔｈ３４、およびＴｈ２９モノクローナル抗体（ＭｏＡｂ）を単一でかまたは２種類を一緒にして捕捉抗体として用い、¹²⁵Ｉ標識Ｔｈ９をトレーサーに用いて、同様に高レベルの糸状タンパク質を測定した（図２）。反対に、Ｔｈ９と強い免疫反応性を示すが、抗原を捕捉するために用いたＴｈモノクローナル抗体ではほとんどまたは全く免疫細胞化学的に染色されないＰＮＥＴ２、Ｃ６、およびＡ１７２細胞において、Ｍ−ＩＲＭＡによって検出される糸状タンパク質レベルは、ＰＮＥＴ１細胞において測定されるものよりはるかに低かった（図２）。同様に、いかなる糸状タンパク質モノクローナル抗体による免疫細胞化学染色も示さなかったＨｕｈ７細胞の細胞溶解物中の糸状タンパク質は、Ｍ−ＩＲＭＡによって実質的に検出不能なレベルであった。細胞溶解物中の糸状タンパク質濃度は、Ｔｈ７およびＴｈ１０を捕捉抗体に用いる精製ＰＴＰを用いて作製した標準曲線から計算した。総タンパク質１ｍｇ当りの平均Ｓ．Ｄ．ｐｇで表した結果は以下の通りである：ＰＮＥＴＩ−１３．１±０．３９；ＰＮＥＴ２−２．０６±０．１０；Ａ１７２−３．３８±０．３７；Ｃ６−２．５２±０．２２；およびＨｕｈ７ −０．３４±０．０５。実施例３腫瘍細胞株の神経糸状タンパク質の特徴づけウエスタンブロット分析において、タンパク質１００μｇを含む試料を、予め標識した分子量標準と共にＳＤＳ−ＰＡＧＥによって分画化した。タンパク質を、半乾燥トランスファー装置（ＩｎｔｅｇｒａｔｅｄＳｙｓｔｅｍｓ）を用いてナイロン膜（Ｉｍｍｕｂｉｌｏｎ−Ｐトランスファー膜、Ｍｉｌｌｏｐｏｒｅ）上にブロットした。膜をトリス緩衝生理食塩水（ＴＢＳ；１０ｍＭトリス、０．８５％塩化ナトリウム、ｐＨ７．５）で洗浄し、次いで３％ＢＳＡを含むＴＢＳでブロックした。ブロットしたものを¹²⁵Ｉ標識Ｔｈ９モノクローナル抗体と４℃で一夜インキュベーションした。膜を室温でＴＢＳ−ＢＳＡ中、１５分３回、さらに３０分１回洗浄することにより非特異的に結合したプローブを除去した。結果はコダックＸＡＲフィルムを用いるオートラジオグラフィーによって分析した。免疫沈降試験用の試料を調製するために、タンパク質約１ｍｇ／ｍＬを含む細胞溶解物試料１ｍＬを免疫沈降試験に用いた。この溶解物を最初に非関連抗体（５Ｃ３または抗デスモシン）で、次いでプロテインＡセファロースで予めきれいにする。糸状タンパク質はＴｈ９５〜１０μｇおよびプロテインＡセファロースを用いて免疫沈降させた（Ｓａｓａｋｉらの、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６８：１−４（１９９３））。遠心によって回収した免疫複合体を２％ＳＤＳおよび１０ｍＭ β−メルカプトエタノールを含む緩衝液中に再懸濁し、変性および還元条件下でＳＤＳ−ＰＡＧＥにかけた（同上）。粗細胞溶解物（１００μｇタンパク質）を同様に分析した。タンパク質をＩｍｍｏｂｉｌｏｎ−Ｐ膜上にブロットし、¹²⁵Ｉ標識（同上）Ｔｈ９をプローブとして糸状タンパク質および関連分子を検出した。Ｂ型肝炎表面抗原（５Ｃ３）またはデスミンに対するモノクローナル抗体を用いて、同時に陰性対照試験を行った。１００ｍｍ²ペトリ皿中で培養した単層の細胞を用いて代謝標識試験を行った。標識前に、細胞をメチオニンおよびシステイン不含培地に２時間ばく露した。ついで、培地を［³⁵Ｓ］メチオニンまたは［³⁵Ｓ］システイン各３００μＣｉを含むＤＭＥＭ３ｍＬに置き換えた。３時間標識した後、細胞を様々な間隔で、放射性標識したアミノ酸を含まない１０ｍＭメチオニン添加完全培地でインキュベーションした。細胞溶解物を既述のごとく調製した。糸状タンパク質をＴｈ９モノクローナル抗体およびプロテインＡセファロースを用いて免疫沈降させ、免疫沈降生成物をＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびフィルムオートラジオグラフィーによって分析した。インビボのリン酸化試験において、代謝標識試験について記載したごとく培養した細胞をＴＢＳで２回洗浄し、１０％透析ウシ胎児血清を含むリン酸不含Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓＭＥＭで２時間インキュベーションした。次に、細胞をＴＢＳで洗浄し、［³²Ｐ］オルソリン酸４００μＣｉ／ｍＬを含む同じ培地で３時間インキュベーションした。細胞溶解物を糸状タンパク質、および陽性（ｐ３６）ならびに陰性（デスミン）対照モノクローナル抗体との免疫沈降、次いでＳＤＳ −ＰＡＧＥによって分析した。神経糸状タンパク質のグリコシル化状態を試験するため、タンパク質約１００ μｇを含む細胞培養溶解物をＳＤＳ−ＰＡＧＥにかけ、分画化したタンパク質をＩｍｍｏｂｉｌｏｎ−Ｐ膜（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）に移した。Ｏ−およびＮ−グリカンを、ペリオデート酸化、次いでビオチニル化により、さらにＳｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−アルカリホスファターゼプローブおよび比色分析用基質としてＮＢＴ／ＢＣＩＰを用いるウエスタンブロット分析によって検出した。本アッセイは、ＧｌｙｃｏＴｒａｃｋＫｉｔ（ＯｘｆｏｒｄＧｌｙｃｏｓｙｓｔｅｍｓ，Ｒｏｓｅｄａｌｅ，ＮＹ）をメーカーのプロトコールに従って用いることにより行った。Ｔｈ９免疫反応性タンパク質を、４つの異なる方法によってＰＮＥＴ１、ＰＮＥＴ２、ＳＨ−Ｓｙ５ｙ、Ｃ６、およびＡ１７２細胞の溶解物中に検出した：ウエスタンブロット分析、免疫沈降後のウエスタンブロット分析、代謝標識後の免疫沈降、およびＳＤＳ−ＰＡＧＥとＭ−ＩＲＭＡとの組み合せ。¹²⁵Ｉ標識Ｔｈ９を用いる粗細胞分解物のウエスタンブロット分析によって、上記細胞株において〜２１ｋＤａのバンド（図３中の矢印で表示）が示されたが、その信号強度は弱かった。反対に、ヒトすい臓組織の分解物では、予想された１７ｋＤａの非開裂型および１４ｋＤａの開裂型のすい臓糸状タンパク質がウエスタンブロット分析によって容易に検出された（図３）。糸状タンパク質は、ヒト肝細胞癌細胞株の溶解物中に検出されなかった。神経およびグリア細胞株と比較してすい臓組織中の糸状タンパク質が著しく大量であったことは、脳組織および脳脊髄液と比較してすい臓およびすい液中の糸状タンパク質濃度が１０⁶倍高かった以前の知見と一致している（Ｏｚｔｕｒｋらの、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８６：４１９−４２３（１９８９）；ｄｅｌａＭｏｎｔｅらの、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．８６：１００４−１０１３（１９９０）；ｄｅｌａＭｏｎｔｅらの、Ｊ．Ｎｅｕｒｏｌ．Ｓｃｉ．１１３：１５２−１６４（１９９２）；ｄｅｌａＭｏｎｔｅらの、Ａｎｎ．Ｎｅｕｒｏｌ．３２：７３３− ７４２（１９９２））。ＰＮＥＴおよびグリア細胞によって合成された糸状タンパク質がＰＴＰおよびＮＴＰの場合と同様に分泌されると予想する者もあるであろうが、糸状タンパク質は、ウエスタンブロット分析において、組織培養培地を凍結乾燥により４ないし５倍に濃縮した後も培地中に検出されなかった。Ｔｈ９免疫反応性糸状タンパク質は、ＴＨ７＋Ｔｈ１０もしくはＴｈ９のいずれかを用いて溶解物から最初の免疫沈降を行い、次いで¹²⁵Ｉ標識Ｔｈ９（直接）または¹²⁵Ｉ標識プロテインＡと非標識Ｔｈ９（間接）を用いるウエスタンブロット分析を行うことによって、ＰＮＥＴおよびグリア細胞中により容易に検出された（図３）。２つの方法においても、ウエスタンブロット分析によって検出されたものと同様の２１ｋＤａ糸状タンパク質関連タンパク質が検出された。さらに、ＰＮＥＴおよびグリア細胞において〜１７ｋＤａのバンドも観察されたが、その信号はウエスタンブロット分析によって検出されたものと同様、一致せず、低レベルであった。陰性対照として、Ｈｕｈ７、ＨｅｐＧ２、およびＦＯＣＵＳ（Ｌｕｎらの、ＩｎＶｉｔｒｏ（Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ）２０：４９３−５０４（１９８４））ヒト肝細胞癌細胞株を同様の条件下で同時に試験し、それらの細胞溶解物中にＴｈ９免疫反応性タンパク質を検出しなかった。ＰＮＥＴおよびグリア細胞中に存在する糸状タンパク質の分子サイズは、³⁵Ｓ −メチオニンまたは³⁵Ｓ−システインによる代謝標識、次いでＴｈ９モノクローナル抗体を用いる免疫沈降によって最も顕著に証明された。デスミンまたはＢ型肝炎表面抗原（５Ｃ３）に対するモノクローナル抗体を免疫沈降の陰性対照として使用した。ＰＮＥＴおよびグリア細胞株において、〜２６および〜２１ｋＤａＴｈ９免疫反応性タンパク質が免疫沈降生成物のＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析によって検出された（図４、右図）。ＰＮＥＴ１細胞において、２１ｋＤａのバンドが二重に見えた（左図）；付随するわずかに高い分子量のバンドは〜２１ｋＤａの主バンドより大きくないようであった。さらに、ＰＮＥＴおよびグリア細胞株において、〜２１ｋＤａのバンドとほぼ同じ強度のバンドと関連する〜１７ｋＤａのＴｈ９免疫反応性タンパク質も認められた。Ｃ６細胞において、ＰＮＥＴ細胞では検出されない〜２６ｋＤａ、〜１４−１５ｋＤａ、および〜８ｋＤａのＴｈ９免疫反応性タンパク質も認められた（図４、矢印）。ＳＤＳ−ＰＡＧＥ／Ｍ−ＩＲＭＡから、２１ｋＤａならびに１７ｋＤａの糸状タンパク質はＳｈ−Ｓｙ５ｙ、ＰＮＥＴ１、Ａ１７２、ならびにＣ６細胞中には認められるが、肝細胞癌細胞中には認められないことが明らかとなった（図５）。ＳＤＳ−ＰＡＧＥによって分画化した細胞タンパク質を２ｍｍ間隔でスライスしたゲルから溶離し、Ｔｈ７＋Ｔｈ１０を捕捉抗体に、¹²⁵Ｉ標識Ｔｈ９をトレーサーに用いるＭ−ＩＲＭＡによって、糸状タンパク質を直接アッセイした。低レベルにもかかわらず、２つの明瞭なピークがすべての神経外胚葉細胞株に認められたが、同時に同じ方法でアッセイしたＨｕｈ７肝細胞癌細胞株には本ピークは認められなかった。これらゲルの解像度では、存在しているかもしれない〜１４−１５ｋＤａのタンパク質と〜１７ｋＤａのタンパク質を区別できなかった。ＰＮＥＴ１およびＣ６細胞を³²Ｐまたは³⁵Ｓメチオニンで代謝標識し、Ｔｈ９モノクローナル抗体を用いて糸状タンパク質を溶解物から免疫沈降させた（図６）。陰性対照として、細胞溶解物とデスミンに対するモノクローナル抗体を同じ割合で用いて免疫沈降試験を行った。（図６、右図）。³⁵Ｓメチオニンで標識した細胞において、Ｔｈ９免疫反応性バンドが、〜２６ｋＤａならびに〜２１ｋＤａ（上の矢印）、〜１７ｋＤａ（下の矢印）、および〜１４−１５ｋＤａにも検出された（図６）。³²Ｐ標識後に、２１ｋＤａのバンドのみがＴｈ９モノクローナル抗体による免疫沈降によって観察された；他の分子量のバンドはリン酸化されていないようであった（図６）。リン酸化したＴｈ９免疫反応性タンパク質はＣ６細胞において検出され、ＰＮＥＴ１細胞では検出されなかったが、これはＰＮＥＴ１細胞はＣ６細胞より増殖が遅いため標識効率が悪かったことによるのかも知れない。免疫沈降にデスミンに対するモノクローナル抗体を用いると、１４ｋＤａ〜２６ｋＤａの範囲のバンドは検出されなかった（図６）。Ｔｈ９免疫沈降タンパク質中に炭水化物成分は検出されなかった（データ示さず）。糸状タンパク質濃度は、ＰＮＥＴ１細胞のコンフルエント前（すなわち、対数増殖期中）の培養中において最高濃度を示し、一夜の血清欠乏培養（増殖停止）において最低濃度を示した（図７）。１００％コンフルエントとなった培養における糸状タンパク質の発現も、増殖期の培養に比べて低レベルであった。Ｈｕｈ７肝細胞癌細胞（陰性対照）についても同じ培養条件で同時に試験したが、糸状タンパク質レベルは全体を通じて低いままであった。驚くべきことに、これらの様々な条件下で培養したＰＮＥＴ細胞の糸状タンパク質免疫細胞化学染色の程度に変化が見られなかった。しかしながら、Ｍ−ＩＲＭＡ測定によって変化する糸状タンパク質レベルの程度は、免疫細胞化学によって検出不能であるように思われる。それにもかかわらず、血清の欠乏によって誘発された細胞糸状タンパク質含有量の減少は、細胞の表現型の変化と関連していた。細胞が１００％コンフルエントとなったとき、または細胞を一夜血清欠乏状態においた後において、細胞体の大きさは減少し、ニューロフィラメントタンパク質、ＧＡＰ−４３、およびＧＦＡＰに対する免疫反応性の程度ならびに分布の顕著な変化が認められた（図８）。５０％コンフルエントのＰＮＥＴ培養において、細胞はニューロフィラメントの斑点状ならびにしばしば極性分布、およびＧＡＰ−４３免疫反応性を示したが、１００％コンフルエントならびに血清欠乏ＰＮＥＴ培養では、ニューロフィラメントおよびＧＡＰ−４３に対するび慢性の核周囲部における免疫反応性が認められた。び慢性の免疫反応性は神経突起におけるニューロフィラメントおよびＧＡＰ−４３の分布と関連があるものと思われる。反対に、５０％コンフルエントＰＮＥＴ培養ではＧＦＡＰに対する免疫反応性がみられなかったが、１００％コンフルエントおよび血清欠乏培養にはＧＦＡＰ陽性細胞が顕著な割合で認められた。さらに、ＧＦＡＰ免疫反応性細胞の割合は、１００％コンフルエント血清欠乏培養において最も大きく、次いで１０％ウシ胎児血清添加培地による１００％コンフルエント培養が大きかった。したがって、一夜血清欠乏としたＰＮＥＴ細胞において測定された糸状タンパク質レベルの低下は、細胞のアストロサイト表現型への分化によるものであろうと思われる。Ｃ６細胞および他のグリオブラストーマ細胞株はＴｈ９モノクローナル抗体との強い免疫反応性を示したが、Ｍ−ＩＲＭＡによって測定した糸状タンパク質レベルはしばしば低く、これはおそらくＴｈ７およびＴＨ１０を含む他の糸状タンパク質抗体との免疫反応性が低レベルであることによるものであろう（図１を参照のこと）。実施例４ヒトｃＤＮＡライブラリーからの糸状タンパク質のクローニング１７〜１８週齢の胎児脳から作成したヒト脳ｃＤＮＡライブラリー（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ，Ｉｎｃ.，ＬａＪｏｌｌａ，ＣＡ）、２年齢の側頭葉新皮質（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）、及び最終段階のアルツハイマー病大脳皮質（ＩｎＶｉｔｒｏｇｅｎ；ＳａｎＤｉｅｇｏ，ＣＡ）をラットＰＴＰｃＤＮＡのヌクレオチド２３５〜６５０に対応する４１６ｂｐＤＮＡフラグメントから作成したプローブを用いてスクリーニングした。Ｏ１８と呼ばれるラットＰＴＰｃＤＮＡは、公表された配列のヌクレオチド４５〜１０４及び３４５〜４０４に対応する合成６０マー（量体）ＤＮＡプローブを用いてラット膵臓ｃＤＮＡライブラリーから単離した［テラゾノ（Terazono）ら，ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリー（J．Biol．Chem.），２６３巻，２１１１〜２１１４頁，（１９８８年）；ワタナベ（Watanabe）ら，ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリー（J．Biol．Chem.），２６５巻，７４３２〜７４３９頁，（１９９０年）］。各ライブラリー由来の約２×１０⁶のプラーク又はコロニーを標準的な方法［サンブルーク（Sambrook）ら，前掲参照］を用いるローストリンジェンシーハイブリダイゼーションでもってスクリーニングした。推定上のクローンをプラーク／コロニー精製し、ＤＮＡ挿入物をＴ７ポリメラーゼ（ＵＳＢシークエナーゼ；ＵｎｉｔｅｄＳｔａｔｅｓＢｉｏｃｈｅｍｉｃａｌＣｏｒｐ.，Ｃｌｅｖｅｌａｎｄ，ＯＨ）を用いるジデオキシヌクレオチドチェインターミネーション法により配列決定した。この配列をＧｅｎｅｂａｎｋデータベースと比較し、他の糸状タンパク質ｃＤＮＡの核酸配列とともに配列させた。１．ヒト胎児脳ライブラリーから単離されたＣＮＳ神経糸状タンパク質ｃＤＮＡ小断片のみが読み取り枠に対応し、残りは３’非翻訳領域に対応する１.３５キロベース（ｋｂ）の１−９ａＣＮＳ糸状タンパク質の部分的ｃＤＮＡを単離した（図９ａ）。さらなる１５０ヌクレオチドの配列を５’アンカーＰＣＲ増幅生成物から得た。２回目の５’アンカーＰＣＲ増幅によりさらに６００ｂｐ上流の生成物を得た（図９ｂ）。１−９ａｃＤＮＡ配列の部分はヒトＰＴＰｃＤＮＡの５’末端及びＲｅｇ遺伝子に有意の相同性を共有している（図１０ａ）。さらに、始めの５’アンカーＰＣＲ増幅生成物はＲｅｇ遺伝子の５’末端と６０％の相同性を有し、ヒトＲｅｇ遺伝子のエクソン２と６３％の相同性を有している（図１０ｂ）。さらに、１−９ａｃＤＮＡの５９０ｂｐの５’末端フラグメントから作成したプローブをヒト脳及び膵臓ｍＲＮＡとハイブリダイズさせた（図１２）。１−９ａ配列はまた、これらの完全な配列の一方の末端においてオーバーラップがかなりあるという点においてＡＤ２−２及びＡＤ３−４ｃＤＮＡと相同でもある（図１０ｃ）。２．２年齢の側頭皮質ライブラリーから単離したＣＮＳ神経糸状タンパク質ｃＤＮＡＨＢ４クローンは２年齢の側頭皮質ライブラリーから単離した５９３塩基対の部分的ｃＤＮＡである。このｃＤＮＡは５’末端に読み取り枠を含みヌクレオチド２７５で終結している。ヌクレオチド４７５で始まるポリアデニル化シグナルがありこの配列はポリ−Ａテールで終わる（図１１ａ）。部分的ＨＢ４クローンの推論されるアミノ酸配列は、分子量１０.４ｋＤａでｐＩが１２.１のタンパクを予言する。ＨＢ４ｃＤＮＡはヒトＰＴＰｃＤＮＡ（図１１ｂ）、ヒトＲｅｇ遺伝子断片（図１１ｃ）と核酸全体で５０％の相同性を示す。３．アルツハイマー病ライブラリー由来の神経糸状タンパク質ｃＤＮＡの単離Ｏ１８ラットＰＴＰｃＤＮＡプローブを用いて４つの関連するｃＤＮＡをＡＤ脳ライブラリーから単離した。これらのクローンはＡＤ２−２、ＡＤ３−４、ＡＤ４−４及びＡＤ１６ｃ（ＡＤ１０−７とも呼ばれる）と命名されている（図１６ａ−１６１）。ＡＤ２−２ｃＤＮＡはおよそ１．２ｋｂであり、１−９ａｃＤＮＡ、ＡＤ１６ｃ、ラットＰＴＰｃＤＮＡ及びヒトＲｅｇ遺伝子のエクソン１と有意の相同性を共有している（図１７）。ＡＤ２−２プローブはＡＤ３−４プローブで得られるのと同様のゲノムサザンブロットパターンを生じる。図１６ｂはＡＤ脳ライブラリーから単離されたＡＤ２−２ｃＤＮＡクローンの完全なヌクレオチド配列を示す。ランダムプライマーは膵臓ＲＮＡを有するグリアセルライン（細胞株）とはハイブリダイズしないがヒト脳及びニューロン試料とハイブリダイズするこの配列に基づいてプローブを生じる。図１６ｃ、１６ｄ、１６ｅ及び１６ｆはＡＤ脳ライブラリーから単離されたＡＤ３−４ｃＤＮＡクローンの部分的なヌクレオチド配列を示している。ランダムプライマーで生じたＡＤ３−４プローブは、１．６ｋＢ及び３．４ｋＢの２つのｍＲＮＡ転写物を生じた。これらのｍＲＮＡの種はＡＤ脳において過剰に発現し、同年齢の対照と比較すると平均で２倍上昇する（Ｎ＝８）。ＡＤ３−４ｃＤＮＡ１.６ｋｂクローンは同時に単離された別のクローン（ＡＤ５−３）と同一である（図１８ａ）。ＡＤ３−４／ＡＤ５−３ｃＤＮＡは１− ９ａ５’アンカーＰＣＲ生成物と実質的な相同性を示し（図１８ｂ）、同様にヒトＲｅｇ遺伝子及びＧｅｎ２ａ−ＥＰゲノムクローンと実質的な相同性を示す（図１８ｃ）。ＡＤ３−４プローブによるヒトゲノムＤＮＡのサザンブロット分析はＡＤ２−２プローブにより得られたものと同様のパターンを示した。図１６ｇ及び１６ｈはＡＤ４−４の部分的ヌクレオチド配列を示し、これは同時に単離された別のｃＤＮＡ（ＡＤ３−５）と同一である０.８ｋｂの部分的ｃＤＮＡクローンである。このＡＤ４−４クローンはＡＤ２−２及び１−９ａｃＤＮＡと実質的に相同な配列を共有している（図１９）。図１６ｉはＡＤ脳ライブラリーから単離された部分的なｃＤＮＡクローンの完全なヌクレオチド配列を示している。このｃＤＮＡは脳及びニューロンセルラインｍＲＮＡとハイブリダイズし、１.４ｋＢの転写物を単独で生じた。図１６ｊは、ＡＤ２−２と７２％相同である０.５ｋｂの部分的なｃＤＮＡクローンＡＤ１６ｃ（ＡＤ１０−７とも呼ばれる）のヌクレオチド配列を示しており、これもまたヒトＰＴＰ及びヒトＲｅｇ遺伝子配列とともに並んでいる（図２０ａ及びｂ）。図１６ｋはＡＤ脳ライブラリーから単離されたＡＤ１０−７クローンの完全なヌクレオチド配列を示している。アンチセンスｃＲＮＡプローブ又はＤＮＡプローブを生じるランダムプライマーのいずれかを用いるノーザンブロットのハイブリダイゼーションは、ニューロン細胞において２．６、１.９、１.４及び０.９ｋＢのｍＲＮＡ転写物を検出した。ニューロンセルラインは最も大きい２つの転写物のみを発現し、一方成熟した成人のヒトの脳は最も小さい２つの転写物を主に発現し、低いレベルか又は検出不可能なレベルの２.６ｋＢ及び1.９ｋＢの転写物を発現した。ヒトの肝臓、卵巣、ファローピウス管、結腸、胃、脾臓、直腸、甲状腺、１２週目の胎盤及び腎臓から得られたＲＮＡのＡＤ１０−７プローブを用いるノーザンブロット分析はネガティブであった。図１６１はＡＤ脳ライブラリーから単離されたＡＤ１６ｃｃＤＮＡクローンの完全なヌクレオチド配列を示している。ＤＮＡプローブを生じるランダムプライマーを用いるノーザンブロットのハイブリダイゼーションからＡＤ１０−７クローンで得られた結果と同じ結果を得た。ＡＤ１６ｃクローンはＡＤ１０−７と同一に近い６５０ｂｐの断片を共有している。さらにノーザンブロット分析により年齢対照脳と比較してＡＤ１６ｃｍＲＮＡのレベルの上昇がＡＤ脳において検出された。実施例５脳糸状タンパク質遺伝子発現の分析糸状タンパク質ｍＲＮＡ発現は以下の神経外胚葉腫瘍誘導セルラインにおいて試験した；ＰＮＥＴ１及びＰＮＥＴ２と命名されている中枢神経系初期神経外胚葉腫瘍細胞;ＨＧＬ−１６及びＨＧＬ−１７ヒトグリア芽腫細胞；Ａ１７２ヒトグリオーム細胞；Ｃ６ラットグリオーム細胞；及びＳＨ−Ｓｙ５ｙ神経芽腫細胞。さらにアルツハイマー病の患者又は神経学的疾病のない患者（年齢対照）由来のヒト脳組織、及び胚の及び生後発達するラット脳を糸状タンパク質ｍＲＮＡ発現について分析した。ヒト及びラット膵臓から抽出したＲＮＡはポジティブな対照として用いた。ＲＮＡは５Ｍグアジニウムイソシアナート中で抽出し、次いで塩化セシウムのステップグラジェントで遠心分離することにより単離した［サンブルーク（Sa mbrook）ら，前掲参照］。ＲＮＡを２６０ｎｍ及び２８０ｎｍの吸収を測定することにより定量した。糸状タンパク質ｍＲＮＡ転写物の大きさをノーザンブロット分析により分析し、発現のレベルをＲＮＡドットブロットハイブリダイゼーションにより評価した。ノーザンブロット分析は細胞全ＲＮＡ１５μｇを含む試料を１％アガロース−ホルムアルデヒドゲルで電気泳動することにより行った。ＲＮＡをナイロン膜に移し、紫外線で架橋させて１−９ａｃＤＮＡクローンの６００ｂｐフラグメントから作成したプローブとハイブリダイズさせた。ハイブリダイゼーション実験で用いたフラグメントはヒトＰＴＰｃＤＮＡと最も相同な領域を含んでいる。プローブはランダムプライマー法（ＡｍｅｒｓｈａｍＣｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ；ＡｒｌｉｎｇｔｏｎＨｅｉｇｈｔｓ，ＩＬ）により［³² Ｐ］α−ｄＣＴＰで標識した。ブロットは５０％ホルムアミド、５×ＳＳＰＥ、１０×Ｄｅｎｈａｒｄｔ’ｓ（１００×Ｄｅｎｈａｒｄｔ’ｓは２％フィコール、２％ウシ血清アルブミン、２％ポリビニルピロリジンである）、０.５％ＳＤＳ（ドデシル硫酸ナトリウム）、及び１００μｇ／ｍｌのせん断し失活させたサケの精子ＤＮＡを含む緩衝液中、２×１０⁶ｄｐｍ／ｍｌのプローブでもって４２℃で一晩ハイブリダイズさせた。膜を標準的な方法を用いて０.２５％ＳＤＳを含むＳＳＰＥ中で洗浄した。オートラジオグラムは膜を−８０℃にてＫｏｄａｋＸＡＲフィルムにさらすことによって作成した。続いて膜からプローブを除いた後、１８ｓＲＮＡに対応する合成３０マーと再度ハイブリダイズさせて試料のローディングを評価した。１−９ａｃＤＮＡから作成されたプローブを用いる全細胞ＲＮＡのノーザン分析により中枢神経系（ＣＮＳ）腫瘍セルラインにおける２つの主要な転写物が現れた。転写物の１つは１.６ｋｂで他方は０.９ｋｂであった（図１２Ａ）。さらに、ＳＨ−Ｓｙ５ｙ神経芽腫及びＰＥＮＥＴ１セルラインにおいてはより大きい４.２ｋｂのｍＲＮＡ転写物も検出された。４.２ｋｂの転写物は前処理されたｍＲＮＡを示すのかもしれない。同じ大きさの転写物が成体（Ｒ.Ｂｒａｉｎ）及び新生（ＮＢ）ラットにおいて検出されたが０.９ｋｂの転写物は成体の脳においてより多く、一方、１.６ｋｂの転写物は新生ラットの脳においてより多かった。ラット膵臓（Ｒ.Ｐａｎｃ.）においては０.９ｋＢの転写物のみが検出され、これはラットＰＴＰｍＲＮＡの大きさに相当する［テラゾノ（Terazono）ら，ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリー（J．Biol．Chem.），２６３巻，２１１１〜２１１４頁，（１９８８年）；ワタナベ（Watanabe）ら，ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリー（J．Biol．Chem.），２６５巻，７４３２〜７４３９頁，（１９９０年）］。ｍＲＮＡ転写物は正常な肝臓からは検出されなかった（ＮｌＬｉｖｅｒ）。１−９ａｃＤＮＡの３’領域から作成したプローブを用いると、０.９ｋｂの転写物ではなく１.６ｋｂの転写物が現れた（図１２ｂ）。５’最末端の１−９ａｃＤＮＡに対応する３０マーのプローブを用いるとより高い分子量のｍＲＮＡ転写物が検出された（図１２ｃ）。０ .９ｋｂの転写物もブロットをより長く露出させると明らかになった。ヒト脳ＲＮＡのノーザン分析によって主に１.６ｋｂの転写物が現れたが、１. ２ｋｂ、０.９ｋｂ及び０.８ｋｂの２つの、時には３つのより小さな転写物も現れた（図１３下）。セルラインにおける結果とは対照的に４.２ｋｂのｍＲＮＡ転写物は成人のヒト脳においてまれにしか観察されなかった。ヒト膵臓とのハイブリダイゼーションにより０.８ｋｂの転写物が現れ、これはＰＴＰｍＲＮＡの大きさに相当する。１−９ａプローブを用いてヒト脳及び膵臓において検出された転写物は、ＰＴＰｃＤＮＡプローブを用いて観察された転写物の大きさと同一であった。１−９ａｃＤＮＡ（ＮＴＰ）の６００ｂｐフラグメントを用いる全ＲＮＡ５ μｇへのドットブロットＲＮＡハイブリダイゼーションは年齢対照脳と比較してＡＤにおける高いレベルの発現を示した（図１３、上）。β−アクチンに対応するｃＤＮＡによる同じ膜の再度のハイブリダイゼーションは各ドットにおいて同様のＲＮＡのローディングを示した。ＡＤ脳組織内における１−９ａ関連ｍＲＮＡレベルの上昇が観察されたことは、ヒトＰＴＰｃＤＮＡに対応する６０マーのプローブを用いて、すでに報告されたものと同様である［デ・ラ・モンテ（de l a Monte）ら，ジャーナル・オブ・クリニカル・インベスティゲーション（J．Cl in．Invest.），８６巻，１００４〜１０１３頁，（1９９０年）］。ＡＤと対照脳の間の違いは、図１３に示したように１.６ｋｂ、０.９ｋｂ及び０.８ｋｂの転写物のレベルの違いによるようである。ＡＤライブラリーから単離されたＡＤ−ＮＴＰ３−４ｃＤＮＡはニューロン由来神経外胚葉腫瘍セルライン及びヒト脳組織からのＲＮＡとハイブリダイズする。このセルラインにおいて、１−９ａプローブを用いて認められる１.６ｋｂ及び０.９ｋｂの転写物が検出された（図２１ｃ）。しかし、ヒト脳においては約４ｋｂ、１.６ｋｂ、及び０.９ｋｂの転写物が検出され、３つの転写物すべての発現のレベルは年齢対照脳と比較するとＡＤにおいてより高かった（図２１ｄ）。ＡＤ４−４ｃＤＮＡプローブは０.９ｋｂの転写物のみと、しかもニューロンセルラインのみにおいてハイブリダイズした。実施例６神経外胚葉腫瘍セルライン及びアルツハイマー病脳由来の糸状タンパク質ｃＤＮＡの直接クローニング及びシークエンシング糸状タンパク質ｃＤＮＡは、ＰＮＥＴ１、ＰＮＥＴ２、ＳＨ−Ｓｙ５ｙ、及びＡ１７２細胞、及びアルツハイマー病及び年齢対照脳由来のＲＮＡから、３'− 及び５'−ＲＡＣＥ法を用いて直接クローニングした［フローマン（Frohman）ら，プロシーディング・ナショナル・アカデミー・オブ・サイエンセス・ＵＳＡ（ Proc．Natl．Acad．Sci．USA），８５巻，８９９８頁，（１９８８年）；オオハラ（Ohara）ら，プロシーディング・ナショナル・アカデミー・オブ・サイエンセス・ＵＳＡ（Proc．Natl．Acad．Sci．USA），８６巻，５６７３頁，（１９８９年）；ロー（Loh）ら，サイエンス（Science），２４３巻，２１７頁，（１９８９年）］。要するに、ＲＮＡはオリゴ−ｄＴプライマーを用いて逆転写した。５'−ＲＡＣＥ反応についてはｃＤＮＡは１−９ａ配列の５'−領域に対応する特異的な１７マー及び１７ｄＴプライマーを用いるポリメラーゼチェイン反応（ＰＣＲ）によってｃＤＮＡを増幅した。得られたＰＣＲ生成物は、別の内部の、しかし重複している５'−末端プライマー、及び１−９ａ配列の３'−領域に対応する特異的な３'−１７マーを用いて別の増幅に付した。３'−ＲＡＣＥ反応についてはｃＤＮＡは最初にターミナルデオキシヌクレオチドトランスフェラーゼを用いてｄＣＴＰでテイリングし、次いで、１−９ａクローンのヌクレオチド７８１〜７９７に対応する特異的１７マー及びｄＧ（１７マー）を用いて増幅した。２回目のＰＣＲ増幅は３'末端のヌクレオチド７６６〜７９２に対応する特異的１７マー及び５'末端についてはｄＧＴＰ（１７マー）を用いて行った。ＰＣＲ生成物は１−９ａｃＤＮＡクローンの内部のＤＮＡフラグメント及びＯ１８ラットＰＴＰｃＤＮＡクローンから作成したプローブを用いるサザンブロット分析に付した。ＰＣＲ生成物はゲル精製し、ウラシルデオキシトランスフェラーゼを用いてｐＡｍｐｌベクターに結合させた。サブクローンしたＤＮＡ挿入物をＴ７ＤＮＡポリメラーゼを用いるデオキシヌクレオチドチェインターミネーション法により配列させた。ＣＮＳ糸状タンパク質転写物は、逆転写とそれに続く１−９ａｃＤＮＡ配列の５'及び３'領域に対応する特異的なプライマーを用いるＰＣＲによって神経外胚葉腫瘍セルライン及びヒトＡＤ脳組織において検出された。ＰＣＲ精製物のサザンブロット分析は、０.８ｋｂ及び１.０ｋｂの主に２つのクロスハイブリダイズしたものを示した（図１４ａ及び１４ｂ）。さらに、ＳＨ−Ｓｙ５ｙ細胞においてはより大きな１.８ｋｂのＰＣＲ生成物も検出された。ＰＮＥＴ１、ＰＮＥＴ２、ＳＨ−Ｓｙ５ｙ、及びＡ１７２細胞においては１−９ａプローブとハイブリダイズする０.４ｋｂのＰＣＲ生成物が観察された。アルツハイマー病脳における糸状タンパク質ｍＲＮＡのより高いレベルに対応して、ＡＤ試料におけるハイブリダイゼーションシグナルは年齢対照試料と比較するとより強かった。ＳＨ−Ｓｙ５ｙ細胞から生成したＰＣＲ生成物をサブクローンし配列決定した。クローンしたフラグメントのサザンブロット分析により１−９ａｃＤＮＡとの強いハイブリダイゼーションが示され、Ｏ１８ｃＤＮＡとは弱いが明確なハイブリダイゼーションを示した（ラットＰＴＰ）（図１４ｃ）。ＳＨ−Ｓｙ５ｙＰＣＲクローン（Ｓｙ−ＮＴＰ）の核酸配列は１−９ａｃＤＮＡ配列と同一であった。実施例７ヒト脳糸状タンパク質をコードするゲノムクローンの単離ヒトゲノムＤＮＡライブラリーを２年齢の側頭皮質ライブラリーから単離した１−９ａヒト脳糸状タンパク質ｃＤＮＡの６００ｂｐフラグメントで作成したプローブを用いてスクリーニングした。１−９ａｃＤＮＡフラグメントはヒトＰＴＰと６０％の核酸配列が相同である領域を含んでいた。コロニー精製の後、推定上のゲノムクローンはＯ１８ラットＰＴＰｃＤＮＡフラグメントとのクロスハイブリダイゼーションにつきチェックした。１−９ａ及びＯ１８プローブの両方とハイブリダイズするＥｃｏＲＩ、ＰｓｔＩ、及びＥｃｏＲＩ／ＰｓｔＩ制限フラグメントをｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ，Ｉｎｃ．Ｍａｄｉｓｏｎ，ＷＩ）にサブクローンし、次いでＴ７ポリメラーゼ（ＵＳＢシークエナーゼ）又はポリメラーゼチェイン反応増幅及びＶｅｎｔポリメラーゼのいずれかを用いるデオキシヌクレオチドチェインターミネーション法によって配列決定した。Ｇ２−２ＰｓｔＩ、Ｇ２−２ＰｓｔＩ−ＥｃｏＲＩ、Ｇ５ｄ−１ＰｓｔＩ、及びＧ５ｄ−１ＰｓｔＩ−ＥｃｏＲＩと命名された４つのゲノムフラグメントをヒトゲノムＤＮＡライブラリーから単離した（図２２ａ〜２２ｄ）。これらのゲノムフラグメントはすべて１−９ａとＯ１８ｃＤＮＡプローブの両方とハイブリダイズし、それらは１.５ｋｂから３ｋｂの範囲の大きさである。部分的な核酸配列の情報は、Ｇ２−２ＰｓｔＩとヒトＲｅｇ遺伝子、及びヒト及びラットＰＴＰｃＤＮＡとの間（図２３ａ）；Ｇ２−２ＰｓｔＩ−ＥｃｏＲＩと両方のＲｅｇ遺伝子、及びラットＰＴＰｃＤＮＡとの間（図２３ｂ）、またＡＤ２−２、ＡＤ３ −４及び１−９ａｃＤＮＡ（データなし）との間；Ｇ５ｄ−１ＰｓｔＩとＲｅｇ遺伝子、及びヒトＰＴＰとの間（図２３ｃ）；及びＧ５ｄ−１ＰｓｔＩ−ＥｃｏＲＩとＲｅｇ遺伝子、ヒトＰＴＰ、１−９ａ、及びＡＤ４−４との間の相同性を示している。実施例８ＬａｃＺ融合タンパクのインビトロ発現及び糸状タンパク質に対する関連性の実証１−９ａｃＤＮＡクローンを含むバクテリア内の融合タンパクの発現、又は４つのゲノムクローンの内の１つを標準的な方法（Sambrookら，前掲）を用いてイソプロピルチオ−β−Ｄ−ガラクトシド（ＩＰＴＧ）で誘導した。誘導された又は誘導されなかった培養細胞からの未精製のバクテリアのリゼイト（溶解物）をＳＤＳ−ＰＡＧＥ、糸状タンパク質に対するＴｈ９モノクローナル抗体［ササキ（Sasaki）ら，ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリー（J．Biol. Chem.），２６８巻，１〜４頁，（１９９３年）］及び¹²⁵Ｉで標識されたタンパクＡを用いるウエスタンブロット分析に付し、結合した抗体を検出した。さらに、クローンしたＤＮＡを含んでいるバクテリアの菌叢を、ＩＰＴＧで融合タンパクを発現させるために誘導し、レプリカフィルターをＴｈ９モノクローナル抗体、次いで¹²⁵Ｉ標識タンパクＡで直接プローブした。糸状タンパク質の免疫反応性は、ＩＰＴＧを誘導したコロニーへの抗体の直接の結合によってバクテリア融合タンパクにおいて示された（図２４）。糸状タンパク質の免疫反応性はＰＴＰに対するＴｈ９、Ｔｈ７、及びＴｈ１０モノクローナル抗体のカクテル［ササキ（Sasaki）ら，ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリー（J．Biol．Chem.），２６８巻，１〜４頁，（１９９３年）］、及び¹²⁵Ｉで標識されたタンパクＡを用いて検出した。実施例９ＡＤ及び年齢対照脳におけるＡＤ１６ｃｍＲＮＡの相対レベルノーザンブロット分析をＡＤ１６ｃＤＮＡプローブを用いて行った。ブロットは再度プローブして１８ｓリボソームＲＮＡを検出し、各レーン中のＲＮＡのローディングを評価した。不飽和（ｕｎｓａｔｕｒａｔｅｄ）のオートラジオグラムをＭｏｌｅｃｕｌａｒＤｙｎａｍｉｃｓＩｍａｇｅＡｎａｌｙｚｅｒを用いる濃度分析に付した。ＡＤ１６ｃ及び１８ｓＲＮＡハイブリダイゼーションシグナルの比率をそれぞれの場合についてプロットし、結果を図２５にグラフで示した。平均の比率（ＡＤ１６ｃの相対レベル）を標準誤差とともに小さい右側のグラフに示した。結果は、年齢を一致させた対照が６の内１つであることと比較してＡＤ脳は９の内６つにＡＤ１６ｃｍＲＮＡ発現のレベルが上昇していることを確認した。平均レベルの違いは統計学的に高い有意性がある（Ｐ＜０. ００５）。同様の結果がＡＤ１０−７プローブを用いて得られた。これらの結果は、対照脳と比較してＡＤ脳における発現レベルにおいて統計学的に有意な上昇があることを示している。実施例１０組み換えＡＤ１０−７融合タンパクの調製及びモノクローナル抗体によるそれらの検出ＡＤ１０−７ｃＤＮＡを３つの異なる読み取り枠内（２つは不正確なＡ及びＢ、そして正確なＣ）でｐＴｒｃＨＩＳベクター（ＩｎＶｉｔｒｏｇｅｎ，ＳａｎＤｉｅｇｏ）に結合した。３つのプラスミドの内の１つで形質転換したバクテリアをＩＰＴＧで誘導し、バクテリアのリゼイトをタンパクの発現について０、１及び５時間後に試験した。タンパクをＳＤＳ−ＰＡＧＥで分画し、ウエスタンブロット分析を発現した標識タンパクに対するモノクローナル抗体（Ｔ７−標識マウスモノクローナル抗体；Ｎｏｖｏｇｅｎ）を用いて行った。ブロットはアビジン−ビオチン、色原体としてジアミノベンジジンを用いるセイヨウワサビペルオキシダーゼ法で展開した（図２６）。約４５ｋＤＡに相当するバンドをＡＤ１０−７が正確な読み取り枠（Ｃ）にのみ結合しているプラスミドＤＮＡで形質転換したバクテリア内に検出した（矢印）。同じ大きさのタンパクがウサギ網状赤血球リゼイト分析系においてインビトロのＡＤ１０−７ｃＤＮＡの翻訳によって観察された。両方の系において融合相手のペプチドは約３ｋＤＡであり、約４２ｋＤＡのタンパクをコードするｃＤＮＡであることを示している。約４２ｋＤＡのＮＰＴ種はニューロンセルライン及びヒト脳組織のウエスタンブロット分析によって通常どおり検出される。実施例１１インシトゥハイブリダイゼーションによるＡＤ１０−７ｍＲＮＡ発現のニューロンの局在化の実証センス及びアンチセンスｃＲＮＡプローブはＳＰ６又はＴ７ＤＮＡ依存性ＲＮＡポリメラーゼを用いて直線化したＡＤ１０−７プラスミドＤＮＡからそれぞれ作成した。アンチセンスプローブはこのクローンについて前記したようにニューロンセルラインｍＲＮＡとハイブリダイズした。一方、ｃＲＮＡセンスプローブはノーザンブロット分析ではＲＮＡとハイブリダイズしなかった。ジゴキシゲニン−ＵＴＰで標識されたｃＲＮＡプローブは初期のＡＤ由来のヒト脳組織断片とハイブリダイズした。この断片をよく洗浄した後［デ・ラ・モンテ（de la Mont e）ら，ジャーナル・オブ・クリニカル・インベスティゲーション（J．Clin．In vest.），８６巻，１００４〜１０１３頁，（１９９０年）］ハイブリダイズしたプローブを、ペルオキシダーゼ又はアルカリホスファターゼを抱合したジゴキシゲニンに対するモノクローナル抗体を用いて検出し、標準的な方法を用いて比色反応した。明視野及び暗視野顕微鏡による断片の試験はニューロンにおいてのみＡＤ１０−７のハイブリダイゼーションが示された（図２７；（Ａ）の細胞体上の白い粒子の集塊）。対照的に、ノーザンブロット分析による結果と同様にセンスＡＤ１０−７ｃＲＮＡプローブは脳組織（Ｂ）とハイブリダイズしなかった。前記の記載は特定の好ましい態様であるけれども、本発明がそのように制限されないことは理解されるであろう。当業者は様々な変更をして開示された態様になし得ることを想到し得るが、そのような態様は本発明の範囲内にあり、本発明は以下の請求の範囲によって定義される。本明細書中で記載したすべての出版物及び特許出願は本発明に属する技術分野における技術レベルを表す。すべての出版物及び特許出願は、それぞれの出版物又は特許出願がそれらの全内容において引用されるものとして特別にそして個別に示されるのと同程度に参考のために引用される。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁶ 識別記号庁内整理番号ＦＩＡ６１Ｋ 51/00 8615−4ＣＣ０７Ｈ 21/04 ＢＣ０７Ｈ 21/04 8517−4ＨＣ０７Ｋ 14/435 Ｃ０７Ｋ 14/435 8828−4ＢＣ１２Ｎ 1/21 Ｃ１２Ｎ 1/21 9452−4ＢＣ１２Ｐ 21/02 Ｃ 5/10 9453−4ＢＣ１２Ｑ 1/68 Ａ 15/09 ＺＮＡ 8310−2ＪＧ０１Ｎ 33/577 ＢＣ１２Ｐ 21/02 7431−4ＣＡ６１Ｋ 49/02 ＡＣ１２Ｑ 1/68 9162−4ＢＣ１２Ｎ 15/00 ＺＮＡＡＧ０１Ｎ 33/577 9281−4Ｂ 5/00 Ｂ (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＵ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＮ，ＣＺ，ＦＩ，ＧＥ，ＨＵ，ＪＰ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＫ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＮ，ＭＷ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＪ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＺ，ＶＮ

Claims

【特許請求の範囲】１．ヒトの対象中の、約８kDa、約１４kDa、約１７kDa、約２１kDa、約２６kDa、又は約４２kDaの分子量を有する神経糸状タンパク質（ＮＴＰ）の存在を検出する方法であって、（ａ）該ＮＴＰを含有している恐れのある該ヒトの対象からの生物学的サンプルと、該タンパク質が結合できる少なくとも１つの分子とを接触させ、次いで、（ｂ）該タンパク質に結合した該分子を検出することを包含する方法。２．該分子が（ａ）天然の不純物を実質上含有しない抗体（ｂ）モノクローナル抗体（ｃ）（ａ）又は（ｂ）のフラグメントからなる群から選択される請求項１に記載の方法。３．該生物学的サンプルと該分子とを接触させる前に、該ヒトの対象から該生物学的サンプルを取り出す請求項１に記載の方法。４．該タンパク質が結合した該分子の検出が、インシトゥ系影像化により行われる請求項１に記載の方法。５．該タンパク質が結合した該分子の検出が、インビトロ系影像化により行われる請求項１に記載の方法。６．該分子を該ヒトの対象に投与する請求項１に記載の方法。７．該分子が該タンパク質に、インビボ系において結合する請求項１に記載の方法。８．アルツハイマー病に罹患している疑いのあるヒトの対象におけるアルツハイマー病の存在を診断する方法であって、（ａ）約８kDa、約１４kDa、約１７kDa、約２１kDa、約２６kDa、又は約４２kDaの分子量を有するＮＴＰを含有している恐れのある該対象からの生物学的サンプルを、該ＮＴＰを同定できる、少なくとも１つの結合分子の存在下にインキュベーションすること；次いで、（ｂ）該サンプル中において結合した該結合分子を検出することを包含し、該検出は該対象がアルツハイマー病に罹患していることを示すものである診断方法。９．該検出が免疫測定アッセイによる請求項８に記載の診断方法。１０．該免疫測定アッセイがモノクローナル抗体に基づいた免疫測定アッセイである請求項９に記載の診断方法。１１．（ａ）固相支持体に結合した２つの異なるＮＴＰモノクローナル抗体と共に該生物学的サンプルをインキュベーションすること；次いで、（ｂ）溶液中、第３の異なる検出可能に標識化されたＮＴＰモノクローナル抗体を用いて、該モノクローナル抗体が結合したＮＴＰを検出することを包含する請求項８に記載の診断方法。１２．該インキュベーション段階が、既知量の標識化された神経糸状タンパク質を加え、それによって競合的免疫アッセイを確立することをさらに包含する請求項８に記載の診断方法。１３．該標識が放射能力のある放射線である請求項１２に記載の診断方法。１４．該標識が¹²⁵Ｉである請求項１３に記載の診断方法。１５．該検出が免疫ポリメラーゼ連鎖反応による請求項８に記載の診断方法。１６．神経外胚葉の腫瘍に罹患している疑いのあるヒトの対象における神経外胚葉の腫瘍の存在を診断する方法であって、（ａ）約８kDa、約１４kDa、約１７kDa、約２１kDa、約２６kDa、又は約４２kDaの分子量を有するＮＴＰを含有している恐れのある該対象からの生物学的サンプルを、該ＮＴＰを同定できる、少なくとも１つの結合分子の存在下にインキュベーションし、次いで、（ｂ）該サンプル中において結合した該結合分子を検出することを包含し、該検出は該対象が神経外胚葉の腫瘍に罹患していることを示すものである診断方法。１７．該検出が免疫測定アッセイによる請求項１６に記載の診断方法。１８．該免疫測定アッセイがモノクローナル抗体に基づいた免疫測定アッセイである請求項１７に記載の診断方法。１９．（ａ）固相支持体に結合した２つの異なるＮＴＰモノクローナル抗体と共に該生物学的サンプルをインキュベーションし、次いで、（ｂ）溶液中、第３の異なる検出可能に標識化されたＮＴＰモノクローナル抗体を用いて、該モノクローナル抗体が結合したＮＴＰを検出することを包含する請求項１６に記載の診断方法。２０．該インキュベーション段階が、既知量の標識化されたＮＴＰを加え、それによって競合的免疫アッセイを確立することをさらに包含する請求項１６に記載の診断方法。２１．該標識が放射能力のある放射線である請求項２０に記載の診断方法。２２．該標識が¹²⁵Ｉである請求項２１に記載の診断方法。２３．該検出が免疫ポリメラーゼ連鎖反応による請求項１６に記載の診断方法。２４．悪性の星状細胞腫に罹患している疑いのあるヒトの対象における神経外胚葉の腫瘍の存在を診断する方法であって、（ａ）約８kDa、約１４kDa、約１７kDa、約２１kDa、約２６kDa、又は約４２kDaの分子量を有するＮＴＰを含有している恐れのある該対象からの生物学的サンプルを、該ＮＴＰを同定できる、少なくとも１つの結合分子の存在下にインキュベーションし、次いで、（ｂ）該サンプル中において結合した該結合分子を検出することを包含し、該検出は該対象が悪性の星状細胞腫に罹患していることを示すものである診断方法。２５．該検出が免疫測定アッセイによる請求項２４に記載の診断方法。２６．該免疫測定アッセイがモノクローナル抗体に基づいた免疫測定アッセイである請求項２５に記載の診断方法。２７．（ａ）固相支持体に結合した２つの異なるＮＴＰモノクローナル抗体と共に該生物学的サンプルをインキュベーションすること；次いで、（ｂ）溶液中、第３の異なる検出可能に標識化されたＮＴＰモノクローナル抗体を用いて、該モノクローナル抗体が結合したＮＴＰを検出することを包含する請求項２４に記載の診断方法。２８．該インキュベーション段階が、既知量の標識化されたＮＴＰを加え、それによって競合的免疫アッセイを確立することをさらに包含する請求項２４に記載の診断方法。２９．該標識が放射能力のある放射線である請求項２８に記載の診断方法。３０．該標識が¹²⁵Ｉである請求項２９に記載の診断方法。３１．該検出が免疫ポリメラーゼ連鎖反応による請求項２４に記載の診断方法。３２．多形性神経グリア芽腫に罹患している疑いのあるヒトの対象における多形性神経グリア芽瘍の存在を診断する方法であって、（ａ）約８kDa、約１４kDa、約１７kDa、約２１kDa、約２６kDa、又は約４２kDaの分子量を有するＮＴＰを含有している恐れのある該対象からの生物学的サンプルを、該ＮＴＰを同定できる、少なくとも１つの結合分子の存在下にインキュベーションし、次いで、（ｂ）該サンプル中において結合した該結合分子を検出することを包含し、該検出は該対象が多形性神経グリア芽腫に罹患していることを示すものである診断方法。３３．該検出が免疫測定アッセイによる請求項３２に記載の診断方法。３４．該免疫測定アッセイがモノクローナル抗体に基づいた免疫測定アッセイである請求項３３に記載の診断方法。３５．（ａ）固相支持体に結合した２つの異なるＮＴＰモノクローナル抗体と共に該生物学的サンプルをインキュベーションし、次いで、（ｂ）溶液中、第３の異なる検出可能に標識化されたＮＴＰモノクローナル抗体を用いて、該モノクローナル抗体が結合したＮＴＰを検出することを包含する請求項３２に記載の診断方法。３６．該インキュベーション段階が、既知量の標識化されたＮＴＰを加え、それによって競合的免疫アッセイを確立することをさらに包含する請求項３２に記載の診断方法。３７．該標識が放射能力のある放射線である請求項３６に記載の診断方法。３８．該標識が¹²⁵Ｉである請求項３７に記載の診断方法。３９．該検出が免疫ポリメラーゼ連鎖反応による請求項３２に記載の診断方法。４０．実質上、天然の不純物を含有せず、分子量約４２kDaのＮＴＰ。４１．実質上、天然の不純物を含有せず、分子量約２６kDaのＮＴＰ。４２．実質上、天然の不純物を含有せず、分子量約２１kDaのＮＴＰ。４３．実質上、天然の不純物を含有せず、分子量約１７kDaのＮＴＰ。４４．実質上、天然の不純物を含有せず、分子量約１４kDaのＮＴＰ。４５．実質上、天然の不純物を含有せず、分子量約８kDaのＮＴＰ。４６．約８kDa、約１４kDa、約１７kDa、約２１kDa、約２６kDa又は約４２k Daの分子量を有するＮＴＰをコードしている遺伝子配列を含有する組換えＤＮＡ分子。４７．該ＮＴＰがヒトのＮＴＰである請求項４６に記載のＤＮＡ分子。４８．プラスミドである請求項４６に記載のＤＮＡ分子。４９．請求項４８に記載のプラスミドを用いて形質転換された宿主。５０．請求項４８に記載のプラスミドを用いてＮＴＰを製造する方法であって、（ａ）該プラスミドを宿主細胞中に導入し、組換え宿主細胞を製造すること；（ｂ）該組換え宿主細胞を培養すること；次いで（ｃ）該ＮＴＰを該組換え宿主細胞から単離することを包含する方法。５１．約８kDa、約１４kDa、約１７kDa、約２１kDa、約２６kDa又は約４２k Daの分子量を有するＮＴＰ、またはそれらのフラグメントをコードしている、検出可能に標識化された遺伝子配列を含有するＤＮＡプローブ。５２．約８kDa、約１４kDa、約１７kDa、約２１kDa、約２６kDa又は約４２k Daの分子量を有するＮＴＰをコードしている遺伝子配列の、臨床的サンプル中における存在を検出する方法であって、（ａ）ハイブリダイゼーション条件下において、該サンプルと請求項５１に記載のプローブとを接触させること；次いで（ｂ）該プローブ及び該配列とのハイブリッドの形成を検出することを包含する方法。５３．約８kDa、約１４kDa、約１７kDa、約２１kDa、約２６kDa又は約４２k Daの分子量を有するＮＴＰの製造方法であって、（ａ）該ＮＴＰをコードしているヒトの遺伝子を含有する組換え宿主を培養すること；次いで（ｂ）該宿主から該ＮＴＰを単離することを包含する方法。５４．該遺伝子がアルツハイマー病の患者の脳組織から得られたものである請求項５３に記載の方法。５５．該遺伝子がヒトの神経腫瘍細胞系から得られたものである請求項５３に記載の方法。５６．該遺伝子が分子量約４２kDaのＮＴＰをコードしている請求項５３に記載の方法。５７．該遺伝子が分子量約２６kDaのＮＴＰをコードしている請求項５３に記載の方法。５８．該遺伝子が分子量約２１kDaのＮＴＰをコードしている請求項５３に記載の方法。５９．該遺伝子が分子量約１７kDaのＮＴＰをコードしている請求項５３に記載の方法。６０．該遺伝子が分子量約１４kDaのＮＴＰをコードしている請求項５３に記載の方法。６１．該遺伝子が分子量約８kDaのＮＴＰをコードしている請求項５３に記載の方法。６２．該宿主が大腸菌である請求項５３に記載の方法。６３．該遺伝子がベクターにより含有される請求項５３に記載の方法。６４．該遺伝子が誘導可能なプロモーターのコントロール下にある請求項５３に記載の方法。６５．該プロモーターがラムダＰ_Lプロモーターである請求項６４に記載の方法。６６．該プロモーターがｔａｃプロモーターである請求項６４に記載の方法。６７．請求項５３に記載の方法により得られた分子量約４２kDaの、実質上純粋なＮＴＰ。６８．請求項５３に記載の方法により得られた分子量約２６kDaの、実質上純粋なＮＴＰ。６９．請求項５３に記載の方法により得られた分子量約２１kDaの、実質上純粋なＮＴＰ。７０．請求項５３に記載の方法により得られた分子量約１７kDaの、実質上純粋なＮＴＰ。７１．請求項５３に記載の方法により得られた分子量約１４kDaの、実質上純粋なＮＴＰ。７２．請求項５３に記載の方法により得られた分子量約８kDaの、実質上純粋なＮＴＰ。７３．ＮＴＰ核酸配列と相補的であって、ＰＴＰ核酸配列とホモローガスでない、１５から３０マーのアンチセンスオリゴヌクレオチド。７４．ＤＮＡである請求項７３に記載のアンチセンスオリゴヌクレオチド。７５．Ｏ−オリゴヌクレオチドである請求項７３に記載のアンチセンスオリゴヌクレオチド。７６．Ｓ−オリゴヌクレオチドである請求項７３に記載のアンチセンスオリゴヌクレオチド。７７．ＮＴＰ配列と相補的であって、ＰＴＰ配列とホモローガスでない、１５から３０マーのアンチセンスオリゴヌクレオチドを少なくとも１つ含有し、さらに製薬的に許容される担体を含有する医薬組成物。７８．ＮＴＰ配列と相補的であって、ＰＴＰ核酸配列とホモローガスでない標的配列を含有するリボザイム。７９．請求項７８に記載のリボザイムをコードしているＤＮＡ分子。８０．請求項７８に記載のＮＴＰリボザイム及び製薬的に許容される担体を含有する医薬組成物。８１．患者におけるＮＴＰの発現を阻害する方法であって、該患者に請求項７３に記載のアンチセンスオリゴヌクレオチドを有効量投与することを包含する方法。８２．患者におけるＮＴＰの発現を阻害する方法であって、該患者に請求項７８に記載のリボザイムを有効量投与することを包含する方法。８３．患者におけるＮＴＰの発現を阻害する方法であって、該患者に請求項７９に記載のＤＮＡ分子を有効量投与することを包含する方法。８４．配列３'Ｘ５'−Ｌ５'Ｘ３'（式中、ＸはＰＴＰ核酸配列とホモローガスでないＮＴＰ核酸配列を含有し、Ｌはオリゴヌクレオチド結合を表す）を含有するオリゴヌクレオチド。８５．配列５'Ｘ３'−Ｌ３'Ｘ５'（式中、ＸはＰＴＰ核酸配列とホモローガスでないＮＴＰ核酸配列を含有し、Ｌはオリゴヌクレオチド結合を表す）を含有するオリゴヌクレオチド。８６．約８kDa、約１４kDa、約１７kDa、約２１kDa、約２６kDa又は約４２k Daの分子量を有するＮＴＰの存在によって仲介される病気又は状態を処置する方法であって、その様な処置が必要な患者に請求項８４又は請求項８５に記載のオリゴヌクレオチド又はそれらの医薬組成物を有効量、投与することを包含する方法。８７．（ａ）ＮＴＰ核酸配列と相補的であって、ＰＴＰ核酸配列とホモローガスでない、１０−１５個の核酸配列；及び（ｂ）３'−ＮＣＣＡ（式中、Ｎはプリンである）で示される核酸配列を含有するリボヌクレオチドＮＴＰエクスターナルガイドシークエンス。８８．ＤＮＡである請求項８７に記載のＮＴＰエクスターナルガイドシークエンス。８９．約８kDa、約１４kDa、約１７kDa、約２１kDa、約２６kDa又は約４２k Daの分子量を有するＮＴＰの存在によって仲介される病気又は状態を処置する方法であって、その様な処置が必要な患者に請求項８７に記載のＮＴＰエクスターナルガイドシークエンス又はそれらの医薬組成物を有効量投与することを包含する方法。９０．請求項４６に記載のＤＮＡ分子を含有する発現ベクター。９１．請求項９０に記載の発現ベクターを含有するビリオン。９２．約８kDa、約１４kDa、約１７kDa、約２１kDa、約２６kDa又は約４２k Daの分子量を有するＮＴＰの存在によって仲介される病気又は状態を処置する方法であって、その様な処置が必要な患者に請求項９１に記載のビリオンを有効量投与することを包含する方法。９３．ヒトの対象における散発性アルツハイマー病と家族性アルツハイマー病とを識別する方法であって、（ａ）アルツハイマー病に罹患している疑いのあるヒトの対象から生物学的サンプルを得ること；（ｂ）該生物学的サンプルからＤＮＡを精製すること；次いで（ｃ）ハイブリダイゼーションの条件下に該ＤＮＡと請求項５１に記載のプローブとを接触させることを包含し、該プローブと該ＤＮＡとのハイブリッドの検出によって家族性アルツハイマー病が示され、さらにハイブリダイゼーションが検出されないことによって散発性アルツハイマー病が示される方法。