JPH08214885A - 哺乳類のl−アスパラギナーゼをコードするdna - Google Patents

哺乳類のl−アスパラギナーゼをコードするdna

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JPH08214885A
JPH08214885A JP7042564A JP4256495A JPH08214885A JP H08214885 A JPH08214885 A JP H08214885A JP 7042564 A JP7042564 A JP 7042564A JP 4256495 A JP4256495 A JP 4256495A JP H08214885 A JPH08214885 A JP H08214885A
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Abstract

(57)【要約】 【目的】 哺乳類のL−アスパラギナーゼをコードする
DNAを提供する。 【構成】 特定のアミノ配列を含んでなる哺乳類のL−
アスパラギナーゼをコードするDNAを要旨とする。

Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【産業上の利用分野】この発明はL−アスパラギナーゼ
をコードする新規なDNA、詳細には、哺乳類のL−ア
スパラギナーゼをコードするDNAに関する。
【0002】
【従来の技術】L−アスパラギナーゼ(EC3.5.
1.1)は、L−アスパラギンに作用してL−アスパラ
ギン酸とアンモニアを遊離するアミドヒドロラーゼの一
種である。L−アスパラギナーゼは動植物及び微生物に
おけるL−アスパラギン代謝の中心的役割を担う酵素で
あるが、ジェー・ジー・キッズが『ジャーナル・オブ・
エキスペリメンタル・メディスン』、第98巻、第56
5乃至581頁(1953年)にリンパ腫に対する阻害
作用を報告して以来、抗腫瘍剤としての実用化に向けて
精力的な研究が続けられてきた。その結果、今では、大
腸菌のL−アスパラギナーゼが白血病及びリンパ腫の治
療剤として用いられるようになった
【0003】しかし、抗腫瘍作用に優れた大腸菌のL−
アスパラギナーゼも、人体からみれば、所詮、異種蛋白
質であり、これを配合使用する従来の治療剤は、患者に
投与すると、アナフィラキシーショック及び蕁麻疹、浮
腫、喘鳴、呼吸困難などの過敏反応を始めとする深刻な
副作用を頻発させることとなった。斯くして、従来の治
療剤は用量及び投与頻度を大幅に制限せざるを得ない状
況にあり、そのため、斯かる副作用を軽減乃至解消する
ための提案が幾つかなされてきた。
【0004】その第一は、特開昭54−119082号
公報に見られるように、2−O−置換ポリエチレングリ
コール−4,6−ジクロロ−S−トリアジンにより大腸
菌由来のL−アスパラギナーゼにおけるアミノ基の65
%以上を封鎖し、L−アスパラギナーゼそのものを化学
的に修飾しようというものである。第二は、特開平4−
320684号公報に見られるように、ヒトの肺、胃又
は胸部から採取した線維芽細胞を培養し、培養物からヒ
トのL−アスパラギナーゼを採取しようというものであ
る。第一の提案には、大量入手容易な大腸菌のL−アス
パラギナーゼを利用できる利点はあるものの、修飾反応
の制御が困難なうえに、副作用を解消するまでには到ら
ないという問題がある。第二の提案によるヒトのL−ア
スパラギナーゼは、大腸菌が産生するものと違って、患
者に投与しても抗体を産生し難い利点はあるものの、特
開平4−320684号公報に開示されたヒト細胞はL
−アスパラギナーゼ産生能が充分高いとは言えず、L−
アスパラギナーゼを量産しようとすると、細胞を大量に
培養しなければならない問題がある。
【0005】一方、昨今の組換えDNA技術の進歩には
目覚しいものがある。今日では、全アミノ酸配列が解明
されていないポリペプチドであっても、これをコードす
る遺伝子を単離し、その塩基配列を解明できれば、その
ポリペプチドをコードするDNAを含む組換えDNAを
作製し、これを微生物や動植物の細胞に導入して得られ
る形質転換体を培養することにより、所望量のポリペプ
チドが容易に取得できるようになった。
【0006】斯かる状況に鑑み、斯界においては、一刻
も早く哺乳類のL−アスパラギナーゼをコードする遺伝
子、望ましくは、ヒトのL−アスパラギナーゼをコード
する遺伝子が単離され、塩基配列の解明されるのが待ち
望まれている。
【0007】
【発明が解決しようとする課題】この発明の目的は、哺
乳類のL−アスパラギナーゼをコードするDNAを提供
することにある。
【0008】
【課題を解決するための手段】この発明は、上記課題
を、配列表における配列番号1又は2に示すアミノ酸配
列を含んでなる哺乳類のL−アスパラギナーゼをコード
するDNAにより解決するものである。
【0009】
【作用】この発明のDNAは、形質転換体とすることに
より、特定のアミノ酸配列を含む哺乳類のL−アスパラ
ギナーゼの産生を発現する。
【0010】以下、実施例等を参照しながらこの発明を
説明するに、この発明はモルモットのL−アスパラギナ
ーゼをコードする新規なDNAの発見に基づくものであ
る。モルモットの血清中にL−アスパラギナーゼの存在
することは以前より知られていたものの、その性質・性
状はほとんど解明されていなかった。
【0011】本発明者は、カラムクロマトグラフィーを
中心とする種々の精製方法を組合わせてモルモットの血
清からL−アスパラギナーゼ活性を有する物質を単離
し、その部分アミノ酸配列を決定した。そして、その部
分アミノ酸配列に基づき化学合成したプライマーを用い
て、モルモットの肝細胞から採取したmRNAを鋳型に
RT−PCR反応させたところ、モルモットのL−アス
パラギナーゼを部分コードするDNA断片が得られた。
このDNA断片をプローブにして上記mRNAから別途
作製したcDNAライブラリーを鋭意検索したところ、
1,695塩基対からなる、配列表における配列番号5
に示す塩基配列を含むDNA断片が得られた。この塩基
配列を解読したところ、モルモットのL−アスパラギナ
ーゼは565個のアミノ酸からなり、配列表における配
列番号3に示すアミノ酸配列を有していることが判明し
た。
【0012】この知見に基づき、本発明者がヒトの肝細
胞から採取したmRNAを引続き検索したところ、ヒト
のL−アスパラギナーゼをコードする遺伝子を単離する
ことに成功した。この遺伝子は1,719塩基対からな
る、配列表における配列番号6に示す塩基配列を含んで
なり、解読したところ、573個のアミノ酸からなる、
配列表における配列番号4に示すアミノ酸配列をコード
していることが判明した。
【0013】配列表における配列番号3乃至6に示すア
ミノ酸配列及び塩基配列を解明するに到った一連の操作
を要約すると、次のようになる。 (1) クロマトグラフィーを中心とする種々の精製方
法を組合わせてモルモットの血清からL−アスパラギナ
ーゼを単離し、高度に精製した。 (2) このL−アスパラギナーゼをトリプシン消化
し、消化物から3種類のペプチド断片を単離し、アミノ
酸配列を決定した。 (3) モルモットの肝細胞からmRNAを採取し、こ
れを鋳型に上記アミノ酸配列に基づき化学合成したプラ
イマーの存在下でRT−PCR反応させてDNA断片を
調製する一方、それらアミノ酸配列に基づき別途化学合
成したプローブを用いてそれらDNA断片を検索したと
ころ、モルモットのL−アスパラギナーゼ活性を部分コ
ードするDNA断片が得られた。 (4) このDNA断片を同位体標識した後、前記mR
NAを鋳型に調製したcDNAライブラリーにハイブリ
ダイズさせ、顕著な会合を示した形質転換体を採取し
た。 (5) 形質転換体からcDNAを採取し、塩基配列を
決定し、解読するとともに、その解読したアミノ酸配列
と前記部分アミノ酸配列を比較したところ、モルモット
のL−アスパラギナーゼは配列表における配列番号3に
示すアミノ酸配列を有し、配列表における配列番号5に
示す塩基配列によりコードされていることが判明した。 (6) さらに、ヒトの肝細胞から採取したmRNAを
鋳型にcDNAライブラリーを作製する一方、配列表に
おける配列番号5に示す塩基配列のDNA断片を調製
し、同位体標識後、上記cDNAライブラリーにハイブ
リダイズさせ、顕著な会合を示した形質転換体を採取し
た。 (7) 形質転換体からcDNAを採取し、塩基配列を
決定し、解読したところ、ヒトのL−アスパラギナーゼ
は配列表における配列番号4に示すアミノ酸配列を有
し、配列表における配列番号6に示す塩基配列によりコ
ードされていることが判明した。
【0014】配列表における配列番号3及び4に示すア
ミノ酸配列を比較すると、両者は、共通して、配列表に
おける配列番号1又は2に示すアミノ酸配列を有してい
る。すなわち、配列番号1に示すアミノ酸配列は、配列
番号3及び4に示すアミノ酸配列における第16乃至1
9番目の配列に、一方、配列番号2に示すアミノ酸配列
は、配列番号3及び4に示すアミノ酸配列における第1
14乃至118番目の配列に相当する。アミノ酸配列に
おける斯かる共通性に基づき、この発明でいう哺乳類の
L−アスパラキナーゼは、配列表における配列番号1又
は2に示すアミノ酸配列を含んでなるものということに
なる。その代表例としては、例えば、配列表における配
列番号3に示すアミノ酸配列を有するモルモットのL−
アスパラギナーゼ、配列番号4に示すアミノ酸配列を有
するヒトのL−アスパラギナーゼ、さらには、それらア
ミノ酸配列に相同的なアミノ酸配列を有する変異体が挙
げられる。斯かる変異体は、配列表における配列番号1
又は2に示すアミノ酸配列を保持しつつ、L−アスパラ
ギナーゼ活性を実質的に失わない範囲で、配列表におけ
る配列番号3又は4に示すアミノ酸配列におけるそれ以
外のアミノ酸の1個又は2個以上を他のアミノ酸で置換
したもの、さらには、それら配列番号3及び4に示すア
ミノ酸配列のN末端及び/又はC末端にアミノ酸が1個
又は2個以上付加したもの、及びそのN末端及び/又は
C末端のアミノ酸が1個又は2個以上欠失したものを包
含する。
【0015】斯くして、この発明のDNAは、上記のご
ときアミノ酸配列をコードするものということになる。
個々のDNAとしては、例えば、配列表における配列番
号5乃至6及び10乃至11に示す塩基配列及びそれら
に相同的な塩基配列並びにそれらに相補的な塩基配列の
ものを挙げることができる。斯かる塩基配列において
は、遺伝子コードの縮重を利用して、コードするアミノ
酸配列を変えることなく、それら塩基配列における塩基
の1個又は2個以上を他の塩基で置換してもよい。ま
た、この発明のDNAが、実際に、宿主内で哺乳類のL
−アスパラギナーゼの産生を発現するために、この発明
でいうL−アスパラギナーゼ又はその変異体をコードす
る塩基配列における塩基の1個又は2個以上を他の塩基
で適宜置換し得ることは言うまでもない。
【0016】この発明のDNAは、それが上述のごとき
塩基配列を有するかぎり、それが天然に由来するものか
人為的に合成されたものであるかは問わない。天然の給
源としては、例えば、モルモット及びヒトの肝臓が挙げ
られ、その細胞からは、例えば、配列表における配列番
号5又は6に示す塩基配列を含むDNAが得られる。一
方、この発明のDNAを人為的に合成するには、例え
ば、配列表における配列番号5又は6に示す塩基配列に
基づいて化学合成するか、配列表における配列番号3又
は4に示すアミノ酸配列をコードするDNAを自律複製
可能な適宜ベクターに挿入して組換えDNAとし、これ
を適宜宿主に導入して得られる形質転換体を培養し、培
養物から菌体を分離し、その菌体から当該DNAを含む
プラスミドを採取すればよい。
【0017】斯くして得られるDNAは、斯界における
慣用の方法により形質転換体とすることができる。斯か
る形質転換体は、培養すると、細胞乃至菌体内外に哺乳
類のL−アスパラギナーゼを産生する。哺乳類のL−ア
スパラギナーゼは、従来公知の大腸菌のものと違い、患
者に反復投与してもアナフィラキシーショックや過敏反
応などの副作用を惹起し難い特徴があるので、単独又は
他の薬剤と併用して、急性白血病、急性リンパ性白血病
及び悪性リンパ腫を含む哺乳類における悪性腫瘍一般の
治療に有利に用いることができる。
【0018】以下、実施例に基づきこの発明を説明する
が、そこで用いられる手法は斯界において慣用のもので
あり、例えば、ティー・マニャティスら『モレキュラー
・クローニング・ア・ラボラトリー・マニュアル』、1
989年、コールド・スプリング・ハーバー発行や、松
村正実『ラボマニュアル遺伝子工学』、1988年、丸
善発行などにも詳述されている。
【0019】
【実施例1 モルモットのL−アスパラギナーゼの精
製】8乃至10週齢のモルモット100匹から採血し、
血液を常法にしたがって処理して血清300mlを得
た。血清に硫酸アンモニウムを50%飽和になるように
加え、4℃で2時間静置し、約8,000rpmで30
分間遠心分離した。沈澱部を採取し、10mM燐酸緩衝
液(pH7.0)に溶解し、新鮮な同一緩衝液に対して
4℃で18時間透析後、予め新鮮な同一緩衝液により平
衡化しておいたファルマシア製ゲル濾過クロマトグラフ
ィー用ゲル『セファクリルS−300』300mlのカ
ラムに負荷し、カラムに新鮮な同一緩衝液を通液した。
【0020】分子量約150,000ダルトンに相当す
る画分を採取し、予め20mM燐酸緩衝液(pH7.
0)により平衡化しておいた東ソー製高速液体クロマト
グラフィー用カラム『DEAE−5PW』に負荷し、カ
ラムを新鮮な同一緩衝液で洗浄した後、0Mから1Mに
上昇する塩化ナトリウムの濃度勾配下、20mM燐酸緩
衝液(pH7.0)を13ml/分の流速で通液した。
塩化ナトリウム濃度が0.25M付近で溶出した画分約
120mlを採取し、蒸留水に対して4℃で4時間透析
した後、予め50mMトリス−塩酸緩衝液(pH7.
4)により平衡化しておいたファルマシア製アフィニテ
ィークロマトグラフィー用ゲル『ブルーセファロースC
L−6B』100mlのカラムに負荷し、カラムに新鮮
な同一緩衝液を通液してモルモットのL−アスパラギナ
ーゼを溶出させた。
【0021】L−アスパラギナーゼを含む画分を採取
し、濃縮後、予め10mM燐酸緩衝液(pH7.0)に
より平衡化しておいたファルマシア製ゲル濾過クロマト
グラフィー用ゲル『ハイロードスーパーデックス20
0』のカラムに負荷し、カラムに新鮮な同一緩衝液を通
液した。分子量約150,000ダルトンに相当する画
分を採取し、濃縮したところ、比活性約10単位/mg
蛋白質のモルモットのL−アスパラギナーゼがモルモッ
ト1匹当たり約400μgの収量で得られた。
【0022】なお、この明細書を通じて、L−アスパラ
ギナーゼの活性は、次のようにして測定した活性値(単
位)で表示する。すなわち、96ウェルマイクロプレー
トに被検試料を160μl/ウェルずつ分注する一方、
L−アスパラギンを濃度1.4mg/mlになるように
50mM燐酸緩衝液(pH7.0)に溶解し、溶液を4
0μl/ウェルずつマイクロプレートに加える。この状
態でマイクロプレートを37℃で10乃至30分間イン
キュベートした後、反応により遊離したL−アスパラギ
ン酸をアミノ酸分析機により測定する。同時に、被検試
料に代えて1.0、0.5又は0.25単位/mlに希
釈した大腸菌のL−アスパラギナーゼ標品を用いる系を
設け、上記と同様に処置した後、遊離したL−アスパラ
ギン酸を同様に測定し、その測定値に基づき検量線を作
成する。被検試料の系で測定されたL−アスパラギン酸
の量をこの検量線に内挿し、被検試料の活性値を推定す
る。L−アスパラギナーゼの1単位とは、上記条件下で
反応させたとき、1分間にL−アスパラギンからアンモ
ニアを1μmol遊離するL−アスパラギナーゼ活性ポ
リペプチドの量と定義する。
【0023】
【実施例2 モルモットのL−アスパラギナーゼの部分
アミノ酸配列】実施例1で調製した精製L−アスパラギ
ナーゼを含む水溶液の一部をとり、約50μlまで濃縮
した。濃縮物に3%(w/v)SDS、60%(w/
v)グリセロール及びジチオトレイトール60mg/m
lからなる混液25μlを加え、50℃で30分間イン
キュベートした後、10%(w/v)ポリアクリルアミ
ドゲル上に移し、常法にしたがって電気泳動した。ゲル
を0.1%(w/v)クーマシーブリリアントブルーR
250及び10%(v/v)酢酸を含む50%(v/
v)水性メタノールに浸漬して発色させ、7%(v/
v)酢酸を含む12%(v/v)水性メタノールにより
繰返し濯いで脱色し、蒸留水に18時間浸漬して洗浄
後、ゲルより染色部分を切出し、凍結乾燥した。
【0024】乾燥ゲルをシグマ製トリプシン剤『TPC
Kトリプシン』2μg/mlを含む100mM炭酸水素
ナトリウム、0.5mM塩化カルシウム及び0.02%
(v/v)ツイーン20水溶液からなる混液0.6ml
に浸漬し、37℃で18時間インキュベートしてL−ア
スパラギナーゼをトリプシン消化した。消化物を遠心分
離して上清を採取する一方、沈澱部を0.001%(v
/v)ツイーン20を含む1%(v/v)トリフルオロ
酢酸水溶液1mlに浸漬し、室温下で4時間振盪した
後、遠心分離して上清を採取した。新たに生じた沈澱
を、先ず、0.001%(v/v)ツイーン20を含む
70%(v/v)トリフルオロ酢酸水溶液で、次に、
0.001%(v/v)ツイーン20及び50%(v/
v)トリフルオロ酢酸を含むアセトニトリル溶液で、順
次、上記と同様に処理し、得られた上清と上記で得られ
た上清をプールし、250μlまで濃縮後、遠心瀘過し
た。
【0025】斯くして得られたペプチド断片を含む水溶
液を、予め0.1%(v/v)トリフルオロ酢酸水溶液
により平衡化しておいた東ソー製高速液体クロマトグラ
フィー用カラム『HPLC ODS−120T』に負荷
し、カラムを0.1%(v/v)トリフルオロ酢酸水溶
液で洗浄後、溶出液中のポリペプチド濃度を吸光光度計
により214nm及び280nmの波長下でモニタしな
がら、0%(v/v)から70%(v/v)に上昇する
水性アセトニトリルの濃度勾配下、カラムに0.1%
(v/v)トリフルオロ酢酸水溶液を0.5ml/分の
流速で通液した。そして、通液開始から約66分後、約
69分後及び約72分後に溶出した画分(以下、それぞ
れ『ペプチド断片A』、『ペプチド断片B』、『ペプチ
ド断片C』と言う。)を別々に採取した。このときの溶
出パターンを図1に示す。
【0026】パーキン・エルマー製プロテイン・シーケ
ンサ『473A型』を使用し、常法にしたがってこれら
ペプチド断片A、B及びCのアミノ酸配列を調べたとこ
ろ、それぞれ、配列表における配列番号7乃至9に示す
アミノ酸配列を有していた。
【0027】
【実施例3 モルモットのL−アスパラギナーゼの全ア
ミノ酸配列とそれをコードするDNAの塩基配列】
【0028】
【実施例3−1 全RNAの調製】常法にしたがって調
製したモルモットの肝細胞を湿重量で3gとり、10m
Mクエン酸ナトリウム(pH7.0)及び0.5%(w
/v)SDSを含む6Mグアニジンイソチオシアネート
水溶液20mlに浮遊させ、ホモジナイザにより破砕し
た。35ml容遠心管に5.7M塩化セシウムと0.1
M EDTA(pH7.5)の混液25mlを注入し、
その上に細胞破砕物を重層し、25,000rpm、2
0℃で20時間遠心分離した。遠心管からRNAを含む
画分を採取し、15ml容遠心管に移し、等容量のクロ
ロホルム/ブタノール混液(混合比4:1)を加え、5
分間振盪した後、10,000g、4℃で10分間遠心
分離し、水層部を採取し、2.5倍容のエタノールを加
え、−20℃で2時間静置して全RNAを沈澱させた。
沈澱部を75%(v/v)エタノールで洗浄し、乾燥し
たところ、全RNAが約4mg得られた。
【0029】
【実施例3−2 モルモットのL−アスパラギナーゼを
部分コードするDNA断片の調製】実施例3−1で調製
した全RNA 1μgに25mM塩化マグネシウムを4
μl、10×PCR緩衝液(100mMトリス−塩酸緩
衝液(pH8.3)、500mM塩化カリウム)を2μ
l、1mM dNTPミックスを8μl、1単位/μl
RNase阻害剤を1μl、2.5単位/μl逆転写
酵素を1μl及び2.5μMランダムヘキサマーを1μ
l加え、滅菌蒸留水で20μlとした。常法により、混
合物を0.5ml容反応管中、25℃で10分間、42
℃で30分間、99℃で5分間、5℃で5分間インキュ
ベートして逆転写酵素反応させ、第一ストランドcDN
Aを含む水溶液を得た。
【0030】第一ストランドcDNA水溶液20μlと
25mM塩化マグネシウムを4μl、10×PCR緩衝
液(100mMトリス−塩酸緩衝液(pH8.3)、5
00mM塩化カリウム)を8μl、2.5単位/μlア
ンプリタックDNAポリメラーゼを0.5μl、さら
に、センスプライマー又はアンチセンスプライマーとし
てプライマー1及びプライマー2をそれぞれ1pmol
ずつ加え、滅菌蒸留水で100μlとした。常法によ
り、混合物を94℃で1分間、42℃で2分間、72℃
で3分間のサイクルで40回繰返し反応させ、第一スト
ランドcDNAを鋳型にモルモットのL−アスパラギナ
ーゼを部分コードするDNA断片を増幅した。なお、プ
ライマー1及びプライマー2は、配列表の配列番号8又
は7におけるGly−Met−Gln−Ser−Lys
又はTyr−Pro−Gly−Ile−Pro−Ala
で表されるアミノ酸配列に基づき化学合成したオリゴヌ
クレオチドであり、それぞれ、5´−GGNATGCA
RWSNAAR−3´又は5´−GCNGGDATNC
CNGGRTA−3´で表される塩基配列を有してい
た。
【0031】斯くして得られたPCR産物の一部をと
り、常法にしたがって2%(w/v)アガロースゲル上
で電気泳動して分画後、0.4N水酸化ナトリウムによ
り加圧ブロットしてDNAをナイロン膜上に転写し、固
定した。ナイロン膜を2×SSCで洗浄し、風乾後、5
×SSPE、5×デンハルト液、0.5%(w/v)S
DS及び100μg/ml変性サケ精子DNAを含むプ
レハイブリダイゼーション混液に浸漬し、65℃で3時
間インキュベートした。別途、プローブ1として、配列
表の配列番号9におけるPhe−Met−Leu−Gl
u−Asn−Leuで表されるアミノ酸配列に基づき5
´−TTYATGYTNGARAAYYT−3´で表さ
れる塩基配のオリゴヌクレオチドを化学合成し、[γ−
32P]ATPとT4ポリヌクレオチドキナーゼにより同
位体標識した。そして、プローブ1を1pmol、5×
SSPE、5×デンハルト液、0.5%(w/v)SD
S及び100μg/ml変性サケ精子DNAを含む混液
にナイロン膜を浸漬し、42℃で24時間インキュベー
トしてハイブリダイズさせ、室温下でナイロン膜を6×
SSCにより洗浄した後、常法にしたがってオートラジ
オグラフィーしたところ、目的とするDNA断片がPC
R産物に含まれていた。
【0032】残りのPCR産物にノバジェン製プラスミ
ドベクター『pT7ブルーT』50ngと適量のT4
DNAリガーゼを加え、さらに、100mM ATPを
最終濃度1mMまで加えた後、16℃で18時間インキ
ュベートしてプラスミドベクターにDNA断片を挿入し
た。得られた組換えDNAをコンピテントセル法により
ノバジェン製大腸菌『NoVa Blue』株に導入し
て形質転換体とし、これを10g/lバクトトリプト
ン、5g/lバクトイーストエキストラクト、2.5g
/l塩化ナトリウム、15g/lバクトアガー、100
mg/lアンピシリン、40mg/l X−Gal及び
23.8mg/lイソプロピル−β−D−チオガラクト
ピラノシド(以下、「IPTG」と略記する。)を含む
プレート培地に接種し、37℃で24時間培養してコロ
ニーを形成させた。常法にしたがってプレート培地にナ
イロン膜を載置し、約30秒間静置してコロニーを移取
った後、ナイロン膜を剥離し、0.5M水酸化ナトリウ
ム及び1.5M塩化ナトリウムを含む混液に7分間浸漬
して溶菌した。その後、ナイロン膜を1.5M塩化ナト
リウムを含む0.5Mトリス−塩酸緩衝液(pH7.
2)に3分間浸漬し、2×SSCで洗浄後、0.4M水
酸化ナトリウムに20分間浸漬し、5×SSC中で洗浄
し、風乾後、5×SSPE、5×デンハルト液、0.5
%(w/v)SDS及び100μg/ml変性サケ精子
DNAを含むプレハイブリダイゼーション混液に浸漬
し、42℃で24時間インキュベートした。その後、常
法にしたがってナイロン膜にプローブ1をハイブリダイ
ズさせ、6×SSCで洗浄後、前記と同様にオートラジ
オグラフィーし、プローブ1と顕著な会合を示した形質
転換体をプレート培地から採取した。
【0033】この形質転換体をアンピシリン100μg
/mlを含むL−ブロス培地(pH7.2)に接種し、
37℃で18時間培養し、培養物から菌体を採取し、通
常のアリカリ−SDS法により組換えDNAを採取し
た。ジデオキシ法により調べたところ、この組換えDN
Aは配列表の配列番号5に示す塩基配列における第61
乃至746番目に相当する塩基配列のDNA断片を含ん
でいた。
【0034】
【実施例3−3 mRNAの調製】実施例3−1で調製
した全RNAを500μg含む水溶液を0.05mlと
り、これに1mM二ナトリウム−EDTAと0.1%
(w/v)SDSを含む10mMトリス−塩酸緩衝液
(pH7.5)を0.5ml加えて全量を1mlとし
た。混合物に日本ロシュ製オリゴ(dT)30ラテックス
『オリゴテックス−dT30スーパ−』を1ml加え、
65℃で5分間加熱して変性させた後、直ちに氷浴中で
3分間冷却した。5M塩化ナトリウムを0.2ml加
え、37℃で10分間インキュベートし、25℃、1
0,000rpmで10分間遠心分離し、上清を除いて
得られたペレット状の沈澱に滅菌蒸留水0.5mlを加
えて懸濁させ、65℃で5分間インキュベートしてオリ
ゴテックスからmRNAを溶出させた。回収したmRN
Aは約5μgであった。
【0035】
【実施例3−4 cDNAライブラリーの作製】アマシ
ャム製cDNAクローニングキット『cDNA合成シス
テム・プラス』を使用し、実施例3−3で調製したmR
NAからcDNAライブラリーを作製した。すなわち、
1.5ml容反応管に第一ストランド合成用溶液4μ
l、ピロリン酸ナトリウム溶液1μl、ヒト胎盤リボヌ
クレアーゼインヒビター1μl、デオキシヌクレオチド
三燐酸混合液2μl及びオリゴdTプライマー1μlを
順次加え、実施例3−3で調製したmRNAを5μg加
えた後、滅菌蒸留水で19μlとした。混合物に逆転写
酵素20単位を含む溶液1μlを加え、42℃で40分
間インキュベートして第一ストランドcDNAを含む反
応物を得た。
【0036】反応物に第二ストランドcDNA合成用溶
液37.5μl、大腸菌リボヌクレアーゼHを0.8単
位、DNAポリメラーゼIを23単位この順序で加え、
滅菌蒸留水で100μlとした後、12℃で60分間、
22℃で60分間インキュベートし、T4 DNAポリ
メラーゼを2単位を加え、37℃でさらに10分間イン
キュベートして第二ストランドcDNAを含む溶液を得
た。反応物に0.25M EDTA(pH8.0)を4
μl加えて反応を停止させた後、常法によりフェノール
/クロロホルム抽出し、エタノール沈澱させてcDNA
を採取した。
【0037】このようにして得たcDNAにL/K緩衝
液を2μl、さらにEco RIアダプターを250p
mol、T4 DNAリガーゼを2.5単位この順序で
加え、滅菌蒸留水で20μlとした後、15℃で16時
間インキュベートしてcDNA両端にEco RIアダ
プターを連結した。反応物に0.25M EDTA(p
H8.0)を2μl加えて酵素を失活させ、常法により
分子篩クロマトグラフィーにより未反応のEco RI
アダプターを除去し、L/K緩衝液を40μlとT4ポ
リヌクレオチドキナ−ゼを80単位加え、滅菌蒸留水で
400μlとし、37℃で30分間インキュベートして
Eco RIアダプターの5´末端を燐酸化した後、反
応物をフェノール/クロロホルム抽出及びエタノール沈
澱してDNAを採取した。DNAに適量のλgt10ア
ームを含むL/K緩衝液を1.5μlとT4 DNAリ
ガーゼを2.5単位加え、滅菌蒸留水で全量を15μl
とし、15℃で16時間インキュベートした後、通常の
生体外パッケージングを適用して組換えλDNAを含む
ファージを得た。
【0038】
【実施例3−5 組換えDNAのクローニング】アマシ
ャム製大腸菌NM514株に実施例3−4で調製したフ
ァージを常法により感染させた後、10g/lバクトト
リプトン、5g/lバクトイーストエキストラクト、1
0g/l塩化ナトリウム及び15g/lバクトアガーを
含む寒天倍地(pH7.0)に接種し、37℃で10時
間培養してプラークを形成させた。寒天培地にナイロン
膜を載置し、約30秒間静置してプラークを移取り、剥
離した後、先ず、0.5M水酸化ナトリウムと1.5M
塩化ナトリウムを含む水溶液に7分間、次に、1.5M
塩化ナトリウムを含む0.5Mトリス−塩酸緩衝液(p
H7.0)に3分間浸漬する操作を繰返した。ナイロン
膜を2×SSCで濯ぎ、風乾し、0.4N水酸化ナトリ
ウムに20分間浸漬し、5×SSCでさらに濯ぎ、風乾
後、5×SSPE、5×デンハルト液、0.5%(w/
v)SDS及びサケ精子DNAを100μg/ml含む
混液に浸漬し、65℃で3時間インキュベートした。別
途、実施例3−2で調製したDNA断片をアマシャム製
DNA標識キット『レディ・プライムDNA標識システ
ム』により32P標識してプローブ2とし、その適量と5
×SSPE、5×デンハルト液、0.5%(w/v)S
DS及びサケ精子DNAを100μg/ml含む混液
中、65℃で20時間インキュベートしてハイブリダイ
ズさせた。ナイロン膜を2×SSC中、65℃で20分
間、0.2×SSC中、65℃で20分間濯いだ後、オ
ートラジオグラフィーして、プローブ2に顕著な会合を
示したファージDNAクローンを採取した。
【0039】常法にしたがってこのクローンを大腸菌中
で増幅し、菌体から組換えDNAを抽出した。組換えD
NAを制限酵素Eco RIで切断する一方、プラスミ
ドベクターpUC19(ATCC37254)を同じ制
限酵素で切断し、得られたDNA断片とプラスミド断片
を常法によりDNAリガーゼで連結して組換えDNAと
した。そして、この組換えDNAを通常のコンピテント
セル法により大腸菌JM109株(ATCC5332
3)に導入し、形質転換体を得た。
【0040】
【実施例3−6 DNAの塩基配列と蛋白質のアミノ酸
配列の決定】実施例3−5で調製した形質転換体をアン
ピシリン50μg/mlを含むL−ブロス培地(pH
7.2)に接種し、37℃で18時間振盪培養した。培
養物から形質転換体を採取し、通常のアルカリ−SDS
法により処理してこの発明のDNAを含む組換えDNA
を得た。蛍光光度計を使用する自動シーケンサにより分
析したところ、この組換えDNAは配列表における配列
番号10に示す塩基配列を含んでなり、解読したとこ
ろ、同じく配列番号10に示すアミノ酸配列をコードし
ていることが示唆された。このアミノ酸配列において
は、その第10乃至25番目又は第243乃至253番
目に配列表における配列番号8及び7に示す部分アミノ
酸配列が含まれており、このことは、配列番号3のアミ
ノ酸配列を有するモルモットのL−アスパラギナーゼが
配列番号5に示す塩基配列のDNAによりコードされて
いることを示している。
【0041】次の実施例4では、配列表における配列番
号5に示す塩基配列のDNA断片をプローブに使用し、
ヒトの肝臓から採取したmRNAからヒトのL−アスパ
ラギナーゼをコードするcDNAを採取する。そして、
そのcDNAの塩基配列を決定し、解読して、ヒトのL
−アスパラギナーゼの全アミノ酸配列を決定する。
【0042】
【実施例4 ヒトのL−アスパラギナーゼの全アミノ酸
配列とそれをコードするDNAの塩基配列】
【0043】
【実施例4−1 cDNAライブラリーの作製】アマシ
ャム社製cDNAクローニングキット『cDNA合成シ
ステム・プラス』を使用し、クローンテック製ポリ
(A)付加ヒト肝臓RNAからcDNAライブラリーを
作製した。すなわち、1.5ml容反応管に第一ストラ
ンド合成用溶液10μl、1mMピロリン酸ナトリウム
溶液2.5μl、1μg/μlヒト胎盤リボヌクレアー
ゼインヒビター2.5μl、1μg/μlデオキシヌク
レオチド三燐酸混合液5μl及び1μg/μlオリゴd
Tプライマーを2.5μlとり、ポリ(A)付加ヒト肝
臓RNAを5μg加え、滅菌蒸留水で45μlとした
後、逆転写酵素100単位を含む溶液を5μl加え、4
2℃で40分間インキュベートして第一ストランドcD
NAを含む反応物を得た。
【0044】反応物に第二ストランドcDNA合成用溶
液93.5μl、大腸菌リボヌクレアーゼHを4単位、
DNAポリメラーゼIを115単位加え、滅菌蒸留水で
250μlとし、12℃で60分間、22℃で60分
間、70℃で10分間この順序でインキュベートした
後、T4 DNAポリメラーゼを10単位加え、37℃
でさらに10分間インキュベートした。0.25M E
DTA(pH8.0)を10μl加えて反応を停止させ
た後、反応物を常法にしたがってフェノール/クロロホ
ルム抽出し、抽出物をエタノール沈澱させて第二ストラ
ンドcDNAを得た。
【0045】このようにして得た第二ストランドcDN
AにL/K緩衝液(pH8.0)を2μl、Eco R
Iアダプターを250pmol、T4 DNAリガーゼ
を2.5単加え、滅菌蒸留水で20μlとし、15℃で
16時間インキュベートしてcDNAの両端にEco
RIアダプターを連結した後、0.25M EDTA
(pH8.0)を2μlを加えて反応を停止させた。分
子篩クロマトグラフィーにより反応物から未反応のEc
o RIアダプターを除去し、L/K緩衝液 (pH
8.0)を40μlとT4ポリヌクレオチドキナ−ゼを
80単位加え、滅菌蒸留水で400μlとし、37℃で
30分間インキュベートしてEco RIアダプターの
5´末端を燐酸化した後、フェノール/クロロホルム抽
出し、抽出物をエタノール沈澱してcDNAを採取し
た。その後、cDNAに適量のλgt10アームを含む
L/K緩衝液(pH8.0)を1.5μlとT4 DN
Aリガーゼを2.5単位加え、滅菌蒸留水で15μlと
し、15℃で16時間インキュベートした後、通常の生
体外パッケージングを適用して組換えλDNAを含むフ
ァージを得た。
【0046】
【実施例4−2 組換えDNAのクローニング】常法に
より、大腸菌NM514株に実施例4−1で調製したフ
ァージを感染させた後、10g/lバクトトリプトン、
5g/lバクトイーストエキストラクト、10g/l塩
化ナトリウム及び15g/lバクトアガーを含む寒天倍
地(pH7.0)に接種し、37℃で10時間培養して
プラークを形成させた。寒天培地にナイロン膜を載置
し、約30秒間静置してプラークを移取り、剥離した
後、先ず、0.5M水酸化ナトリウム及び1.5M塩化
ナトリウムを含む水溶液に7分間、次に、1.5M塩化
ナトリウムを含む0.5Mトリス−塩酸緩衝液(pH
7.0)に3分間浸漬する操作を繰返した。ナイロン膜
を2×SSCで濯ぎ、風乾し、0.4N水酸化ナトリウ
ムに20分間浸漬し、5×SSCでさらに濯ぎ、風乾
後、5×SSPE、5×デンハルト液、0.5%(w/
v)SDS及びサケ精子DNAを100μg/ml含む
混液に浸漬し、65℃で3時間インキュベートした。
【0047】組換えDNAをクローニングすべく、別
途、アマシャム製DNA標識キット『レディ・プライム
DNA標識システム』を使用し、配列表における配列番
号5に示す塩基配列のDNA断片を同位体標識してプロ
ーブ3を調製した。すなわち、1.5ml容反応管に実
施例3−5の方法により得たDNA断片を25ngと
り、滅菌蒸留水で45μlとし、95℃で3分間加熱し
た後、反応管にとり、[α−32P]dCTP溶液を5μ
l加え、37℃で30分間インキュベートして同位体標
識した。その後、同位体標識したDNA断片を含む反応
物に通常の分子篩クロマトグラフィーを適用し、未反応
の[α−32P]dCTPを除去してプローブ3を得た。
【0048】次に、前記ナイロン膜をプローブ3の適量
と5×SSPE、5×デンハルト液、0.5%(w/
v)SDS及びサケ精子DNAを100μg/ml含む
混液中、50℃で20時間インキュベートしてハイブリ
ダイズさせた後、6×SSC中、室温下で20分間、2
×SSC中、室温下でさらに20分間インキュベート
し、洗浄し、オートラジオグラフィーして、プローブ3
に顕著な会合を示したファージDNAクローンを採取し
た。常法によりこのクローンを大腸菌中で増幅し、菌体
から組換えDNAを抽出した。組換えDNAを制限酵素
Eco RIで切断する一方、プラスミドベクターpU
C19(ATCC37254)を同じ制限酵素で切断
し、得られたDNA断片とプラスミド断片を常法により
DNAリガーゼで連結して組換えDNAとした。そし
て、この組換えDNAを通常のコンピテントセル法によ
り大腸菌JM109株(ATCC53323)に導入
し、形質転換体を得た。
【0049】
【実施例4−3 ヒトのL−アスパラギナーゼをコード
するDNAの塩基配列と全アミノ酸配列の決定】実施例
4−2で調製した形質転換体をアンピシリン50μg/
mlを含むL−ブロス培地(pH7.2)に接種し、3
7℃で18時間振盪培養した。培養物から形質転換体を
採取し、通常のアルカリ−SDS法により処理してこの
発明のDNAを含む組換えDNAを得た。蛍光光度計を
使用する自動シーケンサにより分析したところ、この組
換えDNAは配列表における配列番号11に示す塩基配
列を含んでいた。この塩基配列から推定されるアミノ酸
配列は、その配列番号11に併記したとおりであり、こ
のことは、配列表における配列番号4のアミノ酸配列を
有するヒトのL−アスパラギナーゼが配列番号6に示す
塩基配列のDNAによりコードされていることを示唆し
ている。また、配列表における配列番号3及び4に示す
アミノ酸配列を比較すると、約70%の相同性のあるこ
とが判明した。
【0050】
【発明の効果】叙上のとおり、この発明は、哺乳類のL
−アスパラギナーゼをコードする新規なDNAの発見に
基づくものである。この発明のDNAに組換えDNA技
術を適用することにより、従来、入手困難であったヒト
を含む哺乳類のL−アスパラギナーゼの所望量を容易に
入手できることとなる。
【0051】斯くも顕著な作用効果を発揮するこの発明
は、斯界に貢献すること誠に多大な、意義のある発明と
言える。
【0052】
【配列表】
配列番号:1 配列の長さ:4 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列 Thr Gly Gly Thr 1
【0053】配列番号:2 配列の長さ:5 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列 His Gly Thr Asp Thr 1 5
【0054】配列番号:3 配列の長さ:565 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ポリペプチド 配列 Met Ala Arg Ala Ser Gly Ser Glu Arg His Leu Leu Leu Ile Tyr Thr Gly 1 5 10 15 Gly Thr Leu Gly Met Gln Ser Lys Gly Gly Val Leu Val Pro Gly Pro Gly 20 25 30 Leu Val Thr Leu Leu Arg Thr Leu Pro Met Phe His Asp Lys Glu Phe Ala 35 40 45 50 Gln Ala Gln Gly Leu Pro Asp His Ala Leu Ala Leu Pro Pro Ala Ser His 55 60 65 Gly Pro Arg Val Leu Tyr Thr Val Leu Glu Cys Gln Pro Leu Leu Asp Ser 70 75 80 85 Ser Asp Met Thr Ile Asp Asp Trp Ile Arg Ile Ala Lys Ile Ile Glu Arg 90 95 100 His Tyr Glu Gln Tyr Gln Gly Phe Val Val Ile His Gly Thr Asp Thr Met 105 110 115 Ala Phe Gly Ala Ser Met Leu Ser Phe Met Leu Glu Asn Leu His Lys Pro 120 125 130 135 Val Ile Leu Thr Gly Ala Gln Val Pro Ile Arg Val Leu Trp Asn Asp Ala 140 145 150 Arg Glu Asn Leu Leu Gly Ala Leu Leu Val Ala Gly Gln Tyr Ile Ile Pro 155 160 165 170 Glu Val Cys Leu Phe Met Asn Ser Gln Leu Phe Arg Gly Asn Arg Val Thr 175 180 185 Lys Val Asp Ser Gln Lys Phe Glu Ala Phe Cys Ser Pro Asn Leu Ser Pro 190 195 200 Leu Ala Thr Val Gly Ala Asp Val Thr Ile Ala Trp Asp Leu Val Arg Lys 205 210 215 220 Val Asn Trp Lys Asp Pro Leu Val Val His Ser Asn Met Glu His Asp Val 225 230 235 Ala Leu Leu Arg Leu Tyr Pro Gly Ile Pro Ala Ser Leu Val Arg Ala Phe 240 245 250 255 Leu Gln Pro Pro Leu Lys Gly Val Val Leu Glu Thr Phe Gly Ser Gly Asn 260 265 270 Gly Pro Ser Lys Pro Asp Leu Leu Gln Glu Leu Arg Ala Ala Ala Gln Arg 275 280 285 Gly Leu Ile Met Val Asn Cys Ser Gln Cys Leu Arg Gly Ser Val Thr Pro 290 295 300 305 Gly Tyr Ala Thr Ser Leu Ala Gly Ala Asn Ile Val Ser Gly Leu Asp Met 310 315 320 Thr Ser Glu Ala Ala Leu Ala Lys Leu Ser Tyr Val Leu Gly Leu Pro Glu 325 330 335 340 Leu Ser Leu Glu Arg Arg Gln Glu Leu Leu Ala Lys Asp Leu Arg Gly Glu 345 350 355 Met Thr Leu Pro Thr Ala Asp Leu His Gln Ser Ser Pro Pro Gly Ser Thr 360 365 370 Leu Gly Gln Gly Val Ala Arg Leu Phe Ser Leu Phe Gly Cys Gln Glu Glu 375 380 385 390 Asp Ser Val Gln Asp Ala Val Met Pro Ser Leu Ala Leu Ala Leu Ala His 395 400 405 Ala Gly Glu Leu Glu Ala Leu Gln Ala Leu Met Glu Leu Gly Ser Asp Leu 410 415 420 425 Arg Leu Lys Asp Ser Asn Gly Gln Thr Leu Leu His Val Ala Ala Arg Asn 430 435 440 Gly Arg Asp Gly Val Val Thr Met Leu Leu His Arg Gly Met Asp Val Asn 445 450 455 Ala Arg Asp Arg Asp Gly Leu Ser Pro Leu Leu Leu Ala Val Gln Gly Arg 460 465 470 475 His Arg Glu Cys Ile Arg Leu Leu Arg Lys Ala Gly Ala Cys Leu Ser Pro 480 485 490 Gln Asp Leu Lys Asp Ala Gly Thr Glu Leu Cys Arg Leu Ala Ser Arg Ala 495 500 505 510 Asp Met Glu Gly Leu Gln Ala Trp Gly Gln Ala Gly Ala Asp Leu Gln Gln 515 520 525 Pro Gly Tyr Asp Gly Arg Ser Ala Leu Cys Val Ala Glu Ala Ala Gly Asn 530 535 540 Gln Glu Val Leu Ala Leu Leu Arg Asn Leu Ala Leu Val Gly Pro Glu Val 545 550 555 560 Pro Pro Ala Ile 565
【0055】配列番号:4 配列の長さ:573 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ポリペプチド 配列 Met Ala Arg Ala Val Gly Pro Glu Arg Arg Leu Leu Ala Val Tyr Thr Gly 1 5 10 15 Gly Thr Ile Gly Met Arg Ser Glu Leu Gly Val Leu Val Pro Gly Thr Gly 20 25 30 Leu Ala Ala Ile Leu Arg Thr Leu Pro Met Phe His Asp Glu Glu His Ala 35 40 45 50 Arg Ala Arg Gly Leu Ser Glu Asp Thr Leu Val Leu Pro Pro Asp Ser Arg 55 60 65 Asn Gln Arg Ile Leu Tyr Thr Val Leu Glu Cys Gln Pro Leu Phe Asp Ser 70 75 80 85 Ser Asp Met Thr Ile Ala Glu Trp Val Arg Val Ala Gln Thr Ile Lys Arg 90 95 100 His Tyr Glu Gln Tyr His Gly Phe Val Val Ile His Gly Thr Asp Thr Met 105 110 115 Ala Phe Ala Ala Ser Met Leu Ser Phe Met Leu Glu Asn Leu Gln Lys Thr 120 125 130 135 Val Ile Leu Thr Gly Ala Gln Val Pro Ile His Ala Leu Trp Ser Asp Gly 140 145 150 Arg Glu Asn Leu Leu Gly Ala Leu Leu Met Ala Gly Gln Tyr Val Ile Pro 155 160 165 170 Glu Val Cys Leu Phe Phe Gln Asn Gln Leu Phe Arg Gly Asn Arg Ala Thr 175 180 185 Lys Val Asp Ala Arg Arg Phe Ala Ala Phe Cys Ser Pro Asn Leu Leu Pro 190 195 200 Leu Ala Thr Val Gly Ala Asp Ile Thr Ile Asn Arg Glu Leu Val Arg Lys 205 210 215 220 Val Asp Gly Lys Ala Gly Leu Val Val His Ser Ser Met Glu Gln Asp Val 225 230 235 Gly Leu Leu Arg Leu Tyr Pro Gly Ile Pro Ala Ala Leu Val Arg Ala Phe 240 245 250 255 Leu Gln Pro Pro Leu Lys Gly Val Val Met Glu Thr Phe Gly Ser Gly Asn 260 265 270 Gly Pro Thr Lys Pro Asp Leu Leu Gln Glu Leu Arg Val Ala Thr Glu Arg 275 280 285 Gly Leu Val Ile Val Asn Cys Thr His Cys Leu Gln Gly Ala Val Thr Thr 290 295 300 305 Asp Tyr Ala Ala Gly Met Ala Met Ala Gly Ala Gly Val Ile Ser Gly Phe 310 315 320 Asp Met Thr Ser Glu Ala Ala Leu Ala Lys Leu Ser Tyr Val Leu Gly Gln 325 330 335 340 Pro Gly Leu Ser Leu Asp Val Arg Lys Glu Leu Leu Thr Lys Asp Leu Arg 345 350 355 Gly Glu Met Thr Pro Pro Ser Val Glu Glu Arg Arg Pro Ser Leu Gln Gly 360 365 370 Asn Thr Leu Gly Gly Gly Val Ser Trp Leu Leu Ser Leu Ser Gly Ser Gln 375 380 385 390 Glu Ala Asp Ala Leu Arg Asn Ala Leu Val Pro Ser Leu Ala Cys Ala Ala 395 400 405 Ala His Ala Gly Asp Val Glu Ala Leu Gln Ala Leu Val Glu Leu Gly Ser 410 415 420 425 Asp Leu Gly Leu Val Asp Phe Asn Gly Gln Thr Pro Leu His Ala Ala Ala 430 435 440 Arg Gly Gly His Thr Glu Ala Val Thr Met Leu Leu Gln Arg Gly Val Asp 445 450 455 Val Asn Thr Arg Asp Thr Asp Gly Phe Ser Pro Leu Leu Leu Ala Val Arg 460 465 470 475 Gly Arg His Pro Gly Val Ile Gly Leu Leu Arg Glu Ala Gly Ala Ser Leu 480 485 490 Ser Thr Gln Glu Leu Glu Glu Ala Gly Thr Glu Leu Cys Arg Leu Ala Tyr 495 500 505 510 Arg Ala Asp Leu Glu Gly Leu Gln Val Trp Trp Gln Ala Gly Ala Asp Leu 515 520 525 Gly Gln Pro Gly Tyr Asp Gly His Ser Ala Leu His Val Ala Glu Ala Ala 530 535 540 Gly Asn Leu Ala Val Val Ala Phe Leu Gln Ser Leu Glu Gly Ala Val Gly 545 550 555 560 Ala Gln Ala Pro Cys Pro Glu Val Leu Pro Gly Val 565 570
【0056】配列番号:5 配列の長さ:1695 配列の型:核酸 トポロジー:直鎖状 配列 ATGGCGCGCG CATCAGGCTC CGAGAGGCAC CTGCTGCTCA TCTACACTGG CGGCACTTTG 60 GGCATGCAGA GCAAGGGCGG GGTGCTCGTC CCCGGCCCAG GCCTGGTCAC TCTGCTGCGG 120 ACCCTGCCCA TGTTCCATGA CAAGGAGTTC GCCCAGGCCC AGGGCCTCCC TGACCATGCT 180 CTGGCGCTGC CCCCTGCCAG CCACGGCCCC AGGGTCCTCT ACACGGTGCT GGAGTGCCAG 240 CCCCTCTTGG ATTCCAGCGA CATGACCATC GATGATTGGA TTCGCATAGC CAAGATCATA 300 GAGAGGCACT ATGAGCAGTA CCAAGGCTTT GTGGTTATCC ACGGCACCGA CACCATGGCC 360 TTTGGGGGCT CCATGCTGTC CTTCATGCTG GAAAACCTGC ACAAACCAGT CATCCTCACT 420 GGCGCCCAGG TGCCAATCCG TGTGCTGTGG AATGACGCCC GGGAAAACCT GCTGGGGGCG 480 TTGCTTGTGG CCGGCCAATA CATCATCCCT GAGGTCTGCC TGTTTATGAA CAGTCAGCTG 540 TTTCGGGGAA ACCGGGTAAC CAAGGTGGAC TCCCAGAAGT TTGAGGCCTT CTGCTCCCCC 600 AATCTGTCCC CACTAGCCAC TGTGGGCGCG GATGTCACAA TTGCCTGGGA CCTGGTGCGC 660 AAGGTCAACT GGAAGGACCC GCTGGTGGTG CACAGCAACA TGGAGCACGA CGTGGCACTG 720 CTGCGCCTCT ACCCTGGCAT CCCGGCCTCC CTGGTCCGGG CATTCCTGCA GCCCCCGCTC 780 AAGGGCGTGG TCCTGGAGAC CTTCGGCTCT GGCAACGGGC CGAGCAAGCC CGACCTGCTG 840 CAGGAGTTGC GGGCCGCGGC CCAGCGCGGC CTCATCATGG TCAACTGCAG CCAGTGCCTG 900 CGGGGGTCTG TGACCCCGGG CTATGCCACG AGCTTGGCGG GCGCCAACAT CGTGTCCGGC 960 TTAGACATGA CCTCAGAGGC CGCGCTGGCT AAGCTGTCCT ACGTGTTGGG CCTGCCGGAG 1020 CTGAGCCTGG AGCGCAGGCA GGAGCTGCTG GCCAAGGATC TTCGCGGGGA AATGACACTG 1080 CCCACGGCAG ACCTGCACCA GTCCTCTCCG CCGGGCAGCA CACTGGGGCA AGGTGTCGCC 1140 CGGCTCTTTA GTCTGTTCGG TTGCCAGGAG GAAGATTCGG TGCAGGACGC CGTGATGCCC 1200 AGCCTGGCCC TGGCCTTGGC CCATGCTGGT GAACTCGAGG CTCTGCAGGC ACTTATGGAG 1260 CTGGGCAGTG ACCTGCGCCT AAAGGACTCT AATGGCCAAA CCCTGTTGCA TGTGGCTGCT 1320 CGGAATGGGC GTGATGGCGT GGTCACCATG CTGCTGCACA GAGGCATGGA TGTCAATGCC 1380 CGAGACCGAG ACGGCCTCAG CCCACTGCTG TTGGCTGTAC AGGGCAGGCA TCGGGAATGC 1440 ATCAGGCTGC TGCGGAAGGC TGGGGCCTGC CTGTCCCCCC AGGACCTGAA GGATGCAGGG 1500 ACCGAGCTGT GCAGGCTGGC ATCCAGGGCT GACATGGAAG GCCTGCAGGC ATGGGGGCAG 1560 GCTGGGGCCG ACCTGCAGCA GCCGGGCTAT GATGGGCGCA GCGCTCTGTG TGTCGCAGAA 1620 GCAGCCGGGA ACCAGGAGGT GCTGGCCCTT CTGCGGAACC TGGCACTTGT AGGCCCGGAA 1680 GTGCCGCCTG CCATC 1695
【0057】配列番号:6 配列の長さ:1719 配列の型:核酸 トポロジー:直鎖状 配列 ATGGCGCGCG CGGTGGGGCC CGAGCGGAGG CTGCTGGCCG TCTACACCGG CGGCACCATT 60 GGCATGCGGA GTGAGCTCGG CGTGCTTGTG CCCGGGACGG GCCTGGCTGC CATCCTGAGG 120 ACACTGCCCA TGTTCCATGA CGAGGAGCAC GCCCGAGCCC GCGGCCTCTC TGAGGACACC 180 CTGGTGCTAC CCCCGGACAG CCGCAACCAG AGGATCCTCT ACACCGTGCT GGAGTGCCAG 240 CCCCTCTTCG ACTCCAGTGA CATGACCATC GCTGAGTGGG TTCGCGTTGC CCAGACCATC 300 AAGAGGCACT ACGAGCAGTA CCACGGCTTT GTGGTCATCC ACGGCACCGA CACCATGGCC 360 TTTGCTGCCT CGATGCTGTC CTTCATGCTG GAGAACCTGC AGAAGACTGT CATCCTCACT 420 GGGGCCCAGG TGCCCATCCA TGCCCTGTGG AGCGACGGCC GTGAGAACCT GCTGGGGGCA 480 CTGCTCATGG CTGGCCAGTA TGTGATCCCA GAGGTCTGCC TTTTCTTCCA GAATCAGCTG 540 TTTCGGGGCA ACCGGGCAAC CAAGGTAGAC GCTCGGAGGT TCGCAGCTTT CTGCTCCCCG 600 AACCTGCTGC CTCTGGCCAC AGTGGGTGCT GACATCACAA TCAACAGGGA GCTGGTGCGG 660 AAGGTGGACG GGAAGGCTGG GCTGGTGGTG CACAGCAGCA TGGAGCAGGA CGTGGGCCTG 720 CTGCGCCTCT ACCCTGGGAT CCCTGCCGCC CTGGTTCGGG CCTTCTTGCA GCCTCCCCTG 780 AAGGGCGTGG TCATGGAGAC CTTCGGTTCA GGGAACGGAC CCACCAAGCC CGACCTGCTG 840 CAGGAGCTGC GGGTGGCCAC CGAGCGCGGC CTGGTCATCG TCAACTGTAC CCACTGCCTC 900 CAGGGGGCTG TGACCACAGA CTATGCAGCT GGCATGGCCA TGGCGGGAGC CGGCGTCATC 960 TCAGGCTTCG ACATGACATC GGAGGCCGCC CTGGCCAAGC TATCGTATGT GCTGGGCCAG 1020 CCAGGGCTGA GCCTGGATGT CAGGAAGGAG CTGCTGACCA AGGACCTTCG GGGGGAGATG 1080 ACGCCACCCT CGGTGGAAGA GCGCCGGCCC TCACTGCAGG GCAACACGCT GGGCGGTGGG 1140 GTCTCCTGGC TCCTCAGTCT GAGCGGCAGC CAGGAGGCAG ATGCCCTGCG GAATGCCCTG 1200 GTGCCCAGCC TGGCCTGTGC TGCTGCCCAC GCCGGTGACG TGGAGGCGCT GCAGGCGCTT 1260 GTGGAGCTGG GCAGTGACCT GGGCCTGGTG GACTTTAACG GCCAAACCCC ACTGCACGCG 1320 GCCGCCCGGG GAGGCCACAC AGAGGCAGTC ACCATGCTGC TGCAGAGAGG TGTGGACGTG 1380 AACACCCGGG ACACGGATGG CTTCAGCCCG CTGCTGCTGG CCGTGCGGGG CAGGCATCCG 1440 GGTGTCATTG GGTTGCTGCG GGAAGCCGGG GCCTCCCTGT CCACCCAGGA GCTGGAGGAA 1500 GCAGGGACGG AGCTGTGCAG GCTGGCATAC AGGGCCGACC TCGAAGGCCT GCAGGTGTGG 1560 TGGCAGGCAG GGGCTGACCT GGGGCAGCCG GGCTATGACG GGCACAGCGC CCTGCACGTC 1620 GCAGAGGCAG CCGGGAACCT GGCAGTGGTG GCCTTTCTAC AGAGCCTGGA GGGTGCGGTT 1680 GGTGCCCAGG CCCCATGCCC AGAAGTGCTG CCTGGTGTC 1719
【0058】配列番号:7 配列の長さ:11 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド フラグメントの種類:中間部フラグメント 配列 Leu Tyr Pro Gly Ile Pro Ala Ser Leu Val Arg 1 5 10
【0059】配列番号:8 配列の長さ:16 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド フラグメントの種類:中間部フラグメント 配列 His Leu Leu Leu Ile Tyr Thr Gly Gly Thr Leu Gly Met Gln Ser Lys 1 5 10 15
【0060】配列番号:9 配列の長さ:9 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド フラグメントの種類:中間部フラグメント 配列 Ser Phe Met Leu Glu Asn Leu His Lys 1 5
【0061】配列番号:10 配列の長さ:1928 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:cDNA to mRNA ハイポセティカル配列:No アンチセンス:No 起源 生物名:モルモット 組織の種類:肝臓 配列の特徴 特徴を表す記号:5'UTR 存在位置:1..19 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:mat peptide 存在位置:20..1714 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:3'UTR 存在位置:1715..1928 特徴を決定した方法:S 配列 GAGTGGCTTA GCCGCAGGC 19 ATG GCG CGC GCA TCA GGC TCC GAG AGG CAC CTG CTG CTC ATC TAC ACT 67 Met Ala Arg Ala Ser Gly Ser Glu Arg His Leu Leu Leu Ile Tyr Thr 1 5 10 15 GGC GGC ACT TTG GGC ATG CAG AGC AAG GGC GGG GTG CTC GTC CCC GGC 115 Gly Gly Thr Leu Gly Met Gln Ser Lys Gly Gly Val Leu Val Pro Gly 20 25 30 CCA GGC CTG GTC ACT CTG CTG CGG ACC CTG CCC ATG TTC CAT GAC AAG 163 Pro Gly Leu Val Thr Leu Leu Arg Thr Leu Pro Met Phe His Asp Lys 35 40 45 GAG TTC GCC CAG GCC CAG GGC CTC CCT GAC CAT GCT CTG GCG CTG CCC 211 Glu Phe Ala Gln Ala Gln Gly Leu Pro Asp His Ala Leu Ala Leu Pro 50 55 60 CCT GCC AGC CAC GGC CCC AGG GTC CTC TAC ACG GTG CTG GAG TGC CAG 259 Pro Ala Ser His Gly Pro Arg Val Leu Tyr Thr Val Leu Glu Cys Gln 65 70 75 80 CCC CTC TTG GAT TCC AGC GAC ATG ACC ATC GAT GAT TGG ATT CGC ATA 307 Pro Leu Leu Asp Ser Ser Asp Met Thr Ile Asp Asp Trp Ile Arg Ile 85 90 95 GCC AAG ATC ATA GAG AGG CAC TAT GAG CAG TAC CAA GGC TTT GTG GTT 355 Ala Lys Ile Ile Glu Arg His Tyr Glu Gln Tyr Gln Gly Phe Val Val 100 105 110 ATC CAC GGC ACC GAC ACC ATG GCC TTT GGG GGC TCC ATG CTG TCC TTC 403 Ile His Gly Thr Asp Thr Met Ala Phe Gly Ala Ser Met Leu Ser Phe 115 120 125 ATG CTG GAA AAC CTG CAC AAA CCA GTC ATC CTC ACT GGC GCC CAG GTG 451 Met Leu Glu Asn Leu His Lys Pro Val Ile Leu Thr Gly Ala Gln Val 130 135 140 CCA ATC CGT GTG CTG TGG AAT GAC GCC CGG GAA AAC CTG CTG GGG GCG 499 Pro Ile Arg Val Leu Trp Asn Asp Ala Arg Glu Asn Leu Leu Gly Ala 145 150 155 160 TTG CTT GTG GCC GGC CAA TAC ATC ATC CCT GAG GTC TGC CTG TTT ATG 547 Leu Leu Val Ala Gly Gln Tyr Ile Ile Pro Glu Val Cys Leu Phe Met 165 170 175 AAC AGT CAG CTG TTT CGG GGA AAC CGG GTA ACC AAG GTG GAC TCC CAG 595 Asn Ser Gln Leu Phe Arg Gly Asn Arg Val Thr Lys Val Asp Ser Gln 180 185 190 AAG TTT GAG GCC TTC TGC TCC CCC AAT CTG TCC CCA CTA GCC ACT GTG 643 Lys Phe Glu Ala Phe Cys Ser Pro Asn Leu Ser Pro Leu Ala Thr Val 195 200 205 GGC GCG GAT GTC ACA ATT GCC TGG GAC CTG GTG CGC AAG GTC AAC TGG 691 Gly Ala Asp Val Thr Ile Ala Trp Asp Leu Val Arg Lys Val Asn Trp 210 215 220 AAG GAC CCG CTG GTG GTG CAC AGC AAC ATG GAG CAC GAC GTG GCA CTG 739 Lys Asp Pro Leu Val Val His Ser Asn Met Glu His Asp Val Ala Leu 225 230 235 240 CTG CGC CTC TAC CCT GGC ATC CCG GCC TCC CTG GTC CGG GCA TTC CTG 787 Leu Arg Leu Tyr Pro Gly Ile Pro Ala Ser Leu Val Arg Ala Phe Leu 245 250 255 CAG CCC CCG CTC AAG GGC GTG GTC CTG GAG ACC TTC GGC TCT GGC AAC 835 Gln Pro Pro Leu Lys Gly Val Val Leu Glu Thr Phe Gly Ser Gly Asn 260 265 270 GGG CCG AGC AAG CCC GAC CTG CTG CAG GAG TTG CGG GCC GCG GCC CAG 883 Gly Pro Ser Lys Pro Asp Leu Leu Gln Glu Leu Arg Ala Ala Ala Gln 275 280 285 CGC GGC CTC ATC ATG GTC AAC TGC AGC CAG TGC CTG CGG GGG TCT GTG 931 Arg Gly Leu Ile Met Val Asn Cys Ser Gln Cys Leu Arg Gly Ser Val 290 295 300 ACC CCG GGC TAT GCC ACG AGC TTG GCG GGC GCC AAC ATC GTG TCC GGC 979 Thr Pro Gly Tyr Ala Thr Ser Leu Ala Gly Ala Asn Ile Val Ser Gly 305 310 315 320 TTA GAC ATG ACC TCA GAG GCC GCG CTG GCT AAG CTG TCC TAC GTG TTG 1027 Leu Asp Met Thr Ser Glu Ala Ala Leu Ala Lys Leu Ser Tyr Val Leu 325 330 335 GGC CTG CCG GAG CTG AGC CTG GAG CGC AGG CAG GAG CTG CTG GCC AAG 1075 Gly Leu Pro Glu Leu Ser Leu Glu Arg Arg Gln Glu Leu Leu Ala Lys 340 345 350 GAT CTT CGC GGG GAA ATG ACA CTG CCC ACG GCA GAC CTG CAC CAG TCC 1123 Asp Leu Arg Gly Glu Met Thr Leu Pro Thr Ala Asp Leu His Gln Ser 355 360 365 TCT CCG CCG GGC AGC ACA CTG GGG CAA GGT GTC GCC CGG CTC TTT AGT 1171 Ser Pro Pro Gly Ser Thr Leu Gly Gln Gly Val Ala Arg Leu Phe Ser 370 375 380 CTG TTC GGT TGC CAG GAG GAA GAT TCG GTG CAG GAC GCC GTG ATG CCC 1219 Leu Phe Gly Cys Gln Glu Glu Asp Ser Val Gln Asp Ala Val Met Pro 385 390 395 400 AGC CTG GCC CTG GCC TTG GCC CAT GCT GGT GAA CTC GAG GCT CTG CAG 1267 Ser Leu Ala Leu Ala Leu Ala His Ala Gly Glu Leu Glu Ala Leu Gln 405 410 415 GCA CTT ATG GAG CTG GGC AGT GAC CTG CGC CTA AAG GAC TCT AAT GGC 1315 Ala Leu Met Glu Leu Gly Ser Asp Leu Arg Leu Lys Asp Ser Asn Gly 420 425 430 CAA ACC CTG TTG CAT GTG GCT GCT CGG AAT GGG CGT GAT GGC GTG GTC 1363 Gln Thr Leu Leu His Val Ala Ala Arg Asn Gly Arg Asp Gly Val Val 435 440 445 ACC ATG CTG CTG CAC AGA GGC ATG GAT GTC AAT GCC CGA GAC CGA GAC 1411 Thr Met Leu Leu His Arg Gly Met Asp Val Asn Ala Arg Asp Arg Asp 450 455 460 GGC CTC AGC CCA CTG CTG TTG GCT GTA CAG GGC AGG CAT CGG GAA TGC 1459 Gly Leu Ser Pro Leu Leu Leu Ala Val Gln Gly Arg His Arg Glu Cys 465 470 475 480 ATC AGG CTG CTG CGG AAG GCT GGG GCC TGC CTG TCC CCC CAG GAC CTG 1507 Ile Arg Leu Leu Arg Lys Ala Gly Ala Cys Leu Ser Pro Gln Asp Leu 485 490 495 AAG GAT GCA GGG ACC GAG CTG TGC AGG CTG GCA TCC AGG GCT GAC ATG 1555 Lys Asp Ala Gly Thr Glu Leu Cys Arg Leu Ala Ser Arg Ala Asp Met 500 505 510 GAA GGC CTG CAG GCA TGG GGG CAG GCT GGG GCC GAC CTG CAG CAG CCG 1603 Glu Gly Leu Gln Ala Trp Gly Gln Ala Gly Ala Asp Leu Gln Gln Pro 515 520 525 GGC TAT GAT GGG CGC AGC GCT CTG TGT GTC GCA GAA GCA GCC GGG AAC 1651 Gly Tyr Asp Gly Arg Ser Ala Leu Cys Val Ala Glu Ala Ala Gly Asn 530 535 540 CAG GAG GTG CTG GCC CTT CTG CGG AAC CTG GCA CTT GTA GGC CCG GAA 1699 Gln Glu Val Leu Ala Leu Leu Arg Asn Leu Ala Leu Val Gly Pro Glu 545 550 555 560 GTG CCG CCT GCC ATC T GATCGCCAGC AATCCCGCTG TGGTGTGAGC CACTCCGCCA 1755 Val Pro Pro Ala Ile 565 TCTGCTGCTT TGACCCACTC GAGGGACCCT AGCACACGAC CCCCCAGCAG GATGCACCCC 1815 ACTACTTAGA GTATACCCCA GGCTGGCTCA GTGACAAGCT GCAAAGGTCT TTGTTGGCAG 1875 AACAGCAATA AAGTAACTAC AGAGTGGCCA AAAAAAAAAA AAAAAAAAAA AAA 1928
【0062】配列番号:11 配列の長さ:2096 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:cDNA to mRNA ハイポテセィカル配列:No アンチセンス:No 起源 生物名:ヒト 組織の種類:肝臓 配列の特徴: 特徴を表す記号:5'UTR 存在位置:1..92 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:mat peptide 存在位置:93..1811 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:3'UTR 存在位置:1812..2096 特徴を決定した方法:S 配列 CGCCCCGGGC CTCCTCCGCG CAGTCCCTGA GTCCCGCAGG CCCTGCGTCC CCGCTGCACA 60 CCCCCGTCCA CTCCCGTGGT CCCCGGTCCG GC 92 ATG GCG CGC GCG GTG GGG CCC GAG CGG AGG CTG CTG GCC GTC TAC ACC 140 Met Ala Arg Ala Val Gly Pro Glu Arg Arg Leu Leu Ala Val Tyr Thr 1 5 10 15 GGC GGC ACC ATT GGC ATG CGG AGT GAG CTC GGC GTG CTT GTG CCC GGG 188 Gly Gly Thr Ile Gly Met Arg Ser Glu Leu Gly Val Leu Val Pro Gly 20 25 30 ACG GGC CTG GCT GCC ATC CTG AGG ACA CTG CCC ATG TTC CAT GAC GAG 236 Thr Gly Leu Ala Ala Ile Leu Arg Thr Leu Pro Met Phe His Asp Glu 35 40 45 GAG CAC GCC CGA GCC CGC GGC CTC TCT GAG GAC ACC CTG GTG CTA CCC 284 Glu His Ala Arg Ala Arg Gly Leu Ser Glu Asp Thr Leu Val Leu Pro 50 55 60 CCG GAC AGC CGC AAC CAG AGG ATC CTC TAC ACC GTG CTG GAG TGC CAG 332 Pro Asp Ser Arg Asn Gln Arg Ile Leu Tyr Thr Val Leu Glu Cys Gln 65 70 75 80 CCC CTC TTC GAC TCC AGT GAC ATG ACC ATC GCT GAG TGG GTT CGC GTT 380 Pro Leu Phe Asp Ser Ser Asp Met Thr Ile Ala Glu Trp Val Arg Val 85 90 95 GCC CAG ACC ATC AAG AGG CAC TAC GAG CAG TAC CAC GGC TTT GTG GTC 428 Ala Gln Thr Ile Lys Arg His Tyr Glu Gln Tyr His Gly Phe Val Val 100 105 110 ATC CAC GGC ACC GAC ACC ATG GCC TTT GCT GCC TCG ATG CTG TCC TTC 476 Ile His Gly Thr Asp Thr Met Ala Phe Ala Ala Ser Met Leu Ser Phe 115 120 125 ATG CTG GAG AAC CTG CAG AAG ACT GTC ATC CTC ACT GGG GCC CAG GTG 524 Met Leu Glu Asn Leu Gln Lys Thr Val Ile Leu Thr Gly Ala Gln Val 130 135 140 CCC ATC CAT GCC CTG TGG AGC GAC GGC CGT GAG AAC CTG CTG GGG GCA 572 Pro Ile His Ala Leu Trp Ser Asp Gly Arg Glu Asn Leu Leu Gly Ala 145 150 155 160 CTG CTC ATG GCT GGC CAG TAT GTG ATC CCA GAG GTC TGC CTT TTC TTC 620 Leu Leu Met Ala Gly Gln Tyr Val Ile Pro Glu Val Cys Leu Phe Phe 165 170 175 CAG AAT CAG CTG TTT CGG GGC AAC CGG GCA ACC AAG GTA GAC GCT CGG 668 Gln Asn Gln Leu Phe Arg Gly Asn Arg Ala Thr Lys Val Asp Ala Arg 180 185 190 AGG TTC GCA GCT TTC TGC TCC CCG AAC CTG CTG CCT CTG GCC ACA GTG 716 Arg Phe Ala Ala Phe Cys Ser Pro Asn Leu Leu Pro Leu Ala Thr Val 195 200 205 GGT GCT GAC ATC ACA ATC AAC AGG GAG CTG GTG CGG AAG GTG GAC GGG 764 Gly Ala Asp Ile Thr Ile Asn Arg Glu Leu Val Arg Lys Val Asp Gly 210 215 220 AAG GCT GGG CTG GTG GTG CAC AGC AGC ATG GAG CAG GAC GTG GGC CTG 812 Lys Ala Gly Leu Val Val His Ser Ser Met Glu Gln Asp Val Gly Leu 225 230 235 240 CTG CGC CTC TAC CCT GGG ATC CCT GCC GCC CTG GTT CGG GCC TTC TTG 860 Leu Arg Leu Tyr Pro Gly Ile Pro Ala Ala Leu Val Arg Ala Phe Leu 245 250 255 CAG CCT CCC CTG AAG GGC GTG GTC ATG GAG ACC TTC GGT TCA GGG AAC 908 Gln Pro Pro Leu Lys Gly Val Val Met Glu Thr Phe Gly Ser Gly Asn 260 265 270 GGA CCC ACC AAG CCC GAC CTG CTG CAG GAG CTG CGG GTG GCC ACC GAG 956 Gly Pro Thr Lys Pro Asp Leu Leu Gln Glu Leu Arg Val Ala Thr Glu 275 280 285 CGC GGC CTG GTC ATC GTC AAC TGT ACC CAC TGC CTC CAG GGG GCT GTG 1004 Arg Gly Leu Val Ile Val Asn Cys Thr His Cys Leu Gln Gly Ala Val 290 295 300 ACC ACA GAC TAT GCA GCT GGC ATG GCC ATG GCG GGA GCC GGC GTC ATC 1052 Thr Thr Asp Tyr Ala Ala Gly Met Ala Met Ala Gly Ala Gly Val Ile 305 310 315 320 TCA GGC TTC GAC ATG ACA TCG GAG GCC GCC CTG GCC AAG CTA TCG TAT 1100 Ser Gly Phe Asp Met Thr Ser Glu Ala Ala Leu Ala Lys Leu Ser Tyr 325 330 335 GTG CTG GGC CAG CCA GGG CTG AGC CTG GAT GTC AGG AAG GAG CTG CTG 1148 Val Leu Gly Gln Pro Gly Leu Ser Leu Asp Val Arg Lys Glu Leu Leu 340 345 350 ACC AAG GAC CTT CGG GGG GAG ATG ACG CCA CCC TCG GTG GAA GAG CGC 1196 Thr Lys Asp Leu Arg Gly Glu Met Thr Pro Pro Ser Val Glu Glu Arg 355 360 365 CGG CCC TCA CTG CAG GGC AAC ACG CTG GGC GGT GGG GTC TCC TGG CTC 1244 Arg Pro Ser Leu Gln Gly Asn Thr Leu Gly Gly Gly Val Ser Trp Leu 370 375 380 CTC AGT CTG AGC GGC AGC CAG GAG GCA GAT GCC CTG CGG AAT GCC CTG 1292 Leu Ser Leu Ser Gly Ser Gln Glu Ala Asp Ala Leu Arg Asn Ala Leu 385 390 395 400 GTG CCC AGC CTG GCC TGT GCT GCT GCC CAC GCC GGT GAC GTG GAG GCG 1340 Val Pro Ser Leu Ala Cys Ala Ala Ala His Ala Gly Asp Val Glu Ala 405 410 415 CTG CAG GCG CTT GTG GAG CTG GGC AGT GAC CTG GGC CTG GTG GAC TTT 1388 Leu Gln Ala Leu Val Glu Leu Gly Ser Asp Leu Gly Leu Val Asp Phe 420 425 430 AAC GGC CAA ACC CCA CTG CAC GCG GCC GCC CGG GGA GGC CAC ACA GAG 1436 Asn Gly Gln Thr Pro Leu His Ala Ala Ala Arg Gly Gly His Thr Glu 435 440 445 GCA GTC ACC ATG CTG CTG CAG AGA GGT GTG GAC GTG AAC ACC CGG GAC 1484 Ala Val Thr Met Leu Leu Gln Arg Gly Val Asp Val Asn Thr Arg Asp 450 455 460 ACG GAT GGC TTC AGC CCG CTG CTG CTG GCC GTG CGG GGC AGG CAT CCG 1532 Thr Asp Gly Phe Ser Pro Leu Leu Leu Ala Val Arg Gly Arg His Pro 465 470 475 480 GGT GTC ATT GGG TTG CTG CGG GAA GCC GGG GCC TCC CTG TCC ACC CAG 1580 Gly Val Ile Gly Leu Leu Arg Glu Ala Gly Ala Ser Leu Ser Thr Gln 485 490 495 GAG CTG GAG GAA GCA GGG ACG GAG CTG TGC AGG CTG GCA TAC AGG GCC 1628 Glu Leu Glu Glu Ala Gly Thr Glu Leu Cys Arg Leu Ala Tyr Arg Ala 500 505 510 GAC CTC GAA GGC CTG CAG GTG TGG TGG CAG GCA GGG GCT GAC CTG GGG 1676 Asp Leu Glu Gly Leu Gln Val Trp Trp Gln Ala Gly Ala Asp Leu Gly 515 520 525 CAG CCG GGC TAT GAC GGG CAC AGC GCC CTG CAC GTC GCA GAG GCA GCC 1724 Gln Pro Gly Tyr Asp Gly His Ser Ala Leu His Val Ala Glu Ala Ala 530 535 540 GGG AAC CTG GCA GTG GTG GCC TTT CTA CAG AGC CTG GAG GGT GCG GTT 1772 Gly Asn Leu Ala Val Val Ala Phe Leu Gln Ser Leu Glu Gly Ala Val 545 550 555 560 GGT GCC CAG GCC CCA TGC CCA GAA GTG CTG CCT GGT GTC TA ACCTGAAGGC 1823 Gly Ala Gln Ala Pro Cys Pro Glu Val Leu Pro Gly Val 565 570 GTCCTGCTGC AGTATAAGCC ATTCCTTCCT CCCATGACCT GCTGGAGGGG TCTCAGGCAT 1883 GACCCCACTG CTGGGGCTGC TTCCCAGCCT GCTCTCATGT AAAGCCTGAA GGCCTTTGTT 1943 GGGCAGGACG GCAATAAAGT CTCTGACATC CCCTCACCAG GTCTGTACAG CCTGGCTCTG 2003 AGAGGCTCTG TCTGGGTCCG GGACTGTGAA AAAAAAAAAA AAAAAAAAAA AAAAAAAAAA 2063 AAAAAAAAAA AAAAAAAAAA AAAAAAAAAA AAA 2096
【図面の簡単な説明】
【図1】モルモットのL−アスパラギナーゼのペプチド
マップを示す図である。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 // A61K 38/46 ABY A61K 37/54 ABY

Claims (10)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】 配列表における配列番号1又は2に示す
    アミノ酸配列を含んでなる哺乳類のL−アスパラギナー
    ゼをコードするDNA。
  2. 【請求項2】 哺乳類のL−アスパラギナーゼが配列表
    における配列番号3に示すアミノ酸配列又はそれに相同
    的なアミノ酸配列を有する請求項1に記載のDNA。
  3. 【請求項3】 哺乳類のL−アスパラギナーゼが配列表
    における配列番号4に示すアミノ酸配列又はそれに相同
    的なアミノ酸配列を有する請求項1に記載のDNA。
  4. 【請求項4】 配列表における配列番号5に示す塩基配
    列若しくはそれに相同的な塩基配列又はそれらに相補的
    な塩基配列を有する請求項1又は2に記載のDNA。
  5. 【請求項5】 配列表における配列番号6に示す塩基配
    列若しくはそれに相同的な塩基配列又はそれらに相補的
    な塩基配列を有する請求項1又は3に記載のDNA。
  6. 【請求項6】 配列表における配列番号10に示す塩基
    配列を有する請求項1、2又は4に記載のDNA。
  7. 【請求項7】 配列表における配列番号11に示す塩基
    配列を有する請求項1、3又は5に記載のDNA。
  8. 【請求項8】 遺伝子コードの縮重に基づき、配列表に
    おける配列番号3に示すアミノ酸配列を変えることな
    く、配列番号5に示す塩基配列における塩基の1個又は
    2個以上を他の塩基で置換した請求項1、2、4又は6
    に記載のDNA。
  9. 【請求項9】 遺伝子コードの縮重に基づき、配列表に
    おける配列番号4に示すアミノ酸配列を変えることな
    く、配列番号6に示す塩基配列における塩基の1個又は
    2個以上を他の塩基で置換した請求項1、3、5又は7
    に記載のDNA。
  10. 【請求項10】 モルモット又はヒトのL−アスパラギ
    ナーゼをコードする請求項1、2、3、4、5、6、
    7、8又は9に記載のDNA。
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US5854051A (en) * 1997-09-15 1998-12-29 Heska Corporation Parasitic helminth asparaginase proteins, nucleic acid molecules, and uses thereof
FR2809405B1 (fr) * 2000-05-25 2002-08-16 Ifremer Copolymeres statistiques insolubles presentant une affinite specifique envers un protiste donne, leurs utilisations et leur procede de selection

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* Cited by examiner, † Cited by third party
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JP2020530300A (ja) * 2017-08-11 2020-10-22 ザ ボード オブ トラスティーズ オブ ザ ユニヴァーシティ オブ イリノイThe Board Of Trustees Of The University Of Illinois 切断されたモルモットl−アスパラギナーゼバリアントおよび使用の方法

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