JPH07508179A - ヒトインターロイキン−１３ - Google Patents

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 ヒトインターロイキン−１３ 本発明は、ヒト免疫系に作用する組成物および方法に関する。特に、本発明は、 免疫系応答および発達を調節する核酸、タンパク質および抗体を提供する。これ らの物質の診断および治療的使用も開示する。

発明の背景 かなり長い間、哺乳動物免疫応答は、「免疫ネットワーク」と称する一連の複雑 な細胞性免疫に基いていることが知られてきた。最近の研究は、このネットワー クの内部の働きへの見通しを与えた。

応答の多くが、リンパ球、マクロファージ、顆粒球および他の細胞のネットワー ク様相互作用を必要としていることはなお明らかであるが、現在、免疫学者らは 、概して、リンホカイン、サイトカインまたはモノカインとして知られている可 溶性タンパク質がこれらの細胞相互作用を制御することにおいて重要な役割を果 たしているという見解をいだいている。

それらの重要性を考えると、新規のリンホカインを同定し且つ単離することが要 求される。

発明の概要 本発明は、一つのこのような新規のリンホカインを提供することによってこの要 求を満たす。更に詳しくは、本発明は、ヒトインターロイキン−１３（ＩＬ−１ ３）およびその使用法を提供する。

本発明は、更に、ポリペプチド自体をコードする核酸並びにそれらの製造法およ び使用法を提供する。本発明の核酸は、本明細書中に包含されたクローン化相補 的ＤＮＡ　（ｃＤＮＡ）配列に対するそれらの相同性によって、および／または 典型的にはこれらの核酸によって包含されるポリペプチドに対して用いられたＩ Ｌ−１３活性についての機能検定によって特徴付けられる。免疫応答の抑制を調 節するまたは干渉する方法を提供する。

本発明は、一部分は、ＩＬ−１３活性を有するタンパク質を発現することができ るヒトｃＤＮＡの発見およびクローニングに基いている。ｃＤＮＡクローンとし ては、部分配列および完全な長さの配列をそれぞれ含むプラスミドベクターｐベ クターは、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）技術およびインサートの配列を用い ることによって構築することができる。

本発明は、表１において開示されたヒト■Ｌ−１３の配列に対して相同のセグメ ントを含む、単離された核酸を提供する。典型的に、該セグメントは、少なくと も５０ヌクレオチドであり、しばしば、ヒトＩＬ−１３に特有の生物学的活性を 示すタンパク質、例えば、表１のアミノ酸配列をコードしている。他の実施態様 において、該セグメントは、表１において開示されたコーディング配列に対して 少なくとも８０％相同である。他の実施態様において、核酸は、第二タンパク質 を更にコードしている。本発明は、更に、該核酸を含むベクターまたは細胞を包 含する。

或いは、核酸は、表１において開示されたヒトＩＬ−１３の配列に対して相同の セグメントを含む組換え核酸でありうる。通常、これは、ヒトＩＬ−１３をコー ドしているかまたは融合タンパク質をコードしていることがある。本発明は、更 に、該核酸を含む発現ベクターなどのベクターおよび細胞を包含する。

別の実施態様において、本発明は、単離されたヒトＩＬ−１３タンパク質または ペプチドを提供する。若干の実施態様において、タンパク質は、表１に開示され た完全な長さの配列を有するかまたはその突然変異タンパク質であり、グリコジ ル化変異型などの変化した翻訳後修飾パターンを含むことがある。他の実施態様 は、ヒトＩＬ−１３のペプチドを含む融合タンパク質およびそれを含む細胞を包 含する。

もう一つの実施態様において、本発明は、グアニジンで変性されたマウスＰ６０ ０またはヒトＩＬ−１３タンパク質を再生（ｒｅｆｏｌｄ）する方法であって、 該タンパク質を６Ｍグアニジノ中に約２．５ｍｇ／ｍｌの濃度で溶解させ、グア ニジンを還元型および酸化型グルタチオン両方の存在下で何時間かにわたって約 ６０ｍＭまで希釈し；そして希釈されたグアニジノ溶液を少な（とも１２時間イ ンキュベートすることを含む上記方法を提供する。

本発明は、更に、ヒトＩＬ−１３に対して特異的に結合する抗体、例えば、マウ ス抗体、単クローン性抗体またはキメラ抗体を提供する。本発明は、更に、有効 量のヒトＩＬ−１３を単独でかまたはＩＬ−４若しくはＩＬ−１０などの別のサ イトカインとの組み合わせで試料と接触させることによって、試料中の単球若し くはＢ細胞増殖を支持するまたは前記細胞の生存度を持続する方法を提供する。

若干の実施態様において、試料中のヒ［Ｌ−１３を検出する方法であって、ヒト ＩＬ−１３を認識する結合組成物とまたはヒトＩＬ−１３をコードしている核酸 に対してハイブリッド形成する核酸と試料を接触させることによる上記方法を提 供する。結合組成物は単クローン性抗体でありうるし、試料は血液試料でありう る。

他の実施態様において、本発明は、造血系Ｂ細胞またはＴ細胞の増殖を調節する 方法であって、有効量のＩＬ−１３およびｒＬ−４組み合わせまたはＩ　Ｌ−４ アンタゴニストを含むそれらに対するアンタゴニストと前記細胞を接触させるこ とによる上記方法を提供する。造血系細胞増殖は、抗体生産細胞への細胞分化に よって達成することができる。

更に、本発明は、骨髄系前駆体細胞の増殖を調節する方法であって、有効量のヒ トＩＬ−１３、マウスＰ６００またはそれらのアゴニスト若しくはアンタゴニス トと前記細胞を接触させることによる上記方法を提供する。増殖の調節は細胞分 化を伴うことが多い。

感染またはアレルゲンに対する免疫応答を調節する方法であって、例えば、有効 量のヒトＩＬ−１３、マウスＰ６００、またはＩＬ−４アンタゴニストを含むそ れらのアゴニスト若しくはアンタゴニストを投与することによる上記方法を提供 する。更に、本発明は、骨髄系前駆体細胞の細胞生存度を持続する方法であって 、有効量のヒトＩＬ−１３、マウスＰ６００、またはＩＬ−４アンタゴニストを 含むそれらのアゴニスト若しくはアンタゴニストと、ＩＬ−４およびＩＬ−１０ を含む更に別のサイトカインとの組み合わせを前記細胞と接触させることによる 上記方法を提供する。

発明の説明 本明細書中に引用された参考文献はいずれも、参考として本明細書中に完全に包 含される。

■　概説 本発明は、本明細書中においてヒトインターロイキン−１３（ＩＬ−１３）と称 する、構造的にも生物学的にも特有の定義された性質を有するヒトインターロイ キン分子のアミノ酸配列およびＤＮＡ配列を提供する。この分子は、Ｐ２Ｏ３と 称する関連のマウスタンパク質をコードしているマウス遺伝子を用いて得られた 。

５１？法のいくつかは、例えば、マニアティス（Ｍａｎｉａｔｉｓ）ら（１９８ Ｓｐｒｉｎｇ　Ｈａｒｂｏｒ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ）、：）−ルビ・スプリン グ・ハーバ−・プレス、サムプルツク（Ｓａｍｂｒｏｏｋ）ら（１９８９）Ｍｏ ｌｅｃｕｌａｒ　Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ−ツ（Ｇｒｅｅｎ ｅ　Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ　Ａｓ５ｏｃｉａｔｅｓ）、プルツクリン、ＮＹ：ま たはオースベルら（１９８７年および定期補遺）−りに記載されているかまたは 言及されている。

ヒト遺伝子の単離には、成功の妨げになる障害があった。オリゴヌクレオチドプ ローブおよびプライマーを用いるマウスＰ６００タンパク質のヒト相同染色体を 単離する初期の試みは失敗に終わった。このような方法を用いる場合の難しさは 、正しいクローンを単離させるようにノイズ比率に対して十分なシグナルを与え る十分な長さのプローブを選択することができないことから生じることが多い。

更に、多数のマウス細胞系は、高感受性ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）技術を 用いたとしても、マウス遺伝子について検出可能レベルのｍＲＮＡを生じること ができない。

マウスおよびヒト遺伝子の相同性は比較的低い約６０％であるので、十分に高い 相同性を与えて識別可能な正のシグナルをハイブリダイゼーションによって確実 にするためには、比較的長いプローブが必要である。しかしながら、ヒト遺伝子 を単離する前に、相同性の程度を知ることまたは標的遺伝子のどの領域が、プロ ーブが選択されるべき高い相同性を示すのかを予測することは不可能であった。

実際に、様々なライブラリーから遺伝子を単離するための種々のプローブを単独 でまたは組合せで用いる多数の試みは失敗に終わった。

完全な長さよりも短い中間のクローンが単離されたライブリーは、オリゴヌクレ オチドまたはゲノムＤＮＡプローブによってスクリーニングされた場合、正しい クローンを与えることができなかった。実際に、プローブとしてゲノムマウス配 列を用いて単離されたクローンは、虚偽の陽性であることが判明した。すなわち 、それらは配列順序決定によって評価されるヒト同等物をコードしてぃなかった 。少な（とも一つの他の研究グループもまた、同様のアプローチを用いて遺伝子 を単離することに失敗した。

マウスＰ６００遺伝子に対するヒト相同染色体の単離を成功に導いた別個のアプ ローチが考案された。比較的短い長さのオリゴヌクレオチドプローブを用いる代 わりに、マウス遺伝子の完全な長さのコーディング部分にほぼ対応するプローブ を用いた。更に、ｃＤＮＡライブラリーを構築するのに用いられた細胞種は極め て重要であった。上記のように、マウス遺伝子の発現は、種々の細胞種において 劇的に変化した。本明細書中に記載の陽性のクローンを与えるｃＤＮＡライブラ リーを作成するのに用いられたヒトＢ２１細胞は、ヒト遺伝子を比較的高レベル で発現する細胞種であることが判明した。

しかしながら、このことは、初期にスクリーニングが行なわれた場合には明らか ではなかった。更に、ハイブリダイゼーションによって生じた陽性のシグナルは 、バックグラウンドと区別することが困難であった。スクリーニングにおいて用 いたハイブリダイゼーションおよび洗浄条件は極めて重要であり、やや苛酷な洗 浄条件は、陽性のシグナルを簡単に排除した。例えば、ウエトマー（Ｗｅｔｍｕ ｒ）　ら、Ｊ、Ｍｏ１ｅｃｕｌａｒ　Ｂｉｏｌｏｇ３’　３１：３４９（１９６ ８）を参照されたい。

ｐＢ２１．８ｆ２と称する最初に単離されたクローンは、完全な長さより短かっ ノ：。完全な長さのクローンの単離は、更に別のｃＤＮＡライブラリーの使用を 必要とした。したがって、ｐＡｌｏ、６６と称する完全な長さのヒトクローンの 単離には、かなりの時間と費用の投資が必要であった。マウスとヒト遺伝子間の 相同性が高い部分を知った後の、比較的短い長さのオリゴヌクレオチドプローブ を用いる単離は、現在のところ比較的簡単であると考えられる。

ヒトＩＬ−１３を単離するのに用いられた方法を、大まかに下記に記載する。

ｐＣＤベクター中で構築されたｃＤＮＡライブラリーは、ヒトＢ２１細胞がら単 離されたＲＮＡから製造された。これらの細胞は、マウスクローンを与える細胞 と同様のマーカーの多くを示すと現在のところ理解されているヒトＴ細胞である 。

いくつかの修正および特異な技術を用いて、ライブラリーをオリゴヌクレオチド によってプローブする場合のｃＤＮＡクローンの単離に関係した問題を克服した 。

特に、比較的短い長さのオリゴヌクレオチドプローブを用いる代わりに、約４０ ０ヌクレオチドの完全な長さに近い二本鎖プローブを選択した。Ｂ２１誘導ＣＩ ）　Ｎ　Ａライブラリーを用いる従来の試みは失敗したが、完全な長さに近い二 本鎖プローブは微かに陽性の／グナルを与えた。数人の経験を積んだ生物学者は 、その微かなノブナルが本物であることに極めて懐疑的であったが、これらのシ グナル追及を続け、究極的な成功に到達した。

最初のヒト単離物はマウス遺伝子に対して相補性を示したが、アミノ末端コーデ ィング部分の一部分を欠失していた。したがって、この中間の単離物は、完全な 長さのクローンよりも短かった。８２Ｆ誘導ライブラリーから完全な長さのクロ ーンを単離する試みは失敗した。しかしながら、別のｃＤＮＡライブラリーの選 択によって、完全な長さに近いヒトプローブは、完全な長さのヒトクローンの単 離を可能にした。

ｐＡｌｏ、６６クローンの完全なヌクレオチドおよび推定アミノ酸配列を表１に 示す。このヌクレオチド配列は、配列番号　１によって定義された配列に対応す る。表２は、表１の遺伝子配列をマウスＰ６００タンパク質の公開された遺伝子 配列と比較する。表３は、ヒトＩＬ（３の推定アミノ酸配列および公開されたマ ウスＰ６００アミノ酸配列を比較する。

表１：ヒトＩＬ−１３のヌクレオチドおよびアミノ酸配列。

品ごツαＤｕみス匡にａ区λ刀］スロπ：口π窺真τズπｎ−１ζに口胃＝８６ ０ｍ　ｗ　ｍ　ｗ　ＧＩＩＣ’！ＧＴＧＧ：ゴα７ａχ：ｌ’ｉＣ’！？　９２ ０人層−Ａへ髪鴨Ａ　１２９０ 表２　ヒト１Ｌ−１３およびマウスＰ６００核酸配列の比較（ヒト上段；マウス 入ＣλＧＡＴＡＡＡＡＡＡ　１２７６ 表３：ヒトＩＬ−１３およびマウスＰ６００アミノ酸配列の比較（ヒト上段；マ ウス下段）。ヒトＩＬ−１３のもう一つの形は、別のｍＲＮＡスプライシングに よって生じたアミノ酸番号９７および９８の間（１で示した位置）にＧＬＮを有 する。

ＧＬＹ　Ｐ進島圧スＰＫバ；ＹＰに■山ＰにＰにミス−−−−２６ＧＬＹ　ＬＥ Ｕ　ＡＩＡ　ＡＬＡ　ＰＲＯＧＩ＋、’Ｙ　ＰＲＯＶＡＬ　ＰＲＯＭＧ　ＳＥＲ Ｖ７１Ｌ　ｎ　ＬＥｔＪ　ＰＲＯ３０ＡＳＮ　ＧＬＮＬＹＳ　ＡＬＡ　ＰＲＯＬ ｌｍ　ＣＹＳ入玉ＧＬＹ　ＳＥＲ）ＥＴ　ＶＡＬ　ＴＲＰ　ＳＥＲｍ　５６ＡＳ Ｎｕ刀ＴＫＲにλ口、Ｙに７９ヌαＳにλ島Ｕフー皮スＵコ＝Σ　７１χえ■山 圧スＧＬ”＋’αＳ圧スに講■Σ−ＬＹＳフ但−ＭＧにゴＵ刀　８６ＡＳＮ　Ｉ ＬＥ　ＳＥＲＡＳＮＣＹＳ　ＡＳＮ　ＭＡコΣｍ　ＭＧ　’Ｉ１ｍ　ＧＩ２４　 ＡＲＧ　ＩＬＥ　ＬＥＵ　８９Ｈ工Ｓ　ＧＬＹ二ＣＹＳ　Ａ！遍に１５　ＬＹＳ に講Ｐにフ但フ但■山圧ス圧スニ１０４ＰＲＯ−−ＡＳＰ　ＴＨＲＬＹＳ　ｎＥ −ＶＸにＡ　ＨＸＳ　ＰＩＥ　ｎＥ　Ｔ）ｍ　ＬＹＳ　１１７ＬＥＴＪ　ＬＥＴ Ｊ　ＳＥＲＴＹＲＴｌ（ＲＬＹＳ　（ｕ　ＬＩＮ　ＰＨＥＮＣＨ工Ｓ　（ｍＹ　 ｉ’Ｒｏ　Ｐ）！　−１３１表３の説明に記述されたヒトＩＬ−１３の他の形の アミノ酸配列は、配列表において配列番号：２で定義されている。

本明細書中で用いられるｒｌＬ−１３Ｊという用語は、表１で示されたアミノ酸 配列を有するタンパク質若しくはペプチドセグメントまたはそのフラグメントを 含むタンパク質を示す。更に、それは、配列が与えられているＩＬ（３対立遺伝 子と同様の方式で細胞または細胞上成分に機能的に作用するポリペプチドを意味 する。それは、更に、記載されたタンパク質の対立遺伝子型および他の変異型、 例えば、代謝型を包含する。典型的に、それは、その対応する生物学的受容体に 対して高親和性で、例えば、少なくとも約１１００ｎ、通常は約３０ｎＭより多 （、好ましくは約１．ＯｎＭより多く、そして更に好ましくは約３ｎＭより多く 結合する。該用語は、更に、本明細書中において、関連した天然に存在する形態 、例えば、ヒトタンパク質の対立遺伝子型および代謝変異型を意味するのに用い られる。

本発明は、更に、表１のアミノ酸配列との実質的アミノ酸配列相同性を有するタ ンパク質またはペプチドを包含するが、マウスにおいて見出された対応するＰ６ ００タンパク質の場合とほぼ同様のまたはより少ないアミノ酸配列相同性を示す タンパク質またはペプチドはいずれも除外する。

ポリペプチド「フラグメント」または「セグメント」は、少な（とも約８アミノ 酸、一般的には少なくとも１０アミノ酸、より一般的には少なくとも１２アミノ 酸、しばしば少なくとも１４アミノ酸、更にしばしば少なくとも１６アミノ酸、 典型的には少なくとも１８アミノ酸、より典型的には少なくとも２０アミノ酸、 通常少なくとも２２アミノ酸、更に通常少なくとも２４アミノ酸、好ましくは少 なくとも２６アミノ酸、更に好ましくは少な（とも２８アミノ酸、そして特に好 ましい実施態様において、少なくとも約３０またはそれ以上のアミノ酸を有する アミノ酸残基の伸張部分である。異なるタンパク質のセグメントの配列は、適当 な長さの伸張部分にわたって互いに比較することができる。

アミノ酸配列相同性すなわち配列同一性は、残基組合せを最適化することによっ て、必要ならば、要求されるギヤツブを導入することによって決定される。例４ ３　（１９７０）：サンコツ（Ｓａｎｋｏｆｆ）ら、エユｍｅ　Ｗａｒｐｓ。

Ｓｔｒｉｎｇ　Ｅｄｉｔｓ、ａｎｄ　Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓの第１章： Ｔｈｅ　Ｔｈｅｏｒｙ　ａｎｄ　Ｐｒａｃｔｉｃｅ　ｏｆ　５ｅｑｕｅｎｃｅＣ ｏｍｐａｒｓｉｏｎ、１９８３．アデイソン・ウニスリー（Ａｄｄｉｓｏｎ−Ｗ ｃｓｌｅｙ）、リーディング、ＭＡ；ならびにインテリジエネテイクス（Ｉｎｔ 、ｅｌｌｉＧｅｎｅｔｉｃｓ）、？ランテン・ビュー、ＣＡ：およびウイスコフ ンン大学遺伝学コンピューターグループ（ｔｈｅ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙｏｆ　 Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎ　Ｇｅｎｅｔｉｃｓ　ＣｏｍｐｕｔｅｒＧｒｏｕｐｓ）、マ ディソン、Ｗ＋からのソフトウニアノ（・ソケージを参照されたい。これは、同 類置換を組合せとみなした場合に変化する。

同類置換としては、典型的に、下記の群、すなわち、グリシン、アラニン；）（ リン、イソロイノン、ロイシン：アス／＜ラギン酸、グルタミン酸：アスノくラ ギン、グルタミン：セリン、トレオニン：リシン、アルギニン：およびフェニル アラニン、チロシンの範囲内での置換がある。相同アミノ酸配列は、与えられた 配列における天然の対立遺伝子の変化を含むことを意味する。典型的な相同タン ノくり質またはペプチドは、表１のアミノ酸配列セグメントと、５０〜１００％ の相同性（ギャップを導入することができる場合）〜６０〜１００％までの相同 性（同類置換を含む場合）を有する。

相同性は、少なくとも約５０％、一般的には少なくとも５８％、より一般的１こ は少なくとも６３％、しばしば少な（とも６９％、更にしばしば少なくとも７５ ％、典型的には少な（とも８１％、更に典型的には少な（とも８６％、通常少な くとも９０％、更に通常は少なくとも９３％、好ましくは少なくとも９５％、そ して更に好ましくは少なくとも９７％、そして特に好ましい実施態様におＧ１て 少なくとも９８％またはそれ以上である。相同性の程度は、比較されるセグメン トの長さによって変化する。相同タン＜り質またはペプチド、例え：ｆ１対立遺 伝子変異型は、大部分の生物学的活性を表１の記載の実施で様と共有する。

本明細書中で用いられる「生物学的活性」という用語は、制限することなく、誘 導性細胞刺激、１ｇ生産、細胞分化若しくは細胞生存機能、まｔこ（！記載され たヒ１−ＩＬ−１３と同様のものまたは対立遺伝子変異型１こ対して生じた抗体 との受容体結合性および交差反応性のようなより構造的な性質を記載するのに用 いられる。

リガンド、アゴニスト、アンタゴニストおよび類似体という用語は、ＩＬ−１３ またはＩＬ−１３様タンパク質に対する特有の細胞性応答を調節する分子、更に は、受容体が天然の受容体または抗体である場合などのりガント−受容体相互作 用についてのより標準的な構造の結合競合の特徴を操作する分子を含む。細胞性 応答は、細胞受容体に対するＩＬ−１３の結合によって媒介されるらしい。更に 、リガンドは、前記受容体若しくはその類似体が結合する天然のリガンドとして かまたは天然のリガンドの機能的類似体である分子として働（分子である。

機能的類似体は、構造的に修飾されているリガンドであってよいしまたは適当な りガント結合決定基と相互作用する分子形状を有する全く無関係の分子であって よい。リガンドは、アゴニストまたはアンタゴニストとして働（ことができる。

例えば、グツドマン（Ｇｏｏｄｍａｎ）ら監修、Ｔ　ｈ　ｅＰｈａｒｍａｃｏｌ ｏｇｉｃａｌ　Ｂａ５ｅｓ　ｏｆＴｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ、１９９０．ペルガ モン・プレス（ＰｅｒｇａｍｏｎＰｒｅｓｓ）、ニューヨークを参照されたい。

１１　活性 ヒトＩＬ−１．３タンパク質は、多数の種々の生物学的活性を有する。ヒトＩＬ −１３は、マウスＰ６００タンパク質に対して相同であるが、構造的には異なる 。

例えば、ヒトＩＬ、−１３遺伝子コーディング配列は、マウスＰ６００ヌクレオ チドコーディング配列と約５０％しか相同でない。アミノ酸レベルでは約６６％ の同一性がある。

７９２２６００分子の生物学的活性は、かなり最小限に定義された。特に、それ は、未分化のマウス骨髄細胞を刺激して分化の初期段階にさせる能力を有する。

マウスＰ６００タンパク質は、この検定においてマウス細胞およびヒト細胞両方 を活性化すると考えられる。

本開示は、更に、２６００分子を用いて発見された新規の活性を記載する。ヒト ＩＬ−１３および相同のマウスＰ６００タンパク質の間の構造の違いは、２種類 のタンパク質が同一の機能的性質を有するかどうか若干の疑いをもたらす。しか しながら、確認される活性の−握りは相同染色体間に共有されていると考えられ る。マウス細胞またはヒト細胞に対するマウスＰ６００の活性の多くは、ヒトＩ Ｌ−１３に対しても適用されると考えられる。実際に、交雑種活性は、多数の構 造的特徴が分子の機能に臨界的ではないことを示している。

特に、ヒトＩＬ−１３は、ヒト細胞に対して与えられた場合に多数の確認される 活性を示す。以下の実施例部分は、細胞の生存度、形態学、増殖および分化に対 するヒトＩＬ−１３の作用を研究するのに用いられた手順を記載する。特に、ヒ トＩＬ−４３は、Ｂ細胞、ＰＢＭＣおよびマクロファージに作用する。Ｂ細胞に 対して、サイトカインは、単独でかまたは池のサイトカインと一緒に増殖に影響 を及ぼし；細胞生存度を持続し：生存に影響を及ぼし；１２表面マーカーの変更 を引き起こし、ＣＤ４０に対して特異的な作用を有し：そしてＩｇＥスイッチン グに影響を及ぼす。

ＰＢＭＣまたはマクロファージに対して、それは形態学的変化を誘導し、細胞表 面マーカーの変化を引き起こし、酸化窒素生産に影響を及ぼし、ＩＬ−１αおよ びＩＬ−６発現に影響を及ぼし、そして抗体依存性細胞障害（ＡＤＣＣ）に影響 を及ぼす。重要なことに、Ｉ　Ｌ−４およびＩＬ−１３間の類似性は、Ｉ　Ｌ− ４の同様のアンタゴニストにその構造が基いているＩＬ−１３のアンタゴニスト をもたらす。これらの活性は、対応する機能障害を特徴とする免疫学的症状を治 療する場合に有用でありうる。例えば、Ｍｅｒｃｋ　Ｍａｎｕａｌまたはポール （Ｐａｕｌ）、Ｆｕｎｄａｍｅｎｔａｌ　Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙを参照されたい 。

大腸菌（Ｅ、ｃｏｌｉ）から製造されたマウスＰ６００は、多量のインビボ活性 マウスＢ細胞の増殖を刺激するまたは補助刺激する能力を有する。ＩＬ−４、可 溶性抗ＣＤ４０およびマウスＰ６００の組合せは、これらの細胞の増殖を誘導す る。しかしながら、多量のインビボ活性マウスＢ細胞は、若干の単球および他の 細胞を含むことがあるので、他の細胞が、観察された増殖を支持する様々な成長 因子を分泌させることがある。したがって、マウスＰ６００は、単独または池の 因子と一緒に、直接的にかまたは間接的にＢ細胞を刺激する。ヒトＩＬ−１３は 、同様の生物学的活性を示すはずである。

２、持続されたＢ細胞の生存：選択性 ＩＬ−１３は、抗原受容体によって活性化されたＢ細胞のＤＮＡ合成を促進した 。この誘導は用量依存性であり、その作用はＩＬ−１０に匹敵したが、ＩＬ−２ またはＩＬ−４よりも少なかった。作用経過時間もＩＬ−２およびＩＬ−４とは 異なった。同様に、ＣＤ４０受容体によって活性化されたＢ細胞もまた用量依存 方式で影響を受け、ＩＬ−４およびＩＬ−１０の作用に匹敵した。作用の速度論 は、ＩＬ−４またはＩＬ−１０応答とは異なる時間経過を示した。ＩＬ−１０お よびＩＬ−１３の組合せは付加的効果を示したが、ＩＬ−１３はＩＬ−４のいず れの作用も増加させたとは考えられなかった。これは、他のデータと共に、これ ら２種類のサイトカインがシグナル導入において若干の成分を共有することがあ るということを示唆したが、他のデータは作用の若干の独立性を示す。

更に具体的には、ＩＬ−１３は、各種■ｇ１特に、ＩｇＨの発現を引き起こした 。更に、ＩＬ−１３のための標的細胞集団は、ＩＬ−４の場合よりも制限される らしい。したがって、ＩＬ−４およびＩＬ−１３は多数の生物学的性質を共有す るが、それらのシグナル伝達経路は、生理学的および力学的に区別できる。

３．１ｇ生産の変更 Ｂ２１Ｔ細胞クローンによって活性化されたＢ細胞、それらの膜または抗ＣＤ４ ０は、マウスＰ６００またはヒトＩＬ−１３に対する暴露後に、変更された１ｇ 生産パターンを示すようである。ヒトＩＬ−１３を、誘導物質、例えば、活性Ｂ ２１Ｔ細胞、活性Ｂ２１Ｔ細胞からの膜または抗ＣＤ４０抗体、と−緒にＢ細胞 に対して同時投与した場合の各種Ｉｇ分子サブタイプの生産量は増加し、特にＩ ｇＥが増加した。Ｉｇ生産の変化は、１ｇＧ４および／またはＩｇＥクラススイ ッチングを含む加速された分化を示唆するものである。両方の可能性は、マウス Ｐ６００またはヒトＩＬ−１３によって引き起こされた分化作用と一致する。

ＩＬ−１３によるＩｇＥおよびＩｇＧ４合成の同様の誘導は、以下に記載のＣＤ ４０−ＬによってＢ細胞を刺激した場合に観察された。

４、ＣＤ４０に媒介されたＢ細胞増殖および分化に対する作用ＢＩＢＩＩａ増殖 に対する抗ＣＤ４０抗体またはＣＤ４０リガンドの作用は、ＩＬ−４かまたはＩ Ｌ−１３の存在下で増加した。両方のサイトカインは、それらの有意の配列ダイ バージェンスにもかかわらず、同様の作用を有した。Ｂ細胞増殖は、［ｇＭ、１ ｇＧ４、全１ｇＧおよびＩｇＧＥレベルの誘導を伴った。ＩｇＡは刺激されなか った。２種類のサイトカインは、抗ＩＬ−４抗体がＩ　Ｌ−４作用を阻止したが ＩＬ−１３作用を阻止しなかったため、異なる構造的機序によって作用すると考 えられた。ＩｇＥに対する作用は、１−１３がＩｇＥ生産の一因であり且つＩｇ Ｅに媒介されたアレルギー反応を抑制する場合の重要な因子であることを示唆し ている。

５．１ｇＥスイッチング ＩＬ−１３は、活性ＣＤ４”Ｔ細胞またはそれらの膜の存在下で培養された未分 画末梢血単核細胞（ＰＢＭＮＣ）および高度に精製されたＢ細胞による１ｇＧ４ およびｔｇＥ合成を引き起こした。ＩＬ−１３に誘導された１ｇＧ４およびＩｇ Ｅ合成は、抗Ｉ　Ｌ−４単クロ一ン性抗体（ｍＡｂ）を中和することによって影 響されなかったので、それはＩＬ−４非依存性であった。高度に精製されたｓ１ ｇＤ’Ｂ細胞は、更に、ＩＬ−１３によって１ｇＧ４およびＩｇＥを生産するよ うにに誘導されることができ、これらのイソタイプの生産は、預託されたＢ細胞 の選択的成長ではなく、１ｇＧ４および［ｇＥスイッチングに反映されたことが 示された。

ＩＬ、−４およびＩＬ−１３は、最適濃度で一緒に加えられても付加的または相 乗的な作用がなく、共通のングナリング経路が関与しているかもしれないという ことが示唆された。この見解は、ＩＬ−１３がＩＬ−４と同様に、Ｂ細胞上での ＣＤ２３発現を誘導し且つＣＤ７２、表面１ｇＭ　（ｓ　ＩｇＭ）およびクラス ＩＩ〜ＩＨＣ抗原発現を促進したという知見によって支持される。更に、ＩＬ− ４と同様に、ＩＬ−１３は、高度に精製されたＢ細胞において生殖系列ε転写を 引き起こした。総合的に、これらのデータは、ＩＬ−１３が、Ｉ　Ｌ−４に加え て、ナイーブヒトＢ細抱を効率よく支配して［ｇＧ４およびＩｇＥ生産に切り替 えさせるもう一つのＴｌ１ｌｌｌｆｉ誘導サイトカインであるということを示し た。

マウスＰ６００は、更に、付着性ヒト末梢血単核細胞の形態学的変化を引き起こ した。処理された細胞は、かなり異なる形態および小細胞のクラスターを示した 。属の細胞は寄せ集められ、クローン増殖を実証し、これらの観察は細胞増殖の 誘導と一致した。

２、細胞表面マーカーの変更 マウスＰ６００は、末梢血由来付着性細胞の細胞表面マーカーを有意に変化させ た。これらの付着性細胞は、大部分がマクロファージ前駆体などの単球であった が、更に分化した細胞種、樹状細胞および若干のＢ細胞も含まれた。

これらの付着性細胞上の細胞表面マーカーの多くは、アップレギュレートまたは ダウンレギュレートされ、または発現レベルの分散が変化していた。下記のマー カー、すなわち、ＣＤ１１ｂＳＣＤ１１ｃ、クラスＩＩＭＨＣ（単クローン性抗 体Ｑ５／１３またはＰｄＶ５．２の結合によって測定される）　、ＣＤ２３およ びＣＤ１８は、細胞毎の基準で増加する傾向があった。対照的に、下記、すなわ ち、ＣＤ３２、ＣＤ１６、ＩＬ−２ＲαおよびＣＤ１４の細胞毎の発現は減少し た。細胞毎の発現の均一性は、ＣＤ３２およびＣＤ１４について変化した。ＣＤ １ｌα、ＣＤ５４およびＣＤ５８については変化がなかった。一つの場合におい てＣＤ４４およびクラスＩ　ＭＨＣについては変化がなかったが、他の実験では 発現レベルの増加が示された。

これらの発現レベルの変化は、１０日目でも検出可能であり、若干の場合におい て、一層側的なシフトが示されたが、他のものはより小さいシフトを示した。

細胞のサブセットに応じて、１０日目までにいくつかの特徴が失われることがあ る。

マウスＰ６００およびヒトＩＬ−１３の配列ダイバージェンスにもかかわらず、 ２種類の分子は、付着性ヒト細胞において同様の変化を引き起こすと考えられた 。

分子の一方について見出された活性は、もう一方によっても見出されると考えら れる。更に、分子は交雑種活性を示すと考えられ、例えば、マウスＰ６００はヒ ト細胞上で活性であり且つヒトＩＬ−１３はマウス細胞上で活性であった。　３ ゜酸化窒素合成 ＩＬ−１３（Ｐ２Ｏ３）を、ＧＭＣ３Ｆに誘導された骨髄マクロファージによる 酸化窒素（Ｎｏ）の生産に対する、そのＬＰＳに刺激された阻害作用によって検 定した。ＩＦＮ−γはＮｏ生産を引き起こしたが、ＩＬ−４またはＩＬ−１３は Ｎｏ生産を阻害した。

４、ＩＬ−１−α、ＩＬ−６、ＩＬ−１０およびＴＮＦ−α生産に対する作用Ｉ 　Ｌ−４およびＩＬ−１３は、ＬＰＳに活性化されたヒト単球によるＩＬ−１α 、ＩＬ−６、ＩＬ−１０およびＴＮＦ−αの生産を阻害した。ＬＰＳに活性化さ れたヒト単球によるサイトカイン生産に対するＩＬ−４およびＩＬ−１３の阻害 作用は、ＩＬ−４およびＩＬ−１３が、中和性抗ＩＩ、−１０ｍＡｂ　１９Ｆ１ の存在下においてＩＬ−１α、ＩＬ−６およびＴＮＦ−αの生産を阻害したこと から、ＩＬ−１０とは無関係であった。

５、抗体依存性細胞障害 ＩＬ−１３は、単球の表現型を有意に変化させた。ＩＬ−４と同様、それは、Ｃ Ｄ１１ｂＳＣＤ１１ｃＳＣＤ１８、ＣＤ２９、ＣＤ４９ｅ　（ＶＬＡ−５）　、 クラスＩ　Ｉ　ＭＨＣ，ＣＤ１３およびＣＤ２３の発現を促進したが、それは、 ＣＤ６４、ＣＤ３２、ＣＤ１６およびＣＤ１４の発現を用量依存方式で低下させ た。

１１−１３は、クラスＩＩＭＨＣ抗原のアップレギュレーションを引き起こし、 ＣＤ６４、ＣＤ３２およびＣＤ１６発現に対するそのダウンレギュレーション作 用はＩｆ、−１０によって妨げられた。

ＩＦＮ−γも、ＩＬ−１３に誘導されるＣＤ６４のダウンレギュレーションを部 分的に妨げることがあったが、ＣＤ３２およびＣＤ１６については妨げなかった 。しかしながら、ＩＬ−１３は、抗１ｇＤ被覆Ｒｈ”赤血球に対するヒト単球の 自発的およびｆｔ、−１，０またはＩＦＮ−γに誘導された抗体依存性細胞障害 （ＡＤＣＣ）活性を強く阻害し、単球の細胞障害活性が阻害されたことを示した 。

これらの結果は、ＩＬ−１３が抗炎症性および免疫調節活性を有することを示し ｈｌＬ−４，Ｙ１２４Ｄアンタゴニストが、ｈ　ｌ　Ｌ−４およびＩＬ−１３両 方のＴＦ−１細胞に対する生物学的作用を競合的に阻害したという知見は、ＩＬ −４ＲおよびＩＬ−１３Ｒ間の関係を実証した。ＴＦ−１細胞に対する１１２５ −ｈｌＬ−４結合について競合するｍ１Ｌ−１，３の能力は、ＩＬ−４Ｒおよび ＩＬ−１３Ｒの共通性（ｃｏｍｍｏｎａｌｔｙ）を確証した。この同類関係は、 更に、ｈｌＬ−４およびＩＬ−１３によって引き出されることが知られている同 様の生物学的応答から、そしておそらくはヒトおよびマウス双方のＩＬ−４およ びＩＬ−１３遺伝子の密接な連鎖から予想することができる。例えば、モーガン （Ｍｏｒｇａｎ）ら、Ｎｕｃｌｅｉｃ、Ａｃ１ｄｓ　Ｒｅｓ、２０：５１７３　 （１９９２）および本明細書中の他の実験を参照されたい。上記知見を簡単に説 明すると、ＩＬ−４およびＩＬ−１３は同一の受容体によって作用するというこ とであろう。

Ｄ、生物学的関連性 マウスＰ６００タンパク質は、多量のインビボ活性Ｂ細胞の増殖を持続するかま たは促進することができる。このことから、因子は、活性Ｂ細胞増殖を促進する のに有用な刺激性かまたは補助刺激性因子であると考えられる。したがって、１ １、、−１３は、活性Ｂ細胞増殖が望まれる状況において有用な因子であると予 想される。

これらとしては、遺伝的、発生上または後天性免疫系欠損症、例えば、先天性ア グロプリネミアス（ａｇｌｏｂｕｌ　ｉｎｅｍｉａｓ）、未熟児または化学療法 患者がある。インビトロ実験を、ＩＬ−１３が有する作用を決定するために実施 した。特に、種々の免疫学的検定のための用量応答関係を、本発明の組成物を用 リー、ニューヨークを参照されたい。

増殖応答に関して、マウスＰ６００は単球細胞の形態を変化させる。単球細胞は 、主としてマクロファージ前駆体から成り、同様の結果は、末梢血以外の器官ま たは組織において見出される単球同等物、例えば、アヴエオラ（ａｖｅｏｌａｒ ）、腹腔内または牌臓／リンパマクロファージ前駆体に当てはまるはずである。

ＩＬ−１３またはアンタゴニスト、例えば、抗体またはＩＬ−４アンタゴニスト は、限局性または全身性免疫応答の調節が望まれ且つ適切である症状について示 されるであろう。クラスＩＩＭＨＣに対する作用は、これらの文脈に特に関連し ている。

成長因子／補因子活性の他に、ヒトＩＬ−１３は、免疫系の様々な細胞の分化に も影響を及ぼす。例えば、活性Ｂ細胞において、それは１ｇ生産性細胞の分化を 加速または促進する。それは、Ｂ細胞に、より遅いまたはより速い分化に特有の １ｇ分子を生産させる。このことから、ヒトＩＬ−１３およびマウスＰ６００は Ｂ細胞のための分化因子であると考えられる。

したがって、１ｇ生産は、ＩＬ−１３単独によってまたは他の因子との組合せで 調節できるはずである。アゴニストおよびアンタゴニストは、適当な量のおよび スケジュールで与えられた場合、異常なり細胞状態を処理若しくは制御する場合 に、または適当な場合にはＢ細胞分化を加速若しくは減速させるのに有用である 。　更に、末梢血単球は、ヒトＩＬ−１３およびマウスＰ６００両方の存在に対 して感受性である。主としてマクロファージ前駆体および更に分化した細胞種か ら成るこれらの細胞は、増殖応答および分化応答の両方を示す。

一つの状況において、ＩＬ−４は抗腫瘍状態において、例えば、腫瘍に対抗する 内因性応答を刺激するのに適当であり、ＩＬ−１３は有用な治療薬でもあるべき である。増殖障害についての別の状況において、免疫機能が典型的に傷つけられ ている放射線療法または化学療法後に、ＩＬ−１３は残っている免疫機能の回復 および分化を促進することによって機能を修復するのに有用であると考えられ様 の問題は、移植の状況において、更には新生児の場合などの他の遺伝的または実 際に、これらの状況下で免疫機能の修復を促進する場合のＩＬ−１３の役割は、 観察される細胞マーカーの変化によって支持される。細胞マーカーの差異に関し て、一般的な傾向は、クラスＩＩ　Ｎ１ＨＣマーカーが影響を受けることである 。更に、ＣＤ２３が影響を受ける。クラスＩＩＭＨＣマーカーに対する影響は、 感染に対する全身応答性が、ＩＬ−１３若しくはマウスＰ６００またはそのアゴ ニスト若しくはアンタゴニストによって調節されうろことを示している。

ＣＤ３２およびＣＤ１６において観察された減少は、感染に対して低減された応 答と相互関係があると考えられるＩｇＧ　Ｆｃについての低下した受容体を示し た。そのような場合、ＩＬ−１３アンタゴニストまたはマウスＰ６００アンタゴ ニストは、免疫グロブリンに媒介された応答を刺激するのに有用であると考えら れる。このアンタゴニスト活性は、増加したＦｃγ受容体発現並びに感染性粒子 のオプソニン作用およびクリアランスの機能的増加をもたらすことができた。

ＩＬ−１３に対するアンタゴニスト、例えば、抗体またはＩＬ−４アンタゴニス トは、Ｂ細胞成長および増殖の調節のために、おそらくは過剰の体液性免疫に反 映させるために示されると考えられる。様々な自己免疫状態または高免疫グロブ リン血症は、規定のスケジュールにわたって投与された適当量のアンタゴニスト による治療に対して応答するはずである。ＩＬ−４アンタゴニストは、ＩＬ−１ ３作用に好ましいアンタゴニストである。

ＩＬ−１３は、細胞−細胞接触などの細胞付着に関係があるＣＤＩＩマーカー発 現の変化を媒介する。したがって、ＣＤ１１の増加は、細胞相互作用およびそれ に由来する機能的成果を容易にするはずである。スブリンガー（Ｓｐｒｉｎｇｅ ｒ）　ら、Ｌｅｕｋｏｃｙｔｅ　ＡｄｈｅｓｉｏｎＭｏｌｅｃｕｌｅｓ、１９８ ８．スプリンガー・フェアラーク（Ｓｐｒ　ｊｎｇｅｒ−Ｖｅｒ　ｌａｇ）　、 二、−Ｅ−りを更に参照されたい。

ＩＬ−４と同様に、ＩＬ−１３は、１ｇＧ４およびＩｇＥスイッチング並びに１ ｇＧ４およびＩｇＥ合成を引き起こす。ＩｇＥ抗体はアレルギー反応の主要な媒 介物質である。ＩｇＥイソタイプのアレルゲン特異的抗体は、マスト細胞および 好塩基性細胞上のＩｇＥに対する高親和性Ｆｃ受容体（ＦｃεＲ１）に対して結 合する特異的能力を有する。これらの受容体結合ＩｇＥ抗体に対する適切なアレ ルゲンの結合は、受容体の架橋並びにマスト細胞および好塩基性細胞の活性化を 引き起こす。この結果、これらの細胞の脱顆粒力拐１き起こされ且つアレルゲン 反応の媒介物質、例えば、鼻気道、肺、腸および皮膚などの各種標的器官におい て即時型過敏症反応を引き起こすヒスタミン、プロスタグランジンおよびプロテ アーゼが放出される。

更に、ＩＬ−１３はＩＬ−４と同様、Ｂ細胞および単球上のＩｇＥに対する低親 和性受容体（ＦｃεＲ１１すなわちＣＤ２３）を発現させ、そして可溶性の形の ＣＤ２３を引き続き放出させる。可溶性ＣＤ２３は、ＩｇＥの生産を増加させ９ ９２）を参照されたいコ。したがって、ＩｇＥ合成および可溶性ＣＤ２３生産の ダウンレギュレーションは、ＩｇＨに媒介されたアレルギー疾患を軽減するかま たは阻止する。抗体などのＩＬ−４および／またはＩＬ−１３アンタゴニスト、 またはＩＬ−４／！Ｌ−１３受容体結合について競合するＹ１２４Ｄのような！ Ｌ−４突然変異体タンパク質若しくは同様の突然変異体ＩＬ−１３タンバグ質は 、ＩｇＥ生産を阻止するのに有用であろう。

ＩＩｌ、核酸 本発明は、これ若しくは近縁のタンパク質をコードする単離された核酸またはそ のフラグメント、或いはこれらのフラグメントを用いて、生物学的活性に対応し たポリペプチドをコードすることを考える。更に、本発明は、特有のＩＬ−１３ 活性を有する生物学的に活性なタンパク質またはポリペプチドをコードする単離 されたまたは組換え体のＤＮＡに関する。典型的に、核酸は、適当な条件下にお いて、表１に示された核酸配列セグメントとハイブリッド形成することができる 。

上記の生物学的に活性なタンパク質またはポリペプチドは、完全な長さのタンパ ク質またはフラグメントであることができ、典型的に、表１に示されたものと極 めて相同のアミノ酸配列のセグメントを有する。更に、本発明は、開示されたＩ Ｌ−１３タンパク質に対して相同であるフラグメントを有するタンパク質をコー ドする、単離された若しくは組換え体核酸またはそのフラグメントの使用に関す る。単離された核酸は、５′〜３′フランク中にそれぞれの！１１ｗＪ配列、例 えば、プロモーター、エンハンサ−、ポリＡ付加シグナルおよび天然遺伝子由来 の他のものを有することができる。

「単離された」核酸は、ＲＮＡ、ＤＮＡ、または実質的に純粋である、例えば、 最初の種に由来するリポソーム、ポリメラーゼおよびフランキングゲノム配列な どの天然の配列を当然ながら伴う池の成分から分離された混合ポリマーなどの核 酸である。上記用語は、天然に存在する環境から取出された核酸配列を包含し、 さらに、それによって天然に存在する組成とは区別しうる組換え体またはクロー ン化ＤＮＡ単難物および化学的に合成された類似体または異種の系によって生物 学的に合成された類似体を含む。実質的に純粋な分子は、完全にかまたは実質的 に純粋な分子の単離された形を含む。

単離された核酸は、概して、分子の均一組成物であるが、若干の実施態様におい て、好ましくは僅かな不均一性を含む。この不均一性は、典型的に、ポリマー末 端でまたは望ましい生物学的機能若しくは活性に対して臨界的でない部分で見出 される。

「組換え体」核酸は、その製造法によってかまたはその構造によって定義される 。その製造法に関して、例えば、生成物がある方法によって製造されたその方法 は、ヌクレオチド配列中に人間の介入を必要とする組換え核酸技術の使用である 。典型的に、この介入はインビトロ操作を必要とするが、ある種の状況下におい てそれは、より古典的な動物の繁殖技術を含むことができる。

或いは、それは、本来は互いに隣接していない２種類のフラグメントの融合を含 む配列を生じることによって製造された核酸でありうるが、それらの自然の状態 で見出されるような天然に存在する突然変異体などの自然の生産物を排除するこ とを意味する。したがつて、例えば、任意の天然に存在しないベクターによって 細胞を形質転換することにより製造された生成物は、任意の合成オリゴヌクレオ チド法を用いて誘導された配列を含む核酸と同様に包含される。このような方法 は、しばしば、同一のまたは同類のアミノ酸をコードしている重複コドンによっ てコドンを置換するように行なわれるが、典型的には、制限酵素配列認識部位を 導入するかまたは除去する。

更に別の方法において、その方法は、望ましい機能の核酸セグメントを互いに結 合して、融合タンパク質をコードするような一般的に入手可能な自然の形で見出 されない望ましい機能組合せを含む単一遺伝物質を生じるように行なわれた。

制限酵素認識部位は、しばしば、このような人工的操作の標的であるが、その他 の部位特異的標的、例えば、プロモーター、ＤＮＡ複製部位、調節配列、制御配 列または他の有用な特徴を設計によって組み込むことができる。

同様の概念は、組換え体、例えば、融合ポリペプチドにも向けられる。具体的に 挙げられるのは、遺伝コード重複によってインターロイキンのフラグメントと同 様のポリペプチドをコードする合成核酸、および種々の異なるインターロイキン または関連分子、例えば、成長因子からの配列の融合である。

核酸の文脈中の「フラグメント」は、少なくとも約１７ヌクレオチド、一般的に は少な（とも２０ヌクレオチド、より一般的には少なくとも２３ヌクレオチド、 普通は少なくとも２６ヌクレオチド、更に普通は少な（とも２９ヌクレオチド、 しばしば少なくとも３２ヌクレオチド、更にしばしは少なくとも３５ヌクレオチ ド、典型的に少なくとも３８ヌクレオチド、更に典型的に少なくとも４１ヌクレ オチド、通常少なくとも４４ヌクレオチド、更に通常少なくとも４７ヌクレオチ ド、好ましくは少なくとも５０ヌクレオチド、更に好ましくは少なくとも５３ヌ クレオチドの隣接したセグメントであり、そして特に好ましい実施態様において は、少なくとも５６ヌクレオチドまたはそれ以上である。典型的に、異なる遺伝 子配列の７ラグメントは、適当な長さの伸張部分にわたって互いに比較すること ができる。

ＩＬ−１３をコードする核酸は、例えば、別の個体からの、ＩＬ−１３または近 縁のタンパク質をコードする遺伝子、ｍＲＮＡおよびｃＤＮＡ種、並びに対立遺 伝子または他の遺伝子変異体をコードするＤＮＡを識別するのに特に有用である 。このようなスクリーニングに好ましいプローブは、別個の対立遺伝子変異体間 に保存されるインターロイキンの部分であり、好ましくは、完全な長さまたはそ れに近いものである。池の場合において、対立遺伝子特異的配列が更に有用であ る。

本発明は、更に、本明細書中に示された単離されたＤＮＡと同一のまたは極めて 相同の核酸配列を有する組換え体核酸分子およびフラグメントに関する。特に、 配列は、しばしば、転写、翻訳およびＤＮＡ複製を制御するＤＮＡセグメントに 対して機能的に結合される。これらの付加的セグメントは、典型的に、望ましい 核酸セグメントの発現を助ける。

相同核酸セグメントは、互いにまたは表１の配列と比較された場合、有意の類似 性を示す。核酸の相同性についての基準は、配列比較による当該技術分野におい て一般的に用いられる相同性の尺度であるかまたはハイブリダイゼーション条件 に基く。比較ハイブリダイゼーション条件は、以下に更に詳細に記載される。

核酸配列比較の文脈中の「実質的相同性」は、セグメントかまたはそれらの相補 鎖が、比較された場合、適当なヌクレオチド挿入または欠失によって最適に配列 された場合に、ヌクレオチドの少なくとも約６０％、概して少なくとも６６％、 普通少な（とも７１％、しばしば少なくとも７６％、更にしばしば少なくとも８ ０％、通常少な（とも８４％、更に通常少なくとも８８％、典型的に少なくとも ９１％、更に典型的に少なくとも約９３％、好ましくは少なくとも約９５％、更 に好ましくは少な（とも約９６〜９８％またはそれ以上において同一であり、そ して具体的な実施態様においてヌクレオチドの約９９％またはそれ以上の高率で 同一であることを意味する。

或いは、実質的相同性は、セグメントが選択的ハイブリダイゼーション条件下に おいである鎖またはその相補鎖に対して、典型的には表１に由来する配列を用い てハイブリッド形成する場合に存在する。典型的に、選択的ハイブリダイゼーシ ョンは、少なくとも約１４ヌクレオチドの伸張部分にわたって少な（とも約５５ ％の相同性、更に典型的には少なくとも約６５％、好ましくは少な（とも約７５ ％、そして更に好ましくは少なくとも約９０％の相同性がある場合に生じる。

カネヒサ（Ｋａｎｅｈｉｓａ）、Ｎｕｃｌｅｉｃ　Ａｃ１ｄｓ　Ｒｅｓ、１２： ２０３　（１９８４）を参照されたい。

記載されたような相同性比較の長さは、更に長い伸張部分にわたることがあり、 若干の実施態様において、少な（とも約１７ヌクレオチド、概して少な（とも約 ２０ヌクレオチド、普通少なくとも約２４ヌクレオチド、通常少な（とも約２８ ヌクレオチド、典型的に少なくとも約３２ヌクレオチド、更に典型的に少なくと も約４０ヌクレオチド、好ましくは少なくとも約５０ヌクレオチド、そして更に 好ましくは少なくとも約７５〜１００ヌクレオチドまたはそれ以上の伸長部分に わたる。

ハイブリダイゼーション文脈中の相同性に関する緊縮（ｓｔｒｉｎｇｅｎｔ）条 件は、ハイブリダイゼーション反応において典型的に制御される塩、温度、有機 溶媒および池のパラメーターの条件を組合せた緊縮である。緊縮温度条件は、通 常、約３０℃を越える、更に通常約３７℃を越える、典型的に約４５°Ｃを越え る、更に典型的に約５５℃を越える、好ましくは約６５℃を越える、そして更に 好ましくは約７０℃を越える温度を含む。緊縮塩条件は、普通、約１０００ｍＭ 未満、通常約５００ｍＭ未満、更に通常約４００ｍＭ未満、典型的に約３００［ １１Ｍ未満、好ましくは約２００ｍＭ未満、そして更に好ましくは約１５０ｒｎ Ｍ未満である。

しかしながら、パラメーターの組合せは、任意の単一パラメーターの目安よりも はるかに重要である。例えば、ウェトマ−（Ｗｅｔｍｕｒ）ら、Ｊ、Ｍｏ１．Ｂ ｉｏｌ　−３１：３４９　（１９６８）を参照されたい。

単離されたＤＮＡは、ヌクレオチド置換、ヌクレオチド欠失、ヌクレオチド挿入 およびヌクレオチド伸張部分の逆位によって容易に修飾することができる。これ らの修飾は、このタンパク質をコードする新規のＤＮＡ配列、その誘導体または ＩＬ−１３活性を有するタンパク質を生じる。これらの修飾された配列は、突然 変異体タンパク質（突然変異タンパク質）を生産するのにまたは変異体積の発現 を促進するのに用いることができる。促進された発現は、遺伝子増幅、増加され た転写、増加された翻訳および他の機序を伴うことがある。このような突然変異 体ＩＬ−１３誘導体としては、タンパク質の予め決定されたまたは部位特異的突 然変異遺伝子またはそのフラグメントがある。

本明細書中で用いられる［突然変異体ＩＬ−１３Ｊは、欠失、置換または挿入に よってであろうとなかろうと、天然に見出されるようなヒトＩＬ−１３のものと は異なるアミノ酸配列を有する以外、他の点では前記に示されたようなヒト■工 、−１３の相同性定義の範囲内にあるポリペプチドを包含する。特に、「部位特 異的突然変異体ＩＬ−１３Ｊは、表１のタンパク質との実質的相同性を育するタ ンパク質を包含し、典型的に、本明細書中で開示された形の生物学的活性の大部 分を共有する。

部位特異的突然変異部位は予め決定されているが、突然変異体は部位特異的であ る必要はない。ヒ１−ＩＬ−１３突然変異誘発は、発現と共役した遺伝子中のア ミノ酸挿入または欠失を生じさせることによって達成することができる。買換、 欠失、挿入または任意の組合せは、最終構築物に到達するように生じさせること ができる。挿入は、アミノ−またはカルボキシ末端融合を含む。ランダム突然変 異誘発は、標的コドンで行なうことができ、次に、発現されたヒトＩＬ−１３突 然変異体を望ましい活性についてスクリーニングすることができる。既知の配列 を有するＤＮＡの予め決定された部位で！換突然変異させる方法は、例えば、Ｍ １３プライマー突然変異誘発により、当該技術分野において周知である。サムプ ルツクら（１９８９）およびオースベルら（１９８７および定期補遺）を更に参 照されたい。

ＤＮＡの突然変異は、通常、コーディング配列を読み枠からはずして配置すべき ではなく、好ましくは、ハイブリッド形成してループまたはヘアピンなどの二次 ｍＲＮＡ構造を生じうる相補的部分を生じることはない。

ビューケーン（Ｂｅａｕｃａｇｅ）ら、Ｔｅｔｒａ、Ｌｅｔｔｓ、２２＋１８５ ９　（１９８１）によって記載されたホスホルアミダイト法は、適当な合成りＮ Ａフラグメントを生じる。二本鎖フラグメントは、しばしば、相補鎖を合成し且 つ適当な条件下で鎖を一緒にアニーリングすることによってかまたはＤＮＡポリ メラーゼを適当なプライマー配列と一緒に用いて相補鎖を加えることによって得 られる。

ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）技術は、しばしば、突然変異誘発において用い ることができる。或いは、突然変異誘発プライマーは、規定の突然変異を予め決 定された部位で生じさせるために一般的に用いられる方法である。

ＩＶ、　タンパク質、ペプチド 前記のように、本発明は、配列が表１に開示され且つ前記のヒトＩＬ−１３を包 含する。対立遺伝子および他の変異体も包含される。

ポリペプチド文脈中の「実質的に純粋な」は、典型的に、タンパク質が他の混入 タンパク質、核酸、および最初の起源生物に由来する他の生物物質を含まないこ とを！味する。純度は、標準法によって検定することができ、普通は、少なくと も約４０％純粋、更に普通は少なくとも約５０％純粋、一般的には少なくとも約 ６０％純粋、より一般的には少なくとも約７０％純粋、しばしば少なくとも約７ ５％純粋、更にしばしば少なくとも約８０％純粋、典型的に少なくとも約８５％ 純粋、更に典型的に少なくとも約９０％純粋、好ましくは少なくとも約９５％純 粋、更に好ましくは少な（とも約９８％純粋、そして最も好ましい実施態様にお いて少なくとも約９９％純粋である。分析は、例えば、ゲル染色、分光測光また は末端標識法によって評価される重量またはモル百分率でありうる。

本発明は、更に、このヒトタンパク質からのセグメントを用いる異種融合タンパ ク質などの組換え体タンパク質を提供する。異種融合タンパク質は、当然ながら 、通常は同様の方式で融合されないタンパク質またはセグメントである。したが って、成長因子とインターロイキンとの融合生成物は、単一翻訳生成物として典 型的に製造される、典型的なペプチド結合で融合された配列を有し且つそれぞれ の起源ペプチドに由来する性質を示す連続タンパク質分子である。同様の概念は 、異種核酸配列に当てはまる。

更に、新規の構築物は、成長因子または他のサイトカインなどの他の関連タンパ ク質からの同様の機能性または構造性ドメインを組合せることから製造すること ができる。例えば、受容体結合または他のセグメントは、種々の新規の融合ポリ ペプチドまたはフラグメント間で「交換」することができる。例えば、カニン１ ５９８５　（１９８８）を参照されたい。

したがって、新規の特異性組合せを示す新規のキメラポリペプチドは、受容体結 合特異性の機能的結合の結果として生じる。例えば、他の関連リガンド分子から の受容体結合ドメインを、このまたは関連タンパク質の他のドメインに対して加 えるかまたは置換することができる。得られたタンパク質は、しばしばハイブリ 、ド機能および性質を有する。例λば、融合タンパク質は、特定の器官に対する 融合タンパク質、例えば、牌臓細胞によって特異的に結合され且つ牌臓中の蓄積 を助けるリガンド部分を封鎖（ｓｅｑｕｅｓｔｅｒｉｎｇ）させるのに役立ちう る標的ドメインを含むことができる。

候補融合パートナ−および配列は、様々な配列データベースから、例えば、ジエ ンバンク（Ｇ　ｅ　ｎ　Ｂ　ａ　ｎ　ｋ）　、インテリンエネテイクス（Ｃ１０ ＩｎｔｅｌｌｉＧｅｎｅｔｉｃｓ）、マウンテン・ビ、：Ｌ　−（Ｍｏｕｎ　ｔ 　ａ　ｉ　ｎ＼’１ｅｓ）　、ＣＡ：およびＢＣＧ、　ウイスコフンン大学生物 工学計算グループ（Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ　ｏｆ　”ｉＶ！ＳＣＳＣ０ｎ５ｉｎ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏ　Ｃｏｍｐｕｔｉｎｇ　Ｇｒｏｕｐ）、マデイソン、Ｗ ｌから選択することができる。

ヒトＩＬ−１３の「誘導体」としては、アミノ酸配列突然変異体、グコシル化変 異体、代謝誘導体および他の化学残基との共有または凝集結合体がある。共有誘 導体は、例えば、当該技術分野において周知の手段により、ＩＬ−１３アミノ酸 側鎖中にまたはＮ−若しくはＣ末端に見出される基に対する官能基の結合によっ て製造することができる。これらの誘導体としては、制限されることな（、カル ボキシル末端の、またはカルボキシル側鎖を含む残基の脂肪族エステルまたはア ミド、ヒドロキシル基含有残基のＯ−アシル誘導体およびアミノ末端アミノ酸ま たはアミノ基含有残基、例えば、リシンまたはアルギニンのＮ−アシル誘導体を 挙げることができる。アシル基は、０３〜Ｃ１８直鎖アルキルを含むアルキル残 基の基から選択され、それによってアルカノイルアロイル種が生成される。

特に、グリコジル化酵素が挙げられ、例えば、ポリペプチドの合成およびプロセ ッシング中にまたは更に別のプロセッングエ稈においてポリペプチドのグリコリ ル化パターンを修飾することによって製造される。これを達成するための特に好 ましい手段は、このようなプロセッシングを普通に与える細胞に由来するグリコ ジル化酵素、例えば、哺乳動物グリコジル化酵素に対してポリペプチドを暴露す ることによる。脱グリコジル化酵素も考えられる。更に含まれるのは、ホスホリ ル化アミノ酸残基、例えば、ホスホチロシン、ホスホセリンまたはホスホトレオ ニンを含む他の小さな修飾を有する同様の一次アミノ酸配列の変形である。

主要な誘導体の群は、インターロイキンまたはそのフラグメントと他のタンパク 質またはポリペプチドとの共有結合体である。これらの誘導体は、Ｎ−若しくは Ｃ末端融合などの組換え培養中において、または反応性側基によるタンパク質の 架橋における有用性が当該技術分野において知られている薬剤の使用によって合 成することができる。架橋剤による好ましい誘導部位は、遊離アミノ基、炭水化 物残基およびンステイン残基のところである。

インターロイキンと他の相同または異種タンパク質との間の融合ポリペプチドを 更に提供する。相同ポリペプチドは、異なる成長因子間の融合であることができ 、例えば、複数の異なる受容体に対するリガンド特異性を示すハイブリッドタン パク質、またはその受容体に対して広げられたまたは弱められた結合特異性を有 しうるリガンドをもたらす。同様に、誘導タンパク質の組合せの性質または活性 を示すであろう異種融合を構築することができる。

典型的な例は、ルシフェラーゼなどの受容体ポリペプチドと、リガンド結合セグ メントなどの受容体のセグメントまたはドメインとの融合であり、その結果、望 ましいリガンドの存在または位置を容易に決定することができる。例えば、ダル （Ｄｕｌ＋）ら、米国特許第４，８５９，６０９号明細書を参照されたい。他の 遺伝子融合パートナ−としては、グルタチオン−８−トランスフェラーゼ（ＧＳ Ｔ）、細菌β−ガラクトンダーゼ、ｔｒｐＥ、プロティンＡ１β−ラクタマーゼ 、α−アミラーゼ、アルコールデヒドロゲナーゼおよび酵母α−接合因子がある 。例えば、ゴドウスキー（Ｇｏｄｏｗｓｋｉ）ら、５ｃｉｅｎｃｅ　２４１：８ １２　（１９８８）を参照されたい。

ビューケーンら、Ｔｅｔｒａ、Ｌｅｔｔｓ、２２＋１８５９　（１９８１）によ って記載されたホスホルアミダイト法は、適当な合成りＮＡフラグメントを生じ る。二本鎖フラグメントは、しばしば、相補鎖を合成し且つ適当な条件下で鎖を 一緒にアニーリングすることによって、またはＤＮＡポリメラーゼを適当なプラ イマー配列と一緒に用いて相補鎖を加えることによって得られる。

このようなポリペプチドは、更に、リン酸化、スルホン化、ビオチニル化、また は池の残基、特に、リン酸塩基と同様の分子形状を有する残基の付加若しくは除 去によって化学的に修飾されたアミノ酸残基を有することができる。若干の実施 態様において、修飾は有用な標識試薬であり、または親和性リガンドなどの精製 標的として役立つ。

融合タンパク質は、典型的に、組換え核酸法によってかまたは合成ポリペプチド 法によって製造することができる。概して、核酸操作および発現のための技術− ルビ・スプリング・ハーバ−・ラボラトリー：およびオースベルら（監修）、り に記載されている。ポリペプチドの合成技術は、例えば、メリーフィールド（Ｍ ｅｒｒｉｆ　１ｅｌｄ）、Ｊ、Ａｍ、Ｃｈｅｍ、Ｓｏｃ、８５：２１４９　（１ いる。

本発明は、更に、アミノ酸配列の変化またはグリコジル化以外の、ヒトＩＬ−１ ３の誘導体の使用を包含する。このような誘導体は、化学残基との共有または凝 集結合を伴うことがある。これらの誘導体は、概して、三つの種類、すなわち、 （１）塩、（２）側鎖および末端残基共有修飾および（３）細胞膜などとの吸着 複合体に分けられる。このような共有または凝集誘導体は、免疫原として、免疫 検定における試薬として、または受容体若しくは抗体などの他の結合分子のアフ ィニティー精製などのための精製法において有用である。

例えば、ヒトＩＬ−１３リガンドは、当該技術分野において周知の方法により、 臭化ノアンで活性化されたセファロース（Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ）などの固体支持 体に対して共有結合によって固定することができ、またはＩＬ−１３受容体、抗 体若しくは他の同様の分子の検定若しくは精製において用いるために、グルタル アルデヒド架橋を用いるか若しくは用いることな（、ポリオレフィン表面上に吸 着させることができる。更に、ＩＬ−１３は、希土類キレートに共有結合させた 検出可能な基、例えば、クロラミンＴ法によって放射性ヨウ素化された基によっ て標識することができ、または診断用検定において用いるために別の蛍光残基に 対して結合させることもできる。

本発明のヒトＩＬ−１３は、インターロイキンまたはその任意のフラグメントに 特異的な抗血清または抗体の生産用免疫原として用いることができる。精製イン ターロイキンは、タンパク質を含む不純な標品の様々な形を用いる免疫感作によ って製造された単クローン性抗体または抗原結合フラグメントをスクリーニング するのに用いることができる。特に、「抗体」は、天然の抗体の抗原結合フラグ メントも包含する。精製インターロイキンは、更に、高レベルの発現の存在に応 答して生じた任意の抗体または内在性サイトカインに対して抗体生産をもたらす 免疫学的障害を検出するための試薬として用いることができる。

更に、ＩＬ−１３フラグメントは、以下に記載の本発明の抗体を製造するための 免疫原として役立つことができる。例えば、本発明は、表１に示されたアミノ酸 配列、そのフラグメントまたは相同ペプチドに対して結合親和性を有するかまた はそれらに対して生じた抗体を包含する。特に、本発明は、天然のサイトカイン のタンパク質外表面において暴露されると予想されるかまたは実際に暴露される 特異的フラグメントに対して結合親和性を有するかまたはそれらに対して生じた 抗体を包含する。

これらのインターロイキンに対する生理学的応答の阻止は、競合阻害による等の 、受容体に対するリガンドの結合の阻害によって生じることができる。したがっ て、本発明のインビトロ検定は、しばしば、抗体若しくはこれらの抗体のリガン ド結合セグメント、または固相支持体に結合したフラグメントを用いる。これら の検定は、更に、結合部分突然変異および修飾かまたはりガント類似体などのり ガント突然変異および修飾の効果について診断上の確認を可能にする。

本発明は、更に、インターロイキンに対する中和抗体またはフラグメントが、受 容体または抗体に対する結合について試験化合物と競合するような競合的薬剤ス クリーニング検定の使用を包含する。この方式において、中和抗体またはフラグ メントは、受容体に対する１か所またはそれ以上の部位を共有する任意のポリペ プチドの存在を検出するのに用いることができるし、さもなくばインターロイキ ンを結合するかもしれない受容体上の結合部位を占領するのにも用いることがタ ンパク質またはそのフラグメントをコードするＤＮＡは、化学合成、ＣＤＮＡラ イブラリーのスクリーニングまたは広範囲の細胞系または組織試料から製造され たゲノムライブラリーのスクリーニングによって得ることができる。天然の配列 は、標準法を用いて単離することができ、その配列は、本明細書中において例え ば表１に与えられている。

このＤＮＡは、広範囲の宿主細胞において発現させて完全な長さのヒトインター ロイキンまたはフラグメントを合成し、これらは引き続き、例えば、多クローン 性または単クローン性抗体を生じさせるために：結合研究のために；修飾された アゴニスト／アンタゴニスト分子の構築および発現のために：および構造／機能 研究のために用いることができる。それぞれの変異体またはそのフラグメントは 、適当な発現ベクターを用いて形質転換またはトランスフェクシヨンされた宿主 細胞において発現させることができる。これらの分子は、組換え体宿主に由来す るもの以外、タンパク質または細胞性不純物を実質的に含まないことができるの で、薬学的に許容しうる担体および／または希釈剤と組み合わされた場合の薬剤 組成物において特に有用である。ヒトタンパク質またはその一部分は、他のタン パク質との融合として発現させることができる。

発現ベクターは、典型的に、適当な宿主細胞において認識される適当な遺伝制御 因子に対して通常機能的に結合した望ましい受容体遺伝子またはそのフラグメン トを含む自己復製ＤＮＡまたはＲＮＡ構築物である。これらの制御制子は、適当 な宿主中で発現させることができる。発現させるのに必要な制御制子の具体的な 種類は、用いられる最終的宿主細胞に依る。

概して、遺伝制御制子としては、原核性プロモーターシステムまたは真核性プロ モーター発現制御システムを挙げることができ、典型的に、転写プロモーター、 転写の開始を制御する任意のオペレーター、ｍＲＮＡ発現レベルを上昇させる転 写エンハンサ−１適当なリポソーム結合部位をコードする配列、並びに転写およ び翻訳を終結する配列がある。更に、発現ベクターは、通常、宿主細胞とは無関 係にベクターを複製させる複製起点を含む。

本発明のベクターとしては、記載されたようなタンパク質をコードするＤＮＡ。

または生物学的に活性な同等のポリペプチドをコードするそのフラグメントを含 むものがある。ＤＮＡは、ウィルスプロモーターの制御下にあることができるし 、選択マーカーをコードすることができる。本発明は、更に、原核性または真核 性宿主においてこの種のタンパク質をコードする真核性ｃＤＮＡを発現すること ができるこのような発現ベクターの使用を包含し、ここにおいて、該ベクターは 宿主に適合しうるし、しかも受容体をコードする該真核性ｃＤＮＡは、ベクター を含む宿主の増殖によって当のｃ　Ｄ　Ｎ　Ａが発現されるようにベクター中に 挿入される。

通常、発現ベクターは、それらの宿主細胞における安定な複製のためにまたは細 胞当りの望ましい遺伝子の全コピー数を太き（増加させる増幅のために設計され る。発現ベクターが宿生細胞中で複製することを要求する必要は必ずしもなく、 例えば、宿主細胞によって認識される複製起点を含まないベクターを用いてイン ターロイキンタンパク質またはそのフラグメントを様々な宿主において一時的に 発現さぜることは可能である。更に、ヒトタンパク質またはそのフラグメントを 組換えによって宿主ＤＮＡ中に組込ませるベクターを用いることも可能である。

本明細書中で用いられるベクターは、プラスミド、ウィルス、バタテリオファー ）、組込み可能なりＮＡフラグメント、および宿主ゲノム中へのＤＮＡフラグノ ントの組込みを可能にする他のビヒクルを含む。発現ベクターは、機能的に結合 した遺伝子を発現させる遺伝制御因子を含む特殊化されたベクターである。プラ スミドは、最も一般的に用いられる形のベクターであるが、同等の機能を果たし 且つ当該技術分野において知られているまたは知られることになる他の形のベク ターはいずれも本明細書中の使用に適当である。例えば、ボーウェルズ（Ｅｌｓ ｅｖｉｅｒ）、Ｎ、Ｙ、；およびロドリクツ（Ｒｏｄｒｉｑｕｅｚ）らバタース ワース（Ｂｕｔ　ｔｅｒｓｗｏｒｔｈ）　、ボストンを参照されたい。

形質転換された細胞は、組換えＤＮＡ技術を用いて構築された受容体ベクターに よって形質転換されたまたはトランスフェクションされた、好ましくは哺乳動物 の細胞である。形質転換された宿主細胞は、通常、望ましいタンパク質またはそ のフラグメントを発現するが、そのＤＮＡのクローニング、増幅および操作のた めに、問題のタンパク質を発現する必要はない。本発明は、更に、形質転換され ｔ：細胞を栄養培地中で培養し、それによってインターロイキンを培地中に蓄積 させることを包含する。タンパク質は、培養物からかまたは培地から回収するこ とができる。

本発明の目的のために、核酸配列は、それらが互いに機能的に関連している場合 に機能的に結合される。例えば、前記列または分泌リーダーのためのＤＮＡは、 それが、細胞膜に対するポリペプチドの方向付けにおいてまたはポリペプチドの 分泌においてプレタンパク質として発現されるかまたは関与する場合、ポリペプ チドに対して機能的に結合される。プロモーターは、それがポリペプチドの転写 を制御する場合にコーディング配列に対して機能的に結合され；リポソーム結合 部位は、それが翻訳を可能にするように配置される場合に、コーディング配列に 対して機能的に結合される。通常、機能的に結合されるとは、隣接しかつ読み枠 中であることを意味するが、しかしながら、リプレッサー遺伝子などのある種の 遺伝因子は隣接して結合されないが、なおオペレーター配列に結合し、引き続き 発現を制御する。

適当な宿主細胞としては、原核生物、下等真核生物および高等真核生物がある。

原核生物としては、グラム陰性およびグラム陽性両方の生物、例えば、大腸菌お よび枯草菌（Ｂ、５ｕｂｔｉｌｉｓ）がある。下等真核生物としては、酵母、例 えば、Ｓ、セレビシェ−（ｃｅｒｅｖｉｓ　１ａｅ）およびピキア属（Ｐｉｃｈ ｉａ）並びにタマホコリカビ（Ｄｉｃｔｙｏｓｔｅｌｉｕｍ）属の種がある。高 等真核生物としては、昆虫細胞および鳥類などの非哺乳動物起源と、ヒト、霊長 類および諺歯類動物などの哺乳動物起源両方の動物細胞由来の樹立された組織培 養細胞系がある。

原核性宿主−ベクター系としては、多数の異なる種について広範囲のベクターが ある。本明細書中で用いられる大腸菌およびそのベクターは、他の原核生物中で 用いられる同等のベクターを属特有に含むように用いられる。ＤＮＡを増幅する ための典型的なベクターは、ｐＢＲ３２２または多数のその誘導体である。受容 体またはそのフラグメントを発現するのに用いることができるベクターとしては 、制限されないが、ｌａｃプロモーター（ｐＵＣ−系列）；ｔｒｐプロモーター 　（ｐＢＲ３２２−ｔ　ｒｐ）；　Ｉｐｐプロモーター（ｐｌＮ−系列）；λ− ｐＰ若しくはｐＲプロモーター（ｐＯＴｓ）；またはｐｔａｃ　（ｐＤＲ５４０ ）などのハイブリッドプロモーターを含むようなベクターがある。ブロシウスＵ ｓｅｓ、（ｏドリグン（Ｒｏｄ　ｒ　ｉ　ｇｕｅ　ｚ）およびデンハート（Ｄｅ ｎｈａｒｄｔ）監修）、１９８８年、バタースワース、ボストン、第１０章、２ ０５〜２３６頁の「λ−１ｔｒｐ−１ｌａｃ−およびＩｐｐ−誘導プロモーター を用いる発現ベクター（Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ＶｅｃｔｏｒｓＥｍｐｌｏｙｉ ｎｇ　Ｌａｍｂｄａ−、ｔｒｐ−，１ａｃ−、ａｎｄ　Ｉｐｐ−ｄｅｒｉｖｅｄ 　Ｐｒｏｍｏｔｅｒｓ）Ｊを参照されたい。

下等真核生物、例えば、酵母およびタマホコリカビは、ＩＬ−１３Ｅ３’ｌ含有 ベクターによって形質転換することができる。本発明の目的のために最も一般的 な下等真核生物宿主は、パン酵母サツカロミセス・セレビシェ−（Ｓａｃｅｈａ ｒｏｍｙｃｅｓ　ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）である。それは下等真核生物を属特有 に示すのに用いられるが、多数の他の菌株および種も利用可能である。酵母ベク ターは、典型的に、複製起点（組込み種以外に）、選択遺伝子、プロモーター、 受容体をコードするＤＮＡまたはそのフラグメント並びに翻訳終結、ポリアデニ ル化および転写終結のための配列から成る。

酵母に適当な発現ベクターとしては、３−ホスホグリセレートキナーゼのような 構成的プロモーターおよび様々な他の解糖酵素遺伝子プロモーターまたはアルコ ールデヒドロゲナーゼ２プロモーター若しくはメタロチオニンプロモーターのよ うな誘導プロモーターがある。適当なベクターとしては、下記の種類、すなわち 、自己複製低コピー数（例えば、ＹＲｐ−系列）、自己複製高コピー数（例えば 、ＹＥｐ−系列）７組込み種（例えば、ＹＩｐ−系列）またはミニクロモソーム （例えば、ＹＣｐ−系列）の誘導体がある。

高等４核生物組織培養細胞は、通常、機能的に活性なインターロイキンタンパク 質の発現に好ま［、い宿主細胞である。原則として、任意の高等真核生物組織培 養細胞系は、非を椎動物起源由来であろうとを椎動物起源由来であろうと、操作 可能な、例んば、昆虫バキュロウィルス発現系である。しかしながら、哺乳動物 細胞か好ましい。このような細胞の形質転換またはトランスフェクションおよび 増殖は、日常的な操作となってきている。有用な細胞系の例と１．では、ヒーラ 細胞、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞系、乳児ラット腎臓（ＢＲＫ ）細胞系、昆虫細胞系、鳥細胞系およびサル（ＣＯ３）細胞系がある。

このような細胞系の発現ベクターとしては、通常、複製の起点、プロモーター、 翻訳開始部位、ＲＮＡスプライス部位（ゲノムＤＮＡを用いる場合）、ポリアデ ニル化部位および転写終結部位がある。更に、これらのベクターは、通常、選択 遺伝子または増幅遺伝子を含む。適当な発現ベクターは、例えば、アデノウィル ス、ＳＶ４０、バルボウイルス、ワクシニアウィルスまたはサイトメガロウィル スからのような起源に由来するプラスミド、ウィルスまたはレトロウィルス運搬 プロモーターでありうる。適当な発現ベクターの典型的な例としては、ｐＣＤＮ ＡＩ　；　ｐＣＤ　（オカヤ７　（Ｏｋａｙａｍａ）ら、Ｍｏ１．Ｃｅ１１．Ｂ ｉｏｌ）、およびバキュロウィルスベクター、例えば、ｐＡＣ３７３またはｐＡ ｃ６１０がある。

分泌されるタンパク質のための読め取り枠は、通常、シグナルペプチドに対して ｉｓｔ　Ｎ末端に共有結合した成熟または分泌生成物から成るポリペプチドをコ ードする。シグナルペプチドは、成熟すなわち活性ポリペプチドの分泌前に開裂 される。開裂部位は、実験規則、例えば、フォノ・バイン（Ｈｅｉｊｎｅ）、Ｎ ｕｃｌｅｉｃ　Ａｃ１ｄｓ　Ｒｅ５ｅａｒｃｈ　１４：４６８３（１９８６）か ら高精度で予測することができ、シグナルペプチドの正確なアミノ酸組成は、そ の機能に対して臨界的であるとは考えられない。例えば、ランダルしばしば、特 定のまたは規定のグリコジル化パターンを与える系においてこれらのポリペプチ ドを発現させることが望まれる。この場合の通常のパターンは、当然ながら発現 系によって与えられるものである。しかしながら、パターンは、非グリコジル化 型などのポリペプチドを、異種の発現系中に導入された適当なグリコジル化タン パク質に対して暴露することによって修飾しうる。例えば、インターロイキン遺 伝子は、哺乳動物または他のグリコジル化酵素をコードする１種類またはそれ以 上の遺伝子によって共形質転換しうる。この方法を用いて、若干の哺乳動物グリ コジル化パターンは、原核生物または他の細胞中において達成される。

ヒトＩＬ−１３の起源は、前記のような、真核性または原核性宿主発現性組換え ｈｕｌＬ−１３ＤＮＡでありうる。更に、これらの起源はマウススイス（Ｓｗｉ 　ｓ　５）３Ｔ３線維芽細胞などの細胞系でありうるが、他の哺乳動物細胞系も 本発明によって包含さね、好ましい細胞系はヒト種に由来する現在、全体の配列 が知られているヒトＩＬ−１３、フラグメントまたはその誘導体は、ペプチドを 合成するための慣用法によって製造することができる。これＰｈａｓｅ　Ｐｅｐ ｔｉｄｅ　Ｓ　ｎｔｈｅｓｊｓ、１９８４．　ピアス・ケミカル・カンパ＝−（ Ｐｉｅｒｃｅ　Ｃｈｅｍｉｃａｌ　Ｃｏ、）、ｏツクフォード、ＩＬ、ボダンッ キ−（Ｂｏｄａｎｓｚｋｙ）ら、Ｔｈｅ　Ｐｒａｃｔｉｃｅｏｆ　Ｐｅ　ｔｉｄ ｅ　Ｓ　ｎｔｈｅｓｉｓ、１９８４．スプリンガー・フェアラーク、ニューヨー ク；およびボダンッキーら、工ｈｅ　Ｐｒ１ｎｃｉ　１ｅｓｏｆ　Ｐｅｐｔｉｄ ｅ　５ｙｎｔｈｅｓｉｓ、１９８４．スプリンガー・フェアラーク、ニューヨー クに記載されたような方法がある。例えば、アジド法、酸塩化物法、酸無水物法 、混合無水物法、活性エステル法（例えば、ｐ−ニトロフェニルエステル、Ｎ− ヒドロキシスクシンイミドエステルまたはシアノメチルエステル）、カルホシイ ミダゾール法、酸化−還元法またはジシクロへキシルカルボジイミド（ＤＣＣＤ ）／付加的方法を用いることができる。固相および液相合或は、両方とも前述の 方法に応用しうる。

ＩＬ−１３タンパク質、フラグメントまたは誘導体は、ペプチド合成において典 型的に用いられる上記方法にしたがって、一般的には、末端アミノ酸に対して配 列中において一つ一つアミノ酸を縮合させることを含むいわゆる段階的方法によ ってかまたはペプチドフラグメントを末端アミノ酸に結合させることによって適 当に製造される。結合反応において用いられないアミノ基は、典型的に、間違っ た位置に結合させないように保護される必要がある。

固相合成を採用した場合、Ｃ末端アミノ酸を不溶性担体または支持体に対してそ のカルボキシル基によって結合させる。不溶性担体は、それが反応性カルボキシ ル基に対する結合能力を有する限りは特に制限されない。このような不溶性担体 の例としては、ハロメチル樹脂、例えば、クロロメチル樹脂またはブロモメチル 樹脂、ヒドロキシメチル樹脂、フェノール樹脂、ｔ−アルキルオキシカルボニル ヒドラジデート樹脂等である。

アミノ基が保護されたアミノ酸を、その活性カルボキシル基と予め生成されたペ プチドまたは鎖の反応性アミノ基との縮合によって配列中に結合して、ペプチド を段階的に合成する。完全な配列を合成した後、ペプチドを不溶性担体から分製 造されたタンパク質およびそのフラグメントは、ペプチド分離手段によって、例 えば、抽出、沈殿、電気泳動、種々の方式のクロマトグラフィー等によって反応 混合物から単離し且つ精製することができる。本発明のインターロイキンは、そ の望ましい用途に応じた様々な精製度で得ることができる。精製は、本明細書中 に開示されたタンパク質精製技術の使用によってまたは本明細書中において免疫 吸着アフィニティークロマトグラフィーの方法に記載された抗体の使用によって 達成することができる。この免疫吸着アフィニティークロマトグラフィーは、最 初に抗体を固体支持体に結合させた後、結合した抗体を、適当な細胞の可溶化溶 解産物、インターロイキンを発現する他の細胞の溶解産物、または以下を参照さ れたいＤＮＡ技術の結果としてタンパク質を生産する細胞の溶解産物若しくは上 澄みと接触させることによって実施される。

概して、精製タンパク質は、少なくとも約４０％純粋、普通は少なくとも約５０ ％純粋、通常少なくとも約６０％純粋、典型的に少なくとも約７０％純粋、更に 典型的に少なくとも約８０％純粋、好ましくは少なくとも約９０％純粋、そして 更に好ましくは少なくとも約９５％純粋、そして具体的な実施態様において９７ ％〜９９％またはそれ以上である。通常、純度は重量基準であるが、モル基準で もありうる。種々の検定を適当に適用する。

Ｖｌ、抗体 抗体は、種々のヒトＩＬ−１３タンパク質およびそれらのフラグメントの天然に 存在する形およびそれらの組換え体の形の両方に対して生じることができ、その 差異は、活性リガンドに対する抗体が、天然のコンホメーションで存在している にすぎないエピトープを認識するらしいということである。天然の受容体または 抗体のアゴニストまたはアンタゴニストとして有用であると考えられる抗イデタ ンパク質の予め決定されたフラグメントに対する、結合フラグメントおよび一本 鎖変型を含む抗体は、フラグメントと免疫原性タンパク質との複合体を用いる動 物の免疫感作によって生じることができる。単クローン性抗体は、望ましい抗体 を分泌する細胞から製造される。これらの抗体は、正常のまたは欠損のあるタン パク質に対する結合についてスクリーニングするかまたはアゴニスト若しくはア ンタゴニスト活性についてスクリーニングすることができる。これらの単クロー ン性抗体は、通常、少なくとも約１ｍＭのＫＤと、更に通常少なくとも約３００ μＭ１典型的に少なくとも約１００μＭ１更に典型的に少なくとも約３０μＭ１ 好ましくは少なくとも約１０μＭ１そして更に好ましくは少なくとも約３μＭま たはそれ以上と結合する。

抗原結合フラグメントを含む本発明の抗体は、有意の診断的または治療的価値を 有することができる。それらは、インターロイキンに対して結合し且つ受容体に 対する結合を阻害するかまたは生物学的応答を引き出すヒトＩＬ−４３の能力を 阻害する有力なアンタゴニストでありうる。それらは、更に、非中和抗体として 有用でありうるし、しかも生産性細胞またはインターロイキンの起源に局在する 細胞を結合する毒素または放射性核種に対して結合しつる。更に、これらの抗体 は、薬剤または他の治療薬に対して、リンカ−によって直接的にかまたは間接的 に結合することができる。

本発明の抗体は、更に、診断用途において有用でありうる。捕捉または非中和抗 体として、それらはインターロイキンに対して受容体結合を阻害することなく結 合することができる。中和抗体として、それらは競合的結合検定において有用で ありうる。更に、それらはＩＬ−１３を検出するのにまたは定量するのに有用で ある。

タンパク質フラグメントは、他の物質、特に、免疫原として用いられる融合した または共有結合したポリペプチドのようなポリペプチドに対して結合することか できる。ヒトＩＬ−１３およびそのフラグメントは、種々の免疫原、例えば、ス カシガイのヘモシアニン、ウシ血清アルブミン、破傷風トキソイド等に対して融 合するかまたは共有結合することができる。多クローン性抗血清を製造する方法 の説明については、Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏ　、ホーバー・メディカル拳ディビジ ョン（Ｈｏｅｂｅｒ　Ｍｅｄｉｃａｌ　Ｄｉｖｉｓｉｏｎ）、／’−パー（Ｈａ ｒｐａｒ）および口（Ｒｏ　ｗ）　、１９６９年：ランドスタイナ−（Ｌａｎｄ ｓｔｅｉｎｅｒ）、５ｐｅｃｉｆｉｃｉｔｙ　ｏｆＳｅｒｏｌｏ　１ｃａｌ　Ｒ ｅａｃｔｉｏｎｓ、１９６２年、ドーパ−・パブリケーシタンズ（Ｄｏｖｅｒ　 Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎｓ）、　二：ｘ、−ヨーク；およ、１巻、アカデミツク ・プレス（Ａｃａｄｅｍｉｃ　Ｐｒｅｓｓ）、　ニューヨークを参照されたい。

典型的な方法は、抗原による動物の過免疫感作を行なう。次に、動物の血液を反 復免疫感作直後に集め、そしてγグロブリンを単離する。

若干の場合、単クローン性抗体を様々な哺乳動物宿主から、例えば、マウス、奮 歯類動物、霊長類、ヒト等から製造することが望ましい。このような単クローン 性抗体を製造するための技術の説明は、例えば、スティテス（Ｓｔｉｔｅｓ）ら （監修）、Ｂａ５ｉｃ　ａｎｄ　Ｃ１１ｎｉｃａｌ　Ｉｍｍｕｎｏｌｏ　（第４ 版）、ラング・メディカル・パブリケーシタンズ（Ｌ　ａ　ｎ　ｇ　ｅＭｅｄｉ ｃａｌ　Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎｓ）、ロス・アルトス、ＣＡおよびそこに引用 された参考文献：ハーロー（）ｌａ　ｒ　ｌ　ｏｗ）ら、Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ Ａ　１ａｂｏｒａｔｏｒｙ　Ｍａｎｕａｌ、１９８８年、Ｃ８Ｈプレス；ゴーデ ィング（Ｇｏｄｉｎｇ）、Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ　Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ｐｒ １ｎｃｉｐｌｅｓ　ａｎｄ　Ｐｒａｃｔｉｃｅ（第２版）、１９８６年、アカデ ミツク・プレス（Ａｃａｄｅｍｉｃ　Ｐｒｅｓｓ）、＝ニーヨーク；そして特に 、単クローン性抗体を生じさせる一つの方法を論及しているコーラ−（Ｋｏｈｌ ｅｒ）およびミルスタイン（Ｍｉｌｓｔｅｉｎ）、Ｎａｔｕｒｅ　２５６・４９ ５　（１９７５）において見出される。

簡単にいうと、この方法は、動物に免疫原を注射することを含む。次に、その動 物を層殺し、細胞をその牌臓から取出した後、それを骨髄腫細胞と融合する。

結果は、インビトロで再現性のあるハイブリッド細胞すなわち「ハイブリドーマ 」である。つぎに、ハイブリドーマ集団をスクリーニングして、免疫原に対する 単−抗体種を分泌するそれぞれの個々のクローンを単離する。この方式において 、得られた個々の抗体種は、免疫原性物質上で！！！識された特定部位に応答し て生じた免疫動物からの不死化され且つクローン化された単−Ｂ細胞の生産物で ある他の適当な技術は、抗原性ポリペプチドに対する、或いはファージまたは同 様のベクター中の抗体のライブラリーの選択に対するリンホサイトのインビトロ 暴９）を参照されたい。本発明のポリペプチドおよび抗体は修飾を伴ってまたは 伴うことなく用いることができ、キメラまたはヒト化抗体がある。

しばしば、ポリペプチドおよび抗体は、検出可能なシグナルを与える物質を共有 かまたは非共有結合することによって標識される。広範囲の標識および結合技術 が知られており、科学文献および特許文献の両方で広範囲に報告されている。

適当な標識としては、放射性核種、酵素、基質、補因子、阻害剤、蛍光残基、化 学発光残基、磁気粒子等がある。このような標識の使用を教示する特許としては 、米国特許第３．８１７．８３７号明細書；同第３，８５０．７５２号明細書； 同第３．９３９，３５０号明細書：同第３，９９６．３４５号明細書：同第４゜ ２７７．４３７号明細書：同第４，２７５，１４９号明細書；および同第４，３ ６６．２４１号明細書がある。更に、組換え体またはキメラの免疫グロブリンを 製造することができる。カビリー（Ｃａｂｉｌｌｙ）、米国特許第４，８１６゜ ５６７号明細書を参照されたい。

本発明の抗体は、更に、ＩＬ−１３を単離する場合のアフィニティークロマトグ ラフィーに用いることができる。カラムは、そこにおいて抗体が固体支持体、例 えば、アガロース、セファデックスまたは類似のものなどの粒子に対して結合さ れていて、細胞溶解産物がカラムを通過することができ、カラムを洗浄した後に 穏やかな変性剤の濃度を増加させ、それによって精製されたタンパク質が放出さ れるように製造することができる。

抗体は、更に、特定の発現生成物について発現ライブラリーをスクリーニングす るのに用いることができる。通常、このような操作において用いられる抗体は、 抗体結合によって抗原の存在を容易に検出させる残基によって標識される。

それぞれのヒトＩＬ−１３に対して生じた抗体は、更に、抗イデイオタイプ抗体 を生じさせるのに用いられる。これらは、タンパク質の発現に関係した種々の免 疫学的症状またはタンパク質の受容体を発現する細胞を検出する場合または診断 する場合に有用である。それらは、更に、天然に存在するリガンドに対する競合 的阻害剤または代替物でありうるインターロイキンのアゴニストまたはアンタゴ ニストとして有用である。

Ｖｌｌ、ＩＬ−１３組成物、核酸の使用天然に存在するおよび組換え体の両方の 形の本発明のヒトインターロイキン−１３分子は、キットおよび検定法において 特に有用である。例えば、これらの方法は、これらのタンパク質に対する結合活 性についてのスクリーニングに用いられるであろう。近年、いくつかの自動検定 法が、年にいく万もの化合物がスクリーニングできるように開発されてきた。例 えば、バイオメク（Ｂ　Ｉ　ＯＭＥＫ）自動ワークステーション、ベックマン・ インスッルメンツ（ＢｅｃｋｍａｎＩｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ）、パロ・アルド、 カリフォルニアおよびフォト−（Ｆｏｄｏｒ）ら、５ｃｉｅｎｃｅ　２５１ニア ６７（１９９１）を参照されたい。後者は、固体支持体上で合成された多数の規 定ポリマーによる結合を試験するための手段を記載している。受容体またはアゴ ニスト／アンタゴニスト相同タンパク質についてスクリーニングするのに適当な 検定の開発は、本発明によって提供されるような、活性状態にある多量の精製さ れた可溶性インターロイキンの利用可能性によって大いに促進されることができ る。

更に、理論的薬剤設計は、受容体または抗体および他のエフェクターまたはリガ ンドの分子形状についての構造研究に基くことができる。エフェクターは、リガ ンド結合に応答して他の機能を媒介する他のタンパク質、または受容体と普通に 相互作用する他のタンパク質でありうる。特異的な他のタンパク質と相互作用す る部位を決定する一つの手段は、物理的構造決定、例えば、Ｘ線結晶学または２ 次元ＮＭＲ技術である。これらは、アミノ酸残基が分子接触部分を形成すること に関する指釘を提供する。タンパク質構造決定の詳細な説明については、例えば 、ブランデル（Ｂ　１ｕｎｄｅ　Ｉ　１）ら、ＰｒｏｔｅｉｎＣｒｙｓｔａｌｌ ｏ　ｒａｐｈｙ、（１９７６）　アカデミツク・プレス、ニューヨークを参照さ れたい。

精製されたインターロイキン−１３は、前述の受容体スクリーニング技術におい て用いるために、プレート上に直接コーティングすることができる。しかしなが ら、これらのタンパク質に対する非中和抗体を捕捉抗体として用いて、例えば、 診断用途において有用な固相上でそれぞれのインターロイキンを固定化させるこ とができる。

本発明は、更に、インターロイキン−１３、そのフラグメント、ペプチドおよび それらの融合生成物についての、タンパク質またはその受容体を検出するための 様々な診断用キットおよび方法における使用を包含する。或いは、または更に、 それらの分子に対する抗体をキットおよび方法に包含することができる。典型的 に、キットは、規定のｌ　Ｌ−１，３ペプチド若しくは遺伝子セグメントかまた は１種類若しくはそれ以上の他のものを認識する試薬を含む室を有する。典型的 に、認識試薬は、ペプチドの場合は受容体若しくは抗体であると考えられるし、 または遺伝子セグメントの場合はプローブであると考えられる。

１１、−１３などの試料の濃度を決定するための好ましいキットは、典型的に、 標識化合物、例えば、１１、−１３に対する既知の結合親和性を有する受容体ま たは抗体、正の対照としてのＩ　Ｌ−１３の沃然に存在するまたは組換え体）起 源、および遊離標識化合物からの境界を分離するための手段、例えば、試験試料 中にＩＬ−１３を固定化するための固相を含むであろう。通常、試薬を含む室お よび装置を提供する。

Ｉ　Ｌ−１，３またはペプチドフラグメントに特異的な、抗原結合７ラグメン１ へを含む抗体、または受容体フラグメントは、高濃度のＩ［、−１３および／ま たはそのフラグメントの存在を検出する診断用途において有用である。診断用検 定は、（遊離試薬と抗体−抗原複合体との分離工程を伴うことなく）均一であっ てよいしまたは（分離工程を伴う）不均一であってよい。種々の市販の検定、例 えば、ラジオイムノアッセイ（ＲＩＡ）　、酵素結合イムノソルベント検定法（ ＥＬＩＳＡ）、酵素免疫検定法（Ｅ　Ｉ　Ａ）　、酵素多形免疫検定技法（ＥＭ ＩＴ）、基質−標識蛍光免疫検定（ＳＬＦＩＡ）等がある。

例えば、非標識抗体は、標識されていて且っＩＬ−１３に対するまたはその特定 のフラグメントに対する抗体を認識する第二抗体を用いることによって用いるこ とができる。これらの検定は、更に、広範囲に文献において論及されている。

例えば、バーローら、Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ＋Ａ　ＬａｂｏｒａｔｏｒＭａｎｕ ａｌ、１９８８．Ｃ３Ｈ；並びにコリガン（Ｃｏｌｉｇａｎ）（監修）、Ｃｕｒ ｒｅｎｔ　Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ　Ｉｎ　Ｉｍｍｕｎｏｌｏ　、１９９１年および 定期補遺、グリーン・ウィリー、ニューヨークを参照されたい。

抗イデイオタイプ抗体は、ＩＬ−１３のアゴニストまたはアンタゴニストとして 役立つように同様に用いることができる。これらは、適当な状況下において治療 用試薬として有用であるべきである。

しばしば、診断検定用の試薬は、検定の感度を最適にするようにキットで与えら れる。本発明のためには、検定、プロトコルおよび標識の性質に応じて、標識さ れたか若しくは非標識の抗体または標識された受容体を提供する。これは、通常 、他の添加剤、例えば、緩衝剤、安定剤、シグナル生成に不可欠な物質、例えば 、酵素のための基質等と一緒にある。好まシ、＜は、キットは、適切な使用およ び使用後の容器の廃棄のための装置を更に含む。典型的に、キットは、それぞれ の有用な試薬のための室を有する。望ま［、＜は、試薬は乾燥した凍結乾燥粉末 として提供され、そこにおいて試薬は、検定を実施するのに適当な濃度の水性媒 層中に還元することができる。

診断検定の成分はいずれも、変更することなく用いることができるしまたは種々 の方法で変更することができる。例えば、標識付けは、検出可能なシグナルを直 接的または間接的に与える残基を共有または非共有結合することによって達成す ることができる。これらの検定のいずれにおいても。試験化合物ＩＬ−１３また はそれに対する抗体は、直接的にかまたは間接的に標識することができる。直接 的標識の可能性としては、標識基、放射性標識、例んば、　■、酵素（米国特許 第３，６４５，０９０号明細書）、例えば、ペルオキシダーゼおよびアルカリ性 ホスファターゼ並びに蛍光強度の変化を監視することができる蛍光標識（米国特 許第３．９４０．４７５号明細書）、波長シフトまたは蛍光偏光がある。

間接的標識の可能性としては、一つの成分をビオチニル化後、上記標識基の一つ に結合したアビジンに対する結合がある。

更に、遊離リガンドからの境界、或いは遊離試験化合物からの境界を分離する多 数の方法がある。ＩＬ−１３は、種々のマトリックス上に固定化後、洗浄するこ とができる。適当なマトリックスとしては、プラスチック、例えば、ＥＬＩＳＡ プレート、フィルターおよびビーズがある。受容体をマトリックスに固定化する 方法としては、制限することなく、プラスチックに対する直接的接着、捕捉抗体 の使用、化学結合およびビオチン−アビジンがある。

この方法における最後の工程は、例えば、ポリエチレングリコールなどの有機溶 媒または硫酸アンモニウムなどの塩を用いるようないくつかの方法のいずれかに よる抗体／抗原複合体の沈殿を含む。他の適当な分離技術としては、制限するこ となく、ラドル（Ｒａｔｔｌｅ）ら、ＣＩ　ｉｎ、Ｃｈｅｍ、３０　：１４５７ 　（１９８４）に記載された蛍光抗体磁化粒子法および米国特許第４．　６５９ ．　６７８号明細書に記載の二重抗体磁気粒子分離がある。

各種標識に対してタンパク質またはフラグメントを結合する方法は、広範囲に文 献に報告されており、ここで詳細に論及する必要はない。多数の技法は、カルボ ジイミドの使用によってかまたは活性エステルによってペプチド結合を形成する ための活性カルボキシル基の使用、クロロアセチルなどの活性ハロゲンまたはマ レイミドなどの活性オレフィンとメルカプト基との反応による、結合のためのチ オエステルの生成または同様のものを含む。融合タンパク質は、更に、これらの 用途において用いられる。

本発明のもう一つの診断的態様は、ＩＬ−１３の配列から得られたオリゴヌクレ オチドまたはポリヌクレオチド配列の使用を含む。これらの配列は、癌などの増 殖性細胞症状を有すると疑われる患者においてＩＬ−１３の濃度を検出するため のプローブとして用いることができる。ＲＮＡおよびＤＮＡ両方のヌクレオチド 配列の製造、配列の標識材は並びに配列の好ましい寸法は、文献中に多数の説明 および論及が与えられた。

一般に、オリゴヌクレオチドプローブは、少なくとも約１４ヌクレオチド、通常 少なくとも約１８ヌクレオチドを有するべきであり、ポリヌクレオチドプローブ は最大数キロベースまででありうる。各種標識は、最も一般的には放射性核種、 特に、３２Ｐを用いることができる。しかしながら、他の技法も、例えば、ポリ ヌクレオチド中への導入にビオチン修飾ヌクレオチドを用いて用いることができ る。次に、ビオチンは、広範囲の標識、例えば、放射性核種、蛍光、酵素または 同様のものを用いて標識することができるアビジンまたは抗体に対する結合部位 として役立つ。

或いは、ＤＮＡ二重らせん、ＲＮＡ二重らせん、ＤＮＡ−ＲＮＡハイブリッド二 重らせんまたはＤＮＡ−タンパク質二重らせんを含む特異的二重らせんを認識し つる抗体を用いることができる。次に、抗体を標識することができ、そして検定 を実施し、そこにおいて二重らせんは表面に結合し、その結果、表面上の二重ら せん形成によって、二重らせんに結合した抗体の存在を検出することができる。

新規の抗血清ＲＮＡに対するプローブの使用は、任意の慣用法、例えば、核酸ハ イブリダイゼーション、プラス−マイナススクリーニング、組換えプローブ法１ ハイブリッド放出翻訳法（ＨＲＴ）およびハイブリッド阻害翻訳法（ＨＡＲＴ） において実施することができる。

他のマーカーの定性的または定量的存在について更に試験する診断用キットも包 含される。診断または予知は、マーカーとして用いられる多数の指標の組み合わ せに依ることができる。したがって、キットは、マーカーの組合せについて試験 することができる。例えば、ヴイアレット（Ｖｉａｌｌｅｔ）ら、Ｐｒｏｇｒｅ ｓｓ　ｉｎ　Ｇｒｏｗｔｈ　Ｆａｃｔｏｒ　Ｒｅｓ、１：８９（１９８９）を参 照されたい。

Ｖｌｌｌ、治療的用途 本発明は、有意の治療的価値を有する試薬を提供する。（天然に存在するまたは 組換え体の）ＩＬ−１３、そのフラグメントおよびそれらに対する抗体は、イン ターロイキンまたはその受容体若しくは抗体に対して結合親和性を有すると確認 された化合物と一緒に、インターロイキンの異常な発現を示す症状の治療におい て有用であるべきである。このような異常は、典型的に、免疫学的障害となって 現れる。更に、本発明は、インターロイキンに対する応答についての異常な発現 または異常な誘発に関係した任意の疾患または障害における治療的価値を与える はずである。

ることかできる。これらの試薬は、治療用途のために、例えば、慣用的な薬学的 に許容しうる担体または希釈剤中において、生理学的に無害の安定剤および賦形 剤と一緒に追加の活性成分を用いて混合することができる。これらの組合せを滅 菌濾過し、そして用量バイアル中の凍結乾燥または安定な水性製剤中の貯蔵によ るような剤形中に入れることができる。本発明は、更に、抗体または補体結合で はないその結合フラグメントの使用を包含する。

Ｉ　Ｌ−１３またはそのフラグメントを用いる受容体スクリーニングは、インタ ーロイキンに対する結合親和性を有する分子を同定するように行なうことができ る。引き続き生物検定を用いて、ある受容体が、本来の刺激活性を阻止しつる競 合的結合を与えることができるかどうかを決定することができる。受容体フラグ メントは、ブロッカ−またはアンタゴニストとして用いることができ、すなわち 、それが１−１３の活性を阻止する。同様に、本来の刺激活性を有する化合物受 容体を活性化することができ、したがってアゴニストであり、すなわち、それが ＩＬ−１３の活性を刺激する。本発明は、更に、アンタゴニストとしてのＩＬ− １３に対する抗体の治療的使用を包含する。

有効な治療に不可欠な試薬の量は、投与手段、標的部位、患者の生理学的状態お よび投与される他の薬剤を含む多数の種々の因子に依る。したがって、処置用量 は、安全性および効力を最適にするように滴定されるべきである。典型的に、イ ンビトロで用いられる用量は、これらの試薬の現場投与に有用な量の有用な指針 を与えることができる。特定の障害の治療に有効な投薬についての動物実験は、 ヒト用量について更に予測的指標を与える。様々な考察は、例えば、ギルマン（ Ｇｉｌｍａｎ）ら（監修）、Ｔｈｅ　Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏ　ｔｅａｌ−（Ｍａ ｃｋ　Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ　Ｃｏ、）、イーストン、ペンシルバニアに記載さ れている。

投与法は、例えば、経口、静脈内、腹腔内または筋向投与、経皮核酸その他につ いて、本明細書中および以下で論及する。薬学的に許容しうる担体としては、水 、食塩水、緩衝液、およびＭｅｒｃｋ　Ｉｎｄｅｘ、　メルク・アンド・カンパ ニー（Ｍｅｒｃｋ　＆　Ｃｏ、）、ローウェー、ニューシャーシーに言す戟され たような他の化合物がある。

ＩＬ−１３とその受容体との間のおそらく高い親和性結合ゆえに、低用量のこれ らの試薬は初期に有効であると予想される。したがって、用量範囲は、概して、 適当な担体と一緒に、１ｍＭ濃度未満、典型的に約１０μＭ濃度未満、通常約１ １００ｎ未満、好ましくは約１０ｐＭ（ピコモル）未満、そして最も好ましくは 約１ｆＭ（フェムトモル）未満の量であると予想される。徐放性製剤または徐放 性装置を、しばしば連続投与用に用いる。

Ｉ　Ｌ−１３またはそのフラグメント、抗体またはそのフラグメント、アンタゴ ニストおよびアゴニストは、治療される宿主に対して直接的に、または化合物の 寸法に応じて投与することができ、投与前にそれらを担体タンパク質、例えば、 オボアルブミンまたは血清アルブミンに結合させるのが望ましいことがある。治 療用製剤は、任意の慣用的な用量製剤中で投与することができる。

活性成分を単独で投与することは可能であるが、薬剤配合物として与えるのが好 ましい。配合物は、上記に定義の少なくとも１種類の活性成分を、１種類または それ以上のその許容しうる担体と一緒に含む。それぞれの担体は、他の成分と相 溶性であるという意味において薬学的にも生理学的にも許容しうる必要があり、 しかも患者に対して無害である必要がある。配合物としては、経口、直腸、鼻ま たは非経口（皮下、筋向、静脈内および皮肉を含む）投与に適当なものがある配 合物は、便宜上、単位剤形で与えられることができ、薬学技術分野において周知 の任意の方法によって製造することができる。本発明の治療法は、他の免疫療法 薬剤または免疫抑制剤と組合せてよいしまたは一緒に用いることができる。

実施例 広範囲にわたる本発明は、以下の実施例を論及することによって最もよく理解さ れるが、いかなる意味においても、これは本発明を制限するためのものではない 。特に断らない限り、固体混合物中の固体、液体中の液体および液体中の固体に ついて以下に与えられた百分率は、それぞれ重量／重量、容量／容量および重量 ／容量基準である。特に断らない限り、本明細書中で用いられる専門用語および 科学用語はいずれも、本発明が属する技術分野の業者が一般的に理解しているの と同様の意味を有する。

ＩＬ−４およびＩＬ−１０に適用しうる、例えば、米国特許第５．　０１７．　 ６９１号明細書（ＩＬ−４）およびＵ、Ｓ、Ｓ、Ｎ、０７／４５３，９５１号明 細＠（ＩＬ−１０）に記載のような多数の技術をＩＬ−１３に対して用いること がマウスＰ６００　ｃＤＮＡクローンのＰｓｔ／Ｐｖｕｌｌ制限消化に由来する 約４００ｂｐのＤＮＡフラグメントを、ポリアクリルアミドゲル電気泳動並びに 引き続きの溶離およびエタノール沈殿によって単離した。このフラグメントは、 マウスＰ６００　ｃＤＮＡのコーディング領域の大部分を包含しており、これを ［３２Ｐ］　ｄＣＴＰ存在下のランダムブライミングによって放射性標識した。

フィルターリフトを、以下の標準法にしたがって、それぞれ約５０００コロニー のＢ２１ｃＤＮＡライブラリーを有する１０個の寒天プレートから製造した。

このライブラリーは、抗ＣＤ３によってＲＮＡの単離前に７時間刺激されたＢ２ １と称するクローン化ヒトＴ細胞から製造された。このライブラリーの構築は、 米国特許出願第０７／４５３．９５１号明細書に記載されている。

フィルターを、２０％ホルムアミド、６Ｘ　５ＳＰＥ、０．１％　ＳＤＳ、５Ｘ 　デンハート溶液および１００μｇ／ｍｌのｔＲＮＡ中の標識されたマウスＰ６ ００フラグメントと一緒に４２℃で一晩生ハイブリッド形成させた。フィルター を、２Ｘ　５ＳＰＥ、０．１％　ＳＤＳによって室温でそれぞれ２０分間３回、 ＬＸ　５ＳＰＥ、０．１％　ＳＤＳによって５５℃で１時間２回洗浄した後、− 晩生フィルムに暴露した。８種類の正を確認し、更に精製するために選択した。

これらの内の７種類は再スクリーニングによって正であった。６種類のクローン は１．３５ｋｂのＢａｍＨＩインサートを有し、一つは僅か０．６ｋｂのインサ ートを有した。ｐＢ２］、、２Ｂｆと称するーっのクローンの１．３５ｋｂイサ −１・をＭ］、３中にザブクローン化し且つ、多チオキシ法によって配列決定し た。配列比較により、この１．１．６ｋｂのｃＤＮＡは、マウスＰ６００のヒト 相同染色体をコードすることかを実証された。

Ｂ２１から単離されたｔｒｕｌＬ−１３ｃＤＮＡは、マウスＰ６００　ｃＤＮＡ と比較すると完全な長さではなかった。完全な長さのｃＤＮＡを８２１ライブラ リーから単離することを繰り返し試みたが、成功しなかった。したがって、別の ライブラリーを、完全な長さのクローンに対するｐＢ２１．２Ｂｆインサートを 用いてスクリーニングした。ＰＣＲプローブは、５′末端から５０ｂｐを開始し 且つ停止コドンで終結するヒトｃＤＮＡに由来した。

ｃＤＮＡライブラリーをＡＩＯＴ細胞系のクローンから製造した。上記と同様の ハイブリダイゼーンタン条件を用いた。フィルターをＩＸ　５ＳＰＥ、領０５％ 　ＳＤＳ中において室温で１５分間１回洗浄した後、５５℃で３０分間〜１時間 ２０洗浄した。それらを−晩生フィルムに暴露した。いくつかの正コロニーを検 出し且つ再スクリーニングした。これらの正からのいくつかのｃＤＮＡインサー トの５′末端から得られた二本鎖配列は、それらが完全な長さであったことを示 した。ｐＡｌｏ、６６と称するクローンからの１．３ｋｂのｃＤＮＡインサート の一つを、Ｍ１３中にサブクローン化し且つ配列決定した。その配列を表１に示 す。完全な長さのクローンの配列は、完全な長さのクローン中に存在する単一コ ドンにおいて配列の短いクローンとは異なった。表３を参照されたい。

Ｔ１．マウスＰ６００およびヒトＩＩ、−１．３タンパク質の発現および精製ヒ トＩＬ−１３をコードする１、１６ｋｂのｃＤＮＡを含むｐＢ２１．２Ｂｆクロ ーンは、最初の２３個のＮ末端アミノ酸を欠失していた。発現ベクターｐＧＥＸ −２Ｔ中へ連結するためのインサートを、ＰＣＲを用いることによって製造して 、５’　ＢａｍＨＩおよび３’　ＥｃｏＲＩ末端に独特の制限部位を与えた。ｐ ＧＥＸ−２７ベクターは、融合タンパク質を生じるように設計されて、そこで独 特のタンパク質セグメントが、容易に開裂しうるプロテアーゼ部位によって分離 される。ゲル精製ＤＮＡを発現ベクターｐＧＥＸ−２Ｔ中に連結して、スミスに 、プラスミドが大腸菌中で発現された場合に、ＤＮＡインサートによってコード されたタンパク質が、中間に１〜ロンビン開裂部位を有するグルタチオン−８− トランスフェラーゼとの融合タンパク質を生じるようにした。得られたプラスミ ドを大腸菌中に形質転換させ、そして成功した形質転換細胞をＩＰＴＧ存在下で 増殖させた。この構築物の発現生成物は、誘導条件下で増殖させた場合に封入体 中にｌｌ０１積した。

マウスＰ６００再生および精製 形質転換された大腸菌細胞を培地中においで３７℃で増殖させ且つ０．　５０Ｄ でＩＰＴＧによって誘導した。誘導細胞を、振とうフラスコによってかまたは発 酵によって最大ＯＤに達するまで増殖させた。細胞を４℃において４０００ｘｇ で３０分間の遠心分離によって採取し且つ一１０℃で冷凍した。

細胞をＴＥ緩衝液（５０ｍＭｌ−リス−ＨＣｌ、１０ｍＭ　ＥＤＴＡ　ｐＨ８， １ｍＭペフロブロク（Ｐｅ　ｆ　ｌ　ｏｂ　１ｏｃ）　、プロテアーゼ阻害剤含 有）中に室温で再懸濁させた。細胞を微量流動化装置に１８．０ＯＯｐｓｉで通 過させ、採取し、そして・４８Ｃにおいて１０．ＯＯＯｘｇで３０分間遠心分離 した。細胞ベレットをＴＥ緩＃ｒ液中で洗浄し月つ遠心分離し、上澄みが透明に なるまで繰り返した。ペレノ（・を６Ｍグアニジノー１−（ＣＩ、１０ｍｋｉ　 ＤＴＴ、５ｍＭｈリスーＨｅｌ　ｐＨ９および１ｍｔ’ｖｉペフロブ［１りを用 いて溶解させ且つ４℃で２時間混合した。

ケレバク質濃度は、ブラドフオードブロテ・イン（ＢｒａｄｆｏｒｄＰｒｏｔｅ ｉｎ）法によって測定され、典型的に、全タンノくり質濃度約２４５ｍｇ／’ｍ ｌてあ−っだ。混合物を、５０　ｍＭ　＋−リス−ｔｌＣ＋、］、５５０ｍＭ　 ＮａＣｌ。

２ｍＭ還元型グルタチオン、１．ｍＭ酸化型グルタチオン、０．５Ｍグアニンフ ンｔ１Ｃ＋および１０ｍＭ　ＥＤＴＡ中にｐＨ９，０で、その展開容量の１００ 倍まで何時間かにわたって希釈し２′Ｊ０溶液を、４’Ｃで２・１時間混合し、 分子のンスルフ。ド結合を再生させた。

＋５ノ１ｍフメルターによる濾過によって除去した。上澄みを、ペリコンＰｃ　 ｌ　ｌ　ｉ　ｃｏｎ）および５０ｍＭ１−リスートＴＣＬ、、１５０ｍＭ　：’ ＪａＣＬ２．５ｍＭ　ＣａＣ１，、ｐ）１７．５緩衝液に対する４℃でのダイア フィルターを用いて濃縮した。グルタチオン−８−トランスフェラーゼ融合パー トナ−は、融合タンパク質５０μｇ当り１０ｎＨのヒトトロンビンを加えること によって開裂された。溶液を４℃で１８〜４８時間混合して、融合パーｒナーを トロンビンによって開裂させた。５ＤＳ−ＰＡＧＥゲルおよびＴＦ−１バイオア ツセイを用いて、Ｐ６００コンホメーションおよび活性を特徴付けた。

完全なトロンビン開裂が観察された後、硫酸アンモニウムを再生された材料に対 して２５％飽和範囲で加えた。再生された材料を、６Ｎ　ＮａＯＨ″ｒｐＨ８゜ ５に調整し、そして２５％硫酸アンモニウム、５０ｍＭトリス−ＨＣＬ、０．０ ５　Ｍ　Ｎ　ａ　ＣＩ緩衝液によってｐＨ８，５で平衡させたプチルトーヨー・ バール（Ｔｏｙｏ　Ｐｅａｒｌ）カラムに充填した。カラムを、平衡緩衝液によ って人２８０がベースラインに接近するまで洗浄した。カラムを、５０ｍＭ）リ ス　ｐＨ８，５緩衝液によって５床容量に対して溶離した。λ２８０ブールを集 め、５０００分子量カットオフアミコン（Ａｍ　ｉ　ｃ　ｏ　ｎ）撹拌セル中に おいて８２００ゲル濾過カラムの床容量の３％未満の容量まで濃縮した。

Ｓ−２００カラムを脱発熱化緩衝液５０ｍＭ　ＮａＰｉ、１５０ｍＭ　ＮａＣ１ および０．０１％トウイージー２０　ｐＨ６，Ｑで平衡させた。濃縮されたＳブ ールをゲル濾過カラム上に充填し、そして両分を集め且つ５ＤＳ−ＰＡＧＥゲル によってＰ６００タンパク質含量について確認し７た。両分を５ＤＳ−ＰＡＧＥ に基いてプールし、濃縮し、０．２２μｍフィルターによって濾過し、そしてＴ Ｆ−１バイオアツセイによって生物学的活性について検査した。タンパク質濃度 を銀染色によって決定し、モレキュラー・ダイナミック（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒｌ ）　ｙ　ｎ　ａ　ｒｎ　ｉ　ｃ　）ゲル走査器を用いて走査した。

内毒素は、ウィソタ力−（Ｗｈ　ｉ　ｔ　ｔ　ａｋｅ　ｒ）比色分析リムルス検 定を用いて測定され、典型的に、染色によって〉９５％純度で得られた典型的な 標品がく１０ｅｕ／ｍｌであり、生物活性は約］、Ｘ１０’単位／ｍｌであった 。再生手順トの変更は効果的であり、例えば、タンパク質濃度は若干の範囲にわ たって変化し、典型的に、５倍の差がある。グルタチオン濃度は変更することが できるし、そして徐々に希釈する時間および一晩生インギュベーノタンする時間 を滴定することができる。記載された再生パラメーターはそれぞわ、適当なとこ ろで滴定されるべきである。

同様の手順を用いてＩＬ−１３を製造し且つ精製した。

大腸菌から製造されたマウスＰ６００などの細胞生存度の刺激因子／補助刺激因 子としてのマウス２６００機能は、多量のインビボ活性マウスＢ細胞の増殖を刺 激するかまたは補助刺激することができる。細胞に対して投与されるＰ２Ｏ３の 量を減少させると、３Ｈ−チミジン取込みによって決定される細胞増殖は低下し た。

ＣＤ４０の細胞外ドメイン（「可溶性ＣＤ４０Ｊと称する）をコードするｃＤＮ Ａを構築するために、Ｘｈｏ１部位を含む下記のＰＣＲプライマーを、アプライ ド・バイオシステムズ（Ａｐｐｌｉｅｄ　Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）３８０ＡＤＮ Ａ合成機で合成した。

これらのプライマーを用いて、マウスＣＤ４０の開始コドンからの１９１アミノ 酸をコードするＰＣＲフラグメントを製造した。ＰＣＲフラグメントをＸｈ。

工で消化した後、Ｘｈｏｌで開裂された哺乳動物／細菌の発現ベクター（ｐＭＥ １８Ｓ）中に連結した。挿入されたフラグメントを、ジデオキシ配列決定法によ って配列決定して、配列を確認した。

可溶性ＣＤ４０　ｃＤＮＡを運搬するプラスミドを、標準法によるエレクトロポ レーションによってＣＯ３−７細胞中にトランスフェクションさせた。オースベ ル（Ａｕｓｕｂｅｌ）ら（１９８７年および定期補遺）を参照されたい。簡単に いうと、血清不含ダルベツコ最小必須（ＤＭＥ）培地中、細胞１０７個／ｍｌの ＣＯ３−７細胞懸濁液１７５ｍ１を、２０μｇプラスミド５０μｌと一緒に室温 で１０分間インキュベートし、そしてバイオ・ラド（Ｂｉｏ−Ｒａｄ）遺伝子パ ルサー（９６０Ｆ、２２０Ｖ）を用いてエレクトロポレーションを施した。

エレクトロポレーションの１０分後、ＣＯ３−７細胞を４個の１０ｃｍ皿中にお いて３日間培養した。可溶性ＣＤ４．０の精製用に、エレクトロポレーション後 １臼目に、ＨＢＩＯｌ、（ハナ・バイオロジクス（ＨＡＮＡ　Ｂｉｏｌｏｇｉｅ ｓ）、アラメーダ、ＯＡ）を補足したフェノールレッド不含ＲＰＭＩ　１６４０ に培地を変更した。

可溶性ＣＤ４０を、標準法を用いる陰イオン交換カラム上のイオン交換クロマト グラフィーによって精製した。直線的ＮａＣ１勾配を用いてタンパク質をカラム から溶離し、そして標準法によって製造されたＣＤ４０ペプチドに対するウサギ 抗血清を用いるウェスタンブロッティングによって分析した。

８週令の雌のルイス（Ｌｅｗｉｓ）ラットをバーラン・スプラグ−・ドーリ−（ Ｈａｒｌａｎ　Ｓｐｒａｇｕｅ−Ｄａｗｌｅｙ）　（インディアナポリス、ＩＮ ）から入手した。これらのラットを、完全フロインドアジュバント中の可溶性Ｃ Ｄ４０の１０μｇで腹腔内に免疫感作した後、不完全フロインドアジュバント中 の可溶性ＣＤ４０の１０μｇ１１０μｇ１１０μｇおよび５０μｇの追加投与を それぞれ３週目、４．５週目、６週目および８．５週目に行なった。食塩水中の 最終追加抗原を１２週目に注射した。試験血液の抗ＣＤ４０抗体含量をＥＬＩＳ Ａによって評価した。

刺激されていないマウス牌臓からの低密度Ｂ細胞を、ホジキン（Ｈｏｄｇｋｉｎ ）　ら、Ｃｅ１１．　Ｉｍｍｕｎｏｌ、１３４：１４　（１９９１）に記載され たように製造した。牌臓を、５％ウシ胎児血清（Ｆｅ２　、　Ｊ、　Ｒ，サイエ ンティフィック（Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）、ウッドランド、ＣＡ）、５ｘｌＯ” Ｍ　２−メルカプトエタノール（ポリサイエンシズ・インコーホレーテッド（Ｐ ｏｌｙｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｉｎｃ、）、ウオーリントン、ＰＡ）　、２ｍＭグル タミン０．Ｒ，サイエンティフィック）および２５ｍＭ　ヘペス（ＨＥＰＥＳ） 緩衝液（アービン・サイエンティフィック（ＩｒｖｉｎｅＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃ ）、サンターアナ、ＣＡ）　、１００Ｕ／ｍｌペニシリンおよび１００μｇ／ｍ ｌストレプトマイシン（アービン）を含む完全ＲＰＭＩ　（ｃＲＰＭＩ）中に掻 き裂いた。赤血球を、０．８３％塩化アンモニウム、ｐＨ７゜４を用いて溶解さ せた。

Ｔ細胞を、抗マウスＴｈｙ　１．２ｍＡｂ　にニー・イングランド拳ヌークレア （Ｎｅｗ　Ｅｎｇｌａｎｄ　Ｎｕｃｌｅａｒ）、ボストン、ＭＡ）および抗Ｌ３ Ｔ４抗体（ＲＬ１７２．４ハイブリドーマ、Ｈ，Ｒ，？クドナルビ（ＭａｃＤｏ ｎａｌｄ）博士、ルードヴイヒ・インスティトウート（ＬｕｄｗｉｇＩｎｓｔｉ ｔｕｔｅ）、エバリンゲス、スイスからの贈与）によって氷上で２０分間の後、 補体（ウサギ低毒性補体の１：１０希釈、シーダーレーン・ラボラトリ−（Ｃｅ ｄａｒｌａｎｅ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ）、オンタリオ、カナダ）によって３７ ℃で３０分間の２種類の連続した処理を用いて除去した。次に、低密度Ｂ細胞を 、密度勾配遠心分離によって、７５％、６５％および５０％パーコール（ファー マシア・ファイン・ケミカルズ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ　ＦｉｎｅＣｈｅｍｉ　ｃ ａ　Ｉ　Ｓ）　、ウプサラ、スウェーデン）から成る不連続勾配を４℃において ２５００ｘｇで２５分間用いて単離した。

６５％および７５％パーコール間の界面から集められた細胞を、次の実験に用い た。多量のインビボ活性Ｂ細胞を６５％および５０％界面から集めた。Ｂ細胞を 平底９６ウ工ル組織培養プレート（３０７２、ファルコン・ラブウェア（Ｆａ　 Ｉ　ｃｏｎ　Ｌａｂｗａ　ｒｅ））中において、指示される追加の刺激薬を加え たｃＲＰＭＩ中の種々の細胞濃度で培養した。増殖は、培養開始後４８時間目に 加えられた３Ｈ−チミジン（アマーンヤム（Ａｍｅ　ｒ　ｓ　ｈ　ａｍ）　）の ４時間のパルスによって評価された。

Ｂ、持続されたＢ細胞の生存・選択性試薬抗ＣＤ４０　ｍＡｂ８９および抗ＣＤ ２３　ｍＡｂ２５を、それぞれの抗原に対する標準法によって製造した。ヴアレ （Ｖａｌｌｌりら、Ｅｕｒ、ＪＩｍｍｕｎｏｌ、１９：１４６３　（１９８９） ；ボンフオイ（Ｂｏｎｎｅｆｏｙ）ら、Ｊ、Ｉｍｍｕｎｏｌ、１３８：２９７０ 　（１９８７）を参照されたい。ＣＤｗ３２／ＦｃγＲ１１でトランスフェクシ ョンされたＬｔｋ細胞系（ＣＤｗ３２Ｌ細胞）は、ペルツ（Ｐｅ　ｌ　ｔ　ｚ） ら、Ｊ、Ｉｍｍｕｎｏｌ、１４１：１８９１　（１９８８）によって記載された 。ビーズに結合された抗ＩｇＭ抗体（抗Ｍ）は、バイオラド（リソチモラド、Ｃ Ａ）から購入された。

細胞表現型は、ベクトン・デイキンラン（Ｂｅｃｔｏｎ　Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ） （マウンテン・ビュー、ＣＡ）に由来するＦＩＴＣ結合ｍＡｂを用いて決定され た。中和抗ＬＬ−４単りローン性抗体は、グラスイ博士（Ｄｒ、Ｇｒａｓｓｉ） によって快く提供された。１３０ｋＤａ　ＩＬ−４受容体の細胞外ドメインは、 ガｏ−ン（Ｇａｒｒｏｎｅ）ら、Ｅｕｒ、Ｊ、　Ｉｍｍｕｎｏｌ、２１：１３６ ５（１９９１）によって記載の切断されたＩＬ−４ｃＤＮＡを含むプラスミドに よりトランスフェクションされたＣ０９−７細胞に由来した。組換え体タンパク 質は、トランスフェクションされた細胞培養物上澄みから、ＩＬ−４−アフィゲ ル（Ａｆ　ｆ　ｉ　−ｇｅ　１）１０カラム上の精製によって精製された。抗１ ３０ｋＤａｌＬ−４受容体抗体は、ＩＬ−４受容体の細胞外ドメインによるマウ スの免疫感作後に生じた。培養は、修飾イスコヴ（Ｉｓｃｏｖｅ’　ｓ）培地中 で実施された。

Ｂ細胞標品および細胞培養物 Ｂ細胞は、デフランス（Ｄｅｆｒａｎｃｅ）ら、Ｊ、Ｉｍｍｕｎｏｌ、１３９＋ １１３５　（１９８７）によって記載されたように、扁桃腺から単離された。簡 単にいうと、ヒツジ赤血球によるロゼツト形成工程後、非ロゼツト形成細胞を、 抗ＣＤ２、抗ＣＤ３および抗ＣＤ１４　ｍＡｂと一緒に更にインキュベートした 後、抗マウスＩｇＧで被覆された磁気ビーズ（ダイナビーズ（Ｄｙｎａｂｅａｄ ｓ）、ダイナル（Ｄｙｎａ　ｌ）　、オス口、ノルウェイ）によって負の選択を 行なった。単離された集団は、〉９８％のＣＤ１９またはＣＤ２０　（Ｂ細胞） およびく１％のＣＤ２（Ｔ細胞）またはＣＤ１４（単球）を発現した。

抗原受容体で活性化されたＢ細胞による検定細胞５ｘｌＯ５個／ｍｌで調整され たＢリンパ球を、不溶化抗１ｇＭ（５μｇ／　ｍ　ｌ　）によって７２時間刺激 した。１μＣｉ　（’Ｈ）ＴｄＲによる１６時間ノくルスは、通常、３日目およ び６日目に行なわれた。［３Ｈ］　−ＴｄＲ取込みは、標準的なノンチレーノタ ン計数法によって測定された。

ＣＤ４０系 増殖検定用に、２．５ｘｌＯ’個の精製Ｂ細胞を、２．５Ｘ１０３　個の照射（ ７０００ラド）ＣＤＷ３２　Ｌ細胞および０．５μｇ／ｍ＋の抗ＣＤ４０　ｍＡ ｂ８９の存在下において最終容量２００μｌ中で培養した。１ｇ生産用に、Ｂ細 胞を細胞２．５ｘｌＯ５個／ｍｌで試験した。上澄みを１０Ｅｌ後に採取し、Ｉ ｇａ度をＥＬＩＳＡによって決定した。

雌用磁気細胞分離システム（ＭＡＣ３，ベクトン・ディキンラン）を用いて分離 純度は、ｓ　Ｉ　ｇＤ”″Ｂ細胞集団については〉９９％であったが、く工％の ｓｌｇＤ−Ｂ細胞並集団は、ＦＡＣ３ｃａｎを用いる蛍光分析によって評価した ところ、ｄｌｇＤを発現した。

サイトカイン 精製された組換え体ｈｌＬ−２（アムンエン（Ａｍｇｅｎ）、サウザラド・オー クス、ＣＡ、３ｘｌＯ’Ｕ／ｍり、組換え体ｈｌＬ−４（シェリング・ブルー・ リサーチ・インスティトウート（Ｓｃｈｅｒｉｎｇ−ＰｌｏｕｇｈＲｅｓｅａｒ ｃｈ　Ｉｎ５ｔｉｔｕｔｅ）、ブルームフィールド、ＮＪ、１ｘ１０７Ｕ／ｍｌ ）　、組換え体ｈｌＬ−１０（ンエリング・ブルー・リサーチ・インスティトゥ ート、ブルームフィールド、ＮＪ、１ｘｌＯ’Ｕ／ｍｌ）をそれぞれＩＯＵ／ｍ ｌ、５０Ｕ／ｍｌおよび１１００ｎ／ｍｌで用いた。ＩＬ−１３は、ｐＧＥＸ− ２Ｔベクター（ファーマシア、ウプサラ、スウェーデン）を用いてグルタチオン −ｓ−トランスフェラーゼとの融合タンパク質として発現された。

ｈｌＬ−１３残基２４〜１０９をコードするＤＮＡフラグメントは、ポリメラー ゼ連鎖反応（ＰＣＲ）によって製造され、そしてベクターのＢａｍＨＩ／Ｅｃｏ Ｒ１部位中にクローン化された。更に、ｍ１Ｌ−１３残基１９〜１０９をコード するＤＮＡフラグメントを製造し且つクローン化した。ヒトおよびマウスＩＬ− １３融合タンパク質は、大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ　ｃｏｌｉ）中で不溶 性凝集体として発現され、遠心分離によって抽出され、可溶化され、そして再生 工程を施された。ヴアン・キメナーデ（ｖａｎ　Ｋｉｍｍｅｎａｄｅ）　ら、Ｅ ｕｒ、Ｊ、Ｂｉｏｃｈｅｍ、１７３：１０９　（１９８８）を参照されたい。

再生されたＩＬ−１３を、融合パートナ−からトロンビンによって開裂させ、陽 イオン交換（Ｓ−セファロースＦＰＬＣ，ファーマシア）およびゲル濾過（セフ ァクリル（Ｓｅｐｈａｃ　ｒｙＩ）ｓ−２００ＦＰＬＣ，７７−ｖシフ）　りｏ マドグラフィーによって精製した。ゲル濾過カラムは、タンパク質標準（バイオ ・ラド）によって検量された。タンパク質は、ニワトリの卵リゾチーム（シグマ 、セント・ルイス、ＭＯ）への規格化を伴って、５ＤＳ−ＰＡＧＥ、銀染色（Ｉ ｓＳ）および走査型デンソトメトリー（モレキュラー・ダイナミクス（Ｍｏｌｅ ｃｕｌａｒ　Ｄｙｎａｍｉｃｓ）によって定量された。内毒素（リムルス（Ｌ　 ｉｍｕ　Ｉ　ｕ　ｓ）変形細胞溶解産物検定（ライツタカー・バイオプロダクツ ・インコーホレーテッド（Ｗｈｉｔｔａｋｅｒ　Ｂｉｏｐｒｏｄｕｃｔｓ。

Ｉｎｃ、））によって決定された）は、典型的に＜ｌｅｕ／ｍｌであった。

高度に精製されたヒトＢリンパ球の、抗１ｇＭ抗体を伴う抗原受容体にょつて活 性化されたＤＮＡ合成は、組換え体サイトカイン、例えば、ＩＬ−２、ＩＬ−４ および［、−１０によって促進される。組換え体ネズミＩＬ−１３も、用量依存 様式で、不溶化抗１ｇＭ抗体の存在下で培養されたヒト扁桃腺８１７８球の３日 目のＤＮＡ合成を促進した。最大刺激は、１０〜２５　ｎ　ｇ／ｍ　ｌの濃度の ネズミ　（またはヒト）ＩＬ−１３について得られた。

刺激作用は、ＩＬ−２かまたはＩＬ−４のそれよりも低いが、ＩＬ−１０の作用 と同等であった。ＩＬ−４と同様、ＩＬ−２とは異なるが、抗１ｇＭで活性化さ れたＢ細胞に対するＩＬ−１３の補助刺激作用は、培養から３日後に観察され、 そして６日後には事実上検出不能になるまで減少した。

ＩＩ、−１３を、抗ＣＤ４０で活性されたＢ細胞の増殖を促進するその能力につ いて、Ｉ　Ｌ−４およびＩＬ−１０と比較して更に検定した。例えば、２．５ｘ ｌＯ４個の精製された扁桃腺８９２３球を、ＣＤｗ３２発現性り細胞上で、領　 ５μｇ／ｍｌの抗ＣＤ４０抗体Ｍａｂ８９と一緒に、ＩＬ−１３の濃度を増加さ せながらまたはさせることなく培養した。［３Ｈ］−ＴｄＲ取込みを、６日目に 測定した。ネズミおよびヒトＩＬ−１３両方が、抗ＣＤ４０に誘導されたＤＮＡ 合成を強く促進した。最大刺激は、３〜３０ｎｇ／ｍｌのＩＬ−１３で達せられ 、その後、（１０００ｎｇ／ｍｌでさえも）阻害作用を全く示すことなく平坦に なった。これらの培養条件下において、半最大刺激は、３回の独立した実験にお いて０．０３〜０．３ｎｇ／ｍ、ｌで観察された。

次に、ＩＬ−１３の増殖刺激作用をＩ　Ｌ−４およびＩＬ−１０の作用と比較し た。１−１３活性は、培養初期の６日目に検定された場合、ＩＬ−４およびＩＬ −１０の活性と同等であった。１−１３刺激活性は９日目に特に顕著であり、そ れはＩＬ−１０の活性をしのぎ、Ｉ　Ｌ−４の活性をより著しくしのぐ。ＩＬ− １３は１２２日目も刺激作用を示し、またＩＬ−４よりもＩＬ−１０よりも有効 であった。ｉＬ〜１３存在下で増殖した培養物は極めて密な凝集塊を形成した。

凝集塊は解離させるのが極めて難しく、したがって、細胞培養中の生存しうるリ ンパ球の旧敵を極めて不正確にした。それにもかかわらず、細胞培養は５日目毎 に最大２５日間まで分割され、その時点での生存しうるＢリンパ球数は（内輪に 見積もって）約１２倍に増加した。

ＩＬ−１３が、最大限のＢ細胞増殖についてＩＬ−４またはＩＬ−１０と協力し て作用しうるかどうかを研究した。最適濃度のＩ　Ｌ−４と増加濃度のＩＬ−１ ３との組合せの結果、ＩＬ−４によって得られたのと同等のＤＮＡ合成が生じ、 これら２種類のサイトカインの間には相乗作用も相加作用さえもないことが示さ れた。対照的に、ＩＬ−１３とＩＬ−１０の組合せは、それらの刺激作用につい ての相加作用を生じた。Ｂ細胞増殖に対するＩＬ−１３とＩＬ−１０の相加作用 は全試験時間で観察された。総合すると、これらの結果は、ＩＬ−１３がヒトＢ リンパ球の成長因子であることを示した。

＋１−１．３は、抗ＣＤ４０で活性化されたＢ細胞にＩｇＥを分泌させる抗ＣＤ ４０で活性化されたＢ細胞の増殖に対するＩＬ−１３の強力な作用を考慮して、 培養物上澄みの免疫グロブリン含量を検定した。Ｉ　Ｌ−４と同様であるがＩＬ −１０とは異なり、ＩＬ−１３は、抗ＣＤ４０で活性化されたＢ細胞の８日目の 培養物中においてＩｇＭ、ＩｇＧおよびＩｇＡ生産を刺激しなかった。しかしな から、ＩＬ−４３は、Ｂ細胞に用量依存様式でＩｇＥを分泌させることができた （表４）。ＩＬ−１３は、ＩｇＥを誘導するその能力においてＩＬ−４と同等で あった。ＩＬ−４とＩＬ−１３との組合せの結果、ＩＬ−４単独で得られたのと 比較した場合、同等かまたは僅かに増加されたＩｇＥが生産された。ＩＬ−１３ は、休止Ｂ細胞にも抗μ活性Ｂ細胞にもＩｇＥを分泌させることができない。

表４：ＩＬ−１３は、抗ＣＤ４０で活性化されたＢ細胞にＩｇＥを分泌させるサ イトカイン　！ｇＧ　（ｌａｇ／ｅｌｌ　工９八（μｇ／ｍ）　ＸｑＭ　＋μｇ ／＋ａｌ）　ＩｇＥ　＋！１９／１ａｌ１５ｘｌＯ（Ｉｂ７）ＭＩＪＢＩＩＨ胞 ｔ−１抗ＣＤ４０　ｍＡｂ８９ｔ−含む２．５ｘｌＯ３個の照射ＣＤｗ３２　Ｌ 細胞と一緒に、５０Ｕ／ｍｌのＩＬ−４，１１００ｎ／ｍｌのＩＬ−１０，３０ ｎｇ／ｍｌのｈｌＬ−１３を用いることなくまたは用いて１０日間培養した。Ｉ ｇ濃度は、４重反復試験測定値の平均上ＳＤ値を示す。典型的な３回の実験。（ ＜ｂｇ＝１５０ｐｇ／ｍ１未満のＩｇＥ）ＩＬ−４およびＩＬ−１３の作用を更 に比較するために、両方のサイトカインを含むＣＤ４０系において培養されたＢ 細胞を、培養から６日後に表現型を決定した。ＩＬ−１３は、ＩＬ−４によって 得られるのと同等の強度で、培養Ｂ細胞上でＣＤ２３を発現することができる。

しかしながら、ＩＬ−４は、＞９０％の培養Ｂ細胞にＣＤ２３を発現させたが、 ＩＬ−１３はわずが４ｏ％のＢ細胞集団でＣＤ２３を誘導した。更に、ＩＬ−４ は、休止および抗Ｍ活性Ｂ細胞両方でＣＤ２３を容易に誘導することができたが 、ＩＬ−１３はこれらの条件下においてほとんど有効ではなかった。

更に、トランスフェリン受容体発現について、ｃＤ４ｏ系においてＩＬ−４また はＩＬ−１３を用いるかまたは用いることな（６日間培養されたＢ細胞で分析し た。Ｂ細胞は全てトランスフェリン受容体（Ｔ　ｆ　Ｒ）を発現したが、２集団 はＴｆＲ低およびＴｆＲ高で示した発現レベルにしたがって明らかに区別された 。

ＣＤ４０系のみの場合、８０％のＢ細胞はＴｆＲ低であり、５％はＴｆＲ高であ った。ＩＬ−１３を用いて増殖された培養では、５５％の細胞がＴｆＲ低であり 、４０％はＴｆＲ高であった。ＩＬ−４を用いて行なわれた培養においては、１ ０％の細胞がＴｆＲ低であり、８５％がＴｆＲ高であった。

ｓｌｇＤ”Ｂ細胞は天然のＢ細胞から成るが、ｓｌｇＤ−Ｂ細胞は、経中心Ｂ細 胞および記憶Ｂ細胞の混合物から成るので、ｓｌｇＤ“およびｓ［ｇＤ”Ｂ細胞 のＩＬ−４、ＩＬ−１０およびＩＬ−１３に対する反応性を、ＣＤ４０系におい て試験した。培養から６日後の（３Ｈ）ＴｄＲ取込みによって測定したところ、 ｓ１ｇＤ’およびｓｌｇＤ−Ｂ細胞両方が、ＩＬ−４およびＩＬ−４０に応答し て強く増殖した。対照的に、ＩＬ−１３は、ｓｌｇＤ”細胞の抗ＣＤ４０に誘導 されたＤＮＡ合成を優先的に増加させた。更に、ＩＬ−１３およびＩＬ−４は、 ｓ１ｇＤ＋およびｓＩｇＤ−Ｂ細胞両方にＩｇＥを分泌させることができた。

総合すると、これらの結果は、ＩＬ−１３はｓ１ｇＤ＋細胞に優先的に作用し、 したがって、ＩＬ−４によって刺激されるよりも限られた大きさのＢ細胞並集団 に対して作用することを示している。

［Ｌ−１３の生物学的作用はＩＬ−４とは無関係であるＩＬ−１３はＩＬ−４の 多数の生物学的作用を示すので、それはＩＬ−４分泌の誘導によってかまたはＩ Ｌ−４受容体に対する結合によって作用するのかもしれないと考えられた。この 問題に取り組むために、ＩＬ−１３誘導Ｂ細胞増殖について、３種類の異なるＩ 　Ｌ−４アンタゴニスト、すなわち、（１）中和抗ＩＬ−４単りローン性抗体； 　（２）１３０ｋＤａ　ＩＬ−４Ｒの可溶性細胞外ドメイン［ガローンら、Ｅｕ ｒ、Ｊ、Ｉｍｍｕｎｏｌ、２１＋１３６５　（１９９１）を参照されたい］　； 　（３）阻止作用のある抗１３０ｋＤａ　ＩＬ−４Ｒ単クロ一ン性抗体の存在下 において試験した。これら３種類のアンタゴニストは、ＩＬ−１３によって誘導 された増殖に影響を与えることなく、抗ＣＤ４０で活性化されたＢリンパ球の増 殖に対するＩ　Ｌ−４の作用を８０〜９０％まで阻止した。これらのＩＬ−４ア ンタゴニストは、更に、ＩＬ−１３に誘導されたＣＤ２３発現およびＩｇＥ生産 を阻止することはできなかったが、ＩＴ、−４によって誘導されたものを完全に 阻止した。

５ｘ１０４個の高度に精製された（〉９８％ＣＤ２０＋）負に選択された肺臓Ｂ 細胞を、ヒト若しくはマウスＣＤ４０−Ｌまたは対照としてのエンプティｐＪＦ Ｅ−１４ベクターによってトランスフェクションされた１、６ｘｌＯ４個の照射 （７，０００ラド）Ｃｏｓ細胞と一緒に共培養した。ＩＬ−１３またはＩＬ−４ を４００Ｕ／ｍｌ加えた。可溶性抗ＣＤ４０　ｍＡｂ８９および対照のｍＡｂＡ ４を５０μｇ／ｍｌ用いた。培養の最後の１６時間に［３Ｈ］−チミジンを加え た後、３日後に培養物を採取した。Ｂ細胞を、ＩＬ−４、マウスか若しくはヒト ＩＬ−１３を含むＣＯ８上澄み、または上澄みとＩＬ−４若しくはＩＬ−１３の 組合せのいずれかによって刺激した。

ヒトＢ細胞増殖および分化に対するＩＬ−１３の生物学的作用を記載してきた。

ＩＬ−１３は、ＤＮＡ合成を誘導するように抗ＩｇＭ抗体と一緒に補助刺激した が、その作用はＩＬ−２またはＩＬ−４の作用よりもあまり顕著ではなかった。

ＩＬ−１３は、他のサイトカインと同様、Ｂ細胞の抗原受容体によって活性化さ れた増殖を太き（誘導することができなかった。しかしながら、ＩＬ−１３は、 ヒトＦｃ受容体ＣＤｗ３２を発現する線維芽細胞系およびＣＤ４０に対する単ク ローン性抗体から成るＣＤ４０系において培養されたＢ細胞に対する顕著な増殖 促進作用を示した。これらの条件下で、ＩＬ−１３は少なくともＩＬ−４と同程 度活性であったし、Ｂ細胞に対するその作用は長期永続し、したがって、生存し うるＢ細胞の増殖を可能にした。ＩＬ−１３は、活性Ｂ細胞の表現型を変化させ て、Ｂ細胞がＣＤ２３を発現するようにした。

休止および抗ＩｇＭで活性化されたＢ細胞はＩＬ−１３に応答してＣＤ２３を発 現させることができるので、ＣＤ４０で活性化されたＢ細胞でのＩＬ−１３に依 存したＣＤ２３の誘導は、抗ＣＤ４０活性化によって媒介されない。しかしなが ら、ＣＤ２３を発現する細胞の割合は、ＩＬ−４によるよりも、ＩＬ−１３によ る方が低かった。同様に、ＩＬ−４は、ＣＤ４０で活性化されたＢ細胞のほとん ど全部に高レベルのトランスフェリン受容体を発現させた。ＩＬ−１３は、半数 の細胞だけにトランスフェリン受容体を高密度で発現させた。これは、ＩＬ−１ ３が、ＩＬ−４によって影響されるよりも限られたＢ細胞並集団に対して作用し たことを示した。

したがって、天然Ｂ細胞と胚中心および記憶Ｂ細胞とを区別する表面ＩｇＤ（ｓ ｌｇＤ）によって細胞を分離した場合、ＩＬ−１３は、ｓ　Ｉ　ｇＤ”Ｂ細胞に 対してＩＬ−４よりも有効であることが分かった。ＩＬ−４は、ｓｌｇＤ−Ｂ細 胞の増殖をＩＬ−１３よりも増加させることができた。ＩＬ−１３およびＩＬ− ４の異なる集団標的は、示差的なＩＬ−１３およびＩＬ−４受容体発現によって 明らかにすることができ、その実証には、ＷＡ識されたＩＬ−１３のまたはＩＬ −１３受容体に特異的な抗体の生産が待たれる。ｓ　Ｉ　ｇＤ”Ｂ細胞の低い方 の応答は、特に興味深く、更に分析することが約束される。ＩＬ−１３は、ＩＬ −４と同様、ＣＤ４０系において培養されたＢ細胞によるＩｇＧおよびＩｇＭの 合成をほとんど増加させなかった。しかしながら、意外にもＩＬ−１３は、抗Ｃ Ｄ４０で活性化されたＢ細胞にＩｇＥを生産させた。

ＩＬ−１３に応答して生産されたｒｇＥ１１度は、ＩＬ−４に応答して生産され た濃度と同等であった。ＩＬ−４並びにＩＬ−１３は、抗ＣＤ４０で活性化され たＢ細胞によるＩｇＥ合成を誘導することができた。イソタイブスイ・ソチング の結果として、ＩＬ−１３は、Ｉ　Ｌ−４と同様、ｓＩｇＤ”にＩｇＥを分泌さ せることができた。ＩＬ−４と同様、ＩＬ−１３は、休止Ｂ細胞にＩｇＥを分泌 させることができなかった。最初は、このＩＬ−１３に誘導されたＩｇＥ生産は 、ＩＬ−４がＩｇＥ合成の唯一の誘導物質であるように示した他の実験と対照的 である。しかしながら、最近の実験は、ＩｇＥの分泌を引き起こした検定システ ムを記載しており、Ｉ　Ｌ−４は中和抗体によって完全に阻止された。ＩＬ−２ は、黄色ブドウ球菌（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ　ａｕｒｅｕｓ）で活性イ ヒされたＢ細胞による分泌を誘導することが報告されたが、ＩＬ−４は有効では なかった。

これらの実験において、ＩＬ−１３がこれらの作用の原因であった可能性がある 。

１−１３は、Ｂ細胞に対するＩＬ−４と同様の多数の機能を引き起こすが、本実 験は、これらの作用が、ＩＬ−４分泌の可能な誘導または１３０ｋＤａ　ＩＬ− ４受容体の使用とは無関係であることを実証し、例えば、中和抗ＩＬ−４抗体、 阻止作用のある可溶性ＩＬ−４受容体および阻止作用のある抗ＩＬ−４受容体抗 体は、Ｂ細胞増殖およびＩｇＥ分泌に対するＩＬ−１３の作用に影響を与えるこ とができなかった。しかしながら、ＩＬ−１３がＩＬ−４と一緒に若干の共通の 変換器を共有しつるということを除外することはできない。

架橋実験は、１３０ｋＤａ分子とは無関係の６０〜７０および７０〜８０ｋＤａ 成分に対するＩＬ−４の結合を示した。この文脈において、ヒトおよびネズミＩ Ｌ−１３の両方がヒトＢ細胞に対して同様の能率で作用するが、ネズミＩＬ−４ は種特異的であるということは特筆に値する。ＩｇＥ生産におけるＩ　Ｌ−１３ およびＩＬ−４のそれぞれの役割は、ＩＬ−４遺伝子がノックアウトされたマウ ス（例えば、Ｉ　Ｌ−４ノツクアウトマウス）で循環性ＩｇＥ濃度を決定する実 験をした場合に、更に詳しく決定することができる。

最後に、ヒトＩＬ−１３がＴ細胞のみによって生産されるのかどうかまたは他の 細胞種もそれを生産するのかどうかを確証することは重要である。更に、ＩＬ− １３は、白血病および自己免疫疾患で起こるような異常なり細胞増殖に関与する らしい。したがって、ＩＬ−１３のアゴニストまたはアンタゴニストは、このよ うな症状の治療的処置において有用でありうる。

Ｃ１活性ヒトＢ細胞上のＩ　表面マーカーの修飾高度に精製されたＢ細胞は、死 体移植組織提供者から得られた正常ヒト肺臓から単離された。肺臓細胞は、滅菌 金属メツシュを介して肺臓を無菌的に押しつぶすことにより得られ、そして引き 続き用いるためにアリコート中で冷凍した。高度に精製されたＢ細胞（〉９８％ ＣＤ２０＋）は、肺臓細胞を下記のＰＥ結合ｍＡｂ、すなわち、抗ＣＤ３、抗Ｃ Ｄ４、抗ＣＤ８、抗ＣＤ１４、抗ＣＤ１６および抗ＣＤ５６　（ベクトン・ディ キンラン）で染色した後、負のファクスター・プラス・ベクトン・ディキンラン （ＦＡＣ３ｔａｒ　Ｐｌｕｓ　ＢｅｃｔｏｎＤｉｃｋｉｎｓｏｎ）選別によって 得られた。

ヒトＩＬ−１３は最終濃度３０　ｎ　ｇ／ｍ　１で用いられた。組換え体ＩＬ− ４（４００Ｕ／ｍｌで用いられた）はシエリング・リサーチ（Ｓｃｈｅｒｉｎｇ Ｒｓｅａｒｃｈ）（ブルームフィールド、ＮＪ）によって提供された。

５０００個の高度に精製され他Ｂ細胞を、支持細胞およびＰＨＡによる刺激後５ 日目に採取されたクローンＢ２１または５ｐＡ３からの等数のＴ細胞と一緒に、 １０％ＦＣ３，１０μｇ／ｍｌの超純粋トランスフェリン（ピアス）および４０ ０Ｕ／ｍｌの組換え体ＩＬ−４を補足した最終容量０．２ｍｌのイセル（’ｉ’ ５ｓｅｌ’　ｓ）培地中において共培養した。培養は、Ｕ底９６ウエルプレート （リンプロ（Ｌｉｎｂｒｏ））中において８重反復試験で行なわれ、５％ＣＯ２ 中において３７℃で１４日間インキュベートされた。インキュベーション期間の 最後に、それぞれの８個のウェルから上澄みを採取し、イソタイプ決定用にプー ルした。若干の培養において、Ｔ細胞クローンを、Ｔ細胞クローンに由来する原 形質膜５μｇでまたは５０μｇ／ｍｌの抗ＣＤ４０ｍＡｂ８９で買き換えた。

上澄みの１ｇ含量は、ガスカン（Ｇａｓｃａｎ）ら、Ｅｕｒ、ＪＩｍｍｕｎｏｌ 、２２：１１３３　（１９９２）によって記載されたように、ＥＬＩＳＡによっ て決定された。原形質膜は、そこにも記載されたように、ＣＤ４’Ｔ細胞クロー ンＢ２１から製造された。それぞれの１ｇイソタイプの生産量は、Ｂ細胞がＩＬ −４の存在下において膜によって刺激された場合に典型的に最高であったが、典 型的に、Ｉ　Ｌ−１３は同様の作用を有した。１ｇＧ４生産量は特に高かったが 、ＩＬ、−１，３は、Ｔ細胞クローンによる刺激後のＩｇＥ生産に対するＩ　Ｌ −４作用を増加させると考えられた。

高度に精製されたｓ１ｇＤ’牌臓Ｂ細肺臓細胞５０００個／ウェル）を、ｐＪＦ Ｅ１４ベクターでトランスフェクションされたまたはヒト（ｈ）若しくはマウス （ｍ）ＣＤ４０−Ｌによってトランスフェクションされ且つそれを発現する選別 されたＣ０８−７細胞（細胞２５０個／ウェル）と−緒に共培養した。ＩＬ−１ ３（３０％ｇ／ｍｌ）およびＩＬ−４（４００Ｕ／ｍｌ）を加えた。ＥＬＩＳＡ の感度（ＩｇＥおよびＩｇＭについて０．２ｎｇ／ｍｌ、１ｇＧ４および全■ｇ ＧについてＱ、４ｎｇ／ｍｌ）を、検量された１ｇ標準によって決定した（ベー リング（Ｂｅｈｒｉｎｇ）、マールブルグ、ドイツ）。ＩｇＧおよびＩｇＥａ度 両方がＩＬ−１３によって増加した。

Ｄ、ＣＤ４０リガンドの作用 ヒトＣＤ４０リガンド（ｈｃＤ４０−Ｌ）を、活性ＣＤ８＋Ｔ細胞クローンから 構築されたｃＤＮＡライブラリーからクローン化し、そして２種類のｃＤＮＡが ２．１ｋｂおよび１．２ｋｂクローンを示すことを検出した。両方のｃＤＮＡク ローンが、２６１アミノ酸の同一の読み取り枠を有し、そしてそれらの３′非翻 訳末端の長さだけが異なり、おそらく、ＣＤ４　Ｔ細胞クローンにおいてノーザ ン分析によって検出された２、ｌｋｂおよび１．２ｋｂの一時的に発現された＋ ｍＲＮＡ種を示している。ｈｃＤ４０−Ｌ転写物は、更に、ＣＤ４　およびＣＤ ｓ　＋　Ｔ細胞受容体（ＴＣＲ）αβＴ細胞、ＴＣＲγδＴ細胞、天然キラー細 胞、単球、小腸および胎児胸腺細胞中で検出されたが、精製Ｂ細胞、胎児肝、胎 児骨髄、脳、腎臓または心臓中では検出されなかった。

ｈｃＤ４０−ＬによってトランスフェクションされたＣＯ３−７細胞（ＣＯＳ− ７／ｈｃＤ４０−Ｌ）は、形質転換されたエプスタイン−バールウィルス（ＥＢ Ｖ）のホモ型（ｈｏｍｏｔｙｐ　ｉ　ｃ）凝集体および正常Ｂ細胞の誘導によっ て判定されるヒトＢ細胞活性化を誘導した。更に、Ｃ０８−７／ｈＣＤ４０−Ｌ はＢ細胞増殖を誘導し、それはＩＬ−４またはＩＬ−１３によって更に促進され た。ＩＬ−１３は、ＩＬ−４と同様、マウスおよびｈｃＤ４０−Ｌと相乗作用し て、高度に精製されたＢ細胞によるＩｇＭ、全１ｇＧ、ＩｇＧ４およびＩｇＥ生 産を誘導したが、ＩｇＡは生産されなかった。

抗ＩＬ−４抗体は、ＩＬ−４およびＣＯ３−７／ｈＣＤ４０−Ｌに誘導されたＢ 細胞による１ｇ生産を誘導したが、ＩＬ−１３およびＣ０８−７／ｈＣＤ４０− Ｌに誘導されたＢ細胞分化に対する作用はなく、ＩＬ−１３およびｈｃＤ４０− Ｌが、ＩｇＥへのイソタイプスイッチングを含む１ｇ生産を、ＩＬ−４とは無関 係に誘導したことを示した。ｈｃＤ４０−Ｌに誘導されたＢ細胞分化は、可溶性 ＣＤ４０によって阻止され、ＣＤ４０−Ｌについての特異的関与の要件を確証し た。集合的に、これらのデータは、ヒトＣＤ４＋Ｔヘルパー細胞によって発現さ れたＣＤ４０−ＬおよびＩＬ−１３が、Ｂ細胞増殖、分化およびＩｇＥスイッチ ングを引き起こしたＴおよびＢ細胞相互作用の重要な成分であるということを示 す。しかしながら、ｈｃＤ４０−Ｌの分布は、この分子のより広範な機能を示唆 する。

Ｂ細胞増殖および１ｇ生産性細胞への分化の誘導は、Ｔ細胞の助けを必要とする 。Ｂ細胞におけるペプチドクラスＩＩＭＨＣ複合体に対するＴＣＨの結合に関与 する抗原特異的Ｔ細胞およびＢ細胞相互作用は、Ｔ細胞活性化を引き起こす。活 性Ｔ細胞は、接触もサイトカインに媒介されたシグナルも与え、Ｂ細胞増殖およ び分化を誘導する。Ｔ細胞がいったん活性化されると、それらは抗原非依存性ク ラスＩＩＭＨＣ非制限様式で任意のＢ細胞と相互作用することができる。

活性Ｔヘルパー細胞によって生産されたリンホカインは、生産されたＩｇの量を 決定するのみならず、それらはイソタイプスイッチングを支配する。

ＩＬ−４は、ヒトＢ細胞に１ｇＧ４およびＩｇＥ生産への切り替えをさせるＢ細 胞成長因子であるが、ＴＧＦ−βはＩｇＡスイッチングを支配する。活性化後の マウスＴｈ２クローンによって生産されたタンパク質であるＰ２Ｏ３のヒトＣＤ ＮＡ相同染色体は、本明細書中に記載のように、最近になってクローン化され且 つ発現された。ヒトＩＬ（３タンパク質は、ヒト単球およびＢ細胞増殖および分 化を誘導し、ＩＬ−１３と称された。ヒトＩＬ−１３は、分子質量（Ｍ　）が１ ０，０００の１３２アミノ酸の非グリコジル化タンパク質であり、Ｔ細胞によっ て生産される。ＩＬ−１３は、ＩＬ−４以外の他のサイトカインと有意の相同性 がなく、約３０％相同である。ＩＬ−１３は、ＩＬ−４と同様、ヒｌ−Ｂ細胞に おけるＩｇＧおよびＩｇＥスイッチングを、ＩＬ−４とは無関係に特異的に誘導 することができる。

活性Ｔヘルパー細胞によって与えられた接触媒介シグナルは、抗ＣＤ４０　ｍＡ ｂで置き換えることができる。接触Ｔヘルパーシグナルの一つは、活性ＣＤ４十 Ｔ細胞上で発現された３３ｋＤａ分子であるＣＤ４０リガンド（ＣＤ４０−Ｌ） によって与えられる。ＣＤ４０−Ｌトランスフェリントは、ＩＬ−４存在下にお いでＢ細胞を増殖させ且つＩｇＥを生産させた。ここに、活性ＣＤ８　Ｔ細胞ク ローンから構築されたｃＤＮＡライブラリーからのヒトＣＤ４０−Ｌクローンの 単離を記載する。ヒトＣＤ４０−Ｌの分布、活性Ｂ細胞に対するその能力、およ びＢ細胞を区別するためのＩＬ−４と比較されるＩＬ−１３との共活性化分子と してのその役割について検定した。ヒトＣＤ４０−Ｌによってトランスフェクシ ョンされた細胞は、Ｉ　Ｌ−１３の存在下において、誘導Ｂ細胞凝集、増殖、お よびＩｇＥ合成を含む顕著な１ｇ生産を示した。

試薬 ヒトｒｌＬ−４は、シエリング・ブルー・リサーチ（ブルームフィールド、ＮＪ ）によって提供さね、ヒトｒｌＬ−１３は、Ｗ、ダンク（Ｄ　ａ　ｎ　ｇ）　（ ＤＮＡＸリサーチ・インスティトウート、パロ・アルドＣＡ）によって提供され た。ＣＤ４０１ｇ融合タンパク質は、ヒトＩｇＧ１をコードするｃＤＮＡフラグ メントに対するＣＤ４０の細胞外ドメインをコードするｃＤＮＡセグメントの融 合によって得られた。ｍＡｂ８９は、Ｊ、バンチエル−（Ｂａｎｃｈｅｒｅａｕ ）博士（シェリング・ブルー、ダージリー、フランス）によって快く提供された 。ストレプトアビジン−ＰＥおよび全抗体は、特に断らない限り、ベクトン中デ ィキンラン（マウンテン・ビュー、ＣＡ）に由来した。

細胞精製および培養 ８９２８球（〉９８％ＣＤ２０＋）を、フィコール・ハイパクー（Ｆｉ　ｃｏ　 １１−Ｈｙｐａｑｕｅ）（ファーマシア・ファイン・ケミカルズ（Ｐｈａｒｍａ ｃｉａ　Ｆｉｎｅ　Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ）、ビスカタウエイ、ＮＪ）での密度勾 配遠心分離を用いて肺臓から精製した後、ファクスター・プラス＋ （ベクトン・ディキンラン）を用いる負の細胞選別を行なった。表面１ｇＤ　正 細胞は、負に選別されたＢ細胞集団から直接的に選別された。ＣＤ４＋Ｔ細胞ク ローンＢ２１およびＣＤ８＋Ｔ細胞クローンＡＩＯは、ロンカロロ（Ｒｏｎｃａ ｒｏｌｏ）　ら、Ｊ、Ｅｘｐ、Ｍｅｄ、１６７：１５２３　（１９８８）によっ て記載された。共培養実験において、種々の多数の精製Ｂ細胞を、Ｕ底９６ウエ ルトレー中の０．２ｍｌ中において種々の濃度のＣ０８−７細胞と一緒に培養し た。

１０日後、培地の５０％を補充し、そして１４日後に上澄みを採取し且つＩｇに ついてＥＬＩ　ＳＡによって検定した。ＣＯ５−７細胞は、一時的にトランスフ ェクションされた。ＣＤ４０−Ｌ染色用に、ＣＯ３−７またはＢ２１細胞を、Ｐ ＢＳ、１％ＦＣ３中の１．４μｇ／ｍｌのビオチニル化ＣＤ４０−Ｉｇと一緒に 氷上で２０分間インキュベートし、１％ＦＣ３含有ＰＢＳ中で２回洗浄し、そし て１１５希釈のストレプトアビジン−ＰＥによって染色し、そしてまた２回洗浄 した。ＣＤ４０−Ｌを特異的に発現する細胞を、ファクスター・プラス（ベクト ン・ディキンラン）を用いて使用前に選別した。

ヒトおよびマウスＣＤ４０−Ｌ　ｃＤＮＡＮ、　ハラダ（Ｈａｒａｄａ）博士お よびＲ，チャン（Ｃｈａｎｇ）博士（ＤＮＡＸリサーチ・インスティトウート） によってＰＣＲ製品として提供されたマウスＣＤ４０−Ｌ　ＤＮＡを、哺乳動物 発現ベクターｐＪＦＥ１４中にサブクローン化した。ヒトＣＤ４０−Ｌを、マウ スＣＤ４０−Ｌ　ｃＤＮＡをプローブとして用いることによってクローン化して 、ＣＤ８＋Ｔ細胞クローンＡＩＯに由来するｃＤＮＡライブラリーのコロニープ ロットをスクリーニングした。ライブラリーを製造するために、１０８個のＡＩ Ｏ細胞を１０μｇ／ｍｌのｃｏｎＡによって８時間活性化し、採取し、そしてＲ ＮＡについて抽出した。ｍＲＮＡを、ファーマシア（ウプサラ、スウェーデン） ｍＲＮＡ精製キットを用いて精製した。ＣＤＮＡを合成し、そして本質的にはス ーパースクリプト・プラスミド・システム（ＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔ　Ｐｌａｓ ｍｉｄ　Ｓｙｓｔｅｍ）（ＢＲＬ％グランド・アイランド、ＮＹ）を用いる製造 者取扱説明書にしたがってクローン化し、唯一の変更はクローニング用のベクタ ーとしてｐＪＦＥ１４を用いることであった。ライブラリーは、平均インサート 寸法が１．４ｋｂの１０６個の独立クローＲＮＡを、ＲＮＡゾルＢ　（ＲＮＡｚ ｏｌ　Ｂ）（ＣＮＮＡ：バイオチク（Ｂｉｏｔｅｃｈ）、フレンズウッド、ＴＸ ）を用いて製造者の取扱説明書にしたがって単離した。脳、心臓、腎臓および小 腸からのＲＮＡは、クロンチク（Ｃ１ｏｎｔｅｃｈ）（パｏ−アルド、ＣＡ）に 由来した。ｃＤＮＡは、スーパースクリプト（ＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔ）（ＢＲ Ｌ）を用いて合成し、ＰＣＲ反応は、シーンアンプＰＣＲシステム（ＧｅｎｅＡ ｍｐ　ＰＣＲＳｙｓｔｅｍ）（パーキン・エルマー−シータス（Ｐｅｒｋｉｎ− Ｅｌｍｅｒ　Ｃｅｔｕｓ）、エメリービル、ＣＡ）において９４℃、５５℃およ び７２℃でそれぞれ０．５分間、０．５分間および１分間の３０サイクルで行な った。ＣＤ４０−Ｌ転写物の検出用プライマーは、５’　−ＡＣＡ　ＧＣＡ　Ｔ ＧＡ　ＴＣＧ　ＡＡＡ　ＣＡＴＡＣＡ−３’　、５’　−ＴＧＧ　ＣＴＣＡＣＴ 　ＴＧＧ　ＣＴＴ　ＧＧＡＴＣＡ　ＧＴＣ−３’およびヒボキサンチンホスホリ ボシルトランスフェラーゼ（ＨＰＲＴ）転写物用に５’　−ＴＡＴ　ＧＧＡ　Ｃ ＡＧ　ＧＡＣＴＧＡＡＣＧ　ＴＣＴ　ＴＧＣ−３’　、５’　−ＧＡＧ　ＡＣＡ 　ＡＡＣＡＴＧＡＴＴ　ＣＡＡ　ＡＴＣＣＣＴ　ＧＡ−３’　であった。

ＰＣＲ反応の生成物を、１．２％アガロースによって電気泳動させた、そしてシ ーンスクリーン（ＧｅＨ６Ｓｃｒｅｅｎ）ナイロン膜（ＮＥＮリサーチ・プロダ クツ（Ｒｅｓｅａｒｃｈ　Ｐｒｏｄｕｃｔｓ）、ボストン、ＭＡ）に対して製造 者の取扱説明書にしたがって毛管プロッティングによって移した。ノーザン分析 用には、ＲＮＡを０．８５％アガロースによって電気泳動させ、そしてＢＡ−Ｓ ニトロセルロース（シュライヒャー・アンド・シューエル（Ｓｃｈｌｅｉｃｈｅ ｒ　ａｎｄ　５ｃｈｕｅｌｌ）、ケオネ、ＮＨ）に対して移した。ノーザンおよ びサザンプロット用のＣＤ４Ｏ−Ｌ３２Ｐ　ｃＤＮＡプローブは、ＣＤ４０−Ｌ コーディング領域を含むｐＪＦＥ１４−ＣＤ４０−Ｌの１．３ｋｂのＥｃｏＲＩ −Ｘｈｏｌフラグメントを鋳型として用いて製造された。

ヒトＣＤ４０−Ｌのクローニングおよび特性決定＋ ヒトＣＤ４０−Ｌのクローンを得るために、ＣＤ８　Ｔ細胞クローンＡＩＯに由 来するｃＤＮＡライブラリーを、プローブとしてマウスＣＤ４０−Ｌ　ｃＤＮＡ を用いてスクリーニングした。アーミテッジ（Ａｒｍｉｔａｇｅ）ら、Ｎａｔｕ ｒｅ　５７：８０　（１９９２）を参照されたい。

正クローンは、ライブラリー中に０．００５％で存在し、支配的に２．　１ｋｂ 長さクローンで示されたが、１．２ｋｂの別のクローンも検出された。両方のＣ ＤＮＡが、２６１アミノ酸の同一の読み取り枠を含んでおり、それが、非修飾分 子質量２９２５４のタンパク質を生じると考えられた。２．ｌｋｂおよび１．２ ｋｂのクローンは、それらの３′非翻訳末端の長さだけが異なっていて、おそら （はノーザン分析によって大きさが分かった２種類のｍＲＮＡ種であると考えら れる。ここでクローン化されたヒトＣＤ４０−Ｌのヌクレオチドおよび予想アミ ノ酸配列は、ホレンボ−（Ｈｏｌ　ｌｅｎｂａｕｇｈ）ら、ＥＭＢＯＪ、１１： ４３１３　（１９９２）；およびスブリッグス（Ｓｐｒｉｇｇｓ）ら、Ｊ、旦工 且、Ｍｅｄ、１７６　：１５４３　（１９９２）によって報告されたものと同一 であった。

との組合せで用いると、特異的発現は、２．１ｋｂヒトＣＤ４０−Ｌ　ｃＤＮＡ を含む発現プラスミドｐＪＦＥ１４によって一時的にトランスフェクションされ たＣ０８−７細胞上のヒトＣＤ４０−Ｌから容易に検出されたが、エンプティｐ ＪＦＥ１４ベクターＤＮＡによってトランスフェクションされた対照細胞では検 出されなかった。ヒトＣＤ４Ｏ−Ｆｃ試薬は、マウスＣＤ４０−Ｌ　ｃＤＮＡを 含む同様の発現ベクターによってトランスフェクションされたＣ０８−７細胞と も反応したが、これは、マウスＣＤ４０−Ｌに対するヒトＣＤ４０の交雑種結合 を示している従来の研究と一致する。

ＣＤ４０−Ｌは、Ｂ細胞のホモ型凝集およびＢ細胞増殖を誘導するＣＤ４０に対 する抗体によるＢ細胞活性化は、ホモ型凝集を引き起こす。ＣＤ４０−Ｌが同様 に作用したかどうかを決定するために、ＣＤ４０−Ｌを発現するＣＯ３−７細胞 をＦＡＣ８によって精製し、そして精製Ｂ細胞または、ＥＢＶで形質転換された Ｂ細胞系であるＪＹ細胞と一緒に共培養した。実際に、ヒトまたはマウスＣＤ４ ０−Ｌを発現するＣＯ３−７細胞とのインキュベーション後にＪＹ細胞の凝集が 観察されたが、偽トランスフェクションされたＣ０８−７細胞は無効であった。

同様に、ヒトまたはマウスＣＤ４０−Ｌを発現する細胞と一緒に共培養された精 製Ｂ細胞は、顕著なホモ型凝集を示したが、トランスフェクションされなかった Ｃ０８−７細胞と一緒に培養されたＢ細胞は分散した状態のままであった。

顕微鏡的に観察されたＢ細胞活性化と一致して、精製Ｂ細胞をＣ０８−７／ヒ１ −ＣＤ４０−ＬまたはＣ０８−７／マウスＣＤ４０−Ｌと一緒に共培養した場合 に、有意の増殖が観察された（表５を参照されたい）。この増殖は、ＩＬ−４ま たはＩＬ−１３の存在下で更に増加した。ＩＬ−４およびＩＬ−１３の増殖促進 作用は、これらの培養条件下では同等であると考えられる。

表５・ＩＬ−１３またはＩＬ−４、およびヒトまたはマウスＣＤ４０−Ｌを発現 するＣＯ８細胞によるＢ細胞増殖の誘導３ＨＴｄＲ取込み （ｃ、ｐ、　ｍ、　ｘｌＯ”） Ｂ　Ｃ９１±　Ｏ Ｂ　＋　ＩＬ−１３０，１±　Ｏ Ｂ　＋　ＴＬ−４０，２±　Ｏ Ｂ＋ＩＬ−４＋　対照ｍＡｂ　０．　２　±　ＯＢ＋ＩＬ−４＋　抗−ＣＤ４０ 　２１．２　±　４．ＩＣＯ３ｈｃＤ４０−Ｌ　１．１　±　０．２ＣＯ８ｍｃ Ｄ４０−Ｌ　１．０　±　０．ＩＣＯ３１，４±　０．２ Ｂ　＋　ＣＯ３ｈｃＤ４０−Ｌ　１６．９　±　２．４Ｂ　＋　ＣＯ３ｍｃＤ４ ０−Ｌ　１７．５　±　２．１Ｂ　＋　ＣＯ８１，２±　０．２ Ｂ　＋　ＩＬ−４ＣＯ３ｈｃＤ４０−Ｌ　３０．　７　＋　３．　８Ｂ　＋　Ｉ Ｌ−４ＣＯ３ｍｃＤ４０−Ｌ　３５．　４　±　４．５Ｂ　＋　ＩＬ−４ＣＯ３ １，３±　０．２８　＋　１．−１３　ＣＯ３ｈｃＤ４０−Ｌ　２２．５　±　 ３．ＯＢ　＋　ＩＬ−１３ＣＯ３ｍｃＤ４０−Ｌ　３３．８±２．８Ｂ　十　Ｉ Ｌ−１３ＣＯ８１，２±　０．４５ｘｌＯ’個の高度に精製された（９８％　Ｃ Ｄ２０＋）負に選別された肺臓Ｂ細胞を、ヒト若しくはマウスＣＤ４０−Ｌまた は対照としてのエンプティｐＪＦＥ−１４ベクターによってトランスフェクショ ンされた１、６ｘｌＯ’個の照射（７，０００ラド）ＣＯ８細胞と一緒に共培養 した。ＩＬ−１３またはＩＬ−４を４００Ｕ／ｍｌで加えた。可溶性抗ＣＤ４０ 　ｍＡｂ８９および対照ｍＡｂＡ４を５０μｇ／ｍｌで用いた。培養物は、最後 の１６時間の培養中に３Ｈチミジンを加えた後３日後に採取された。値は、３重 反復試験の平均および標準偏差を示す。

上Ｌ−１３１１．舌止辷ユ乙Ｍ狙±吐上ロ嘘竪担１遺刊−遠、Ｌｄ孝を誘導する ヒトまたはマウスＣＤ４０−Ｌを発現するＣＯ５−７細胞は、更に、ＩＬ−４ま たはＩＬ−１３の存在下において、高度に精製された天然表面ＩｇＤ　ヒトＢ細 胞による１ｇ生産を誘導した（表６）。かなりの濃度のＩｇＭ、１ｇＧ４、全Ｉ ｇＧおよびＩｇＥが生産されたが、１ｇＡは生産されなかった。ＩＬ−４がこれ らの培養条件下でＩｇＡ合成を特異的に阻害することを示す従来の知見と同等の ＩｇＡ生産はなかった。ＩＬ−１３によって誘導されたＩｇ濃度は、Ｉ　Ｌ−４ によって誘導されたのと同様の範囲であった。

偽トランスフェクションされたＣＯ３−７細胞の存在下において、１ｇ生産は得 られなかった（表６）。ＣＤ４０−Ｌを発現するＣ０８−７細胞による１ｇイソ タイプの誘導は、ＣＤ４０−１ｇ　（１０μｇ／ｍｌ）によって有効に阻止され て、Ｂ細胞の分化および１ｇ生産の誘導にはＣＤ４０−Ｌの特異的関与力坏可欠 であることが確証された。ＣＤ４０−１ｇによる全１ｇＧ生産の阻害は、ＣＤ４ ０−１ｇ融合タンパク質のＩｇ部分がＩｇＧ　ＥＬＩＳＡにおいて強いシグナル を生じたので、測定することはできなかった。

ＣＯ３−７／ＣＤ４０−Ｌ細胞の存在下においてＩＬ−１３によって誘導された １ｇＧ４およびＩｇＥ生産ヲ含むＩｇ生産ハ、抗ＩＬ−４ｍＡｂ　（１０ｕｇ／ ｍ１）によって阻止されなかったが、これらのｍＡｂは、ＣＯ５−７／ＣＤ４０ −Ｌの存在下において、ＩＬ−４に誘導された１ｇ生産を強く阻止した（表６） 。これらの結果は、ＩＬ−１３が、ＩＬ−４とは無関係に１ｇ生産を誘導するこ とを示している。更に、それらは、ＩＬ−１３が、マウスまたはヒトＣＤ４０− Ｌを発現するＣＯ３−７細胞によ、って与えられた接触媒介補助刺激シグナルの 存在下において、天然表面１ｇＤ　ヒトＢ細胞をＩ　ｇＧ４およびＩｇＥ生産性 細胞に切り替えるように支配するもう一つのサイトカインであることを示してい る表ｓ：　ＩＬ−１３＊たはＩＬ−４、およびｃＤ４ｏ−Ｌを発現すルＣＯＳ細 胞１．：よるＩｇ合成の誘導 高度に精製されたｓｌｇＤ　肺臓Ｂ細胞（細胞５．０００個／ウェル）を、トラ ンスフェクションされたｐＪＦＥ１４ベクターまたはヒト（ｈ）若しくはマウス （ｍ）ＣＤ４０−Ｌによってトランスフェクションされ且つそれを発現する選別 されたＣ０８−７細胞（細胞２５０個／ウェル）と−緒に共培養した。ＩＬ−１ ３（３０ｎ　ｇ／ｍ　ｌ）およびＩＬ−４（４００Ｕ／ｍｌ）を指示通り加えた 。ＥＬＩＳＡの感度（ＩｇＥおよびＩｇＭについて０．２ｎｇ／ｍｌ、１ｇＧ４ および全１ｇＧについて０．４ｎｇ／ｍｌ）を、検量された１ｇ標準によって決 定した（ベージング、マールブルグ、ドイツ）。

ゝ加えられたＣＤ４０−Ｉｇ融合タンパク質のＩｇ部分が検出されたので、Ｉｇ Ｇ測定は不可能であった。

ｈＣＤ４０−Ｌの発現および分布 ＋ 休止ＣＤ４　Ｔ細胞クローンは、Ｔ細胞に対して結合したビオチニル化ＣＤ４０ −１ｇに対するＰＥ標識ストレプトアビジンの結合によって判定したところ、Ｃ Ｄ４０−Ｌを全く発現しないかまたは極めて低濃度で発現した。しかしながら、 ＣＤ４０−Ｌの有意の発現は、ＰＨＡのよる活性化から４時間後にＣＤ４＋Ｔ細 胞クローンＢ２１上で観察された。Ｂ２１細胞の表面上のその存在と一致して、 ｈｃＤ４０−Ｌ　ｍＲＮＡは、ノーザン分析によっておよびＰＣＲによって検出 された。低濃度のｈｃＤ４０−Ｌ　ｍＲＮＡは、休止Ｂ２１細胞において発現さ れた。速度論実験は、２．１ｋｂおよび１．２ｋｂのｍＲＮＡ種が、Ｔ細胞の活 性化の様式にかかわりなく、活性化後２時間以内に既に最大限に発現されたこと を示した。

発現は、４時間後にある程度減少した。ＣＤ４０−Ｌ　ｍＲＮＡ発現の著しい減 少が、活性化から７時間後に観察されたが、かなりの濃度のＣＤ４０−ＬｍＲＮ Ａが、活性化から４８時間後にまだ見られた。Ｃａ２＋イオノホアおよびＰＭＡ ：ＣｏｎＡ、抗ＣＤ３　ｍＡｂおよびＰＭＡ、またはＰＨＡおよびＰＭＡによる Ｂ２１細胞の活性化は、主な定量的差異またはｈｃＤ４０−Ｌ　ｍＲＮＡ発現の 速度論における差異を生じなかったが、Ｃａ２＋イオノホアおよびＰＭＡによる 活性化か僅かながら有効であると考えられる。ｈｃＤ４０−Ｌの分布は、ＰＣＨ によって、ヒトＣＤ４Ｃ１−Ｌ遺伝子のコーディング領域に相補的なプライマー を用いて分析された。ＣＤ４０−Ｌ転写物は、Ｂ細胞、脳、腎臓、心臓、胎児肝 または胎児骨髄中に存在しなかったが、ＣＤ４　Ｔ細胞クローン、ＣＤ８　Ｔ細 胞クローン、ＴＣＲγδ　Ｔ細胞クローン、精製ＮＫ細胞、単球、胎児胸腺細胞 および小腸において容易に検出することかできた。小腸でのＣＤ４０−Ｌの発現 は、ＭＮＣの浸潤によるＩＬ−１３生産を反映しているかもしれない。

Ｃ０８−７細胞中でクローン化され且つ発現されたヒトＣＤ４０−Ｌ　ｃＤＮＡ は、ヒトＢ細胞活性化の誘導において極めて有効である。ＣＯ３−７／ｈＣＤ４ ０−Ｌは、抗ＣＤ４０　ｍＡｂによって観察されたのと同様に、ＥＢＶで形質転 換されたおよび正常のＢ細胞のホモ型凝集並びにＢ細胞増殖を誘導した。更に、 Ｉｇ分泌性形質細胞へのＢ細胞の分化か、Ｉ　Ｌ−４またはＬＬ−１３の存在下 においＴ［察すレタ。２．１ｋＭ）ｈｃＤ４０−Ｌ　ｃＤＮＡは、ＣＤ８　Ｔ細 胞ｃＤＮＡライブラリーから単離さね、そして配列比較によって初期に記載され た１、８ｋｂ　ｃＤＮＡと同一であった完全な長さのクローンであると考えられ た。更に別の１．２に、ｂ　ｃＤＮＡクローンは、おそらく、活性Ｔ細胞中で検 出さね、そして同様のタンパク質を明らかにコードしているその大きさの第二ｍ ＲＮＡ種である。

ｈｃＤ４０−Ｌは、対応するマウス遺伝子と８０％相同である。興味深いことに 、ｈｃＤ４０−Ｌは、ＴＮＦ−αおよびＴＮＦ−βともある程度相同である。

マウスＣＤ４０−Ｌ中の４個のシスティン残基の位置および可能な細胞外Ｎ結合 グリコジル化部位は、ヒトＣＤ４０−Ｌ中に保存されているが、しかしながら、 ヒトタンパク質は、１９４位に置換された追加のシスティン残基を有する。ＣＤ ４０−Ｌは、ＩＩ型膜固定タンパク質であると報告されており、アミノ末端付近 に可能なシグナル／アンカードメインを示すヒトタンパク質の疎水性部分（アミ ノ酸２２〜４５）が存在する。ＣＯ３−７／ＣＤ４０−Ｌによって誘導されたＢ 細胞増殖は、ＩＬ−４またはＩＬ−１３によって増加された。ＩＬ−４およびＩ Ｌ−１３は、等しく有効であると考えらね、Ｉ　Ｌ−１３は、ＩＬ−１４と同様 に、Ｂ細胞増殖促進活性を有することが示された。更に、ＩＬ−１３は、Ｉ　Ｌ −４と同様に、ＣＯ３−７／ｈｃＤ４０−Ｌによって補助刺激された天然表面１ ｇＤ十Ｂ細胞の培養において１ｇ生産を誘導した。

かなりの濃度のＩｇＭ、１ｇＧ４、全１ｇＧおよびＩｇＥがこれらの培養条件下 で生産された。ＩＬ−４およびＩＬ−１３と、ｈＣＤ４０−Ｌとによって誘導さ れた１ｇ生産のプロフィールは、ＩＬ−４および抗ＣＤ４０　ｍＡｂの存在下で 得られたのと同様である。したがって、ＩＬ−１３およびＩＬ−４は、Ｂ細胞に おいて増殖およびｒｇ合成両方を誘導する場合に等しく強力であると考えられる 。更に、これらの結果は、ｈｃＤ４０−Ｌが、ＩＬ−４またはＩＬ−１３に誘導 されたＢ細胞分化のための補助刺激シグナルを与えることを示しており、Ｂ細胞 活性化および分化におけるＣＤ４０の重要な役割が確証された。これらの実験は 天然ｓ１ｇＤ　を用いて行なわれたので、これらの結果は、ＩＬ（３が、工Ｌ− ４に加えて、Ｂ細胞をＩ　ｇＧ４およびＩｇＥ生産性細胞に切り替えるように＋ 支配することができるもう一つのＣＤ４　Ｔ細胞由来リンホカインであるという 従来の知見を確証する。ｈｃＤ４０−Ｌの存在下においてＩＬ−１３によって誘 導された１ｇＧ４およびＩｇＥ生産を含む１ｇ生産が、抗ＩＬ−４ｍＡｂによっ て阻止されなかったことは、ＩＬ−１３の作用がＩ　Ｌ−４とは無関係に媒介さ れていることを示した。

ＣＤ４０−Ｌトランスフエクタントによって与えられた助けおよびＣＤ４０−＋ １ｇによるこの助けを特異的に阻止することは、ＣＤ４　Ｔ細胞上のＣＤ４０− Ｌの発現が、Ｂ細胞活性化および分化をもたらす抗原性および非特異的Ｔ−Ｂ細 胞相互作用両方の重要な成分であるらしいということを示した。これらのデータ は、マウスＣＤ４０−Ｌに対するｍＡｂまたはＣＤ４０−１ｇを用いて実施され た阻止実験と同等であり、それは、ＣＤ４０−ＬおよびＣＤ４０相互作用がマウ ス系におけるＴ細胞の助けに重要であることを示した。ＣＤ４０および活性ＣＤ ＋ ４　Ｔ細胞によるシグナル生成の結果に差があることに注目するのは重要であり 、更に別のＴ細胞表面分子が生産的Ｔ−Ｂ細胞相互作用に関与していることが示 唆される。事実、活性ＣＤ４＋Ｔ細胞上で発現されたトランスメンブラン型ＴＮ Ｆ−αも、Ｔ細胞に誘導されたＢ細胞活性化および分化に関係している。

これらの機能の類似性を考えると、ＣＤ４０−Ｌおよび細胞表面型のＴＮＦ−α は相同であり、しかもＣＤ４０およびＴＮＦ受容体の場合と同様に、若干の構造 的類似性を共有することは興味深い。クローン化ヒトおよびマウスＣＤ４０−Ｌ によってヒ１−Ｉ３細胞に与えられた実質的な助りは、ＣＤ４０によるシグナル 生成が、Ｂ細胞の生存、活性化および分化にとってかなり重要であるということ を実証した従来の研究と一致する。マウスＣＤ４０−Ｌは、ヒトＢ細胞を活性化 する場合にヒトＣＤ４０−Ｌと同程度に有効であると考えらね、これは、ヒトＣ Ｄ４０を結合するネズミＣＤ４０−Ｌの能力と一致する。ＣＤ４０交雑種を結合 するマウスおよびヒトＣＤ４０−Ｌ両方のタンパク質配列およびその能力の類似 性は、これが、そのように十分に保存されるために重要なインビボ相互作用であ ることを示す。

＋ ヒトＩＬ−１３ｃＤＮＡは、ＣＤ４０−Ｌと同様のＣＤ８　Ｔ細胞クローンライ ブラリーから単離された。しかしながら、ＩＬ−１３はＣＤ８＋Ｔ細胞中で発現 されるが、はるかに多くのｌ　Ｌ−１３がＣＤ４＋Ｔ細胞中で発現される。Ｉｇ Ｅ合成の誘導のためのこれら２種類の新規の分子の組合せの有効性、およびＣＤ ４＋Ｔ細胞によるそれらの豊富な同時発現は、Ｔ細胞活性化後のＩＬ−１３ｍＲ ＮＡの長期の発現と共に、インビボのＩｇＥ生産およびＩｇＨに媒介されたアレ ルギー反応に寄与している機序でありうる。

これらの実験は、ＣＤ４＋Ｔ細胞上で発現されたＣＤ４０−Ｌが、Ｂ細胞の活性 化に関係しているので、その機能に焦点を合わせた。遺伝子がクローン化された ＣＤ８＋Ｔ細胞を含む、ＣＤ４”Ｔ細胞以外の細胞上でのＣＤ４０−Ｌ発現は、 その分子についてのＴ−Ｂ細胞相互作用よりも広範な機能を示唆する。ＣＤ４０ −Ｌは、他の細胞種でおよびＣＤ４　Ｔ細胞でも発現されると考えらね、これは 、Ｂ細胞などのＣＤ４０正細胞に対して一方向刺激をただ与えることよりもむし ろ、それらの機能にとって重要な意味がある。例えば、胸腺細胞および胸腺上皮 におけるＣＤ４０−ＬおよびＣＤ４０発現は、Ｔ細胞発生に関与した相互作用を 示すものでありうる。

Ｅ、Ｉ　Ｅスイッチング 本実験列は、ＩＬ−１３が、ヒトＢ細胞による１ｇＧ４およびＩｇＥ合成を誘導 したことを実証した。ＩＬ−１３は、活性ＣＤ４＋Ｔ細胞またはそれらの膜の存 在下において培養された未分別末梢血単核細胞（ＰＢＭＮＣ）および高度に精製 されたＢ細胞によるＩ　ｇＧ４およびＩｇＥ合成を誘導した。ＩＬ−１３に誘導 された１ｇＧ４およびＩｇＥ合成は、抗ＩＬ−４単りローン性抗体（ｍＡｂ）を 中和することによってそれが影響されなかったので、ＩＬ−４非依存性であった 。高度に精製されたｓ１ｇＤＢ細胞は、更に、ＩＬ−１３によって１ｇＧ４およ びＩｇＥを生産させることができ、これらイソタイプの生産は１ｇＧ４およびＩ ｇＥスイッチングを反映したが、預託されたＢ細胞の選択的成長を反映しなかっ たことを示した。最適濃度で一緒に加えられたＩＬ−４およびＩＬ−１３には相 加作用も相乗作用もなく、共通のシグナル生成経路が関与しているらしいことが 示唆された。

この概念は、ＩＬ−１３が、ＩＬ−４と同様に、Ｂ細胞上のＣＤ２３発現を誘導 し且つＣＤ７２、表面１　ｇＭ　（ｓ　Ｉ　ｇＭ）およびクラスＩＩＭＨＣ抗原 発現を増加させたという知見によって支持される。更に、ＩＬ−４と同様、ＩＬ −１３は、高度に精製されたＢ細胞中で生殖系列ε転写物を誘導した。集合的に 、これらのデータは、ＩＬ−１３が、ＩＬ−４に加えて、天然ヒトＢ細胞をＩ　 ｇＧ４およびＩｇＥ生産に切り替えるように効率よ（支配するもう一つのＴ細胞 誘導サイトカインであることを示した。

Ｂ細胞は、ＣＤ４”Ｔ細胞によって与えられた補助刺激因子の存在下において５ １ｇＭ１ｇＭ媒介ノブナルして１ｇイソタイプスイッチングおよび１ｇ分泌性細 胞への分化を行う。抗原特異的Ｔ−Ｂ細胞相互作用は、Ｂ細胞上のペプチド−ク ラスＴＩ主要組織適合性複合体（ＭＭＣ）に対するＴ細胞受容体の結合を必要と し、これがＴ細胞活性化およびサイトカイン合成を引き起こす。Ｔ細胞がいった ん活性化されると、それらは抗原非依存様式でＢ細胞を活性化することができる 。

サイトカインは、Ｂ細胞増殖および分化に不可欠であり、すなわち、それらはＩ ｇ分泌を定量的に決定するのみならず、１ｇイソタイプスイッチングも支配しす る。Ｔ　Ｌ−４は、１ｇＧ４およびＩｇＥスイッチングを誘導するが、トランス フォーミング成長因子−β（ＴＧＦ−β）は、ＩｇＡスイッチングを支配する。

加えて、ＣＤ４“Ｔ細胞によって与えられた接触媒介シグナルは、Ｂ細胞増殖お よび［ｇ生産に必要とされる。上記の、活性ＣＤ４”Ｔ細胞上で発現されるＣＤ ４０のリガンドは、マウスおよびヒト両方のＢ細胞によるＩＬ−４依存１ｇＥ生 産のための補助刺激シグナルとして作用する一つのこのような膜に関係した分子 であることが分かった。例えば、アーミテソジら、Ｎａｔｕｒｅ　３５７：８０ （１９９２）を参照されたい。更に、いくつかのサイトカイン、例えば、ＩＬ− ２、ＩＬ−５、ｌ−６、ＩＬ−８、ＴＬ−１０、ＩＬ−１２、インターフェロン −α（ＩＦＮ−α）、ＩＦＮ−γ、腫瘍壊死因子−α（ＴＮＦ−α）およびＴＧ Ｆ−βは、ＩＬ−４に誘導された１ｇＧ４およびＩｇＥ合成を調節する。

ＩＬ−４は、ＩｇＥ合成を誘導することができる唯一のサイトカインであると考 えられてきた。試験された１６種類のサイトカインの内、ＩＬ−４は、生殖系若 しくは生産的ε転写物またはＩｇＥ合成を誘導する唯一のもののであった。更に 、抗■Ｌ−４ｍＡｂは、ＩｇＭｉｇＧまたはＩｇＡ合成にほとんど影響を与える ことなく、ＩＬ−４生産性Ｔ細胞クローンによって誘導されたＩｇＥ合成を優先 的に阻害する。更に、ネズミのモデルにおいて、抗ＩＬ−４抗体は、他の１ｇイ ソタイプに影響を与えることなく、インビボＩｇＥ合成を強く阻害する。

最も重要なことに、Ｉ　Ｌ−４欠損マウスは、線虫感染後のそれらの血清中にＩ ｇＥが欠けている。しかしながら、非ＩＬ−４生産性Ｔ細胞クローンは、精製Ｂ 細胞中において生殖系ε転写物を誘導し、生殖系ε転写物を誘導するＩＬ−４非 依存経路が機能しうることが示される。ＩＬ−１３は、ヒトＢ細胞中でのＣＤ２ ３発現および生殖系ε　ｍＲＮＡ合成並びに１ｇＧ４およびＩｇＥスイッチング を誘導する。

試薬 ヒト組換え体ＩＬ−１３は、本明細書中に記載のように精製された。組換え体Ｉ Ｌ−，１、ＩＦＮ−αおよびＩＦＮ−γは、ンエリング・ブルー・リサーチ（ブ ルームフィールド、Ｎ　Ｊ　）によって提供された。フルオレセインイソチオシ アネ−１−（ＦＩＴＣ）結合抗ＣＤ７２　ｍＡｂおよび中和抗ＴＧＦ−β　ｍＡ ｂは、Ｒ＆Ｄシステムズ・インコーホレーテッド（ミネアポリス、ＭＮ）から購 入された。ＣＤ３、ＣＤ４、ＣＤ８、ＣＤ１４、ＣＤ１６、ＣＤ１９、ＣＤ２０ 、ＣＤ２３、ＣＤ２５、ＣＤ５６、ＨＬＡ−ＤＲに特異的なＦＩＴＣ−およびフ ィコエリトリン（Ｐ　Ｅ）結合ｍＡｂ並びに無関係の特異性を有する対照抗体は 、ベクトン・ディキンラン（マウンテン・ビュー、ＣＡ）から得られた。ＬＦＡ −１（Ｌｉ２Ｏ）　、ＬＦＡ−３、ＩＣＡＭ−１（ＬＢ２）　、Ｂ７　（ＬａＯ ２）およびクラスＩ　ＭＨＣ抗原に特異的なＦＩＴＣ−およびＰＥ結合ｍＡｂは 、Ｊ、フィリップス（Ｐｈｉ　Ｉ　Ｉ　１ｐｓ）博士（ＤＮＡＸ）によって快く 提供された。ＦＩＴＣ結合抗１ｇＤおよび抗１ｇＭｍＡｂは、ノルディック・イ ムノロジカル・ラボラトリーズ（Ｎｏｒｄｉｃ　Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａ＋Ｌ ａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）（テイルバーグ、オランダ）から得られた。バンチ抗 ＣＤ４０　ｍＡｂ　８９　（ＩｇＧ１）は、Ｊ、バンチエル−・博士（ンエリン グ・ブルー・フランス、ダージリー、フランス）からの寄贈であった。中和抗Ｉ Ｌ−４ｍＡｂ　２５Ｄ２．１１は、Ｊ、アブラムズ（Ａｂｒａｍｓ）博士（ＤＮ ＡＸ）によって快く提供された。

細胞標品 血液試料および肺臓は、健康な志願者からまたは外傷のために牌摘出を受けた廖 者からそれぞれ得られた。単核細胞は、ヒストバク−（Ｈｉｓｔｏｐａｑｕｅ） −１０７７（シグマ、セント・ルイス、ＭＯ）での遠心分離によって単離された 。

精製Ｂ細胞は、負の選別により、蛍光活性細胞選別装置ファクスター・プラス（ ベクトン・ディキンラン）または磁気ビーズ（ダコパッツ（Ｄａｋｏｐａ　ｔ　 ｔ　ｓ）　、ノルウェイ）を用いて得られた。簡単にいうと、肺臓ＭＮＣを２回 洗浄し、そしてＣＤ３、ＣＤ４、ＣＤ８、ＣＤ１４、ＣＤ１６およびＣＤ５６に 対するＰＥ結合ｍＡｂを飽和濃度で加え且つ４℃で３０分間インキュベートした 。細胞をＰＢＳで２回洗浄した。リンパ球に特有の光散乱を有する細胞を選び出 し、ＰＥ−細胞を選別した。或いは、ＣＤ３、ＣＤ４、ＣＤ８、ＣＤ１４、ＣＤ １６およびＣＤ５６に対するｍＡｂで染色された細胞を、抗マウスＩｇｍＡｂで 被覆された磁気ビーズと一緒に４℃で３０分間インキュベートした。

ネズミ■ｇ含有細胞を、磁界を用いて除去した。残りの細胞を洗浄し、計数し、 そして更に実験で用いた。ｓ１ｇＤ′″Ｂ細胞の単離には、ファクスター・プラ スによる正の選別を用いた。肺臓ＭＮＣを、ＣＤ３、ＣＤ４、ＣＤ８、ＣＤ１４ 、ＣＤ１６およびＣＤ５６に対するＰＥ結合ｍＡｂ並びにＦＩＴＣ結合抗１ｇＤ ｍＡｂで染色し、そしてＦＩＴＣ”、ＰＥ−細胞を選別した。再分析において、 選別された細胞集団の純度は〉９８％であり、そして磁気ビーズを用いて単離さ れた細胞純度は〉９５％であった。

ＣＤ４”Ｔ細胞クローンＢ２１およびＣＤ４“非ＩＬ−４生産性Ｔ細胞クローン ５Ｐ−Ａ３は、ロン力ｏｏら、Ｊ、Ｅｘｐ、Ｍｅｄ、１６７：１５２３　（１９ ８８）にしたがって培養された。細胞は、支持細胞混合物およびＰＨＡによって 活性化されてから４〜６日後に得られた。更に、ＩＬ−２（１００Ｕ／ｍりを、 Ｔ細胞クローンの活性化状態を維持するために加えた。

Ｔ細胞膜標品 ＣＤ４”Ｔ細胞クローンの膜は、ガスカンら、Ｅｕｒ、Ｊ、Ｉｍｍｕｎｏｌ。

２２　：１１３３　（１９９２）にしたがって製造された。簡単にいうと、ＣＤ ４”Ｔ細胞クローンＢ２１を、支持細胞混合物およびフィトヘマグルチニン（Ｐ ＨＡ）によって活性化して１２日後に採取し、細胞を洗浄し且つ１０μｇ／ｍｌ のコンカナバリンＡ（Ｃｏｎ、Ａ）によって３７℃で７〜８時間再刺激した。Ｃ ｏｎＡ刺激の最後の３０分間に、１００μｇ／ｍｌのα−メチル−Ｄ−マンノシ ド（シグマ、セント・ルイス、ＭＯ）を加えた。これらの細胞から、ブライアン （Ｂｒｉａｎ）、Ｐｒｏｃ、Ｎａｔｌ、Ａｃａｄ、Ｓｃｉ、ＵＳＡ　８５：５６ ４　（１９８８）：およびマエダ（Ｍａｅｄａ）ら、Ｂｉｏｃｈｉｍ。

Ｂｉｏｐｈｙｓ、Ａｃｔａ　７３１：１１５　（１９８３）によって記載された 方法を用いて膜を製造し、そしてそれらを使用するまで液体窒素下で貯蔵した（ Ｔ細胞同等物１ｘｌＯ’個／ｍｌ＝タンパク質領　２ｍｇ／ｍｌ　（膜標品）） 。

培養条件 精製Ｂ細胞を、丸底９６ウエルプレート（リンブム、マクリーン、ＶＡ）中の１ ０％ウシ胎児血清（Ｆｅ２）を補足したイセル培地０．２ｍｌ中に細胞５０００ 個／ウェルで、５％ＣＯ２を含む湿潤雰囲気中において４重反復試験で培養した 。未分別ＰＢＭＮＣを、１２重反復試験において細胞１０５個／ウェルで培養し た。同時培養実験において、ＣＤ４”Ｔ細胞クローン５Ｐ−Ａ３を、細胞５００ ０個／ウェルで培養した（Ｔ　：　Ｂ細胞比１．１）。１２日間の培養後、培養 物上澄み中のＩｇａ度をＥＬＩ　ＳＡによって測定した。

Ｉｇ生産の測定 Ｉｇｈｉ、全１ｇＧ、ＩｇＡおよびＩｇＥ分泌は、ペン（Ｐ　６　ｎ　ｅ）ら、 Ｐｒｏｃ、Ｎａｔｌ、Ａｃａｄ、Ｓｃｉ、ＵＳＡ　８５：６８８０　（１９８８ ）に記載のＥＬＩＳＡによって決定された。ＩｇＧ４分泌は、プンノネン（Ｐｕ ｎｎｏｎｅｎ）ら、Ｊ、Ｉｍｍｕｎｏｌ、１４８：３３９８　（１９９２）に記 載のＥＬＩＳＡによって決定された。ＩｇＭ、全ＩｇＧおよびＩｇＡのＥＬＩＳ Ａの感度は、０．５〜ｌｎｇ／ｍｌであり、１ｇＧ４およびＩｇＥのＥＬＩ精製 Ｂ細胞を前記のように培養し、採取し、そして２回洗浄した。Ｆ　Ｉ　ＴＣ−お よびＰＥ結合ｍΔｂを飽和濃度で加え、そして４°Ｃで３０分間インキュベート した。無関係の特異性を有するＦＩＴＣ−およびＰＥ結合ｍＡｂを負の対照とし て用いた。細胞をＰＢＳで２回洗浄し、そしてリンパ球に特有の光散乱を有する 細胞を、ファクスカン（ＦＡＣ３ｃａｎ）流動血球計算器（ベクトン・デイキン ラン）を用いて分析した。

ＲＮＡ単離およびノーザン分析 全ＲＮＡを、ＲＮＡゾルＢ　（ＣＮＮＡ：バイオチク、フレンドウッド、ＴＸ） を用いて製造者の取扱説明書にしたがって単離した。ＲＮＡを０．８５％アガロ ースによって電気泳動させ、そしてＢＡ−Ｓニトロセルロース（ンユライヒヤー ・アンド・ツユ−エル、ケオネ、Ｎ　Ｈ）に対して移した。”Ｐ　ｃＤＮＡプロ ーブは、生殖系ｅのｐＢｓＩｇＥｌ−４のＥｃｏＲＩ／Ｈｉｎｄｌｌｌフラグメ ント、およびアクチンのｐＨＦｇＡ−１のＢ　ｇ　ｌ　Ｉ／Ｓｍａ　ｒフラグメ ントに相補的なりＮＡを鋳型として用いるランダムブライミングによって製造さ れた。ゴーチャト　（Ｇａｕｃｈａ　ｔ）　ら、　Ｊ、Ｅｘｐ、Ｍｅｄ、１７２ ：４６３　（１９９０）　；およびエルバ（Ｅ　ｒ　ｂ　ａ）ら、Ｎｕｃｌｅｉ ｃ　Ａｃ１ｄｓ　Ｒｅｓ、１４：５２７５　（１９８６）を参照されたい。

ＩＬ−１３は、精製Ｂ細胞上でＣＤ２３発現を誘導する種々のＢ細胞表面抗原の 発現に対するＩＬ−１３の作用は、ＦＡＣ３分析によって研究された。精製Ｂ細 胞とＩＬ−１３（２００Ｕ／ｍｌ）とのインキュベーションの結果、一部分（約 ２０％）のＢ細胞上でＣＤ２３発現が強（誘導された。

更に、ＩＬ−１３は、Ｂ細胞でのクラスＩＩＭＨＣ抗原、ｓ　Ｉ　ｇＭおよびＣ Ｄ７２の発現をアンプレギュレートした。ＩＬ−１３のこれらの作用は、ＩＬ− ４によって観察されたのと同様であった。ＣＤ２３発現は、２４時間の培養時間 後に既に検出されたが、最大応答は、培養から７２時間後に観察された。ＣＤ１ ９、ＣＤ２０、ＣＤ２５、ＣＤ４０、クラスＩ　ＭＨＣ抗原、Ｂ７、ＩＣＡＭ− １、ＬＦＡ−１およびＬＦＡ−３の発現は、ＩＬ−１３によってほとんど変更さ れなかった。

ＩＬ−４３は、ＰＢＭＮＣによるＩｇＥ合成を誘導するＢ細胞上のＣＤ２３発現 はＩｇＥ合成に関係していたので、ＩＬ−１３を、ヒトＰＢＭＮＣによるＩｇＥ 合成の誘導について検査した。表７に示したように、ＩＬ−１３は、未分別のＰ ＢＭＮＣによるＩｇＥ合成を、外因性ＩＬ−４不存在において用量依存様式で誘 導した。更に、ＩＬ−１３に応答した強い１ｇＧ４生産が観察された。

中和抗ＴＬ−４ｍＡｂは、ＩＬ−１３に誘導されたＩｇＥ合成を阻害することが できなかったが、ＩＬ−４に誘導されたＩｇＥ生産は、はとんど完全に阻止され 、ＩＬ−１３に誘導されたＩｇＥ合成は、ＰＢＭＮＣによるＩＬ−４生産の誘導 によって媒介されたのではないことが示された。表８を参照されたい。ＩＬ−４ と同様に、ＩＬ−１３による最大のＩｇＥ合成誘導は、通常、５０Ｕ／ｍｌの濃 度で得られた。ＩＬ−１３に応答して生産されたＩｇＥの平均濃度（６３０ｇ／ ｍｌ、ｎ＝６）は、［Ｌ−４によって誘導された（１６９μｇ／ｍ１Ｓｎ＝６） よりも若干低かった。ＩＬ−４およびＩＬ−１３両方飽和濃度で用いた場合、相 加作用も相乗作用も観察されなかった。

表７：ＩＬ−１３によるＩｇＥおよびＩｇＧ４合成の誘導ＩｇＥ　（ｎｇ／ｍｌ ）　Ｉ　ｇＧ４　（ｎｇ／ｍ＋）培地　＜０．２　３１±１４ １−１３　６２±１７　４１３±１３８表８：ＩＬ−４およびＩＬ−１３による ＩｇＥ合成の誘導；抗ＩＬ−４ｍＡｂの作用 Ｉ　Ｅ合成（ｎ　／ｍｌ） ＩｇＥ合成（ｎ　／ｍ］） ＩＬ−１３は、Ｂ細胞におけるＩ　ｇＧ４およびＩｇＥスイッチングを誘導する 精製Ｂ細胞による１ｇＧ４およびＩｇＥ合成を誘導するＩＬ−１３の能力を更に 試験した。それによって、ＩＬ−１３は、活性ＣＤ４　Ｔ細胞クローンの膜の存 在下において培養された高度に精製されたＢ細胞によるＩ　ｇＧ４およびＩｇＥ 合成を誘導したことが分かった。更に、この培養系において、ＩＬ−１３に誘導 されたＩ　ｇ　Ｇ　４およびＩｇＥ生産量は、概して、ＩＬ−４によって誘導さ れたよりも少なかった。その差は、未分別のＰＢＭＮＣの培養において観察され たのと同様の範囲であった。ＩＬ−１３は、更に、有意の濃度のＩｇＭおよび全 １ｇＧ生産を誘導したが、ＩｇＡ合或は観察されなかった。

この態様において、１１、−１３は、概してＩｇＡ合成を阻害するＩＬ−４と同 様の性質を有する。ヴノン・ヴラセレアら、Ｊ、Ｉｍｍｕｎｏｌ、１４８：１６ ７４　（１９９２）を参照されたい。これらの結果は、ＩＬ−１３が、ＩＬ−４ 不存在下においてヒトＢ細胞による１ｇＧ４およびＩｇＥ合成を誘導することを 示し、しかもＩＬ−１３はＢ細胞に対して直接的に作用して、Ｉ　ｇＧ４および ＩｇＥを合成させることを示す。更に、これらの結果は、ＩＬ−１３が、１ｇＧ ４およびＩｇＥへの１ｇイソタイプスイッチングをＩＬ−４非依存様式で誘導す ることを示唆する。

上記実験で観察されたＩｇＥ合成が、１ｇイソタイプスイッチングのためであっ て、数種類のＩｇＥに預託されたＢ細胞の成長のためではなかったということを 確証するために、天然ｓ　Ｉ　ｇＤ”Ｂ細胞に対するＩＬ−１３の作用を研究し た＋ 。高度に精製されたｓｌｇＤ　Ｂ細胞と、活性化された非ＩＬ−４生産性Ｔ細胞 クローン５Ｐ−Ａ３とのＩＬ−１，３存在下の培養の結果、ＩｇＥ合成が誘導さ れた。更に、ＩＬ−１３は、この非Ｉ　Ｌ−４生産性Ｔ細胞クローンのみによっ て誘導された１ｇＧ４合成を増加させた。ＰＢＭＮＣについて実証されたように 、ＩＬ−１３に誘導された１ｇＧ４およびＩｇＥ合成は、抗ＩＬ−４ｍＡｂによ って阻害さねなかった。

ＩＬ−１３による生殖系ε転写物の誘導これまでのところ、ＩＬ−４は、Ｂ細胞 中において生殖系ε転写物を誘導することが知られた唯一のサイトカインであっ た。ＩＬ−４によるεへのスイッチングは、生殖系εＲＮＡ合成の誘導に先行さ れるので、ＩＬ−１３も同様に生殖系ε転写物を誘導するであろうと仮定された 。実際に、高度に精製されたＢ細胞をＩＬ−１３および抗ＣＤ４０　ｍＡｂの存 在下で培養した場合、生殖系ε　ｍＲＮＡ合成は、５日間の培養期間後に、ＩＬ −４および抗ＣＤ４０　ｍＡｂの存在下の場合と同等のレベルで検出された（表 ９および１０を参照されたい）。抗ＣＤ４０　ｍＡｂ単独では、Ｂ細胞中におい て生殖系ε転写物が誘導されなかったので、これらの結果は、ＩＬ−１３が、Ｉ Ｌ−４と同様にＢ細胞中において生殖系ε転写物を誘導しうるもう一つのＴ細胞 誘導サイトカインであることを示した。更に、これらの結果、生殖系ε転写物と 、ＩｇＥ合成への引き続きのスイッチングとの相互関係が確証された。

表９　＋　Ｉ　Ｌ−１３１ｉ、抗ＣＤ４０　ｍ、Ａｂの存在下で培養された胎児 ８Ｍ細胞によるＩｇ合成を誘導する 培地　＜１　＜１　＜０．２　＜０．２抗−ＣＤ４０　（１０μｇ／ｍｌ）　＜ １　＜１　（０，２ｃｏ、２抗−ＣＤ４０　（１０μｇ／ｍ＋） ＋Ｌ−１３（４００υ／ｍｌ）　５±２　１０±３　２±２　１ｆｌ＋＋＋ 表ＩＱ：ＩＬ−１３は、ＣＤ１．９　．５１ｇＭ　未熟Ｂ細胞およびＣＤ１９　 。

ｓｌｇＭ−ブレＢ細胞によるＩｇ合成を誘導する＋　＋ 選別されたＣＤ１９　、ｓＩｇＭ　胎児Ｂ細胞。

ＬＭ　ＬΩ　―　邸 培地　＜１　＜１　＜０．２　ｃｏ、２Ｂ２１　＜１　＜１　＜０．２　＜０． ２Ｂ２１＋ＩＬ−１３＜１　＜１　＜０．２　（０，２Ｂ２１＋ＩＬ−７＜１　 ＜１　＜０．２　＜０．２Ｂ２１＋ＩＬ−７＋ＩＬ−１３８±２　２３±６　６ ±２　２±１Ｂ２１＋ＩＬ−７＋ＩＬ−１３ ＋抗−ＩＬ−４　ｍＡｂ　Ｖ±２２１±４２±１２±１＋　＋ 選別されたＣＤ１９　．５１ｇＭ　胎児Ｂ細胞。

ＬＭ　ｈΩ　−ＬＬ 培地　＜１　（１＜０．２　＜０．２ Ｂ２１　＜１　＜１　＜０．２　＜０．２Ｂ２１＋ＩＬ−１３ｄ　＜１　ｄｌ、 ２　＜０．２Ｂ２１＋ＩＬ−７ｄ　＜ｌ　くｏ、１　くｏ、２＋抗−ＩＬ−４ｍ Ａｂ　６±１　３±２　１±１　２±１ＩＬ−１３および抗ＣＤ４０に誘導され た■　Ｅ合成に対するＩＬ−１，２の作用１００００個の高度に精製されたＢ細 胞を、抗ＣＤ４０単クローン性抗体（２０μｇ／ｍｌ）およびＩＬ−１３（４０ ０Ｕ／ｍｌ）またはＩＬ−４（ＯＯＵ／ｍｌ）の存在下で培養した。ＩＬ−１２ を含むＣＯ８上澄みまたは偽ＣＯ８上澄みを加え、そしてＩｇＥを、培養から１ ４日後にＥＬＩ　ＳＡによって測定した。

ＩＬ−１２はＩＬ−１３作用を低下させたが、ＩＬ−４作用を増加させた。

Ｉ　Ｌ−４は、ヒトまたはネズミＢ細胞においてＩｇＥスイッチングを誘導する 唯一のサイトカインと考えられてきた。これは、抗ＩＬ−４ｍＡｂがインビトロ およびインビボ両方のＩｇＥ合成を優先的に阻止することを示した実験に、並び にＩＬ−４遺伝子が破壊されたマウスにおいて循環性１ｇＥが検出されなかった という知見に基いた。しかしながら、ＩＬ−１，３が、外因性ＩＬ−４不存在下 の高度に精製されたＢ細胞の培養物中において１ｇＧ４およびＩｇＥ合成を誘導 したことから、ＩＬ−１３に誘導されたＩｇＥ合成は、ＩＬ−４とは無関係であ ることが分かった。更に、Ｉ　Ｌ−４に誘導されたＩｇＥ合成を効率よく阻止し た抗ＩＬ−４ｍＡｂは、ＩＬ−１，３に誘導されたＩｇＥ生産に影響を与えるこ とができなかった。更に、ＩＬ−１３が天然の選別されたｓｌｇＤ　Ｂ細胞によ るＩ　ｇＧ４およびＩｇＥ合成も誘導したことから、ＩＬ−１３に誘導された１ ｇＧ４およびＩｇＥ合成は、Ｉ　Ｌ−４によって誘導されたのと同様に、１ｇイ ソタイプスイッチングを反映しており、１ｇＧ４およびＩｇＥ合成のために預託 された数種類のＢ細胞の選択的成長のためではない。

ＩＬ−１３によるＩｇＥへのスイッチングは、生殖系ε　ｍＲＮＡ合成の誘導に 先行されたが、活性Ｔ細胞によって与えられた補助刺激シグナルは、ＩｇＥ生産 の誘導に必要であった。これは、ネズミおよびヒトＢ細胞両方でのＩＬ−４に誘 導されたεへのスイッチングが、生殖系ε　ＲＮＡ合成の誘導に先行されている こと、および活性ＣＤ４　Ｔ細胞クローンまたは抗ＣＤ４０　ｍＡｂによって与 えられた補助刺激シグナルか、ＩＬ−４による生産的ε　ｍＲＮＡ転写物の誘導 およびＩｇＥ合成に必要とされることを示した研究と一致する。それらの正確な 役割は決定されなければならないが、生殖系ε転写物はε−スイッチ過程におい て重要な役割を果たしていることが示唆された。

Ｘ　Ｌ−４はＢ細胞中で生殖系ε転写物を誘導する唯一のサイトカ１′ンである と考えられてきたことにもかかわらず、非ＩＬＩ生産性Ｔ細胞クロー・ンが、生 殖系ε　ｍＲＮＡを強く合成させることができなかったことから、生殖系ε転写 物を誘導するＩＬ−４非依存経路は機能しうる。非１１−４生産性Ｔ細胞クロー ンによって生産されたＩＬ−１３は、Ｂ細胞中の生殖系ε転写物のＩＬ−４非依 存誘導に関与していると考えられる。本知見は、更に、ＩＬ−４生産性Ｔ細胞ク ローンによるＩｇＥ合成の誘導が、抗ＩＬ−４ｍＡｂによって決して完全に阻害 されたことがなかった理由も説明することができる。ＩＬ−４およびＩＬ−１３ のアンタゴニストの組合せは、それぞれが低濃度で、例えば、逆の副作用の限界 濃度未満で存在するスイッチング過程を阻止する場合に極めて有効でありうる。

ＩＬ−４およびＩＬ−１３を最適濃度で一緒に加えた場合、ＩｇＥ合成に対する 相加作用も相乗作用も観察されず、ＩＬ−４およびＩＬ−１３が、１ｇＧ４およ びＩｇＥスイッチングの誘導のために共通のシグナル生成経路を用いうることが 示唆された。実際に、最近の研究は、１−１３およびＩＬ−４の受容体が、シグ ナル変換において機能する共通のサブユニットを共有することを示した。しかし ながら、ＩＬ−１３が、１３０ｋＤａのＩＬ−４受容体を有する細胞に対して結 合しなかったことは、ＩＬ−１３は、このＩＬ−４結合タンパク質によって作用 するのではないことを示した。

ＩＬ−１３とＩＬ−４との共通性は、ＩＬ−１３が、ＩＬ−４と同様に、精製Ｂ 細胞上でＣＤ２３発現を誘導したという知見によって更に支持された。ＩＬ−４ と同様に、ＩＬ−１３は、クラスＩＩＭＨＣ抗原、５１ｇＭおよびＣＤ７２の発 現をアップレギュレートしており、これはＣＤ５のリガンドである。ＩｇＥ合成 の調節におけるＣＤ２３の正確な役割は決定されなければならないが、ＣＤ２３ 発現とＩｇＥ合成の誘導との間には強い相互関係が見られ、可溶性の形のＣＤ２ ３はＩｇＥ合成を増加させることが分かった。ＩＬ−１３はＣＤ２３の有意の発 現を２４時間以内に誘導したので、これらのデータは、更に、ＣＤ２３発現が、 ＩＬ１３に誘導されたεスイッチングに先行したことを示しており、それによっ てＣＤ２３発現の誘導と引き続きのＩｇＥ合成との間の相互関係が確証された。

一トされた。或いは、ＣＯ５−７由来マウスＰ６００またはヒトＩＬ−１３を、 ＩＬ、−４とＩＬ−１３の間のＢ細胞に対するそれらの作用の類似性にもかかわ らず、ＩＬ−４およびＩＬ−１３の機能は同一ではない。ＩＬ−１３に応答し又 生産された１ｇＧ４およびＩｇＥの量は、概して、ＩＬ−４によって誘導さねた よりも少なかった。更に、予備試験結果は、ＩＬ−１３が、ＩＬ−４とは対照的 に、Ｔ細胞またはＴ細胞クローンに対して作用しないことを示した。ＩＬ−１， ３は、明白なＴ細胞増殖促進活性を有していないし、しかもＣＤ４“Ｔ細胞クロ ーンでのＣＤ８ａ発現を誘導しないと考えられ、これは、Ｔ細胞上に機能的ＩＬ −１３受容体がないためであるかもしれない。Ｔ細胞の活性化状態は、Ｂ細胞の 増殖および分化に必要とされる補助刺激シグナルを与えるそれらの能力に不可欠 であった。したがって、ＩＬ−１３の作用を誘導するＴ細胞活性化の不足は、Ｉ Ｌ−１３に応答したＰＢＭＮＣによる最大限の１ｇＧ４およびＩｇＥ合成が、Ｉ Ｌ−４によって誘導されたよりも少なかった理由を部分的に説明することができ る。

これらのデータは、ＩＬ−４欠損マウスでは、線虫感染後に循環性１ｇＥが検出 されないという知見と矛盾すると考えられる。しかしながら、ＩＬ−１３がネズ ミＢ細胞によるＩｇＥ合成をも誘導するかどうかは不明である。予備試験データ は、ＩＬ−１３が、Ｔ細胞活性化後のＩＬ−４よりもはるかに長期間生産された ことを示しており、アレルギー性個体での増大したＩｇＥ合成の調節におけるＩ Ｌ−１３の重要な役割が示唆された。

末梢血単核細胞（ＰＢＭＮＣ）は、普通の健康なヒト提供者から、フィコール・ ハイパクーでの遠心分離によって単離された。全ＰＢＭＮＣ（細胞１．Ｘ１０’ 個）を、１０ｍｍ組織培養皿中において３７℃で３０分間インキュベートした。

非付着性細胞は、す／酸緩衝溶液（ＰＢＳ）で皿を十分に洗浄することによって 除去した。付着性細胞は、前記のように、１％ヒトＡＢ血清のみを含む、または 大腸菌由来のマウスＰ６００（ロット５６０−１３７−１　；　３０ｎｇ／ｍｌ の濃度で用いられた）を含むイセル培地（イセル（Ｙｓｓｅｌ）ら、上２Ｉｍｍ ｕｎｏ１．Ｍｅｔｈｏｄｓ　７２：２１９（１９７４））中でインキュベ、ＣＤ ４４　［Ｎｋｌ−Ｐｉ　；ベネグーア（Ｖｅｎｎｅｇｏｏｒ）ら、Ｊ。

最終希釈度１／２０で用いた。細胞は規則的な間隔で観察された。

Ｂ、非付着性細胞上の細胞表面マーカーの修飾上記のような非付着性選択後５日 〜１０日目に、得られた細胞の細胞表面マーカーの発現を、蛍光活性細胞選別（ ＦＡＣＳ）によって、例えば、シャピロ（Ｓｈａｐｉｒｏ）、Ｐｒａｃｔｉｃａ ｌ　Ｆｌｏｗ　Ｃｙｔｏｍｅｔｒ　（第２版）、１９８８年、アラン・リス（Ａ ｌａｎ　Ｌｊｓｓ）、ニューヨークに記載のように分析した。それぞれのマーカ ーを認識する典型的な抗体は、ＣＤ１１ａ　［ＬＦＡ−１；　５ＦＮ−Ｌ７、Ｄ ＮＡＸ、パｏ−アルド、ＣＡからコ、ＣＤＩＩ　ＭＨＣ［Ｗ６／３２、セラ・ラ ブダ（Ｓｅｌａ　Ｌａｂｓ）から、バーンステーブル（Ｂａｒｎｓｔａｂｌｅ） ら、Ｃｅ　１１　１４　：　９　（１９７８）も参照されたいコ　・クラスＩ　 Ｉ　ＭＨＣ［Ｑ５／１３、クアランタ（Ｑｕａｒａｎｔａ）ら、Ｊ、Ｉｍｍｕｎ ｏｌ、１２５：１４２１　（１９８０）を参照されたい〕　・クラスＩＩ　ＭＨ Ｃ［ＰｄＶ５．２、コーニング（Ｋｏｎｉｎｇ）ら、Ｈｕｍａｎ　Ｉｍｍｕｎｏ ｌ、９：２２１　（１９８４）を参照されたい］　；クラスＩＩ　ＭＨＣ（ＤＱ ；５ＰＶ−Ｌ３）、ＣＤ５８［ＬＦＡ−３；ＴＳ　２／９、クレンスキー（Ｋｒ ｅｎｓｋｙ）ら、Ｊ、Ｉｍｍｕｎｏｌ、１３２：２１８０（１９８４）を参照さ れたい］、ＣＤ３２　［ＩＶ、３、ルーニ　（Ｌｏｏｎｅｙ）ら、Ｊ、Ｉｍｍｕ ｎｏｌ、１３６＋１６４１　（１９８６）参照されたい］、ＣＤ１６［顆粒球− １、ヒューンンガ（Ｈｕ　ｉ　ｚ　ｉ　ｎｇａ）ら、Ｎａｔｕｒｅ　３３３　： 　６６７　（１９８８）を参照されたい］　、またはＬｅｕ　ｌｌａ、ベクトン ・ディキンラン、マウンテン・ビュー、ＣＡ）；ＣＤ２３　（ｇｐ２５、ＤＮＡ Ｘ、／忙・アルド、ＣＡから）　、Ｉ　Ｌ−２Ｒａ　［７Ｇ７　；またはＢＢＩ Ｏ、ハーブ（Ｈｅｒｖｅ）ら、Ｂｌｏｏｄ　７５：１０１７（１９９０）を参照 されたい］Ｉｍｍｕｎｏｌ、１４８：１０９３　（１９９２）を参照されたい］ 、ＣＤ１４（ＬｅｕＭ３、ベクトン・ディキンラン）、並びにＣＤ１８およびＢ ７［Ｌｉ２ＯおよびＬａＯ２、両方ともアズマら、Ｊ、Ｉｍｍｕｎｏｌ、Ｃ４９ ：１１１５　（１９９２）に記載されたコである。

ＣＯ３−７上澄みかまたは大腸菌封入体からのマウスＰ６００材料を、ヒトＩＬ −１３のＣ０８−７上澄みと比較した。

Ｃ１酸化窒素合成 ＩＬ−１３（Ｐ２Ｏ３）を、ＧＭ−Ｃ３Ｆに誘導された骨髄マクロファージによ る酸化窒素（Ｎｏ）の生産に対するその阻害作用によって検定した。マクロファ ージは、ＧＭ−Ｃ３Ｆ含有ＲＰＭＩ中の９〜１２日間の培養によって誘導され、 付着性のＧＭ−Ｃ３Ｆ応答性部分の保持によって精製された。細胞は、２色染色 を用いるＦＡＣ８分析によって測定したところ、９９＋％純粋であった。

マクロファージは、指示されたように、サイトカインによる先行刺激を用いるか または用いることなく、適当な実験において３μｇ／ｍｌのＬＰＳによる刺激に よって活性化されて、ＮＯを生産した。マクロファージは、ＬＰＳによる処理の １６時間前に、サイトカイン（用いる場合）と−緒に１６時間インキュベートさ れた。上澄みは、ＬＰＳの添加に相対する表示時間に得られた。すなわち、０時 間はＬＰＳ添加時である。

上澄みのＮＯ生産量を、亜硝酸塩の標準的なグリース（Ｇｒｉｅｓｓ）検定によ って検定した。例えば、コリガン（Ｃｏｌ　ｉｇａｎ）、ＣｕｒｒｅｎｔＰｒｏ ｔｏｃｏｌｓ　ｉｎ　Ｉｍｍｕｎｏｌｏ　、（１９９１年および定期補遺）グリ ーン・ウィリー、ニューヨークを参照されたい。マクロファージ培養物に対する ＬＰＳの添加後またはＬＰＳ添加時のサイトカイン添加を試験した。これらの条 件下において、試験されたサイトカイン（ＩＬ−１３を含む）の内で、有意に作 用したものはなかった。他のマクロファージも試験したが、概して、それらは低 濃度のＮＯを生産したので、生物検定用には十分に用いられなかった。

表１１のＡ部分は、表示されたサイトカインによる１６時間の処理後の、ＧＭ− Ｃ３Ｆ処理された骨髄由来マクロファージによるＮＯ生産量を示す。ＩＦＮ−γ はＮｏ生産を誘導したが、ＩＬ−４またはＩＬ−１３はＮｏ生産を阻害したこと に注目されたい。Ｌ−ＮＭＭＡは、Ｎｏ生産の特異的阻害剤である。Ｂ部分およ びＣ部分は、種々の範囲の２６００量に対して滴定された同様の実験である。

それぞれの場合に、ＩＬ−１３はＮｏの生産を減少させた。

表１１　：　ＧＭ−Ｃ３Ｆ誘導マクロフアージによるＮｏ　（ｎＭ）処理　０時 間　２４時間　４８時間 培地　１．５５１　３．６３８　３．１０３＋ＬＰＳ＋ＩＦＮ−Ｙ　３．８５２ 　１０．０５７　９．５７６ＬＰＳ＋ＩＦＮ−７２，３５９１０，５０９１５， ３１９Ｄ、ＩＬ−１αの調節＋ＩＬ−６ 末梢血単核細胞を、普通の健康な提供者からフィコール・ハイパクーでの遠心分 離によッテ単離した。全ＰＢＭＮＣ（細胞１００ｘｌＯ６個／１００ｍｍ組織培 養皿）を３７℃で３０分間インキュベートした後、ＰＢＳで組織培養皿を十分に 洗浄することによって非付着性細胞を除去した。付着性細胞を、１％ヒトＡＢ血 清含有イセル培地中において、ＩＬ−４（５０ｎｇ／ｍｌ）、ＩＬ−１３（５０ ｎｇ／ｍｌ）またはＩＬ−１０（１００Ｕ／ｍｌ）と組合せたＬＰＳ　（大腸菌 ０１２７　：　８８、ディフコ（Ｄｉｒｃｏ）、デトロイト、Ｍｌ）不存在下ま たは存在下でインキュベートした。更に、細胞を、中和抗ＩＬ−１０ｍＡｂ　１ ９Ｆ　１　（１，Ｏｕ　ｇ／ｍ　１）の存在下においてＩＬ−４またはＩＬ−１ ３と組合せたＬＰＳによって活性化した。上澄みを１２時間後に採取し、そして ＩＬ−１α、ＩＬ−６、ＩＬ−１０およびＴＮＦαの生産量をサイトカイン特異 的ＥＬＩＳＡによって測定した。表１２は、これらの実験結果を示す。

表１２・ＬＰＳ活性ヒト単球によるＩＬ−１α、ＩＬ−６、ＩＬ−１０およびＴ ＮＦαの生産に対するＩＬ−１３の作用。

ＩＬ−１α　ＩＬ−６ＩＬ−１０ＴＮＦ−αムシ光Ｄな↓ｂ圧Ｈ丘紅ｍｌｌ員ふ 油り培地　０　０　０　０ ＬＰＳ　８．１　５４．４　３５．４　２．２ＬＰＳ＋Ｌ−４１，７３３，１３ ００，７ＬＰＳ　＋　Ｌ−１３２３５，４２２０，５ＬＰＳ＋Ｌ−１００８，６ ＮＤ　０ １Ｊ’Ｓ＋ａＩＬ−１０ｍＡｂ　１２　１０１　ＮＤ　Ｉｏ、６ＬＰＳ　＋　ａ Ｌ−１０ｍＡｂ　＋　Ｌ−４３，７５９，５ＮＤ　１．２ＬＰＳ　＋　ａＬ−］ ＯｍＡｂ＋ＩＬ−４５，４７９，５ＮＤ　１．５これらの結果は、ＩＬ−４およ びＩＬ−１３が、ＬＰＳに活性化されたヒト単球によるＩＬ−１α、Ｉ　Ｌ−６ 、ＩＬ−１０およびＴＮＦαの生産を阻害したことを示した。ＩＬ−１０も、Ｌ ＰＳに活性化されたヒト単球によるＩＬ−１α、Ｉ　Ｌ−６およびＴＮＦαの生 産を阻害した。ＩＬ−１０は、ヒト単球によって生産され且つ自己制御様式でＩ Ｌ−１α、ＩＬ−６およびＴＮＦαを阻害した。１Ｌ−１０中和ｍＡｂ　１９Ｆ １を加えることにより、内因的に生産されたＩＬ−１０も、ＩＬ−１α、ＩＬ− ６およびＴＮＦαの生産を阻害したことが示された。ＬＰＳ活性ヒト単球による サイトカイン生産に対するＩＬ−４およびＩＬ−１３の阻害作用は、ＩＬ−４お よびＩＬ−１３が、中和抗ＩＬ−１０ｍＡｂ１９Ｆ１の存在下においてＩＬ−１ α、ＩＬ−６およびＴＮＦαの生産を阻害したことから、ＩＬ−１０とは無関係 であった。

Ｅ、抗体依存性細胞障害（ＡＤＣＣ） 本実験は、ヒト単球に対するＩＬ−１３単独のまたはＩＬ−４、ＩＦＮ−γまた はＩＬ−１０との組合せの作用を研究する。ＩＬ−１３は、単球の表現型に有意 の変化を引き起こした。Ｉ　Ｌ−４と同様に、それは用量依存様式で、ＣＤ１１ ｂＸＣＤ１１ｃＳＣＤ１８、ＣＤ２９、ＣＤ４９ｅ　（ＶＬＡ−５）　、クラス ＩＩＭＨＣ，ＣＤ１３およびＣＤ２３の発現を増加させたが、ＣＤ６４、ＣＤ３ ２、ＣＤ１６およびＣＤ１４の発現を減少させた。ＩＬ−１３は、クラスＩＩ　 ＭＨＣ抗原のアップレギュレーションを引き起こし、そしてＣＤ６４、ＣＤ３２ およびＣＤ１６発現に対するそのダウンレギュレーション作用はＩＬ−１０によ って妨げられた。更に、ＩＦＮ−γは、ＩＬ−１３に誘導されたＣＤ６４のダウ ンレギューションを部分的に妨げることができたが、ＣＤ３２およびＣＤ１６に ついてはできなかった。しかしながら、ＩＬ−１３は、抗１ｇＤ被覆Ｒｈ＋赤血 球に対するヒト単球の自発的なおよびＩＬ−１０またはＩＦＮ−γに誘導された 抗体依存性細胞障害（ＡＤＣＣ）活性を強く阻害しており、単球の細胞障害活性 が阻害されたことが示された。

更に、ＩＬ−１３は、ＬＰＳによって活性化された単球によるＩＬ−１α、■Ｌ −１β、Ｉ　Ｌ−６、ＩＬ−８、ＩＬ−１０、ＩＬ−１２Ｐ３５、ＩＬ−１２Ｐ ４０、ＧＭ−Ｃ３ＦＸＧ−Ｃ３Ｆ、ＩＦＮ−αおよびＴＮＦαの生産を阻害した 。対照的に、ＩＩ、−１３は、これらの細胞によるＩＬ−ＩＲＡの生産を増加さ せた。サイトカイン生産に対する同様の結果は、ＩＬ−４についても観察された しまたは得られている。したがって、ＩＬ−１３は、ヒト単球に対するその活性 の大部分をＩＬ−４と共有するが、ヒト単球に対するＩＬ−４およびＩＬ−１３ の相加作用も相乗作用も観察されなかったことにより、これらのサイトカインは 共通の受容体成分を共有しうることが示唆された。総合すると、これらの結果は 、ＩＬ−１３が抗炎症および免疫抑制活性を有することを示す。

活性Ｔ細胞は、抗原に対する免疫応答に関与する細胞の増殖、分化および機能を 調節する多数の生物学的に活性なポリペプチドを分泌する。抗原または多クロー ン性刺激後に同時にＩＬ−２、ＩＬ−３、ＩＬ−４、ＩＬ−５、ＩＬ−６、ＩＬ −１０、ＩＦＮ−γ、ＧＭ−Ｃ３ＦおよびＴＮＦ／ＬＴを生産するＴ細胞は、マ ウスおよびヒト両方で記載された。これらのＴヘルパー細胞は、更に特殊化され たＴｈｌおよびＴｈ２サブセツトからそれらを区ｊすするために、ＴｈＯ細胞と 称された。ネズミＴｈｌ細胞は、遅延型過敏症（ＤＴＨ）などの細胞性免疫応答 における調節およびエフェクター細胞としてそれらの機能を支持するＩＬ−２、 ＩＦＮ−γ、ＴＮＦ／ＬＴ、ＩＬ−３およびＧＭ−Ｃ３Ｆを生じるが、Ｔｈ２細 胞は、種々のイソタイプの免疫グロブリンの生産においてそれらがＢ細胞を助け るように適当にさせるＩＬ−４、Ｉ　Ｌ−５、ＩＬ−６、ＩＬ−１０、ＩＬ−３ およびＧＭ−Ｃ８Ｆを生じる。

ヒトの場合、制限されたサイトカイン生産プロフィールを有するＴ細胞クローン は、炎症性またはアレルギー性疾患の患者からも単離された。これらの種類のク ローンはネズミＴｈｌおよびＴｈ２クローンに似ていたが、若干の相違があった 。それらの活性化の様式に応じて、Ｔｈｌクローンは、概して、低量のＩＬ−４ をなお生しることができたが、Ｔｈ２クローンは、低〜正常量のＩＦＮ−γを生 じることかできた。しかしながら、抗原刺激後のＴｈ２クローンによるＩＬ−４ およびＩＦＮ−γの生産比率には明らかな不均衡が見られた。したがって、高濃 度のＩＦＮ−γを生じ且つＩＬ−４を生じないかまたは低濃度で生じるヒトＴ細 胞クローンをＴｈ１ｒ様」細胞と定義し、そしてＩＦＮ−γを生じないかまたは 低濃度で生じ且つ高濃度のＩＬ−４を生じるＴ細胞クローンをＴｈ２　ｒ様」細 胞と定義した。更に、マウスにおいてＴｈＯおよびＴｈ２　Ｔ細胞サブセットに よって独占的に生産されるＩＬ−１０は、ヒトにおいては、Ｔｈｅ、Ｔｈｌ　ｒ 様」およびＴｈ２　ｒ様」サブセットによって生産される。

本発明は、マウスＰ６００タンパク質に関係した新規のサイトカインであるヒト ＩＬ−１３を利用可能にする。ヒトＩＬ−１３およびマウスＰ６００は両方とも 、生物学的に活性であり、しかもヒト単球およびＢ細胞機能に作用した。

ヒト単球に対するマウスおよびヒトＩＬ−１３の生物学的活性を更に特性決定し 、そしてヒト単球に対する阻害作用を促進する他のサイトカインであるＩＬ−４ 、ＩＬ−１０およびＩＦＮ−γの生物学的活性と比較した。ＩＬ−１３は、ヒト 単球の表現型に劇的な変化を引き起こし、そしてＬＰＳによる活性化後のＩＬ− １α、ＩＬ−１β、ＩＬ−６、ＩＬ−８、ＩＬ−１０、ＧＭ−Ｃ３Ｆ、Ｇ−Ｃ３ ＦおよびＴＮＦ−αの生産を阻害したが、ＩＬ−ＩＲＡの生産を引き起こした。

これらの結果は、ＩＬ−１３が抗炎症活性を有し且つ免疫応答において重要な調 節の役割を果たしうろことを示す。

ヒト単球の単離および培養 ヒト単球は、健康な提供者の末梢血からフィコール・ハイパクーでの遠心分離お よびプラスチックに対する付着性によって単離された。簡単にいうと、１００Ｘ １０６個のＰＢＭＮＣを１００ｍｍ組織培養皿上のヒト血清アルブミン（ＨＳＡ ）および１％プールヒトＡＢ＋血清を補足したイセル培地中に入札３７℃で３０ 分間インキュベートした。この培地は、リムルス変形細胞溶解産物検定によって 決定したところ、内毒素不含であった（＜０．２βｇ／ｍｌの内毒素）。次に、 非付着性細胞を十分な洗浄によって除去し、そして指示されたようなＨＳＡおよ び１％プールヒトＡＢ血清含有イセル培地中で培養した。或いは、高度に精製さ れたヒト末梢血単球を正常な提供者の血液５００ｍ１から遠心水路によって得た 。

単核細胞は、血中成分分離器における密度遠心分離によって単離された後、リン パ球および単球に分別された。単球標品は、非特異的エステラーゼ染色によって 判定したところ〉９５％純粋であって、９８％を越える生存しつる細胞を含んで いた。これらの単球を、これらの細胞の付着を防止するテフロンバッグ（ジャン セン（Ｊａｎｓｅｎ）ＭＮＬ、セント・ニクラース、ベルギー）中において、Ｈ ＳＡおよび１％プールヒ１−ＡＢ＋血清含有イセル培地中、細胞濃度４ｘ１０６ 個／ｍｌで培養した。指示された時間培養後、単球を採取し、そして細胞表面発 現について間接免疫蛍光法によって分析するかまたはリンホカイン遺伝子発現に ついてノーサン分析およびＰＣＲ分析によって分析した。更に、１μｇ／ｍｌの ＬＰＳ　吠腸菌０１２７：Ｂ８）（ディフコ、デトロイト、Ｍｌ）によるこれら の細胞の活性化後のＩＬ−１α、ＩＬ−１β、ＩＬ−６、ＩＬ−８、ＩＬ−１０ 、ＴＮＦ−α、ＧＭ−Ｃ８ＦＳＧ−Ｃ８ＦおよびＩＬ−ＩＲＡ生産量を決定する ために、単球培養上澄みを採取した。培養後の細胞生存度は、トリパンブルー排 除試験によって決定したところ、常に９５％を越えた。

延蓼 組換え体ヒトおよびマウスＩＬ−１３を、大腸菌中においてグルタチオン−８− トランスフェラーゼ融合タンパク質の不溶性凝集体として発現させ、遠心分離に よって抽出し、可溶化し、そして再生を施した後にトロンビンによって消化して 、Ｎ末端の融合部分を除去した。次に、タンパク質を、陽イオン交換およびゲル 濾過クロマトグラフィーによって精製し、その結果、活性ヒトおよびマウスＩＬ −１３を得た。精製ヒトｒ−ＩＬ−１０、ｒ−ＩＬ−４およびｒ−ＩＦＮ−７は 、シエリング・ブルー・リサーチ・インステイトウート（ブルームフィールド、 ＮＪ）から提供された。

中和抗ＩＬ−４ＭＡｂ　２５Ｄ２［フレティエン（Ｃｈｒｅｔｉｅｎ）ら、Ｊ、 Ｉｍｍｕｎｏｌ、Ｍｅｔｈｏｄｓ、１１７：６７　（１９８９）］および抗■Ｌ −１０ｍＡｂ　１９Ｆ１　［アブラムズら、Ｉｍｍｕｎｏｌ、Ｒｅｖ、１２５： 　５　（１９９２）］は前に記載された。下記のｍＡｂを、細胞表面マーカーの 発現についての免疫蛍光性実験に用いた。５ＰＶ−Ｌ７　［ＣＤ１１ａ　；スピ ッツら、Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ　２：４２３　（１９８３）］、Ｂｅａｒ−１［Ｃ Ｄ１１ｂ、カイザー（Ｋｅｉｚｅｒ）ら、Ｅｕｒ、Ｊ、Ｉｍｍｕｎｏｌ、１５： １１４２（１９８５）Ｌ　ＣＬＢ　ＦｃＲｇｒａｎ−１［ＣＤ１６；クラ−セン （Ｋｌａａｓｓｅｎ）　ら、Ｊ、Ｉｍｍｕｎｏｌ、１４４：５９９　（１９９０ ）コ、ｇｐ２５［ＣＤ２３：ボンネフオイ（Ｂｏｎｎｅ　ｆｏｙ）ら、±２Ｉｍ ｍｕｎｏ１．１３８＋２９７０　（１９８７）コ、ＩＶ、３　［ＣＤ３２；ルー （１９８４）］　、ＳＡＭ−１［ＶＬＡ−５、ＣＤ４９ｅ；カイザーら、Ｅｕｒ 。

Ｊ、Ｔｍｍｕｎｏｌ、１７：１３１７　（１９８７）　コ　、　ＣＤ２９　（Ｔ ｓ２／１６；Ｃ，フイグドー（Ｆｉｇｄｏｒ）、アムステルダムからの快い寄１ ｌ１９）、Ｌ３０７［Ｂ７；アズマら、Ｊ、Ｉｍｍｕｎｏｌ、１４９：１１１５ 　（１９９２）］、ｌ０Ｍｌ３　（ＣＤ１３　、ＡＭＡＣインコーポレーテッド 、ウェストブルーク、ＭＥから購入された）；　Ｌｅｕ−Ｍ３　（ＣＤ１４）　 、Ｌｅｕ１５　（ＣＤ１１ｃ）およびＬｉ２Ｏ（ＣＤ１８）は、ベクトン・ディ キンラン（サン・ホセ、ＣＡ）から得られた。

プローブ ＩＬ−１α、ＩＬ−１β、ＩＬ−６、ＩＬ−８、ＩＬ−１０、ＴＮＦ−α、ＧＭ −Ｃ３Ｆ、Ｇ−Ｃ３Ｆおよびβ−アクチンのＰＣＲ生成物のサザン分析に用いら れたオリゴヌクレオチドは、デ・ワール・マレフィト（ｄｅ　ＷａａｌＭａ　ｌ 　ｅ　ｆ　ｙ　ｔ）ら、Ｊ、Ｅｘｐ、Ｍｅｄ、１７４：１２０９　（１９９１） によって記載された。

下記のオリゴヌクレオチドを用いて検出を行なった。

正’Ｎ−ｃ：　５°−ＴＴＣＴＧＧＣＩ’ＧＴＧＡＧＧＡＡＡＴＡＣＴ−３°（ ｎｔ　３６０−３７８）。

Ｌ−ＩＲＡ：５°−ＧＴＣＡＡＴｒＴＡＧＡＡＧＡＡＡＡＧＡＴＡＧＡＴＧＴＧ Ｇ−３’（ｎｔ２０７−２３４）。

Ｌ−１２Ｐ３５：　５’−ＡＡＴＧＧＧＡＧＴＴＧＣＣ’ｒＧＧＣＣＴＣ−３’ 　（ｎｔ　４８８−５０７）。

Ｌ−１２Ｐ２Ｏ：　５°−ＴＡＡＧＡＣＣＴＴｒＣＴＡＡＧＡＴＧＣＧＡＧＧＣ Ｃ−３°（ｎｔ　４１７−４４１）。

および ＴＧＦ−ｐ　１：　５−ＣＧＡＧＣＣｒＧＡＧＧＣＣＧＡＣｒＡＣ’ｒＡＣＧＣ ＣＡＡＧＧＡＧＧＴＣＡＣＣ−ＣＧＣ−３’（ｎｔ　１１３１−１１７０）。

１法によって単離しまた。ノーザン分析用には、１０ｇｇ／試料の全ＲＮＡを、 ６．６％ホルムアルデヒド含有１％アガロースゲル上の寸法によって分離し、ナ イトラン（Ｎｙｔｒａｎ）ナイロン膜（シュライヒヤー・アンド・シューエル、 ケーネ、ＮＨ）に移し、そして六思体標識技術によって極めて特異的な活性（〉 １１０８ｃｐ／ｍｇ）に標識されたプローブとハイブリッド形成させた。フィル ターをハイブリッド形成させ、緊縮条件下で洗浄し、そして展開させた。

ＰＣＲ分析 １マイクログラムの全ＲＮＡを、プライマーとしてのオリゴ（ｄＴ）１２−１８ （ベーリンガー−ノンハイム（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ　Ｍａｎｎｈｅｉｍ）、イ ンディアナポリス、ＩＮ）およびＡＭＶ逆転写酵素（ベーリンガー・マンハイム ）を反応容量２０μｌ中で用いて逆転写した。２マイクロリツトルの逆転写物（ １００ｎＨの全ＲＮＡ相当量）をそれぞれの増幅反応に直接的に用いた。ＰＣＲ の条件は以下、すなわち、反応容量５０μｌ中、２５ナノモルの各プライマー、 各１２５μＭのｄＧＴＰ、ｄＡＴＰＳｄＣＴＰおよびｄＴＴＰ　（ファーマシア 、ウプサラ、スウェーデン）、５０ｍＭ　ＫＣＩ、１０ｍＭトリス−ＨＣｌ、ｐ Ｈ８，３，１，５ｍＭ　ＭｇＣｌ　２．１ｍｇ／ｍｌのゼラチン、１００　ｕ　 ｇ／ｍｌの非アセチル化ＢＳＡおよび１単位のベント（Ｖｅｎｔ）ＤＮＡポリメ ラーゼにュー・イングランド・バイオラブズ、ビバリー、ＭＡ）であった。

ＩＬ−１α、ＩＬ−１β、ＩＬ−６、ＩＬ−８、ＩＬ−１０、ＴＮＦ−α、ＧＭ −Ｃ３Ｆ、Ｇ−ＣＳＦおよびβ−アクチンを増幅するのに用いられたプライマー は、従来、デー’７−ルー？レフイトら、Ｊ、Ｅｘｐ、Ｍｅｄ、１７４：１２０ ９（１９９１）によって記載された。下記のプライマーを更に用いた。

ＩＦＮ−αセンスプライマー： ５°−ＧＣＴＧＡＡＡＣＣＡＴＣＣＣＴＧＴＣ−３°（ｎｔ　１６１−１７８） 。

ＩＦＮ−αアンチセンスプライマー： ５’−ＣＴＧＣＴＣＴＧＡＣＡＡＣＣＴＣＣＣＡＧ−３°（ｎｔ　４５０−４３ ０）。

ＩＬ−ＩＲＡセンスプライマー・ ５’−ＧＣＡＡＧＣＣＴＴＣＡＧＡＡＴＣＴＧＧＧＡＴＧ−３°（ｎｔ　１１ｇ −１４１）。

ＩＬ−ＩＲＡアンチセンスプライマー・５’−ＧＡＴＧＴｒＡＡＣｒＧＣＣｒＣ ＣＡＧＣＴＧＧＡＧＴＣ−３’　（ｎｔ　３４４−３１９）。

ＩＬ−１２Ｐ３５センスプライマー： ５゛−σｒＴＣＡＣＣＡＣＴＣＣＣＡＡＡＡＣＣＴＧ−３’（ｎｔ２８１−３０ ２）。

ＩＬ−１２Ｐ３５アンチセンスプライマー：５°−ＡＧＣＴＣＧＴＣＡＣＴＣｒ ＧＴＣＡＡＴＡＧ−３’（ｎｔ　８１３−７９２）。

ＩＬ−１２Ｐ４０センスプライマー。

５’−ＣＡＴｒＣＧＣＴＣＣＴＧＣＴＧＣＴＴ’ＣＡＣ−３°（ｎｔ　３３７− ３５８）。

ＩＬ−１２Ｐ４０アンチセンスプライマー二５°−ＴＡＣＴＣＣＴｒＧＴｒ（３ ＴＣＣＣＣＴＣＴＧ−３°（ｎｔ　６０３−５８２）。

ＴＧＦ−β１センスプライマー： ５’−ＡＣＣＧＧＧＴＧＧＣＣＧＧＧＧＡＧＡＧＴＧＣ−３°（ｎｔ　１０９７ −１１１８）。

ＴＧＦ−β１アンチセンスプライマー：５’−ＧＣＣＧＧＴｒＧＣ’ｌ″ＧＡＧ ＧＴＡＴＣＧＣＣＡＧＧ−３’　（ｎ口３９９−１３７６）。

反応は、パーキン・エルマー・シーラスＤＮＡ熱循環器９６００において２５サ イクル（９４℃で３０秒間の変性、５５℃で３０秒間のアニーリング、７２℃で ６０秒間の拡張）インキュベートした。４０マイクロリツトルの各反応を、ＴＡ Ｅ緩衝液中１％アガロースゲル上に充填し、ＰＣＲ生成物を臭化エチジウム染色 によって可視化した。次に、ゲルを０．５Ｍ　ＮａＯＨ，１，５Ｍ　ＮａＣｌ中 で変性させ、１Ｍ酢酸アンモニウム中で中和し、そしてナイトランナイロン膜に 移した。膜を、６ｘＳＳＣ，１％ＳＤＳ、ＩＯＸデンハート溶液（０，２％フィ コール、０．２％ポリビニルピロリドン、０．２％ＢＳＡ、ペンタクスフラクシ ョンＶ）および２００μｇ／ｍｌの大腸菌ｔＲＮＡ（ベーリンガー・マンハイム 、ＦＲＧ）中において５５℃で４時間プレハイブリッド形成させた。

増幅において用いられたプライマーに対して内在する配列に特異的なオリゴヌク レオチドプローブ（２００ｎ　ｇ’）を、Ｔ４ポリヌクレオチドキナーゼ（二ニ ー・イングランド・バイオラブズ）およびγ−３２Ｐ−ＡＴＰ　（アマ−ジャム （Ａｍｅ　ｒ　ｓ　ｈ　ａｍ）　、アーントン・ハイ′人ＩＬ）によって５′末 端に標識した。プローブを、非取込みヌクレオチドからニック（Ｎ　ｉ　ｃ　ｋ ）カラム（ファーマシア、ウプサラ、スウェーデン）を介する通過によって分離 し、そしてハイブリダイゼーション配合物に対して加えた。５５℃で１２時間の ハイブリダイゼーション後、フィルターを、０．１ｘＳＳＣ（１ｘＳＳＣ：１５ ０ｍＭ　ＮａＣ１，１５ｒｎＭ　クエン酸Ｎａ　ｐＨ＝７．０）、１％ＳＤＳ中 において室温で洗浄し、そしてコダック（Ｋｏ　ｄ　ａ　ｋ、）　ＸＡＲ−５フ イルムに１〜１２時間暴露させた。更に、シグナルを、モレキュラー・ダイナミ クス（ＭｏｌｅｃｕｌａｒＤｙｎａｍｉｃｓ）リン光像形成装置（モレキュラー ・ダイナミクス、サニーベール、ＣＡ）で定量した。

リンホカイン決定 単球によるサイトカイン生産を、サイトカイン特異的ＥＬＩＳＡによって培養物 上澄みにおいて決定した。サイトカイン特異的ＥＬＩ　ＳＡおよびそれらの感度 は下記であった。ＩＬ−１α、エンドジエン（Ｅｎｄｏｇｅｎ）（ボストン、Ｍ Ａ）　（５０ｇｇ／ｍｌ）；ＴＮＦ−ａ、エンドジエン（ボストン、ＭＡ、）　 （１０ｇｇ／ｍｌ）；　ＩＬ−１β、シストロン（Ｃｉｓｔｒｏｎ）（パイン・ プルツク、ＮＪ）（２０ｇｇ／ｍｌ）；　ＩＬ−６、ジエンザイム（Ｇｅｎｚｙ ｍｅ）（ボストン、ＭＡ）（０，３１３ｎｇ／ｍｌ）；　Ｉｌ、−８、Ｒ＆Ｄシ ステムズ（ミネアポリス、ＭＮ）（４，７ｐｇ／ｍｌ）；Ｇ−ＣＳＦ、Ｒ＆Ｄシ ステムズ（ミネアポリス、ＭＮ）（７，２ｐｇ／ｍｌ）；　ＩＩ−ＩＲＡ、、Ｒ ＆Ｄシステムズ（ミネアポリス、ＭＮ）（１２，５ｐｇ／ｍｌ）；ＧＭ−Ｃ８Ｆ 、バチェッタ（Ｂａｃｃｈｅｔｔａ）　ら、Ｊ、Ｉｍｍｕｎｏｌ、１４４：９０ ２　（１９９０）、（５０ｇｇ／ｍｌ）；およびＩＩ−−一１０　（７５ｇｇ／ ｍ１．）。

免疫蛍光分析 細胞（１０５個）を、■底微量滴定プ１ノー　ｌ・（フロー・ラボラトリーズ、 マクリーン、ＶＡ）中において１０μｌの精製ｍＡ、ｂ　（１ｍｇ／ｍｌ）と− （に４℃で３０分間インキユベートシた。０．０２ｍＭアシ化ナトリウムおよび １％ＢＳＡ（シグマ、セント・ルイス、ＭＯ）含有ＰＢＳで２回洗浄後、細胞を 、ヤギ抗マウス抗体のＦＩＴＣ標識Ｆ　（ａｂ’　）　２フラグメンｌ−（ＴＡ ＧＯインフーボレーテッド、バーリンゲーム、ＣＡ）の１／４０希釈と一緒に４ ℃で３０分間インキュベートした。更に３回洗浄後、標識細胞試料を、ファクス カン（ベクトン・ディキンラン、サニーベール、ＣＡ）での流動微量蛍光定量法 によって分析した抗体で被覆されたＲｈ陽性ヒト赤血球に対する培養されたヒト 単球のＡＤＣＣ活性は、デ・ヴエルデ（ｄｅ　Ｖｅｌｄｅ）ら、Ｊ、Ｉｍｍｕｎ ｏｌ、１４９：４０４８　（１９９２）によって従来記載されたように実施され た。

マウスおよびヒト両方のＩＬ−１３は、ＣＤ２３　（ＦＣＥＲＩ　Ｉ）の発現を 引き起こし且つヒト単球上のクラスＩＩＭＨＣ抗原の発現をアップレギュレ−１ ・した。細胞表面抗原の多数部分の発現に対するＩＬ−１３の作用を研究した。

■Ｌ−１３は、種々の超遺伝子系列に属する多数の細胞表面分子の発現に影響を 与えた。Ｉ　Ｌ−１３は、付着性分子のイングランドいくつかのメンバーの発現 を増加させた。αサブユニットＣＤＩ　ｌｂ　（Ｃ３ｂｉ受容体、Ｍａｃ−１， ）、ＣＤ１１ｃ　（ｇｐ１５０．９５）およびＶＬＡ−５（ＦＮＲ）並びにそれ らのそれぞれのβサブユニツトＣＤ１８（β２）およびＣＤ２９（β１、ＶＬＡ −ｂ）の発現は、ＩＩ、−１−３によってアップレギュレートされた。ＣＤＩ　 １　ａ　（ＬＦＡ−１）　、ＶＬＡ−２（ＣＤ４９ｂ）　、ＶＬＡ−３、ＶＬＡ 、−４（ＣＤ４９ｄ）、、ＶＬＡ−６（ＣＤ４９ｆ）　、β３（ＣＤ６Ｌ）およ びβ４を含むこの系列の他のメンバーの発現は、１１．−１３によってほとんど 影響されなかつア５−０ ＩＬ−１ａは、クラスＩＩＭＨＣ抗原の発現を増加させた。ＨＬＡ−ＤＲ。

ＨＬＡ−ＤＰおよびＨＬ　Ａ　−Ｄ　Ｑの発現は、１Ｉ−−−１３によってアッ プレギュレートされた。クラ］Ｉ　ＭＨＣ，ＣＤ１．１ａ　（ＬＦＡ−１）　、 ＣＤ５４　（ＩＣＡＮｌ−１−）、ＩＣＡＭ−２およびＣＤ５８　（１−ＦＡ− ３）を含む免疫グロブリン超系列の他のメンバーの発現は、ＩＬ−１３によって 劇的に影響されなかった。

ＩＬ−１，３は、単球上の種々のＦｅ受容体の発現を調節Ｉ７た。ヒト単球」二 のＣＤ６４　（ＦｅγＲＩ）　、ＣＤ３２　（ＦｃγＲ目）およびＣＤ１６　（ ＦｃγＲＩＩＩ）の発現は、ＩＬ（３によって強くダウンレギュレートされた。

対照的に、ＩＬ−１，３は、ＣＤ２３　（ＦｃεＲＩＩ）の発現を誘導した。更 に、ＩＬ−１３は、ＣＤ１３　（アミノペプチダーゼＮ）の発現をアップレギュ レートし且つＣＤ１４の発現をダウンレギュレートした。ＣＤ２５、ＣＤ３３お よびＣＤ４４の発現に対するＩＬ−４３の主な作用は検出されなかった。

Ｉ　Ｌ−４は、ヒト単球上においてＩＬ−１３の場合と同程度まで、ＣＤ１１ｂ 、ＣＤ１１ｃＳＣＤ１８、ＶＬＡ−５、ＣＤ２９、クラ、１１　ＭＨＣ，ＣＤｌ ３およびＣＤ２３のアップレギュレーションを誘導し且つＣＤ１６、ＣＤ３２、 ＣＤ６４およびＣＤ１４の発現を阻害した。総合すると、これらの結果は、細胞 表面分子の発現におけるＩＬ−１３に誘導された変化が、ＩＬ−４によって誘導 されたのと同様であったことを示した。飽和濃度のＩＬ−４およびＩＬ−１３両 方との単球のインキュベーションは、どちらかのサイトカインのみによって誘導 された場合に匹敵する表現型変化を生じなかった。

これらの条件下では、種々の細胞表面分子の発現に対するＩＬ−１３および■Ｌ −４の相加作用も相乗作用も検出されなかった。単球がＩＬ−４を生じうるとい う根拠は存在しない。しかしながら、単球によるまたは数種類の混入したＴ細胞 によるＩＬ−４の誘導によってＩＬ−１３が作用した可能性を除外するために、 単球をＩＬ−１３および中和抗ＩＬ−４ｍＡｂの存在下でインキュベートした。

表１３で示したように、ＩＬ−１３によるＣＤ２３の誘導、ＣＤ１４のダウンレ ギュレーションおよびクラスＩＩＭＨＣのアップレギュレーションは、抗１Ｌ− １４ｍＡｂによって影響されなかった。しかしながら、抗ＩＬ−１４ｍＡｂは、 対照実験においてＩＬ−４の作用を完全に阻害したことから、それは有効であっ た。したがって、ＩＬ−１３は、Ｉ　Ｌ−４とは無関係に作用する。

表１３：ＩＬ−１３はＩＬ−４とは無関係に作用する。

ｍＡｂ　培地　ＩＬ−１３１Ｌ−１３ＩＬ−４ＩＬ−４＋αＩＬ−４＋αＩＬ− ４ 対照　３申　５　６　５　３ ＭＨＣクラスＩＩ　４４３　１９０４　１８４５　２０８４　２２０ＣＤ２３　 ３　９９　７９　８９　８ ＣＤ１４　２２２　９７　８３　８０　４４４単球を、培地、ＩＬ−１３（５０ ｎｇ／ｍｌ）またはＩ　Ｌ−４（４００Ｕ／ｍ　１）と−緒に中和抗ＩＬ−４ｍ Ａｂ　２５Ｄ２　（１０μｇ／ｍｌ）の不存在下または存在下において３７℃で １２０時間インキュベートし、そしてＨＬＡ−ＤＲ／ＤＰ　（Ｑ５／１３）　、 ＣＤ２３　（ｇｐ２５）およびＣＤ１４　（Ｌｅｕ−Ｍ３）の発現を間接免疫蛍 光法によって決定した。

１　平均蛍光強度（チャンネル数） ＩＬ−１３に誘導された細胞表面マーカーの発現の変化は、ＣＤ１１ｂ、ＣＤ１ ８、ＣＤ１６、ＣＤ３２、ＣＤ６４、ＣＤ２３、クラスＩＩ　ＭＨＣ，ＣＤｌ３ およびＣＤ１４の発現の調節について示されたように（表１４）、用量依存性で あった。概して、ヒト単球と５ｐｂ／ｍｌのＩＬ−１３とのインキュベーション は、これらの細胞表面マーカーの発現を変化させるのに不十分であったが、０． ５ｎｇ／ｍｌのＩＬ−１３は、０．５ｎｇ／ｍｌのＩＬ−４によって誘導された 場合と同等の表現型変化を引き起こした。最大限の応答は、５０ｎｇ／ｍｌのＩ Ｌ−１３によって引き起こさね、それはまた５０ｎｇ／ｍｌのＩＬ−４によって 引き起こされたのと同様の範囲内であって、ＩＬ−４およびＩＬ−１３が等しく 有効であったことが示された。

表１４　：　ＩＬ−１３は、単球の細胞表面表現型を用量依存様式で変化させる 。

単球を、培地、ＩＬ−１３（５ｐｇ／ｍｌ　５００ｐｇ／ｍｌまたは５０．００ ０ｐｇ／ｍｌ）またはＩＬ−４（４Ｕ／ｍｌまたは４００Ｕ／ｍｌ）と−緒に３ ７℃で１２０時間インキュベートし、そして細胞表面抗原の発現を間接免疫蛍光 法によって決定した。

９　平均蛍光強度（チャンネル噸 ＩＬ−１０は、ヒト単球上のＩＬ−１３に誘導されたクラスＩＩＭＨＣ発現をダ ウンレギュレートする 細胞表面表現型を調節するＩＬ−１３の作用と他のサイトカインの作用とを比較 するために、単球をＩＬ−１０またはＩＦＮ−γと一緒にＩＬ−１３不存在下ま たは存在下においてインキュベートし、そして細胞表面抗原の発現を分析した。

ＩＬ−１０またはＩＦＮ−γ単独では、ＣＤ１１ｂＳＣＤ１１ｃＳＣＤ１８、Ｃ Ｄ１３、ＣＤ２３、ＣＤ２９およびｖＬＡ−５の発現に劇的に影響を与えなかっ た。更に、ＩＬ−１０またはＩＦＮ−γは、ＩＬ−１３に誘導されたこれらのマ ーカーの発現の増加に著しく影響を与えなかった。ＩＬ−１０またはＩＦＮ−γ は、更に、ＣＤ１４の発現およびＩＬ−１３に誘導されたＣＤ１４発現の阻害に 対する作用が観察されなかった。

しかしながら、ＩＬ−１０は、単球上の構成的クラスＩＩ発現をダウンレギュレ ートしたのみならず、ＩＬ−１３に誘導されたクラスＩＩＭＨＣ発現を強く阻害 した。同様のデータは、水路（ｅｌｕｔｒｉａｔｉｏｎ）によって単離され且つ テフロンバッグ中で培養された高度に精製された単球を用いた場合に得られた（ 表１５）。クラス［ＩＭＨＣ抗原の増加した発現は、培地のみにおける単球のイ ンキュベーション後に観察され、それはｒｔ、−ｉｏによって完全に妨げられた 。ｍ−ＩＬ−１３、ｈ−ＩＬ−１３、ＩＬ−４およびＩＦＮ−γはいずれも、Ｉ Ｌ−１０によって阻止された高濃度のクラスＩＩＭＨＣ発現を誘導した（表１５ ）。

ＩＦＮ−γによって誘導されたクラスＩＩＭＨＣ発現は、更に、ＩＬ−１３によ って増加した。ＩＦＮ−γは、Ｂ７の発現を僅かにアップレギュレートした。

総合すると、これらの結果は、［Ｌ−１３、ＩＬ−１０およびＩＦＮ−γが独立 して、細胞単球表面抗原の発現を調節することを示す。

表１５：ＩＬ−１０は、ヒト単球上での構成的並びにＩＬ−１３、ＩＬ−４およ びＩＦＮ−γに誘導されたＭＨＣクラスＩＩ発現を阻害する。

インキュベーション　Ｉ　Ｌ　１０　（２００Ｕ／ｍｌ）対照４℃　６９°　ｎ ｄ６ｍ 培地３７°Ｃ１５０４６ ｍ１Ｌ−１３２１２７３ ｈｌＬ−１３１９７８１ １Ｌ−４４０７９４ ＩＦＮ−７３４７３６ 水簸された単球を、テフロンバッグ中のＩＬ−１０（２００Ｕ／ｍ＋）不存在下 または存在下のｍ１Ｌ−１３（５０ｎｇ／ｍｌ）　、ｈ　ＩＬ−１３（５０ｎｇ ／ｍ１）　、Ｉ　Ｌ−４（４００Ｕ／ｍｌ）またはＩＦＮ−７（１００Ｕ／ｍｌ ）の培地において４℃または３７℃で４８時間インキュベートし、そしてＨＬＡ −ＤＲ／ＤＰの発現を間接免疫蛍光法によって決定した。

９平均蛍光強度（チャンネル数） ′″０行なわれなかった １１、−１３は、単球Ｆｃ７Ｒ細胞表面発現および細胞障害を阻害するＩＦＮ− ７、ＩＩ、−４およびＩＬ−１０は、ヒト単球上のＦＣ７ＲＩ　（ＣＤ６４）　 、ＦｃγＲＩ　Ｉ　（ＣＤ３２）およびＦＣ７ＲＩ　［Ｉ　（ＣＤ１６）の発現 を調節することができる。ＩＦＮ−γおよびＩＩ、−１，０は、ＣＤ６４の発現 を増加さセタカ、ＩＬ−４は、ＣＤ６４、ＣＤ３２お、Ｊ−びＣＤ　１６（１） 発現ラダランレギュレートする。これらのサイトカインの組合上を単球に対して 加えることにより、ＩＬ、−１０は、全３種類のＦｃγＲの細胞表面発現におい てＩＩ、−４に誘導されたダウンレギュレーションを防止することができたこと およびＩＦＮ−γが、ＣＤ６４発現に対するＩＩ、−４のダウンレギュレーショ ン作用を部分的に回復したことが示された。ＴＬ−１，０は、ＩＬ、−１３に誘 導されたＣＤ６４、ＣＤ３２およびＣＤ１６のダウンレギュレーションを妨げた 。更に、ＩＦＮ−γは、ＩＬ−１３に誘導されたＣＤ６４ダウンレギユレーンヨ ンを部分的に救済することができたが、ＩＬ−１３に誘導されたＣＤ３２および ＣＤ１６のダウンレギュレーションには影響を与えなかった。

ヒト単球のＡＤＣＣ活性濃度は、ＦｃγＲ１の発現に相関することが分かった。

単球上のＦｃγＲ１の活性機能に対するＩＬ−１３の作用は、抗りでオプソニン 作用されたヒトＲｈ＋赤血球を溶解するそれらの能力によって決定された。ヒお よびマウス両方のＩＬ−１３は、培地のみで培養された単球のＡＤＣＣ活性を阻 害することができた。もう一方において、ＡＤＣＣ活性は、ＩＦＮ−γまたは■ Ｌ−１０の存在下で単球を培養した場合に増加した。ＩＦＮ−γおよびＩＬ−１ ０がＦｃγＲＩ発現の阻害を部分的にまたは完全に逆転させたにもかかわらず、 ＩＬ−１３は、ＩＦＮ−γおよびＩＬ−１０のこれらの作用を有意に阻害した。

ＩＬ−１３は、池の機序によっても、ＦｃγＲに媒介された細胞傷害に影響を与 えた。

ヒト単球によるサイトカインの生産に対する１−１３の作用を決定するために、 単球をＬ　Ｐ　Ｓによって活性化し、そして培養物上澄み中の６時間後および２ ４時間後のサイトカイン生産をサイ１−カイン特異的ＥＬＩＳＡによって決定し た。

ＬＰＳによる単球の活性化は、ＩＬ−１α、ＩＬ−１β、Ｉ　Ｌ−６、ＩＬ−８ 、ＩＬ−１０、ＧＭ−Ｃ３Ｆ、Ｇ−Ｃ３ＦＳＴＮＦ−αおよびＩＬ−ＩＲＡの生 産を引き起こした。有意の濃度のＩＬ−１α、ＩＬ−１β、ＩＬ−６、ＩＬ−８ 、ＴＮＦ−αおよびＩＬ−ＩＲＡは、活性化から６時間後に存在したが、ＩＬ− １０、Ｇ−Ｃ３ＦおよびＧＭ−Ｃ３Ｆの生産は２４時間目に検出された。活性化 から６時間後および２４時間後に、ＩＬ−１３、ＩＬ−４およびＩＬ−１０は、 ＩＬ−１α、ＩＬ−１β、ｌ−６、ＩＬ−８、ＩＬ−１０、ＴＮＦ−α、Ｇ−Ｃ ３ＦおよびＧＭ−Ｃ８Ｆの生産を阻害したが、ＩＩ、−１，ＲＡの生産を増加さ せた。

Ｉ　Ｌ　−１，３は、単球の形態学、表現型、機能およびサイトカイン生産に影 響を与えた。単球と＋Ｌ−１３とのインキュベーションは、プラスチック支持体 に対するこれらの細胞の強い付着性および樹状外観へと変更されたそれらの形態 学を誘導した。更に、細胞のホモ型凝集体が観察された。ＩＬ−１３が、インテ グリン超系列のメンバーであるＣＤ１１ｂ、、ＣＤ１１ｃ、ＣＤ１．８、ＶＬＡ −５およびＣＤ２９の発現をアップレギュレートしたという知見は、ＣＤ１１ｂ ／ＣＤ１１８およびＣＤ１１ｃ／ＣＤ１８ヘテロニ量体が、細胞−細胞相互作用 、ホモ型凝集、人工的支持体に対する付着性に関与し且つフィブリノーゲンを結 合することから、観察された凝集および形態学の変化と同等である。

更に、α５β１インテグリンＶＬＡ−５／ＣＤ２９は、フィブロネクチンの受容 体であり、付着過程に関与する豊富な細胞外マトリックスタンパク質である。

ＩＬ−１３は、付着または細胞−細胞相互作用に関与する他の分子、例えば、Ｃ ＤＩ　１．ａ、ＶＬＡ−２、ＶＬＡ−３、ＶＬＡ−４、Ｖ　Ｌ　Ａ　−６、β３ 、β４、■ＣＡＭ−１、ＩＣＡＭ−２、ＬＦＡ−３、ＭＥＬ−１４およびＣＤ４ ４の発現を変化させなかったが、ＩＬ−１３に誘導された形態学および付着性の 変化に他の細胞表面構造が関与している可能性は残っている。

ＩＩ、−１３は、ヒト単球上のクラスＩＩＭＨＣ抗原の発現をアップレギュレー トシた。ＨＬＡ−ＤＲ，ＨＬＡ−ＤＰおよびＨＬ　Ａ　−Ｄ　Ｑの発現は、ＩＬ −１３によって有意に増加した。ＩＬ−１０は、ヒト単球上の構成的並びにＩＩ 、−４およびＩＦＮ−γに誘導されたクラスＩＩＭＨＣ発現を阻害した。したが って、ＩＩ、−１０は、ＩＩ、−１３に誘導されたクラスＩＩＭＨＣ発現を阻害 し、これは更に、ＩＬ−１０の一般的な免疫抑制活性を支持する。

単球上のＩｇＧおよびＩｇＥのための種々のＦｃ受容体の発現は、いくつかのサ イトカインによって影響された。ＣＤ６４　（ＦｃγＲ１）発現は、ＩＦＮ−γ およびＩＬ−１０によってアップレギュレートされ且つＩＬ−４によって阻害さ れた。更に、ＩＦＮ−γおよびＩＬ−１０は、ＩＬ−４によって誘導されたＣＤ ６４のダウンレギュレーションを妨げることができた。ここで、１−１３はＣＤ ６４の構成的発現を阻害したことおよびこの阻害はＩｔ−１０およびＩＦＮ−γ によっても妨げられたことが分かった。ＣＤ６４の発現は、単球のＡＤＣＣ活性 と相関することが分かった。

ＴｇＤで被覆されたＲｈ陽性赤血球に対する単球の自発的またはＩＬ−１０−若 しくはＩＦＮ−γに誘導されたＦｃγＲ媒介細胞障害は、ｒＬ−１３によって強 く阻害されて、ＩＬ−１３は、ヒト単球の表現型のみならず、機能にも影響を与 えたことが示された。ＩＬ−１０は、ＩＬ−１３に誘導されたＣＤ６４発現のダ ウンレギュレーションを妨げることができたが、ＡＤＣＣ活性は依然として阻害 された。このことは、ＡＤＣＣ活性が、ＣＤ６４発現のちょうどそのレベル以外 の因子によって決定されるという見解を支持４−る。

ＩＬ−１３は、ＦｃγＲｒｌおよびＦｃγＲＩ　ｉ　Ｉの発現にも影響を与えた 。

ＩＬ１３は、ＣＤ３２およびＣｒ）ｉ６の発現を用量依存様式でダウンレギュレ ートした。しかしながら、ＩＦＮ−γではなく　ｌ　Ｌ−１，０が、単球−Ｌの Ｉｆ−１３に誘導されｆ：ＣＤ３２およびＣＤ１６のダウンレＶユ１．ノーノヨ ンを阻１１−することができた。これらの結果は、Ｆｃ受容体発現レベルがサイ トカイ〉によって強く制御されたことを示した。

単球上のＩｇＥのｆ二めの低親和性Ｆｃ受容体（ＣＤ２３）を誘導することが知 られている唯一のす・イトカインはＩＩ、−４であった。し、かじながら、Ｉ　 Ｌ−１，３も、単球十でＣＤ２３を発現させた。ｌ　Ｌ、−１３に誘導されたＣ 　Ｄ　２３の発現は、ＩＦＮ−γによって部分的に抑制されたことが実証された 。更に、ＩＬ−１：３は、ＰＢ〜ＩＣによるＩｇＥの生産を誘導することができ たことが分かった。更に、■Ｌ−１３は、Ｔ細胞クローン、Ｔ細胞膜またはＣＤ ４０リガンドによって与えられた第二、／ゲナルが存在した場合に、１１１製５ １ｇＭ″Ｂ細胞中の生殖系ε転写およびＩｇＥ生産へのスイッチングを開始する ことができた。ＩｇＥの生産は、促進作用かまたは阻害作用を有する、可溶性Ｃ Ｄ２３を含む多数のサイトカインによって調節される。ヒト単球によるＣＤ２３ の発現に対するＩＬ−１３およびＩＦ’Ｎ−γの作用は、この概念の中に十分に 当てはまる。

■、１Ｌ−４アンタゴニストの活性；　相互作用ＩＬ−４および［Ｌ−１３は、 活性化Ｔ細胞から分泌される２つのサイトカインであり、単球およびＹ３細胞に 対して同様の効果を有している。ヒトインターロイキン−４（ＩＬ４）の変異型 は、ｈ　Ｉ　Ｌ−４およびヒトインターロイキン−１３（ＩＬ−４３）の両方に 対して競合的にアンタゴナイズする。ＩＬ−４および＋ｔ−１３のアミノ酸配列 は、約３０％相同であり、円偏光二色性分光（ＣＤ）は、いずれのタンパク質も 高度にα−へリソラス形の構造を有することを示しでいる。ＩＬ（３は、ｈｌＬ −４応答性細胞株上で発現される機能的ヒトＩＬ−４受容体（ｈｌＬ−４Ｒと称 される）へのｈｌｌ−４の結合を競合的に阻害するが、異種細胞において発現さ れるクローン化１１．、−４　Ｒリガンド結合タンパク質への結合は阻害しない 。ｈｌＬ−４は１−４Ｒリガンラド合タンパク質に対して機能的Ｉ　Ｌ　−４Ｒ に対するよりも約５０倍低い親和性を有するが、変異ｈ　Ｉ　Ｌ−４アンタゴニ ストタンパク質は両方のタイプの受容体に低い親和性で結合する。

上述の結果は、ＩＬ−４およびＩ　Ｌ−１３が、ノブナル伝達のために重要な受 容体成分を八ａする、−とを実証する。さらに、これらのデータは、１１．−４ Ｒが少なくとも２つの成分の複合体であり、そのうちの１つは細胞性ノブナル伝 達に必須の新規親和性変換づブユニットであることを立シ１する。

ＩＬ−１３は、サイトカインと称される、活性化］゛細胞ら分泌される多くのタ ンパク質ホルモンの１つである。ヒ１〜ＩＬ−１３は、ヒト単球の形態学的およ び細胞表面の表現型の変化イ引き出（１、ヒ＋−Ｂ細胞の成長および免疫グロブ リン（Ｉｇ）産生を促進する。これらのすべての生物学的効果は、活性化Ｔ細胞 にコ゛り分泌される別のタンパク質ホルモンである）】ｌｌ−−４によってもま た引き出される３、 ｉＩ、−４の生物学的作用は、ＩＩ、−４に高い特異性および親和性で結合する 細胞ｖ面受容体により介在される。「解離定数またはＫｄ〜Ｈ）”？Ｖｉ。ｈ　 ａ　ｒ　ａｄａ　ｅｔ　ａｌ、、　５ｐｉｔｓ　ｅｔ、ａｌ、（ｅｄｓ）、　Ｉ Ｌ−４：５ｔｒｕｃｔｕｒｅ　ａｎｄＦｕｎｃｔｉｏｎ、　１９９２．　ＣＲＣ Ｐｒｅｓｓ、　Ｂｏｃａ　Ｒａｔｏｎ、　ｐｐ、３３−５４を参照のこと。］。

ヒトおよびマウスＩＬ−４Ｒは、ｃＤＮＡクローニングにより性状決定され、単 一の膜内外（ｔ　ｒａｎｓｍｅｍｂｒａｎｅ）スパンを有する１３０ｋＤａ糖タ ンパク質（以下、ＩＬ−４Ｒリガンラド合タンパク質と称する）であると定義さ れた。ＩＬ−４Ｒリガンラド合タンパク質の細胞外ドメインの配列は、他のサイ トカイン受容体タンパク質の細胞外ドメインと構造的に相同である。

これらの他のタンパク質の幾つかは、異例性（ｈｅｔｅｒｏｍｅｒｉｃ）相互作 用、すなわち、１つのサブユニットがそれ自身で比較的低い親和性でリガンドに 結合し、他のサブユニット（１つまたは複数）が別の結合親和性に貢献しかつし ばしばシグナリングに重要であるような作用に関与する。しかし、ＩＬ−４Ｒリ ガンラド合タンパク質の細胞外ドメインは、単独で、種々のＩＬ−４応答性細胞 上のＩＬ−４Ｒを特徴づける高い親和性で［Ｌ−４に結合するように見える。

細胞内ドメインは結合には重要ではないが、シグナル伝達には重要である。

多くのサイトカイン受容体の間の構造的ホモロジーは、それらのりガント間の構 造的ホモロジーにより反映される。例えば、ＩＬ−４、インターロイキン−２（ ＩＬ−２）、成長ホルモン、マクロファージコロニー刺激因子（Ｍ−Ｃ３Ｆ）、 および顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−Ｃ３Ｆ）は、配列のレベ ルでは関係がないが、これらはすべて同様の４つの平行でないαヘリックスのコ ンパクト−コアーバンドル構造を有する。（Ｄｉｅｄｅｒｉｃｈｓ　ｅｔ　ａｌ 。

５ｃｉｅｎｃｅ　２５４：　１７７９　（１９９１）；　Ｂａｚａｎ、　５ｃｉ ｅｎｃｅ　５７：４１０　（１９９２）＋　ＭｃＫａｙ、　５ｃｉｅｎｃｅ　２ ５７：　４１２　（１９９２）：Ｐｏｗｅｒｓ　ｅｉ　ａｌ、、　５ｃｉｅｎｃ ｅ　２５６　：　１６７３　（１９９２）を参照のこと）。マウスＩＬ−２ｉ： おいては、徹底的な変異分析により、第４のαヘリックスのＣ末端における残基 の置換（Ｇ１ｎ１４１をＡｓｐに）が受容体活性化の欠失をもたらしたが、はと んどの受容体結合は残っていたことが発見された。この変異タンパク質は、ＩＬ −２の生物学的作用の強力かつ特異的な競合的アンタゴニストである。

１１、−２とＩＬ−４との構造的ホモローノーに基づいて、ｍＩＬ−２のＧ１ｎ １４１と類似するであろうｈｌｌ−−４の残基の重要性を調べた。これらの実験 においては、ヒト［［、−４（ｈ目、−４）の第４のαヘリックスのＣ末端にお ける残基の置換（’ｒｙｒ１２４をＡｓｐに）は、特異的にＩＬ−４Ｒ活性化を 阻害し、このタンパク質をＴ　Ｌ−４生物学的作用の競合的アンタゴニストにし た。Ｔｙｒ１２４をＡｓｐに置換したｈＩＬ−４（ｈＩＬ−４，Ｙ１２４Ｄと称 する）ノコノ性質は、独立に記載されてきた。Ｋｒｕｓｅ　ｅｔ　ａｌ、、　Ｅ ＭＢＯＪ。

１１・３２３７　（１９９２）を参照のこと。この変異ｈ　Ｉ　Ｌ−４アンタゴ ニストは、それまでに未知であった機能的ＩＬ−４Ｒの第２サブユニツトとの相 互作用が不完全である。さらに、ｈｌＬ−４アンタゴニストは、多くのＩＬ−１ ３の生物学的作用を阻止する。

ｈＩＬ−４の変異 ｍ１Ｌ−２の変異の研究（Ｚｕｒａｗｓｋｉ　ｅｔ　ａｌ、、　ＥＭＢＯＪ。

９：　３８９９　（１９９０））、ｈｌＬ−２およびｈｌＬ−４の共通の構造的 フレームワーク（Ｂａｚａｎ、　５ｃｉｅｎｃｅ　２５７：　４１０　（１９９ ２）：　ＭｃＫａｙ、　５ｃｉｅｎｃｅ　２５７：　４１２　（１９９２）；Ｐ ｏｗｅｒｓ　ｅｔ　ａｌ、、　５ｃｉｅｎｃｅ　２５６、１６７３　（１９９２ ））および機能的に重要な残基が進化的に保存されたという仮定に基づいて、ｈ ＩＬ−４の残基Ｅ１１４、Ｋ１１７およびＹ１２４が、受容体活性化に特異的に 関与する可能性の最も高いものとして選択された。これらの位置における置換変 異には、ｐＴａｃＲＢＳ大腸菌発現プラスミド（Ｚｕｒａｗｓｋｉ　ｅｔａｌ、 、Ｊ、Ｉｍｍｕｎｏｌ、１３７：　３３５４　（１９８６））に挿入された合成 的に再構築された１１■Ｌ−４コード領域を用いた。Ｃ末端コード領域中の５ａ ｌＩおよびＨｉｎｄＩ［［認識部位の間の配列に対応し、ランダム化置換のため に選択されたコドンにおいてはそれぞれのデオキシヌクレオチドを等モルＩ含む ２本鎖合成オリゴヌクレオチド（合成器および試薬、ＡｐｐｌｉｅｄＢｉｏｓｙ ｓｔｅｍｓ）を、５ａｌＩおよびＨｉｎｄｍで切断したｐＴａｃ−ｈＩ　Ｌ−４ プラスミドに繋いだ。

トランスフォーメーンヨンにより組み換えプラスミドを回収し、５ａｌＩ−Ｈｉ ｎｄＩ［Ｉの間のＤＮＡ配列を決定した（シークエナーゼ２．０キット、ＵＳＢ ｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ　Ｃｏｒｐ、）。部分精製した変異ｈＩＬ−４タンパク質 を、ｍ［Ｌ−２タンパク質について記載されているように（但し、再生緩衝液は 還元グルタチオンおよび酸化グルタチオンを含む）して調製し、ＴＦ−１細胞を 用いてアッセイした。Ｙ１２４における置換がタンパク質を部分的アゴニストに したこと、およびＹ１２４Ｄ置換が細胞性活性化において最も著しい欠陥を有す ることが見いだされた。この研究の間に、同様の観察がＫｒｕｓｅ　ｅｔ　ａｌ 。

、　止揚、によりなされ、彼らもまたｈＩＬ−４，Ｙ１２４ＤおよびｈｌＬ−４ がｂｉｔ−４Ｒに対して同様の親和性を有することを示した。

純粋なｈｌＬ−４，Ｙ１２４Ｄの製造のために、ｐＴｒｐｃｌｌ−ｈｌＬ−４大 腸菌発現プラスミドを、オリゴヌクレオチドＣＴＣＣＡＡＧＡＡＣＡＣＡＡＣＴ ＧＡＣ；ＡＡＧＧＡＡΔＣＣＴＴ　（コード領域の単一のｐｓｔｒ制限部位に隣 接に対応する下線部分の前にＨｉｎｄＩ［Ｉ認識部位が置かれている）を用いる ＰＣＲ（Ｇｅｎｅａｍｐキット、Ｐｅｒｋｉｎ　Ｅｌｍｅｒ　Ｃｅｔｕｓ）に供 した。

ＰＣＲ生成物およびｐＴｒｐｃｌｌ−ｈｌＬ−４プラスミドをＰｓｔｌおよびＨ ｉｎｄＩ［［で切断し、ライゲー］・シ、ｐＴｒｐｃｌｌ−ｂｌＬ−４Ｙ１２４ Ｄプラスミドを回収し、既に記載されている方法（Ｚｕｒａｗｓｋｉ　ｅｔ　ａ ｌ、。

ＥＳＩＢＯＪ、　８　：　２５８３　（１９８９））にしたがってトランスフオ ーメーノヨノおよび配列分析により確認した。ｈｌＬ−１３のこれらの位置での 対応する変化もまた、ＩＬ−１３アンタゴニスト効果を有する。

タンパク質の精製 大８Ｍ菌由来ｈｌＬ−４（ｖａｎ　Ｋｉｍｍｅｎａｄｅ　ｅｔ　ａｌ、、　Ｅｕ ｒ、　Ｊ、　Ｂｉｏｃｈｅｍ、　１７３；　１０９　（１９８８））、ヒトイン ターロイキン−４ａ　（ｈ［Ｌ−１ａ：　Ｋｒｏｎｈｅｉｍ　ｅｔ　ａｌ、、　 Ｂｉｔ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ　４：　１０７８　（１９８６））およびｍ１Ｌ −１３を上述のように精製した。ｈｌＬ−４，”１’１２４Ｄは、ｐＴｒｐｃｌ ｌ　ｈＩＬ−４，’１Ｎ２４Ｄプラスミドを含み、５０μｇ／ｍｌのアンピンリ ンを含む１２リツトルＬブロス中で、Ｇ５３回転振盪器（Ｎｅｗ　Ｂｒｕｎｓｗ ｉｃｋＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）で２０Ｑｒｐｍで３７℃において一夜増殖させた Ｅ、ｃｏ　ｌ　１Ｋ１２　（Ｃ０２１株）の細胞から調製した。細胞をＲＣ−３ 遠心分離器（ローターはすべて５ｏｒｖａ　ｌ　１社製）で４５０Ｏｒｐｍ、１ ０ｍ１ｎ、４℃で遠心分離して集めた。ペレットを４５０ｍ１のＴＥ緩衝液（５ ０ｍＭ　Ｔｒｉｓ−ＨＣＩ　ｐＨ８，１ｍＭＥＤＴＡ）に２０Ｏｒｐｍ、１５ｍ １ｎで振盪して再秒濁した。細胞を水冷したマイクロフルイダイザー・モデル１ １０細胞破壊ｎ　（Ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃｓ社製）に４回通して破壊した。

封入体をＧ５−３０−ターで９０００ｒｐｍ、４０分間、４℃で遠心分離するこ とにより集めた。次にペレットを４５０ｍ１のＴＥに再懸濁し、ＴｒｉｔｏｎＸ −１００を最終濃度０．５％で加えた。試料を室温に３０分間維持し、次にＧＳ Ａローターで８．５００ｒｐｍ、１０分間、４℃でペレットにした。封入体を６ ０ｍ１のＰＢＳ（１２０ｍＭ　ＮａＣｌ、２．７ｍＭ　ＫＣＩ、１０ｍＭＮａＰ ｉ　ｐＨ７，４）中の５Ｍ−グアニジン−ＨＣｌ、２ｍＭ還元グルタチオン、０ ．２ｍＭ酸化グルタチオンに再懸濁し、残った不溶性物質を５Ｓ−３４０−ター で２０．０００ｒｐｍ、３０分間、４℃で遠心分離することにより除去した。

上澄みを、グアニジンＨＣＩを含まない同一の緩衝液で１０倍に希釈し、４℃に おいて一夜穏やかに撹拌して、再生および酸化を進行させた。次に、１０ｋＤａ のサイズ除去接線流れ限外濾過力セントを備えたミリポア・ペリコン（Ｍｉｌｌ ｉｐ（＋ｒｅ　Ｐｅ１ｌｉｃｏｎ）装置（Ｍｉ　Ｉ　Ｉ　１ｐｏｒｅ社製）を用 いて、濃縮および１００ｍ１の５０ｍＭ　酢酸ナトリウムｐＨ５，０への交換を 行った。

試料を同一の緩衝液中で陰イオン交換クロマトグラフィー（ＣＭセファロース１ ６／１００カラム、Ｐｈａｒｍａｃｉａ社製）に供し、同一緩衝液中の０−０゜ ７Ｍ　ＮａＣｌ勾配により溶出した。ｈｌＬ−４タンパク質を含む分画を集め、 逆相クロマトグラフィー（Ｐｏｒｏｓ　Ｒ１０／１００カラム、Ｐｅｒｓｅｐｔ ｉｖｅ　Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製）にかけ、０１％トリフルオロ酢酸／水中の ０−５０％アセトニトリルの勾配により溶出した。ｈｌＬ−４を含む分画を凍結 乾燥し、５０ｍＭ　酢酸ナトリウムｐ）Ｉ！５．　０に溶解し、鶏卵リリチウム （Ｓ　ｉ　ｇｍａ）を標準として、染色したＳ　Ｄ　Ｓ　−、Ｐ　Ａ　Ｇ　Ｅの デンシトメトリー（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　ｄｙｎａｍｉｃｓ）により定量した。

細胞増殖アッセイ 比色細胞増殖アッセイは、ウェルあたりａｏ、ｏｏｏ細胞、３日間のヒ１−ＴＦ −１細胞株を用いて、Ｍｏｓｍａｎｎ、　Ｊ、　Ｉｍｍｕｎｏｌ、Ｍｅｔ、ｈ。

ｄｓ　６５・５５　（１９８３）に記載されるようにして行った。細胞は、Ｌ− グルタミンおよび１０％ウソ胎児血／ｆＶ（ＪＲＨＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）、 ０゜５ｍＭβ−メルカプｌ−エタノール（Ｓｉ　ｇｍａ）を含むＲＰＭＩ培地中 でアッセイした。細胞は、１ｏＭ　ｈＧＭ−Ｃ３Ｆ（Ｓｃｈｃｒｉｎｇ−Ｐｌｏ ｕｇｈ）を含む上述の培地中で維持した。

ＰＨＡ芽細胞（ｂｌａｓｔ）は、末梢血単核細胞をＯ，１ｍｇ／ｍｌのフィトヘ マグルチニン（Ｗｅｌｌｃｏｍｅ　Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ）を含み１％ヒトＡ Ｂ”を補充したＹｓｓｅｌ培地（Ｙｓｓｅｌ　ｅｔ　ａｌ、、　Ｊ、　Ｉｍｍｕ ｎｏｌ、Ｍｅｔｈｏｄｓ　７２：　２１．９　（１９８４））で１ｍｌあたり１ ０６個で２４ウエルのリングｏ（Ｌｉｎｂｒｏ）プレーｔ（Ｆｌｏｗ　Ｌａｂｏ ｒａｔｏｒｉｅｓ）中で培養することにより調製し、６日間培養後に増殖アッセ イに用いた。５Ｐ−８２１は抗体特異性が未知であるＣＤＪ＋のクローン化Ｔ細 胞であり、これを上述（Ｓｐｉｔｓ　ｅｔ　ａｔ、、　Ｊ、　Ｉｍｍｕｎｏ１１ ２８：９５　（１９８２））に従って培養した。ＰＨＡ芽細胞および５Ｐ−８２ １細胞の両方の増殖応答をウェルあたり５Ｘ１０’個の細胞で決定し、ＴＦ−１ 細胞について記載したように、３日後に実施し比色的に現像（ｄｅｖｅｌｏｐｅ ）　Ｌ細胞の調製、結合したりガントと遊離のりガントとの分離、コンピュータ 分析および定量の方法は、Ｚｕｒａｗｓｋｉ　ｅｔ　ａｌ、、　ＥＭＢＯＪ、　 １１　：　３９０５　（１９９２）に記載されている。表面ｈｌＬ−４Ｒ−Ｓタ ンパク質（細胞内ドメインのほとんどを欠失したｈｌＬ−４Ｒリガンラド合タン パク質）を発現するＢａ／Ｆ３細胞を、ＴＦ−１細胞と同様に、但しｈＧＭ−Ｃ ３Ｆをマウスインターロイキン−３（ＩＬ−３，１００Ｌｌ　／　ｍ　ｌ　）で 置き換え、５０１１ｇ／ｍｌの硫酸ゲンタマイ７：／（Ｓｌｇｍａ）および８０ ０μｇ／ｍｌのネオマイノンＧ４１８　（Ｓｃｈｅｒｉｎｇ−Ｐｌｏｕｇｈ）を 加えて増殖させた。

大腸菌由来のｈＩＬ−４の１２５Ｉ−放射性標識および結合条件は、Ｈａｒａｄ ａ　ｅｔ　ａｌ、、　Ｊ、　Ｂｉｏｌ、　Ｃｈｅｍ、　２６７＋　２２７５２（ １９９２）に記載されているとおりである。

Ｕｙｉ只膓二負性分代 ｈｌＬ−４、ｈｌＬｉαおよびｍ１Ｌ−１３タンパク質の二次構造の性賀は、４ ５０ＷのキセノンランプおよびＪ　７００デ一タ分析ソフトウェア（Ｊａｓｃｏ ）を備えたＪ７２０分光光度計で調べた。試料を２０ｍＭ　ＮａＰｉ、ｐＨ７に 対して透析レニ。試料のタンパク質濃度は、ラムダ（Ｌａｍｂｄａ）６分光光度 計（Ｐｅｒｋｉｎ−Ｅｌｍｅｒ）によるＵＶ吸収スキャンにより再決定した。２ ８０ｎｍにおける最大吸収を用いて、既知の分子量および予期される残基の吸収 貢献に基づく理論的吸光定数を用いてタンパク質の量を計算した。試料を０．２ ｍｍ光路長のセル中で０．２ｍｇ／ｍｌに希釈した。

近１．Ｊ　Ｖ範囲における典型的なスキャンパラメータは、１０ｍｄｅｇ感度、 ０゜］、ｍｍスｍメス分解能、スキャン速度５０ｎｍ／ｍｉ　Ｊ時定数２８にお ける連続波長スキャンである。信号対雑音比を高めるために、４つの累積／スキ ャンを平均した。リン酸緩衝液ブランクを走らせ、続（タンパク質スキャンから 差し引き、Ｊ７００７００デ一タフトを用いてスペクトルの雑音を減少させた。

変異ｈｌＬ−４アンタゴニストの探索において、ｈｌＬ−４のＴｙｒ１２４残基 におけるＡｓｐ置換が、受容体結合を有為に失うことな（受容体活性化を失った ことが注目された。これらの性質から予期されるように、ｈＩＬ−４，Ｙ１２４ ４ＤはＴＦ−１細胞における天然ｈｌ−４の作用の競合的アンタゴニストである 。Ｔ　Ｆ−］は、ＧＭ−Ｃ８Ｆ、インターロイキン−３（ＩＬ−３）、インター ロイキン−６（ＩＬ−６）、ＩＬ−４およびヒトおよびマウスＩＬ−１３等の種 々のヒトタンパク質ホルモンに対して成長応答を示す、ヒト前骨髄性赤白血痰細 胞株である。これらの因子に対するＴＦ−１細胞の最大応答は広く異なるが、Ｉ Ｌ−４および［Ｌ−１３の最大生物学的応答は同様である。ｈｉＬ−４，Ｙ１２ ４Ｄは、ＴＦ−］のＧＭ−Ｃ３Ｆ、ＩＬ−３またはＩ　Ｌ−６に対する応答に対 して影響を及ぼさなかった。これに対し、ｈｌＬ−４，Ｙ１２４Ｄは、ＴＦ−１ 細胞に対するｒｎ　Ｉ　Ｌ　−Ｊ−３およびｈｌＬ−１３の作用の両方に対する 強力なアンタゴニスト・である。ｈｌＬ−４，Ｙ１２４Ｄは、ゴＦ−１細胞に対 するｈＩＬ−４、ｍ１Ｌ−１３およびｈｌＬ−１３の活性に対して同等の効力を 有し、用量依存的に阻害する。

ＩＬ−１３はＴＦ−１細胞に対するｈ　［Ｔ−−４の結合を競合的に阻害するｈ 　ＩＬ−４，￥１２４Ｄは、ｈｌＬ　４のＩＬ　４ＲへのＮａの競合的’Ｊｆｌ 害を介（７てｈｌＬ−４をアンタゴニストするため、その１１、−１３に対する 作用についても同様の機構が仮定される。このようなｌｌ−１３に対するｈｌＬ 、−４゜Ｙ１２４Ｄの作用のモードは、ＩＬ−４ＲとＩｔ、−］、３Ｒとの間の 共通性を暗示する。このことは、ｈｌＩ−−４およびｍＩＬ−１３がＴ　Ｆ−１ 細胞に対する】２♂１−　ｈ［１−一〜・４の結合を競合的にｒＩＩき換える能 力を比較することによって試験された。ｈｌＬ−４は、５０％阻害に必要な濃度 （Ｉ　Ｃ３ｏ）　〜２　Ｘ　］、　０−１２ＭでＴＦ−１細胞への”Ｉ−ｈｌＬ −４結合と完全に競合しｔ−０ｍ１Ｌ−３もまた１２５Ｉ−ｈｌＬ−４の結合と 競合した。しかし、ｈｌｌ−−−４と比較して、ｍｌ＋−、−３は”５Ｉ−ｈＩ Ｌ−４結合を完全には置き換之ず（結合の約７０％が置き換λらｔｌだ）、その ＩＣ５ｏｌ’ｌ　（２ＸＩＱ−’へ１）はより高かった、１」」、−二↓−：Ｕ ４」−片二」ド黙ダイ」今冬と任り−」１紳↓ケリＩＬ−４Ｒとｌ−１３Ｒとの 間の共通性についての」一つの可能な基礎は、これらが同一であるということで ある。このことは、ｈｌＬ　４およびｍＩＬ〜、１３が、マウスｐｒｏ−Ｂ　Ｂ ａ／Ｆ”３細胞において発現されるクローン化ｈｌ＋、−４Ｒリガンラド合タン パク質の誘導体・＼の１２５ｉ−ｈ　Ｉ　Ｌ−４の結合を競合的に置き換える能 力を比較することによって試験さねた。細胞１周あたり多数（−、・２０００） の結合部位を細胞質ドメインのほとんどが欠失し、たｈｌＬ−４Ｒリガンラド合 タンパク貫の形て有するＢａ／Ｆ３１１１　’！、−４Ｒ−３細胞を用いた。Ｈ ａｒａｄａ　ｅｔ　ａｌ、、　Ｊ、　Ｂｉｏｌ、　Ｃｈｅｍ、　２６７：　２２ ７５２　（１，９９２）を参照の二と９、ｈＩＬ−４１よｒ　Ｃ３ｏ＝　２　ｘ 　Ｉ　Ｑ−”Ｍで１２５！、−ｈｌＬ−４のＢａ／Ｆ３　ｈｌＬ−４Ｒ−３細胞 への結合と完全に競合するが、ｎ］Ｉ　Ｌ−］、　３はより高い濃度（１０−’ Ｍ）においても競合しなかった。

ｈＩＬ−４応答性細胞のいくつかのタイプは１１、−１３に応答しないここで記 載するように、ＩＬ、−１３の生物学的活性の初期の特徴付Ｉブは、ＩＬ−４に 対する細胞性応答とＩ　Ｌ−１３に対する細胞性応答との間に一致を示した。

フィトヘマグルチニン（ＰＨＡ）により活性化されたヒト末梢血単核細胞（ＰＢ 〜？ＮＣ）および５Ｐ−１３２１等のある種のヒトＴ細胞クローン化細胞株は、 ｈｌＬ　−、４に応答して増殖する。−れらのｈ　Ｉ　Ｌｉ応答性細胞のタイプ はいずれも、ｂ目、−１，３に応答性して増殖しなかった。

ｈｌｌ、４．Ｙ１２４ＤおよびｈＪＬ−４の結合特性Ｂａ／Ｆ３　ｈｌＬ−４Ｒ −３細胞へのｈｌｌ−，４の結き（Ｋｄ＝１．６Ｘ１０−１°Ｍ）は、以前に高 親和性１ｌ−４Ｒについて特徴づけられたもの（Ｋｄ＝１０−１０Ｍ）と密接に 対応している。ヒトリンパ腫瘍Ｒａｊｉ細胞は、ｈｌＬ−４に対する高親和性結 合部位（Ｋｄ＝ｌＱ−１ｏＭ、Ｋｒｕｓｅ　ｅｔ　ａｌ、。

止揚を参照）を有し、ｈｌＬ−、Ｌ　Ｙ１２４Ｄタンパク質はこれらの細胞に１ １１　Ｌ−４と比較してたった３倍低い親和性で結合する。ｈＩｌ、−４，Ｙ１ ２４Ｄは３５倍低い親和性でＢａ／Ｆ３　ｈｌＬ−４Ｒ−３細胞において発現さ れるｈ　Ｉ　［、、、、−４結合部位に結合する。

ＴＩと一１細胞は、Ｂａ／Ｆ３　ｈｌＬ−４Ｒ−８細胞へのｈｌｌ−４の［高親 和性−１結合より約５０倍高い明らかな親和性でｈｌＬ−４に結合しｊ二（＋比 較は並行し、で行われ、同一・の条件および試薬を用いたのにもかかわらず、こ れらの２−〇の細胞のタイプは干衡結合研究により定義して同一の数の結合部位 およびｈ　Ｉ　Ｌ−４に対する親和性をもすると報告され−Ｃいるため、−のこ とは驚くべきことである。競合的置き換え結合研究によって見られたｈＩｌ、− ４の異なる結合親和性と比較し、で、ｈｌＬ−４，Ｙ１２４ＤはＴＦ−３および Ｂａ／Ｆ３　ｈｌＬ−４Ｒ−３ｍＦのいずれにも同等に結合した。他の実験にお いては、ｈｌＬ−４，Ｙ１２・ＩＤを標識ざねたりガントとして用い、同様の結 果を得た。

１１、、、、−．４およびｌ　Ｉ−−−１３は構造的に相同であるＴ　１．、− ４　Ｒとｌ　１．、−１．３　Ｒとの共通性は、Ｉ　Ｌ　、、−４とＩＬ−１３ の配列相関性の厳密な実験を促した。成熟ヒトおよびマウスＩＬ−４および［Ｌ −１３タンパク質の配列のみが実験されたが、ＩＬ−４の既知のジスルフィド結 合はＩＬ−１３においても保存されていた。Ｉ　Ｌ−４とＩＬ−１３との間には 、低い（〜３０％）けれども有意の配列相同性がある。ｈ　Ｉ　Ｌ−４の既知の 構造的性質を考慮すると、この観察の重要性は増加した。ｈｌＬ−４の疎水的構 造的コアに貢献する２５残基のすべてが、ＩＬ−１３において保存されているか または保存的疎水的置換を有していた。ＩＬ−４とＩＬ−１３との間の広範囲の 挿入／欠失の相違は、１つの例外を除いて、４つのαヘリックスまたは２つの短 いβストランドを繋ぐループに制限されていた。この例外は短くなったαヘリッ クスＣであるが、構造的コアに貢献するすべてのαヘリックスＣ残基はＩＬ−１ ３において保存されていた。

マウスＩＬ−１３は、βストランドｈｌＬ−１αとは異なり、ｈｌＬ−４等の高 度にαヘリックス性のタンパク質（Ｊｏｈｎｓｏｎ、　Ａｎｎ、　Ｒｅｖ。

Ｂ　１ｏｐｈｙｓ、　Ｃｈｅｍ、　１７　：　１４６　（１９８８）を参照）の ＣＤ吸収スペクトル特性を有していた。

２つのサイトカインにおける類似性のため、いずれかのサイトカインを他方に対 して同様の性質を有するように修飾することができる。したがって、受容体に対 するＩＬ−４アンタゴニストの機構についての知見は、ｌｌ−１３とその受容体 との調節に有用であろう。特に、本研究は、ＩＬ−１３アンタゴニストに結び付 くと予期されるＩＬ−１３分子の位置を提供する。さらに、記載されるＩＬ−５ ４受容体を、そのＩＬ−１３アンタゴニスト活性を保持したまま修飾できること が予期される。このことは、そのアンタゴニスト機能を保持したままＩ　Ｌ−４ アンタゴニストを短くすることが有用であることを示唆する。特に、サイトカイ ンの特定の領域が、修飾して所望の生物学的活性を達成するために有用であるこ とが示唆される。

ＩＬ−１３およびＩＬ−４受容体は機能的に関係があるｈｌＬ−４，Ｙ１２４Ｄ アンタゴニストがｈｌ−４およびＩＬ−１３の両方のＴＦ−１細胞に及ぼす生物 学的作用を競合的に阻害するという観察は、ＩＬ−，４ＲとＩＬ−１３Ｒとの間 の関係を示す。ｍ１Ｌ−１３がＴＦ−１細胞ヘノ＋　２５ｌ−ｈｌ−４の結合と 競合する能力は、Ｉ　Ｌ　−４ＲとＩＬ−１３Ｈの共通性を確認する。この関係 はまた、ｈ［Ｌ−４およびＩＬ−１３により引き出されることが知られている同 様の生物学的応答から、およびおそらくはヒトおよびマウスの両方においてＩ　 Ｌ−４遺伝子とＩＩ、−１３遺伝子が密接に連結していることから予期されてき た。例えば、Ｍｏｒｇａｎ　ｅｔ　ａｌ、、　ＮｕｃｌｅｉｃＡｃｉｄｓ　Ｒｅ ｓ、　２０：　５１７３　（１９９２）ならびに本明細書に記載される他の実験 を参照のこと。上述の観察の直接的な説明は、ＩＬ−４とＩＬ−１３とが同一の 受容体を介して作用するということである。

しかし、い（つかのタイプの細胞は、ＩＬ−４に対して応答するがＩＬ−１３に 対しては応答しない。これは、ＩＬ−４ＲとＬＬ−１３Ｒとが異なるものである ことの一応の証拠である。これは、１−１３がＩＬ−４の弱い部分的アゴニスト であり、ＩＬ−４Ｒを有する細胞の１つのサブセットのみがＩＬ−４Ｒに結合し たＩＬ−１３から発生する信号を効果的に増幅することができるという可能性を 除外していない。３本の証拠が、ＩＬ−４ＲおよびＩＬ−１３Ｒに関与する難問 を解決するのに役立った。

第１に、ＩＬ−１３はｈｌＬ−４Ｒリガンラド合タンパク質のみを有する細胞へ のｌ２ＳＩ−ｈｌＬ−４の結合とは競合しなかった。この結果は、ｈ　ＩＬ−４ Ｒリガンラド合タンパク質それ自身はＩＬ−１３Ｒではないことを示す。第２に 、２つのタイプのＴ細胞は、ｈＩＬ−４に応答したが、ｈｌＬ−１３には応答し なかった。もしｈＩＬ−１３がｈＩＬ−４Ｒを介して作用する部分的アンタゴニ ストであるならば、ｈｌＬ−１３はこれらの細胞に対するｈｌＬ−４の作用を競 合的にアンタゴナイズするはずである。このことは、試験した１つのｈ　Ｉ　Ｌ −４応答性Ｔ細胞系についてはあてはまらなかった。第３に、もしｈＩＬ−１３ がｈｒＬ−４Ｒを介して作用する部分的アンタゴニストであるならば、ｈＩＬ− １３はｈｌＬ−４Ｒを有するすべてのタイプの細胞に対するｈｌＬ−４の結合と 完全に競合することができるはずである。しかし、ＩＬ−１３はＴＦ−１細胞へ の１２３１−ｈ　Ｉ　Ｌ−４の結合と部分的に競合するのみであった。

上述の３本の証拠から得られる結論は、ＩＬ−１３はＩＬ−４の部分的アンタゴ ニストではなく、ＩＬ−４Ｒおよび［Ｌ−１３Ｒは異なるということである。

ＴＦ−１細胞においては、ｍ１Ｌ−１３はｈｌＬ−４の結合と競合し、ｈｌＬ− ４、Ｙ１２４ＤはＩＬ−１３の作用をアンタゴナイズした。これらのデータは、 ［Ｌ−４ＲとＩＬ−１３Ｒとが機能的に重要な受容体成分を共通して有するとい うさらなる結論を強いる。

この結論は、ＩＬ−４Ｒリガンラド合タンパク質それ自身が、ＩＬ−４Ｒのすべ ての機能的特性を有しているという合意に反する。ＩＬ−４Ｒ複合体は、ＩＬ− ４Ｒリガンラド合タンパク質に関係するタンパク質を発見した研究により示唆さ れる。また、可溶性天然マウスＩＬ−４Ｒリガンド結合タンパク質の動力学的研 究は、膜結合性機能的ＩＬ−４Ｒ／ＩＬ−４複合体が可溶性ＩＬ−４Ｒ／ＩＬ− ４より安定であることを示す。

受容体結合分析からの２つの結果は、ＴＦ−１細胞上のＩＬ−４Ｒが複合体であ り、これまで考えられていたよりも高い親和性状態で存在しうろことを示す。

第１に、ＴＦ−１細胞上のｈｌＬ−４Ｒに対するｈｌＬ−４の明らかな親和性は 、Ｂａ／Ｆ３　■Ｌ−４Ｒ−３細胞上のクローン化ｈｌＬ−４Ｒリガンド結合タ ンパク質よりも約５０倍高かった。Ｂａ／Ｆ３　［Ｌ−４Ｒ−Ｓ細胞上のｈｌＬ −４結合部位は、多くのタイプの細胞上に存在する典型的な「高親和性ＪＩＬ− ４Ｒであった。ｈｌＬ−４Ｒに対するｈｌＩ−−４の結合の解離定数の見積もり は、一般にいくぶんさまざまであるが、Ｋｄ−〜１０”Ｍの５倍以内に入る。

実験が平行かつ独立してレプリカされ、同一の試薬および同様のＩＬ−４Ｒ数を 有する細胞を用い、そして、異なる標識されたリガンドを用いて同様の結果を与 えたため、ＴＦ−１細胞上で検出される「高親和性ＪｈｌＬ−４結合は有為であ るはずである。第２に、これはＢ　ａ　／　Ｆ　３細胞で発現されるＩＬ−４Ｒ リガント結合タンパク質に対するわずかに少ない親和性で結合したが、ｈＩＬ− ４，Ｙ１２４Ｄは、ｈＩＬ−４より約５０倍小さい親和性でＴＦ−１細胞上のＩ Ｌ−４Ｒに結合した。まとめると、この結果は、ＴＦ−１で検出される「高親和 性」ｈＩＬ−・４結合を確認する内部制御を提供する。ｈｌＬ−４Ｒリガンラド 合タンパク質ｃ　Ｄ　Ｎ　ＡがＴＦ−１からクローニングされたため、異常なＩ Ｌ−４Ｒリガンラド合タンパク質が上述の結果を説明することはありそうもない 。

上述の観察を説明するモデルは、ＴＦ−１上の機能的ＩＬ−４Ｒが、Ｉ　Ｌ−４ Ｒリガンラド合タンパク賃と、ＩＬ−４に対するＩＬ−４Ｒリガンラド合タンパ ク質の親和性を増強する別の成分（１つまたは複数）との間の複合体である。こ の別の成分はまた、ＩＬ−４応答性細胞の１つのサブセットにのみ存在するＩＬ −１３リガンド結合タンパク質と会合してＩＬ−１３Ｒを形成する。さらに、ｈ ＩＬ−４Ｔｙｒ１２４とこの成分との相互作用は、生産的なシグナル伝達に必須 である。

ともかく、この生産的シグナル伝達を引き出すことができないｈＩＬ−４，Ｙ１ ２４Ｄは、ＩＬ−４リガンド結合タンパク質とこの別の成分との間の関係を維持 している。このモデルにおいては、ｈｌＬ−４，Ｙ１２４Ｄは、ＩＬ−４結合部 位について競合することによりｈ［Ｌ−４の作用をアンタゴナイズするが、非生 産的ｈｌＬ−４Ｒ／ｈｌＬ−４，Ｙ１２４Ｄ複合体を形成することによりＩＬ− １３Ｈ複合体から別の成分を封鎖（ｓｅｑｕｅｓｔｅｒｉｎｇ）することにより ＩＬ−１３の作用をアンタゴナイズする。

ＩＬ−４Ｒを正しく定義することの過去の失敗および新規モデルの試験の提案２ つの因子が、ＴＦ−１細胞上で検出されたＩＬ−４Ｒｒ高親和性」状態を認識す ることについての過去の失敗に貢献していたであろう。第１に、ｈｌＬ−４Ｔｙ ｒ１２４残基の一体性は、現在ではこの「高親和性」結合に重要であることが知 られている（このことはまた、Ａｓｐで置換するとｍＩＬ−４の生物学的作用の 強力な競合的アンタゴニストとなる、対応するｍ１Ｌ−４のＴｙｒｌ１９残基に ついても当てはまる）。ＩＬ−４の放射性標識の標準的方法は、Ｔｙｒ残基のヨ ード化を介する。ｈＩＬ−４には２つのＴｙｒ残基しがなく、したがって、ｈｌ Ｌ−４の標識はおそら＜Ｔｙｒ１２４をヨードチロシンに転換する。

実際、Ｂｏ　ｌ　ｔ　ｏｎ−Ｈｕｎ　ｔ　ｅ　ｒ試薬により標識されたｈＩＬ− ４，Ｙ１２４Ｄは、ｈｌＬ−４より約３倍低い効率で結合する。ｈＩＬ−４，Ｙ １２４ヨードＴｙｒが、機能的ＩＬ−４Ｒに対する減少した親和性を有しており 、直接結合実験において二の試薬を用いて決定された親和性定数がＩＬ−４に対 するＩＬ−４Ｒの実際の親和性を低く見積もった可能性がある。このことは、標 識リガンドとしてｈｌＬ−４，Ｙ］、２４ヨードＴｙｒを、「コールド」競合剤 として天然ｈＩＬ−４を用いた実験においては問題ではない。ＩＬ−４Ｒの２つ の親和性状態の発見を陽してきた第２の因子は、２つの親和性の差が約５０倍し かないことである。したがって、細胞が両方の状態のＩＬ−４Ｒの混合物を有す る場合、または「低親和性」状態が優勢であった場合、従来の方法を用いて２つ の親和性を別々に認識することは不可能だろう。ｈｌＬ−４，Ｙ１２４１）のｈ ｌＬ−４Ｒサブユニツト特異的欠陥は、ｈｌＬ−４Ｒの複雑さを解体する強力な 新規な試薬である。

１−４応答性細胞のタイプは目、−４Ｌ組成物でさまざまであるという見解が試 験されている。このモデルの他の直接的な試験は、結合分析、架橋の研究および クローニングによる、ＩＬ−１３Ｒリガンド結合タンパク質の分子的な特徴付け を必要とするであろう。しかし、ＴＬ−１３Ｒの直接的特徴付を可能にする試薬 はまだ開発されていない。ヒト白血球において検出されている非常に低い親和性 （Ｋｄ＝３ｘｌＯ−’Ｍ）（７）ＩＬ−４結合部位ハ、別の１Ｌ−４Ｌ成分の性 質ＩＬ−４ＲとＩ　Ｌ−１３Ｒとの間に共通の機能的に重要な受容体成分の分子 的性質は明確ではない。われわれのデータを説明する上述のモデルは、いくつか の機能的サイトカイン受容体の間で共有される必須（ｏｂｌ　ｉｇａｔｏｒｙ） 成分である他の親和性調節タンパク質の存在に基づいている。そのような共有さ れる成分は、すべてがｇｐ１３０を共有している［１．−６、オンコスタチン− Ｍ、白血病阻害因子および毛様体神経因子の受容体（Ｋｉｓｈｉｍｏｔｏ　ｅｔ 　ａｌ。

、　５ｃｉｅｎｃｅ　２５８：　５９３　（１９９２））、ならびにすべてがβ 、タンパク質を共有しているヒトＩＬ−３、インターロイキン−５（ＩＬ−５） およびＧＭ−Ｃ３Ｆ受容体ＩＪｉｙａｊｉｍａ　ｅｔ　ａｌ、、　Ｔｒｅｎｄｓ 　Ｉｎ　Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ　５ｃｉｅｎｃｅｓ　１７：　３７８　（１９ ９２））で発見されている。

、二の共有さオ］るβ、受容体勺ブユニットは、あるタイプの細胞に結合するｌ ｌ−−３、ＩＬ−５およびＧＭ−Ｃ３Ｆで観察された交差競合を説明する。ＴＦ −１細胞でアッセイしたとき、ｈｌＬ−４，Ｙ１２４ＤはｈｌＬ−６、マウス白 血病阻害因子、ｈｌＩ、−３またはｈＧＭ−Ｃ３Ｆの生物学的活性をアンタゴナ イズせず、ｈｌＬ−６およびｈＧＭ−Ｃ３ＦのいずれもｈＩＬ−４結合と競合し なかった。したがって、ｇｐ１３０またはβ９タンパク質は別のＩＬ−４Ｌ成分 の候補およびＩＬ−４ＲとＩ　Ｌ−１３Ｒとの間で共有される成分の候補のいず れでもありそうもない。

これらの共通の遺伝的位置／構造およびタンパク質構造の関係に基づいて、■Ｌ −４、Ｉ　Ｌ　−３、■■、−５およびＧＭ−Ｃ３Ｆがタンパク質ファミリーを 形成し２ていることが提案されてきた。Ｂｏｕｌａｙ　ｅｔ　ａｔ、、　Ｊ、　 Ｂｉ。

］、　ｃ１１ｃｍ、　２６７　：　２０５２５　（１９９２）を参照のこと。Ｉ Ｌ−４とＩＬ−１３との間の共通性に関する生物学的データは、ＩＬ−１３もま たこのファミリーに属することを示す。しかし、入手可能なデータは、ＩＬ−４ ／ＩＬ−１３の受容体とＩＬ−３／ＩＬ−５／ＧＭ−Ｃ３Ｆ受容体とが明らかに 機能的に異なることを支持する。例えば、ｈｌｌ−４，Ｙ１２４ＤがＴＦ−１に おけるＩＬ−３またはＧＭ−Ｃ３Ｆ応答に対して影響しないことが注目された。

また、ＴＦ−１細胞において、ＩＬ−３／ＧＭ−Ｃ３Ｆにより引き出された細胞 内チロノンリン酸化のパターンは、Ｔ　Ｌ−４により引き出されたものとは異な る。

ｈｌＬ−４，Ｙ１２４ＤアンタゴニストがｈｌＬ−４およびｈｌＬ−１’３の生 物学的応答の両方に対して作用する能力は、ｈＩＬ−４，Ｙ１２４Ｄの治療的可 能性の再評価を起こさせるべきである。これらの結果は、可溶性ＩＬ−４Ｒリガ ンド結合ラドパク質または抗ＩＬ−４抗体とは異なり、ｈＩＬ−４，Ｙ１２４Ｄ がｈｌＬ−４の作用の特異的アンタゴニストではないことを示す。阻害的ＩＬ− ・１変異体は、ＩｇＥ−介在疾患の治療における潜在的に有用な薬剤として示唆 されてきた。種々の疾病状態のｈｌ−４，Ｙ１２４Ｄ治療によるｈｌＬ−１４お よびｈｌＬ−１３の応答を両方ともアンタゴナイズするという可能性がある。Ｉ Ｌ−４とＩＬ−１３との開の構造的類似およびＩＬ−４Ｒ（！：ＩＬ−１３Ｒと の間の受容体サブユニット（１つまたは複数）の共有は、αヘリックスＤの中の 特定の１１、−１３の残基が受容体ノグナリングに対して特異的に重要であるこ と、およびこわらの残基における置換がアンタゴニストであるＩＬ−１３変異体 をもたらすかもしれないことを示唆する。これらの結果はまた、そのようなＩＬ −１３アンタゴニストが、１１．−１３にも応答する細胞タイプのＩＬ−４応答 性に対する効果的なアンタゴニストであろうということを予測する。

他のＩＬ−１３活性に対するアンタゴニスト的効果高度に精製したＢ細胞および 活性化Ｔ細胞クローンを４００　Ｕ／ｍ　ｌのＩＬ−４とともに培養すると、１ ０μｇ／ｍｌで用いたときのＩＬ−４アンタゴニストによるＩｇＥ合成の阻害が 見られた。表１６および１７を参照のこと。アッセイは、ＩｇＥ合成について」 二連したようにして行った。

表１６　１Ｌ−４、ＩＬ−１３およびＩＩ、−４変異タンパク質によるＩｇＥ合 成の誘導 ＩｇＥ合成（ｎｇ／ｍｌ） 培地　〈０，２ Ｉ　Ｌ　−４（２００Ｕ、’ｍｌ）　１７３　±　４５１　Ｌ　−１３（２００ １１／ｍｌ）　１１０　±　４２１−４アンタゴニスｌ−（Ｙ、　１２４．１　 ｍｇ／ｍ１．）　１．３　±　６七ツク対照　＜０．２ 表１７　ＩＬ−４変異タンパク賀はＰ　Ｂ　ｈ、ｉ　ＣによるＩＬ−４誘導［ｇ Ｅ合成を阻害する ＩｇＥ合成（ｎｇ／ｍｌ） 培地　＜０．２ Ｉ　Ｌ　−４（５０Ｕ／ｍｌ）　２６５　±　・１９ＩＬ　−＝１　（５０１ｊ ／ｍｌ）　＋Ｙ、１２４　（０，００３ｍｇ／ｍ１．）　１０８　＊　６０１　 Ｌ−４（５０１１／ｍｌ）　＋’ｌ”、　１２４　（０，０３ｍｇ／ｍｌ）　１ ２　±　５１　Ｌ−４（５０Ｕ／ｍｌ）　＋Ｙ、　１２４　（０，３ｍｇ／ｍｌ ）　１２　±　３Ｉ　Ｌ−４（５［ＩＵ／ｍｌ）　＋Ｙ、　１２４　（３ｍｇ／ ｍ］）　５　±　２Ｉ　Ｌ　４　（５００／ｍｌ）→モノク対照　１９４　±　 ４６Ｙ１２４等のＩｎ、−４アンタゴニストはまた、ｌｌ−−４またはＩＬ−１ ３のいずれかの存在下で抗ＣＤ４０モノクローナル抗体により刺激された精製ヒ トＢ細抱の増殖を効果的に阻害した。ＩＬ−１３アンタゴニストは同様の効果を 有するであろう。したがって、ＩＬ−４およびＩＬ−１，３７ンタゴニストの投 与は、ＩｇＥ合成の阻害のみならずＩｇＥ産生細胞の拡大を防止するための好ま しい方法を提供するであろう。

■　ヒトＩＬ−１３に対する抗体 標準的な方法により、大腸菌由来ヒトＩＬ−１３に対するラットポリクローナル 抗血清を調製した。例えば、１（ａｒｌｏｗ　＆　Ｌａｎｅ　（１９８９）また はＣｏｌｉｇａｎ　（１９９１および追録）を参照のこと。これらのラットから の血清は、３５３−メチオニン標識された、ｒＬ−１３を発現するＣＯ３７細胞 のに澄みを免疫沈降させるために有用であった。

標準的な方法により、ｈｌ−１３に対するモノクローナル抗体を生産した。

ラットを大腸菌産生ｈｌＬ−１３で免疫した。ＣＯ８産生ｂｌｌ−−１３または 大腸菌産生ｈ［Ｌ−１，３で刺激したＴＦ−１細胞について、４つの異なるモノ クローナル抗体の中和能力を試験した。ＴＦ−１細胞（５，０００細胞／ウエル ）を１１００希釈ＣＯ８産生ｈｌＬ−１３または５μｇ／ｍｌの大腸菌産生ｂＩ Ｌ。

−１３、およびラット抗ｈｌＬ−１３モノクローナル抗体を含む上澄みの希釈と ともに７２時間インキュベベートた。７２時間後、アラマーブル−染色により細 胞の生存能力を決定した。

ト述の肺臓−ハイブリドー７融合からのいずれのモノクローナル抗体がＣＯ８ま たは大腸菌により産生されたｈｌＬ−１３に結合するかを決定するために、非直 接的Ｅ　Ｌ　Ｉ　Ｓ　Ａを実施した。ＰＶＣマイクロタイタープレートを、ＰＢ Ｓ中の０．５μｇ／ｍｌの大腸菌産生ｈｌＬ−１３または１１５希釈のＣＯ８産 生）〕ｌｌＩ−１，３で、３７°Ｃにおいて２時間コーティングした。標準的な ＥＬＩＳＡプロＩ・コールを用いｆ、−、。いずれの場合にも、特異的結合が観 察された。

本発明の精神および１囲から離れることなく本発明の多くの変更および変形が可 能であることは当業者に自明であろう。本明細書に記載される特定の実施例は、 例示としてのみ示すものであり、本発明は、添付される特許請求の範囲の記載１ よってのみ制限される。

；に　配列表 （１）一般情報： （ｉ）出願人・ （Ａ）名称：シエリング・コーポレーション（ＳｈｅｒｉｎｇＣｏｒｐｏｒａｔ ｉｏｎ） （Ｂ）地区・ワン・ジラルダ・ファームズ（Ｏｎｅ　ＧｉｒａｌｄａＦａｒｍｓ ） （Ｃ）車名：マディラン （Ｄ）州名：ニュー・シャーシー （Ｅ）国名：米国 （Ｆ）郵便番号（ＺＩＰ）：０７９４０−１０００（Ｇ）電話：　２０１−８２ ２−７３５（Ｈ）ファクシミリ：　２０１−８２２−７０３９（１）テレックス ＋２Ｌ９１６５ （ｉ　ｉ）発明の名称：ヒトインターロイキン−１３（ｉｉｉ）配列の数二６ （ｉｖ）コンピューター読取り形式： （Ａ）中型：フロッピーディスク （Ｂ）コンピュータｍ：アップル・マツキントラシュ（ＡｐｐｌｅＭａｃｉｎｔ ｏｓｈ） （Ｃ）　操作システム：マツキントラシュ６．　０．　５８Ｄ）ソフトウェア・ マイクロソフト・ワード（ＭｉｃｒｏｓｏｆｔＷｏｒｄ）５．１ａ （Ｖ）現行出願資料： （Ａ）出願番号： （Ｂ）出願日： （ｖｉ）先行出願資料： （Ａ）出願番号＋ＵＳ　０８１０１２５４３（Ｂ）出願日：１９９３年２月１日 （ｖｉ）先行出願資料： （Ａ）出願番号：ＵＳ　０８１０１０９７７（Ｂ）出願日・１９９３年１月２９ 日 （ｖｉ）先行出願資料： （Ａ）出願番号：ＵＳ　０７／９３３４１６（Ｂ）出願日・１９９２年８月２１ 日 （２）配列番号・１の情報： （ｉ）配列の特徴： （Ａ）長さ＋１２９０塩基対 （Ｂ）種類・核酸 （Ｃ）鎖・２本 （Ｄ）トポロジー・直鎖状 （ｘ　ｉ）配列種類：配列番号：１ π墓ＩχαＸπ：コスＣ工πχロ丁１ｚ刀Ｃ℃刀ＣＣｒＣＮにα工ＣＴｒτに５ ６ｋｉｔ　ＡＬａ　Ｌｅｕ　Ｌｅｕ Ｇ’ＩＣＭＣＡＴＣＡＣＣＣｌ’ｉＧ　ＭＣＣＡＧ　ＭＧαコα）ｌ；　ＣｒＣ ＴＧＣＡＡＴ　ＧＧＣＡＧＣＡＥ　２００に℃７℃ＣＡＴ　ＧｒＣＣＧＡ　ＧＡ ＣＡｃｅ　ＭＡＡＴＣＱＮＩ；　ＧｒＧ　Ｇｏ：　ＯｉＧ　’！ＴＴ　ＧＴＡＭ Ｇ　３９２（２）配列番号＝２の情報。

（１）配列の特徴： （Ａ）長さ：１３２アミノ酸 （Ｂ）種類二アミノ酸 （Ｄ）トポロジー二直鎖状 （ｉ　Ｄ分子種類：タンパク質 （ｘｉ）配列種類：配列番号：２ （２）配列番号、３の情報＝ （ｉ）配列の特徴： （Ａ）長さ：１２１２塩基対 （Ｂ）種類：核酸 （Ｃ）鎖：２本 （Ｄ）トポロジー：直鎖状 （ｘｉ）配列種類：配列番号：３ （２）翫ツリ番号：４の情報： （ｉ）配列の特徴： （Ａ）長さ＝１３１アミノ酸 （Ｂ）種類・アミノ酸 補正書の翻訳文提出書 （特Ｊ’ｌ法第１８４条の８）

Claims (11)

【特許請求の範囲】
1. １．配列番号：２で定義されたアミノ酸配列を有するヒトＩＬ−１３。
2. ２．薬学的に許容しうる担体および有効量の配列番号；２で定義されたアミノ酸 配列を有するヒトＩＬ−１３を含む薬剤組成物。
3. ３．薬学的に許容しうる担体および有効量の配列番号；２で定義されたアミノ酸 配列を有するヒトＩＬ−１３を混合すること含む薬剤組成物の製造法。
4. ４．配列番号；２で定義されたアミノ酸配列を有するヒトＩＬ−１３に対する抗 体、好ましくは単クローン性抗体。
5. ５．薬学的に許容しうる担体および有効量のＩＬ−１３のアンタゴニストを含む 、ＩｇＥまたはＩｇＧ４への抗体インタイプスイッチングを阻害する薬剤組成物 。
6. ６．薬学的に許容しうる担体および有効量のＩＬ−１３のアンタゴニストを混合 することを含む、ＩｇＥまたはＩｇＧ４への抗体インタイプスイッチングを阻害 する薬剤組成物の製造法。
7. ７．ＩｇＥまたはＩｇＧ４への抗体インタイプスイッチングを阻害するためのＩ Ｌ−１３のアンタゴニストの使用。
8. ８．ＩｇＥまたはＩｇＧ４への抗体インタイブスイッチングを阻害する薬剤組成 物の製造のためのＩＬ−１３のアンタゴニストの使用。
9. ９．アンタゴニストが、ＩＬ−１３に対する抗体、好ましくは単クローン性抗体 である請求項５〜８のいずれか１項に記載の薬剤組成物、方法または使用。
10. １０．抗体インタイプスイッチングの阻害が、減少した濃度のＩｇＥ抗体を生産 する請求項５〜９のいずれか１項に記載の薬剤組成物、方法または使用。
11. １１．アンタゴニストがヒトＩＬ−１３のアンタゴニストである請求項５〜１０ のいずれか１項に記載の薬剤組成物、方法または使用。