JPH07313196A - 液体中のクレアチニン含分を測定するための試薬 - Google Patents
液体中のクレアチニン含分を測定するための試薬Info
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- JPH07313196A JPH07313196A JP7161255A JP16125595A JPH07313196A JP H07313196 A JPH07313196 A JP H07313196A JP 7161255 A JP7161255 A JP 7161255A JP 16125595 A JP16125595 A JP 16125595A JP H07313196 A JPH07313196 A JP H07313196A
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Abstract
(57)【要約】
【目的】 液体中のクレアチニン含分を測定する試薬
【構成】ａ）ＮＭＨアーゼ活性を有する蛋白質及び
ｂ）１〜１００ミリモリ／ｌの濃度のＮ−メチルヒダン
トインよりなり、ここで、ＮＭＨアーゼ活性を有する前
記ａ）の蛋白質は、（１）ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１で表
わされる核酸配列、（２）Ｎ−メチルヒダントイナーゼ
のアミノ酸に関する１個のコドンが、同じアミノ酸をコ
ードする他の１個のコドンにより代えられていてよいＳ
ＥＱ ＩＤＮＯ：１に相当の配列又は（３）（１）又は
／及び（２）からの配列と厳しい条件下でハイブリド形
成する配列を有し、Ｎ−メチルヒダントイナーゼ活性を
有する蛋白質に関してコードするＤＮＡフラグメントを
単離し；このＤＮＡフラグメントで細胞を形質転換さ
せ；前記細胞を適当な培地中で培養し；かつこの培地又
は細胞から、ＮＭＨアーゼ活性を有する蛋白質を単離す
る方法により製造されている。
トインよりなり、ここで、ＮＭＨアーゼ活性を有する前
記ａ）の蛋白質は、（１）ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１で表
わされる核酸配列、（２）Ｎ−メチルヒダントイナーゼ
のアミノ酸に関する１個のコドンが、同じアミノ酸をコ
ードする他の１個のコドンにより代えられていてよいＳ
ＥＱ ＩＤＮＯ：１に相当の配列又は（３）（１）又は
／及び（２）からの配列と厳しい条件下でハイブリド形
成する配列を有し、Ｎ−メチルヒダントイナーゼ活性を
有する蛋白質に関してコードするＤＮＡフラグメントを
単離し；このＤＮＡフラグメントで細胞を形質転換さ
せ；前記細胞を適当な培地中で培養し；かつこの培地又
は細胞から、ＮＭＨアーゼ活性を有する蛋白質を単離す
る方法により製造されている。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：
１で表わされる核酸配列を有するＤＮＡで形質転換され
た細胞から製造された、Ｎ−メチルヒダントイナーゼ活
性を有する蛋白質を含有する、液体中のクレアチニン含
分を測定するための試薬に関する。
１で表わされる核酸配列を有するＤＮＡで形質転換され
た細胞から製造された、Ｎ−メチルヒダントイナーゼ活
性を有する蛋白質を含有する、液体中のクレアチニン含
分を測定するための試薬に関する。
【０００２】
【従来の技術】酵素Ｎ−メチルヒダントイナーゼ（ＮＭ
Ｈアーゼ）は、液体中のクレアチニン含分の測定のため
に必要である。クレアチニン濃度は、腎臓診断のための
重要なパラメータである。世界的に、毎年、約１０億の
テストが実施されている。従って、酵素ＮＭＨアーゼの
価格的に好都合な提供並びに問題のない醗酵の可能性
は、クレアチニン測定用の診断キットの提供のための基
本的前提である。このＮＭＨアーゼの分子量はＳＤＳ−
ゲル中で１２５ｋＤである。その特異活性は、２Ｕ／ｍ
ｇであり、Ｎ−メチルヒダントインに関するＫмは２×
１０-5モル／ｌである。通常、このＮＭＨアーゼはアル
トロバクター（Ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ）から単離さ
れる。しかしながら、この方法は、使用微生物に基づき
欠点を有する。
Ｈアーゼ）は、液体中のクレアチニン含分の測定のため
に必要である。クレアチニン濃度は、腎臓診断のための
重要なパラメータである。世界的に、毎年、約１０億の
テストが実施されている。従って、酵素ＮＭＨアーゼの
価格的に好都合な提供並びに問題のない醗酵の可能性
は、クレアチニン測定用の診断キットの提供のための基
本的前提である。このＮＭＨアーゼの分子量はＳＤＳ−
ゲル中で１２５ｋＤである。その特異活性は、２Ｕ／ｍ
ｇであり、Ｎ−メチルヒダントインに関するＫмは２×
１０-5モル／ｌである。通常、このＮＭＨアーゼはアル
トロバクター（Ａｒｔｈｒｏｂａｃｔｅｒ）から単離さ
れる。しかしながら、この方法は、使用微生物に基づき
欠点を有する。
【０００３】
【発明の解決しようとする課題】従って、多量のＮＭＨ
アーゼ活性を有する蛋白質の提供のためには、改良され
た濃縮法を開発すべきである。本発明はこれを含有す
る、液体中のクレアチニン含分を測定するための試薬に
関する。
アーゼ活性を有する蛋白質の提供のためには、改良され
た濃縮法を開発すべきである。本発明はこれを含有す
る、液体中のクレアチニン含分を測定するための試薬に
関する。
【０００４】
【課題を解決するための手段】本発明のこの課題は、Ｎ
ＭＨアーゼに関してコードするアルトロバクターからの
遺伝子のクローニング及び適当な宿主生物中でのその表
現により得られる蛋白質により解決することができた。
ＭＨアーゼに関してコードするアルトロバクターからの
遺伝子のクローニング及び適当な宿主生物中でのその表
現により得られる蛋白質により解決することができた。
【０００５】従って、本発明の目的物は、 （１）ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１
【０００６】
【化３】
【０００７】
【化４】
【０００８】で表わされる核酸配列、（２）遺伝子コー
ドの縮重（Ｄｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ）の範囲内にある
それに相当する配列又は（３）（１）又は／及び（２）
からの配列を用いて厳しいハイブリド形成条件下でハイ
ブリド形成する配列を有し、ＮＭＨアーゼ活性を有する
蛋白質に関してコードするＤＮＡから得られる蛋白質を
含有する試薬である。
ドの縮重（Ｄｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ）の範囲内にある
それに相当する配列又は（３）（１）又は／及び（２）
からの配列を用いて厳しいハイブリド形成条件下でハイ
ブリド形成する配列を有し、ＮＭＨアーゼ活性を有する
蛋白質に関してコードするＤＮＡから得られる蛋白質を
含有する試薬である。
【０００９】本発明の意味における厳しい条件下でのハ
イブリド形成は、マニアチス（Ｍａｎｉａｔｉｓ）等に
よるモレキュラール・クローニング．ア・ラボラトリィ
・マニュアル（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ．
Ａ ｌａｂｏｒａｔｏｒｙｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ Ｓ
ｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｎ
ｅｗ Ｙｏｒｋ（１９８２））に記載されている。
イブリド形成は、マニアチス（Ｍａｎｉａｔｉｓ）等に
よるモレキュラール・クローニング．ア・ラボラトリィ
・マニュアル（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ．
Ａ ｌａｂｏｒａｔｏｒｙｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ Ｓ
ｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｎ
ｅｗ Ｙｏｒｋ（１９８２））に記載されている。
【００１０】本発明によるＤＮＡは、ＳＥＱ ＩＤ Ｎ
Ｏ：２
Ｏ：２
【００１１】
【化５】
【００１２】
【化６】
【００１３】
【化７】
【００１４】
【化８】
【００１５】で表わされる配列を有するアミノ酸１２８
８個を有する蛋白質に関してコードする。
８個を有する蛋白質に関してコードする。
【００１６】従って、本発明は、ＮＭＨアーゼ活性及び
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２で表わされるか又はそれから誘
導されたアミノ酸配列を有し、遺伝子工学的方法で、例
えば異種生物中、即ち、本発明による蛋白質に関してコ
ードする遺伝子が本来は現われない生物中での表現によ
り得られる蛋白質を包含する。他方、本発明によるＤＮ
Ａの１個以上のコピーを、本発明のＤＮＡをその中に有
する生物中に導入することにより、ＮＭＨアーゼ遺伝子
の改良された表現を達成することも可能である。
ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：２で表わされるか又はそれから誘
導されたアミノ酸配列を有し、遺伝子工学的方法で、例
えば異種生物中、即ち、本発明による蛋白質に関してコ
ードする遺伝子が本来は現われない生物中での表現によ
り得られる蛋白質を包含する。他方、本発明によるＤＮ
Ａの１個以上のコピーを、本発明のＤＮＡをその中に有
する生物中に導入することにより、ＮＭＨアーゼ遺伝子
の改良された表現を達成することも可能である。
【００１７】もう１つの本発明の目的物は、本発明によ
るＤＮＡの１個以上のコピーを有する組換えベクターで
ある。本発明による組換えベクターは、原核生物又は真
核生物中での蛋白質表現のために好適であるベクターで
あってよい。これは原核生物ベクターであるのが有利で
ある 本発明による組換えベクターは、宿主細胞中で染色体外
に存在するベクター(例えばプラスミド）であるか又は
宿主のゲノム中に組込まれていて（例えばバクテリオフ
ァージラムダ）よい。
るＤＮＡの１個以上のコピーを有する組換えベクターで
ある。本発明による組換えベクターは、原核生物又は真
核生物中での蛋白質表現のために好適であるベクターで
あってよい。これは原核生物ベクターであるのが有利で
ある 本発明による組換えベクターは、宿主細胞中で染色体外
に存在するベクター(例えばプラスミド）であるか又は
宿主のゲノム中に組込まれていて（例えばバクテリオフ
ァージラムダ）よい。
【００１８】本発明による組換えベクターは、プラスミ
ドであるのが有利である。好適な本発明によるプラスミ
ドは、例えばプラスミドｐＢＰ０１０である。
ドであるのが有利である。好適な本発明によるプラスミ
ドは、例えばプラスミドｐＢＰ０１０である。
【００１９】本発明による組換えベクター上には、ＮＭ
Ｈアーゼ活性を有する蛋白質に関してコードするＤＮＡ
が、有利に、調節可能なプロモータの制御下に、即ち、
本発明によるＤＮＡの表現は、例えばレプレッサーによ
り抑制され得、かつ調節可能なプロモータの所望誘導の
際にのみ起こるような制御下に存在する。この誘導は、
例えば温度変化又は、化学的誘導物質（例えばｌａｃ−
プロモータ−誘導体の場合は、ＩＰＴＣ）の添加により
行なうことができる。本発明の特に有利な実施形におけ
る、その制御下に、ＮＭＨアーゼ遺伝子を生じる調節可
能なプロモータは、糖例えばグルコース及びフラクトー
スによる異化代謝中間体抑制を介して調節可能なサルモ
ネラ・チフィムリウム（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ ｔｙｐ
ｈｉｍｕｒｉｕｍ）からのｍｇｌ−プロモータである
（ＷＯ８８／０９３７３）。
Ｈアーゼ活性を有する蛋白質に関してコードするＤＮＡ
が、有利に、調節可能なプロモータの制御下に、即ち、
本発明によるＤＮＡの表現は、例えばレプレッサーによ
り抑制され得、かつ調節可能なプロモータの所望誘導の
際にのみ起こるような制御下に存在する。この誘導は、
例えば温度変化又は、化学的誘導物質（例えばｌａｃ−
プロモータ−誘導体の場合は、ＩＰＴＣ）の添加により
行なうことができる。本発明の特に有利な実施形におけ
る、その制御下に、ＮＭＨアーゼ遺伝子を生じる調節可
能なプロモータは、糖例えばグルコース及びフラクトー
スによる異化代謝中間体抑制を介して調節可能なサルモ
ネラ・チフィムリウム（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ ｔｙｐ
ｈｉｍｕｒｉｕｍ）からのｍｇｌ−プロモータである
（ＷＯ８８／０９３７３）。
【００２０】グラム陰性菌殊にＥ．コリー中でのＮＭＨ
アーゼの表現のために好適な本発明によるベクターは、
例えばプラスミドｐＢＰ００６である。ｐＢＰ００６の
製造のために、サルモネラ・チフィムリウムからのｍｇ
ｌ−プロモータの配列を有するＤＮＡ−フラグメント
を、プラスミドｐＰＺ０７−ｍｇｌ−ｌａｃ（ＷＯ８８
／０９３７３ 図８に記載）から単離し、その特有のプ
ロモータなしでアルトロバクターからのＮＭＨアーゼ−
遺伝子のコード配列を含有するＤＮＡ−フラグメントの
前でクローニングした。
アーゼの表現のために好適な本発明によるベクターは、
例えばプラスミドｐＢＰ００６である。ｐＢＰ００６の
製造のために、サルモネラ・チフィムリウムからのｍｇ
ｌ−プロモータの配列を有するＤＮＡ−フラグメント
を、プラスミドｐＰＺ０７−ｍｇｌ−ｌａｃ（ＷＯ８８
／０９３７３ 図８に記載）から単離し、その特有のプ
ロモータなしでアルトロバクターからのＮＭＨアーゼ−
遺伝子のコード配列を含有するＤＮＡ−フラグメントの
前でクローニングした。
【００２１】更に、本発明の目的物は、本発明によるＤ
ＮＡで又は本発明による組換えベクターで形質転換され
ている細胞である。この細胞は、細菌細胞特にＥ．コリ
ー細胞が有利である。
ＮＡで又は本発明による組換えベクターで形質転換され
ている細胞である。この細胞は、細菌細胞特にＥ．コリ
ー細胞が有利である。
【００２２】ＮＭＨアーゼ−遺伝子のクローニングによ
り本発明によるＤＮＡを得た。このために、アルトロバ
クターの染色体ＤＮＡを慣用の方法で単離し、適当な制
限酵素を用いて切断した。このＤＮＡ−フラグメントか
ら、遺伝子バンクをＥ．コリー中に付加させた。しかし
ながら、慣用法でのＮＭＨアーゼ遺伝子のクローニング
（オリゴヌクレオチド−プローブを用いる遺伝子バンク
の検査及びＮＭＨアーゼ活性を介してのクローンの選
択）は成功しなかった。即ち、Ｅ．コリー中でのクロー
ニングの際に、使用アルトロバクターＤＮＡ−フラグメ
ントにおいてＮＭＨアーゼ活性は測定できなかった。オ
リゴヌクレオチド−プローブを用いるハイブリド形成に
基づき、スタートコドン及びストップコドンを有する適
切な長さのＤＮＡ−フラグメントが同定できたので、こ
の発見は意想外のことであった。ＮＭＨアーゼ活性は、
本来のＮＭＨアーゼ−プロモータを失なったＤＮＡ−フ
ラグメントのクローニングの際にはじめて検出できた。
り本発明によるＤＮＡを得た。このために、アルトロバ
クターの染色体ＤＮＡを慣用の方法で単離し、適当な制
限酵素を用いて切断した。このＤＮＡ−フラグメントか
ら、遺伝子バンクをＥ．コリー中に付加させた。しかし
ながら、慣用法でのＮＭＨアーゼ遺伝子のクローニング
（オリゴヌクレオチド−プローブを用いる遺伝子バンク
の検査及びＮＭＨアーゼ活性を介してのクローンの選
択）は成功しなかった。即ち、Ｅ．コリー中でのクロー
ニングの際に、使用アルトロバクターＤＮＡ−フラグメ
ントにおいてＮＭＨアーゼ活性は測定できなかった。オ
リゴヌクレオチド−プローブを用いるハイブリド形成に
基づき、スタートコドン及びストップコドンを有する適
切な長さのＤＮＡ−フラグメントが同定できたので、こ
の発見は意想外のことであった。ＮＭＨアーゼ活性は、
本来のＮＭＨアーゼ−プロモータを失なったＤＮＡ−フ
ラグメントのクローニングの際にはじめて検出できた。
【００２３】更に、本発明の目的は、１細胞を本発明に
よるＤＮＡ又は本発明による組換えベクターを用いて形
質転換し、この形質転換された細胞を適当な培地中で培
養し、この培地又は細胞からの蛋白質を濃縮させること
よりなる、ＮＭＨアーゼ活性を有する蛋白質の取得法で
もある。
よるＤＮＡ又は本発明による組換えベクターを用いて形
質転換し、この形質転換された細胞を適当な培地中で培
養し、この培地又は細胞からの蛋白質を濃縮させること
よりなる、ＮＭＨアーゼ活性を有する蛋白質の取得法で
もある。
【００２４】本発明による方法のための宿主生物とし
て、Ｅ．コリー菌を使用するのが有利である。しかしな
がら、この場合に、形質転換された細胞の培養を、亜適
（ｓｕｂｏｐｔｉｍａｌｅｎ）生長条件で行なうのが好
適である。亜適生長条件とは、インキュベーション時の
温度がいくらか低く（３０℃又はそれ以下）、酸素導入
を減少しかつ／又は最小培地（即ち培養生物にとって重
要な一定の栄養物が限られた濃度で含有する培地）を使
用することである。
て、Ｅ．コリー菌を使用するのが有利である。しかしな
がら、この場合に、形質転換された細胞の培養を、亜適
（ｓｕｂｏｐｔｉｍａｌｅｎ）生長条件で行なうのが好
適である。亜適生長条件とは、インキュベーション時の
温度がいくらか低く（３０℃又はそれ以下）、酸素導入
を減少しかつ／又は最小培地（即ち培養生物にとって重
要な一定の栄養物が限られた濃度で含有する培地）を使
用することである。
【００２５】従って、例えばｔａｃ−プロモータの制御
下にＮＭＨアーゼ−遺伝子を含有する組換ベクターを使
用する方法でＥ．コリーからＮＭＨアーゼを取得する方
法における培養条件は、最小培地、インキュベーション
温度≦３０℃及び乳糖０．８％でのｔａｃ−プロモータ
の不完全誘導である。
下にＮＭＨアーゼ−遺伝子を含有する組換ベクターを使
用する方法でＥ．コリーからＮＭＨアーゼを取得する方
法における培養条件は、最小培地、インキュベーション
温度≦３０℃及び乳糖０．８％でのｔａｃ−プロモータ
の不完全誘導である。
【００２６】サルモネラ・チフィムリウムのｍｇｌ−プ
ロモータの制御下におけるＮＭＨアーゼ遺伝子の特に有
利な表現は、同様に有利に３０℃以下のインキュベーシ
ョン温度で、場合により付加的な酸素導入の減少と結び
ついて起こり、従って生じたＮＭＨアーゼは不活性形で
沈殿体としては生じない。このｍｇｌ−プロモータは異
化代謝産物−抑制により調節される(欧州特許ＥＰ−Ａ
第０３１６３７８号)。
ロモータの制御下におけるＮＭＨアーゼ遺伝子の特に有
利な表現は、同様に有利に３０℃以下のインキュベーシ
ョン温度で、場合により付加的な酸素導入の減少と結び
ついて起こり、従って生じたＮＭＨアーゼは不活性形で
沈殿体としては生じない。このｍｇｌ−プロモータは異
化代謝産物−抑制により調節される(欧州特許ＥＰ−Ａ
第０３１６３７８号)。
【００２７】一般に、本発明の方法にとって、各々使用
された調節可能なプロモータの誘導は、不完全にのみ実
施されることが有利であり、これは、同様に沈殿体の僅
かな形成に寄与する。
された調節可能なプロモータの誘導は、不完全にのみ実
施されることが有利であり、これは、同様に沈殿体の僅
かな形成に寄与する。
【００２８】更に、本発明の方法にとって、安定化のた
めに、有利に、形質転換された細胞又は培地からのＮＭ
Ｈアーゼの濃縮の間に、蛋白質を酵素基質Ｎ−メチルヒ
ダントインと共にインキュベートすることが特に有利で
ある。意外にも、本発明の方法で得られた組換えＮＭＨ
アーゼの安定性は、酵素１単位（Ｕ）当りＮ−メチルヒ
ダントイン約３．８ｎモルの量の存在の際に著るしく高
めることができる。このために、酵素を、有利に１〜１
００ｍモル／ｌ、特に有利に１０〜７０ｍモル／ｌ、最
も有利に５０ｍモル／ｌの濃度のＮ−メチルヒダントイ
ン溶液と共にインキュベートする。このインキュベーシ
ョン工程では、温度を例えば５５℃まで高めるのが好適
である。意外にも、殊に、特有の基質の存在は、酵素を
安定化させるが同時に組換え酵素の酵素反応に障害性の
影響を及ぼさない。
めに、有利に、形質転換された細胞又は培地からのＮＭ
Ｈアーゼの濃縮の間に、蛋白質を酵素基質Ｎ−メチルヒ
ダントインと共にインキュベートすることが特に有利で
ある。意外にも、本発明の方法で得られた組換えＮＭＨ
アーゼの安定性は、酵素１単位（Ｕ）当りＮ−メチルヒ
ダントイン約３．８ｎモルの量の存在の際に著るしく高
めることができる。このために、酵素を、有利に１〜１
００ｍモル／ｌ、特に有利に１０〜７０ｍモル／ｌ、最
も有利に５０ｍモル／ｌの濃度のＮ−メチルヒダントイ
ン溶液と共にインキュベートする。このインキュベーシ
ョン工程では、温度を例えば５５℃まで高めるのが好適
である。意外にも、殊に、特有の基質の存在は、酵素を
安定化させるが同時に組換え酵素の酵素反応に障害性の
影響を及ぼさない。
【００２９】更に、本発明は、液体中のクレアチニン含
分を測定するための試薬に関し、これは本発明の方法で
得られた蛋白質を慣用の成分と共に含有する。
分を測定するための試薬に関し、これは本発明の方法で
得られた蛋白質を慣用の成分と共に含有する。
【００３０】
【実施例】次の例で、配列表及び図１〜１０と関連させ
て、本発明を更に詳述する。前記のＳＥＱ ＩＤ Ｎ
Ｏ：１はＮＭＨアーゼ遺伝子のＤＮＡ配列であり、ＳＥ
ＱＩＤ ＮＯ：２はこれから誘導されたＮＭＨアーゼの
アミノ酸配列である。
て、本発明を更に詳述する。前記のＳＥＱ ＩＤ Ｎ
Ｏ：１はＮＭＨアーゼ遺伝子のＤＮＡ配列であり、ＳＥ
ＱＩＤ ＮＯ：２はこれから誘導されたＮＭＨアーゼの
アミノ酸配列である。
【００３１】図１は、ＮＭＨアーゼ−遺伝子の約０．６
ｋｂの大きさのフラグメントを有するアルトロバクター
からの６ｋｂの大きさのＥｃｏＲＩ−フラグメントを示
している。
ｋｂの大きさのフラグメントを有するアルトロバクター
からの６ｋｂの大きさのＥｃｏＲＩ−フラグメントを示
している。
【００３２】図２は、ＮＭＨアーゼ−遺伝子に関してコ
ードする３．０ｋｂの大きさの領域を有する、アルトロ
バクターからの３．７ｋｂの大きさのＳａｌＩ−フラグ
メントを示している。
ードする３．０ｋｂの大きさの領域を有する、アルトロ
バクターからの３．７ｋｂの大きさのＳａｌＩ−フラグ
メントを示している。
【００３３】図３は、ＮＭＨアーゼ−遺伝子の３′−末
端領域を示している。
端領域を示している。
【００３４】図４は、ＥｃｏＲＩ／ＡａｔＩＩ−リンカ
ーを示している。
ーを示している。
【００３５】図５は、プラスミドｐＢＰ００８の製造過
程を示している。
程を示している。
【００３６】図６は、プラスミドｐＢＰ００９の製造過
程を示している。
程を示している。
【００３７】図７は、ＮＭＨアーゼ−表現プラスミドｐ
ＢＰ０１０の製造過程を示している。
ＢＰ０１０の製造過程を示している。
【００３８】図８は、サルモネラ・チフィムリウムから
のｍｇｌ−プロモータを有するプラスミドｐＢＰ０１１
の製造過程を示している。
のｍｇｌ−プロモータを有するプラスミドｐＢＰ０１１
の製造過程を示している。
【００３９】図９は、ｐＢＰ０１０からのＮＭＨアーゼ
−遺伝子のフラグメントの製造過程を示している。
−遺伝子のフラグメントの製造過程を示している。
【００４０】図１０は、ＮＭＨアーゼ−表現−プラスミ
ドｐＢＰ００６の製造過程を示している。
ドｐＢＰ００６の製造過程を示している。
【００４１】例１（参考例） ＮＭＨアーゼのクローニング アルトロバクターＳｐｃ．（ＤＳＭ ２５６３）から、
慣用法でＤＮＡを単離し（Ｊ．Ｍａｒｍｅｒ−Ａ Ｐｒ
ｏｃｅｓｓ ｆｏｒ ｔｈｅ ｉｓｏｌａｔｉｏｎ ｏ
ｆ ｄｅｏｘｙｒｉｂｏｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄ ｆ
ｒｏｍ ｍｉｃｒｏ−ｏｒｇａｎｉｓｍｓ，Ｊ．Ｍｏ
ｌ．Ｂｉｏｌ． ３， ２０８〜２１８(１９６１）；
Ｓ．Ｖｉｓｕｖａｎａｔｈａｎ等のＳｉｍｐｌｅ ｅｎ
ｚｙｍｉｃｍｅｔｈｏｄ ｆｏｒ ｉｓｏｌａｔｉｏｎ
ｏｆ ＤＮＡ ｆｒｏｍ ｄｉｖｅｒｓｅ ｂａｃｔ
ｅｒｉａ，Ｊｏｕｎａｌ ｏｆ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏ
ｇｉｃａｌ Ｍｅｔｈｏｄｓ １０， ５９〜６４（１
９８９））、制限酵素ＥｃｏＲＩ又はＨｉｎｄＩＩＩで
切断した。アルトロバクターＤＮＡ用のクローニングベ
クターとして、バクテリオファージλｇｔ１０（Ｂｏｅ
ｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ）を用いた。このア
ルトロバクターＤＮＡを製造者の指示に依りλｇｔ１０
中でクローニングした。
慣用法でＤＮＡを単離し（Ｊ．Ｍａｒｍｅｒ−Ａ Ｐｒ
ｏｃｅｓｓ ｆｏｒ ｔｈｅ ｉｓｏｌａｔｉｏｎ ｏ
ｆ ｄｅｏｘｙｒｉｂｏｎｕｃｌｅｉｃ ａｃｉｄ ｆ
ｒｏｍ ｍｉｃｒｏ−ｏｒｇａｎｉｓｍｓ，Ｊ．Ｍｏ
ｌ．Ｂｉｏｌ． ３， ２０８〜２１８(１９６１）；
Ｓ．Ｖｉｓｕｖａｎａｔｈａｎ等のＳｉｍｐｌｅ ｅｎ
ｚｙｍｉｃｍｅｔｈｏｄ ｆｏｒ ｉｓｏｌａｔｉｏｎ
ｏｆ ＤＮＡ ｆｒｏｍ ｄｉｖｅｒｓｅ ｂａｃｔ
ｅｒｉａ，Ｊｏｕｎａｌ ｏｆ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏ
ｇｉｃａｌ Ｍｅｔｈｏｄｓ １０， ５９〜６４（１
９８９））、制限酵素ＥｃｏＲＩ又はＨｉｎｄＩＩＩで
切断した。アルトロバクターＤＮＡ用のクローニングベ
クターとして、バクテリオファージλｇｔ１０（Ｂｏｅ
ｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ）を用いた。このア
ルトロバクターＤＮＡを製造者の指示に依りλｇｔ１０
中でクローニングした。
【００４２】得られたアルトロバクター遺伝子バンク
を、ＮＭＨアーゼの部分ペプチド配列から誘導されたオ
リゴヌクレオチド−プローブで検査した。ＮＭＨアーゼ
の部分ペプチド配列： Ｍｅｔ Ｌｙｓ Ａｒｇ Ｉｌｅ Ｇｌｙ Ｖａｌ Ａ
ｓｐ Ｖａｌ ＧｌｙＧｌｙ Ｔｈｒ Ｐｈｅ Ｔｈｒ
Ａｓｐ Ｌｅｕ Ｔｙｒ Ｐｈｅ． この部分ペプチド−配列から次のオリゴヌクレオチド−
プローブを誘導した： １． ＡＴＧ ＡＡ（Ｇ／Ａ） （Ｃ／Ａ）Ｇ（Ｇ／
Ａ） ＡＴ（Ａ／Ｃ／Ｔ） ＧＧ（Ｇ／Ａ／Ｔ／Ｃ）
ＧＴ ２． ＡＴＧ ＡＡ（Ｇ／Ａ） （Ｃ／Ａ）Ｇ（Ｔ／
Ｃ） ＡＴ（Ａ／Ｃ／Ｔ） ＧＧ（Ｇ／Ａ／Ｔ／Ｃ）
ＧＴ ３． ＡＴＧ ＡＡＧ ＣＧＣ ＡＴＣ ＧＧＣ ＧＴ
Ｇ ＧＡＣ ＧＴＧ ＧＧＣ ＧＧＣ ＡＣＧ ＴＴＣ ＡＣＣ ＧＡＴ Ｃ
ＴＧ ＴＡＣ ＴＴ このオリゴヌクレオチド−プローブを用いて、λｇｔ１
０−遺伝子バンク内に、ＮＭＨアーゼ−遺伝子の１部分
（約０．６ｋｂ）を有する６ｋｂの大きさのＥｃｏＲＩ
−フラグメントが認められた。
を、ＮＭＨアーゼの部分ペプチド配列から誘導されたオ
リゴヌクレオチド−プローブで検査した。ＮＭＨアーゼ
の部分ペプチド配列： Ｍｅｔ Ｌｙｓ Ａｒｇ Ｉｌｅ Ｇｌｙ Ｖａｌ Ａ
ｓｐ Ｖａｌ ＧｌｙＧｌｙ Ｔｈｒ Ｐｈｅ Ｔｈｒ
Ａｓｐ Ｌｅｕ Ｔｙｒ Ｐｈｅ． この部分ペプチド−配列から次のオリゴヌクレオチド−
プローブを誘導した： １． ＡＴＧ ＡＡ（Ｇ／Ａ） （Ｃ／Ａ）Ｇ（Ｇ／
Ａ） ＡＴ（Ａ／Ｃ／Ｔ） ＧＧ（Ｇ／Ａ／Ｔ／Ｃ）
ＧＴ ２． ＡＴＧ ＡＡ（Ｇ／Ａ） （Ｃ／Ａ）Ｇ（Ｔ／
Ｃ） ＡＴ（Ａ／Ｃ／Ｔ） ＧＧ（Ｇ／Ａ／Ｔ／Ｃ）
ＧＴ ３． ＡＴＧ ＡＡＧ ＣＧＣ ＡＴＣ ＧＧＣ ＧＴ
Ｇ ＧＡＣ ＧＴＧ ＧＧＣ ＧＧＣ ＡＣＧ ＴＴＣ ＡＣＣ ＧＡＴ Ｃ
ＴＧ ＴＡＣ ＴＴ このオリゴヌクレオチド−プローブを用いて、λｇｔ１
０−遺伝子バンク内に、ＮＭＨアーゼ−遺伝子の１部分
（約０．６ｋｂ）を有する６ｋｂの大きさのＥｃｏＲＩ
−フラグメントが認められた。
【００４３】このフラグメントの１部分（ＰｓｔＩとＥ
ｃｏＲＩ−切断部位の間の約３００ｂｐ）を32Ｐで放射
能標識付けをした。引続き、アルトロバクターＤＮＡを
制限酵素ＳａｌＩを用いて切断し、アガロースゲル上で
分離し、サザンブロットで、放射能標識されたＤＮＡ−
フラグメントとハイブリド形成させた。このハイブリド
形成されたＤＮＡ−領域をアガロースゲルから切り出
し、ｐＢＲ３２８のテトラサイクリン耐性遺伝子（Ｂｏ
ｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ ＧｍｂＨ）のＳ
ａｌＩ−制限切断部位内にクローニングさせた。
ｃｏＲＩ−切断部位の間の約３００ｂｐ）を32Ｐで放射
能標識付けをした。引続き、アルトロバクターＤＮＡを
制限酵素ＳａｌＩを用いて切断し、アガロースゲル上で
分離し、サザンブロットで、放射能標識されたＤＮＡ−
フラグメントとハイブリド形成させた。このハイブリド
形成されたＤＮＡ−領域をアガロースゲルから切り出
し、ｐＢＲ３２８のテトラサイクリン耐性遺伝子（Ｂｏ
ｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ ＧｍｂＨ）のＳ
ａｌＩ−制限切断部位内にクローニングさせた。
【００４４】このプラスミドで形質転換されたＥ．コリ
ー細胞の検査は、長さ３．７ｋｂのＤＮＡ−フラグメン
ト（これはＮＭＨアーゼ遺伝子の３．０ｋｂの大きさの
領域を有する）を示した（図２）。
ー細胞の検査は、長さ３．７ｋｂのＤＮＡ−フラグメン
ト（これはＮＭＨアーゼ遺伝子の３．０ｋｂの大きさの
領域を有する）を示した（図２）。
【００４５】この挿入部の点線で示されているＥｃｏＲ
Ｉ／ＨｉｎｄＩＩＩ−フラグメントを、ジゴキシゲニン
で標識付けた（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉ
ｍ，Ｄｉｇ Ｋｉｔ）。このプローブを用いて、再び前
記のλｇｔ１０−遺伝子バンクを検査し、この際、ＮＭ
Ｈアーゼ−遺伝子の３′−末端領域を有する２．７ｋｂ
の大きさの片が認められた（図３）。このＤＮＡ−フラ
グメントもベクターｐＢＲ３２８内にクローニングさせ
た。
Ｉ／ＨｉｎｄＩＩＩ−フラグメントを、ジゴキシゲニン
で標識付けた（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉ
ｍ，Ｄｉｇ Ｋｉｔ）。このプローブを用いて、再び前
記のλｇｔ１０−遺伝子バンクを検査し、この際、ＮＭ
Ｈアーゼ−遺伝子の３′−末端領域を有する２．７ｋｂ
の大きさの片が認められた（図３）。このＤＮＡ−フラ
グメントもベクターｐＢＲ３２８内にクローニングさせ
た。
【００４６】例２（参考例） ＮＭＨアーゼの表現 ２．１ 慣用法 ３．７ｋｂの大きさのＳａｌＩ−フラグメント（図２）
を市場で入手されるベクターｐＵＣ１９（Ｂｏｅｈｒｉ
ｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ ＧｍｂＨ）中にクローニ
ングさせた。引続きこのＮＭＨアーゼ遺伝子を、図３か
らのＥｃｏＲＩ−フラグメントのクローニング導入によ
り完結させた。しかしながら、このような構成は活性Ｎ
ＭＨアーゼの表現をもたらさなかった。
を市場で入手されるベクターｐＵＣ１９（Ｂｏｅｈｒｉ
ｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ ＧｍｂＨ）中にクローニ
ングさせた。引続きこのＮＭＨアーゼ遺伝子を、図３か
らのＥｃｏＲＩ−フラグメントのクローニング導入によ
り完結させた。しかしながら、このような構成は活性Ｎ
ＭＨアーゼの表現をもたらさなかった。
【００４７】誘導可能なｔａｃ−プロモータの制御下に
おけるクローニング及び常法でのｔａｃ−プロモータの
誘導（３７℃でのインキュベーション、完全培地及びｔ
ａｃ−プロモータの完全誘導）によるこの構成の表現を
達成する試みも失敗した。このために、プラスミドｐＫ
Ｋ１７７−３（ＤＳＭ ３０６２）を、ＥｃｏＲＩ及び
ＨｉｎｄＩＩＩで切断し、ＥｃｏＲＩ及びＨｉｎｄＩＩ
Ｉを介してｐＵＣ１９から切断取り出されたポリリンカ
ーと連結させた。生じたプラスミドをｐＢＰ１７７−４
と称した。引続きこのプラスミドｐＢＰ１７７−４をＥ
ｃｏＲＩ及びＫｐｎＩで切断し、２．５ｋｂの大きさの
Ｃ−末端ＮＭＨアーゼフラグメント（同様にＥｃｏＲＩ
及びＫｐｎＩで切断）と合体させてプラスミドｐＢＰ０
０８とした（図５）。
おけるクローニング及び常法でのｔａｃ−プロモータの
誘導（３７℃でのインキュベーション、完全培地及びｔ
ａｃ−プロモータの完全誘導）によるこの構成の表現を
達成する試みも失敗した。このために、プラスミドｐＫ
Ｋ１７７−３（ＤＳＭ ３０６２）を、ＥｃｏＲＩ及び
ＨｉｎｄＩＩＩで切断し、ＥｃｏＲＩ及びＨｉｎｄＩＩ
Ｉを介してｐＵＣ１９から切断取り出されたポリリンカ
ーと連結させた。生じたプラスミドをｐＢＰ１７７−４
と称した。引続きこのプラスミドｐＢＰ１７７−４をＥ
ｃｏＲＩ及びＫｐｎＩで切断し、２．５ｋｂの大きさの
Ｃ−末端ＮＭＨアーゼフラグメント（同様にＥｃｏＲＩ
及びＫｐｎＩで切断）と合体させてプラスミドｐＢＰ０
０８とした（図５）。
【００４８】このプラスミドｐＢＰ００８をＸｈｏＩ及
びＥｃｏＲＩで切断し、生じる大きい（５ｋｂ）フラグ
メントをＮＭＨアーゼ−Ｎ−末端からの１．５ｋｂフラ
グメント（これは末端切断部位ＡａｔＩＩ及びＸｈｏＩ
を有する）及びＥｃｏＲＩ−ＡａｔＩＩＩ−リンカー
（図４）と合体させてプラスミドｐＢＰ００９とした
(図６）。このプラスミドで形質転換されたＥ．コリー
細胞内に、分子量がこのＮＭＨアーゼのそれとほぼ一致
する蛋白質が表現された。しかしながら、酵素活性は検
出できなかった。
びＥｃｏＲＩで切断し、生じる大きい（５ｋｂ）フラグ
メントをＮＭＨアーゼ−Ｎ−末端からの１．５ｋｂフラ
グメント（これは末端切断部位ＡａｔＩＩ及びＸｈｏＩ
を有する）及びＥｃｏＲＩ−ＡａｔＩＩＩ−リンカー
（図４）と合体させてプラスミドｐＢＰ００９とした
(図６）。このプラスミドで形質転換されたＥ．コリー
細胞内に、分子量がこのＮＭＨアーゼのそれとほぼ一致
する蛋白質が表現された。しかしながら、酵素活性は検
出できなかった。
【００４９】２．２ 本発明の方法 まず、ＮＭＨアーゼのＣ−末端の拡大を行なった。この
ために、プラスミドｐＢＰ００９（図６）を酵素Ｘｈｏ
Ｉ及びＳｍａＩで切断し、この際に生じる５．５ｋｂの
大きさのＤＮＡ−フラグメント（これはｔａｃ−プロモ
ータ、ＮＭＨアーゼのＮ−末端領域及びアンピシリン耐
性因子を有する）を単離した。このフラグメントをｐＢ
Ｒ３２８からのＣ−末端ＮＭＨアーゼ−フラグメント
（これは、末端切断部位ＥｃｏＲＩ（クレノフポリメラ
ーゼの処理による平坦末端）及びＸｈｏＩを有する）と
合体させてプラスミドｐＢＰ０１０にした（図７）。ｐ
ＢＰ０１０はＮＭＨアーゼを表現することができる。
ために、プラスミドｐＢＰ００９（図６）を酵素Ｘｈｏ
Ｉ及びＳｍａＩで切断し、この際に生じる５．５ｋｂの
大きさのＤＮＡ−フラグメント（これはｔａｃ−プロモ
ータ、ＮＭＨアーゼのＮ−末端領域及びアンピシリン耐
性因子を有する）を単離した。このフラグメントをｐＢ
Ｒ３２８からのＣ−末端ＮＭＨアーゼ−フラグメント
（これは、末端切断部位ＥｃｏＲＩ（クレノフポリメラ
ーゼの処理による平坦末端）及びＸｈｏＩを有する）と
合体させてプラスミドｐＢＰ０１０にした（図７）。ｐ
ＢＰ０１０はＮＭＨアーゼを表現することができる。
【００５０】次の工程で、ＮＭＨアーゼ−遺伝子を、サ
ルモネラ・チフィムリウムからのｍｇｌ−プロモータ
（ＷＯ８８／０９３７３に記載）で制御した。このため
に、プラスミドｐＰＺ０７／ｍｇｌ ｌａｃ（ＷＯ８８
／０９３７３に記載）を酵素ＮｃｏＩ及びＡａｔＩＩで
切断し、これから、ｍｇｌ−プロモータを含有する２．
９ｋｂの大きさのＤＮＡ−フラグメントを単離させた。
このフラグメントをＮｃｏＩ−ＡａｔＩＩ−リンカーと
合体させてプラスミドｐＢＰ０１１とした（図８）。
ルモネラ・チフィムリウムからのｍｇｌ−プロモータ
（ＷＯ８８／０９３７３に記載）で制御した。このため
に、プラスミドｐＰＺ０７／ｍｇｌ ｌａｃ（ＷＯ８８
／０９３７３に記載）を酵素ＮｃｏＩ及びＡａｔＩＩで
切断し、これから、ｍｇｌ−プロモータを含有する２．
９ｋｂの大きさのＤＮＡ−フラグメントを単離させた。
このフラグメントをＮｃｏＩ−ＡａｔＩＩ−リンカーと
合体させてプラスミドｐＢＰ０１１とした（図８）。
【００５１】このプラスミドｐＢＰ０１１をＥｃｏＲＩ
で切断し、平坦な末端を得るためにクレノフ−ＤＮＡ−
ポリメラーゼで処理し、ＡａｔＩＩで後切断した。引続
き、生じたｍｇｌ−プロモータ及びリンカーフラグメン
トを含有する平坦で、ＡａｔＩＩ−末端を有する０．８
ｋｂの大きさのＤＮＡ−フラグメントを単離した（図
８）。
で切断し、平坦な末端を得るためにクレノフ−ＤＮＡ−
ポリメラーゼで処理し、ＡａｔＩＩで後切断した。引続
き、生じたｍｇｌ−プロモータ及びリンカーフラグメン
トを含有する平坦で、ＡａｔＩＩ−末端を有する０．８
ｋｂの大きさのＤＮＡ−フラグメントを単離した（図
８）。
【００５２】プラスミドｐＢＰ０１０をＮｄｅＩで切断
し、平坦なフラグメントを得るためにクレノフ−ＤＮＡ
−ポリメラーゼで処理した。引続き、このフラグメント
をＸｈｏＩで切断し、ＮＭＨアーゼ−遺伝子のＣ−末端
領域を有する４．９ｋｂの大きさのフラグメントを単離
した（図９）。
し、平坦なフラグメントを得るためにクレノフ−ＤＮＡ
−ポリメラーゼで処理した。引続き、このフラグメント
をＸｈｏＩで切断し、ＮＭＨアーゼ−遺伝子のＣ−末端
領域を有する４．９ｋｂの大きさのフラグメントを単離
した（図９）。
【００５３】このプラスミドｐＢＰ０１０は、ＸｈｏＩ
及びＡａｔＩＩでも切断され、この際、ＮＭＨアーゼ遺
伝子のＮ−末端領域を有する１．５ｋｂの大きさのフラ
グメントが単離された。
及びＡａｔＩＩでも切断され、この際、ＮＭＨアーゼ遺
伝子のＮ−末端領域を有する１．５ｋｂの大きさのフラ
グメントが単離された。
【００５４】このプラスミドｐＢＰ０１０からの２つの
フラグメント（４．９ｋｂ及び１．５ｋｂ）を、ｍｇｌ
−プロモータを含有するｐＢＰ０１１からの０．８ｋｂ
のフラグメントと連結させた。生じたプラスミドはｐＢ
Ｐ００６と称され（図１０）、これはＮＭＨアーゼを表
現することができる。
フラグメント（４．９ｋｂ及び１．５ｋｂ）を、ｍｇｌ
−プロモータを含有するｐＢＰ０１１からの０．８ｋｂ
のフラグメントと連結させた。生じたプラスミドはｐＢ
Ｐ００６と称され（図１０）、これはＮＭＨアーゼを表
現することができる。
【００５５】例３（参考例） 醗酵及びＥ．コリー内での組換えＮＭＨアーゼの濃縮 Ｅ．コリーＨＢ１０１−細胞（ＤＳＭ １６０７）を、
ＮＭＨアーゼ表現プラスミドｐＢＰ０１０を用いて形質
転換させた。ｔａｃ−プロモータの良好な調節可能性を
確保するために、細胞を、付加的にｌａｃＩq−遺伝子
を含有し、ｐＢＰ０１０に対して相容性のプラスミドを
用いて形質転換させた。このｌａｃＩq−遺伝子は、当
業者にとって従来から公知であり、入手容易である。ｐ
ＢＰ０１０に対して相容性のプラスミドとして、例えば
ｐＡＣＹＣ１７７（ＤＳＭ ３６９３Ｐ）又はこれから
誘導されたものがこれに該当する。
ＮＭＨアーゼ表現プラスミドｐＢＰ０１０を用いて形質
転換させた。ｔａｃ−プロモータの良好な調節可能性を
確保するために、細胞を、付加的にｌａｃＩq−遺伝子
を含有し、ｐＢＰ０１０に対して相容性のプラスミドを
用いて形質転換させた。このｌａｃＩq−遺伝子は、当
業者にとって従来から公知であり、入手容易である。ｐ
ＢＰ０１０に対して相容性のプラスミドとして、例えば
ｐＡＣＹＣ１７７（ＤＳＭ ３６９３Ｐ）又はこれから
誘導されたものがこれに該当する。
【００５６】３．１ 醗酵及び前培養 ２個の２０００ｍｌ−エーレンマイヤーフラスコ内のカ
ナマイシン及びアンピシリンを有する２×５００ｍｌ
ＬＢ−培地に、Ｅ・コリーＨＢ１０１／ｌａｃＩq／ｐ
ＢＰ０１０−細胞を接種した。次いで、３７℃及び１５
０Ｕｐｍ（Ｒｕｎｄｓｃｈｕｅｔｔｌｅｒ；Ｂｒａｕｎ
Ｃｅｒｔｏｍａｔ Ｍ）で１６時間インキュベートし
た。５７８ｎｍでのＯＤは、ｐＨ約７．６で１０時間内
で約３．０〜４．０であった。
ナマイシン及びアンピシリンを有する２×５００ｍｌ
ＬＢ−培地に、Ｅ・コリーＨＢ１０１／ｌａｃＩq／ｐ
ＢＰ０１０−細胞を接種した。次いで、３７℃及び１５
０Ｕｐｍ（Ｒｕｎｄｓｃｈｕｅｔｔｌｅｒ；Ｂｒａｕｎ
Ｃｅｒｔｏｍａｔ Ｍ）で１６時間インキュベートし
た。５７８ｎｍでのＯＤは、ｐＨ約７．６で１０時間内
で約３．０〜４．０であった。
【００５７】主醗酵： 培地及び主培養液： グリセリン（８６％） ２５００ｇ ラクトース ５００ｇ ＮＨ4Ｃｌ ５０ｇ ＭｇＳＯ4・７Ｈ2Ｏ ５０ｇ Ｋ2ＨＰＯ4 １５０ｇ カゼインペプトン ３０００ｇ アンモニア溶液（２５％Ｍｅｒｃｋ５４３２）５００ｍ
ｌ 水 １００ｍｌ 醗酵経過：接種(接種菌１％)の後に培養液は直ちに指数
生長に移行する。この醗酵装置の温度を１４００のＯＤ
５７８ｎｍに達するまで２８℃に保持する。所望のＯＤ
の達成時に、温度を２５℃まで低めると、生長は減速す
る。更に酸素導入を減少することができる。この手段
は、生長を制限し、それにより沈殿体（封入体）の形成
に逆作用するために必要である。温度移行の正当な時点
は重要であり、早すぎて実施すると、生長は数時間遅
れ、遅すぎると不溶の蛋白質のみが得られる。
ｌ 水 １００ｍｌ 醗酵経過：接種(接種菌１％)の後に培養液は直ちに指数
生長に移行する。この醗酵装置の温度を１４００のＯＤ
５７８ｎｍに達するまで２８℃に保持する。所望のＯＤ
の達成時に、温度を２５℃まで低めると、生長は減速す
る。更に酸素導入を減少することができる。この手段
は、生長を制限し、それにより沈殿体（封入体）の形成
に逆作用するために必要である。温度移行の正当な時点
は重要であり、早すぎて実施すると、生長は数時間遅
れ、遅すぎると不溶の蛋白質のみが得られる。
【００５８】酸素の減少により、更に活性の上昇が達成
される。温度移行を伴なうこの醗酵の際に、収率は３０
時間後に、約２５００Ｕ／Ｌ、最大３０００Ｕ／Ｌ（１
５０Ｕ／ＯＤ）である。付加的な、培地中のＯ2−量の
減少により、４５時間後に４０００Ｕ／Ｌまで達する。
される。温度移行を伴なうこの醗酵の際に、収率は３０
時間後に、約２５００Ｕ／Ｌ、最大３０００Ｕ／Ｌ（１
５０Ｕ／ＯＤ）である。付加的な、培地中のＯ2−量の
減少により、４５時間後に４０００Ｕ／Ｌまで達する。
【００５９】例４ Ｅ．コリーからの組換えＮＭＨアーゼの取得 ４．１ 酵素活性の測定 酵素活性の測定は、燐酸塩緩衝液（ｐＨ７．８）中のカ
ルバモイル−サルコシン−ヒドロラーゼ、サルコシン−
オキシダーゼ、ペルオキシダーゼ、Ｎ−メチルヒダント
イン、４−アミノアンチピリン、トリブロム−３−ヒド
ロキシ安息香酸、ＡＴＰ及びＭｇＣｌ2を含有する呈色
テストを用いて行なう。
ルバモイル−サルコシン−ヒドロラーゼ、サルコシン−
オキシダーゼ、ペルオキシダーゼ、Ｎ−メチルヒダント
イン、４−アミノアンチピリン、トリブロム−３−ヒド
ロキシ安息香酸、ＡＴＰ及びＭｇＣｌ2を含有する呈色
テストを用いて行なう。
【００６０】測定原理：ＮＭＨアーゼは、添加されたＮ
−メチルヒダントインをカルバモイル−サルコシンに変
換し、カルバモイル−サルコシン−ヒドロラーゼは、こ
れをサルコシンに変じ、これはサルコシン−オキシダー
ゼにより分解されてグリシン、ホルムアルデヒド及び過
酸化水素に変えられる。このペルオキシダーゼは、生じ
た過酸化水素の助けにより、添加された色基質を暗紫色
の色素に変換する。５４６ｎｍの波長で吸光度増加を測
定する。この酵素テストに関しては、欧州特許（ＥＰ−
Ａ）第０１５４２６９号明細書中に記載されている。
−メチルヒダントインをカルバモイル−サルコシンに変
換し、カルバモイル−サルコシン−ヒドロラーゼは、こ
れをサルコシンに変じ、これはサルコシン−オキシダー
ゼにより分解されてグリシン、ホルムアルデヒド及び過
酸化水素に変えられる。このペルオキシダーゼは、生じ
た過酸化水素の助けにより、添加された色基質を暗紫色
の色素に変換する。５４６ｎｍの波長で吸光度増加を測
定する。この酵素テストに関しては、欧州特許（ＥＰ−
Ａ）第０１５４２６９号明細書中に記載されている。
【００６１】１単位（Ｕ）は、カルバモイル−サルコシ
ン−ヒドロラーゼ、サルコシン−オキシダーゼ及びペル
オキシダーゼを用いる連結テストにおける測定条件下で
２５℃において、１分当りのカルバモイル−サルコシン
−形成μモルとして定義される。試験培養液５ｍｌで、
０．１６Ｕ／ｍｌの活性が得られる。このことは、出発
培養液（アルトロバクターｓｐｅｃ．ＤＳＭ ２５６
３）に比べて約２０倍の増加に相当する。
ン−ヒドロラーゼ、サルコシン−オキシダーゼ及びペル
オキシダーゼを用いる連結テストにおける測定条件下で
２５℃において、１分当りのカルバモイル−サルコシン
−形成μモルとして定義される。試験培養液５ｍｌで、
０．１６Ｕ／ｍｌの活性が得られる。このことは、出発
培養液（アルトロバクターｓｐｅｃ．ＤＳＭ ２５６
３）に比べて約２０倍の増加に相当する。
【００６２】４．２ 酵素精製 バイオマス（例３による）３１５ｇ（ＮＭＨアーゼ１６
ｋＵの全活性を有する醗酵培養液１０ｌから生じた）
を、グリセリン１０％を含有する０．１モル／ｌ燐酸カ
リウム−緩衝液（ｐＨ８．０）２ｌ中に懸濁させ、リソ
チームを用いかつ７００バールの高圧分散１回を用いる
処理により溶解させた。核酸及び細胞砕片のネガチブ−
分離のために、１０％ポリエチレンイミン溶液Ｇ２０
（Ｌｕｖａｌｇａｎ，ＭＧ２００００）の添加を、もは
や沈殿が生ぜず、全ＮＭＨアーゼ活性が上澄み中に残る
まで行なった。このために、室温で、Ｇ２−溶液３ｖ％
を添加し、３０分撹拌し、その後、遠心した。このＮＭ
Ｈアーゼ上澄に、湿式圧縮したＤＥＡＥ−セファデック
ス８ｖ％を回分的に加え、２時間撹拌の後に、この酵素
の９５％が吸着された。濾過後に、交換体を燐酸塩緩衝
液で洗浄し、ＮＭＨアーゼを、０．１モル／ｌ ＫＰＯ
4−緩衝液（ｐＨ８．０）を含有する０．５モル／ｌ
硫酸アンモニウム溶液で溶離させた。溶離液は蛋白質
１．１Ｕ／ｍｇの特異活性を有した。引続き、Ｎ−メチ
ルヒダントイン５０ｍモル／ｌ（最終濃度）の存在で、
５５℃で１０分加温すると、障害性の異種蛋白質が沈殿
された。遠心分離の後に、澄明な上澄みに硫酸アンモニ
ウムを２．２モル／ｌまで飽和させ、この際に生じるＮ
ＭＨアーゼを遠心分離した。引続き２回結晶させ、第１
の結晶化は、約６０ｍｇ／ｍｌの蛋白質濃度（ｐＨ８．
０）で、０．１モル／ｌ ＫＰＯ4−緩衝液、１．２７
７モル／ｌ 硫酸アンモニウムを用いた。短時間後にプ
リズム晶が生じる。この結晶化は２４時間後に終り、遠
心分離された上澄み中には、ＮＭＨアーゼ５％が存在し
ただけである。ＮＭＨアーゼ結晶を０．１モル／ｌ Ｋ
ＰＯ4−緩衝液中に溶かし、不溶分の分離除去の後に、
酵素溶液の第２の結晶化を行なわせた（硫酸アンモニウ
ム濃度１．０５モル／ｌ）。１晩にわたって現われた酵
素結晶を分離し、緩衝液中に入れ、２０ｍモル／ｌ燐酸
塩緩衝液に対して透析させ、ラフィノース２部（蛋白質
量に対して）を加え、凍結乾燥させた。
ｋＵの全活性を有する醗酵培養液１０ｌから生じた）
を、グリセリン１０％を含有する０．１モル／ｌ燐酸カ
リウム−緩衝液（ｐＨ８．０）２ｌ中に懸濁させ、リソ
チームを用いかつ７００バールの高圧分散１回を用いる
処理により溶解させた。核酸及び細胞砕片のネガチブ−
分離のために、１０％ポリエチレンイミン溶液Ｇ２０
（Ｌｕｖａｌｇａｎ，ＭＧ２００００）の添加を、もは
や沈殿が生ぜず、全ＮＭＨアーゼ活性が上澄み中に残る
まで行なった。このために、室温で、Ｇ２−溶液３ｖ％
を添加し、３０分撹拌し、その後、遠心した。このＮＭ
Ｈアーゼ上澄に、湿式圧縮したＤＥＡＥ−セファデック
ス８ｖ％を回分的に加え、２時間撹拌の後に、この酵素
の９５％が吸着された。濾過後に、交換体を燐酸塩緩衝
液で洗浄し、ＮＭＨアーゼを、０．１モル／ｌ ＫＰＯ
4−緩衝液（ｐＨ８．０）を含有する０．５モル／ｌ
硫酸アンモニウム溶液で溶離させた。溶離液は蛋白質
１．１Ｕ／ｍｇの特異活性を有した。引続き、Ｎ−メチ
ルヒダントイン５０ｍモル／ｌ（最終濃度）の存在で、
５５℃で１０分加温すると、障害性の異種蛋白質が沈殿
された。遠心分離の後に、澄明な上澄みに硫酸アンモニ
ウムを２．２モル／ｌまで飽和させ、この際に生じるＮ
ＭＨアーゼを遠心分離した。引続き２回結晶させ、第１
の結晶化は、約６０ｍｇ／ｍｌの蛋白質濃度（ｐＨ８．
０）で、０．１モル／ｌ ＫＰＯ4−緩衝液、１．２７
７モル／ｌ 硫酸アンモニウムを用いた。短時間後にプ
リズム晶が生じる。この結晶化は２４時間後に終り、遠
心分離された上澄み中には、ＮＭＨアーゼ５％が存在し
ただけである。ＮＭＨアーゼ結晶を０．１モル／ｌ Ｋ
ＰＯ4−緩衝液中に溶かし、不溶分の分離除去の後に、
酵素溶液の第２の結晶化を行なわせた（硫酸アンモニウ
ム濃度１．０５モル／ｌ）。１晩にわたって現われた酵
素結晶を分離し、緩衝液中に入れ、２０ｍモル／ｌ燐酸
塩緩衝液に対して透析させ、ラフィノース２部（蛋白質
量に対して）を加え、凍結乾燥させた。
【００６３】収量はＮＭＨアーゼ５．８ｋＵ（＝特異活
性２．１５Ｕ／ｍｇ蛋白質を有する当初活性の３４％）
であった。
性２．１５Ｕ／ｍｇ蛋白質を有する当初活性の３４％）
であった。
【００６４】各濃縮工程の後に、酵素活性を例４．１に
より試験した。
より試験した。
【００６５】異種活性カタラーゼ、クレアチナーゼ、ク
レアチニナーゼ及びカルバモイル−サルコシン−ヒドロ
ラーゼは零であった。０．００２％の最小異種オキシダ
ーゼ−活性（＝グルコース−オキシダーゼ、ピルベート
−オキシダーゼ、ラクテート−オキシダーゼ、ウリカー
ゼ及びコレステリン−オキシダーゼの合計）が測定され
た。
レアチニナーゼ及びカルバモイル−サルコシン−ヒドロ
ラーゼは零であった。０．００２％の最小異種オキシダ
ーゼ−活性（＝グルコース−オキシダーゼ、ピルベート
−オキシダーゼ、ラクテート−オキシダーゼ、ウリカー
ゼ及びコレステリン−オキシダーゼの合計）が測定され
た。
【００６６】至適ｐＨ、ｐＨ−安定性、温度依存性、熱
安定性、Ｋм、ＡＴＰ−及びマグネシウム依存性、アン
モニウム依存性及び分子量に関する組換えＮＭＨアーゼ
の特性は、アルトロバクターからのＮＭＨアーゼの特性
に一致した。
安定性、Ｋм、ＡＴＰ−及びマグネシウム依存性、アン
モニウム依存性及び分子量に関する組換えＮＭＨアーゼ
の特性は、アルトロバクターからのＮＭＨアーゼの特性
に一致した。
【００６７】例５ ＮＭＨアーゼ−遺伝子の配列決定 ＮＭＨアーゼをコードする遺伝子からのフラグメントを
クローニングベクターＭ１３中でサブクローニングし、
標準法で配列決定した。その核酸配列は、ＳＥＱ ＩＤ
ＮＯ：１に示されている。これから前記のＳＥＱ Ｉ
Ｄ ＮＯ：２で示される配列を有するアミノ酸１２８８
個を有する蛋白質が生じた。
クローニングベクターＭ１３中でサブクローニングし、
標準法で配列決定した。その核酸配列は、ＳＥＱ ＩＤ
ＮＯ：１に示されている。これから前記のＳＥＱ Ｉ
Ｄ ＮＯ：２で示される配列を有するアミノ酸１２８８
個を有する蛋白質が生じた。
【図１】ＮＭＨアーゼ−遺伝子の約０．６ｋｂの大きさ
のフラグメントを有するアルトロバクターからの６ｋｂ
の大きさのＥｃｏＲＩ−フラグメント。
のフラグメントを有するアルトロバクターからの６ｋｂ
の大きさのＥｃｏＲＩ−フラグメント。
【図２】ＮＭＨアーゼ−遺伝子に関してコードする３．
０ｋｂの大きさの領域を有するアルトロバクターからの
３．７ｋｂの大きさのＳａｌＩ−フラグメント。
０ｋｂの大きさの領域を有するアルトロバクターからの
３．７ｋｂの大きさのＳａｌＩ−フラグメント。
【図３】ＮＭＨアーゼ−遺伝子の３′−末端領域を示す
図。
図。
【図４】ＥｃｏＲＩ／ＡａｔＩＩ−リンカーを示す図。
【図５】プラスミドｐＢＰ００８の製造過程を示す図。
【図６】プラスミドｐＢＰ００９の製造過程を示す図。
【図７】ＮＭＨアーゼ−表現−プラスミドｐＢＰ０１０
の製造過程を示す図。
の製造過程を示す図。
【図８】サルモネラ・チフィムリウムからｍｇｌ−プロ
モータを有するプラスミドｐＢＰ０１１の製造過程を示
す図。
モータを有するプラスミドｐＢＰ０１１の製造過程を示
す図。
【図９】ｐＢＰ０１０からのＮＭＨアーゼ−遺伝子のフ
ラグメントの製造過程を示す図。
ラグメントの製造過程を示す図。
【図１０】ＮＭＨアーゼ−表現−プラスミドｐＢＰ００
６の製造過程を示す図。
６の製造過程を示す図。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 ＦＩ 技術表示箇所 //(Ｃ１２Ｎ 1/21 Ｃ１２Ｒ 1:19） (Ｃ１２Ｎ 9/86 Ｃ１２Ｒ 1:19） (72)発明者 ヘルムート ブルチャー ドイツ連邦共和国 ハーバッハ アム エ ーレンアンガー 10 (72)発明者 ハンス メレリンク ドイツ連邦共和国 トゥーツィンク ヘレ シュトラーセ 10
Claims (1)
- 【請求項１】 液体中のクレアチニン含分を測定する
試薬において、これは、 ａ）ＮＭＨアーゼ活性を有する蛋白質及び ｂ）１〜１００ミリモリ／ｌの濃度のＮ−メチルヒダン
トイン よりなり、ここで、ＮＭＨアーゼ活性を有する前記ａ）
の蛋白質は、 （１）ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１ 【化１】 【化２】 で表わされる核酸配列、 （２）Ｎ−メチルヒダントイナーゼのアミノ酸に関する
１個のコドンが、同じアミノ酸をコードする他の１個の
コドンにより代えられていてよいＳＥＱ ＩＤＮＯ：１
に相当の配列又は （３）（１）又は／及び（２）からの配列と厳しい条件
下でハイブリド形成する配列を有し、Ｎ−メチルヒダン
トイナーゼ活性を有する蛋白質に関してコードするＤＮ
Ａフラグメントを単離し；このＤＮＡフラグメントで細
胞を形質転換させ；前記細胞を適当な培地中で培養し；
かつこの培地又は細胞から、ＮＭＨアーゼ活性を有する
蛋白質を単離する方法により製造されていることを特徴
とする、液体中のクレアチニン含分を測定するための試
薬。
Applications Claiming Priority (2)
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|---|---|---|---|
| DE4021571A DE4021571A1 (de) | 1990-07-06 | 1990-07-06 | N-methylhydantoinase, kloniert |
| DE4021571.7 | 1990-07-06 |
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|---|---|---|---|
| JP3165308A Division JP2546554B2 (ja) | 1990-07-06 | 1991-07-05 | Ｄｎａ、細胞、ｎ−メチルヒダントイナーゼ活性を有する蛋白質の取得法 |
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|---|---|
| JPH07313196A true JPH07313196A (ja) | 1995-12-05 |
| JP2984906B2 JP2984906B2 (ja) | 1999-11-29 |
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ID=6409795
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|---|---|---|---|
| JP3165308A Expired - Fee Related JP2546554B2 (ja) | 1990-07-06 | 1991-07-05 | Ｄｎａ、細胞、ｎ−メチルヒダントイナーゼ活性を有する蛋白質の取得法 |
| JP7161255A Expired - Fee Related JP2984906B2 (ja) | 1990-07-06 | 1995-06-27 | 液体中のクレアチニン含分を測定するための試薬 |
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| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP3165308A Expired - Fee Related JP2546554B2 (ja) | 1990-07-06 | 1991-07-05 | Ｄｎａ、細胞、ｎ−メチルヒダントイナーゼ活性を有する蛋白質の取得法 |
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| DE (2) | DE4021571A1 (ja) |
| ES (1) | ES2124694T3 (ja) |
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|---|---|---|---|---|
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| KR100428725B1 (ko) * | 1996-03-30 | 2004-07-07 | 주식회사 현대시스콤 | 디지탈이동통신교환기녹음안내장치의2단계자체루프백시험장치및방법 |
| US20080318889A1 (en) * | 1999-04-08 | 2008-12-25 | Antisoma Research Limited | Antiproliferative activity of G-rich oligonucleotides and method of using same to bind to nucleolin |
| US20080318890A1 (en) * | 1999-04-08 | 2008-12-25 | Antisoma Research Limited | Antiproliferative activity of G-rich oligonucleotides and method of using same to bind to nucleolin |
| US7960540B2 (en) * | 1999-04-08 | 2011-06-14 | Advanced Cancer Therapeutics, Llc | Antiproliferative activity of G-rich oligonucleotides and method of using same to bind to nucleolin |
| US8114850B2 (en) * | 1999-04-08 | 2012-02-14 | Advanced Cancer Therapeutics, Llc | Antiproliferative activity of G-rich oligonucleotides and method of using same to bind to nucleolin |
| DK1181304T3 (da) * | 1999-04-08 | 2008-02-11 | Antisoma Res Ltd | Antiproliferativ virkning af G-rige oligonucleotider samt fremgangsmåde til anvendelse af dem til binding af nucleolin |
| DE10130169A1 (de) * | 2001-06-22 | 2003-01-09 | Degussa | Aktivierte rec-D-Hydantoinasen |
| US7083939B2 (en) * | 2002-05-01 | 2006-08-01 | Polymer Technology Systems, Inc. | Method for determining concentration of creatinine in a bodily fluid |
| US20090131351A1 (en) * | 2007-11-16 | 2009-05-21 | Antisoma Research Limited | Methods, compositions, and kits for modulating tumor cell proliferation |
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| DE3535987A1 (de) * | 1985-10-09 | 1987-04-23 | Basf Ag | Verfahren zur herstellung von meophilen mikroorganismen, die eine bei hoeherer temperatur aktive d-hydantoinase enthalten |
| DE3716957A1 (de) * | 1987-05-20 | 1988-12-01 | Boehringer Mannheim Gmbh | Expressionsvektor zur regulierbaren expression von fremdgenen in prokaryonten |
| DE4000668A1 (de) * | 1990-01-11 | 1991-07-18 | Boehringer Mannheim Gmbh | Verfahren und reagenz zur enzymatischen bestimmung von creatinin |
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-
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-
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- 1995-06-27 JP JP7161255A patent/JP2984906B2/ja not_active Expired - Fee Related
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