JPH06340578A - 2−ケト−3−メチル−4−ヒドロキシ吉草酸の新規 光学活性形 - Google Patents
2−ケト−3−メチル−4−ヒドロキシ吉草酸の新規 光学活性形Info
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Abstract
(57)【要約】
【目的】 天然アミノ酸L−4−ヒドロキシイソロイシ
ン(II)を原料として重要なフレーバ剤であるフラノ
ン誘導体およびその前駆物質ならびにその製造法を提供
する。 【構成】 原料(II)をL−アミノ酸オキシダーゼと
あるいはこの酵素をもつ微生物と反応させ、反応混合物
からフレーバ前駆物質としてのケトペンタン酸(I)を
そのナトリウム塩として単離し、あるいは(I)のナト
リウム塩を酸性媒質中で加熱閉環せしめてフラノン誘導
体とする。この加熱閉環を食品材料中で行なうことによ
りその場でフレーバ剤をつくり出すことができる。
ン(II)を原料として重要なフレーバ剤であるフラノ
ン誘導体およびその前駆物質ならびにその製造法を提供
する。 【構成】 原料(II)をL−アミノ酸オキシダーゼと
あるいはこの酵素をもつ微生物と反応させ、反応混合物
からフレーバ前駆物質としてのケトペンタン酸(I)を
そのナトリウム塩として単離し、あるいは(I)のナト
リウム塩を酸性媒質中で加熱閉環せしめてフラノン誘導
体とする。この加熱閉環を食品材料中で行なうことによ
りその場でフレーバ剤をつくり出すことができる。
Description
【0001】本発明は式、
【化4】 〔式中、C原子4は(S)−配置を有し、C原子3は
(R)−配置または(S)−配置を有しうる〕を有する
2−ケト−3−メチル−4−ヒドロキシ吉草酸の二つの
新規光学活性形に関する。
(R)−配置または(S)−配置を有しうる〕を有する
2−ケト−3−メチル−4−ヒドロキシ吉草酸の二つの
新規光学活性形に関する。
【0002】本発明はまた化合物Iを製造するための微
生物学的方法に関する。
生物学的方法に関する。
【0003】本発明方法は式、
【化5】 を有する4−ヒドロキシイソロイシン(2S,3R,4
S)(=L−4−ヒドロキシイソロイシン)をL−アミ
ノ酸オキシダーゼ(EC 1.4.3.2)活性を有す
る微生物と、あるいはL−アミノ酸オキシダーゼと反応
させることを包含する。
S)(=L−4−ヒドロキシイソロイシン)をL−アミ
ノ酸オキシダーゼ(EC 1.4.3.2)活性を有す
る微生物と、あるいはL−アミノ酸オキシダーゼと反応
させることを包含する。
【0004】化合物Iは式、
【化6】 を有する光学活性(5S)−3−ヒドロキシ−4,5−
ジメチル−2(5H)−フラノンを製造するための興味
ある中間体である。
ジメチル−2(5H)−フラノンを製造するための興味
ある中間体である。
【0005】IIIのラセミ体はきわめて低い閾値を有
する重要なフレーバ剤である(H.Sulser,M.
Habegger,W.Buechi,Z.Leben
sm.Unters.Forsch.(1972),1
48,215)。
する重要なフレーバ剤である(H.Sulser,M.
Habegger,W.Buechi,Z.Leben
sm.Unters.Forsch.(1972),1
48,215)。
【0006】本発明は人工的でない方法を用いて天然原
料からのIIIの製造を可能にするものである。
料からのIIIの製造を可能にするものである。
【0007】従って、生物工学的方法でこの物質III
を製造できる方法をここに開発できたのである。
を製造できる方法をここに開発できたのである。
【0008】コロハ Trigonellum foe
num graecum L.の種子はIならびにII
Iの原材料として特に適している。
num graecum L.の種子はIならびにII
Iの原材料として特に適している。
【0009】コロハの種子は比較的多量の(種子1kg
当り5g)遊離L−4−ヒドロキシイソロイシンを含有
するので〔L.Fowden,H.M.Pratt,
A.Smith,Phytochemistry(19
73),12,1707〕、このTrigonellu
m種子中に存在する遊離アミノ酸IIを、ここに発見さ
れた生物変換方式を用いることにより簡単に先ずIへ変
換できる。
当り5g)遊離L−4−ヒドロキシイソロイシンを含有
するので〔L.Fowden,H.M.Pratt,
A.Smith,Phytochemistry(19
73),12,1707〕、このTrigonellu
m種子中に存在する遊離アミノ酸IIを、ここに発見さ
れた生物変換方式を用いることにより簡単に先ずIへ変
換できる。
【0010】前記の通り、この変換はIIを、L−アミ
ノ酸オキシダーゼ(EC 1.4.3.2.)活性を有
する微生物と、あるいはL−アミノ酸オキシダーゼその
ものと反応させることにより可能である。
ノ酸オキシダーゼ(EC 1.4.3.2.)活性を有
する微生物と、あるいはL−アミノ酸オキシダーゼその
ものと反応させることにより可能である。
【0011】この反応は次のように進行する:
【化7】
【0012】この反応によって生ずる2−ケト−3−メ
チル−4−ヒドロキシ吉草酸(I)のジアステレオマー
形は、例えば金属塩として、例えばアルカリ金属塩また
はアルカリ土類金属塩として、例えばナトリウム塩ある
いはカリウム塩として簡単に単離できる。その遊離酸は
非常に不安定であり、自然に閉環して光学活性ラクトン
IIIになる。
チル−4−ヒドロキシ吉草酸(I)のジアステレオマー
形は、例えば金属塩として、例えばアルカリ金属塩また
はアルカリ土類金属塩として、例えばナトリウム塩ある
いはカリウム塩として簡単に単離できる。その遊離酸は
非常に不安定であり、自然に閉環して光学活性ラクトン
IIIになる。
【0013】L−4−ヒドロキシイソロイシンをIに変
換しうる非常に広範囲の微生物、例えば細菌、真菌、お
よび藻類がIIの生物変換に適している。
換しうる非常に広範囲の微生物、例えば細菌、真菌、お
よび藻類がIIの生物変換に適している。
【0014】好ましい生物は高いL−アミノ酸オキシダ
ーゼ活性を有するものである。これにはAmphiro
a,Gymnogongrus属などの藻類;Neur
ospora属等の真菌;Proteus,Provi
dencia,Morganella,Coryneb
acterium属などの細菌が属する。Proteu
s,ProvidenciaおよびMorganell
a属の細菌、例えば Proteus vulgaris (DSM
2140,3265) Proteus mirabilis (ATC
C 15290) Providencia rettgeri (ATC
C 9250) Morganella morganii (DSM
30117) あるいはNeurospora属の真菌;例えばNeu
rospora crassa(FGSC 988およ
び2963)が特に好適である。
ーゼ活性を有するものである。これにはAmphiro
a,Gymnogongrus属などの藻類;Neur
ospora属等の真菌;Proteus,Provi
dencia,Morganella,Coryneb
acterium属などの細菌が属する。Proteu
s,ProvidenciaおよびMorganell
a属の細菌、例えば Proteus vulgaris (DSM
2140,3265) Proteus mirabilis (ATC
C 15290) Providencia rettgeri (ATC
C 9250) Morganella morganii (DSM
30117) あるいはNeurospora属の真菌;例えばNeu
rospora crassa(FGSC 988およ
び2963)が特に好適である。
【0015】実際の生物変換に先立ち、微生物を適当な
栄養培地で深部培養で培養するのが都合がよい。この目
的に対し通常の複合培地および化学的に定義された培地
の両方を使用できるが、ただし生物変換に必要なL−ア
ミノ酸オキシダーゼの(新規)生合成が起こる限りにお
いてである。これらの詳細は当業者により容易に実証さ
れる。適切な炭素源および窒素源に加えて、栄養培地は
無機塩、微量元素および遊離アミノ酸を含むのが都合が
よい。
栄養培地で深部培養で培養するのが都合がよい。この目
的に対し通常の複合培地および化学的に定義された培地
の両方を使用できるが、ただし生物変換に必要なL−ア
ミノ酸オキシダーゼの(新規)生合成が起こる限りにお
いてである。これらの詳細は当業者により容易に実証さ
れる。適切な炭素源および窒素源に加えて、栄養培地は
無機塩、微量元素および遊離アミノ酸を含むのが都合が
よい。
【0016】糖、好ましくはグルコースあるいはサッカ
ロース、が炭素源として都合よく用いられる。窒素源は
無機化合物でも有機化合物でもよく、例えばアンモニウ
ム塩、好ましくは硫酸アンモニウムおよび硝酸アンモニ
ウム、硝酸塩、酵母エキスまたはペプトンなどがある。
ロース、が炭素源として都合よく用いられる。窒素源は
無機化合物でも有機化合物でもよく、例えばアンモニウ
ム塩、好ましくは硫酸アンモニウムおよび硝酸アンモニ
ウム、硝酸塩、酵母エキスまたはペプトンなどがある。
【0017】通常、栄養培地は塩類、例えば硫酸塩類、
リン酸塩類、または塩化物類、特に次の元素、マグネシ
ウム、カリウムおよびカルシウムの塩類、ならびに微量
元素、鉄、亜鉛、マンガン、ホウ素、コバルト、銅およ
びモリブデンも含有する。Neurospora cr
assaの場合には、ビタミン ビオチンの添加が不可
欠である。
リン酸塩類、または塩化物類、特に次の元素、マグネシ
ウム、カリウムおよびカルシウムの塩類、ならびに微量
元素、鉄、亜鉛、マンガン、ホウ素、コバルト、銅およ
びモリブデンも含有する。Neurospora cr
assaの場合には、ビタミン ビオチンの添加が不可
欠である。
【0018】使用される遊離アミノ酸は都合よく、タン
パク質加水分解物、好ましくはカゼインおよびダイズタ
ンパク質加水分解物から得られるものであり、また個々
のアミノ酸の場合には対応する発酵に由来する。ロイシ
ン、メチオニンおよびフェニルアラニンが好ましい。
パク質加水分解物、好ましくはカゼインおよびダイズタ
ンパク質加水分解物から得られるものであり、また個々
のアミノ酸の場合には対応する発酵に由来する。ロイシ
ン、メチオニンおよびフェニルアラニンが好ましい。
【0019】上記栄養分の割合は発酵様式によって決め
るのが都合よく、各場合に応じて当業者にとって公知の
仕方で決定するのが都合よい。例えば、グルコースある
いはサッカロースの濃度は本発明方法の実施に対し約5
から約50g/lの範囲が適切であり、約10から約2
0g/lの範囲内の濃度が好ましい。好ましい窒素源で
ある硫酸アンモニウムまたは硝酸アンモニウムは約0.
03から約5g/l、特に約0.06から約2g/lの
範囲で添加される。
るのが都合よく、各場合に応じて当業者にとって公知の
仕方で決定するのが都合よい。例えば、グルコースある
いはサッカロースの濃度は本発明方法の実施に対し約5
から約50g/lの範囲が適切であり、約10から約2
0g/lの範囲内の濃度が好ましい。好ましい窒素源で
ある硫酸アンモニウムまたは硝酸アンモニウムは約0.
03から約5g/l、特に約0.06から約2g/lの
範囲で添加される。
【0020】使用される鉱物質塩は約0.05から約1
0g/l、特に約0.1から約5g/lの範囲で添加す
るのが都合がよい。痕跡元素は各場合に約0.005か
ら約20mg/l、特に約0.01から約5mg/lの
濃度範囲で用いるのが普通であり、例えば水溶液として
添加される。
0g/l、特に約0.1から約5g/lの範囲で添加す
るのが都合がよい。痕跡元素は各場合に約0.005か
ら約20mg/l、特に約0.01から約5mg/lの
濃度範囲で用いるのが普通であり、例えば水溶液として
添加される。
【0021】アミノ酸源として使用されるタンパク質加
水分解物は約5から約50g/l、特に約10から約2
0g/lの範囲で都合よく添加される。アミノ酸、例え
ばロイシン、メチオニンまたはフェニルアラニンの添加
に関して選ばれる量は、約0.1から約5g/l、特に
約0.2から約2g/lの範囲が都合よい。
水分解物は約5から約50g/l、特に約10から約2
0g/lの範囲で都合よく添加される。アミノ酸、例え
ばロイシン、メチオニンまたはフェニルアラニンの添加
に関して選ばれる量は、約0.1から約5g/l、特に
約0.2から約2g/lの範囲が都合よい。
【0022】Neurospora crassaの培
養に要求されるビタミン ビオチンは約1から約20μ
g/l、特に約2から約5μg/lの範囲で添加するの
が都合がよい。
養に要求されるビタミン ビオチンは約1から約20μ
g/l、特に約2から約5μg/lの範囲で添加するの
が都合がよい。
【0023】発酵温度は、本質的には用いた微生物によ
って左右されるが、約10から約50℃、特に約20か
ら約37℃までの間が都合がよい。栄養培地のpH値は
通常は約4から約10、好ましくは約5から約8の範囲
にある。好ましい発酵時間、即ち発育完了までの時間は
約10から約100時間、特に約18から約72時間で
ある。
って左右されるが、約10から約50℃、特に約20か
ら約37℃までの間が都合がよい。栄養培地のpH値は
通常は約4から約10、好ましくは約5から約8の範囲
にある。好ましい発酵時間、即ち発育完了までの時間は
約10から約100時間、特に約18から約72時間で
ある。
【0024】発酵後、細胞を栄養培地から機械的に分離
し、洗浄し、そのまま変換に使用するのが都合がよい。
しかし、細胞から調製された固定化細胞あるいは粗抽出
物、ならびに例えば単離された遊離形あるいは固定化形
のL−アミノ酸オキシダーゼ製剤もL−4−ヒドロキシ
イソロイシン(II)の変換に使用できる。この変換の
基本は酸化過程であるので、好ましくは反応混合物を強
く振盪するかあるいは更に通気するのがよい。
し、洗浄し、そのまま変換に使用するのが都合がよい。
しかし、細胞から調製された固定化細胞あるいは粗抽出
物、ならびに例えば単離された遊離形あるいは固定化形
のL−アミノ酸オキシダーゼ製剤もL−4−ヒドロキシ
イソロイシン(II)の変換に使用できる。この変換の
基本は酸化過程であるので、好ましくは反応混合物を強
く振盪するかあるいは更に通気するのがよい。
【0025】所望の場合には細胞からの酵素の単離は当
業者にとって公知の方法で、例えば機械的崩壊および精
製により、例えばイオン交換クロマトグラフィーおよび
(または)吸着クロマトグラフィー等により行なわれる
ことができる。
業者にとって公知の方法で、例えば機械的崩壊および精
製により、例えばイオン交換クロマトグラフィーおよび
(または)吸着クロマトグラフィー等により行なわれる
ことができる。
【0026】生物変換は約4から約8、特に約5から約
7のpH範囲で行なうのが好ましい。本発明による変換
は通常は約10から約40℃の温度で、好ましくは20
から37℃で行なう。抽出物(educt)L−4−ヒ
ドロキシイソロイシン(II)を反応溶液へ約0.5か
ら約5%(w/v)、好ましくは約1から約2%、の量
で添加する。
7のpH範囲で行なうのが好ましい。本発明による変換
は通常は約10から約40℃の温度で、好ましくは20
から37℃で行なう。抽出物(educt)L−4−ヒ
ドロキシイソロイシン(II)を反応溶液へ約0.5か
ら約5%(w/v)、好ましくは約1から約2%、の量
で添加する。
【0027】II:酵素の比率は反応に余り多くの時間
を要しないように、例えば約6から約24時間を越えな
いように選ぶのが都合がよく、そしてこれは2、3回の
実験により解明できる。反応停止後、反応の進行を通常
のアミノ酸分析、即ち化合物IIの消失を調べるための
分析、により追求できる。反応混合物をγ−ヒドロキシ
酸に対して公知の方法でラクトン化する、即ち酸、例え
ば希リン酸で約1から約3、好ましくは約1.5から約
2.5のpH値まで酸性にし、その後加熱することによ
りラクトン化するのが都合がよい。この熱処理は約70
から約95℃の温度範囲で、好ましくは約80℃で、約
20から約90分、好ましくは約30から約60分行な
うのが都合がよい。
を要しないように、例えば約6から約24時間を越えな
いように選ぶのが都合がよく、そしてこれは2、3回の
実験により解明できる。反応停止後、反応の進行を通常
のアミノ酸分析、即ち化合物IIの消失を調べるための
分析、により追求できる。反応混合物をγ−ヒドロキシ
酸に対して公知の方法でラクトン化する、即ち酸、例え
ば希リン酸で約1から約3、好ましくは約1.5から約
2.5のpH値まで酸性にし、その後加熱することによ
りラクトン化するのが都合がよい。この熱処理は約70
から約95℃の温度範囲で、好ましくは約80℃で、約
20から約90分、好ましくは約30から約60分行な
うのが都合がよい。
【0028】溶液は有機溶媒、例えばエステル、特に酢
酸エチル、あるいはエーテル、例えばメチルtert−
ブチルエーテル、を用いて公知の方法に従い、例えば向
流抽出装置で抽出できる。その後溶媒は蒸留により除去
するのが都合がよく、生成物はフレーバ工業で習慣とな
っている担体、例えば油、主として落花生油、あるいは
例えばクエン酸トリエチルにとる。
酸エチル、あるいはエーテル、例えばメチルtert−
ブチルエーテル、を用いて公知の方法に従い、例えば向
流抽出装置で抽出できる。その後溶媒は蒸留により除去
するのが都合がよく、生成物はフレーバ工業で習慣とな
っている担体、例えば油、主として落花生油、あるいは
例えばクエン酸トリエチルにとる。
【0029】しかし、IIの生物工学的変換後に得られ
るIを含有する無細胞反応混合物は、直接担体、例えば
マルトデキストリンあるいは他のデンプン誘導体と混合
し、(噴霧)乾燥することもできる。この生成物は選ば
れた食品のフレーバ付与のため(III)のフレーバ前
駆物質として使用できる。これらは熱処理にかけようと
する食品である。熱処理(煮沸、焼成、油揚げ、グリル
加熱、焙焼、マイクロウェーブ処理など)は約80から
約250℃の温度範囲で約2から約30分行なうのが都
合がよい。使用する前駆物質(I)の量は、例えば約1
ppbから約5ppm(最終製品中)を変化しうる。
るIを含有する無細胞反応混合物は、直接担体、例えば
マルトデキストリンあるいは他のデンプン誘導体と混合
し、(噴霧)乾燥することもできる。この生成物は選ば
れた食品のフレーバ付与のため(III)のフレーバ前
駆物質として使用できる。これらは熱処理にかけようと
する食品である。熱処理(煮沸、焼成、油揚げ、グリル
加熱、焙焼、マイクロウェーブ処理など)は約80から
約250℃の温度範囲で約2から約30分行なうのが都
合がよい。使用する前駆物質(I)の量は、例えば約1
ppbから約5ppm(最終製品中)を変化しうる。
【0030】下記の例は本発明を例示するものである。
【0031】例1 2−ケト−3−メチル−4−ヒドロキシ吉草酸(=4−
ヒドロキシ−3−メチル−2−ケトペンタン酸)(I)
の単離および同定
ヒドロキシ−3−メチル−2−ケトペンタン酸)(I)
の単離および同定
【0032】(a) コロハ Trigonella
foenum graecum L.の種子からL−4
−ヒドロキシイソロイシン(II)の単離
foenum graecum L.の種子からL−4
−ヒドロキシイソロイシン(II)の単離
【0033】L−4−ヒドロキシイソロイシンの抽出と
精製はL.Fowden,H.M.Prattおよび
A.Smith(Phytochemistry(19
73),12,1707)に従い実施した。Trigo
nella foenumgraecum L.の種子
4kgから12gの精製L−4−ヒドロキシイソロイシ
ンが単離された(収量62%)。純度>97%(アミノ
酸分析)。光学施光度:〔α〕D 20=+32.3°〔c
1(即ち、1g/100ml)、H2 O〕。 文献値:31.0°。 (b) Morganella morganiiを用
いるL−4−ヒドロキシイソロイシン(II)の生物変
換
精製はL.Fowden,H.M.Prattおよび
A.Smith(Phytochemistry(19
73),12,1707)に従い実施した。Trigo
nella foenumgraecum L.の種子
4kgから12gの精製L−4−ヒドロキシイソロイシ
ンが単離された(収量62%)。純度>97%(アミノ
酸分析)。光学施光度:〔α〕D 20=+32.3°〔c
1(即ち、1g/100ml)、H2 O〕。 文献値:31.0°。 (b) Morganella morganiiを用
いるL−4−ヒドロキシイソロイシン(II)の生物変
換
【0034】発酵器中pH7、温度30℃でMorga
nella morganii(DSM No.301
17)を栄養培地A(表1)中で20時間培養した。そ
の後、細胞を遠心し、0.02Mリン酸ナトリウム緩衝
液(pH7.0)で洗浄し、0.05Mリン酸ナトリウ
ム緩衝液(pH7.0)中に再浮遊させ、混合物を65
0nmにおいて20の光学密度(あるいは100倍希釈
後O.D.0.2)に調整した。この細胞浮遊液を振盪
フラスコに加え、L−4−ヒドロキシイソロイシン7.
7ミリモル/lで処理した。振盪機上30℃で6時間の
インキュベーション後、L−4−ヒドロキシイソロイシ
ンの供給量が完全に反応した。細胞を反応混合物から遠
心により分離し、得られた上澄を凍結乾燥した。
nella morganii(DSM No.301
17)を栄養培地A(表1)中で20時間培養した。そ
の後、細胞を遠心し、0.02Mリン酸ナトリウム緩衝
液(pH7.0)で洗浄し、0.05Mリン酸ナトリウ
ム緩衝液(pH7.0)中に再浮遊させ、混合物を65
0nmにおいて20の光学密度(あるいは100倍希釈
後O.D.0.2)に調整した。この細胞浮遊液を振盪
フラスコに加え、L−4−ヒドロキシイソロイシン7.
7ミリモル/lで処理した。振盪機上30℃で6時間の
インキュベーション後、L−4−ヒドロキシイソロイシ
ンの供給量が完全に反応した。細胞を反応混合物から遠
心により分離し、得られた上澄を凍結乾燥した。
【表1】 表1:栄養培地A グルコース 10.0 g/l カゼイン水解物 10.0 g/l Na2 HPO4 .2H2 O 11.9 g/l KH2 PO4 4.5 g/l (NH4 )2 SO4 1.0 g/l MgSO4 .7H2 O 0.1 g/l CaCl2 .2H2 O 4 mg/l FeSO4 .7H2 O 0.5mg/l
【0035】(c) 2−ケト−3−メチル−4−ヒド
ロキシ吉草酸(I)のナトリウム塩の単離
ロキシ吉草酸(I)のナトリウム塩の単離
【0036】凍結乾燥残留物をメタノールで抽出し、メ
チルtert−ブチルエーテルの添加により(I)のナ
トリウム塩を常法によって沈殿させた。これまで未知の
この物質は下記の物理的性質を示した。
チルtert−ブチルエーテルの添加により(I)のナ
トリウム塩を常法によって沈殿させた。これまで未知の
この物質は下記の物理的性質を示した。
【0037】融点: 144℃(分解) 光学旋光度: 〔α〕D 20:+18.49°(c0.8
4,メタノール中) IR: 1720cm-1,1630cm1 ,13
90cm-1,1130cm-1 1 H−NMR:δ=4.18ppm(2×q),3.1
8(2×q),1.20(2×d),1.05(2×
d) MS: (電子スプレーイオン化)145.1
(M- ),101.1,57.2,313.1(2M-
Na+ ),481.3(3M- 2Na+ ),649.4
(4M- 3Na+ ),817.6(5M- 4Na+ )
(陰イオンクラスター)。
4,メタノール中) IR: 1720cm-1,1630cm1 ,13
90cm-1,1130cm-1 1 H−NMR:δ=4.18ppm(2×q),3.1
8(2×q),1.20(2×d),1.05(2×
d) MS: (電子スプレーイオン化)145.1
(M- ),101.1,57.2,313.1(2M-
Na+ ),481.3(3M- 2Na+ ),649.4
(4M- 3Na+ ),817.6(5M- 4Na+ )
(陰イオンクラスター)。
【0038】(d) 2−ケト−3−メチル−4−ヒド
ロキシ吉草酸(I)から(5S)−3−ヒドロキシ−
4,5−ジメチル−2(5H)−フラノン(III)へ
の変換
ロキシ吉草酸(I)から(5S)−3−ヒドロキシ−
4,5−ジメチル−2(5H)−フラノン(III)へ
の変換
【0039】(I)のナトリウム塩840mgをH2 O
50mlに溶かし、希リン酸でpH2.0にした。溶
液を85℃で30分保ち、冷却後酢酸エチル2×50m
lで抽出した。溶媒除去後、320mg(収率50%)
の(III)が分離された。この物質(III)は分取
薄層クロマトグラフィー(シリカゲル60)により精製
した後に、光学旋光度:〔α〕D 20:21.66°(ク
ロロホルム中c1.0)を示した。
50mlに溶かし、希リン酸でpH2.0にした。溶
液を85℃で30分保ち、冷却後酢酸エチル2×50m
lで抽出した。溶媒除去後、320mg(収率50%)
の(III)が分離された。この物質(III)は分取
薄層クロマトグラフィー(シリカゲル60)により精製
した後に、光学旋光度:〔α〕D 20:21.66°(ク
ロロホルム中c1.0)を示した。
【0040】例2 例1記載のようにMorganella morgan
iiの細胞を発酵器で培養し、遠心し、洗浄し、その後
光学密度20(650nm)に調節した。L−4−ヒド
ロキシイソロイシン7.7ミリモル/lを加えた後、細
胞浮遊液をエルレンマイヤーフラスコ中30℃で振盪し
た。L−4−ヒドロキシイソロイシンの供給量は18時
間後完全に反応した。反応混合物から細胞を遠心により
分離し、透明な上澄を希リン酸でpH2.5に調節し
た。加熱(30分、80℃)後、溶液を半容量の酢酸エ
チルで2回抽出した。溶媒の除去後、黄色を帯びた油が
分離した。(III)の収率:65%。
iiの細胞を発酵器で培養し、遠心し、洗浄し、その後
光学密度20(650nm)に調節した。L−4−ヒド
ロキシイソロイシン7.7ミリモル/lを加えた後、細
胞浮遊液をエルレンマイヤーフラスコ中30℃で振盪し
た。L−4−ヒドロキシイソロイシンの供給量は18時
間後完全に反応した。反応混合物から細胞を遠心により
分離し、透明な上澄を希リン酸でpH2.5に調節し
た。加熱(30分、80℃)後、溶液を半容量の酢酸エ
チルで2回抽出した。溶媒の除去後、黄色を帯びた油が
分離した。(III)の収率:65%。
【0041】例3 例1に従いMorganella morganiiの
細胞を発酵器で培養し、遠心し、その後水で洗浄した。
細胞を2%アルギン酸ナトリウム中に再浮遊させ、Ca
Cl2 (2%)のかきまぜた溶液中に室温で一滴一滴加
えた。小ビーズとして分離した固定化細胞を水で十分に
洗浄し、その後L−4−ヒドロキシイソロイシンの変換
に用いた。この目的のため、沈降した固定化細胞の一部
分をL−4−ヒドロキシイソロイシンの溶液(11.2
5ミリモル/l)で処理し、エルレンマイヤーフラスコ
中30℃で振盪した。4−ヒドロキシイソロイシンの供
給量は24時間後に完全に反応した。この反応混合物か
ら固定化細胞を吸引フィルター上に分離し、注意深く水
洗した。透明な濾液を例2と同様に更に処理した。(I
II)の収率:60%。
細胞を発酵器で培養し、遠心し、その後水で洗浄した。
細胞を2%アルギン酸ナトリウム中に再浮遊させ、Ca
Cl2 (2%)のかきまぜた溶液中に室温で一滴一滴加
えた。小ビーズとして分離した固定化細胞を水で十分に
洗浄し、その後L−4−ヒドロキシイソロイシンの変換
に用いた。この目的のため、沈降した固定化細胞の一部
分をL−4−ヒドロキシイソロイシンの溶液(11.2
5ミリモル/l)で処理し、エルレンマイヤーフラスコ
中30℃で振盪した。4−ヒドロキシイソロイシンの供
給量は24時間後に完全に反応した。この反応混合物か
ら固定化細胞を吸引フィルター上に分離し、注意深く水
洗した。透明な濾液を例2と同様に更に処理した。(I
II)の収率:60%。
【0042】例4 Providencia rettgeri(ATCC
9250)を発酵器中pH7、温度30℃で、栄養培
地A(表1)の中で20時間培養した。その後、細胞を
遠心し、0.02Mリン酸ナトリウム緩衝液(pH7.
0)で洗浄し、0.1Mリン酸ナトリウム緩衝液(pH
7.2)中に再浮遊させ、650nmにおいて20の光
学密度に調節した。この細胞浮遊液を振盪フラスコに加
え、7.7ミリモル/lの4−ヒドロキシイソロイシン
で処理した。振盪機上30℃で16時間インキュベーシ
ョン後、添加された量の4−ヒドロキシイソロイシンが
完全に反応した。この反応混合物から細胞を遠心分離
し、上澄液を例2のように更に処理した。(III)の
収率:60%。
9250)を発酵器中pH7、温度30℃で、栄養培
地A(表1)の中で20時間培養した。その後、細胞を
遠心し、0.02Mリン酸ナトリウム緩衝液(pH7.
0)で洗浄し、0.1Mリン酸ナトリウム緩衝液(pH
7.2)中に再浮遊させ、650nmにおいて20の光
学密度に調節した。この細胞浮遊液を振盪フラスコに加
え、7.7ミリモル/lの4−ヒドロキシイソロイシン
で処理した。振盪機上30℃で16時間インキュベーシ
ョン後、添加された量の4−ヒドロキシイソロイシンが
完全に反応した。この反応混合物から細胞を遠心分離
し、上澄液を例2のように更に処理した。(III)の
収率:60%。
【0043】例5 Neurospora crassa(FGSC 98
8)を2リットル振盪フラスコ中pH6.0、温度25
℃で、栄養培地B(表2)の中で48時間培養した。精
製綿の四重の層に通して菌糸体を濾過し、水でよく洗浄
し、凍結乾燥し、その後ホモジナイザーを用いて微粉砕
した。菌糸体粉末5gを50mlの0.1Mリン酸ナト
リウム緩衝液(pH7.2)と混合し、40℃で30分
かきまぜた。不溶の細胞成分を遠心により除去し、透明
な上澄液を7.7ミリモル/lのL−4−ヒドロキシイ
ソロイシンで処理した。30℃で18時間のインキュベ
ーション時間後、供給量のL−4−ヒドロキシイソロイ
シンが完全に反応した。得られた4−ヒドロキシ−ケト
酸(I)から(III)への変換を例2に従って実施し
た。収率:60%。
8)を2リットル振盪フラスコ中pH6.0、温度25
℃で、栄養培地B(表2)の中で48時間培養した。精
製綿の四重の層に通して菌糸体を濾過し、水でよく洗浄
し、凍結乾燥し、その後ホモジナイザーを用いて微粉砕
した。菌糸体粉末5gを50mlの0.1Mリン酸ナト
リウム緩衝液(pH7.2)と混合し、40℃で30分
かきまぜた。不溶の細胞成分を遠心により除去し、透明
な上澄液を7.7ミリモル/lのL−4−ヒドロキシイ
ソロイシンで処理した。30℃で18時間のインキュベ
ーション時間後、供給量のL−4−ヒドロキシイソロイ
シンが完全に反応した。得られた4−ヒドロキシ−ケト
酸(I)から(III)への変換を例2に従って実施し
た。収率:60%。
【表2】 表2:栄養培地B サッカロース 20.0 g/l クエン酸ナトリウム.5H2 O 3.0 g/l KH2 PO4 5.0 g/l (NH4 )NO3 0.08 g/l MgSO4 .7H2 O 0.2 g/l CaCl2 .2H2 O 0.1 g/l L−フェニルアラニン 0.73 g/l ZnSO4 .7H2 O 5.0 mg/l Fe(NH4 )2 (SO4 )2 .6H2 O 1.0 mg/l CuSO4 .5H2 O 0.25mg/l MnSO4 .1H2 O 0.05mg/l H3 BO3 0.05mg/l Na2 MoO4 .2H2 O 0.05mg/l
【0044】例6 例5記載の粗抽出物をL−アミノ酸オキシダーゼの共有
結合固定化に用いた。抽出物50mlを1.0Mリン酸
カリウム緩衝液(pH7.5)に対して透析し、10g
のアクリル樹脂粒Eupergit(登録商標)(Ro
ehm Pharma,Weiterstandt,ド
イツ)と混合した。この懸濁系を室温で24時間放置
し、その後樹脂を2リットルの0.1Mリン酸カリウム
緩衝液(pH7.2)で洗浄した。この固定化酵素製剤
を例3記載のようにL−4−ヒドロキシイソロイシン
(7.7ミリモル)と30℃で24時間反応させた。反
応混合物からの固定化酵素の分離は吸引濾過により行な
い、その上澄液を例2記載のように更に処理した。(I
II)の収率は55%であった。
結合固定化に用いた。抽出物50mlを1.0Mリン酸
カリウム緩衝液(pH7.5)に対して透析し、10g
のアクリル樹脂粒Eupergit(登録商標)(Ro
ehm Pharma,Weiterstandt,ド
イツ)と混合した。この懸濁系を室温で24時間放置
し、その後樹脂を2リットルの0.1Mリン酸カリウム
緩衝液(pH7.2)で洗浄した。この固定化酵素製剤
を例3記載のようにL−4−ヒドロキシイソロイシン
(7.7ミリモル)と30℃で24時間反応させた。反
応混合物からの固定化酵素の分離は吸引濾過により行な
い、その上澄液を例2記載のように更に処理した。(I
II)の収率は55%であった。
【0045】例7 メープルシロップ フレーバ 下記の組成を有する2種類のメープルシロップ フレー
バを調製した:
バを調製した:
【表3】 重 量 部 A B ペルーバルサム 5 5 バニラエキス 50 50 酪酸(天然) 5 5 フロノール(天然15%) 10 10 ローストベース(天然) 5 5 例2記載のIII(トリアセチン中0.1%) − 150 トリアセチン 925 775 1000 1000
【0046】上記フレーバを比較したところ、Bにおけ
る(III)150部の存在がこのフレーバにメープル
シロップの典型的な甘いカラメル様のスパイシイな特徴
を与え、ボディ強化に実質的に貢献することが示され
た。このフレーバは、例えば乳飲料中に0.1%の濃度
で使用できる。
る(III)150部の存在がこのフレーバにメープル
シロップの典型的な甘いカラメル様のスパイシイな特徴
を与え、ボディ強化に実質的に貢献することが示され
た。このフレーバは、例えば乳飲料中に0.1%の濃度
で使用できる。
【0047】例8 クルミ フレーバ
【表4】 重 量 部 A B ココア殻エキス 50 50 バニラエキス 10 10 オレイン酸 30 30 クルミベース(天然) 10 10 例2記載のIII(トリアセチン中0.1%) − 120 プロピレングリコール 900 780 1000 1000
【0048】上記フレーバを比較したところ、Bにおけ
る(III)120部の存在がこのフレーバに典型的な
クルミフレーバの特徴を与え、ナッツ様そして脂肪様ノ
ートの強調に実質的に貢献することが示された。このフ
レーバは、例えば乳飲料中に0.1%の濃度で使用でき
る。
る(III)120部の存在がこのフレーバに典型的な
クルミフレーバの特徴を与え、ナッツ様そして脂肪様ノ
ートの強調に実質的に貢献することが示された。このフ
レーバは、例えば乳飲料中に0.1%の濃度で使用でき
る。
【0049】例9 HVPを含まないブラウンソース 下記組成を有するHVPを含まないブラウンソースを調
製した:
製した:
【表5】 成 分 重 量 部 白小麦粉 370 牛脂 145 変性デンプン 145 酵母エキス 97 調理用塩 80 トマトパウダー 60 マルトデキストリン 53.7 グルタミン酸−ナトリウム 30 カラメルパウダー 10 クルクマ 4.5 スパイスミックス(Spice`N´Easy(登録商標)) (タマネギ、ガーリックおよびローズマリーエキス) 4.8 1000
【0050】このソースをフレーバ前駆物質I(2pp
m)の存在下で加熱したとき、そのフレーバは肉、ブイ
ヨン、HVPおよび塩によって明らかに強調された。
m)の存在下で加熱したとき、そのフレーバは肉、ブイ
ヨン、HVPおよび塩によって明らかに強調された。
【0051】例10
【表6】 クラッカー 成 分 重 量 部 白小麦粉 575 植物脂 150 スキムミルクパウダー 37 粉末糖 15 甘味付ホエーパウダー 10.2 酵母自己分解物 10.0 重炭酸アンモニウム 10.0 調理用塩 10.0 ピロリン酸水素ナトリウム 1.0 ホワイトペッパー 0.4 パプリカ 0.4 水 181 フレーバ前駆物質(I) 1ppm
【0052】このクラッカー練り粉をフレーバ前駆物質
(I)の存在下で焼くと(230℃、10分)、部屋の
においと製品のフレーバがスパイシーな、ブイヨン様、
草様の方向で強調された。
(I)の存在下で焼くと(230℃、10分)、部屋の
においと製品のフレーバがスパイシーな、ブイヨン様、
草様の方向で強調された。
Claims (5)
- 【請求項1】 式、 【化1】 を有する4S−ヒドロキシ−3−メチル−2−ケトペン
タン酸。 - 【請求項2】 L−4−ヒドロキシイソロイシン(2
S,3R,4S)をL−アミノ酸オキシダーゼあるいは
この酵素を含む微生物と反応させることを包含する、請
求項1記載の化合物の製造法。 - 【請求項3】 式、 【化2】 を有する光学活性(5S)−3−ヒドロキシ−4,5−
ジメチル−2(5H)−フラノンの製造法において、
式、 【化3】 を有する化合物をそれ自体公知の方法でラクトン化する
ことを包含する上記方法。 - 【請求項4】 請求項1記載の化合物1のフレーバ前駆
物質としての使用法。 - 【請求項5】 特に請求項3記載の方法に従って製造さ
れたヒドロキシフラノンIIIのフレーバ剤としての使
用法。
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