JPH06181741A - 微生物を培養する装置 - Google Patents
微生物を培養する装置Info
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- JPH06181741A JPH06181741A JP4307610A JP30761092A JPH06181741A JP H06181741 A JPH06181741 A JP H06181741A JP 4307610 A JP4307610 A JP 4307610A JP 30761092 A JP30761092 A JP 30761092A JP H06181741 A JPH06181741 A JP H06181741A
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Abstract
(57)【要約】
【目的】 試料液を繊維質吸水性シートに均一に含侵さ
せるとともに、冷水可溶性ゲル化剤が吸水・ゲル化して
ゲル培地を形成し、微生物を培養する。 【構成】 防水性の平板２の表面に冷水可溶性ゲル化剤
と微生物培養基の混合物３が被覆されており、さらに繊
維質吸水性シート４が積層されている。微生物を含む試
料液を吸水性シート４に分注すると、その繊維の重なり
による毛細管現象により試料は繊維質吸水性シート４全
体に均一に拡散する。続いて、平板２に被覆されたゲル
化剤と培養基の混合物３が吸水・ゲル化して繊維質吸水
性シート４の繊維を包含・密着してゲル培地を形成し、
微生物を培養することができる。
せるとともに、冷水可溶性ゲル化剤が吸水・ゲル化して
ゲル培地を形成し、微生物を培養する。 【構成】 防水性の平板２の表面に冷水可溶性ゲル化剤
と微生物培養基の混合物３が被覆されており、さらに繊
維質吸水性シート４が積層されている。微生物を含む試
料液を吸水性シート４に分注すると、その繊維の重なり
による毛細管現象により試料は繊維質吸水性シート４全
体に均一に拡散する。続いて、平板２に被覆されたゲル
化剤と培養基の混合物３が吸水・ゲル化して繊維質吸水
性シート４の繊維を包含・密着してゲル培地を形成し、
微生物を培養することができる。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、微生物を培養する装置
に関する。
に関する。
【０００２】
【従来の技術】従来から、食品などの微生物数を測定す
るために寒天平板混釈法が用いられている。即ち、滅菌
したシャーレに一定量の試料液を分注した後、予め高圧
蒸気滅菌してから約４５℃に保持した寒天培地を注ぎ込
み、直ちに試料液と培地を十分に混釈する。その後、静
置して培地が完全に凝固した後、ふらん器で培養すると
いう方法である。
るために寒天平板混釈法が用いられている。即ち、滅菌
したシャーレに一定量の試料液を分注した後、予め高圧
蒸気滅菌してから約４５℃に保持した寒天培地を注ぎ込
み、直ちに試料液と培地を十分に混釈する。その後、静
置して培地が完全に凝固した後、ふらん器で培養すると
いう方法である。
【０００３】ところが、この方法では寒天培地を加熱溶
解・高圧蒸気滅菌するためにオートクレーブなどの特殊
な装置が必要であり、また、シャーレや寒天培地溶解用
のフラスコなど多数のガラス器具が必要である。さら
に、微生物を良好に分離・培養するためには試料液の分
注から培地との混釈までの操作を無菌的に手際よく、且
つ、一定時間内に行わなければならない。このため、微
生物検査のための特別な検査室を設置したうえで、十分
な訓練を受けた専門技術者でなければ検査ができなかっ
た。したがって、一般の食品加工場などで手軽に微生物
的品質検査などを行うことは困難であった。
解・高圧蒸気滅菌するためにオートクレーブなどの特殊
な装置が必要であり、また、シャーレや寒天培地溶解用
のフラスコなど多数のガラス器具が必要である。さら
に、微生物を良好に分離・培養するためには試料液の分
注から培地との混釈までの操作を無菌的に手際よく、且
つ、一定時間内に行わなければならない。このため、微
生物検査のための特別な検査室を設置したうえで、十分
な訓練を受けた専門技術者でなければ検査ができなかっ
た。したがって、一般の食品加工場などで手軽に微生物
的品質検査などを行うことは困難であった。
【０００４】そこで、種々の簡易培地、あるいは簡易検
査法が考案されている。例えば、培養基を浸み込ませて
乾燥させた濾紙（「サンコリテップ」商品名：サン化学
株式会社製）に試料液の一定量を含浸させて微生物を培
養する方法がある。この方法では、試料液を濾紙に含浸
させることにより培養基が溶解し、試料液中の微生物は
溶解した培養基を養分にして増殖する。
査法が考案されている。例えば、培養基を浸み込ませて
乾燥させた濾紙（「サンコリテップ」商品名：サン化学
株式会社製）に試料液の一定量を含浸させて微生物を培
養する方法がある。この方法では、試料液を濾紙に含浸
させることにより培養基が溶解し、試料液中の微生物は
溶解した培養基を養分にして増殖する。
【０００５】あるいは、合成樹脂製の支持具表面に薄く
形成した寒天培地（例えば「フードプレート」商品名：
日水製薬株式会社製）を試料液に浸漬して微生物を培養
する方法も考えられている。この方法では、寒天培地を
試料液に一旦浸漬することにより寒天培地表面に試料液
中の微生物を付着させ、よく液切りを行った後、培養す
る。
形成した寒天培地（例えば「フードプレート」商品名：
日水製薬株式会社製）を試料液に浸漬して微生物を培養
する方法も考えられている。この方法では、寒天培地を
試料液に一旦浸漬することにより寒天培地表面に試料液
中の微生物を付着させ、よく液切りを行った後、培養す
る。
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】ところが、培養基を浸
み込ませた濾紙を用いる方法では、微生物が形の整った
集落を形成しないことが多い。即ち、この方法では、試
料液は濾紙の繊維中に毛細管現象で保持されているにす
ぎず、運動性のある微生物では濾紙中を自由に移動する
ことが可能である。このため、微生物が寒天ゲル中に固
定される寒天培地法とは異なり、微生物は広い範囲に拡
散した集落を形成する。また、試料液を濾紙全体に均一
に含浸させることも困難である。したがって、濾紙上の
集落が重なり合うなどして、正確な微生物数を計数する
ことは困難であった。
み込ませた濾紙を用いる方法では、微生物が形の整った
集落を形成しないことが多い。即ち、この方法では、試
料液は濾紙の繊維中に毛細管現象で保持されているにす
ぎず、運動性のある微生物では濾紙中を自由に移動する
ことが可能である。このため、微生物が寒天ゲル中に固
定される寒天培地法とは異なり、微生物は広い範囲に拡
散した集落を形成する。また、試料液を濾紙全体に均一
に含浸させることも困難である。したがって、濾紙上の
集落が重なり合うなどして、正確な微生物数を計数する
ことは困難であった。
【０００７】また薄く生成した寒天培地を試料液に浸漬
する方法では、寒天培地表面に付着する微生物の数は試
料液中の微生物数と正確に対応するわけではなく、した
がって微生物が多い、少ないといった傾向性を知ること
しかできなかった。そこで本発明は、試料液中の微生物
が均一に分散し、且つ形の整った微生物集落が形成し得
る微生物の培養装置を提供することを目的になされた。
する方法では、寒天培地表面に付着する微生物の数は試
料液中の微生物数と正確に対応するわけではなく、した
がって微生物が多い、少ないといった傾向性を知ること
しかできなかった。そこで本発明は、試料液中の微生物
が均一に分散し、且つ形の整った微生物集落が形成し得
る微生物の培養装置を提供することを目的になされた。
【０００８】
【課題を解決するための手段】上記目的を達成するため
になされた本発明は、防水性の平板の表面の少なくとも
一部に冷水可溶性ゲル化剤と微生物培養基の混合物を被
覆し、その被覆の表面の少なくとも一部に繊維質吸水性
シートを積層して構成されることを特徴とする微生物の
培養装置を要旨としている。
になされた本発明は、防水性の平板の表面の少なくとも
一部に冷水可溶性ゲル化剤と微生物培養基の混合物を被
覆し、その被覆の表面の少なくとも一部に繊維質吸水性
シートを積層して構成されることを特徴とする微生物の
培養装置を要旨としている。
【０００９】
【作用】このように構成された本発明では、防水性の平
板の表面に冷水可溶性ゲル化剤と微生物培養基の混合物
を被覆し、その被覆表面にさらに積層した繊維質吸水性
シートに、ピペットなどを用いて一定量の試料液を滴下
することにより、試料液は繊維質吸水性シートを構成す
る繊維の重なりによる毛細管現象により、吸水性シート
全体に拡散する。同時に平板の表面に被覆された冷水可
溶性ゲル化剤が試料液を吸水して膨潤・ゲル化し、微生
物培養基が溶解する。この時、繊維質吸水性シートの繊
維はゲルの中に包みこまれ、あるいはゲルに粘着する。
これによって、試料液中の微生物はゲルに捕捉され、自
由移動を抑制される。したがって、微生物が均一に分散
し、且つ、形の整った微生物集落が形成される。
板の表面に冷水可溶性ゲル化剤と微生物培養基の混合物
を被覆し、その被覆表面にさらに積層した繊維質吸水性
シートに、ピペットなどを用いて一定量の試料液を滴下
することにより、試料液は繊維質吸水性シートを構成す
る繊維の重なりによる毛細管現象により、吸水性シート
全体に拡散する。同時に平板の表面に被覆された冷水可
溶性ゲル化剤が試料液を吸水して膨潤・ゲル化し、微生
物培養基が溶解する。この時、繊維質吸水性シートの繊
維はゲルの中に包みこまれ、あるいはゲルに粘着する。
これによって、試料液中の微生物はゲルに捕捉され、自
由移動を抑制される。したがって、微生物が均一に分散
し、且つ、形の整った微生物集落が形成される。
【００１０】
【実施例】次に、本発明の実施例を図面と共に説明す
る。図１は実施例の微生物の培養装置の平面図、図２は
微生物の培養装置のＡ−Ａ線断面図をそれぞれ表してい
る。図に示すように微生物の培養装置は、正方形状の防
水性の平板２の表面に冷水可溶性ゲル化剤と微生物培養
基の混合物３が被覆されている。その被覆の表面に円形
状の繊維質吸水性シートが積層される。
る。図１は実施例の微生物の培養装置の平面図、図２は
微生物の培養装置のＡ−Ａ線断面図をそれぞれ表してい
る。図に示すように微生物の培養装置は、正方形状の防
水性の平板２の表面に冷水可溶性ゲル化剤と微生物培養
基の混合物３が被覆されている。その被覆の表面に円形
状の繊維質吸水性シートが積層される。
【００１１】平板２は白色のポリスチロール樹脂で構成
され、その表面は、冷水可溶性ゲル化剤と微生物培養基
の混合物が固着しやすいように梨子地に仕上げてある。
なお平板２の形状は正方形に限定されるものではなく、
繊維質吸水性シートがはみ出すことなく積層できる形状
であればよく、その材質もポリスチロール樹脂に限定さ
れるものではなく、防水性の材質であればいずれでも構
わない。また、その表面は必ずしも梨子地に仕上げる必
要はない。
され、その表面は、冷水可溶性ゲル化剤と微生物培養基
の混合物が固着しやすいように梨子地に仕上げてある。
なお平板２の形状は正方形に限定されるものではなく、
繊維質吸水性シートがはみ出すことなく積層できる形状
であればよく、その材質もポリスチロール樹脂に限定さ
れるものではなく、防水性の材質であればいずれでも構
わない。また、その表面は必ずしも梨子地に仕上げる必
要はない。
【００１２】平板２の表面には、冷水可溶性ゲル化剤と
微生物培養基の混合物３が被覆される。ここで、冷水可
溶性ゲル化剤としてカラギーナンを使用し、予め設定し
た量の試料液が、予め設定した面積に拡散して冷水可溶
性ゲル化剤を水和したときに十分な強度のゲルが得られ
るようにその量を調製した。また、微生物培養基として
ペプトン、酵母エキスおよびブドウ糖を使用し、予め設
定した量の試料液が、予め設定した面積に拡散して微生
物培養基を溶解したときに、その試料液に対する重量％
がそれぞれ０．５％、０．２５％、０．１％となり、い
わゆる標準培地を形成するように各々の量を調整した。
これらの冷水可溶性ゲル化剤と培養基の混合物を、固着
剤としてポリビニルピロリドンを予め溶解した８０％エ
タノール溶液で泥状に混練し、平板２に均一に塗沫した
後、乾燥して被覆を形成した。
微生物培養基の混合物３が被覆される。ここで、冷水可
溶性ゲル化剤としてカラギーナンを使用し、予め設定し
た量の試料液が、予め設定した面積に拡散して冷水可溶
性ゲル化剤を水和したときに十分な強度のゲルが得られ
るようにその量を調製した。また、微生物培養基として
ペプトン、酵母エキスおよびブドウ糖を使用し、予め設
定した量の試料液が、予め設定した面積に拡散して微生
物培養基を溶解したときに、その試料液に対する重量％
がそれぞれ０．５％、０．２５％、０．１％となり、い
わゆる標準培地を形成するように各々の量を調整した。
これらの冷水可溶性ゲル化剤と培養基の混合物を、固着
剤としてポリビニルピロリドンを予め溶解した８０％エ
タノール溶液で泥状に混練し、平板２に均一に塗沫した
後、乾燥して被覆を形成した。
【００１３】なお、冷水可溶性ゲル化剤はカラギーナン
に限定されるものではなく、十分なゲル強度が得られる
ものであればいずれでも構わない。微生物培養基は、培
養する微生物の種類により種々の成分が使用でき、微生
物の生育のための栄養素、微生物の選択抑制剤、指示
薬、色素などが含まれる。また、冷水可溶性ゲルと培養
基３の混合物を平板２に被覆する際の固着剤は、必ずし
も必要としない。
に限定されるものではなく、十分なゲル強度が得られる
ものであればいずれでも構わない。微生物培養基は、培
養する微生物の種類により種々の成分が使用でき、微生
物の生育のための栄養素、微生物の選択抑制剤、指示
薬、色素などが含まれる。また、冷水可溶性ゲルと培養
基３の混合物を平板２に被覆する際の固着剤は、必ずし
も必要としない。
【００１４】平板２の表面上の冷水可溶性ゲル化剤と微
生物培養基の混合物３の被覆の表面に積層される繊維質
吸水性シート４には、レーヨン製不織布を使用し、その
面積は、予め設定された量の試料液を分注したとき、不
織布全体が試料液で均一に、且つ、十分に含浸されるよ
うに調節した。なお、繊維質吸水性シートはレーヨン製
不織布に限定されるものではなく、親水性の繊維で構成
された漉き紙、織り布、不織布などのいずれでも構わな
い。また、その厚さは特に限定されるものではないが、
０．１乃至０．２ｍｍ程度であれば試料液を含んだ際に
実用上透明乃至半透明になり、微生物集落の観察が容易
である。
生物培養基の混合物３の被覆の表面に積層される繊維質
吸水性シート４には、レーヨン製不織布を使用し、その
面積は、予め設定された量の試料液を分注したとき、不
織布全体が試料液で均一に、且つ、十分に含浸されるよ
うに調節した。なお、繊維質吸水性シートはレーヨン製
不織布に限定されるものではなく、親水性の繊維で構成
された漉き紙、織り布、不織布などのいずれでも構わな
い。また、その厚さは特に限定されるものではないが、
０．１乃至０．２ｍｍ程度であれば試料液を含んだ際に
実用上透明乃至半透明になり、微生物集落の観察が容易
である。
【００１５】このように構成された本実施例の微生物の
培養装置１では、次のようにして微生物を培養すること
ができる。すなわち、微生物を含む試料液（例えば食品
試料を滅菌生理食塩水と共にホモジナイズした乳剤）の
予め設定された量を、滅菌ピペットなどで繊維質吸水性
シート４に分注する。すると試料液は繊維の重なりによ
る毛細管現象によって、繊維質吸水性シート４全体に均
一に拡散する。これに続いて冷水可溶性ゲル化剤と微生
物培養基の混合物３が試料液を吸収してゲル化し、その
ゲルが繊維質吸水性シート４の繊維を包み込み、あるい
は粘着して培地を形成し、したがって試料液中の微生物
がゲル中に捕捉される。この状態で微生物の培養装置１
を汚染防止・乾燥防止のために適当な密封容器に収容
し、規定の温度で培養する。
培養装置１では、次のようにして微生物を培養すること
ができる。すなわち、微生物を含む試料液（例えば食品
試料を滅菌生理食塩水と共にホモジナイズした乳剤）の
予め設定された量を、滅菌ピペットなどで繊維質吸水性
シート４に分注する。すると試料液は繊維の重なりによ
る毛細管現象によって、繊維質吸水性シート４全体に均
一に拡散する。これに続いて冷水可溶性ゲル化剤と微生
物培養基の混合物３が試料液を吸収してゲル化し、その
ゲルが繊維質吸水性シート４の繊維を包み込み、あるい
は粘着して培地を形成し、したがって試料液中の微生物
がゲル中に捕捉される。この状態で微生物の培養装置１
を汚染防止・乾燥防止のために適当な密封容器に収容
し、規定の温度で培養する。
【００１６】本実施例では、繊維質吸水性シート４に試
料液を分注するだけで培地を形成することができる。こ
のため、微生物検査のために特別の検査室を設置したり
専門的な技術を習得したりする必要はなく、だれでもど
こでも簡単に微生物検査を行うことができる。
料液を分注するだけで培地を形成することができる。こ
のため、微生物検査のために特別の検査室を設置したり
専門的な技術を習得したりする必要はなく、だれでもど
こでも簡単に微生物検査を行うことができる。
【００１７】さらに本実施例では、試料液は毛細管現象
によって繊維質吸水性シート４全体に均一に拡散し、且
つ試料液中の微生物はゲル中に捕捉され自由移動を抑制
される。このため、微生物集落が重なり合うことがな
く、また、形の整った微生物集落が形成され、したがっ
て微生物の正確な数を計数することが可能となる。
によって繊維質吸水性シート４全体に均一に拡散し、且
つ試料液中の微生物はゲル中に捕捉され自由移動を抑制
される。このため、微生物集落が重なり合うことがな
く、また、形の整った微生物集落が形成され、したがっ
て微生物の正確な数を計数することが可能となる。
【００１８】なお本実施例では、試料液を分注してゲル
培地を形成させた後、微生物の培養装置１を汚染防止・
乾燥防止のための密封容器に収容して培養しているが、
装置１に汚染防止・乾燥防止のためのカバーフィルムを
積層することもできる。すなわち、図３で表されるよう
に、微生物の培養装置３１に試料液を分注してゲル培地
を形成させた後、水分不透過性の透明な、繊維質吸水性
シート３４に完全に覆い被せられる大きさのカバーフィ
ルム３５を装置に積層し、試料液を吸収した繊維質吸水
性シート３４に密着させる。こうすることにより、微生
物の培養装置を密閉容器に収容することなく汚染防止・
乾燥防止が可能となり、そのまま培養することができ
る。
培地を形成させた後、微生物の培養装置１を汚染防止・
乾燥防止のための密封容器に収容して培養しているが、
装置１に汚染防止・乾燥防止のためのカバーフィルムを
積層することもできる。すなわち、図３で表されるよう
に、微生物の培養装置３１に試料液を分注してゲル培地
を形成させた後、水分不透過性の透明な、繊維質吸水性
シート３４に完全に覆い被せられる大きさのカバーフィ
ルム３５を装置に積層し、試料液を吸収した繊維質吸水
性シート３４に密着させる。こうすることにより、微生
物の培養装置を密閉容器に収容することなく汚染防止・
乾燥防止が可能となり、そのまま培養することができ
る。
【００１９】さらに図４で表されるように、この汚染防
止・乾燥防止のためのカバーフィルムのゲル培地に接す
る側の表面に、平板４２の表面の被覆４３と同様に、冷
水可溶性ゲル化剤と微生物培養基の混合物４３’を被覆
しておけば、試料を分注してカバーフィルムを密着させ
た際に、カバーフィルム面の被覆４３’も試料液を吸収
してゲル化し、平板表面のゲルとカバーフィルム表面の
ゲルが繊維質吸水性シートを通して融合し、平板４２、
繊維質吸水性シート４４およびカバーフィルム４５がよ
り強固に密着するので、ゲル部分の安定性が向上すると
ともに微生物集落の形成性も向上する。なお、この場合
は、平板４２およびカバーフィルム４５の表面の何れか
一方の被覆は、冷水可溶性ゲル化剤だけで構成されてい
ても構わない。
止・乾燥防止のためのカバーフィルムのゲル培地に接す
る側の表面に、平板４２の表面の被覆４３と同様に、冷
水可溶性ゲル化剤と微生物培養基の混合物４３’を被覆
しておけば、試料を分注してカバーフィルムを密着させ
た際に、カバーフィルム面の被覆４３’も試料液を吸収
してゲル化し、平板表面のゲルとカバーフィルム表面の
ゲルが繊維質吸水性シートを通して融合し、平板４２、
繊維質吸水性シート４４およびカバーフィルム４５がよ
り強固に密着するので、ゲル部分の安定性が向上すると
ともに微生物集落の形成性も向上する。なお、この場合
は、平板４２およびカバーフィルム４５の表面の何れか
一方の被覆は、冷水可溶性ゲル化剤だけで構成されてい
ても構わない。
【００２０】
【実験例】続いて上記実施例の効果を立証する実験例を
述べる。実験は次のようにして行われた。まず実施例の
微生物の培養装置３１において、平板３２を一辺が８．
０ｃｍの正方形で厚さ１．０ｍｍとし、繊維質吸水性シ
ート３４を直径６．０ｃｍのレーヨン不織布（２５ｇ／
平方ｍ規格、厚さ約０．２ｍｍ）とし、カバーフィルム
３５を厚さ０．０８ｍｍのポリエチレンフィルムとした
ものを準備した。次にこの微生物の培養装置に、生イカ
を滅菌生理食塩水と共にホモジナイズした乳剤をさらに
滅菌生理食塩水で適度に希釈した試料液１ｍｌを分注
し、前述の方法でゲル培地を形成した。
述べる。実験は次のようにして行われた。まず実施例の
微生物の培養装置３１において、平板３２を一辺が８．
０ｃｍの正方形で厚さ１．０ｍｍとし、繊維質吸水性シ
ート３４を直径６．０ｃｍのレーヨン不織布（２５ｇ／
平方ｍ規格、厚さ約０．２ｍｍ）とし、カバーフィルム
３５を厚さ０．０８ｍｍのポリエチレンフィルムとした
ものを準備した。次にこの微生物の培養装置に、生イカ
を滅菌生理食塩水と共にホモジナイズした乳剤をさらに
滅菌生理食塩水で適度に希釈した試料液１ｍｌを分注
し、前述の方法でゲル培地を形成した。
【００２１】一方、比較例として、内径６ｃｍのシャー
レに上記試料液１ｍｌを分注し、直ちに約４５℃に保温
した標準寒天培地約５ｍｌを注入して混釈し、続いてこ
れを静置・冷却して培地を凝固させた。
レに上記試料液１ｍｌを分注し、直ちに約４５℃に保温
した標準寒天培地約５ｍｌを注入して混釈し、続いてこ
れを静置・冷却して培地を凝固させた。
【００２２】続いて、実施例および比較例の各培地を、
３５℃で４８時間培養し、生育した集落数を計数した。
この実験を各例に対して１０回繰り返して行った結果、
試料液１ｍｌ当たりの平均集落数は、実施例で１６７
個、比較例で１７３個とほとんど違いが見られなかっ
た。また、実施例での微生物集落の分散状況は比較例と
同様であり、微生物が不織布に捕集されて一部に偏在し
たりすることはなく、その集落の形も整ったものであっ
た。
３５℃で４８時間培養し、生育した集落数を計数した。
この実験を各例に対して１０回繰り返して行った結果、
試料液１ｍｌ当たりの平均集落数は、実施例で１６７
個、比較例で１７３個とほとんど違いが見られなかっ
た。また、実施例での微生物集落の分散状況は比較例と
同様であり、微生物が不織布に捕集されて一部に偏在し
たりすることはなく、その集落の形も整ったものであっ
た。
【００２３】以上の実験結果より、実施例の微生物の培
養装置３１では、従来法に比較して操作が飛躍的に簡略
化されているにも拘らず、微生物の分散状況や集落の形
成状況は従来法とほとんど変わらないことが判った。し
たがって、微生物の培養装置３１を使用することによ
り、微生物検査のための特別な検査室を設置したり、専
門的な技術を習得したりすることなく、微生物の培養・
検査を行えることが立証された。
養装置３１では、従来法に比較して操作が飛躍的に簡略
化されているにも拘らず、微生物の分散状況や集落の形
成状況は従来法とほとんど変わらないことが判った。し
たがって、微生物の培養装置３１を使用することによ
り、微生物検査のための特別な検査室を設置したり、専
門的な技術を習得したりすることなく、微生物の培養・
検査を行えることが立証された。
【００２４】
【発明の効果】このように本発明によれば、繊維質吸水
性シートに分注された試料液はシートを構成する繊維の
重なりによる毛細管現象により繊維質吸水性シート全体
に均一に拡散する。このため、試料液の分注・拡散に熟
練を要しない。また、冷水可溶性ゲル化剤が試料液を吸
水・ゲル化して微生物を捕捉し、その自由移動を抑制す
るため形の整った微生物集落が形成される。したがっ
て、微生物集落は重なりあうことがなく、容易にその数
を計数することができる。
性シートに分注された試料液はシートを構成する繊維の
重なりによる毛細管現象により繊維質吸水性シート全体
に均一に拡散する。このため、試料液の分注・拡散に熟
練を要しない。また、冷水可溶性ゲル化剤が試料液を吸
水・ゲル化して微生物を捕捉し、その自由移動を抑制す
るため形の整った微生物集落が形成される。したがっ
て、微生物集落は重なりあうことがなく、容易にその数
を計数することができる。
【００２５】更に本発明の微生物の培養装置は、使用に
際して加温溶解や高圧滅菌など培地調製のための特別な
操作を必要としない。したがって、設備の整った検査室
でなくても、あるいは専門技術者でなくても、手軽に微
生物検査を行うことが可能である。また、使用時までは
乾燥状態であるため、長期のストックが可能であり、緊
急な検査にも迅速に対応できる。
際して加温溶解や高圧滅菌など培地調製のための特別な
操作を必要としない。したがって、設備の整った検査室
でなくても、あるいは専門技術者でなくても、手軽に微
生物検査を行うことが可能である。また、使用時までは
乾燥状態であるため、長期のストックが可能であり、緊
急な検査にも迅速に対応できる。
【図１】実施例の微生物の培養装置を表す平面図。
【図２】実施例の微生物の培養装置を表す断面図。
【図３】実施例の微生物の培養装置にカバーフィルムを
積層した状態（微生物培養時）を表す断面図。
積層した状態（微生物培養時）を表す断面図。
【図４】実施例の微生物の培養装置に、冷水可溶性ゲル
化剤と微生物培養基の混合物を被覆したカバーフィルム
を積層した状態を表す断面図。
化剤と微生物培養基の混合物を被覆したカバーフィルム
を積層した状態を表す断面図。
１、３１、４１ 培地形成具 ２、３２、４２ 平板 ３、３３、４３、４３’ 冷水可溶性ゲルと微生物培養
基の混合物 ４、３４、４４ 繊維質吸水性シート ３５、４５ 水分不透過性カバーフィルム ３６ 微生物集落
基の混合物 ４、３４、４４ 繊維質吸水性シート ３５、４５ 水分不透過性カバーフィルム ３６ 微生物集落
─────────────────────────────────────────────────────
【手続補正書】
【提出日】平成５年８月２６日
【手続補正１】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】特許請求の範囲
【補正方法】変更
【補正内容】
【特許請求の範囲】
【手続補正２】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００１３
【補正方法】変更
【補正内容】
【００１３】 なお、冷水可溶性ゲル化剤はカラギーナ
ンに限定されるものではなく、十分なゲル強度が得られ
るものであれば、グアガム、キサンタンガム、カルボキ
シメチルセルロース、ポリビニルアルコール等いずれで
も構わない。微生物培養基は、培養する微生物の種類に
より種々の成分が使用でき、微生物の生育のための栄養
素、微生物の選択抑制剤、指示薬、色素などが含まれ
る。また、冷水可溶性ゲルと培養基３の混合物を平板２
に被覆する際の固着剤は、必ずしも必要なものではな
い。
ンに限定されるものではなく、十分なゲル強度が得られ
るものであれば、グアガム、キサンタンガム、カルボキ
シメチルセルロース、ポリビニルアルコール等いずれで
も構わない。微生物培養基は、培養する微生物の種類に
より種々の成分が使用でき、微生物の生育のための栄養
素、微生物の選択抑制剤、指示薬、色素などが含まれ
る。また、冷水可溶性ゲルと培養基３の混合物を平板２
に被覆する際の固着剤は、必ずしも必要なものではな
い。
【手続補正３】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００１８
【補正方法】変更
【補正内容】
【００１８】 なお本実施例では、試料液を分注してゲ
ル培地を形成させた後、微生物の培養装置１を汚染防止
・乾燥防止のための密封容器に収容して培養している
が、装置１に汚染防止・乾燥防止のためのカバーフィル
ムを積層することもできる。すなわち、図３で示される
ように、微生物の培養装置３１に水分不透過性微生物不
透過性で透明な、繊維質吸水性シート３４を完全に覆う
大きさのカバーフィルム３５を装置に積層する。カバー
フィルム３５を持ち上げて繊維質吸水性シート３４を露
出し、試料液を繊維質吸水性シート３４に分注する。そ
の後、カバーフィルムをもとに戻し試料液を吸収した繊
維質吸水性シートに密着させる。こうすることにより汚
染防止・乾燥防止が可能となり、微生物の培養装置３１
を密封容器に収容することなく培養できる。
ル培地を形成させた後、微生物の培養装置１を汚染防止
・乾燥防止のための密封容器に収容して培養している
が、装置１に汚染防止・乾燥防止のためのカバーフィル
ムを積層することもできる。すなわち、図３で示される
ように、微生物の培養装置３１に水分不透過性微生物不
透過性で透明な、繊維質吸水性シート３４を完全に覆う
大きさのカバーフィルム３５を装置に積層する。カバー
フィルム３５を持ち上げて繊維質吸水性シート３４を露
出し、試料液を繊維質吸水性シート３４に分注する。そ
の後、カバーフィルムをもとに戻し試料液を吸収した繊
維質吸水性シートに密着させる。こうすることにより汚
染防止・乾燥防止が可能となり、微生物の培養装置３１
を密封容器に収容することなく培養できる。
Claims (1)
- 【請求項１】 防水性の平板の表面の少なくとも一部に
冷水可溶性ゲル化剤と微生物培養基の混合物を被覆し、
その被覆の表面の少なくとも一部に繊維質吸水性シート
を積層して構成されることを特徴とする微生物を培養す
る装置。
Priority Applications (5)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP30761092A JP3146078B2 (ja) | 1992-10-21 | 1992-10-21 | 微生物を培養する装置 |
| EP93922045A EP0666322B1 (en) | 1992-10-21 | 1993-10-04 | Apparatus for culturing microorganism |
| PCT/JP1993/001440 WO1994009151A1 (en) | 1992-10-21 | 1993-10-04 | Apparatus for culturing microorganism |
| US08/284,506 US5494823A (en) | 1992-01-21 | 1993-10-04 | Apparatus for culturing microorganism |
| DE69329117T DE69329117T2 (de) | 1992-10-21 | 1993-10-04 | Vorrichtung zur kultivierung von mikroorganismen |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP30761092A JP3146078B2 (ja) | 1992-10-21 | 1992-10-21 | 微生物を培養する装置 |
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| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH06181741A true JPH06181741A (ja) | 1994-07-05 |
| JP3146078B2 JP3146078B2 (ja) | 2001-03-12 |
Family
ID=17971112
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP30761092A Expired - Fee Related JP3146078B2 (ja) | 1992-01-21 | 1992-10-21 | 微生物を培養する装置 |
Country Status (5)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US5494823A (ja) |
| EP (1) | EP0666322B1 (ja) |
| JP (1) | JP3146078B2 (ja) |
| DE (1) | DE69329117T2 (ja) |
| WO (1) | WO1994009151A1 (ja) |
Cited By (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH0919282A (ja) * | 1995-07-07 | 1997-01-21 | Nissui Pharm Co Ltd | 簡易培地及び微生物の検出方法 |
| US6638755B1 (en) | 1999-05-19 | 2003-10-28 | Nissui Pharmaceutical Co., Ltd. | Simple culture medium and method for preparation thereof |
| JP2009207394A (ja) * | 2008-03-03 | 2009-09-17 | Dainippon Printing Co Ltd | 微生物培養シート |
| JP2013516174A (ja) * | 2009-12-30 | 2013-05-13 | スリーエム イノベイティブ プロパティズ カンパニー | グルコースオキシダーゼを産生するカビの迅速検出 |
| WO2018225821A1 (ja) | 2017-06-09 | 2018-12-13 | 日水製薬株式会社 | リステリア属検出用培地 |
| JP2020517292A (ja) * | 2017-04-26 | 2020-06-18 | ビオメリューＢｉｏｍｅｒｉｅｕｘ | 脱水多糖ヒドロゲルのシートを備える微生物培養デバイス |
| WO2021200927A1 (ja) | 2020-03-31 | 2021-10-07 | 日水製薬株式会社 | セレウス菌グループ検出用培地 |
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| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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| GB9625301D0 (en) * | 1996-12-05 | 1997-01-22 | Smith & Nephew | Cell-culture system |
| FI111011B (fi) * | 1997-01-15 | 2003-05-15 | Orion Yhtymae Oyj | Mikro-organismien kiinteä kasvualusta, sen valmistus ja käyttö |
| US6391578B2 (en) | 1997-04-09 | 2002-05-21 | 3M Innovative Properties Company | Method and devices for partitioning biological sample liquids into microvolumes |
| US6596532B1 (en) | 1997-12-12 | 2003-07-22 | BIOMéRIEUX, INC. | Device for isolation and surface culture of microorganisms from bulk fluids |
| US6174699B1 (en) | 1999-03-09 | 2001-01-16 | 3M Innovative Properties Company | Disc assay device with inoculation pad and methods of use |
| CA2525712A1 (en) * | 2003-05-15 | 2004-11-25 | Phytoculture Control Co., Ltd. | Organism-culture apparatus and culture method |
| KR100611108B1 (ko) * | 2005-01-13 | 2006-08-09 | 삼성전자주식회사 | 박막 형성 방법 |
| KR100829616B1 (ko) | 2006-12-27 | 2008-05-14 | 삼성전자주식회사 | 채널 실리콘막 형성 방법 및 이를 이용한 스택형 반도체소자 제조 방법 |
| US8906645B2 (en) | 2010-12-29 | 2014-12-09 | 3M Innovative Properties Company | Microbial detection article having a water-absorbent filter assembly |
| US9510808B2 (en) | 2012-03-30 | 2016-12-06 | Sca Hygiene Products Ab | Fluid sampling device and method for sampling |
| FR2993573B1 (fr) | 2012-07-20 | 2016-02-26 | Biomerieux Sa | Procede d'isolement de microorganismes sur un milieu de culture et dispositif associe |
| EP3724314A1 (en) | 2017-12-13 | 2020-10-21 | 3M Innovative Properties Company | Water-reconstitutable culture medium resistant to liquefaction by microorganisms |
| EP4109101A1 (en) * | 2021-06-24 | 2022-12-28 | Technische Universität München | Portable testing device for testing susceptibility of a biological probe to one or more bioactive substances |
Family Cites Families (10)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US2954327A (en) * | 1955-08-02 | 1960-09-27 | Kanz Ewald | Container for nutrient media |
| GB1502674A (en) * | 1974-04-25 | 1978-03-01 | Miles Lab | Microorganism culturing and testing apparatus |
| US4271270A (en) * | 1977-10-27 | 1981-06-02 | Lukacsek Patricia A | Apparatus for culturing and examining fungi |
| DE2932694C2 (de) * | 1979-08-11 | 1982-11-04 | Eberhard Dr. 4930 Detmold Breuker | Vorrichtung zum Erkennen von Mikroorganismen |
| US4280000A (en) * | 1980-01-07 | 1981-07-21 | Cummins, Kozak And Gillman | Method for obtaining mold spore material |
| DE3048799A1 (de) * | 1980-12-23 | 1982-07-08 | Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim | Reagenzstreifen fuer analytische zwecke |
| JPS57208997A (en) * | 1981-06-17 | 1982-12-22 | Fuji Photo Film Co Ltd | Liquid analyzing material for oxidase enzyme reaction system |
| WO1986002664A1 (en) * | 1984-10-29 | 1986-05-09 | Labor Für Experimentelle Chirurgie, Schweizerische | Method for the mass growth of cells and apparatus for the carrying out thereof |
| WO1987006955A1 (en) * | 1986-05-14 | 1987-11-19 | Life Technologies, Inc. | Plate screens |
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-
1992
- 1992-10-21 JP JP30761092A patent/JP3146078B2/ja not_active Expired - Fee Related
-
1993
- 1993-10-04 EP EP93922045A patent/EP0666322B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1993-10-04 US US08/284,506 patent/US5494823A/en not_active Expired - Lifetime
- 1993-10-04 WO PCT/JP1993/001440 patent/WO1994009151A1/ja active IP Right Grant
- 1993-10-04 DE DE69329117T patent/DE69329117T2/de not_active Expired - Lifetime
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| WO2021200927A1 (ja) | 2020-03-31 | 2021-10-07 | 日水製薬株式会社 | セレウス菌グループ検出用培地 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| EP0666322A1 (en) | 1995-08-09 |
| JP3146078B2 (ja) | 2001-03-12 |
| EP0666322B1 (en) | 2000-07-26 |
| DE69329117T2 (de) | 2000-12-14 |
| US5494823A (en) | 1996-02-27 |
| EP0666322A4 (en) | 1998-05-06 |
| DE69329117D1 (de) | 2000-08-31 |
| WO1994009151A1 (en) | 1994-04-28 |
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