JPH0549280B2 - - Google Patents
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- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/48—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving transferase
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- C12Q1/37—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving hydrolase involving peptidase or proteinase
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Description
本発明は新規な酵素活性測定法、測定のために
便利な組成物に関する。 本発明において酵素活性測定の対象となる酵素
はロイシンアミノトランスペプチダーゼ(以下、
LAPという)及びγ−グルタミルトランスペプ
チダーゼ(以下γ−GTPという)を意味する。 従来これらの酵素活性の測定法としてロイシン
又はグルタミン酸に発色性化合物もしくは他の化
合物と反応させることによつて発色しうる化合物
を結合させ、これを基質として酵素含有試料と反
応させて生成する発色化合物を直接定量するか、
生成化合物と上記他の化合物とを反応させて生成
する色素を定量する方法が知られている。 発色性化合物としてp−ニトロアニリド、β−
ナフチルアミド、4−ヒドロキシ−3−カルボキ
シアニリド、p−ヒドロキシアニリド、4−(N,
N−ジアルキルアミノ)−3−カルボキシアニリ
ド、4−(N,N−ジアルキルアミノ)アニリド
等が使用されている。 しかるにこれらの化合物の溶解度はせいぜい
6.5mg/mlで酵素反応の律速は基質の溶解速度に
支配される。又これらの基質を用いて生成する色
素を定量にするには紫外部での吸収による方法で
定量するため試料中の他の成分による影響が大き
く、又は強アルカリ下という危険な条件での反応
が必要となり、又生成色素の分子吸光係数が小さ
いため感度が悪く、酵素の反応時間を長くとらね
ばならず、結果として精度が悪くなる。 かかる欠点の少ない基質について検討の結果、
p−アミノアニリド系化合物のパラ位のアミノ基
にスルホノ基を有するアルキル基もしくはヒドロ
キシアルキル基が結合した化合物は、溶解性、色
素へ導いたときの色素の安定性がよく、分子吸光
係数が大きいので可視部の検出が可能である等の
優れた性質を有することが見い出された。 本発明によれば新規な基質は一般式() 〔式中Zは(CH3)2CHCH2CH(NH2)−(以下Z1
と略す)又は(NH2)(COOH)CH・CH2・
CH2−(以下Z2と略す)を示し、R1は水素、アル
キル又は置換アルキルを示し、R2はアルキレン
基又はヒドロキシアルキレン基を示し、R3、R4
は同一もしくは異なつてよく水素、ハロゲン、ニ
トロ、ヒドロキシル、スルホ、カルボキシル、ア
ルキル、シアノ、メトキシカルボニル又はアルコ
キシを示す)で表されるロイシン誘導体もしくは
グルタミン酸誘導体又はそれらの塩を包含する。 上記R1〜R4においてアルキルはメチル、エチ
ル、プロピル、ブチル、ペンチル等の炭素数1〜
5のアルキルを包含し、ハロゲンは塩素原子、臭
素原子、沃素原子を包含し、アルコキシにおける
アルキル部分は前記アルキルと同じ意義を有し、
アルキレン基は炭素数1〜5のアルキレン例えば
メチレン、エチレン、テトラメチレン、ペンタメ
チレンを包含し、ヒドロキシアルキレンにおける
アルキレンは前記アルキレンと同意義を有し、置
換アルキルにおける置換基はスルホ、ヒドロキシ
アリール、ニトロ、カレボシル、ハロゲン例えば
塩素原子、臭素原子等を包含する。 本発明の基質を用いて試料中のLAPあるいは
γ−GTP活性を精度よく求めることができる。
即ち、化合物()は試料中のLAP活性もしく
はγ−GTP活性に比例して分解され下記化合物
()が生成する。次いで酸化剤もしくは酸化酵
素の存在下に化合物()と発色化合物とを反応
させることによつて色素が生成する。色素の生成
により呈色した反応液を比色定量することにより
試料中の酸素活性が求められる。 化合物() 化合物()+発色化合物酸化剤又は酸化酵素 ―――――――――→ 色素 また上記化合物()をジアゾ化してジアゾニ
ウム塩に導びき、これを適当なカツプリング剤と
反応させてアゾ色素に導き反応液の呈色の変化を
測量することによつて酵素活性を求めることがで
きる。 さらに化合物()とケイ皮アルデヒドとを反
応させることによつて直接アゾ色素に導き反応液
の呈色の変化を測定することによつても酵素活性
を求めることができる。 化合物()は下記の方法によつて合成でき
る。 〔又はCl−R2−SO3H〕
()脱保護 ―――→ () Z′はZにおけるアミノ基がアミノ基の保護基で
及び/又はカルボキシル基がカルボキシル基の保
護基で保護された基を示し、保護基としては例え
ばペンジルオキシカルボニル基、第三ブトキシカ
ルボニル基(BOC)、アセチル等のアシル基等の
アミノ保護基、ベンジル基等のカルボキシル保護
基が用いられる。 化合物()の具体例としてはN−BOC−L
−ロイシン、N−BOC−L−グルタミン酸−α
−ベンジルエステル等があげられる。 化合物()としてはフエニレンジアミン或い
は目的物の置換基のR3、R4に応じた置換基を有
するフエニレンジアミン類が用いられる。 縮合剤としては例えばDCCが用いられる。 反応はジオキサン等有機溶媒中室温〜60℃で数
時間反応させる。反応混合物をそのままもしくは
化合物()を単離し、これをクロロホルム等の
有機溶媒に溶解し、化合物()を加えて常温〜
60℃で15〜30時間反応させる。 化合物()としては目的物の置換基R2に相
当する化合物が用いられ後述の参考例2に例示さ
れる。 反応後化合物()を分離し次いでアミノ基及
び/又はカルボキシル基の保護基をそれ自体公知
の手段で除去し目的物を得る。 発色化合物としてはアミン類例えばN,N−ジ
エチル−m−トルイジン、N−エチル−N−ヒド
ロキシエチル−m−トルイジン、N−エチル−N
−(3−メチルフエニル)−N′−アセチルエチレ
ンジアミン(EMAE)、N−エチル−N−(3−
メチルフエニル)−N′−サクシニルエチレンジア
ミン(EMSE)、N,N−ビス(3−スルホプロ
ピル)−m−トルイジン、N−エチル−N−(2−
ヒドロキシ−3−スルホプロピル)−m−トルイ
ジン(TOOS)、N,N−ジメチル−m−トルイ
ジン、N−エチル−N−(2−シアノエチル)−m
−トルイジン、N−(2−ヒドロキシ−3−スル
ホプロピル)−m−トルイジン等のトルイジン類
や、N−エチル−N−(3−スルホプロピル)−
3,5−ジメトキシアニリン、N−エチル−N−
(2−ヒドロキシ−3−スルホプロピル)−3,5
−ジメトキシアニリン、N−エチル−N−(3−
スルホプロピル)−3−メトキシアニリン、N−
エチル−N−(2−シアノエチル)−アニリン、
N,N−ジメチルアニリン、N,N−ジエチルア
ニリン等のアニリン誘導体が用いられ、又フエノ
ール類例えばフエノール、α−ナフトール、β−
ナフトール、o″−又はp−ブロムフエノール、
o″−又はm−アニソール、2,6−キシレノー
ル、3,5−キシレノール、2,5−キシレノー
ル、2,3−キシレノール、o又はm−クレゾー
ル等が用いられる。 これらのカツプリング剤は通常0.01〜5mg/ml
の濃度で用いられるが、溶解しにくいものについ
ては適宜、界面活性剤、例えばTritonX−100や
Brij−35、Brij−80を0.01〜2%の濃度で用いて
溶解させることができる。 酸化剤としては、メタ過ヨウ素酸ナトリウム
(又はカリウム)、過酸化水素、過マンガン酸カリ
ウム(又はナトリウム)、重クロム酸カリウム
(又はナトリウム)、メタバナジン酸ナトリウム
(又はカリウム)、ペンタシアノ鉄錯塩、等の無機
物の他、過酢酸などの過酸化物あるいは過酸化水
素−パ−オキシダーゼ(HRP)、セルロプラスミ
ン、ラツカーゼ(EC.1.10.3.2)等の酸化酵素が使
用できる。無機類は通常0.01〜10mg/mlの濃度
で、酵素類は0.1単位〜100単位/mlで用いられ
る。 又、ジアゾ化する試薬としては、通常の亜硝酸
塩(カリウム、ナトリウム、アンモニウム等)が
良く、ジアゾカツプリングさせる相手としてはフ
エノール、3,5−キシレノール等前記フエノー
ル類が使用できる。濃度は亜硝酸塩は0.1〜100
mg/ml、フエノール類は0.01〜100mg/mlで用い
られる。 又ケイ皮アルデヒドとしては、p−(N,N−
ジメチルアミノ)ケイ皮アルデヒド、p−(N,
N−ジメチルアミノ)ケイ皮アルデヒド等が0.01
〜100mg/mlの範囲で好適に用いられる。 本発明の基質及びその溶解度、生成色素の極大
波長、感度、安定性が第1、2表に示される。
便利な組成物に関する。 本発明において酵素活性測定の対象となる酵素
はロイシンアミノトランスペプチダーゼ(以下、
LAPという)及びγ−グルタミルトランスペプ
チダーゼ(以下γ−GTPという)を意味する。 従来これらの酵素活性の測定法としてロイシン
又はグルタミン酸に発色性化合物もしくは他の化
合物と反応させることによつて発色しうる化合物
を結合させ、これを基質として酵素含有試料と反
応させて生成する発色化合物を直接定量するか、
生成化合物と上記他の化合物とを反応させて生成
する色素を定量する方法が知られている。 発色性化合物としてp−ニトロアニリド、β−
ナフチルアミド、4−ヒドロキシ−3−カルボキ
シアニリド、p−ヒドロキシアニリド、4−(N,
N−ジアルキルアミノ)−3−カルボキシアニリ
ド、4−(N,N−ジアルキルアミノ)アニリド
等が使用されている。 しかるにこれらの化合物の溶解度はせいぜい
6.5mg/mlで酵素反応の律速は基質の溶解速度に
支配される。又これらの基質を用いて生成する色
素を定量にするには紫外部での吸収による方法で
定量するため試料中の他の成分による影響が大き
く、又は強アルカリ下という危険な条件での反応
が必要となり、又生成色素の分子吸光係数が小さ
いため感度が悪く、酵素の反応時間を長くとらね
ばならず、結果として精度が悪くなる。 かかる欠点の少ない基質について検討の結果、
p−アミノアニリド系化合物のパラ位のアミノ基
にスルホノ基を有するアルキル基もしくはヒドロ
キシアルキル基が結合した化合物は、溶解性、色
素へ導いたときの色素の安定性がよく、分子吸光
係数が大きいので可視部の検出が可能である等の
優れた性質を有することが見い出された。 本発明によれば新規な基質は一般式() 〔式中Zは(CH3)2CHCH2CH(NH2)−(以下Z1
と略す)又は(NH2)(COOH)CH・CH2・
CH2−(以下Z2と略す)を示し、R1は水素、アル
キル又は置換アルキルを示し、R2はアルキレン
基又はヒドロキシアルキレン基を示し、R3、R4
は同一もしくは異なつてよく水素、ハロゲン、ニ
トロ、ヒドロキシル、スルホ、カルボキシル、ア
ルキル、シアノ、メトキシカルボニル又はアルコ
キシを示す)で表されるロイシン誘導体もしくは
グルタミン酸誘導体又はそれらの塩を包含する。 上記R1〜R4においてアルキルはメチル、エチ
ル、プロピル、ブチル、ペンチル等の炭素数1〜
5のアルキルを包含し、ハロゲンは塩素原子、臭
素原子、沃素原子を包含し、アルコキシにおける
アルキル部分は前記アルキルと同じ意義を有し、
アルキレン基は炭素数1〜5のアルキレン例えば
メチレン、エチレン、テトラメチレン、ペンタメ
チレンを包含し、ヒドロキシアルキレンにおける
アルキレンは前記アルキレンと同意義を有し、置
換アルキルにおける置換基はスルホ、ヒドロキシ
アリール、ニトロ、カレボシル、ハロゲン例えば
塩素原子、臭素原子等を包含する。 本発明の基質を用いて試料中のLAPあるいは
γ−GTP活性を精度よく求めることができる。
即ち、化合物()は試料中のLAP活性もしく
はγ−GTP活性に比例して分解され下記化合物
()が生成する。次いで酸化剤もしくは酸化酵
素の存在下に化合物()と発色化合物とを反応
させることによつて色素が生成する。色素の生成
により呈色した反応液を比色定量することにより
試料中の酸素活性が求められる。 化合物() 化合物()+発色化合物酸化剤又は酸化酵素 ―――――――――→ 色素 また上記化合物()をジアゾ化してジアゾニ
ウム塩に導びき、これを適当なカツプリング剤と
反応させてアゾ色素に導き反応液の呈色の変化を
測量することによつて酵素活性を求めることがで
きる。 さらに化合物()とケイ皮アルデヒドとを反
応させることによつて直接アゾ色素に導き反応液
の呈色の変化を測定することによつても酵素活性
を求めることができる。 化合物()は下記の方法によつて合成でき
る。 〔又はCl−R2−SO3H〕
()脱保護 ―――→ () Z′はZにおけるアミノ基がアミノ基の保護基で
及び/又はカルボキシル基がカルボキシル基の保
護基で保護された基を示し、保護基としては例え
ばペンジルオキシカルボニル基、第三ブトキシカ
ルボニル基(BOC)、アセチル等のアシル基等の
アミノ保護基、ベンジル基等のカルボキシル保護
基が用いられる。 化合物()の具体例としてはN−BOC−L
−ロイシン、N−BOC−L−グルタミン酸−α
−ベンジルエステル等があげられる。 化合物()としてはフエニレンジアミン或い
は目的物の置換基のR3、R4に応じた置換基を有
するフエニレンジアミン類が用いられる。 縮合剤としては例えばDCCが用いられる。 反応はジオキサン等有機溶媒中室温〜60℃で数
時間反応させる。反応混合物をそのままもしくは
化合物()を単離し、これをクロロホルム等の
有機溶媒に溶解し、化合物()を加えて常温〜
60℃で15〜30時間反応させる。 化合物()としては目的物の置換基R2に相
当する化合物が用いられ後述の参考例2に例示さ
れる。 反応後化合物()を分離し次いでアミノ基及
び/又はカルボキシル基の保護基をそれ自体公知
の手段で除去し目的物を得る。 発色化合物としてはアミン類例えばN,N−ジ
エチル−m−トルイジン、N−エチル−N−ヒド
ロキシエチル−m−トルイジン、N−エチル−N
−(3−メチルフエニル)−N′−アセチルエチレ
ンジアミン(EMAE)、N−エチル−N−(3−
メチルフエニル)−N′−サクシニルエチレンジア
ミン(EMSE)、N,N−ビス(3−スルホプロ
ピル)−m−トルイジン、N−エチル−N−(2−
ヒドロキシ−3−スルホプロピル)−m−トルイ
ジン(TOOS)、N,N−ジメチル−m−トルイ
ジン、N−エチル−N−(2−シアノエチル)−m
−トルイジン、N−(2−ヒドロキシ−3−スル
ホプロピル)−m−トルイジン等のトルイジン類
や、N−エチル−N−(3−スルホプロピル)−
3,5−ジメトキシアニリン、N−エチル−N−
(2−ヒドロキシ−3−スルホプロピル)−3,5
−ジメトキシアニリン、N−エチル−N−(3−
スルホプロピル)−3−メトキシアニリン、N−
エチル−N−(2−シアノエチル)−アニリン、
N,N−ジメチルアニリン、N,N−ジエチルア
ニリン等のアニリン誘導体が用いられ、又フエノ
ール類例えばフエノール、α−ナフトール、β−
ナフトール、o″−又はp−ブロムフエノール、
o″−又はm−アニソール、2,6−キシレノー
ル、3,5−キシレノール、2,5−キシレノー
ル、2,3−キシレノール、o又はm−クレゾー
ル等が用いられる。 これらのカツプリング剤は通常0.01〜5mg/ml
の濃度で用いられるが、溶解しにくいものについ
ては適宜、界面活性剤、例えばTritonX−100や
Brij−35、Brij−80を0.01〜2%の濃度で用いて
溶解させることができる。 酸化剤としては、メタ過ヨウ素酸ナトリウム
(又はカリウム)、過酸化水素、過マンガン酸カリ
ウム(又はナトリウム)、重クロム酸カリウム
(又はナトリウム)、メタバナジン酸ナトリウム
(又はカリウム)、ペンタシアノ鉄錯塩、等の無機
物の他、過酢酸などの過酸化物あるいは過酸化水
素−パ−オキシダーゼ(HRP)、セルロプラスミ
ン、ラツカーゼ(EC.1.10.3.2)等の酸化酵素が使
用できる。無機類は通常0.01〜10mg/mlの濃度
で、酵素類は0.1単位〜100単位/mlで用いられ
る。 又、ジアゾ化する試薬としては、通常の亜硝酸
塩(カリウム、ナトリウム、アンモニウム等)が
良く、ジアゾカツプリングさせる相手としてはフ
エノール、3,5−キシレノール等前記フエノー
ル類が使用できる。濃度は亜硝酸塩は0.1〜100
mg/ml、フエノール類は0.01〜100mg/mlで用い
られる。 又ケイ皮アルデヒドとしては、p−(N,N−
ジメチルアミノ)ケイ皮アルデヒド、p−(N,
N−ジメチルアミノ)ケイ皮アルデヒド等が0.01
〜100mg/mlの範囲で好適に用いられる。 本発明の基質及びその溶解度、生成色素の極大
波長、感度、安定性が第1、2表に示される。
【表】
【表】
感度は、1mMの各遊離化合物50μを反応液3
mlに入れ、37℃で5分間反応、発色させた時の
λnaxに於ける吸光度を対照の5−アミノサリチル
酸の場合の吸光度(ただしこの場合は強アルカリ
中でメタ過ヨウ素酸により、2,6−キシレノ−
ルとカツプリングさせた)と比較し、5−アミノ
サリチル酸の場合を100として表わした。 前記反応液とは0.1Mリン酸緩衝液100mlに
EMSE50mg、ラツカーゼ100Uを溶解した液を意
味する。 以上述べたように、本発明方法によれば用いる
基質の水に対する溶解性が非常に優れているため
界面活性剤、有機溶媒等の溶解補助剤を特に必要
とせず、試薬の調製や操作が簡便で取扱い易く、
基質を十分に含む系に於いてγ−GTPやLAP活
性を国際単位で測定することができる。又血清成
分の影響を受けない560nm以上の高波長にλmax
を持つ、高感度で安定な色素を生成しうるため、
正確性、精密度のよい結果を得ることができるの
も大きな特徴である。 以下に本発明の態様を実施例によつて説明す
る。 実施例 1 100ml中に実施例4で得られる化合物3g、
EMSE50mg、硝酸マグネシウム100mg、Bicine(同
仁化学製ドータイトBicine)800mgラツカーゼ100
単位を含有する反応液(PH:7.3)3mlを分光光
度計用セル(1cm厚さ)に入れ10分間37℃で予備
加温する。この液に検体血清0.05mlを添加し、す
ばやく撹拌して分光光度計にセツトし、745nm
に於て吸光度の変化速度を測定する。1分間の変
化量を△Eとした時次式により検体中のLAP活
性は計算される。 LAP(IU/L)=△E×3.05×1000/7.2×0.05=△E×
847 又同時に同じ検体を (イ) L−ロイシル−3−カルボキシ−4−ヒドロ
キシアニリドを基質に使い酸化剤としてメタ過
ヨウ素酸ナトリウム・カツプリング相手にp−
キシレノールを用いるキツトを使つて波長
635nmで測定する。 (ロ) L−ロイシル−p−ニトロアニリドを基質に
使い、p−N,N−ジメチルアミノ)ケイ皮ア
ルデヒドとカツプリングさせるキツトを用い波
長565nmで測定する。 (ハ) L−ロイシル−p−(N,N−ジエチルアミ
ノ)アニリドを基質に使いメタ過ヨウ素酸を酸
化剤として、1−ナフトール−2−スルホン酸
とカツプリングさせるキツトを用い波長675n
mで測定する。 同量の血清を用いて1分間当りの吸光度の変
化量を測定し、次表に結果を示す。
mlに入れ、37℃で5分間反応、発色させた時の
λnaxに於ける吸光度を対照の5−アミノサリチル
酸の場合の吸光度(ただしこの場合は強アルカリ
中でメタ過ヨウ素酸により、2,6−キシレノ−
ルとカツプリングさせた)と比較し、5−アミノ
サリチル酸の場合を100として表わした。 前記反応液とは0.1Mリン酸緩衝液100mlに
EMSE50mg、ラツカーゼ100Uを溶解した液を意
味する。 以上述べたように、本発明方法によれば用いる
基質の水に対する溶解性が非常に優れているため
界面活性剤、有機溶媒等の溶解補助剤を特に必要
とせず、試薬の調製や操作が簡便で取扱い易く、
基質を十分に含む系に於いてγ−GTPやLAP活
性を国際単位で測定することができる。又血清成
分の影響を受けない560nm以上の高波長にλmax
を持つ、高感度で安定な色素を生成しうるため、
正確性、精密度のよい結果を得ることができるの
も大きな特徴である。 以下に本発明の態様を実施例によつて説明す
る。 実施例 1 100ml中に実施例4で得られる化合物3g、
EMSE50mg、硝酸マグネシウム100mg、Bicine(同
仁化学製ドータイトBicine)800mgラツカーゼ100
単位を含有する反応液(PH:7.3)3mlを分光光
度計用セル(1cm厚さ)に入れ10分間37℃で予備
加温する。この液に検体血清0.05mlを添加し、す
ばやく撹拌して分光光度計にセツトし、745nm
に於て吸光度の変化速度を測定する。1分間の変
化量を△Eとした時次式により検体中のLAP活
性は計算される。 LAP(IU/L)=△E×3.05×1000/7.2×0.05=△E×
847 又同時に同じ検体を (イ) L−ロイシル−3−カルボキシ−4−ヒドロ
キシアニリドを基質に使い酸化剤としてメタ過
ヨウ素酸ナトリウム・カツプリング相手にp−
キシレノールを用いるキツトを使つて波長
635nmで測定する。 (ロ) L−ロイシル−p−ニトロアニリドを基質に
使い、p−N,N−ジメチルアミノ)ケイ皮ア
ルデヒドとカツプリングさせるキツトを用い波
長565nmで測定する。 (ハ) L−ロイシル−p−(N,N−ジエチルアミ
ノ)アニリドを基質に使いメタ過ヨウ素酸を酸
化剤として、1−ナフトール−2−スルホン酸
とカツプリングさせるキツトを用い波長675n
mで測定する。 同量の血清を用いて1分間当りの吸光度の変
化量を測定し、次表に結果を示す。
【表】
【表】
本法の基質を用いた場合感度の点で非常に優れ
ており、(イ)の方法により約2.7倍、(ロ)より約3.5
倍、(ハ)より約6倍の吸光度変化が観測され、この
点についても、酵素に対する親和性、色素の感度
共すぐれていることを証明している。 実施例 2 実施例1において酸酵素を抜いた反応液を別途
作成して、反応液とする。反応液3mlを2本の試
験管にとり、37℃で10分間予備加温する。検体血
清0.05ml(もう一方に蒸留水0.05ml)を加えすば
やく撹拌して正確に37℃で10分間加温をつづけ
る、10分後ただちに (A) α−ナフトールのメタノール溶液(10mg/
ml)を0.03mlとメタ過ヨウ素酸ナトリウムを50
mg/ml含有する1規定NaOH溶液0.1mlを加え、
37℃で10分間加温し600nmで検体と蒸留水の
場合の吸光度差を測定する。 (B) p−(N,N−ジメチルアミノ)ケイ皮アル
デヒドの10mg/mlのエタノール溶液と0.4N−
HC溶液を1mlずつ加え37℃で10分間加温
し、570nmで検体と蒸留水の場合の吸光度差
を測定する。 (C) 1N−HCを0.5mlと亜硝酸ナトリウム1
mg/mlを0.5ml入れ、37℃で10分間放置し、そ
の後3,5−キシレノール1mg/ml(エタノー
ル溶液)を0.1mlを加え650nmで検体蒸留水と
の吸光度差を測定する。 以上(A)(B)(C)の結果は次表の通りである。
ており、(イ)の方法により約2.7倍、(ロ)より約3.5
倍、(ハ)より約6倍の吸光度変化が観測され、この
点についても、酵素に対する親和性、色素の感度
共すぐれていることを証明している。 実施例 2 実施例1において酸酵素を抜いた反応液を別途
作成して、反応液とする。反応液3mlを2本の試
験管にとり、37℃で10分間予備加温する。検体血
清0.05ml(もう一方に蒸留水0.05ml)を加えすば
やく撹拌して正確に37℃で10分間加温をつづけ
る、10分後ただちに (A) α−ナフトールのメタノール溶液(10mg/
ml)を0.03mlとメタ過ヨウ素酸ナトリウムを50
mg/ml含有する1規定NaOH溶液0.1mlを加え、
37℃で10分間加温し600nmで検体と蒸留水の
場合の吸光度差を測定する。 (B) p−(N,N−ジメチルアミノ)ケイ皮アル
デヒドの10mg/mlのエタノール溶液と0.4N−
HC溶液を1mlずつ加え37℃で10分間加温
し、570nmで検体と蒸留水の場合の吸光度差
を測定する。 (C) 1N−HCを0.5mlと亜硝酸ナトリウム1
mg/mlを0.5ml入れ、37℃で10分間放置し、そ
の後3,5−キシレノール1mg/ml(エタノー
ル溶液)を0.1mlを加え650nmで検体蒸留水と
の吸光度差を測定する。 以上(A)(B)(C)の結果は次表の通りである。
【表】
【表】
な感度で測定できる。
実施例 3 実施例1の反応液中の基質濃度を1mmo1/
ml、3mmo1/ml、5mmo1/ml、10mmo1/
ml、20mmo1/ml、30mmo1/ml、40mmo1/
ml、50mmo1/ml、60mmo1/ml、70mmo1/
ml、80mmo1/mlと変化させて、血清1について
吸光度の変化量を測定し、第1図の結果を得る。 10〜20mmo1/mlでは基質濃度によつてかなり
変化量が変化するが、60〜70mmo1/mlではほと
んど変化がない。 この様に基質量は多い程良いが本基質の様に溶
解性がよいものでなければVmaxに近い速度を得
ることはできない。 実施例 4 第3表に表した化合物No.1、3、5、7、9を
それぞれ500mg及びグリシルグリシン500mgを
0.1Mリン酸緩衝液100ml(PH=7.7)に溶解する。
この液をそれぞれA−1、A−3、A−5、A−
7、A−9とする。一方3−{N−(m−トリル)
−N−エチル}アミノ−2−ヒドロキシプロパン
スルホン酸50mgを100mlのリン酸緩衝液に溶解し
たものをBとし、1N−HC中にメタ過ヨウ素酸
ナトリウム(NaIO4)を50mg/ml含有する液をC
とする。 A−1、A−3、A−5、A−7、A−9各々
2mlを3本ずつ計15本の試験管に入れ、37℃で予
備加熱する。これに(イ)血清検体、(ロ)標準血清、(ハ)
水を20μg別々に加え撹拌後、正確に5分間加温
する。ちようど5分後にすべての試験管にBを1
ml、Cを1ml同時に加え、撹拌後、10分間呈色反
応を起こさせる。これを分光光度計で第2表に示
す波長で吸光度を測定し、標準血清は別途ヤトロ
ン社製、γ−GTP測定用キツト(イヤトロセツ
トγ−GTP)で測定し、235mU/mlであつた。 血清検体中のγ−GTP活性は (イ)の吸光度−(ハ)の吸光度 ―――――――――――――→ (ロ)の吸光度−(ハ)の吸光度×235(mU/ml) から計算されたそれぞれ231、228、236、240、
242mU/mlとなつた。 参考例 1 L−ロイシル−p−{N,N−ビス(スルホプ
ロピル)アミノ}アニリド臭化水素酸塩の製造 N−BOC−L−ロイシン(以下BLLという)
2.49gにジオキサン100mlを加えて溶解し、これ
にDCC4.12g、p−フエニレンジアミン(以下
PPDという)2.16gを入れ室温で4時間反応させ
る。沈殿を濾過し、濾液を減圧濃縮乾固する。メ
タノール/水=80/20(vo1/vo1)で再溶解し、
ダイヤイオンHP−20(三菱化成(株)製)でカラム
クロマトグラフイーを行う(溶出剤はメタノー
ル/水=80/20)。溶出液からメタノールを減圧
下除去すればN−BOC−L−ロイシン−p−ア
ミノアニリドを濾別する(収量1.25g)。 N−BOC−L−ロイシン−p−アミノアニリ
ド1gをクロロホルム50mlに溶解し、トリエチル
アミン2ml、1,3−プロパンサルトン5gを加
え50℃で一昼夜反応させる。さらにエチルエーテ
ル50mlを入れると、液が2相に分離する。下層を
分離し、これに酢酸5ml、25%臭化水素−酢酸溶
液20mlを入れ、室温で1時間内放置する。次いで
エチルエーテル50mlを入れるとBOC基が除去さ
れ、L−ロイシン−p−{N,N−ビス(スルホ
プロピル)アミノ}アニリド・HBrが沈殿する。
ガラスフイルターで濾過した後、これをメタノー
ル50mlに溶解し、6N−NaOHで中和し、生じる
NaClを濾過後、エチルエーテルを入れて再沈殿
させ、濾別して目的物0.63gを得る。
実施例 3 実施例1の反応液中の基質濃度を1mmo1/
ml、3mmo1/ml、5mmo1/ml、10mmo1/
ml、20mmo1/ml、30mmo1/ml、40mmo1/
ml、50mmo1/ml、60mmo1/ml、70mmo1/
ml、80mmo1/mlと変化させて、血清1について
吸光度の変化量を測定し、第1図の結果を得る。 10〜20mmo1/mlでは基質濃度によつてかなり
変化量が変化するが、60〜70mmo1/mlではほと
んど変化がない。 この様に基質量は多い程良いが本基質の様に溶
解性がよいものでなければVmaxに近い速度を得
ることはできない。 実施例 4 第3表に表した化合物No.1、3、5、7、9を
それぞれ500mg及びグリシルグリシン500mgを
0.1Mリン酸緩衝液100ml(PH=7.7)に溶解する。
この液をそれぞれA−1、A−3、A−5、A−
7、A−9とする。一方3−{N−(m−トリル)
−N−エチル}アミノ−2−ヒドロキシプロパン
スルホン酸50mgを100mlのリン酸緩衝液に溶解し
たものをBとし、1N−HC中にメタ過ヨウ素酸
ナトリウム(NaIO4)を50mg/ml含有する液をC
とする。 A−1、A−3、A−5、A−7、A−9各々
2mlを3本ずつ計15本の試験管に入れ、37℃で予
備加熱する。これに(イ)血清検体、(ロ)標準血清、(ハ)
水を20μg別々に加え撹拌後、正確に5分間加温
する。ちようど5分後にすべての試験管にBを1
ml、Cを1ml同時に加え、撹拌後、10分間呈色反
応を起こさせる。これを分光光度計で第2表に示
す波長で吸光度を測定し、標準血清は別途ヤトロ
ン社製、γ−GTP測定用キツト(イヤトロセツ
トγ−GTP)で測定し、235mU/mlであつた。 血清検体中のγ−GTP活性は (イ)の吸光度−(ハ)の吸光度 ―――――――――――――→ (ロ)の吸光度−(ハ)の吸光度×235(mU/ml) から計算されたそれぞれ231、228、236、240、
242mU/mlとなつた。 参考例 1 L−ロイシル−p−{N,N−ビス(スルホプ
ロピル)アミノ}アニリド臭化水素酸塩の製造 N−BOC−L−ロイシン(以下BLLという)
2.49gにジオキサン100mlを加えて溶解し、これ
にDCC4.12g、p−フエニレンジアミン(以下
PPDという)2.16gを入れ室温で4時間反応させ
る。沈殿を濾過し、濾液を減圧濃縮乾固する。メ
タノール/水=80/20(vo1/vo1)で再溶解し、
ダイヤイオンHP−20(三菱化成(株)製)でカラム
クロマトグラフイーを行う(溶出剤はメタノー
ル/水=80/20)。溶出液からメタノールを減圧
下除去すればN−BOC−L−ロイシン−p−ア
ミノアニリドを濾別する(収量1.25g)。 N−BOC−L−ロイシン−p−アミノアニリ
ド1gをクロロホルム50mlに溶解し、トリエチル
アミン2ml、1,3−プロパンサルトン5gを加
え50℃で一昼夜反応させる。さらにエチルエーテ
ル50mlを入れると、液が2相に分離する。下層を
分離し、これに酢酸5ml、25%臭化水素−酢酸溶
液20mlを入れ、室温で1時間内放置する。次いで
エチルエーテル50mlを入れるとBOC基が除去さ
れ、L−ロイシン−p−{N,N−ビス(スルホ
プロピル)アミノ}アニリド・HBrが沈殿する。
ガラスフイルターで濾過した後、これをメタノー
ル50mlに溶解し、6N−NaOHで中和し、生じる
NaClを濾過後、エチルエーテルを入れて再沈殿
させ、濾別して目的物0.63gを得る。
【表】
参考例 2
参考例1においてBLLの代りにN−BOC−L
−グルタミン酸−α−ベンジルエステル(BLGB
という)を、又はPPDの代りにクロル−PPD
(CLPPDという)、スルホーPPD(SPPD)、N−
メチル−PPD(NMPPD)、N−エチル−PPD
(NEPPD)、シアノ−PPD(CYPPD)、メチル−
PPD(MPPD)、メトキシカルボニル−PPD
(MCPPD)、2−メチル−5−メトキシ−PPD
(MOMPPD)を用いスルホン化剤としてプロパ
ンサルトン(PS)、2−クロルエタンスルホン酸
(CESA)、1,4−ブタンサルトン(BS)、3−
クロル−2−ヒドロキシ−プロパンスルホン酸
(CHPSA)を用いて反応させ第5表の化合物を
得る。
−グルタミン酸−α−ベンジルエステル(BLGB
という)を、又はPPDの代りにクロル−PPD
(CLPPDという)、スルホーPPD(SPPD)、N−
メチル−PPD(NMPPD)、N−エチル−PPD
(NEPPD)、シアノ−PPD(CYPPD)、メチル−
PPD(MPPD)、メトキシカルボニル−PPD
(MCPPD)、2−メチル−5−メトキシ−PPD
(MOMPPD)を用いスルホン化剤としてプロパ
ンサルトン(PS)、2−クロルエタンスルホン酸
(CESA)、1,4−ブタンサルトン(BS)、3−
クロル−2−ヒドロキシ−プロパンスルホン酸
(CHPSA)を用いて反応させ第5表の化合物を
得る。
【表】
第1図は本発明方法において用いる基質濃度を
変化(横軸)させたときの吸光度の変化(縦軸)
を示す。
変化(横軸)させたときの吸光度の変化(縦軸)
を示す。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 一般式() 〔式中R1は水素、アルキル又は置換アルキルを
示し、R2はアルキレン又はヒドロキシアルキレ
ンを示し、R3、R4は水素、アルキル、ハロゲン、
ニトロ、ヒドロキシル、スルホ、カルボキシル、
シアノ、メトキシカルボニル又はアルコキシを示
し、Zは(CH3)2CH−CH2−CH(NH2)−又は
−CH2−CH2−CH(NH2)COOHを示す〕で表
わされる化合物もしくはその塩〔以下化合物
()という〕にロイシンアミノトランスペプチ
ダーゼ(以下LAPという)又はγ−グルタミル
トランスペプチダーゼ(以下γ−GTPという)
を作用させて生成する化合物を色素に導き、色素
の生成速度を測定することを特徴とする酵素活性
の測定法。 2 化合物()とLAP又はγ−GTPとの反応
生成物と発色化合物とを酸化剤もしくは酸化酵素
の存在下に反応させて色素を生成させることを特
徴とする特許請求の範囲第1項記載の方法。 3 化合物()とLAP又はγ−GTPとの反応
生成物を必要に応じてジアゾ化し、次いでカツプ
リング剤と反応させてアゾ色素を生成させること
を特徴とする特許請求の範囲第1項記載の方法。 4 (イ)化合物()及び(ロ)(1)発色化合物、及び酸
化剤もしくは酸化酵素又は(2)ジアゾ化剤及びカツ
プリング剤からなるLAPもしくはγ−GTP定量
用組成物。
Priority Applications (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP59020194A JPS60164499A (ja) | 1984-02-07 | 1984-02-07 | 酵素活性測定法 |
DE8585300801T DE3586999T2 (de) | 1984-02-07 | 1985-02-06 | Verfahren zur bestimmung von leucinaminopeptidase (lap). |
EP85300801A EP0152274B1 (en) | 1984-02-07 | 1985-02-06 | Method for the determination of leucine aminopeptidase (lap) |
US07/248,347 US4877727A (en) | 1984-02-07 | 1988-09-20 | Substrate for determining leucine aminopeptidase or gamma-glutamyltranspeptase activity |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP59020194A JPS60164499A (ja) | 1984-02-07 | 1984-02-07 | 酵素活性測定法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS60164499A JPS60164499A (ja) | 1985-08-27 |
JPH0549280B2 true JPH0549280B2 (ja) | 1993-07-23 |
Family
ID=12020363
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP59020194A Granted JPS60164499A (ja) | 1984-02-07 | 1984-02-07 | 酵素活性測定法 |
Country Status (4)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4877727A (ja) |
EP (1) | EP0152274B1 (ja) |
JP (1) | JPS60164499A (ja) |
DE (1) | DE3586999T2 (ja) |
Families Citing this family (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2501801B2 (ja) * | 1986-10-07 | 1996-05-29 | ユニチカ株式会社 | γ−グルタミルトランスペプチダ−ゼ定量用試薬 |
JPH07114709B2 (ja) * | 1987-11-13 | 1995-12-13 | 協和メデックス株式会社 | 酵素活性の定量法 |
US5252458A (en) * | 1990-12-31 | 1993-10-12 | Symex Corp. | Method for visually detecting the presence of a virus in a clinical specimen |
US5344753A (en) * | 1992-06-01 | 1994-09-06 | Eastman Kodak Company | Dry analytical element and method for the detection of an aminopeptidase or transpeptidase |
US5741659A (en) * | 1996-01-04 | 1998-04-21 | The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy | Rapid microbial protease assay |
US5719020A (en) * | 1996-09-25 | 1998-02-17 | Oklahoma Medical Research Foundation | 4,7-dialkoxy N-acetylneuraminic acid derivatives and methods for detection of influenza type A and B viruses in clinical specimens |
US6303764B1 (en) | 1998-09-24 | 2001-10-16 | Zymetx, Inc. | Synthesis of 4,7-dialkyl chromogenic glycosides of N-acetylneuraminic acids |
US6420552B1 (en) | 1999-09-10 | 2002-07-16 | Zymetx, Inc. | Syntheses of 4-alkyl chromogenic glycosides and 7-alkyl chromogenic glycosides of N-acetylneuraminic acids |
EP2345636B1 (en) * | 2008-10-03 | 2016-03-30 | Ajinomoto Co., Inc. | Casr agonist |
Family Cites Families (12)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB1153561A (en) * | 1966-01-18 | 1969-05-29 | Agfa Gevaert Nv | Improvements relating to the Producion of Colour Images |
DE1673281C3 (de) * | 1967-08-28 | 1973-12-13 | Veb Arzneimittelwerk Dresden, X 8122 Radebeul | Verfahren zur Bestimmung von Leucinaminopeptidase |
GB1176968A (en) * | 1967-09-08 | 1970-01-07 | Dresden Arzneimittel | Composition for the Determination of Enzymes |
DE1931057C2 (de) * | 1969-06-19 | 1982-05-13 | Agfa-Gevaert Ag, 5090 Leverkusen | Verfahren zur Herstellung farbphotographischer Bilder |
US3971769A (en) * | 1970-01-19 | 1976-07-27 | Crompton & Knowles Corporation | Sulfoalkyl aminophenyl disazo dyes |
US4087331A (en) * | 1977-01-12 | 1978-05-02 | Coulter Electronics, Inc. | Colorimetric method for determining gamma-glutamyl transpeptidase and compositions useful therein |
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JPS56148299A (en) * | 1980-04-18 | 1981-11-17 | Toyobo Co Ltd | Measuring method for activity value of gamma-glutamyl transpeptidase |
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