JPH05320047A - 肝機能改善薬 - Google Patents
肝機能改善薬Info
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- JPH05320047A JPH05320047A JP4125242A JP12524292A JPH05320047A JP H05320047 A JPH05320047 A JP H05320047A JP 4125242 A JP4125242 A JP 4125242A JP 12524292 A JP12524292 A JP 12524292A JP H05320047 A JPH05320047 A JP H05320047A
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Abstract
(57)【要約】 （修正有）
【目的】 肝障害を改善する薬剤を提供する。
【構成】 下記式に示すリソスペルミン酸Ｂあるいはリ
ソスペルミン酸Ｂの塩、例えばマグネシウム塩、カリウ
ム塩、アンモニウム塩、カルシウム塩を有効成分として
薬剤を調製する。 〔式中、Ｍ２＋はＭｇ２＋、２Ｋ＋、２ＮＨ４ ＋あるい
はＣａ２＋を表す。〕
ソスペルミン酸Ｂの塩、例えばマグネシウム塩、カリウ
ム塩、アンモニウム塩、カルシウム塩を有効成分として
薬剤を調製する。 〔式中、Ｍ２＋はＭｇ２＋、２Ｋ＋、２ＮＨ４ ＋あるい
はＣａ２＋を表す。〕
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は肝機能改善薬に関し、詳
しくは丹参の根のエキスから分離精製されたリソスペル
ミン酸Ｂ及び／又はその医薬上許容される塩を有効成分
として含有する肝機能改善薬を提供するものである。
しくは丹参の根のエキスから分離精製されたリソスペル
ミン酸Ｂ及び／又はその医薬上許容される塩を有効成分
として含有する肝機能改善薬を提供するものである。
【０００２】
【従来の技術】和漢薬として使用される丹参（Salvia m
iltiorrhiza Bungeの根）エキスに関する研究から、そ
の有効成分であるリソスペルミン酸Ｂの立体化学構造が
明らかにされ、さらにリソスペルミン酸Ｂ及びその塩が
顕著な腎機能改善作用を有することが知られている（特
開平１−２６８６８２号）。
iltiorrhiza Bungeの根）エキスに関する研究から、そ
の有効成分であるリソスペルミン酸Ｂの立体化学構造が
明らかにされ、さらにリソスペルミン酸Ｂ及びその塩が
顕著な腎機能改善作用を有することが知られている（特
開平１−２６８６８２号）。
【０００３】また、このリソスペルミン酸Ｂ及びその塩
は、尿中のプロスタグランジンの量を増加させることが
報告されており、アラキドン酸カスケードに影響を与え
ることが示唆されている。
は、尿中のプロスタグランジンの量を増加させることが
報告されており、アラキドン酸カスケードに影響を与え
ることが示唆されている。
【０００４】一方、アラキドン酸のリポキシゲナーゼ系
代謝産物であるロイコトリエン（ＬＴ）は、炎症反応、
アレルギー反応のみでなく、免疫反応にも関与し、また
種々の肝疾患の病態形成に重要な役割を果たし、実験的
に誘導した肝細胞障害モデルに対してＬＴ合成阻害剤を
投与すると肝細胞障害が軽減されることが報告されてい
る(Mizoguchi, Y. et al. Gastroenterologia Jpn. 23,
263-267, 1988)。
代謝産物であるロイコトリエン（ＬＴ）は、炎症反応、
アレルギー反応のみでなく、免疫反応にも関与し、また
種々の肝疾患の病態形成に重要な役割を果たし、実験的
に誘導した肝細胞障害モデルに対してＬＴ合成阻害剤を
投与すると肝細胞障害が軽減されることが報告されてい
る(Mizoguchi, Y. et al. Gastroenterologia Jpn. 23,
263-267, 1988)。
【０００５】しかし、リソスペルミン酸Ｂ及びその塩の
肝機能の改善作用については知られていない。
肝機能の改善作用については知られていない。
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】従来の肝機能改善薬で
急性及び慢性肝障害のいずれにも有効な薬は知られてい
ない。また、薬理作用としてアラキドン酸カスケードに
おけるシクロオキシゲナーゼ系の反応を増強し、逆に５
−リポキシゲナーゼ系の反応を抑制するような薬も知ら
れていない。本発明は、以上の利点を有する急性及び慢
性肝障害の両方に対して有効な肝機能改善薬を提供する
ことを課題とする。
急性及び慢性肝障害のいずれにも有効な薬は知られてい
ない。また、薬理作用としてアラキドン酸カスケードに
おけるシクロオキシゲナーゼ系の反応を増強し、逆に５
−リポキシゲナーゼ系の反応を抑制するような薬も知ら
れていない。本発明は、以上の利点を有する急性及び慢
性肝障害の両方に対して有効な肝機能改善薬を提供する
ことを課題とする。
【０００７】
【課題を解決するための手段】本発明者は、リソスペル
ミン酸Ｂ及びその塩が、抗炎症作用及び抗線維化作用を
有することを見出し、本発明に至った。
ミン酸Ｂ及びその塩が、抗炎症作用及び抗線維化作用を
有することを見出し、本発明に至った。
【０００８】すなわち本発明は、化１で表されるリソス
ペルミン酸Ｂ及び／又はその薬理学上許容される塩を有
効成分として含有する肝機能改善薬である。以下、本発
明を詳細に説明する。
ペルミン酸Ｂ及び／又はその薬理学上許容される塩を有
効成分として含有する肝機能改善薬である。以下、本発
明を詳細に説明する。
【０００９】＜１＞本発明の肝機能改善薬 本発明の肝機能改善薬は、化１で表されるリソスペルミ
ン酸Ｂあるいはその薬理学上許容される塩を有効成分と
して含む。この塩としては、化２で表されるマグネシウ
ム塩、カリウム塩、アンモニウム塩、カルシウム塩等が
挙げられ、これらは単独でもあるいは任意の混合物とし
ても使用できる。
ン酸Ｂあるいはその薬理学上許容される塩を有効成分と
して含む。この塩としては、化２で表されるマグネシウ
ム塩、カリウム塩、アンモニウム塩、カルシウム塩等が
挙げられ、これらは単独でもあるいは任意の混合物とし
ても使用できる。
【００１０】これらの化合物は、そのままの形で薬剤と
して使用され、この場合の投与方法、投与量及び剤型は
次の通りである。投与方法は、経口投与あるいは注射の
いずれも選択できる。経口投与による投与量は患者の年
齢、症状によって異なるが、重症の場合を除き成人患者
１人に対し１日あたり５０〜１００ｍｇの範囲で用いる
ことにより所定の効果が期待できると考えられる。
して使用され、この場合の投与方法、投与量及び剤型は
次の通りである。投与方法は、経口投与あるいは注射の
いずれも選択できる。経口投与による投与量は患者の年
齢、症状によって異なるが、重症の場合を除き成人患者
１人に対し１日あたり５０〜１００ｍｇの範囲で用いる
ことにより所定の効果が期待できると考えられる。
【００１１】剤型としては、経口剤として薬剤学上許容
される乳糖、馬鈴薯デンプン、アルギン酸ナトリウム、
沈降炭酸カルシウム、アミノ酢酸、合成珪酸アルミニウ
ム、結晶セルロース等の賦形剤を配合することにより、
散剤、顆粒剤、錠剤、糖衣錠及びカプセル剤とすること
ができる。
される乳糖、馬鈴薯デンプン、アルギン酸ナトリウム、
沈降炭酸カルシウム、アミノ酢酸、合成珪酸アルミニウ
ム、結晶セルロース等の賦形剤を配合することにより、
散剤、顆粒剤、錠剤、糖衣錠及びカプセル剤とすること
ができる。
【００１２】また、リソスペルミン酸Ｂ塩は、水に易溶
性であることから、注射剤として通常、成人患者１人に
対し、１日あたり１〜１０ｍｇの範囲の投与量で用いる
ことにより本発明の効果が期待できると考えられる。こ
の場合は注射用蒸留水の他製剤上許容される生理食塩水
等の等張化剤、水酸化ナトリウム溶液等のｐＨ調整剤を
加えて注射剤とすることができる。
性であることから、注射剤として通常、成人患者１人に
対し、１日あたり１〜１０ｍｇの範囲の投与量で用いる
ことにより本発明の効果が期待できると考えられる。こ
の場合は注射用蒸留水の他製剤上許容される生理食塩水
等の等張化剤、水酸化ナトリウム溶液等のｐＨ調整剤を
加えて注射剤とすることができる。
【００１３】＜２＞リソスペルミン酸Ｂ及びその塩の製
造法 リソスペルミン酸Ｂ及びその塩は、例えば、特開平１−
２６８６８２号に開示されている製造方法により得られ
る。
造法 リソスペルミン酸Ｂ及びその塩は、例えば、特開平１−
２６８６８２号に開示されている製造方法により得られ
る。
【００１４】丹参の抽出液について、カラムクロマトグ
ラフィーによって所定の画分を分離することによって得
られる。即ち、例えば、丹参の抽出液をｐＨ２〜４に調
整した後、これをカラムクロマトグラフィーにかけ水で
洗滌し、次に酢酸マグネシウムまたは酢酸カルシウム等
の水溶液で洗う。再びカラムを水洗したのち含水メタノ
ールで溶出し、溶出画分を分取し、さらにこれを精製す
ることによりリソスペルミン酸Ｂ塩が得られる。
ラフィーによって所定の画分を分離することによって得
られる。即ち、例えば、丹参の抽出液をｐＨ２〜４に調
整した後、これをカラムクロマトグラフィーにかけ水で
洗滌し、次に酢酸マグネシウムまたは酢酸カルシウム等
の水溶液で洗う。再びカラムを水洗したのち含水メタノ
ールで溶出し、溶出画分を分取し、さらにこれを精製す
ることによりリソスペルミン酸Ｂ塩が得られる。
【００１５】また、同様に丹参の抽出液をカラムクロマ
トグラフィーにかけ薄層クロマトグラフィーでモニター
してメインスポットを含むフラクションを分取し、これ
を再び薄層クロマトグラフ法でモニターしてメインスポ
ットを含むフラクションをカラムクロマトグラフィーで
分画することによっても精製されたリソスペルミン酸Ｂ
マグネシウム塩及びリソスペルミン酸Ｂアンモニウム塩
が得られる。
トグラフィーにかけ薄層クロマトグラフィーでモニター
してメインスポットを含むフラクションを分取し、これ
を再び薄層クロマトグラフ法でモニターしてメインスポ
ットを含むフラクションをカラムクロマトグラフィーで
分画することによっても精製されたリソスペルミン酸Ｂ
マグネシウム塩及びリソスペルミン酸Ｂアンモニウム塩
が得られる。
【００１６】＜３＞肝機能改善作用の検討法 リソスペルミン酸Ｂ及びその塩の肝機能改善作用は、急
性肝障害の場合は血清トランスアミナーゼ活性の値を測
定する方法、及び肝組織の光顕的、電顕的観察によって
検討される。慢性肝障害の場合は、肝予備能の測定（血
清アルブミン、血清蛋白、コリンエステラーゼ活性等の
値）、肝組織の線維化（ハイドロキシプロリン含量、及
び光学顕微鏡あるいは電子顕微鏡観察等による肝組織学
的検討）を指標とした評価による方法等がある。
性肝障害の場合は血清トランスアミナーゼ活性の値を測
定する方法、及び肝組織の光顕的、電顕的観察によって
検討される。慢性肝障害の場合は、肝予備能の測定（血
清アルブミン、血清蛋白、コリンエステラーゼ活性等の
値）、肝組織の線維化（ハイドロキシプロリン含量、及
び光学顕微鏡あるいは電子顕微鏡観察等による肝組織学
的検討）を指標とした評価による方法等がある。
【００１７】
【作用】本発明の肝機能改善薬の有効成分であるリソス
ペルミン酸Ｂ及びその塩は、実験的に誘導した肝組織に
おけるロイコトリエンの合成を阻害し、逆にプロスタグ
ランジン産生を増加する。
ペルミン酸Ｂ及びその塩は、実験的に誘導した肝組織に
おけるロイコトリエンの合成を阻害し、逆にプロスタグ
ランジン産生を増加する。
【００１８】一般に実験的に誘導した肝不全において
は、アラキドン酸のリポキシゲナーゼ系代謝産物である
ロイコトリエンは障害的に働き、シクロオキシゲナーゼ
系の代謝産物であるプロスタグランジンは保護的に働く
と考えられている。
は、アラキドン酸のリポキシゲナーゼ系代謝産物である
ロイコトリエンは障害的に働き、シクロオキシゲナーゼ
系の代謝産物であるプロスタグランジンは保護的に働く
と考えられている。
【００１９】したがって、リソスペルミン酸Ｂ及びその
塩は肝障害を軽減、改善するものと考えられる。さら
に、リソスペルミン及びその塩は、肝コラーゲン量を低
減させ、肝線維化を軽減させる作用があり、この作用か
らも肝障害の改善効果を有する。
塩は肝障害を軽減、改善するものと考えられる。さら
に、リソスペルミン及びその塩は、肝コラーゲン量を低
減させ、肝線維化を軽減させる作用があり、この作用か
らも肝障害の改善効果を有する。
【００２０】
【実施例】以下、本発明の実施例及びリソスペルミン酸
Ｂ及びその塩の作用を示す実験例を説明する。
Ｂ及びその塩の作用を示す実験例を説明する。
【００２１】
【製造例】リソスペルミン酸Ｂマグネシウム塩の製造 丹参を水抽出し、その抽出液を塩酸でｐＨ３程度に調整
した後、ＭＣＩ−ｇｅｌ ＣＨＰ−２０Ｐカラムクロマ
トグラフィーに付し、リソスペルミン酸Ｂをカラム坦体
に吸着させた。水でカラムを洗滌後、０．１Ｍ酢酸マグ
ネシウム溶液を流し、再び水で洗滌し、続いて水−メタ
ノールのグラジエント溶出を行い、２０〜４０％メタノ
ールで溶出される塩化第２鉄試薬に陽性の画分を集めて
濃縮した。得られた画分をセファデックスＬＨ−２０を
用いたゲル濾過により精製し、リソスペルミン酸Ｂマグ
ネシウム塩を得た。収率は２〜３％であった。
した後、ＭＣＩ−ｇｅｌ ＣＨＰ−２０Ｐカラムクロマ
トグラフィーに付し、リソスペルミン酸Ｂをカラム坦体
に吸着させた。水でカラムを洗滌後、０．１Ｍ酢酸マグ
ネシウム溶液を流し、再び水で洗滌し、続いて水−メタ
ノールのグラジエント溶出を行い、２０〜４０％メタノ
ールで溶出される塩化第２鉄試薬に陽性の画分を集めて
濃縮した。得られた画分をセファデックスＬＨ−２０を
用いたゲル濾過により精製し、リソスペルミン酸Ｂマグ
ネシウム塩を得た。収率は２〜３％であった。
【００２２】
【実験例１】＜１＞リソスペルミン酸Ｂの５−リポキシ
ゲナーゼ活性に対する影響 アラキドン酸代謝系の誘導酵素である５−リポキシゲナ
ーゼ活性に対するリソスペルミン酸Ｂ塩の影響を調べ
た。
ゲナーゼ活性に対する影響 アラキドン酸代謝系の誘導酵素である５−リポキシゲナ
ーゼ活性に対するリソスペルミン酸Ｂ塩の影響を調べ
た。
【００２３】放射能標識したアラキドン酸の多核白血球
による代謝産物を以下のように測定
による代謝産物を以下のように測定
【００２４】した。 （１）ラット腹腔多核白血球浮遊液の調製法 ウィスター系雄性ラット（２２０〜２５０ｇ）の腹腔内
に１０ｍｌの滅菌した８％カゼインを注入した。１２〜
１４時間後に腹腔をハンクス溶液（ＨＢＳＳ）で潅流
し、腹腔多核白血球を採取した。この潅流液を低温遠心
し、細胞を集めた。これらの細胞を１０％のウシ胎児血
清（ＦＣＳ）、ストレプトマイシン１００μｇ／ｍｌ及
びペニシリン１００単位／ｍｌを含むＲＰＭＩ １６４
０培地で洗滌した後、同培地で希釈して、５×１０6個
／ｍｌの細胞浮遊液に調製した。こうして得られた細胞
の９０％以上が多核白血球であった。
に１０ｍｌの滅菌した８％カゼインを注入した。１２〜
１４時間後に腹腔をハンクス溶液（ＨＢＳＳ）で潅流
し、腹腔多核白血球を採取した。この潅流液を低温遠心
し、細胞を集めた。これらの細胞を１０％のウシ胎児血
清（ＦＣＳ）、ストレプトマイシン１００μｇ／ｍｌ及
びペニシリン１００単位／ｍｌを含むＲＰＭＩ １６４
０培地で洗滌した後、同培地で希釈して、５×１０6個
／ｍｌの細胞浮遊液に調製した。こうして得られた細胞
の９０％以上が多核白血球であった。
【００２５】（２）ラット腹腔多核白血球によるアラキ
ドン酸代謝に対するリソスペルミン酸Ｂの影響 前記で得られた腹腔多核白血球（５×１０6／ｍｌ）に
各種濃度のリソスペルミン酸Ｂマグネシウムを添加し
て、３７℃で２時間培養した。培養後、リン酸緩衝生理
食塩水（ＰＢＳ）で洗滌し、細胞濃度を２ｍＭ塩化カル
シウムを含むＰＢＳで５×１０6／ｍｌに調整した。こ
の細胞浮遊液に２５μｌ／ｍｌの［１−14Ｃ］−アラキ
ドン酸（１０4cpm／nmol／μｌ、メタノール溶液）、及
び５μｌ／ｍｌのカルシウムイオノフォアＡ２３１８７
（１ｍＭ エタノール溶液：以下ＣＡＩ）を添加し、さ
らに２０分間培養した。
ドン酸代謝に対するリソスペルミン酸Ｂの影響 前記で得られた腹腔多核白血球（５×１０6／ｍｌ）に
各種濃度のリソスペルミン酸Ｂマグネシウムを添加し
て、３７℃で２時間培養した。培養後、リン酸緩衝生理
食塩水（ＰＢＳ）で洗滌し、細胞濃度を２ｍＭ塩化カル
シウムを含むＰＢＳで５×１０6／ｍｌに調整した。こ
の細胞浮遊液に２５μｌ／ｍｌの［１−14Ｃ］−アラキ
ドン酸（１０4cpm／nmol／μｌ、メタノール溶液）、及
び５μｌ／ｍｌのカルシウムイオノフォアＡ２３１８７
（１ｍＭ エタノール溶液：以下ＣＡＩ）を添加し、さ
らに２０分間培養した。
【００２６】培養後、ギ酸を加えて反応液をｐＨ３に調
整し、２倍量のクロロホルムを添加してよく混和し、遠
心後クロロホルム相を蒸発濃縮した。これを、逆相高速
液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）で分析した。移動
相は、メタノール：水：酢酸＝７５：２５：０．０１、
流速は１ｍｌ／分とし、分析カラムはＴＳＫ−ゲル１２
０Ｔ（東ソー）を用い、溶出液の吸光度を２７０ｎｍと
２３５ｎｍで同時にモニーターした。結果を図１に示
す。
整し、２倍量のクロロホルムを添加してよく混和し、遠
心後クロロホルム相を蒸発濃縮した。これを、逆相高速
液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）で分析した。移動
相は、メタノール：水：酢酸＝７５：２５：０．０１、
流速は１ｍｌ／分とし、分析カラムはＴＳＫ−ゲル１２
０Ｔ（東ソー）を用い、溶出液の吸光度を２７０ｎｍと
２３５ｎｍで同時にモニーターした。結果を図１に示
す。
【００２７】また、カラムからの溶出液を３０秒毎に採
取して、各画分に含まれる放射活性を液体シンチレーシ
ョンカウンターで測定し、放射活性の比あるいは吸光度
のピークの面積比から、各産物の産出量の比を算出し
た。
取して、各画分に含まれる放射活性を液体シンチレーシ
ョンカウンターで測定し、放射活性の比あるいは吸光度
のピークの面積比から、各産物の産出量の比を算出し
た。
【００２８】また、コントロール群はリソスペルミン酸
Ｂマグネシウム非添加で同様に行った。その結果、アラ
キドン酸の代謝産物としてＬＴＢ4と５−ＨＥＴＥ（ヒ
ドロキシエイコサテトラエノイック酸）が主として生成
されることがわかり、これらは１０-8Ｍ程度のリソスペ
ルミン酸Ｂマグネシウム存在下では生成が抑制されるこ
とがわかった。
Ｂマグネシウム非添加で同様に行った。その結果、アラ
キドン酸の代謝産物としてＬＴＢ4と５−ＨＥＴＥ（ヒ
ドロキシエイコサテトラエノイック酸）が主として生成
されることがわかり、これらは１０-8Ｍ程度のリソスペ
ルミン酸Ｂマグネシウム存在下では生成が抑制されるこ
とがわかった。
【００２９】また、リソスペルミン酸Ｂマグネシウムの
濃度を変えて同様に実験を行い、ＬＴＢ4と５−ＨＥＴ
Ｅの生成量から５−リポキシゲナーゼ活性を測定したと
ころ、図２に示したように、リソスペルミン酸Ｂマグネ
シウムにより活性が抑制されることがわかった。
濃度を変えて同様に実験を行い、ＬＴＢ4と５−ＨＥＴ
Ｅの生成量から５−リポキシゲナーゼ活性を測定したと
ころ、図２に示したように、リソスペルミン酸Ｂマグネ
シウムにより活性が抑制されることがわかった。
【００３０】（３）腹腔多核白血球の５−リポキシゲナ
ーゼ活性に及ぼすリソスペルミン酸Ｂマグネシウム影響 次に、腹腔多核白血球の破砕液の遠心上清を酵素液とし
て同様の実験を行った。上記と同様にして調製した腹腔
多核白血球を、２ｍＭ塩化カルシウムを含むＰＢＳで５
×１０7／ｍｌに調製し、超音波破砕（Branson sonicat
or model ３５０Ｓを使用）した後、１００００×ｇ、
４℃で１０分遠心し、得られた上清を５−リポキシゲナ
ーゼ酵素液とした。
ーゼ活性に及ぼすリソスペルミン酸Ｂマグネシウム影響 次に、腹腔多核白血球の破砕液の遠心上清を酵素液とし
て同様の実験を行った。上記と同様にして調製した腹腔
多核白血球を、２ｍＭ塩化カルシウムを含むＰＢＳで５
×１０7／ｍｌに調製し、超音波破砕（Branson sonicat
or model ３５０Ｓを使用）した後、１００００×ｇ、
４℃で１０分遠心し、得られた上清を５−リポキシゲナ
ーゼ酵素液とした。
【００３１】この酵素液１００μｌに２ｍＭ ＡＴＰ、
２ｍＭ塩化カルシウムを含む０．０５Ｍのトリス塩酸緩
衝液（ｐＨ７．５）及び各種濃度のリソスペルミン酸Ｂ
マグネシウムを加えて３７℃で５分間培養した後、［１
−14Ｃ］−アラキドン酸５μｌ（１０5cpm／nmol／μｌ
エタノール溶液）を添加し、３０℃で３分間培養した。
培養後、反応停止液（ジエチルエーテル：メタノール：
１Ｍクエン酸＝３０：４：１）３００μｌを加えて充分
混和し、遠心（３０００ｒｐｍ．、４℃、１５分）にて
除タンパクし、その上清を得た。この上清を蒸発濃縮さ
せ、メタノール５０μｌに溶解させ、逆相ＨＰＬＣにか
け、５−リポキシゲナーゼ産物を測定した。また、コン
トロール群はリソスペルミン酸Ｂマグネシウム非添加で
同様に測定した。
２ｍＭ塩化カルシウムを含む０．０５Ｍのトリス塩酸緩
衝液（ｐＨ７．５）及び各種濃度のリソスペルミン酸Ｂ
マグネシウムを加えて３７℃で５分間培養した後、［１
−14Ｃ］−アラキドン酸５μｌ（１０5cpm／nmol／μｌ
エタノール溶液）を添加し、３０℃で３分間培養した。
培養後、反応停止液（ジエチルエーテル：メタノール：
１Ｍクエン酸＝３０：４：１）３００μｌを加えて充分
混和し、遠心（３０００ｒｐｍ．、４℃、１５分）にて
除タンパクし、その上清を得た。この上清を蒸発濃縮さ
せ、メタノール５０μｌに溶解させ、逆相ＨＰＬＣにか
け、５−リポキシゲナーゼ産物を測定した。また、コン
トロール群はリソスペルミン酸Ｂマグネシウム非添加で
同様に測定した。
【００３２】その結果、リソスペルミン酸Ｂマグネシウ
ム非添加では主要生成物は５−ＨＥＴＥであった（図
３）。さらに、この５−ＨＥＴＥの生成はリソスペルミ
ン酸Ｂマグネシウムにより抑制されることがわかった。
ム非添加では主要生成物は５−ＨＥＴＥであった（図
３）。さらに、この５−ＨＥＴＥの生成はリソスペルミ
ン酸Ｂマグネシウムにより抑制されることがわかった。
【００３３】そこで、腹腔多核白血球浮遊液に直接各種
濃度のリソスペルミン酸Ｂマグネシウムを添加し、前記
と同様の方法で５−ＨＥＴＥを定量したところ、表１に
示したように、ラット腹腔多核白血球の５−リポキシゲ
ナーゼ活性はリソスペルミン酸Ｂマグネシウムにより抑
制されることがわかった。
濃度のリソスペルミン酸Ｂマグネシウムを添加し、前記
と同様の方法で５−ＨＥＴＥを定量したところ、表１に
示したように、ラット腹腔多核白血球の５−リポキシゲ
ナーゼ活性はリソスペルミン酸Ｂマグネシウムにより抑
制されることがわかった。
【００３４】
【表１】
【００３５】以上の結果から、リソスペルミン酸Ｂマグ
ネシウムは、腹腔多核白血球のロイコトリエン産生及び
５−リポキシゲナーゼ活性を抑制することが明らかとな
った。
ネシウムは、腹腔多核白血球のロイコトリエン産生及び
５−リポキシゲナーゼ活性を抑制することが明らかとな
った。
【００３６】
【実験例２】次に、急性肝細胞障害を持つ実験動物を用
いて、リソスペルミン酸Ｂマグネシウムが急性肝障害に
及ぼす影響を調べた。
いて、リソスペルミン酸Ｂマグネシウムが急性肝障害に
及ぼす影響を調べた。
【００３７】＜１＞Ｄ−ガラクトサミン肝細胞障害モデ
ルの誘導 ウィスター系雄ラット（１７０〜１８０ｇ）に、Ｄ−ガ
ラクトサミン（和光純薬から購入）を７００ｍｇ／ｋｇ
とリポ多糖類（ＬＳＰ、Salmonella enteritidis由来、
Ｄｉｆｃｏ社から購入）を１μｇ／ラットの割合で投与
した。
ルの誘導 ウィスター系雄ラット（１７０〜１８０ｇ）に、Ｄ−ガ
ラクトサミン（和光純薬から購入）を７００ｍｇ／ｋｇ
とリポ多糖類（ＬＳＰ、Salmonella enteritidis由来、
Ｄｉｆｃｏ社から購入）を１μｇ／ラットの割合で投与
した。
【００３８】投与４時間後に、ラットをエーテル麻酔下
で開腹し、下大静脈から採血し、血清トランスアミナー
ゼ値を測定するのと同時に肝組織を取り、肝組織を光顕
的に検討した。
で開腹し、下大静脈から採血し、血清トランスアミナー
ゼ値を測定するのと同時に肝組織を取り、肝組織を光顕
的に検討した。
【００３９】さらに、肝浸潤多核白血球を分離した。ま
た、リソスペルミン酸Ｂマグネシウムの影響を検討する
場合は、リソスペルミン酸Ｂマグネシウムを１０ｍｇ／
ｋｇ体重の割で経口投与した。
た、リソスペルミン酸Ｂマグネシウムの影響を検討する
場合は、リソスペルミン酸Ｂマグネシウムを１０ｍｇ／
ｋｇ体重の割で経口投与した。
【００４０】＜２＞血清トランスアミナーゼに及ぼすリ
ソスペルミン酸Ｂマグネシウムの影響投与後４時間後
に、ラットをエーテル麻酔下で開腹し、下大静脈から採
血し、血清トランスアミナーゼ値を測定した。ＡＬＴ
（アラニン・トランスアミナーゼ）値と血清ＡＳＴ（ア
スパラギン酸トランスアミナーゼ）値を表２に示す。
ソスペルミン酸Ｂマグネシウムの影響投与後４時間後
に、ラットをエーテル麻酔下で開腹し、下大静脈から採
血し、血清トランスアミナーゼ値を測定した。ＡＬＴ
（アラニン・トランスアミナーゼ）値と血清ＡＳＴ（ア
スパラギン酸トランスアミナーゼ）値を表２に示す。
【００４１】
【表２】
【００４２】この結果から、リソスペルミン酸Ｂマグネ
シウムは血清トランスアミナーゼ値の上昇を抑制するこ
とがわかった。
シウムは血清トランスアミナーゼ値の上昇を抑制するこ
とがわかった。
【００４３】＜３＞肝の組織学的検討 肝組織をホルマリンで固定し、ヘマトキシリン・エオシ
ン染色を施し、光顕的に検索した。
ン染色を施し、光顕的に検索した。
【００４４】その結果、リソスペルミン酸Ｂマグネシウ
ム非投与群では肝細胞の染色性の低下及び空砲変性が認
められた。さらに、グリソン鞘周囲の細胞壊死及び単核
細胞の浸潤が観察された。
ム非投与群では肝細胞の染色性の低下及び空砲変性が認
められた。さらに、グリソン鞘周囲の細胞壊死及び単核
細胞の浸潤が観察された。
【００４５】一方、リソスペルミン酸Ｂマグネシウム投
与群では単核細胞の浸潤は認められるが、肝細胞の壊死
や変性はほとんど観察できなかった。
与群では単核細胞の浸潤は認められるが、肝細胞の壊死
や変性はほとんど観察できなかった。
【００４６】＜４＞肝浸潤多核白血球の産出するプロス
タグランジン（ＰＧ）に及ぼす影響 （１）ラット肝浸潤多核白血球の分離 ラットの腹腔内にペントバルビタールを注入して麻酔
後、開腹して門脈を露出し、１８ゲージの留置針を挿入
した。この針を通してペリスタポンプを用い、カルシウ
ムを含まないＮ−２−ヒドロキシエチルピペラジン−
Ｎ’−２−エタンスルホン酸カルシウム（ＨＥＰＥＳ、
Ｓｉｇｍａ社）加ハンクス液（ＨＢＳＳ）溶液１００ｍ
ｌを流し、続いて０．０５％コラゲナーゼ（タイプＩ
Ｖ、和光純薬）を含有したＨＥＰＥＳ加ＨＢＳＳ１００
ｍｌ、さらに０．０５％プロナーゼＥを含有したＨＥＰ
ＥＳ加ＨＢＳＳ溶液５０ｍｌをそれぞれ流速１２ｍｌ／
分で流した。
タグランジン（ＰＧ）に及ぼす影響 （１）ラット肝浸潤多核白血球の分離 ラットの腹腔内にペントバルビタールを注入して麻酔
後、開腹して門脈を露出し、１８ゲージの留置針を挿入
した。この針を通してペリスタポンプを用い、カルシウ
ムを含まないＮ−２−ヒドロキシエチルピペラジン−
Ｎ’−２−エタンスルホン酸カルシウム（ＨＥＰＥＳ、
Ｓｉｇｍａ社）加ハンクス液（ＨＢＳＳ）溶液１００ｍ
ｌを流し、続いて０．０５％コラゲナーゼ（タイプＩ
Ｖ、和光純薬）を含有したＨＥＰＥＳ加ＨＢＳＳ１００
ｍｌ、さらに０．０５％プロナーゼＥを含有したＨＥＰ
ＥＳ加ＨＢＳＳ溶液５０ｍｌをそれぞれ流速１２ｍｌ／
分で流した。
【００４７】潅流後、肝臓を取り出して眼科ハサミで細
切りし、０．０５％プロナーゼＥを含有したＨＥＰＥＳ
加ＨＢＳＳ溶液５０ｍｌ中に入れて３７℃で２０分振盪
して肝実質細胞を消化した。
切りし、０．０５％プロナーゼＥを含有したＨＥＰＥＳ
加ＨＢＳＳ溶液５０ｍｌ中に入れて３７℃で２０分振盪
して肝実質細胞を消化した。
【００４８】未消化物をガーゼで濾過した後、遠心（４
００×Ｇ、３分、４℃）により肝細胞を取り除き、混入
している赤血球を低浸透圧処理にて溶血させた。得られ
た細胞ペレットをＨＢＳＳでさらに３回洗滌した後、以
下の実験に供した。
００×Ｇ、３分、４℃）により肝細胞を取り除き、混入
している赤血球を低浸透圧処理にて溶血させた。得られ
た細胞ペレットをＨＢＳＳでさらに３回洗滌した後、以
下の実験に供した。
【００４９】（２）プロスタグランジン（ＰＧ）の測定 上記のように分離した肝浸潤多核白血球を２ｍＭの塩化
カルシウムを含むＰＢＳに浮遊させ、細胞濃度を１×１
０7細胞／ｍｌに調整した。
カルシウムを含むＰＢＳに浮遊させ、細胞濃度を１×１
０7細胞／ｍｌに調整した。
【００５０】この細胞浮遊液に２５μｌ／ｍｌの［１−
14Ｃ］−アラキドン酸（１０4ｃｐｍ／ｎＭ／μｌ、エ
タノール溶液）及び５μｌ／ｍｌのＣａΙを添加して、
３０分間培養した。
14Ｃ］−アラキドン酸（１０4ｃｐｍ／ｎＭ／μｌ、エ
タノール溶液）及び５μｌ／ｍｌのＣａΙを添加して、
３０分間培養した。
【００５１】反応終了後、ギ酸を加えて反応溶液をｐＨ
３．０に調整し、２倍量のクロロホルムを添加して充分
に混和した。この溶液を遠心（１５００×Ｇ、１０分、
４℃）し、クロロホルム相を分取して、蒸発、濃縮し
た。次いで、逆相ＨＰＬＣの移動相（アセトニトリル：
水：リン酸＝３３：６７：０．１）を流速１．０ｍｌ／
分で流し、分析カラム（ＴＳＫ−ゲル １２０Ｔ、東ソ
ー）を用い、溶出液の吸光度を１９５ｎｍでモニターす
ることにより、生成するシクロオキシゲナーゼ産物を解
析した。
３．０に調整し、２倍量のクロロホルムを添加して充分
に混和した。この溶液を遠心（１５００×Ｇ、１０分、
４℃）し、クロロホルム相を分取して、蒸発、濃縮し
た。次いで、逆相ＨＰＬＣの移動相（アセトニトリル：
水：リン酸＝３３：６７：０．１）を流速１．０ｍｌ／
分で流し、分析カラム（ＴＳＫ−ゲル １２０Ｔ、東ソ
ー）を用い、溶出液の吸光度を１９５ｎｍでモニターす
ることにより、生成するシクロオキシゲナーゼ産物を解
析した。
【００５２】同時に、カラムの溶出液を３０秒ごとに採
取して、各分画に含まれる放射活性を液体シンチレーシ
ョンカウンターで測定することより、プロスタグランジ
ンの量を定量した。
取して、各分画に含まれる放射活性を液体シンチレーシ
ョンカウンターで測定することより、プロスタグランジ
ンの量を定量した。
【００５３】なお、リソスペルミン酸Ｂマグネシウムの
影響を見る場合は、肝浸潤多核白血球を各種濃度のリソ
スペルミン酸Ｂマグネシウム存在下で２時間培養した後
に同様の方法でサンプルを採取した。
影響を見る場合は、肝浸潤多核白血球を各種濃度のリソ
スペルミン酸Ｂマグネシウム存在下で２時間培養した後
に同様の方法でサンプルを採取した。
【００５４】その結果、図４、５に示すように、正常ラ
ットの肝非実質細胞はＰＧＤ2、ＰＧＦ2α、６−ケト−
ＰＧＦ1α、ＰＧＥ2、ＴＸＢ2を産生することが確認で
きた。 正常ラットに比べ、肝障害ラットではすべての
プロスタグランジン及びＴＸＢ2の量が有意に減少して
いた。一方、リソスペルミン酸Ｂマグネシウムを投与し
た肝障害ラットでは、ＰＧＤ2及び６−ケト−ＰＧＦ1α
量は、非投与群に比べて有意に増加した。
ットの肝非実質細胞はＰＧＤ2、ＰＧＦ2α、６−ケト−
ＰＧＦ1α、ＰＧＥ2、ＴＸＢ2を産生することが確認で
きた。 正常ラットに比べ、肝障害ラットではすべての
プロスタグランジン及びＴＸＢ2の量が有意に減少して
いた。一方、リソスペルミン酸Ｂマグネシウムを投与し
た肝障害ラットでは、ＰＧＤ2及び６−ケト−ＰＧＦ1α
量は、非投与群に比べて有意に増加した。
【００５５】以上の結果から、リソスペルミン酸Ｂマグ
ネシウムは、Ｄ−ガラクトサミンによる急性肝障害の誘
導を抑制し、さらに肝浸潤白血球からのプロスタグラン
ジン産生低下を抑制し、換言すれば、プロスタグランジ
ンの産生を増強させることが明らかとなった。
ネシウムは、Ｄ−ガラクトサミンによる急性肝障害の誘
導を抑制し、さらに肝浸潤白血球からのプロスタグラン
ジン産生低下を抑制し、換言すれば、プロスタグランジ
ンの産生を増強させることが明らかとなった。
【００５６】
【実験例３】次に、慢性肝障害モデルを用いて、リソス
ペルミン酸Ｂマグネシウムの肝障害に対する影響を調べ
た。
ペルミン酸Ｂマグネシウムの肝障害に対する影響を調べ
た。
【００５７】＜１＞四塩化炭素肝障害モデルの誘導 ウィスター系雄性ラット（１７０−１８０ｇ）に最初は
０．５ｍｌ／体重の１００％四塩化炭素（和光純薬から
購入）を皮下注射し、２回目からは４０％四塩化炭素
（オリーブ油に溶解）を０．３ｍｌ／体重、週３回皮下
注射した。
０．５ｍｌ／体重の１００％四塩化炭素（和光純薬から
購入）を皮下注射し、２回目からは４０％四塩化炭素
（オリーブ油に溶解）を０．３ｍｌ／体重、週３回皮下
注射した。
【００５８】７週間後に血清トランスアミナーゼを測定
すると同時に肝組織中のヒドロキシプロリン量及び肝組
織を光顕的に検討した。さらに、肝浸潤多核白血球を分
離した。
すると同時に肝組織中のヒドロキシプロリン量及び肝組
織を光顕的に検討した。さらに、肝浸潤多核白血球を分
離した。
【００５９】リソスペルミン酸Ｂマグネシウムの影響を
検討する場合は、リソスペルミン酸Ｂマグネシウムを１
０ｍｇ／ｋｇ体重一日に一回経口投与した。
検討する場合は、リソスペルミン酸Ｂマグネシウムを１
０ｍｇ／ｋｇ体重一日に一回経口投与した。
【００６０】＜２＞血清トランスアミナーゼに及ぼすリ
ソスペルミン酸Ｂマグネシウムの影響 実験例１と同様に、血清トランスアミナーゼ値を測定し
た。血清ＡＬＴ値と血清ＡＳＴ値を表３に示す。
ソスペルミン酸Ｂマグネシウムの影響 実験例１と同様に、血清トランスアミナーゼ値を測定し
た。血清ＡＬＴ値と血清ＡＳＴ値を表３に示す。
【００６１】
【表３】
【００６２】この結果から明らかなように、血清トラン
スアミナーゼ値、特に血清ＡＳＴ値の上昇は抑制され
た。
スアミナーゼ値、特に血清ＡＳＴ値の上昇は抑制され
た。
【００６３】＜３＞肝の組織学的検討 肝組織をホルマリンで固定し、ヘマトキシン・エオシン
染色とアザン・マロリー染色を施行し、光顕的に検索し
た。
染色とアザン・マロリー染色を施行し、光顕的に検索し
た。
【００６４】その結果、ヘマトキシン・エオシン染色を
施したリソスペルミン酸Ｂマグネシウム非投与群では、
肝組織においては脂肪沈着並びにグリソン鞘周辺域から
小葉内にかけてのブリッジングネクロシスを含む壊死が
認められた。一方、リソスペルミン酸Ｂマグネシウム投
与群では脂肪沈着並びに小葉内のフォカルネクロシスの
所見は認められたが非投与群と比較して壊死の程度は軽
かった。
施したリソスペルミン酸Ｂマグネシウム非投与群では、
肝組織においては脂肪沈着並びにグリソン鞘周辺域から
小葉内にかけてのブリッジングネクロシスを含む壊死が
認められた。一方、リソスペルミン酸Ｂマグネシウム投
与群では脂肪沈着並びに小葉内のフォカルネクロシスの
所見は認められたが非投与群と比較して壊死の程度は軽
かった。
【００６５】また、アザン・マロリー染色で検討する
と、リソスペルミン酸Ｂマグネシウム非投与群ではブリ
ッジングフィブロシス並びにペリセリュラーフィブロシ
スといった高度な繊維化が認められた。一方、リソスペ
ルミン酸Ｂマグネシウム投与群ではグリソン鞘から星帽
状に伸びた軽度の繊維化が認められるにすぎなかった。
と、リソスペルミン酸Ｂマグネシウム非投与群ではブリ
ッジングフィブロシス並びにペリセリュラーフィブロシ
スといった高度な繊維化が認められた。一方、リソスペ
ルミン酸Ｂマグネシウム投与群ではグリソン鞘から星帽
状に伸びた軽度の繊維化が認められるにすぎなかった。
【００６６】＜４＞肝浸潤多核白血球の産出するプロス
タグランジンに及ぼす影響 実験例２と同様にしてラット肝浸潤多核白血球を分離
し、ブロスタグランジン産生の解析を行った。
タグランジンに及ぼす影響 実験例２と同様にしてラット肝浸潤多核白血球を分離
し、ブロスタグランジン産生の解析を行った。
【００６７】その結果、図６、７に示すように、正常ラ
ットの肝非実質細胞はＰＧＤ2、ＰＧＦ2α、６−ケト−
ＰＧＦ1α、ＰＧＥ2、ＴＸＢ2を産生することが確認さ
れた。
ットの肝非実質細胞はＰＧＤ2、ＰＧＦ2α、６−ケト−
ＰＧＦ1α、ＰＧＥ2、ＴＸＢ2を産生することが確認さ
れた。
【００６８】特に、正常ラットの肝非実質細胞はＰＧＤ
2及びＴＸＢ2を主として産生し、さらにＵＶ−吸光度の
ピークと放射活性のピークが一致した。一方、肝障害ラ
ットではすべてのプロスタグランジン及びＴＸＢ2の量
が有意に減少していた。しかし、リソスペルミン酸Ｂマ
グネシウムを投与した肝障害ラットでは、ＰＧＤ2及び
ＴＸＢ2量は、非投与群に比べて有意に増加し、その結
果、全体のプロスタグランジンの量は著明に産生低下を
抑制した。
2及びＴＸＢ2を主として産生し、さらにＵＶ−吸光度の
ピークと放射活性のピークが一致した。一方、肝障害ラ
ットではすべてのプロスタグランジン及びＴＸＢ2の量
が有意に減少していた。しかし、リソスペルミン酸Ｂマ
グネシウムを投与した肝障害ラットでは、ＰＧＤ2及び
ＴＸＢ2量は、非投与群に比べて有意に増加し、その結
果、全体のプロスタグランジンの量は著明に産生低下を
抑制した。
【００６９】＜５＞肝組織中の肝コラーゲン量に及ぼす
リソスペルミン酸Ｂマグネシウムの影響 リソスペルミン酸Ｂ塩の肝線維化に対する効果を調べる
ために、ジャマールらの方法に準じて肝組織中のコラー
ゲン量を、コラーゲンの主要構成アミノ酸であるヒドロ
キシプロリン含有量として測定した。
リソスペルミン酸Ｂマグネシウムの影響 リソスペルミン酸Ｂ塩の肝線維化に対する効果を調べる
ために、ジャマールらの方法に準じて肝組織中のコラー
ゲン量を、コラーゲンの主要構成アミノ酸であるヒドロ
キシプロリン含有量として測定した。
【００７０】その結果、リソスペルミン酸Ｂマグネシウ
ム非投与群ではヒドロキシプロリン含有量は０．９１３
±０．１４３ｍｇ／ｇと増加した。一方、リソスペルミ
ン酸Ｂマグネシウム投与群では０．６７３±０．１１２
ｍｇ／ｇと顕著に減少した。このことから、リソスペル
ミン酸Ｂ塩は肝線維化を低減させる効果があることが判
明した。
ム非投与群ではヒドロキシプロリン含有量は０．９１３
±０．１４３ｍｇ／ｇと増加した。一方、リソスペルミ
ン酸Ｂマグネシウム投与群では０．６７３±０．１１２
ｍｇ／ｇと顕著に減少した。このことから、リソスペル
ミン酸Ｂ塩は肝線維化を低減させる効果があることが判
明した。
【００７１】以上の結果から、リソスペルミン酸Ｂマグ
ネシウムは、四塩化炭素による慢性肝障害の誘導を抑制
し、肝線維化を軽減し、さらに肝浸潤白血球から産生さ
れるプロスタグランジン量の産生低下を抑制することが
明らかとなり、急性肝障害のみならず、慢性肝障害にも
有効であると考えられる。
ネシウムは、四塩化炭素による慢性肝障害の誘導を抑制
し、肝線維化を軽減し、さらに肝浸潤白血球から産生さ
れるプロスタグランジン量の産生低下を抑制することが
明らかとなり、急性肝障害のみならず、慢性肝障害にも
有効であると考えられる。
【００７２】
【実験例４】リソスペルミン酸Ｂマグネシウムについて
ＬＤ50を測定した結果は以下の通りである。 （１）腹腔内投与（ｄｄＹ雄性マウス、６週令、体重３
１〜３４ｇ、Up and Down法により測定） ＬＤ50 ＞ ２１９５ｍｇ／ｋｇ （２）経口投与（ｄｄＹ雄性マウス、６週令、体重３１
〜３５ｇ、Up and Down法により測定） ＬＤ50 ＞ ３０００ｍｇ／ｋｇ
ＬＤ50を測定した結果は以下の通りである。 （１）腹腔内投与（ｄｄＹ雄性マウス、６週令、体重３
１〜３４ｇ、Up and Down法により測定） ＬＤ50 ＞ ２１９５ｍｇ／ｋｇ （２）経口投与（ｄｄＹ雄性マウス、６週令、体重３１
〜３５ｇ、Up and Down法により測定） ＬＤ50 ＞ ３０００ｍｇ／ｋｇ
【００７３】
【製剤例】以下に、製剤例を示す。
【００７４】
【製剤例１】（製法）表４に示す組成物を、日本薬局方
の錠剤の製法により、１錠当りの重量が２４０ｍｇの錠
剤とする。 （用法、用量）通常、成人には１回２錠、１日３回（増
減）の経口投与で効果が期待できる。
の錠剤の製法により、１錠当りの重量が２４０ｍｇの錠
剤とする。 （用法、用量）通常、成人には１回２錠、１日３回（増
減）の経口投与で効果が期待できる。
【００７５】
【表４】
【００７６】
【製剤例２】（製法）リソスペルミン酸Ｂマグネシウム
２ｇを、日局生理食塩水に溶解し、１０００ｍｌとす
る。 （用法、用量）通常、成人には１日１回１管（５ｍｌ）
を、皮下又は静脈内に投与することにより効果が期待で
きる。
２ｇを、日局生理食塩水に溶解し、１０００ｍｌとす
る。 （用法、用量）通常、成人には１日１回１管（５ｍｌ）
を、皮下又は静脈内に投与することにより効果が期待で
きる。
【００７７】
【発明の効果】有効成分としてリソスペルミン酸Ｂある
いはその塩を有効成分として含有する本発明の肝障害改
善薬は、急性肝障害及び慢性肝障害のいずれにおいても
これらを改善する効果を有する。この効果は、肝の５−
リポキシゲナーゼ活性を抑制してロイコトリエンの合成
を阻害し、さらに、肝浸潤白血球からのプロスタグラン
ジン量の産生低下を抑制する作用等に基づくと考えられ
る。
いはその塩を有効成分として含有する本発明の肝障害改
善薬は、急性肝障害及び慢性肝障害のいずれにおいても
これらを改善する効果を有する。この効果は、肝の５−
リポキシゲナーゼ活性を抑制してロイコトリエンの合成
を阻害し、さらに、肝浸潤白血球からのプロスタグラン
ジン量の産生低下を抑制する作用等に基づくと考えられ
る。
【図１】アラキドン酸代謝産物の逆相ＨＰＬＣによる溶
出パターンを示す図。（Ｂ）はリソスペルミン酸Ｂマグ
ネシウム無処理、（Ｃ）は処理したもの、（Ａ）は標準
化合物。
出パターンを示す図。（Ｂ）はリソスペルミン酸Ｂマグ
ネシウム無処理、（Ｃ）は処理したもの、（Ａ）は標準
化合物。
【図２】リソスペルミン酸Ｂマグネシウムによるリポキ
シゲナーゼ活性の抑制を示す図。
シゲナーゼ活性の抑制を示す図。
【図３】アラキドン酸代謝産物の逆相ＨＰＬＣによる溶
出パターンを示す図。（Ｂ）はリソスペルミン酸Ｂマグ
ネシウム無処理、（Ｃ）は処理したもの、（Ａ）は標準
化合物。
出パターンを示す図。（Ｂ）はリソスペルミン酸Ｂマグ
ネシウム無処理、（Ｃ）は処理したもの、（Ａ）は標準
化合物。
【図４】アラキドン酸代謝産物の逆相ＨＰＬＣによる溶
出パターンを示す図。（Ｂ）は正常ラット、（Ｃ）はガ
ラクトサミンで誘導した肝障害ラット、（Ｄ）はリソス
ペルミン酸Ｂマグネシウム処理した肝障害ラット、
（Ａ）は標準化合物。
出パターンを示す図。（Ｂ）は正常ラット、（Ｃ）はガ
ラクトサミンで誘導した肝障害ラット、（Ｄ）はリソス
ペルミン酸Ｂマグネシウム処理した肝障害ラット、
（Ａ）は標準化合物。
【図５】アラキドン酸代謝産物量を示す図。
【図６】アラキドン酸代謝産物の逆相ＨＰＬＣによる溶
出パターンを示す図。（Ｂ）は正常ラット、（Ｃ）は四
塩化炭素で誘導した肝障害ラット、（Ｄ）はリソスペル
ミン酸Ｂマグネシウム処理した肝障害ラット、（Ａ）は
標準化合物。
出パターンを示す図。（Ｂ）は正常ラット、（Ｃ）は四
塩化炭素で誘導した肝障害ラット、（Ｄ）はリソスペル
ミン酸Ｂマグネシウム処理した肝障害ラット、（Ａ）は
標準化合物。
【図７】アラキドン酸代謝産物量を示す図。
図１、３中、ＡはＬＴＢ−４、Ｂは５−ＨＥＴＥを示
す。図４、６中、１は６−ケト−ＰＧＦ1α、２はＴＸ
Ｂ2、３はＰＧＦ2α、４はＰＧＥ2、５はＰＧＤ2を示
す。図５中、ＧＡＬはＤ−ガラクトサミンを、図５、７
中、ＬＳＡは、リソスペルミン酸Ｂマグネシウムを表
す。
す。図４、６中、１は６−ケト−ＰＧＦ1α、２はＴＸ
Ｂ2、３はＰＧＦ2α、４はＰＧＥ2、５はＰＧＤ2を示
す。図５中、ＧＡＬはＤ−ガラクトサミンを、図５、７
中、ＬＳＡは、リソスペルミン酸Ｂマグネシウムを表
す。
Claims (2)
- 【請求項１】 化１で表されるリソスペルミン酸Ｂ及び
／又はその薬理学上許容される塩を有効成分として含有
する肝機能改善薬。 【化１】 - 【請求項２】 前記薬理学上許容される塩が化２で表さ
れる塩であることを特徴とする請求項１記載の肝機能改
善薬。 【化２】 式中、Ｍ2+はＭｇ2+、２Ｋ+、２ＮＨ4 +あるいはＣａ2+
を表す。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP04125242A JP3130368B2 (ja) | 1992-05-19 | 1992-05-19 | 肝機能改善薬 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP04125242A JP3130368B2 (ja) | 1992-05-19 | 1992-05-19 | 肝機能改善薬 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH05320047A true JPH05320047A (ja) | 1993-12-03 |
| JP3130368B2 JP3130368B2 (ja) | 2001-01-31 |
Family
ID=14905305
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP04125242A Expired - Fee Related JP3130368B2 (ja) | 1992-05-19 | 1992-05-19 | 肝機能改善薬 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP3130368B2 (ja) |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2002308767A (ja) * | 2001-04-04 | 2002-10-23 | Mitsui Chemicals Inc | 過酸化脂質生成抑制剤 |
| JPWO2002062365A1 (ja) * | 2001-02-01 | 2004-06-03 | 明治製菓株式会社 | フェノール類含有シソ科植物エキスの製造法及びその用途 |
| JP2006298896A (ja) * | 2005-03-22 | 2006-11-02 | Iskra Ind Co Ltd | 高脂血症改善剤、動脈硬化改善剤及び肝機能改善剤 |
| WO2007102451A1 (ja) * | 2006-03-07 | 2007-09-13 | Nippon Shinyaku Co., Ltd. | 育毛剤 |
-
1992
- 1992-05-19 JP JP04125242A patent/JP3130368B2/ja not_active Expired - Fee Related
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
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