JPH04207198A - 有用蛋白質の製造方法 - Google Patents
有用蛋白質の製造方法Info
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- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
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Abstract
め要約のデータは記録されません。
Description
た遺伝子組換え法により効率良く生産する際に、カイコ
体液中に存在する蛋白質分解酵素ならびに多角体生産能
を欠如した遺伝子組換えカイコ核多角体病ウィルスを不
活性化させる方法に関する。
α、ブタ・成長ホルモンなどの有用蛋白質が、遺伝子組
換えしたカイコ核多角体病ウィルスをカイコに接種して
増殖させ、カイコ体内に蓄積されたことが報告されてい
る。
することが知られており、従って体液抽出操作中もしく
は体液の保存中に目的とする蛋白質が分解されることが
考えられる。さらに、遺伝子組換え核多角体病ウィルス
をカイコに接種して増殖させて蛋白質を生産する方法で
は、カイコ体液中にはこのウィルスが存在するため、ウ
ィルスの封じ込めが必要となる。
び遺伝子組換えカイコ核多角体病ウィルスの不活性化が
可能となれば、カイコを利用した有用蛋白質の量産の途
が開かれると期待される。
行ない、以って有用蛋白質を大量生産することを目的と
する。
出したカイコ体液を酸性にすることにより、カイコ体液
中に存在する蛋白質分解酵素および多角体生産能を欠如
した遺伝子組換え核多角体病ウィルスを不活性化するこ
とに成功し、以って有用蛋白質をカイコを用いて大量に
製造する方法を確立し、かくして本発明を完成するに至
った。
り組換えられた組換えカイコ核多角体病ウィルスをカイ
コに接種して有用蛋白質を製造する際に、カイコ体液を
pH0,5〜3.0にすることを特徴とする有用蛋白質
の製造方法、ならびに遺伝子組換えウィルスの封じ込め
方法である。
安定な蛋白質が好ましい。酸に安定な蛋白質としては種
々のものが報告され、今後も多(のものが報告されるで
あろうが、それらへの応用が可能である。例えば、酸に
安定な有用蛋白質として、ヒトインターフェロンβ、ネ
コインターフェロン(以下FeIFNと略す)、マウス
インターフェロンβなどのインターフェロン類などが挙
げられる。本発明では、特にFeIFNが好ましく用い
られる。
ようにして作製することができる。
角体病ウィルス由来のプロモーター領域を含むDNA断
片、下流に終止シグナル以下のDNA断片を有する組換
えプラスミドと核多角体病ウィルスのDNAとを、例え
ばBM−N細胞のようなカイコ培養細胞に同時に感染さ
せることによって、in vivo的に外来の有用蛋
白質をコードするDNAのウィルスDNAの組換えが起
こり、遺伝子組換えウィルスが作製される。このように
して作製された遺伝子組換え核多角体病ウィルスは、核
多角体病ウィルスの多角体蛋白の遺伝子領域に外来のD
NAが置換または挿入されているため、多角体を生産す
ることができない。従って非組換え体ウィルスと容易に
区別できる。このような遺伝子組換え核多角体病ウィル
スとして、例えばFe1FNの蛋白質をコードするDN
Aが組換えられたrBNVlooを挙げることができる
。
I FNI)(微工研条寄第1633号)から抽出し
たプラスミドからFeIFNの蛋白質をコードするDN
Aを切り出して、カイコのクローニングベクター(文献
1)に連結して作製した組換え体プラスミドとカイコ核
多角体病ウィルスDNAとを、カイコ樹立細胞にコ・ト
ランスフェクションして作製することができる。
から一般的な方法により抽出したプラスミドpFeIF
N1から、FeIFNの蛋白質をコードするDNA部分
を、例えばp BMO30(文献1)などのカイコのク
ローニングベクターの発現調節部分の下流に連結すると
いう一般的な遺伝子操作に従って組換え体プラスミドを
作製することができる。この組換え体プラスミドとカイ
コ核多角体病ウィルスDNA (文献1)とを、文献1
のような方法でカイコ樹立細胞、例えばBM−N株(文
献1)にコ・トランスフェクションした後、培養を続け
、培養液中に出現した非組換え体(野生型)と組換え体
のウィルスの中から限界希釈法およびプラーク法などの
一般的な方法によって、組換え体ウィルスをクローニン
グすることができる。組換え体ウィルスは多角体の形成
能がないことから、野生型ウィルスと容易に区別できる
。
ィルスをカイコ生体中で増殖させることにより行なう。
コ幼虫に接種(注射)して、クワの葉または人工飼料を
与えて飼育する。飼育後、カイコを開腹し、そこから得
られる液をカイコ体液とする。
方法、酸中に体液を受ける方法、もしくは開腹したカイ
コをそのまま酸中に入れ撹拌する方法が可能である。こ
れらの操作は氷水浴中で行なうのが好ましいが、限定さ
れない。
は蟻酸、酢酸などの有機酸を用いることができる。この
中でも塩酸が特に好ましく用いられる。
は1.0〜2.5であり、特にpH1゜3〜2.0にす
るのが好ましい。
した物質が生じるため、遠心分離機を用いるなどして除
去し、必要ならば後続の精製プロセスに使用する。
体的に説明するが、本発明の範囲がこれに限定されるも
のではない。
)から、第1図に示す方法でFeIFNをコードするD
NAを含む組換えプラスミドを作製した。
酵素XhoIで完全分解し、得られた複数のDNA断片
をアガロースゲル電気泳動で分け、約1.2kbのDN
A断片をエレクトロエリューションで取り出し、約10
μgを回収した。
HincIIで完全分解し、得られたDNA断片のうち
約750bpのものを同様にして約3μg回収した。こ
うしてFeIFN構造遺伝子を含む5faNI−Hin
cII断片を得た。この断片と制限酵素BamHIとH
incnとで切断した市販のpUc18 (宝酒造■製
)の断片とを、T4DNAリガーゼで連結し、pUCI
FN4を作製した。pUCIFN4 25μgを制限
酵素B a m HI、HincIIで完全分解し、得
られた複数のDNA断片をアガロース電気泳動で分け、
約0.7kbのDNA断片をエレクトロエリューション
で取り出し、約2μgを回収した。
)5μgを制限酵素Bgl Iで完全分解し、次いでT
4DNAポリメラーゼで3′末端を平滑末端にした後、
T4DNAリガーゼで連結し、BglI切断部位を欠い
たM13ベクターを作製した。このベクターを制限酵素
BamHI、HincIIで完全分解後、前述の0.7
kbのB a m Hl−H1ncn断片とT4DNA
リガーゼで連結した。この組換えDNAl0μgを制限
酵素Bgl■、Eco0109Iで完全分解し、バクテ
リアアルカリホスファターゼ(宝酒造■製)反応後、ア
ガロース電気泳動で分け、約7,9kbのDNA断片を
エレクトロエリューションで取り出した。
になる2本鎖DNAを合成した。すなわち、Ablli
ed Bios7sjems社製のDNAシンセサイザ
ーで合成した。
TCCGTCTGCGTGCTGGGCTGTGAC)
と32me r (CTGCCTCAGACCCACG
GCCTGCTGAACAGGAG)と38me r
(GCCCAGCACGCAGACGGAGTTGCA
GCCCAGCGCCACCA)と41me r (G
CCCTCCTGTTCAGCAGGCCGTGGGT
CTGAGGCAGGTCACA)の4種のオリゴマー
を混合し、T4ポリヌクレオチドキナーゼ(宝酒造■製
)でカイネーシング後、90℃で2分間加熱したあと、
放冷することによってアニーリングした。この2本鎖D
NAと上記で得た約7. 9kbのBglI−EcoO
109I断片とを、T4DNAリガーゼで連結した。2
0μgを制限酵素BamHI、Hi ncnで完全分解
し、得られた複数のDNA断片をアガロースゲル電気泳
動で分け、約750bpのDNA断片をエレクトロエリ
ューションで取り出し、約2μgを回収した。こうして
Fe1FNをコードするDNAを含むBamHI−Hi
nc■断片を得た。
制限酵素Bgln、SmaIで完全分解し、上記のBa
mHI−HincII断片とT4DNAリガーゼでライ
ゲーションした。この反応液をコンピテント化したE、
coli HBIOI(宝酒造■製)と混合し、形質
転換を行なった。
ト上に生育するコロニーの中から、アルカリミニスクリ
ーン法で抽出したプラスミドのHinduでの制限分析
により、クローニングベクターpBM030に約750
bpのDNA断片が組込まれているプラスミドを得た。
ケンスを行なって、p BMO30にFeIFNをコー
ドするD N A i)<組込まれているプラスミドを
得た。この組換え体プラスミドをpYU871とした。
1,0,28M NaC1,0,7mMNa2HPO
4,0,7mM NaH2PO4からなる2、5ml
の溶液に、2.5mlのDNA混合液(0,25M
CaCl2、カイコ核多角体病ウィルスBmNPV
73株(文献1)のDNA10μg、組換え体プラスミ
ドpYU871のDNA65μgを含む)を滴下し、生
じた懸濁液の0.5mlを5mlの10%FBSを添加
したTC−10培地(文献2)中、25cfflのフラ
スコで平面培養した約3X10S個のBM−N細胞(文
献1)の培養基に加え、カイコ細胞にDNAを導入した
。
、培養液を回収した。その培養液を遠心して清澄化した
上清を希釈して平面に培養したBM−N細胞の培養基に
添加して7日間培養後、顕微鏡観察によりウィルス感染
が見られ、かつ多角体が形成していない培養基を選択し
た(限界希釈法)。
換え体ウィルスをクローニングした。っまり、601m
[l径の培養用プラスチックシャーレに5X106個の
BM−N細胞を培養し、培養液を取り除いた後にプレー
ト当り0.5mlのライスル液を加えて、27℃で1時
間保温した後、ウィルス液を除き、0.75%のシー・
プラーク・アガロース(FMC社製)と5%の牛胎児血
清を含むTC−10培地を5ml加え、アガロースを固
化させた後、27℃で4〜6日間培養した。
性界を加えたTC−10培地を2.5m1重層し、27
℃で1日保温した。多角体を形成しない透き通ったプラ
ークをパスツールピペットとアガロースとで吸いとり、
少量の培養液に浮遊させた後、さらにプラーク純化を2
回繰り返して、組換え体ウィルスをクローニングした。
換え体ウィルスをrBNVlooとした。
を含むTC−10培地中で平面培養した約3×106の
BM−N細胞に、前記(2)項でクローニングした組換
え体ライスルを含むBM−N細胞の培養液50μlをB
M−N細胞に添加して、27°Cで5日間培養後、培養
液を3.000rpmで5分間遠心分離して、遠心上清
を組換え体ウィルス液として得た。ウィルス液を10−
7希釈し、その1mlをBM−N細胞の培養基に添加し
て27℃で7日間培養を続けると、顕微鏡観察によって
培養基のBM−N細胞にウィルス感染が認められた。
体ウィルスのライスル液を50μl/頭注射し、25°
Cで4日間、市販の人工飼料(ビタシルク販売■製)を
与えて飼育後、7頭のカイコの腹部を切り、体液および
牛腸内容物などを含む抽出液を氷冷したプラスチックチ
ューブに採取し、遠心分離の上清を得、0.2μmのフ
ィルターで一過滅菌した。この液0.5mlに、0.I
N塩酸もしくは蒸留水4.5mlを添加した。塩酸を加
えたものはpH1,5になった。4℃で1日保存後、両
液の抗ウィルス活性を測定した。その結果を表−1に示
す。
て、TCrD5oを測定した。その結果を表−1に示す
。
より行なった。
Virus、感受性細胞はネコFC9(文献3)用い
、CPE法に従って抗ウィルス活性を測定した。スタン
ダードリフェランスとして、NIHのヒトの天然型αT
FN換算したHuIFNαを用いた。
を利用した遺伝子組換え法により大量生産することがで
きる。
Biol、 Chem、、 51゜文献2. G、
R,Gardiner and )I、5lockda
le ; I、 1nvertebrate Path
olagY、 25. 363−370 (19文献3
. I、に、Yamamoloら;V’et、 Im
munol、 and Inm+rnopafho1
.、 Il、 1−19 (1986)
含む組換え体プラスミドpYU871の作製の概略図で
ある。
Claims (1)
- (1)有用蛋白質をコードする遺伝子により組換えられ
た組換えカイコ核多角体病ウィルスをカイコに接種して
有用蛋白質を製造する際に、カイコ体液をpH0.5〜
3.0にすることを特徴とする有用蛋白質の製造方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2339736A JP2621656B2 (ja) | 1990-11-30 | 1990-11-30 | 有用蛋白質の製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
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JP2339736A JP2621656B2 (ja) | 1990-11-30 | 1990-11-30 | 有用蛋白質の製造方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH04207198A true JPH04207198A (ja) | 1992-07-29 |
JP2621656B2 JP2621656B2 (ja) | 1997-06-18 |
Family
ID=18330317
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2339736A Expired - Lifetime JP2621656B2 (ja) | 1990-11-30 | 1990-11-30 | 有用蛋白質の製造方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
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JP (1) | JP2621656B2 (ja) |
-
1990
- 1990-11-30 JP JP2339736A patent/JP2621656B2/ja not_active Expired - Lifetime
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JP2621656B2 (ja) | 1997-06-18 |
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