JPH0420289A

JPH0420289A - 蛋白質

Info

Publication number: JPH0420289A
Application number: JP2122162A
Authority: JP
Inventors: Suguru Mochida; 持田　英; Masahiro Nobuhara; 延原　正弘; Toshiyuki Kanamori; 金森　利至; Yoshikazu Ashida; 義和芦田; Atsushi Arai; 新居　淳
Original assignee: Mochida Pharmaceutical Co Ltd
Current assignee: Mochida Pharmaceutical Co Ltd
Priority date: 1990-05-11
Filing date: 1990-05-11
Publication date: 1992-01-23

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】〈産業上の利用分野〉本発明は、新規なアミノ酸配列を有する蛋白質および新
規なアミノ酸配列で構成されるポリペプチドに関する。

また、本発明は、該蛋白質あるいは該ポリペプチドを有
効成分とする医薬組成物、抗アレルギー剤に関する。

さらに、本発明は、新規なアミノ酸配列をコードするＤ
ＮＡ配列および該ＤＮＡ配列を有するＤＮＡに関する。

〈従来の技術〉現在までに、多数の蛋白質の一次構造が決定されている
。　そして、決定された一次構造をもとに、更に研究が
重ねられ、一部の蛋白質、例えば、組織プラスミノーゲ
ン活性化因子やエリスロボエチン等を、遺伝子工学的に
生産することが可能となっている。

一方、以前よりその存在は知らＡ′Ｌでいたが、未だに
その構造が明らかにされていない蛋白質も多数存在する
。　そして、その原因として、その蛋白質が天然に少量
しか存在しないため、もしくは天然の材料から効率よ（
回収できないために、解析に充分な量の蛋白質が得られ
なかったこと等があげられる。　ヒトアリルスルファタ
ーゼＢもまた、現在までに解析が十分なされていない蛋
白質の１つである。

アリルスルファターゼＢは、フェノール硫酸エステル加
水分解酵素の１つであり、肥満細胞や好塩基球から遊離
されるｓｌｏｗ　ｒｅａｃｔｉｎｇｓｕＦＪｓｔａｎｃ
ｅ　ｏｆ　ａｎａｐｈｙｌａｘｉｓ　（以下、５Ｒ８−
Ａと略す）による平滑筋収縮を抑制する作用を有するこ
とが報告されている（　Ａｋｉｒａ　Ｋｕｍａｇａｉお
よびＨｉｓａｏ　Ｔｏｍｉｏｋａ　、メソッド　イン　
エンザイモロジー、８６巻、１．７−３０頁、１９８２
年）。　また、本酵素は、細胞内のりソソームに存在す
ることが知られており、ヒトではこれまでに、肺組織、
好酸球、血小板、胎盤等における存在が確認されている
（　Ｖｔａｓｓｅｒｍａｎｎ　Ｓ、　Ｉ。

等、ジャーナル　オブ　クリニカル　インベスティゲー
ション、５７巻、７３８−７４．４頁、１９７６年；　
Ｗａｓｓｅｒｍａｎｎ　Ｓ、　１．等、ジャーナルオプ
　イムノロジー、１１４巻、６４５６４９頁、１９７５
年；　Ｍｅｔｃａｌｆ　Ｄ、　Ｄ、等、イムノロジー、
３７巻、７２３−７２９頁、１９７９年；Ｍａｙ　　Ｃ
，Ｄ、　　等、ジャーナルオブ　アレルギー、４６巻、
１２−２０頁、１９７０年）。　しかしながら、その蛋
白質としての解析は不十分であり、特に、−次構造の解
析がなされていないことは、本酵素蛋白質の大量生産や
合成に向けての問題点となっている。

〈発明が解決しようとする課題〉本発明の目的は、新規なアミノ酸配列を有する蛋白質お
よび新規なアミノ酸配列で構成されるポリペプチドを提
供することにある。　本発明の他の目的は、該アミノ酸
配列を有する蛋白質またはポリペプチドを有効成分どす
る医薬組成物および抗アレルギー剤を提供することにあ
る。　本発明のさらに他の目的は、該アミノ酸配列をコ
ードするＤＮＡ配列および該ＤＮＡ配列を有するＤＮＡ
を提供することにある。

〈課題を解決するための手段〉本発明者らは、アリルスルファターゼＢの次構造を決定
すべく、鋭意研究を重ねてきた。

その結果、アリルスルファターゼＢを構成する蛋白質の
アミノ酸配列を決定して本発明の完成に至ったものであ
る。

すなわち、本発明第一の態様は、下記（Ｉ）〜（ＩＩＩ
　）より選ばれる少なくとも１つのアミノ酸配列を有す
ることを特徴とする蛋白質を提供するものである。

（Ｉ　）　Ａｌａ　Ｐｒｏ　Ｐｒｏ　Ｐｒｏ　　Ｗ　　
Ｈｉｓ　Ｌｅｕ　Ｖａｌ　ＰｈｅＬｅｕ　　Ｚ　　Ａｌ
ａ（但し、ＷはＶａｌもしくはＬｙｓであり、２はアミノ
酸が特定されないことを示す）（Ｈ）　Ｌｅｕ　Ｉｌｅ　Ｈｉｓ　Ｉｌｅ　　Ｚ　　Ａ
ｓｐ　　Ｚ　　Ｌｅｕ　　ＸＴｈｒ　Ｌｅｕ　Ｖａｌ　
Ｌｙｓ　Ｌｅｕ　Ａｌａ（但し、ＸはＰｒｏもしくはＩ
ｌｅであり、Ｚはアミノ酸が特定されないことを示す）（ＩＩＩ）　　Ｙ　　Ｔｙｒ　Ｌｅｕ　Ｌｙｓ　Ｐｒｏ
　Ｔｙｒ　　Ｚ　　Ｐｈｅ　ＩＩ、ｅＧｌ、ｎ　Ａｓｐ
　Ｌｙｓ　Ａｓｎ　　Ｚ　　Ｚ　　Ｚ　　Ｔｙｒ　Ａｌ
ａＧｌｙ　Ｍｅｔ（但し、ＹはＡｌａもしくはＧｌｕであり、Ｚはアミノ
酸が特定されないことを示す）本発明第二の態様は、上記（１）〜（ＩＩＩ　）より選
ばれる少なくとも１つのアミノ酸配列で示されることを
特徴とするポリペプチドを提供するものである。

本発明第三の態様は、本発明第一の態様の蛋白質あるい
は本発明第二の態様のポリペプチドを有効成分とするこ
とを特徴とする医薬組成物を提供するものである。

本発明第四の態様は、本発明第一の態様の蛋白質あるい
は本発明第二の態様のポリペプチドを有効成分とするこ
とを特徴とする抗アレルギー剤を提供するものである。

本発明第五の態様は、上記（Ｉ）〜（ＩＩＩ　）より選
ばれる少なくとも１つののアミノ酸配列をコードするこ
とを特徴とするＤＮＡ配列を提供するものである。

本発明第六の態様は、本発明第五の態様のＤＮＡ配列を
有することを特徴とするＤＮＡを提供するものである。

以下に、本発明の構成を詳細に説明する。

本発明第一の態様の蛋白質は、下記（Ｉ）〜（ＩＩＩ　
）より選ばれる少なくとも１つのアミノ酸配列を有する
ことを特徴とし、好ましくはアリルスルファターゼＢを
構成する蛋白質である。

（Ｉ　）Ａｌａ　　Ｐｒｏ　　Ｐｒｏ　　Ｐｒｏ　　Ｗ
　　Ｈｉｓ　　Ｌｅｕ　　Ｖａｌ　　ＰｈｅＬｅｕ　　
　Ｚ　　　Ａｌａ（但し、ＷはＶａｌもしくはＬｙｓであり、２はアミノ
酸が特定されないことを示す）（ＩＩ　）　Ｌｅｕ　Ｉｌｅ　Ｈｉｓ　ｌｉｅ　　Ｚ　
　Ａｓｐ　　Ｚ　　Ｌｅｕ　　ＸＴｈｒ　Ｌｅｕ　Ｖａ
ｌ、　Ｌｙｓ　Ｌｅｕ　Ａｌａ（但し、ＸはＰｒｏもし
くはＩｌｅであり、２はアミノ酸が特定されないことを
示す）（Ｉｌｌ）　　Ｙ　　Ｔｙｒ　Ｌｅｕ　Ｌｙｓ　Ｐｒｏ
　Ｔｙｒ　　Ｚ　　Ｐｈｅ　ｌ１ｅＧ１．ｎ　Ａｓｐ　
Ｌｙｓ　Ａｓｎ　　Ｚ　　Ｚ　　Ｚ　　Ｔｙｒ　Ａｉａ
Ｇｌｙ　Ｍｅｔ（但し、ＹはＡｌａもしくはＧｌｕであり、２はアミノ
酸が特定されないことを示す）また、本発明の蛋白質は、上記配列のうちの少なくとも
１つを含む蛋白質であれば、いがなる構造をとっていて
もよいが、その天然における構造として、少なくとも１
箇所の鎖間ｓ−８結合を有する蛋白質であることが好ま
しい。

更には、前記Ｓ−８結合を切断した場合に、本発明の蛋
白質の天然における構造より少なくとも２つのサブユニ
ットを派生し、そのうちの１つの分子量が５ＤＳ−ポリ
アクリルアミドゲル電気泳動法で約４０±５ｋＤａであ
ることが好ましい。

一般に蛋白質は、各種プロテアーゼや蛋白質変成剤等の
作用により開裂する。　また、蛋白質が、それが存在す
る天然の条件とは異なる条件下にさらされる場合には、
様々な形態で存在することが予想される。　従って、上
記（Ｉ）〜（Ｉｎ）で示されるアミノ酸配列のうちの少
なくとも１つを有する蛋白質はもちろんのこと、上記（
Ｉ）〜（ＩＩＩ　）で示されるアミノ酸配列のうちの少
なくとも１つのさらに一部のみを有する蛋白質であって
も、それが一般に予想される変異やアミノ酸の置換によ
るものと考えられる場合には、本発明の蛋白質に包含さ
れる。

また、蛋白質として、単純蛋白質の他に、リン酸、リン
脂質、色素、糖などで修飾された複合蛋白質等も知られ
ており、本発明の蛋白質は、このような複合蛋白質等で
あってもよい。

本発明が提供する蛋白質は、その由来は限定されないが
、ヒト由来の蛋白質であることが好ましく、ヒト胎盤由
来の蛋白質であることがさらに好ましい。

本発明の蛋白質の製造方法は限定されないので、蛋白質
を製造する一般的な方法にて製造すればよい。　例えば
、本発明の蛋白質を産生じつる細胞から、あるいは本発
明の蛋白質を含有する組織、体液、血液、尿等より、精
製によって得ることができる。　また、本発明の蛋白質
を産生じ、分泌しつる細胞や微生物を遺伝子工学的に作
製し、その培養上清から精製することも可能であろう。

本発明の蛋白質は、その製造方法は限定されないが、通
常行なわれている方法、例えば化学的に合成する方法、
組換えＤＮＡ技術を用いて生産する方法等より適宜選択
される方法にて製造すればよい。　なお、化学合成のた
めの好適な装置のひとつとして、ペプチド合成機４３１
Ａ、アプライド　バイオシステムズ社製等が知られてい
る。

精製方法は、一般的に行なわれている方法より適宜選択
すればよい。　すなわち、塩析法、限外濾過法、等電点
沈澱法、ゲル濾過クロマトグラフィー、イオン交換クロ
マトグラフィー疎水性クロマドグフィー、抗体アフィニ
ティークロマトグラフィー等の各種アフィニティークロ
マトグラフィー、クロマトフオーカシング法、吸着クロ
マトグラフィー、逆相クロマトグラフィー、高速液体ク
ロマトグラフィー等から本発明の蛋白質の活性が失なわ
れないような方法を選択し、そのような方法を適当な順
序で組み合わせて行なうことにより、本発明の蛋白質の
濃縮、精製を行なうことが可能である。

次に、本発明第二の態様のポリペプチドについて説明す
る。

当該ポリペプチドは、下記（Ｉ）〜（ＩＩＩ　）より選
ばれる少なくとも１つのアミノ酸配列で示されるもので
ある。

（Ｉ　）　Ａｌａ　Ｐｒｏ　Ｐｒｏ　Ｐｒｏ　　Ｗ　　
Ｉ（ｉｓ　Ｌｅｕ　Ｖａｌ　ＰｈｅＬｅｕ　　Ｚ　　Ａ
ｌａ（但し、ＷはＶａｌもしくはＬｙｓであり、Ｚはアミノ
酸が特定されないことを示す）（■）Ｌｅｕ　Ｉｌｅ　Ｈｉｓ　Ｉｃｅ　　Ｚ　　Ａｓ
ｐ　　Ｚ　　Ｌｅｕ　　ＸＴｈｒ　Ｌｅｕ　Ｖａｌ　Ｌ
ｙｓ　Ｌｅｕ　Ａｌａ（但し、ＸはＰｒｏもしくはＩ］
、ｅであり、Ｚはアミノ酸が特定されないことを示す）（ＩＩＩ）　　Ｙ　　Ｔｙｒ　Ｌｅｕ　Ｌｙｓ　Ｐｒｏ
　Ｔｙｒ　　Ｚ　　Ｐｈｅ　Ｉ］、ｅＧｉｎ　Ａｓｐ　
Ｌｙｓ　Ａｓｎ　　Ｚ　　Ｚ　　Ｚ　　Ｔｙｒ　Ａｌａ
Ｇｌｙ　Ｍｅｔ（但し、ＹはＡｌａもしくはＧｌｕであり、２はアミノ
酸が特定されないことを示す）すなわち、上記（Ｉ）〜（ＩＩＩ　）のうちのいずれか
１つのアミノ酸配列で示されるポリペプチド、上記（Ｉ
）〜（ＩＩＩ　）のうちの２つないし３つのアミノ酸配
列が任意の順序で並んだ配列で示されるポリペプチドが
、本発明のポリペプチドである。

本発明のポリペプチドは、その製造方法は限定されない
が、通常行なわれている方法、例えば化学的に合成する
方法、組換えＤＮＡ技術を用いて生産する方法等より適
宜選択される方法にて製造すればよい。　なお、化学合
成のための好適な装置のひとつとして、ペプチド合成機
４３１Ａ、アプライド　バイオシステムズ社製等が知ら
れている。

本発明のポリペプチドを用いれば、該ポリペプチドのア
ミノ酸配列と同様のアミノ酸配列を有する本発明の蛋白
質に対する抗体を作製することができる。

次に、本発明第三の態様の医薬組成物および本発明第四
の態様の抗アレルギー剤について説明する。

当該医薬組成物あるいは当該抗アレルギー剤は、前記本
発明の蛋白質あるいはポリペプチドを有効成分とするも
のである。

本発明の医薬組成物あるいは抗アレルギー剤は、本発明
第一の態様に示した蛋白質あるいは本発明第二の態様に
示したポリペプチドを、凍結乾燥や除菌濾過等、製剤学
的に必要な工程で処理しただけのものであっても、充分
その効果を医療の分野に提供することができるものであ
るが、上記の蛋白質あるいはポリペプチドに加えて、さ
らに、製剤学的に許容されつる補助成分を含んでいても
よい。

この補助成分とは、基剤、安定剤、防腐剤、保存剤、乳
化剤、懸濁化剤、溶解剤、溶解補助剤、滑沢剤、矯味剤
、着色剤、芳香剤、無痛化剤、賦形剤、結合剤、粘稠剤
、緩衝剤等のことであり、具体的には、炭酸カルシウム
、乳糖、蔗糖、ソルビット、マンニトール、デンプン、
アミロペクチン、セルロース誘導体、ゼラチン、カカオ
脂、注射用蒸留水、塩化ナトリウム水溶液、リンゲル溶
液、グルコース溶液、ヒト血清アルブミン（Ｈ３Ａ）等
、医薬品添加物−覧表（財団法人東京医薬品工業協会薬
事法規委員会および大阪医薬品協会薬事法規研究委員会
発行）に記載のものが例示される。　本発明では、この
医薬品添加物−覧表等を参考にして補助成分と適宜選択
し、使用することが可能である。　使用する物質の種類
や量等は、製剤学的に許容されつる範囲より、医薬組成
物の薬剤形態等に応じて適したものを適宜選択すればよ
い。

本発明の医薬組成物あるいは抗アレルギー剤の投与量は
、治療を受ける患者の状態、年齢、性別、体重等により
適宜選択され、また、投与方法も、患者の状態に応じて
、経口投与、筋肉的投与、腹腔的投与、皮内投与、皮下
投与、静脈内投与、動脈内投与等の様々な投与方法から
選択され得るが、特に静脈内に投与する方法にて使用さ
れることが好ましい。

本発明の抗アレルギー剤は、５Ｒ３−Ａによるアレルギ
ー反応の治療に有効な手段を提供する。

次に、本発明第五の態様のＤＮＡ配列を説明する。

本発明のＤＮＡ配列は、下記（Ｉ）〜（ＩＩＩ　）より
選ばれる少なくとも１つのアミノ酸配列をコードするＤ
ＮＡ配列である。

（Ｉ　）　Ａｌａ　Ｐｒｏ　Ｐｒｏ　Ｐｒｏ　　Ｗ　　
Ｈｉｓ　Ｌｅｕ　Ｖａｌ　ＰｈｅＬｅｕ　　Ｚ　　Ａｌ
ａ（但し、ＷはＶａｌもしくはＬｙｓであり、Ｚはアミノ
酸が特定されないことを示す）（ＴＩ）　Ｌｅｕ　Ｉｌｅ　１（ｉｓ　ｌｉｅ　　Ｚ　
　Ａｓｐ　　Ｚ　　Ｌｅｕ　　ＸＴｈｒ　Ｌｅｕ　Ｖａ
ｌ　Ｌｙｓ　Ｌｅｕ　Ａｌａ（但し、ＸはＰｒｏもしく
はＩｌｅであり、Ｚはアミノ酸が特定されないことを示
す）（ＩＩＩ）　　Ｙ　　Ｔｙｒ　Ｌｅｕ　Ｌｙｓ　Ｐｒｏ
　Ｔｙｒ　　Ｚ　　Ｐｈｅ　ｌ１ｅＧｉｎ　Ａｓｐ　Ｌ
ｙｓ　Ａｓｎ　　Ｚ　　Ｚ　　Ｚ　　Ｔｙｒ　ＡｌａＧ
ｌｙ　Ｍｅｔ（但し、ＹはＡｌａもしくはＧｌｕであり、Ｚはアミノ
酸が特定されないことを示す）当該ＤＮＡ配列には、該アミノ酸配列を構成する各アミ
ノ酸に対応するコドンの組みあわせ全てが含まれる。

次に、本発明第六の態様のＤＮＡを説明する。

本発明のＤＮＡは、前記本発明第五の態様のＤＮＡ配列
を有することを特徴とする。　すなわち、当該ＤＮＡは
、前記（１）〜（ＩＩＩ　）より選ばれる少なくとも１
つのアミノ酸配列をコードするＤＮＡ配列を有するＤＮ
Ａである。

当該ＤＮＡは、例えば、前記（Ｔ）〜（ＩＩＩ　）より
選ばれる少なくとも１つのアミノ酸配列をコードするＤ
ＮＡ配列に加えて、組換ＤＮΔ技術で通常用いられてい
るプロモーター、ＳＤ配列、シグナル配列等を有するも
のであってもよい。

また、当該ＤＮＡは、前記（Ｉ）〜（ＩＩＩ　）より選
ばれる少なくとも１つのアミノ酸配列をコードするＤＮ
Ａ配列のみからなるＤＮＡであってもよい。

さらに、当該ＤＮＡは、前記（Ｉ）〜（Ｉｌｌ）より選
ばれる１つのみのアミノ酸配列をコードするＤＮＡ配列
を有するＤＮＡであってもよい。

加えて、当該ＤＮＡは、前記（１）〜（Ｉｌｌ　）より
選ばれる少なくとも１つのアミノ酸配列をコードするＤ
ＮＡ配列を有するアリルスルファターゼＢのＤＮＡであ
ってもよい。

本発明第五の態様のＤＮＡ配列は、プローブの作製に利
用でき、本発明第六の態様のＤＮＡは、プローブとして
利用できる。

〈実施例〉以下に、実施例をもって本発明を一層具体的に説明する
が、これらは実施の一例として示すものであり、本発明
はこれらにより何等限定されるものではない。　また、
以下の記載において用いる略号は、当該分野における慣
用略号に基づくものである。

（実施例１）ヒト胎盤からの精製出産後、ただちに−２０°Ｃで凍結したヒト胎盤４０ｋ
ｇをホモジェナイズし、そこに、２０℃の純水を加え、
さらに、１６Ｎ酢酸を添加し、ｐＨ５，０に調整した。

　ｐ　Ｈ調整後、氷冷下にてエタノール１５ρ、クロロ
ホルム３ρを加えて攪拌し、遠心分離を行ない、上清５
０℃を回収した。　回収した上清にアセトンを終濃度が
４０　ｖ　／　ｖ％となるように加え、遠心分離を行な
い、沈澱を回収した。　得られた沈澱を、０．０２Ｍ＋
−リス塩酸緩衝液（ｐＨ８，０）に溶解し、透析膜（ユ
ニオンカーバイド社製）を用いて同緩衝液に対して一晩
透析した。　透析後のサンプルを、あらかじめ同緩衝液
で平衡化したＣＭ−セファデックスカラム（ファルマシ
ア社製、１０ｃｍφＸ３８ｃｍ）に添加し、該カラムを
同緩衝液で洗浄後、０．１２５Ｍ　　ＮａＣｎを含む０
．０２Ｍ＋−リス塩酸緩衝液（ｐＨ８，０）で溶出した
。　各両分の活性を実施例４に記載の方法で測定した。

次に、活性画分を、あらかじめ０．１５５ＭＮ　ａ、　
Ｃβで平衡化したセファデックスＧ−１００カラム（フ
ァルマシア社製、１０ｃｍφＸ　８６　ｃｍ）に供し、
同波を展開溶媒としてゲル濾過を行なった。　各両分の
活性を、実施例４に記載の方法で測定した。

得られた活性画分を、透析膜（既出）を用いて０．０２
Ｍトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８，０）に対して透析した。

　透析後、あらかじめ同緩衝液で平衡化したＣＭ−セフ
ァデックスカラム（既出）に添加し、ＮａＣｊ２を含有
する同緩衝液を用いて、ＮａＣｊ２濃度０Ｍ−０，２Ｍ
の直線濃度勾配法にて溶出を行なった。　各両分の活性
を、実施例４に記載の方法で測定した。

得られた活性画分を、セファデックスＧ１００（既出）
を用い、０．１５５ＭのＮａＣｆ２を展開溶媒としてゲ
ル濾過を行なった。　各両分の活性を、実施例４に記載
の方法で測定した。

得られた活性画分の一部を用い、実施例７に記載の方法
で、本発明の蛋白質の安全性を評価した。

残りの活性画分については、これを、透析膜（既出）を
用いて蒸留水に対して透析し、透析後に凍結乾燥を行な
った。　この凍結乾燥されたサンプルを、００５％トリ
フルオロ酢酸に溶解し、クロマトグラフィー用サンプル
とした。　次に、あらかじめ０．０５％トリフルオロ酢
酸にて平衡化したオクタデシル−ＮＰＲカラム（４，６
ｍｍφＸ３５ｍｍ、東ソー株式会社製）に上記のクロマ
トグラフィー用ザンブルを添加し、アセトニトリルを含
む０．０５％トリフルオロ酢酸溶液を用いて、アセトニ
トリル濃度Ｏ％−１００％の直線濃度勾配法にて溶出を
行なった。　各両分の波長２８０ｎｍにおける吸光度を
分光光度計にて測定したところ、アセトニトリル濃度約
４８％〜５３％付近に蛋白質のピークが認められた。

蛋白質のピークが認められたこの画分を回収し、その一
部を用い、実施例５に記載の方法で５ＤＳ−ポリアクリ
ルアミドゲル電気泳動法（以下、５ＤＳ−ＰＡＧＥと略
す）を行なった後、銀染色キット（第一化学薬品株式会
社）にて染色を行なった。　その結果、分子量的６０±
１０ｋＤａ付近にバンドが認められた。

また、前記画分の残りをサンプルとして、それぞれ、実
施例２のカルボキシメチル化、実施例３の酵素処理を行
なった。

（実施例２）カルボキシメチル化実施例１で得られた両分を凍結乾燥後、６Ｍ塩酸グアニ
ジン／２ｍＭ　　ＥＤＴＡｌｏ、５Ｍトリス塩酸緩衝液
（ｐＨ８，５）に溶解し、２５°Ｃで２０分間、窒素置
換を行なった。　次に、蛋白質の１０００倍のモル数の
２−メルカプトエタノールを添加し、２５℃にて４時間
、窒素置換を行なった。　さらに、遮光条件下で、蛋白
質の１０００倍のモル数のヨード酢酸すトリウムを添加
し、２５℃で１５分間、窒素置換を行なった。　その後
、引き続き遮光条件下で、０．０５Ｍ重炭酸アンモニウ
ム水溶液に対して、４℃にて、−晩透析を行ない、得ら
れたサンプルを凍結乾燥した。

次に、以下の方法で逆相クロマトグラフィーを行なった
。

すなわぢ、あらかじめ０．０５％トリフルオロ酢酸で平
衡化したバイダックＣ１８カラム（４，６ｍｍφＸ２５
ｃｍ、バイダック社製）に、凍結乾燥した前述のサンプ
ルを０．０５％トリフルオロ酢酸に溶解したものを流速
１．０ｍρ／分で添加し、アセトニトリルを含有する０
　０５％トリフルオロ酢酸溶液を用い、アセ１−二ｌ−
リル濃度Ｏ％−１００％の直線濃度勾配法にて溶出を行
なった。　各画分の波長２８０ｎｍにおける吸光度を分
光光度計にて測定した。

アセトニトリル濃度約２３％−３２％付近に認められた
蛋白質のピークの両分を回収した後、その一部を、実施
例５に記載の方法に準じ、１５％ゲルを用いる５ＤＳ−
ＰＡＧＥに供した。　泳動後、銀染色キット（既出）に
て染色を行なったところ、分子量的４０±５ｋＤａにバ
ンドが認められた。

また、前記蛋白質のピークの画分の残りの一部を使用し
て、実施例６に記載の方法でアミノ酸配列の解析を行な
った。　その結果、本発明の蛋白質には、下記アミノ酸
配列が含まれることがわかった。

Ａｌａ　Ｐｒｏ　Ｐｒｏ　Ｐｒｏ　　Ｗ　　Ｈｉｓ　Ｌ
ｅｕ　Ｖａｌ　ＰｈｅＬｅｕ　　Ｚ　　Ａ１．ａ（但し、ＷばＶａｌ　もしくはＬｙｓであり：２はアミ
ノ酸が特定されないことを示す）（実施例３）酵素処理実施例１により得られた両分を凍結乾燥した後、０．０
５Ｍ酢酸アンモニウム緩衝液（ｐＨ４，０）に溶解し、
これにスフフィロコツカスプロテアーゼ（プロテアーゼ
　Ｖ、８、ＩＣＮイムノバイオロジカルズ社製）１μｇ
を加えて３７°Ｃで２０時間反応させた。　氷冷して反
応を停止させ、これをサンプルとして、以下の方法で逆
相クロマトグラフィーを行なった。

すなわち、あらかじめ０．０５％トリフルオ口酢酸で平
衡化したオクタデシル−ＮＰＲカラム（４，６ｍｍφＸ
２５ｍｍ、東ソー株式会社製）に上記のサンプルを添加
し、アセトニトリルを含む０．０５％トリフルオロ酢酸
溶液を用い、アセトニトリル濃度Ｏ％−１００％の直線
濃度勾配法にて溶出を行なった。　各画分の波長２２０
ｎｍにおける吸光度を分光光度計で測定したところ、複
数の蛋白質のピークが認められた。

これらのピーク内、アセトニトリル濃度的３２％−３５
％付近に認められた蛋白質のピークの画分を回収し、実
施例６に記載の方法でアミノ酸配列の解析を行なった。

　その結果、本発明の蛋白質には、下記アミノ酸配列が
含まれることがわかった。

Ｌｅｕ　Ｉｌｅ　ｔ（ｉｓ　Ｉｌｅ　　Ｚ　　Ａｓｐ　
　Ｚ　　Ｌｅｕ　　ＸＴｈｒ　Ｌｅｕ　Ｖａｌ　Ｌｙｓ
　Ｌｅｕ　Ａｌａ（但し、ＸはＰｒｏもしくはＩｌｅで
あり、Ｚはアミノ酸が特定されないことを示す）さらに、アセトニトリル濃度的３６％−３９％付近に認
められた蛋白質のピークの両分を回収し、実施例６に記
載の方法でアミノ酸配列の解析を行なった。　その結果
、本発明の蛋白質には、下記アミノ酸配列が含まれるこ
とがわかった。

Ｙ　　Ｔｙｒ　　Ｌｅｕ　　Ｌｙｓ　　Ｐｒｏ　　Ｔｙ
ｒ　　Ｚ　　Ｐｈｅ　　ｌ１ｅＧｉｎ　　Ａｓｐ　　Ｌ
ｙｓ　　Ａｓｎ　　Ｚ　　　Ｚ　　　Ｚ　　Ｔｙｒ　　
Ａ］、ａＧｌｙ　　Ｍｅｔ（但し、ＹはＡｌａもしくはＧｌｕであり、２はアミノ
酸が特定されないことを示す）（実施例４）活性測定熊谷等の方法（メソッド　イン　エンザイモロジー、８
６巻、１７−３０頁、１９８２年）を参考にして、本発
明の蛋白質の活性を測定した。

すなわち、実施例１で得られた画分に０．　１％ゼラチ
ン１０．２Ｍ酢酸緩衝液（ｐＨ６，０）を添加し、活性
測定用サンプルとした。　次に、ｐ−ニトロカテコール
硫酸（シグマ社製）を、０．５Ｍ酢酸緩衝液（ｐＨ６、
０）　／　１　、６６　Ｍ　　Ｎ　ａ　ＣＱ　／　０　
、０５　Ｍビロリン酸ナトリウムに終濃度０．ＯＩＭと
なるように溶解し、これを、０．５ｍＩ２ずつエツペン
ドルフチューブに分注した。　これに、前述の活性測定
用サンプル０．５ｍＡを加え、反応を開始した。　３７
℃にて６０分間反応させた後、ＩＮ　　ＮａＯＨを１．
５＋ｎ４２添加して反応を停止させた。　反応終了後、
分光光度計にて波長５１５ｎｍの吸光度を測定した。　
なお、ブランクとして、前述のｐ−ニトロカテコール硫
酸溶液にＩＮのＮａＯＨを添加した後、前述の活性測定
用サンプルを添加した反応ｌ夜を使用した。

（実施例５）ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動
法実施例１および２で得られた本発明の蛋白質の精製品の
一部をサンプルとして、Ｌａｅｍｍｌｉの方法（ネイチ
ャー、２２７巻、６８０頁、１９７０年）で５ＤＳ−Ｐ
ＡＧＥを行なった。

まず、上記サンプルを凍結乾燥し、それを０．０４％５
ＤＳ１０．０５Ｍトリス塩酸緩衝液（ｐＨ６，８）に溶
解した。　溶解後、終濃度が１％Ｓ　Ｄ　Ｓ／２％ＤＴ
Ｔ／２０％グリセロール１０．０１％ＢＰＢ　（ｐＨ６
，８）となるように泳動用緩衝液を添加し、１００℃で
５分間、熱処理を行なった。　熱処理後、１２．５％ゲ
ル（１ｃｍｘ９ｃｍｘ９ｃｍ）による５ＤＳ−ＰＡＧＥ
に供した。

（実施例６）アミノ酸配列の決定実施例２および３で得られたサンプルを用い、本発明の
蛋白質のアミノ酸配列を、以下の方法で決定した。

すなわち、サンプルを５０％酢酸に溶解し、モデル４７
７Ａプロテインシークエンシングシステム−１２０Ａ　
　ＰＴＨアナライザー（アプライドバイオシステムズ社
製）を使用してアミノ酸配列を決定した。　なお、ＰＴ
Ｈアミノ酸の検出を、波長２７０ｎｍにおける吸光度を
測定することにより行ない、あらかじめ同一の方法で分
離した欅準ＰＴＨアミノ酸（アブライドバイオシステム
ズ社製）の保持時間を基準にしてアミノ酸を同定した。

　この結果、本発明の蛋白質は、下記（Ｉ）〜（ＩＩＩ
　）のアミノ酸配列を有していることが確認された。

（１）　Ａｈａ　Ｐｒｏ　Ｐｒｏ　Ｐｒｏ　　Ｗ　　Ｈ
ｉｓ　Ｌｅｕ　Ｖａｌ　ＰｈｅＬｅｕ　　　Ｚ　　　Ａ
ｌａ（但し、ＷはＶａｌもしくはＬｙｓであり、Ｚはアミノ
酸が特定されないことを示す）（ＩＩ）　Ｌｅｕ　Ｉｌｅ　Ｈｉｓ　Ｉｌｅ　　Ｚ　　
Ａｓｐ　　Ｚ　　Ｌｅｕ　　ＸＴｈｒ　Ｌｅｕ　Ｖａｌ
　Ｌｙｓ　Ｌｅｕ　Ａ］、ａ（但し、ＸはＰｒｏもしく
はＩｌｅであり、Ｚはアミノ酸が特定されないことを示
す）（ＩＩＩ）　　Ｙ　　Ｔｙｒ　Ｌｅｕ　Ｌｙｓ　Ｐｒｏ
　Ｔｙｒ　　Ｚ　　Ｐｈｅ　ｌ１ｅＧｉｎ　Ａｓｐ　Ｌ
ｙｓ　Ａｓｎ　　Ｚ　　Ｚ　　Ｚ　　Ｔｙｒ　Ａｌａｃ
ｌｙ　Ｍｅｔ（但し、ＹはＡ　１．　ａもしくはＧ　１．ｕであり、
Ｚは■ アミノ酸が特定されないことを示す）（実施例７）本発明の蛋白質の安全性本発明の蛋白質の安全性を、以下の方法で確認した。

すなわち、実施例１により得られた活性画分を、分画分
子量５０００の限外濾過膜（ウルトラフリーＣＬ、ミリ
ボア社製）を用いて濃縮し、無菌の濾過膜（孔径０．２
２μｍ、ミリボア社製）にて濾過滅菌し、安全性試験用
サンプルを得た。

ＩＣＲ系マウマウス１０匹群とし、上記安全性試験用サ
ンプルを、用量が１００ｍｇ蛋白質／ｋｇとなるように
静脈内投与し、２週間観察した。　対象群には、同用量
の生理食塩液を同様に投与した。　その結果、両群とも
何等の異常も認められず、従って、本発明の生理活性物
質は生体にとって安全であり、該生理活性物質を有効成
分とする本発明の医薬組成物あるいは抗アレルギー剤も
、生体に対して毒性の低いものであることが証明された
。

〈発明の効果〉本発明により、新規なアミノ酸配列を有する蛋白質およ
び新規なアミノ酸配列で構成されるポリペプチドが提供
される。

また、本発明により、該アミノ酸配列を有する蛋白質あ
るいは該アミノ酸配列で構成されるポリペプチドを有効
成分とする医薬組成物および抗アレルギー剤が提供され
る。

さらに、本発明により、該アミノ酸配列をコードするＤ
ＮＡ配列および該ＤＮＡ配列を有するＤＮＡが提供され
る。

本発明のＤＮＡ配列は、プローブの作製に利用でき、ま
た、本発明のＤＮＡは、プローブとして利用できる。

本発明の蛋白質は、アリルスルファターゼＢを構成する
蛋白質であると考えられ、従って、本発明は、アリルス
ルファターゼＢの工業的規模の生産に途を開くものであ
る。

手糸売ネ甫正書（自発）

Claims

【特許請求の範囲】

（１）下記（ I ）〜（III）より選ばれる少なくとも１
つのアミノ酸配列を有することを特徴とする蛋白質。（ I ）ＡｌａＰｒｏＰｒｏＰｒｏＷＨｉｓＬｅｕＶａ
ｌＰｈｅＬｅｕＺＡｌａ（但し、ＷはＶａｌもしくはＬｙｓであり、Ｚはアミノ
酸が特定されないことを示す）（II）ＬｅｕＩｌｅＨｉｓＩｌｅＺＡｓｐＺＬｅｕＸＴ
ｈｒＬｅｕＶａｌＬｙｓＬｅｕＡｌａ（但し、ＸはＰｒｏもしくはＩｌｅであり、Ｚはアミノ
酸が特定されないことを示す）（III）ＹＴｙｒＬｅｕＬｙｓＰｒｏＴｙｒＺＰｈｅＩ
ｌｅＧｌｎＡｓｐＬｙｓＡｓｎＺＺＺＴｙｒＡｌａＧｌ
ｙＭｅｔ（但し、ＹはＡｌａもしくはＧｌｕであり、Ｚはアミノ
酸が特定されないことを示す）
（２）前記蛋白質がアリルスルファターゼＢのの構成蛋
白質である請求項１に記載の蛋白質。
（３）下記（ I ）〜（III）より選ばれる少なくとも１
つのアミノ酸配列で示されることを特徴とするポリペプ
チド。（ I ）ＡｌａＰｒｏＰｒｏＰｒｏＷＨｉｓＬｅｕＶａ
ｌＰｈｅＬｅｕＺＡｌａ（但し、ＷはＶａｌもしくはＬｙｓであり、Ｚはアミノ
酸が特定されないことを示す）（II）ＬｅｕＩｌｅＨｉｓＩｌｅＺＡｓｐＺＬｅｕＸＴ
ｈｒＬｅｕＶａｌＬｙｓＬｅｕＡｌａ（但し、ＸはＰｒｏもしくはＩｌｅであり、Ｚはアミノ
酸が特定されないことを示す）（III）ＹＴｙｒＬｅｕＬｙｓＰｒｏＴｙｒＺＰｈｅＩ
ｌｅＧｌｎＡｓｐＬｙｓＡｓｎＺＺＺＴｙｒＡｌａＧｌ
ｙＭｅｔ（但し、ＹはＡｌａもしくはＧｌｕであり、Ｚはアミノ
酸が特定されないことを示す）
（４）請求項１または２に記載の蛋白質、あるいは請求
項３に記載のポリペプチドを有効成分とすることを特徴
とする医薬組成物。
（５）請求項１または２に記載の蛋白質、あるいは請求
項３に記載のポリペプチドを有効成分とすることを特徴
とする抗アレルギー剤。
（６）下記（ I ）〜（III）より選ばれる少なくとも１
つのアミノ酸配列をコードすることを特徴とするＤＮＡ
配列。（ I ）ＡｌａＰｒｏＰｒｏＰｒｏＷＨｉｓＬｅｕＶａ
ｌＰｈｅＬｅｕＺＡｌａ（但し、ＷはＶａｌもしくはＬｙｓであり、Ｚはアミノ
酸が特定されないことを示す）（II）ＬｅｕＩｌｅＨｉｓＩｌｅＺＡｓｐＺＬｅｕＸＴ
ｈｒＬｅｕＶａｌＬｙｓＬｅｕＡｌａ（但し、ＸはＰｒｏもしくはＩｌｅであり、Ｚはアミノ
酸が特定されないことを示す）（III）ＹＴｙｒＬｅｕＬｙｓＰｒｏＴｙｒＺＰｈｅＩ
ｌｅＧｌｎＡｓｐＬｙｓＡｓｎＺＺＺＴｙｒＡｌａＧｌ
ｙＭｅｔ（但し、ＹはＡｌａもしくはＧｌｕであり、Ｚはアミノ
酸が特定されないことを示す）
（７）請求項６に記載のＤＮＡ配列を有することを特徴
とするＤＮＡ。