JPH03210180A - 自己プロセシング活性を有する多機能性rna、その製造およびその使用 - Google Patents
自己プロセシング活性を有する多機能性rna、その製造およびその使用Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
[発明の背景]
適当な条件下で、RNA分子は、タンパク質の関与なし
で他のRNA分子上の反応を触媒することまたは自触媒
作用的にそれら自身の分子からフラグメントを切断する
ことができる。したがって、413個のヌクレオチドを
有するイントロンは、テトラヒメナ・サーモフィラ(T
etrahymenathermophi la)の2
3S rRNAの3′末端から自触媒作用的に除去さ
れ、環型へ変換される。これは、グアノシン補因子が関
与する多くのフォスフオニステル転移反応によって起き
る(Cech、 T。
で他のRNA分子上の反応を触媒することまたは自触媒
作用的にそれら自身の分子からフラグメントを切断する
ことができる。したがって、413個のヌクレオチドを
有するイントロンは、テトラヒメナ・サーモフィラ(T
etrahymenathermophi la)の2
3S rRNAの3′末端から自触媒作用的に除去さ
れ、環型へ変換される。これは、グアノシン補因子が関
与する多くのフォスフオニステル転移反応によって起き
る(Cech、 T。
R,: Nataure 3fl、578−583.1
983)。RNA基質または選択される反応条件によっ
て、イントロンは特異的リボヌクレアーゼ、ターミナル
トランスフェラーゼ、フォスフオドランスフェラーゼま
たは酸フォスファターゼとして機能することができる。
983)。RNA基質または選択される反応条件によっ
て、イントロンは特異的リボヌクレアーゼ、ターミナル
トランスフェラーゼ、フォスフオドランスフェラーゼま
たは酸フォスファターゼとして機能することができる。
これに関連して、RNA分子はそれ自身を変化させるこ
となくいくつかの反応を行うことができ、この点で、酵
素のよっに挙動する。これらの性質を有するRNA分子
のために、リボザイム(r i bozyme)という
用語がしたがって導入された。
となくいくつかの反応を行うことができ、この点で、酵
素のよっに挙動する。これらの性質を有するRNA分子
のために、リボザイム(r i bozyme)という
用語がしたがって導入された。
タンパク質の関与しない同様の反応は、いくつかのウィ
ロイドRNAおよびサテライトRNAでも可能である。
ロイドRNAおよびサテライトRNAでも可能である。
したがって、自己プロセシング(self−proce
ssing)は、アボカド日シミ(Sun−blotc
h)ウィロイド(AS B V) (llutchi
ns、 C。
ssing)は、アボカド日シミ(Sun−blotc
h)ウィロイド(AS B V) (llutchi
ns、 C。
J、ら: Nucleic Ac1ds Res、 k
l、3627−3640゜1986)、タバコ輪斑(R
ingspot)ウィルスからのサテライトRNA (
s T o b RV) (Prody、 G、A。
l、3627−3640゜1986)、タバコ輪斑(R
ingspot)ウィルスからのサテライトRNA (
s T o b RV) (Prody、 G、A。
ら: 5cience m、1577−1580.19
86)およびルゼルネー時線条ウィルス(Luzern
e TransientStreak Virus)か
らのサテライトRNA(s L T S V ) (F
orster、A、C,ら: Ce1l ’U51.2
11−220.1987)の複製のための必須の反応の
よってある。鋳型として特別に長いRNAの合成を導く
環型は、これらRNAの複製中におそらく形成される。
86)およびルゼルネー時線条ウィルス(Luzern
e TransientStreak Virus)か
らのサテライトRNA(s L T S V ) (F
orster、A、C,ら: Ce1l ’U51.2
11−220.1987)の複製のための必須の反応の
よってある。鋳型として特別に長いRNAの合成を導く
環型は、これらRNAの複製中におそらく形成される。
これら転写物は、自己触媒のエンドヌクレアーゼ的(e
ndonucleolytic)反応によって適当な長
さのゲノムに切断される。
ndonucleolytic)反応によって適当な長
さのゲノムに切断される。
適応のためにこれらによって採用されると思われるRN
Aの構造はハンマー頭(hammer−head)(F
orster、 A、C,ら コ Ce1l 14
54 、211−220. 1987、Haselof
f、J、ら: Nature 13J、585−591
.1988)と記述されている。
Aの構造はハンマー頭(hammer−head)(F
orster、 A、C,ら コ Ce1l 14
54 、211−220. 1987、Haselof
f、J、ら: Nature 13J、585−591
.1988)と記述されている。
プロセシングを可能にするために、これらRNA酵素の
切断部位は特異的で、ある構造的前提条件を有していな
ければならない。
切断部位は特異的で、ある構造的前提条件を有していな
ければならない。
アンチセンスRNAに連結されたりボザイムRNAをコ
ードするDNAを含むベクターを用いて所望の任意の生
物の宿主細胞を形質転換することが可能で、それによっ
て該DNAを発現することができることが、いま見出さ
れた。
ードするDNAを含むベクターを用いて所望の任意の生
物の宿主細胞を形質転換することが可能で、それによっ
て該DNAを発現することができることが、いま見出さ
れた。
アンチセンスRNAが、多くの原核および真核細胞、と
りわけ植物細胞、において遺伝子発現を阻害することが
知られている(Green、 P、J、ら:Ann、
Rev、 Biochc+++−55,569,198
6)。阻害の機序のほとんどはまだ明かではない。真核
生物系ではm RN Aの細胞質への輸送を妨げる二本
鎖RNAが形成されることが考えられる。
りわけ植物細胞、において遺伝子発現を阻害することが
知られている(Green、 P、J、ら:Ann、
Rev、 Biochc+++−55,569,198
6)。阻害の機序のほとんどはまだ明かではない。真核
生物系ではm RN Aの細胞質への輸送を妨げる二本
鎖RNAが形成されることが考えられる。
Rezaianら(Rezaian、 M、 ら:
Plant Mo1. Biol。
Plant Mo1. Biol。
■、463.1988)は、例えば、アンチセンスRN
Aのキュウリモザイクウィルス(CMV)に対する抗ウ
ィルス剤としての使用の可能性を調べた。しかし、著者
らは、アンチセンスRNAの抗ウイルス効果は不十分で
あったことを観察した。
Aのキュウリモザイクウィルス(CMV)に対する抗ウ
ィルス剤としての使用の可能性を調べた。しかし、著者
らは、アンチセンスRNAの抗ウイルス効果は不十分で
あったことを観察した。
[発明の概要]
適当なりボザイムRNAの各々のアンチセンスRNAへ
のスペイサ−を介しての連結は、しかし、いま・例えば
−、Rezaianによって示し得たよりもより効果的
なウィルス抵抗性を生じる。RNA分子のそのような連
結は、したがって、植物において抗ウィルス剤としての
活性の点でだけよりむしろ基質に向けられた形質転換さ
れた生物における高められた活性を一般にもたらす。
のスペイサ−を介しての連結は、しかし、いま・例えば
−、Rezaianによって示し得たよりもより効果的
なウィルス抵抗性を生じる。RNA分子のそのような連
結は、したがって、植物において抗ウィルス剤としての
活性の点でだけよりむしろ基質に向けられた形質転換さ
れた生物における高められた活性を一般にもたらす。
したがって、本発明は次のことに間する。
1、 アンチセンスRNA配列にスペイサ−を介して連
結させたりボザイムRNA配列をコードする遺伝子。
結させたりボザイムRNA配列をコードする遺伝子。
2、 1で記載した遺伝子または対応するRNA配列
を含む生物。
を含む生物。
3. 基質に向けられた生物における薬剤としての、ア
ンチセンスRNAとスペイサ−を介して連結させたりボ
ザイムRNAの使用。
ンチセンスRNAとスペイサ−を介して連結させたりボ
ザイムRNAの使用。
[発明の詳細な説明]
本発明は、特にその好ましい態様において、以下に詳細
に記述される。本発明はまた特許請求の範囲に定義され
る通りである。
に記述される。本発明はまた特許請求の範囲に定義され
る通りである。
本発明による多機能性RNAは、本質的に、各々の場合
にリボザイムがRNA分子の3′および5′末端にある
ように構成される。アンチセンスRNA単位は、いわゆ
るスペイサ−を介して間に挿入され、いくつかのRNA
単位が存在する場合は、RNA単位は同様にお互いにス
ペイサ−を介して連結され得る。多機能性RNA分子の
好ましい態様はパターンとして次のように示すことがで
きる。
にリボザイムがRNA分子の3′および5′末端にある
ように構成される。アンチセンスRNA単位は、いわゆ
るスペイサ−を介して間に挿入され、いくつかのRNA
単位が存在する場合は、RNA単位は同様にお互いにス
ペイサ−を介して連結され得る。多機能性RNA分子の
好ましい態様はパターンとして次のように示すことがで
きる。
5′−リボザイムRNA−スペイサー−(アンチセンス
RNA)n−スベイサーーリボザイムRNA−3’ここ
で、nは1〜10、好ましくは1〜5、特に好ましくは
1〜3、の数である。全体としてまたは少なくとも8個
、好ましくは10〜20個のヌクレオチドからなる一部
分においてリボザイムの配列に相補的である20〜25
個のヌクレオチドの鎖を、スペイサ−として挿入する。
RNA)n−スベイサーーリボザイムRNA−3’ここ
で、nは1〜10、好ましくは1〜5、特に好ましくは
1〜3、の数である。全体としてまたは少なくとも8個
、好ましくは10〜20個のヌクレオチドからなる一部
分においてリボザイムの配列に相補的である20〜25
個のヌクレオチドの鎖を、スペイサ−として挿入する。
RNAのリボザイム配列は、このようにしてスペイサ−
と結合して、後者を認識配列の直後で切断することがで
きる。数nが1よりも大きい場合には、リボザイム切断
部位を有するこの種のスペイサ−は、同様に各々のアン
チセンスRNA分子間に挿入される。GUC切断部位は
、好ましくはりボザイム切断部位として組み込まれる。
と結合して、後者を認識配列の直後で切断することがで
きる。数nが1よりも大きい場合には、リボザイム切断
部位を有するこの種のスペイサ−は、同様に各々のアン
チセンスRNA分子間に挿入される。GUC切断部位は
、好ましくはりボザイム切断部位として組み込まれる。
アンチセンスRNAは、基質、例えば、°選択可能マー
カー遺伝子(抗生物質耐性)をコードするRNAまたは
所望の任意の細胞機能、例えばジヒドロフオレートレダ
クターゼ、チミジンキナーゼ、成熟酵素ポリガラクツロ
ナーゼ、ペクチンエステラーゼ等、分化および発達に関
与するタンパク質またはホルモン受容体など、をコード
するRNAのような基質に対して向けることができる。
カー遺伝子(抗生物質耐性)をコードするRNAまたは
所望の任意の細胞機能、例えばジヒドロフオレートレダ
クターゼ、チミジンキナーゼ、成熟酵素ポリガラクツロ
ナーゼ、ペクチンエステラーゼ等、分化および発達に関
与するタンパク質またはホルモン受容体など、をコード
するRNAのような基質に対して向けることができる。
特に、植物に有害な型のウィルスを、本発明によるリボ
ザイムーアンチセンス系を用いて有利に撃退することが
できる。この目的のために、例えば、次に記述するよう
な方法が実施される。他の基質に向けられたりボザイム
アンチセンスRN Aもまた同様の方法で合成される。
ザイムーアンチセンス系を用いて有利に撃退することが
できる。この目的のために、例えば、次に記述するよう
な方法が実施される。他の基質に向けられたりボザイム
アンチセンスRN Aもまた同様の方法で合成される。
多機能性RNAをコードするDNAオリゴヌクレオチド
を、合成的に調製することができる。アンチセンスRN
Aのためのオリゴヌクレオチドを、ウィルスDNAおよ
びRNA配列を基にして合成することができる。このた
めに、原則的にはいかなる植物有害ウィルスをも用いる
ことができる。
を、合成的に調製することができる。アンチセンスRN
Aのためのオリゴヌクレオチドを、ウィルスDNAおよ
びRNA配列を基にして合成することができる。このた
めに、原則的にはいかなる植物有害ウィルスをも用いる
ことができる。
好ましい型のウィルスとしては、病原性RNAウィルス
、特に、キュウリモザイクウィルス、アルファルファモ
ザイクウィルス、ブロウム(Brome)モザイクウィ
ルス、タバコモザイクウィルス、ポテトウィルスXまた
はY、トマト輪斑ウィルス、トマトアスペルミ(Asp
er+ay)ウィルスまたはタバコラドル(Rattl
e)ウィルスがあげられる。
、特に、キュウリモザイクウィルス、アルファルファモ
ザイクウィルス、ブロウム(Brome)モザイクウィ
ルス、タバコモザイクウィルス、ポテトウィルスXまた
はY、トマト輪斑ウィルス、トマトアスペルミ(Asp
er+ay)ウィルスまたはタバコラドル(Rattl
e)ウィルスがあげられる。
リボザイムRNAをコードするオリゴヌクレオチドの合
成の鋳型としては、少なくとも10個の連続したヌクレ
オチド、特に14〜20個のヌクレオチド、有利には各
々のウィルスのRNA配列の中間部からのものが好まし
い。このRNA配列は、RNAウィルスのゲノムおよび
DNAウィルスのDNA配列に由来するRNA配列のい
ずれでもあり得る。Rezaianら(Rezaian
、 M、ら: Eur−J、 Biochem、 li
Q、 331−339.1985、Eur、 J。
成の鋳型としては、少なくとも10個の連続したヌクレ
オチド、特に14〜20個のヌクレオチド、有利には各
々のウィルスのRNA配列の中間部からのものが好まし
い。このRNA配列は、RNAウィルスのゲノムおよび
DNAウィルスのDNA配列に由来するRNA配列のい
ずれでもあり得る。Rezaianら(Rezaian
、 M、ら: Eur−J、 Biochem、 li
Q、 331−339.1985、Eur、 J。
Biochem、 JjQ、27?−284,1984
)およびGouldら(Gould、 1.ら: Eu
r、 J、 Biochem、 ufi、217−22
6.1982 )によって公表されている配列に対応す
る、キュウリモザイクウィルスの三つのRNA配列RN
AI RNA2およびRNA3またはその一部を基本と
して用いることは特に有利である。
)およびGouldら(Gould、 1.ら: Eu
r、 J、 Biochem、 ufi、217−22
6.1982 )によって公表されている配列に対応す
る、キュウリモザイクウィルスの三つのRNA配列RN
AI RNA2およびRNA3またはその一部を基本と
して用いることは特に有利である。
リボザイムをコードするオリゴヌクレオチドは、各々少
なくとも5ヌクレオチド、好ましくは7〜10個のヌク
レオチドからなる最初のおよび最終の配列が、阻害され
るべきウィルスのRNAと相補的になるように合成され
る。閏に位置する配列の一部はりボザイムの機能性を予
め決定した特定のヌクレオチドからなり、また一部は可
変的ヌクレオチドからなる。基質RNAとハイブリダイ
ズしたりボザイムは、次のように図式化することができ
る。
なくとも5ヌクレオチド、好ましくは7〜10個のヌク
レオチドからなる最初のおよび最終の配列が、阻害され
るべきウィルスのRNAと相補的になるように合成され
る。閏に位置する配列の一部はりボザイムの機能性を予
め決定した特定のヌクレオチドからなり、また一部は可
変的ヌクレオチドからなる。基質RNAとハイブリダイ
ズしたりボザイムは、次のように図式化することができ
る。
基質RNA
ここで、
Nは、基質RNAのヌクレオチド、A、C,GまたはU
であり、 Kは、リボザイム中のNに相補的なヌクレオチドであり
、 ■は、リボザイム中の可変的なヌクレオチド、A、C,
GまたはUであり、 vLは、リボザイムのループ中の可変的なヌクレオチド
、A、C,GまたはUである。
であり、 Kは、リボザイム中のNに相補的なヌクレオチドであり
、 ■は、リボザイム中の可変的なヌクレオチド、A、C,
GまたはUであり、 vLは、リボザイムのループ中の可変的なヌクレオチド
、A、C,GまたはUである。
■Lヌクレオチドの数は、0〜550でよい。
アンチセンスRNAの調製を対応的に行うが、オリゴヌ
クレオチドはそれらが対応するアンチセンス位置方向に
RNAをコードするように合成する。
クレオチドはそれらが対応するアンチセンス位置方向に
RNAをコードするように合成する。
しかし、リボザイムRNAのためのオリゴヌクレオチド
合成の基礎は、いかなる所望の基質でもよい。原則的に
、スペイサ−がリボザイムの基質であり、適当なりボザ
イム切断部位を提供するようにだけは留意しなければな
らない。リボザイムとアンチセンス分子の連結のための
スペイサ−を、対応的に発現された全部のRNAまたは
その部分が、リボザイムに相補的であるように、相補的
なヌクレオチドが有利にリボザイムのためのGUC切断
部位の近くに集まるように、構築する。
合成の基礎は、いかなる所望の基質でもよい。原則的に
、スペイサ−がリボザイムの基質であり、適当なりボザ
イム切断部位を提供するようにだけは留意しなければな
らない。リボザイムとアンチセンス分子の連結のための
スペイサ−を、対応的に発現された全部のRNAまたは
その部分が、リボザイムに相補的であるように、相補的
なヌクレオチドが有利にリボザイムのためのGUC切断
部位の近くに集まるように、構築する。
構築されたオリゴヌクレオチドは、適当なリンカ−とと
もに提供される。このタイプのリンカ−は、例えば、E
c oRI、Sa l I、BamHI、HindI[
I、Ec oRV、Sma 1.Xho I、Kpn
I、好ましくはXbaIまたはPstl、の切断部位を
有する。
もに提供される。このタイプのリンカ−は、例えば、E
c oRI、Sa l I、BamHI、HindI[
I、Ec oRV、Sma 1.Xho I、Kpn
I、好ましくはXbaIまたはPstl、の切断部位を
有する。
集められたオリゴヌクレオチドを、ベクターpUc19
、pUclBまたはp Bluescript(Str
atagene、 Heidelherg、 Prod
uct 1nforvation)を用いてクローニン
グしてから、配列決定をする。
、pUclBまたはp Bluescript(Str
atagene、 Heidelherg、 Prod
uct 1nforvation)を用いてクローニン
グしてから、配列決定をする。
確認されたオリゴヌクレオチドを、植物プロモーターを
有する介在ベクターにクローニングする。
有する介在ベクターにクローニングする。
このタイプのベクターの例としては、プラスミドp P
CV 701 (Velten、 J、ら: EMB
OJ、 3.2723−2730. 1984) 、
pNCN(Pro+gn、 門、 ら:PNAS
fi2..5824−5826.1985)またはpN
Os(AnG、ら: EMBO、L 4.27?−27
6,1985)などがあげられる、35Sプロモーター
を有するベクター p D H51(Pietrzak
、 M、ら: NAR11,5857,1986)が好
ましく用いられる。
CV 701 (Velten、 J、ら: EMB
OJ、 3.2723−2730. 1984) 、
pNCN(Pro+gn、 門、 ら:PNAS
fi2..5824−5826.1985)またはpN
Os(AnG、ら: EMBO、L 4.27?−27
6,1985)などがあげられる、35Sプロモーター
を有するベクター p D H51(Pietrzak
、 M、ら: NAR11,5857,1986)が好
ましく用いられる。
続いての、例えば大腸菌MC1061,DHI。
DKI、0M4BまたはXL−1などの、大腸菌の形質
転換の後、陽性のクローンを、プラスミドミニ調製およ
び適当な制限酵素による切断などの既知の方法(Man
iatisら: Lab、 Manual)によって同
定する。
転換の後、陽性のクローンを、プラスミドミニ調製およ
び適当な制限酵素による切断などの既知の方法(Man
iatisら: Lab、 Manual)によって同
定する。
これら陽性クローンを、次いで、バイナリ−植物ベクタ
ーにサブクローニングする。pGv3850 (Zam
brysky、 P、ら: EMBOJ、 2.214
3−2150、1983)またはp OCA 18 (
Olszewski、N、: NARLfi、1076
5−10782.1988)を植物ベクターとして用い
ることができる。pOcA18が好ましく用いられる。
ーにサブクローニングする。pGv3850 (Zam
brysky、 P、ら: EMBOJ、 2.214
3−2150、1983)またはp OCA 18 (
Olszewski、N、: NARLfi、1076
5−10782.1988)を植物ベクターとして用い
ることができる。pOcA18が好ましく用いられる。
T −D N Aにおいて上記のように構築された付加
したDNAフラグメントを有している植物プロモーター
を含む得られたバイナリ−植物ベクターを、植物の形質
転換に用いる。これはエレクトロポレーションまたはマ
イクロインジェクション等の技術を用いて行うことがで
きる。
したDNAフラグメントを有している植物プロモーター
を含む得られたバイナリ−植物ベクターを、植物の形質
転換に用いる。これはエレクトロポレーションまたはマ
イクロインジェクション等の技術を用いて行うことがで
きる。
好ましくは、プロトプラストの共培養(CO−cult
ivation)またはアゲロバクチリアを用いての葉
部細片の形質転換を用いる。この目的のために、植物ベ
クター構築物を、精11DNAによるまたは大腸菌S
M 10 (Simon R,ら: Biotechn
ology L、784−791.1983)などのヘ
ルパー株を介しての形質転換によって、Tiプラスミド
を有するA282のようなアグロバクテリウム・ツメフ
ァシェンス(Agrobacteriu+w tu*e
faciens)中にトリペアレント交配(tripa
rental gIating)を介して転移させる。
ivation)またはアゲロバクチリアを用いての葉
部細片の形質転換を用いる。この目的のために、植物ベ
クター構築物を、精11DNAによるまたは大腸菌S
M 10 (Simon R,ら: Biotechn
ology L、784−791.1983)などのヘ
ルパー株を介しての形質転換によって、Tiプラスミド
を有するA282のようなアグロバクテリウム・ツメフ
ァシェンス(Agrobacteriu+w tu*e
faciens)中にトリペアレント交配(tripa
rental gIating)を介して転移させる。
直接的形質転換およびトリペアレント交配を、 rPI
ant Mo1ecular Biology Man
ualJ(Kluwer Academic Publ
ishers、 Dardrecht。
ant Mo1ecular Biology Man
ualJ(Kluwer Academic Publ
ishers、 Dardrecht。
1988)に記載のようにして行った。
基本的に、本発明によって構築されるDNAを有するバ
イナリ−植物ベクターを用いて全ての植物を形質転換さ
せることが可能である。双子葉植物、特に有用植物、例
えば澱粉、炭水化物、タンパク質または脂質をそれらの
器官に有用量に産生または貯蔵するもの、または果実お
よび野菜を産生ずるもの、または香辛料、繊維および実
用的に有用な産生物または薬物、染料または蝋を提供す
るもの、等が家畜用植物と同様に好ましい。
イナリ−植物ベクターを用いて全ての植物を形質転換さ
せることが可能である。双子葉植物、特に有用植物、例
えば澱粉、炭水化物、タンパク質または脂質をそれらの
器官に有用量に産生または貯蔵するもの、または果実お
よび野菜を産生ずるもの、または香辛料、繊維および実
用的に有用な産生物または薬物、染料または蝋を提供す
るもの、等が家畜用植物と同様に好ましい。
トマト、イチゴ、アボカド、および、例えばパパイヤ、
マンゴ−などの熱帯産果実、さらにナシ、リンゴ、ネク
タリン、アンスまたはモモなどを例にあげることができ
よう。さらに、全てのタイプの穀物、西洋アブラナ、イ
モ類、大豆、綿花、トウモロコシ、甜菜またはヒマワリ
などを、形質転換さるべき植物の例としてあげることが
できよう。
マンゴ−などの熱帯産果実、さらにナシ、リンゴ、ネク
タリン、アンスまたはモモなどを例にあげることができ
よう。さらに、全てのタイプの穀物、西洋アブラナ、イ
モ類、大豆、綿花、トウモロコシ、甜菜またはヒマワリ
などを、形質転換さるべき植物の例としてあげることが
できよう。
形質転換された細胞を、選択培地を用いて選択して、カ
ルスにまで増殖させて、適当な培地(Shainら:
Theor、 Appl、 Genet、 Z2.77
0−770.1986、Masson、 J、ら: P
lant 5cience 51.167−176.1
987、Zhanら: Plant Mo1. Bio
l、 u、551−559.1988、McGrana
hasら: Bio/Technology fi、8
00−804.1988、Novrateら: Bio
/Technology7.154−159.1989
)上で植物体に再生させる。
ルスにまで増殖させて、適当な培地(Shainら:
Theor、 Appl、 Genet、 Z2.77
0−770.1986、Masson、 J、ら: P
lant 5cience 51.167−176.1
987、Zhanら: Plant Mo1. Bio
l、 u、551−559.1988、McGrana
hasら: Bio/Technology fi、8
00−804.1988、Novrateら: Bio
/Technology7.154−159.1989
)上で植物体に再生させる。
得られる植物体は、構築されたオリゴヌクレオチドを用
いて発現されたRNAがGUC切断部位上で細胞中のり
ボザイム活性によって切断される限り、形質転換によフ
て変えられ、アンチセンスRNAはこの理由で放出され
、リボザイムRNAがアンチセンスRNAとともにウィ
ルスDNAまたはRNAに対して活性になることが可能
である。
いて発現されたRNAがGUC切断部位上で細胞中のり
ボザイム活性によって切断される限り、形質転換によフ
て変えられ、アンチセンスRNAはこの理由で放出され
、リボザイムRNAがアンチセンスRNAとともにウィ
ルスDNAまたはRNAに対して活性になることが可能
である。
以下の諸例によって、本発明はさらに説明される。
例
特に記載がなければ、百分率は重量パーセントである。
1、 多機能性RNAの発現のためのDNAの合成
多機能性RNAの発現のための表1のDNA配列の合成
を、以下の記述のようにして行った。
を、以下の記述のようにして行った。
a)リボザイムI[1−46]: CMVと相同であ
る領域は、公表されたRNAI配列(Rezaian
M、ら: Eur、 J、 Bioche+m、 15
11.331−339.1985)の位置3248から
3264までに基づく。リボザイムのための定常領域は
表1に見ることができ、Haseloffら(Hase
loff、 J、ら:Nature 3i4.585−
591.1988)による公表からのものであった。
る領域は、公表されたRNAI配列(Rezaian
M、ら: Eur、 J、 Bioche+m、 15
11.331−339.1985)の位置3248から
3264までに基づく。リボザイムのための定常領域は
表1に見ることができ、Haseloffら(Hase
loff、 J、ら:Nature 3i4.585−
591.1988)による公表からのものであった。
b)スペイサ−[47−701: 公表されたRNA
2配列(Rezaian、 M−ら: Eur、 J。
2配列(Rezaian、 M−ら: Eur、 J。
Biochem、 113.27?−284,1984
)の位置2853から2870までに基づく。
)の位置2853から2870までに基づく。
C)アンチセンス1[71−243]: 公表された
RNA4配列(にould 1.ら: Eur、 J−
Biochew+、 Lu、 217−226.198
2)の位置2054から2193までに基づく。
RNA4配列(にould 1.ら: Eur、 J−
Biochew+、 Lu、 217−226.198
2)の位置2054から2193までに基づく。
d)スペイサ−[219−2431: b)に記載の
スペイサ−[47−701と同様。
スペイサ−[47−701と同様。
e)アンチセンス2[244−3131: 公表され
たRNA2配列(上記を参照されたい)の位置71から
134までに基づく。
たRNA2配列(上記を参照されたい)の位置71から
134までに基づく。
f)スペイサ−[314−338]: b)に記載の
スペイサ−[47−701と同様。
スペイサ−[47−701と同様。
8)アンチセンス3[339−405コニ 公表された
RNA4配列(上記を参照されたい)の位置1200か
ら1261までに基づく。
RNA4配列(上記を参照されたい)の位置1200か
ら1261までに基づく。
h)スペイサ−[406−429]: 公表されたR
NAI配列(上記を参照されたい)の位置324B−3
264までに基づく。
NAI配列(上記を参照されたい)の位置324B−3
264までに基づく。
i)リボザイム[430−480]: CMVに相同
の領域はRNA2配列(上記を参照されたい)の位置2
853から2870に基づくものであり、表1の定常領
域はa)に記載の公表物を参照されたい。
の領域はRNA2配列(上記を参照されたい)の位置2
853から2870に基づくものであり、表1の定常領
域はa)に記載の公表物を参照されたい。
カギ括弧は、多機能性RNAの発現のための付加したD
NA配列の位置に対応する(表1)。
NA配列の位置に対応する(表1)。
ホスフォルアミド法を用いて、表1にあげたオリゴヌク
レオチドを合成機で合成した。断片は配列から認めるこ
とができる。第一のものは最初のXmaIリンカ−から
KpnI部位まで、第二のものはKpnIからBamH
Iまで、第三のものはBamHIからSac Iまでお
よび第四のものは5aclから最後のSmal連結部ま
で、広がっている。各々の場合に鎖とそれに相補的な鎖
を合成し、これらをクローニングの前に等モル量で合わ
せた。
レオチドを合成機で合成した。断片は配列から認めるこ
とができる。第一のものは最初のXmaIリンカ−から
KpnI部位まで、第二のものはKpnIからBamH
Iまで、第三のものはBamHIからSac Iまでお
よび第四のものは5aclから最後のSmal連結部ま
で、広がっている。各々の場合に鎖とそれに相補的な鎖
を合成し、これらをクローニングの前に等モル量で合わ
せた。
2 、 pBIuescripts K+におけるク
ローニングおよび配列決定 プラスミドpBIuescripts K + (St
ratagene。
ローニングおよび配列決定 プラスミドpBIuescripts K + (St
ratagene。
Product Information)を、特定の
酵素(XmaI/Kpn L Kpn I/BamHI
、BamH1/5acl、5acI/Smal)で開環
し、仔ウシ腸管ホスファターゼ(CI P)で処理した
後に、5倍過剰の二本鎖燐酸化オリゴヌクレオチドと連
結した。イソプロピルチオガラクトシド(I P T
G、 Boehrin3er Mannheim)によ
る誘導の後、陽性クローンを、5−ブロモ−4−クロロ
−3−インドリル−β−D〜ガラクトシド(X−gal
)(Boehringer、 Mannheim)を含
むLBプレート上でXL−ブルー株(Stratage
ne)中の白色コロニーとして同定することが可能であ
った。
酵素(XmaI/Kpn L Kpn I/BamHI
、BamH1/5acl、5acI/Smal)で開環
し、仔ウシ腸管ホスファターゼ(CI P)で処理した
後に、5倍過剰の二本鎖燐酸化オリゴヌクレオチドと連
結した。イソプロピルチオガラクトシド(I P T
G、 Boehrin3er Mannheim)によ
る誘導の後、陽性クローンを、5−ブロモ−4−クロロ
−3−インドリル−β−D〜ガラクトシド(X−gal
)(Boehringer、 Mannheim)を含
むLBプレート上でXL−ブルー株(Stratage
ne)中の白色コロニーとして同定することが可能であ
った。
各々の場合、5個のコロニーを単離して、ジデオキシ終
結法(Boehringer、Sequencingに
it)によって配列決定した。適当な酵素による切断の
後、オリゴヌクレオチドを、高純度の(低融解)アガロ
ースゲル(Gibco、 Brueggenstein
、西ドイツ)から期待される配列を有するコロニーから
単離した。
結法(Boehringer、Sequencingに
it)によって配列決定した。適当な酵素による切断の
後、オリゴヌクレオチドを、高純度の(低融解)アガロ
ースゲル(Gibco、 Brueggenstein
、西ドイツ)から期待される配列を有するコロニーから
単離した。
単離したオリゴヌクレオチドを連結して、非連結のもの
から高純度(低融解)アガロースゲル上で分離した。期
待される0、5kbのバンドを切り出して、突き出てい
るXmar部位を埋填した後にpBIuescript
s K+のSmaI認識配列中に挿入した。
から高純度(低融解)アガロースゲル上で分離した。期
待される0、5kbのバンドを切り出して、突き出てい
るXmar部位を埋填した後にpBIuescript
s K+のSmaI認識配列中に挿入した。
第1図は、完全な断片が組み込まれたベクターpBlu
escriptによって形質転換させたXL−1ブルー
細胞からのプラスミド調製物の6個のコロニーを示す、
写真である。ゲルに載せる前にプラスミドをSmaIで
切断した。コロニー1〜5ては、期待された大きさの断
片を検出することができる。
escriptによって形質転換させたXL−1ブルー
細胞からのプラスミド調製物の6個のコロニーを示す、
写真である。ゲルに載せる前にプラスミドをSmaIで
切断した。コロニー1〜5ては、期待された大きさの断
片を検出することができる。
3、 全断片のpDH51中へのクローニング多機能性
RNAの発現のための断片を、SmaIによる消化によ
ってpBluescriptll築物から単離して、S
maIで切断したpDH51中に組み込んだ。)Iin
dIIIによって断片の位置方向を決定することが可能
であった。
RNAの発現のための断片を、SmaIによる消化によ
ってpBluescriptll築物から単離して、S
maIで切断したpDH51中に組み込んだ。)Iin
dIIIによって断片の位置方向を決定することが可能
であった。
プラスミドpDH51は、Pietrzakら(Pie
trzak、 M−ら: NAR14,5857−58
69,1986)によって再現できるように記述されて
いる。
trzak、 M−ら: NAR14,5857−58
69,1986)によって再現できるように記述されて
いる。
第2図は、Sma1部位に多機能性DNA断片が組み込
まれたpDH51による形質転換の後のMCl061!
I胞のDNAミニ調製物を示す。
まれたpDH51による形質転換の後のMCl061!
I胞のDNAミニ調製物を示す。
DNAミニ調製物は、Hindmで切断したものであっ
た。所望の位置方向を有する組み込み物は、調製物L
3.5.8および9に認められる。
た。所望の位置方向を有する組み込み物は、調製物L
3.5.8および9に認められる。
4、 355プロモーターを有する全断片のpOcA
18中へのクローニング 多機能性RNAの発現のための1.2kbの断片を、3
5Sブaモーターおよびターミネータ−とともに、クロ
ーニングされた挿入物を含むpDH51のEcoRI−
消化によって単離した。単離した断片をEcoRIで切
断したpOcA1Bベクターと連結した。断片と連結し
たベクターを、形質転換によってMC1061纏胞に移
した。プラスミドpOcA18は、Olszewski
ら(Olszewski、N。
18中へのクローニング 多機能性RNAの発現のための1.2kbの断片を、3
5Sブaモーターおよびターミネータ−とともに、クロ
ーニングされた挿入物を含むpDH51のEcoRI−
消化によって単離した。単離した断片をEcoRIで切
断したpOcA1Bベクターと連結した。断片と連結し
たベクターを、形質転換によってMC1061纏胞に移
した。プラスミドpOcA18は、Olszewski
ら(Olszewski、N。
ら: NARLfi、10765−10782.198
8)によって再現できるように記述されている。
8)によって再現できるように記述されている。
第3図は、EcoRI断片を連結したpOcA18で形
質転換されたMC1061!I胞からのDNAミニ調製
物を示す。ゲル上に載せる前に、DNAをEcoRIで
切断した(+で表示)。加えて、同量の非切断DNAを
各々の場合に用いたく−で表示)。その結果、この実験
からのコロニー5が所望の大きさのEcoRIバンドを
示した。
質転換されたMC1061!I胞からのDNAミニ調製
物を示す。ゲル上に載せる前に、DNAをEcoRIで
切断した(+で表示)。加えて、同量の非切断DNAを
各々の場合に用いたく−で表示)。その結果、この実験
からのコロニー5が所望の大きさのEcoRIバンドを
示した。
5、7グロバクテリアの形質転換
35Sプロモーター/オリゴヌクレオチド挿入物を含む
ベクターpOcA18を、アゲロバクチリアA282株
(Pharmacia、 Freiburg、 西ドイ
ツまたはATCC37349、USA)中に移した。こ
れは、大腸菌5Ml0株(Simon、 R,ら: B
io/Technology l、784−791.1
983)を用いるトリペアレント交配によって行った。
ベクターpOcA18を、アゲロバクチリアA282株
(Pharmacia、 Freiburg、 西ドイ
ツまたはATCC37349、USA)中に移した。こ
れは、大腸菌5Ml0株(Simon、 R,ら: B
io/Technology l、784−791.1
983)を用いるトリペアレント交配によって行った。
この目的のために、等量の細菌をともにフィルター上に
一装置いて、フィルターを2mlのlomMMgsOn
ですすいで、その等外部分をテトラサイクリンおよびリ
ファンピシンな含むYEBプレート上に置いた(YEB
:1%酵母エキス、1%ペプトン、0.5%NaC1)
。陽性のアゲロバクチリアをハイブリダイゼーションに
よって検出することが可能であった。この目的のために
、コロニーをシーンスクリーンプラス(Gene 5c
reen Plus)フィルター(NewEnglan
d Nuclear、130ston)に移す。フィル
ターを、YEBプレート上で28℃で一晩培養してから
、次の日に変性させて、中和した。次いで、フィルター
を、4 X 105cps/nlの放射性標識した全断
片と65℃で一晩ハイブリダイズさせた。
一装置いて、フィルターを2mlのlomMMgsOn
ですすいで、その等外部分をテトラサイクリンおよびリ
ファンピシンな含むYEBプレート上に置いた(YEB
:1%酵母エキス、1%ペプトン、0.5%NaC1)
。陽性のアゲロバクチリアをハイブリダイゼーションに
よって検出することが可能であった。この目的のために
、コロニーをシーンスクリーンプラス(Gene 5c
reen Plus)フィルター(NewEnglan
d Nuclear、130ston)に移す。フィル
ターを、YEBプレート上で28℃で一晩培養してから
、次の日に変性させて、中和した。次いで、フィルター
を、4 X 105cps/nlの放射性標識した全断
片と65℃で一晩ハイブリダイズさせた。
フィルターを65℃で1xsscで1回およびo、1x
SsC/SDSで2回それぞれ30分間洗浄した。
SsC/SDSで2回それぞれ30分間洗浄した。
第4図は、洗浄したフィルター上で6時閉露出させたフ
ィルムを示す。コロニー3は陽性である。
ィルムを示す。コロニー3は陽性である。
後者を、前の実験の結果を確認するために二重に供した
。
。
6、 タバコの形質転換
アゲロバクチリアを、テトラサイクリンおよびリファン
ピシンを含むYEB培地(1%酵母エキス、1%ペプト
ン、0.5%NaC1)中で増殖させて、201の細菌
を遠心分離して、YEB培地中で1回洗浄して、201
の10w+M M g S O4中に懸濁させて、ペト
リ皿に置いた。タバコ、ライスコンシン(Nicoti
ana tabacu+w%Wisconsin)38
を植物材料として用いた。植物体を滅菌条件下で2MS
培地(Murashi3e、 T、ら: Physio
l。
ピシンを含むYEB培地(1%酵母エキス、1%ペプト
ン、0.5%NaC1)中で増殖させて、201の細菌
を遠心分離して、YEB培地中で1回洗浄して、201
の10w+M M g S O4中に懸濁させて、ペト
リ皿に置いた。タバコ、ライスコンシン(Nicoti
ana tabacu+w%Wisconsin)38
を植物材料として用いた。植物体を滅菌条件下で2MS
培地(Murashi3e、 T、ら: Physio
l。
Plant 11.473−497.1962)上で2
5℃で1日16時間光を当てて4週間培養しておいた。
5℃で1日16時間光を当てて4週間培養しておいた。
これら植物体からICIO2の葉片を切り出して、滅菌
したエメリーペーパーで傷つけて、細菌培養中に30秒
問浸漬させた。葉片を、上記の2MSの場合と同様にし
てMS培地上に25℃で2日閏保持して、次いて液体2
MS培地を用いて洗浄した。葉片を、次いで、カナマイ
シンを含むMSCIO(1,5%の寒天を含むMS)プ
レート上に置いた。5〜6週間後、再生した植物体をよ
り大きな容器に移植することが可能であって、そこでそ
れらは2〜3週間後に根を形成した。
したエメリーペーパーで傷つけて、細菌培養中に30秒
問浸漬させた。葉片を、上記の2MSの場合と同様にし
てMS培地上に25℃で2日閏保持して、次いて液体2
MS培地を用いて洗浄した。葉片を、次いで、カナマイ
シンを含むMSCIO(1,5%の寒天を含むMS)プ
レート上に置いた。5〜6週間後、再生した植物体をよ
り大きな容器に移植することが可能であって、そこでそ
れらは2〜3週間後に根を形成した。
DNAを、トランスジェニック(transgenic
)タバコ植物体からCTAB法によって単離した。
)タバコ植物体からCTAB法によって単離した。
これに間して、rPIant Mo1ecular B
iologyManual」 (にIuwer Ac
ademic Publishers。
iologyManual」 (にIuwer Ac
ademic Publishers。
Dordrecht、 1988)のプロトコールに厳
密に従った。
密に従った。
10μgのDNAをEcoRIで切断して、1%アガロ
ースゲル上で分離して、変性の後、シーンスクリーンプ
ラス膜上に移した。膜を、4X105cpII/mlの
放射性標識した断片と65℃で一晩ハイブリダイズさせ
た。全ての場合で、期待される大きさの断片を検出する
ことが可能であった。
ースゲル上で分離して、変性の後、シーンスクリーンプ
ラス膜上に移した。膜を、4X105cpII/mlの
放射性標識した断片と65℃で一晩ハイブリダイズさせ
た。全ての場合で、期待される大きさの断片を検出する
ことが可能であった。
第5図は、10μgの全DNAをEcoRIで消化して
、全断片とハイブリダイズさせたものを示す。
、全断片とハイブリダイズさせたものを示す。
トランスジェニック植物体からの全DNA調製物が、期
待されるハイブリダイゼーションを1.2kbE c
o RIバンドとして示している。
待されるハイブリダイゼーションを1.2kbE c
o RIバンドとして示している。
7・ トランスジェニックタバコ植物体を用いての多
機能性RNAの発現 トランスジェニックタバコ植物体の葉片から全RNAを
単離した。これに間して、rPlantMolecul
ar Biology ManualJ (にluwe
r Acades+1cPublishers、 Do
rdrecht、 198B)のプロトコールに従った
。変性の後、lOμgの全RNAを12+nMトリス(
pH7,5)10.1mM EDTA緩衝液中で2.2
Mホルムアルデヒド71%アガロースゲル上で分画して
、シーンスクリーンプラス膜上に移した。膜を放射性標
識した全断片とハイブリダイズさせた。トランスジェニ
ック植物体は、期待される特異性を有する強いRNA発
現を示す。
機能性RNAの発現 トランスジェニックタバコ植物体の葉片から全RNAを
単離した。これに間して、rPlantMolecul
ar Biology ManualJ (にluwe
r Acades+1cPublishers、 Do
rdrecht、 198B)のプロトコールに従った
。変性の後、lOμgの全RNAを12+nMトリス(
pH7,5)10.1mM EDTA緩衝液中で2.2
Mホルムアルデヒド71%アガロースゲル上で分画して
、シーンスクリーンプラス膜上に移した。膜を放射性標
識した全断片とハイブリダイズさせた。トランスジェニ
ック植物体は、期待される特異性を有する強いRNA発
現を示す。
8、 トランスジェニックタバコ植物体のCMVによ
る感染 感染は、キュウリの葉から得られたCMVのQ株(Re
zaian、 M、ら: Eur、 J、 Bioch
ew+、 IMi、331.1985および14,1.
277.1984、Gould、J、ら:Eur、 J
、 Biochem、 ufl、217.1982)を
用いて行った。感染性の粒子を、カーボランダムを用い
てタバコ植物体に塗布した。選択した感染条件下で、対
照植物体の80%が葉脈の光沢、モザイク形成および葉
端の不規則な成長からなる重篤な症状を呈した。ELI
SAによって感染の特異性を確認することが可能であっ
た。
る感染 感染は、キュウリの葉から得られたCMVのQ株(Re
zaian、 M、ら: Eur、 J、 Bioch
ew+、 IMi、331.1985および14,1.
277.1984、Gould、J、ら:Eur、 J
、 Biochem、 ufl、217.1982)を
用いて行った。感染性の粒子を、カーボランダムを用い
てタバコ植物体に塗布した。選択した感染条件下で、対
照植物体の80%が葉脈の光沢、モザイク形成および葉
端の不規則な成長からなる重篤な症状を呈した。ELI
SAによって感染の特異性を確認することが可能であっ
た。
トランスジェニック性(transgenicity)
の試験を、予め切断によって増殖させておいた植物体上
で行った。種子が存在した場合には、後代(ρroge
ny)についての確認を行った。
の試験を、予め切断によって増殖させておいた植物体上
で行った。種子が存在した場合には、後代(ρroge
ny)についての確認を行った。
多機能性RNAの発現を示した全ての植物体において感
染確率の著しい低下が実際に認められた。
染確率の著しい低下が実際に認められた。
各々の場合の形質転換の特異性によって、約10〜50
%だけのトランスジェニック植物体において、典型的な
感染症状が認められた。
%だけのトランスジェニック植物体において、典型的な
感染症状が認められた。
表:有意の症状を呈する感染植物体の百分率(各々の場
合に10個の植物体を評価した)対照 タバコW38 トランスジーン: (transgene) −H3 −H7 −H15 −H22 12日 20日 したがって、用いた方法が植物体をウィルス感染から保
護するために適していることが証明された。抵抗性を改
善するために、多機能性RNAにさらに多くの要素を付
加することを試みることができる。
合に10個の植物体を評価した)対照 タバコW38 トランスジーン: (transgene) −H3 −H7 −H15 −H22 12日 20日 したがって、用いた方法が植物体をウィルス感染から保
護するために適していることが証明された。抵抗性を改
善するために、多機能性RNAにさらに多くの要素を付
加することを試みることができる。
支 −−
ヘ<8
哨υ0
へ0υ
0υ
(E−4
8べ
0LIO)((J H< L)υou
rSoh uu (:)−1−−1:F)
C)LI E−4< ou=88 へ00 口O トベ (E−4 H( LIL) (E−4 ゆOo mF−+< QLI 0゜ <8 0υ Oo <← 口υ 0’1LIU トトペ NLIυ O O トペ 0υ (jO E−4< ゆ<日 へ<8 n<h (E−4 0υ <8 (JL) Q(J トベ 委l ロゴ ()4 0 0 ()+ 08( %DUO Fl()4 ←( (JL) 0 士 べ8 1j’1(H o<8 ぐ00 0υ υO べ← <← 0 E−4< o<h 0U ぐトベ 0 E−4< O (ト E−4< ()4 鎖υ0 N(J口 NE−4< 口υ ト( (ト 四七 粗88 υ0 (8 υ0 OL) 10口 88 唄( %D<ト H(− NL)Ll (E−4 0 0口 )−1< <8 0υ ()l r”−<E@ L)Ll o′1<h (日 へ?( 00N(E−1 (E−4ぐOo CJLI Fm(E−1 0 L)Q 0 0゜ E−4( 口υ E−1,11: t’r<h E−4< NLIL) 日< ゆ00 E−4(ω(8 υロ ψ(E−4 LICJ ゆ00 υO (ト 0υ
rSoh uu (:)−1−−1:F)
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第1図は、例2において、完全な断片が組み込まれたベ
クターpBluescriptによって形質転換させた
XL−1ブルー細胞からのグラスミ5.ド調製物の6個
のコロニーを示す、説明図である・ 第2図は、例3において、SmaI部位に多機能性DN
A断片が組み込まれたpDH51による形質転換の後の
MC1061!i1胞のDNAミニ調製物を示す、説明
図である。 第3図は、例4において、EcoRI断片を連結したp
OcA18で形質転換させたMC1061細胞からのD
NAミニ調製物を示す、説明図である。 第4図は、例5において、放射性標識した全断片とハイ
ブリダイズさせたフィルター上で露出させたフィルムを
示す、説明図である。 第5図は、例6において、全DNAを EcoRIで消化して全断片とハイブリダイズさせたも
のを示す、説明図である。 図中: λ PST 対照 A−)11 −H3 −H4 −H5 7) 8) 9) io) 11) 12) 13) −H6 −H7 −H9 −Hl0 −H12 A−1(15 −822
クターpBluescriptによって形質転換させた
XL−1ブルー細胞からのグラスミ5.ド調製物の6個
のコロニーを示す、説明図である・ 第2図は、例3において、SmaI部位に多機能性DN
A断片が組み込まれたpDH51による形質転換の後の
MC1061!i1胞のDNAミニ調製物を示す、説明
図である。 第3図は、例4において、EcoRI断片を連結したp
OcA18で形質転換させたMC1061細胞からのD
NAミニ調製物を示す、説明図である。 第4図は、例5において、放射性標識した全断片とハイ
ブリダイズさせたフィルター上で露出させたフィルムを
示す、説明図である。 第5図は、例6において、全DNAを EcoRIで消化して全断片とハイブリダイズさせたも
のを示す、説明図である。 図中: λ PST 対照 A−)11 −H3 −H4 −H5 7) 8) 9) io) 11) 12) 13) −H6 −H7 −H9 −Hl0 −H12 A−1(15 −822
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、スペイサーによってアンチセンスRNA配列と連結
させたリボザイムRNA配列をコードする遺伝子。 2、次のパターンを有する、請求項1に記載の遺伝子。 5’−リボザイムRNA−スペイサー−アンチセンスR
NA−(アンチセンスRNA−スペイサー−アンチセン
スRNA)_n−スペイサー−リボザイムRNA−3’
ここで、nは0〜10の数であり、リボザイム切断部位
を各々に含む20〜25個のヌクレオチドからなる鎖が
スペイサーとして挿入されている。 3、コードされるアンチセンスRNAがウィルスRNA
に対して相補的である、請求項1または2に記載の遺伝
子。 4、コードされるリボザイムmRNAがウィルスRNA
に対して相補的である、請求項1〜3のいずれか1項に
記載の遺伝子。 5、表1に示されるDNA配列からなる、 請求項1〜4のいずれか1項に記載の遺伝子。 6、請求項1〜5のいずれか1項に記載の遺伝子によっ
てコードされる、多機能性RNA。 7、請求項1〜5のいずれか1項に記載の遺伝子を含む
、宿主細胞。 8、請求項6に記載のRNAを含む、宿主細胞。 9、請求項1〜5のいずれか1項に記載の遺伝子を含む
、植物体、植物細胞および植物体の部分または種子。 10、請求項6に記載のRNAを含む、植物体、植物細
胞および植物体の部分または種子。 11、請求項3および4に記載の遺伝子によってコード
されるRNAの、植物における抗ウィルス剤としての使
用。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE3933384.1 | 1989-10-06 | ||
DE3933384A DE3933384A1 (de) | 1989-10-06 | 1989-10-06 | Multifunktionelle rna mit selbstprozessierungsaktivitaet, ihre herstellung und ihre verwendung |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH03210180A true JPH03210180A (ja) | 1991-09-13 |
Family
ID=6390949
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2269305A Pending JPH03210180A (ja) | 1989-10-06 | 1990-10-06 | 自己プロセシング活性を有する多機能性rna、その製造およびその使用 |
Country Status (12)
Country | Link |
---|---|
US (2) | US5707840A (ja) |
EP (1) | EP0421376B1 (ja) |
JP (1) | JPH03210180A (ja) |
KR (1) | KR910008132A (ja) |
AT (1) | ATE121452T1 (ja) |
AU (1) | AU634289B2 (ja) |
DE (2) | DE3933384A1 (ja) |
DK (1) | DK0421376T3 (ja) |
ES (1) | ES2073491T3 (ja) |
HU (1) | HUT62038A (ja) |
IE (1) | IE67652B1 (ja) |
NZ (1) | NZ235562A (ja) |
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DE4002885A1 (de) * | 1990-02-01 | 1991-08-08 | Hoechst Ag | Expression einer multigen rna mit self-splicing aktivitaet |
US5596132A (en) | 1990-03-12 | 1997-01-21 | Cornell Research Foundation, Inc. | Induction of resistance to virus diseases by transformation of plants with a portion of a plant virus genome involving a read-through replicase gene |
US5633449A (en) * | 1990-03-12 | 1997-05-27 | Cornell Research Foundation, Inc. | Induction of resistance to viral diseases in plants |
JPH05508535A (ja) * | 1990-03-12 | 1993-12-02 | コーネル・リサーチ・ファウンデーション・インコーポレイテッド | 非構造植物ウイルス遺伝子配列による植物の形質転換 |
GB9018646D0 (en) * | 1990-08-24 | 1990-10-10 | Imperial College | Replication of a eukaryotic virus rna |
DK0625194T3 (da) * | 1992-02-04 | 1996-05-28 | Worcester Found Ex Biology | Forøgelse af ribozym-katalytisk aktivitet med et tilstødende facilitator oligonukleotid |
KR950700408A (ko) * | 1992-02-04 | 1995-01-16 | 토루페터슨 | 인접한 촉진제 올리고누클레오티드에 의한 리보자임 촉매활성의 증강(enhancement of ribozyme catalytic activity by a neighboring facilitator oligonucleotide) |
US6087484A (en) * | 1992-02-04 | 2000-07-11 | University Of Massachusetts Worcester | Enhancement of ribozyme catalytic activity by A 2'-O-substituted facilitator oligonucleotide |
DE4203441C1 (de) * | 1992-02-06 | 1993-10-14 | Max Planck Gesellschaft | RNA- und DNA-Moleküle zur Erzeugung von Virusresistenzen |
DE69331216T2 (de) * | 1992-04-17 | 2002-07-25 | Kirin Brewery | Planze resistent gegen mindestens zwei viren und dessen preparation |
ES2255703T3 (es) * | 1992-06-29 | 2006-07-01 | Gene Shears Pty Limited | Acidos nucleicos y procedimientos para la utilizacion de los mismos para el control de patogenos viricos. |
WO1994013793A1 (en) * | 1992-12-04 | 1994-06-23 | Apollon, Inc. | Compounds and methods for the treatment of leukemias |
FR2701960B1 (fr) * | 1993-02-26 | 2002-09-13 | Gene Shears Pty Ltd | Polyribozyme apte à conférer, aux plantes, une résistance aux virus et plantes résistantes produisant ce polyribozyme. |
EP0728199A1 (en) * | 1993-07-22 | 1996-08-28 | Gene Shears Pty Limited | Dna virus ribozymes |
GB9320548D0 (en) * | 1993-10-06 | 1993-11-24 | Sandoz Ltd | Improvements in or relating to organic compounds |
US5908779A (en) * | 1993-12-01 | 1999-06-01 | University Of Connecticut | Targeted RNA degradation using nuclear antisense RNA |
DE4420298A1 (de) * | 1994-06-10 | 1995-12-14 | Hoechst Schering Agrevo Gmbh | Modifizierte Satelliten-RNAs und Satelliten-Viren als Träger adaptierter Ribozyme |
US5824519A (en) * | 1995-11-08 | 1998-10-20 | Medical University Of South Carolina | Tissue-specific and target RNA-specific ribozymes |
IT1283631B1 (it) * | 1996-05-09 | 1998-04-23 | Metapontum Agrobios Srl | Metodo per la preparazione di piante transgeniche resistenti ad in- fezioni virali e piante cosi' ottenute |
DE10212892A1 (de) * | 2002-03-20 | 2003-10-09 | Basf Plant Science Gmbh | Konstrukte und Verfahren zur Regulation der Genexpression |
Family Cites Families (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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US4987071A (en) * | 1986-12-03 | 1991-01-22 | University Patents, Inc. | RNA ribozyme polymerases, dephosphorylases, restriction endoribonucleases and methods |
MC2115A1 (fr) * | 1987-12-15 | 1991-07-05 | Gene Shears Pty Ltd | Ribozynes |
DK0625194T3 (da) * | 1992-02-04 | 1996-05-28 | Worcester Found Ex Biology | Forøgelse af ribozym-katalytisk aktivitet med et tilstødende facilitator oligonukleotid |
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1989
- 1989-10-06 DE DE3933384A patent/DE3933384A1/de not_active Withdrawn
-
1990
- 1990-10-04 DK DK90118938.1T patent/DK0421376T3/da active
- 1990-10-04 ES ES90118938T patent/ES2073491T3/es not_active Expired - Lifetime
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- 1990-10-04 HU HU906339A patent/HUT62038A/hu unknown
- 1990-10-05 IE IE357990A patent/IE67652B1/en not_active IP Right Cessation
- 1990-10-05 KR KR1019900015779A patent/KR910008132A/ko not_active Application Discontinuation
- 1990-10-05 AU AU63827/90A patent/AU634289B2/en not_active Ceased
- 1990-10-06 JP JP2269305A patent/JPH03210180A/ja active Pending
-
1994
- 1994-09-29 US US08/313,608 patent/US5707840A/en not_active Expired - Fee Related
-
1995
- 1995-06-02 US US08/459,324 patent/US5834265A/en not_active Expired - Fee Related
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ES2073491T3 (es) | 1995-08-16 |
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