JPH03130085A - 分岐サイクロデキストリンの製造方法 - Google Patents
分岐サイクロデキストリンの製造方法Info
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- JPH03130085A JPH03130085A JP24231490A JP24231490A JPH03130085A JP H03130085 A JPH03130085 A JP H03130085A JP 24231490 A JP24231490 A JP 24231490A JP 24231490 A JP24231490 A JP 24231490A JP H03130085 A JPH03130085 A JP H03130085A
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- Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は分岐サイクロデキストリンの製造方法に関する
。
。
サイクロデキストリン(以下、rCDJ と略記する。
)はグルコースが6個以上α−1,4結合したオリゴ糖
であり、6個のグルコース単位からなるα−CD、7個
のグルコース単位からなるβ−CD、8個のグルコース
単位からなるγ−CDが主として知られている。
であり、6個のグルコース単位からなるα−CD、7個
のグルコース単位からなるβ−CD、8個のグルコース
単位からなるγ−CDが主として知られている。
CDには、その構造上、分子に空洞があり、しかもこの
空洞が疎水性であるため、各種油性物質を取り込む性質
がある。
空洞が疎水性であるため、各種油性物質を取り込む性質
がある。
CDはこのような性質を有しているために、非常に広い
用途があり、たとえば製薬工業、化粧品工業、香料工業
1食品工業などの分野において注目されている。
用途があり、たとえば製薬工業、化粧品工業、香料工業
1食品工業などの分野において注目されている。
しかし、CDの溶解度は低く、α−CDで14、β−C
Dで2、γ−CDで23程度である。特にβ−CDの溶
解度は著しく低く、実用化の場合には不利な性質である
。
Dで2、γ−CDで23程度である。特にβ−CDの溶
解度は著しく低く、実用化の場合には不利な性質である
。
最近、本発明者らにより分岐サイクロデキストリンの研
究が推進され、その性質が明らかにされた(小林ら、澱
粉科学、30.231〜239(1983))。
究が推進され、その性質が明らかにされた(小林ら、澱
粉科学、30.231〜239(1983))。
たとえば溶解度については、分岐CDの溶解度は元のC
Dの10倍にも達する。
Dの10倍にも達する。
そこで、でんぷんから分岐CDを製造する方法が開発さ
れ、各種の分岐CDが得られている。この方法はでんぷ
ん分子の核部分を巻き込んで環化反応を行なわせるもの
であり、各種の分岐CDが得られるという長所がある。
れ、各種の分岐CDが得られている。この方法はでんぷ
ん分子の核部分を巻き込んで環化反応を行なわせるもの
であり、各種の分岐CDが得られるという長所がある。
しかし、この方法は単一の分岐CDを得るには不利であ
る。
る。
CDとオリゴ糖を混合し、その混合物にプルラナーゼを
作用させ逆合成反応を利用して各種分岐CDを生成する
ことは既にFrenchら(M、 Abdullah。
作用させ逆合成反応を利用して各種分岐CDを生成する
ことは既にFrenchら(M、 Abdullah。
D、French、 Nature、 210. No
、5052. p、200(1966))により試みら
れている。しかし、彼らの報告はベーパークロマト上で
プルラナーゼの逆合成が観察されたというものであり、
その詳細については未知であった。
、5052. p、200(1966))により試みら
れている。しかし、彼らの報告はベーパークロマト上で
プルラナーゼの逆合成が観察されたというものであり、
その詳細については未知であった。
本発明者らは、プルラナーゼなどの技切り酵素の逆合成
反応について鋭意検討し、実用性のある分岐サイクロデ
キストリンの製造方法を完成したのである。
反応について鋭意検討し、実用性のある分岐サイクロデ
キストリンの製造方法を完成したのである。
すなわち、本発明は■CDとマルトースの混合物にプル
ラナーゼを作用させることを特徴とする分岐CDの製造
方法、■CDとマルトースの混合物に、エチルアルコー
ル、プロピルアルコールおよびイソプロピルアルコール
よりなる群から選ばれたアルコールまたはエチレングリ
コールおよびプロピレングリコールよりなる群から選ば
れたグリコールを加え、次いでプルラナーゼを作用させ
ることを特徴とする分岐CDの製造方法、および■CD
とマルトースの混合物にプルラナーゼを作用させて得た
反応生成物にタカアミラーゼとグルコアミラーゼの混合
酵素と酵母を作用させることを特徴とするグルコシル−
CDの製造方法を提供するものである。
ラナーゼを作用させることを特徴とする分岐CDの製造
方法、■CDとマルトースの混合物に、エチルアルコー
ル、プロピルアルコールおよびイソプロピルアルコール
よりなる群から選ばれたアルコールまたはエチレングリ
コールおよびプロピレングリコールよりなる群から選ば
れたグリコールを加え、次いでプルラナーゼを作用させ
ることを特徴とする分岐CDの製造方法、および■CD
とマルトースの混合物にプルラナーゼを作用させて得た
反応生成物にタカアミラーゼとグルコアミラーゼの混合
酵素と酵母を作用させることを特徴とするグルコシル−
CDの製造方法を提供するものである。
前記した如く、CDとして各種のものが知られているが
、本発明にはこれらCDを任意に使用することかできる
。
、本発明にはこれらCDを任意に使用することかできる
。
また、プルラナーゼとしては通常のプルラナーゼのほか
耐熱性、耐酸性プルラナーゼなども使用することができ
る。耐熱性酵素を用いる場合は、基質の溶解度を上昇さ
せることができ、逆合成反応が容易となる。なお、酵素
は固定化酵素を用いることによりバイオリアクターとし
て連続化することも可能である。
耐熱性、耐酸性プルラナーゼなども使用することができ
る。耐熱性酵素を用いる場合は、基質の溶解度を上昇さ
せることができ、逆合成反応が容易となる。なお、酵素
は固定化酵素を用いることによりバイオリアクターとし
て連続化することも可能である。
第1の本発明ではCDとマルトースの混合物を用いてい
るため、プルラナーゼを単独で作用させればよく、この
反応生成物をカラムクロマトグラフィーで処理すること
により分岐CDたるマルトシル−CDを分離することが
できる。
るため、プルラナーゼを単独で作用させればよく、この
反応生成物をカラムクロマトグラフィーで処理すること
により分岐CDたるマルトシル−CDを分離することが
できる。
第2の本発明ではアルコールまたはグリコールを用いて
いるが、これら化合物の添加により枝切り酵素による逆
合成反応を効果的に進行させることができ、分岐CDの
生成率が向上する。この場合、アルコールまたはグリコ
ールの添加量は反応系におけるこれら化合物の濃度が1
0〜4o96、好ましくは25〜30%となるようにす
ればよい。
いるが、これら化合物の添加により枝切り酵素による逆
合成反応を効果的に進行させることができ、分岐CDの
生成率が向上する。この場合、アルコールまたはグリコ
ールの添加量は反応系におけるこれら化合物の濃度が1
0〜4o96、好ましくは25〜30%となるようにす
ればよい。
添加量が少なすぎると、上記した効果が十分に発現せず
、また添加量が多すぎると、相応する効果が得られない
ばかりでなく、無添加の場合よりも分岐CDの生成率か
低下することがある。なお、アルコールまたはグリコー
ルを反応系に加える場合、CDとマルトースをそれぞれ
高濃度(約10〜15%)に混合して酵素反応を行なう
ことができる。
、また添加量が多すぎると、相応する効果が得られない
ばかりでなく、無添加の場合よりも分岐CDの生成率か
低下することがある。なお、アルコールまたはグリコー
ルを反応系に加える場合、CDとマルトースをそれぞれ
高濃度(約10〜15%)に混合して酵素反応を行なう
ことができる。
また、第3の本発明は該反応生成物にタカアミラーゼと
グルコアミラーゼの混合酵素および酵母を作用させてグ
ルコシル−CDを製造するものである。
グルコアミラーゼの混合酵素および酵母を作用させてグ
ルコシル−CDを製造するものである。
上記した本発明の方法における技切り酵素による逆合成
反応は一般にpH4,5〜6.0.温度30〜50°C
および時間24〜72時間の条件にて実施すればよい。
反応は一般にpH4,5〜6.0.温度30〜50°C
および時間24〜72時間の条件にて実施すればよい。
上記した本発明の方法によれば、主としてマルトシル−
CDよりなる分岐CDが得られる。第1の発明はマルト
ースを用いているため、分岐CDの製造をより効率的に
行なうことができる。また、第2の発明によれば、第1
の発明よりも効果的に反応が進行し、分岐CDの生成率
が向上する。
CDよりなる分岐CDが得られる。第1の発明はマルト
ースを用いているため、分岐CDの製造をより効率的に
行なうことができる。また、第2の発明によれば、第1
の発明よりも効果的に反応が進行し、分岐CDの生成率
が向上する。
分岐CDとしてグルコシル−CDを得ることを望む場合
には、第3の発明の如く、上記方法による反応生成物に
タカアミラーゼおよびグルコアミラーゼよりなる混合酵
素を酵母と共に作用させればよい。この際に用いる酵母
としてはサツカロミセス・セレビシェ、サツカロミセス
・サケ、サツカロミセス・ダイアスタテイカスなどが適
当である。これらは分岐CD、CDを分解することなく
共存するグルコース、マルトースを発酵して除去するこ
とができる。
には、第3の発明の如く、上記方法による反応生成物に
タカアミラーゼおよびグルコアミラーゼよりなる混合酵
素を酵母と共に作用させればよい。この際に用いる酵母
としてはサツカロミセス・セレビシェ、サツカロミセス
・サケ、サツカロミセス・ダイアスタテイカスなどが適
当である。これらは分岐CD、CDを分解することなく
共存するグルコース、マルトースを発酵して除去するこ
とができる。
次に、マルトシル−CDなどの生成分岐CDを未反応糖
などを含む反応系から分離するには、前述の方法のほか
に反応生成物を2〜lO°Cの低温で20〜100時間
、好ましくは24〜72時間放置すればよい。また、別
法としては反応生成物にトリクロルエチレン、テトラク
ロルエタン、ブロムベンゼンなどの沈でん形成剤を加え
、5〜10℃にて10〜20時間程振とうすればよい。
などを含む反応系から分離するには、前述の方法のほか
に反応生成物を2〜lO°Cの低温で20〜100時間
、好ましくは24〜72時間放置すればよい。また、別
法としては反応生成物にトリクロルエチレン、テトラク
ロルエタン、ブロムベンゼンなどの沈でん形成剤を加え
、5〜10℃にて10〜20時間程振とうすればよい。
次いで、遠心分離等の操作を行なうことにより分岐CD
を得ることができる。これらの分離方法は、マルトシル
−またはグルコシル−CD以外の分岐CDと他の糖との
混合物から分岐CDを分離する場合にも適用することが
でき、さらに他の分離方法、たとえばカーボン、交換樹
脂等を用いる方法、セファデックスなどの分子量の差を
利用した方法、膜による分離方法などと組合せて行なう
ことも可能である。
を得ることができる。これらの分離方法は、マルトシル
−またはグルコシル−CD以外の分岐CDと他の糖との
混合物から分岐CDを分離する場合にも適用することが
でき、さらに他の分離方法、たとえばカーボン、交換樹
脂等を用いる方法、セファデックスなどの分子量の差を
利用した方法、膜による分離方法などと組合せて行なう
ことも可能である。
本発明によって得られる分岐CDは精製して純品として
用いるほか、用途等により上記逆合成反応を行なった反
応生成物をそのまま製品化することもできる。これら分
岐CDは医薬品、化粧品。
用いるほか、用途等により上記逆合成反応を行なった反
応生成物をそのまま製品化することもできる。これら分
岐CDは医薬品、化粧品。
香料2食品等の可溶化等に広く用いることができる。
次に、試験例および実施例により本発明を説明する。
試験例1
γ−CDと、グルコース(G、)からマルトヘキサオー
ス(G6)までのオリゴ糖を各20%濃度に混合(全糖
40%)し、この混合物に市販プルラナーゼ粗酵素を全
基質量(g)当り200IU添加し、pH5,5にて4
0°C248時間反応させて分岐γ−CDを得た。各種
オリゴ糖による分岐γ−CDの生成率(出発基質を10
0としたときの百分率)を表−1に示す。
ス(G6)までのオリゴ糖を各20%濃度に混合(全糖
40%)し、この混合物に市販プルラナーゼ粗酵素を全
基質量(g)当り200IU添加し、pH5,5にて4
0°C248時間反応させて分岐γ−CDを得た。各種
オリゴ糖による分岐γ−CDの生成率(出発基質を10
0としたときの百分率)を表−1に示す。
表−1
GI 02 02 04 G−Cz分岐CDの
分析は高速液体クロマトグラフィー(HPLC)とペー
パークロマトグラフィーを用いて行なった。なお、HP
LCの条件は日本分光rTri Rotor J 、
60. 65% アセトニトリル溶出、流速2 m
l /min、検出RI、 Attenuation8
X、カラム:プレカラム(直径:4.6mm。
分析は高速液体クロマトグラフィー(HPLC)とペー
パークロマトグラフィーを用いて行なった。なお、HP
LCの条件は日本分光rTri Rotor J 、
60. 65% アセトニトリル溶出、流速2 m
l /min、検出RI、 Attenuation8
X、カラム:プレカラム(直径:4.6mm。
長さ:5cm)と本カラム(直径:4.6mm。
長さ+25cm)、カラム担体: Fine 5it−
NHt(10μ)であり、この条件下での各糖の保持時
間(min、 )は表−2に示したとおりである。表中
、例えばG、−α−CDはグルコシル−α−CDを、G
2−α−CDはマルトシル−α−CDを意味する。
NHt(10μ)であり、この条件下での各糖の保持時
間(min、 )は表−2に示したとおりである。表中
、例えばG、−α−CDはグルコシル−α−CDを、G
2−α−CDはマルトシル−α−CDを意味する。
表−2
Gl 4.5 0! −α−CD
16.2Gt 5.2 G1 −β
−CD G7.1α−CD 8.1
G、 −β−CD 21.4β−CD
11.0 GI −γ−CD 24.9G、−α
−CD 12.8 Gx −γ−CD 28.
67−CD 14.3 G1以上の技をもつ分岐CDは「トヨパールHW−40
1(Superfine)2.6X100cmのカラム
で分離精製した後、ペーパークロマトグラフィーとHP
LCで分析した。さらに、基質濃度を1%以下にしてプ
ルラナーゼに作用させて同様に分析した。なお、プルラ
ナーゼの逆合成反応生戒糖は1個の技をもつ分岐CDで
ある。
16.2Gt 5.2 G1 −β
−CD G7.1α−CD 8.1
G、 −β−CD 21.4β−CD
11.0 GI −γ−CD 24.9G、−α
−CD 12.8 Gx −γ−CD 28.
67−CD 14.3 G1以上の技をもつ分岐CDは「トヨパールHW−40
1(Superfine)2.6X100cmのカラム
で分離精製した後、ペーパークロマトグラフィーとHP
LCで分析した。さらに、基質濃度を1%以下にしてプ
ルラナーゼに作用させて同様に分析した。なお、プルラ
ナーゼの逆合成反応生戒糖は1個の技をもつ分岐CDで
ある。
試験例2
γ−CDとマルトース(G2)を同量混合して濃度を上
昇させたときのマルトシル−γ−CD(7)生成率(%
)を表−3に示す。表中で、たとえば1%とはγ−CD
と02を各1%含むことを示し、全糖として2%である
。
昇させたときのマルトシル−γ−CD(7)生成率(%
)を表−3に示す。表中で、たとえば1%とはγ−CD
と02を各1%含むことを示し、全糖として2%である
。
表−3
濃度(%)
1 2 5 10 15 20
40実施例1 α−またはβ−CD200mgとマルトース(Gz )
200mgを混合し、これに粗酵素プルラナーゼ80m
g (21U/mg)を0.1M酢酸緩衝液(pH5,
5)ImI!に溶解、遠沈して得た上澄0.5mlを加
え、さらに水0.5mfを加えて撹拌しながら40°C
で48時間反応せしめ、G、−α−またはβ−CDと未
反応糖を含む反応生成物を得た。
40実施例1 α−またはβ−CD200mgとマルトース(Gz )
200mgを混合し、これに粗酵素プルラナーゼ80m
g (21U/mg)を0.1M酢酸緩衝液(pH5,
5)ImI!に溶解、遠沈して得た上澄0.5mlを加
え、さらに水0.5mfを加えて撹拌しながら40°C
で48時間反応せしめ、G、−α−またはβ−CDと未
反応糖を含む反応生成物を得た。
この反応生成物を2分し、一方は4°Cで48時間放置
し、他方のα−CDを原料とした反応生成物にはテトラ
クロルエタンを、β−CDを原料とした反応生成物には
ブロムベンゼンを各200μl加え、10°Cで一夜振
とうし、次いでそれぞれを遠心分離(5000rpm、
20分間)して上澄を得、上澄中のG、−CD量を分析
した。すなわち上澄中のCD全モル数を100としたと
きの62−CDのモル%として求めた。結果を表−4に
示す。
し、他方のα−CDを原料とした反応生成物にはテトラ
クロルエタンを、β−CDを原料とした反応生成物には
ブロムベンゼンを各200μl加え、10°Cで一夜振
とうし、次いでそれぞれを遠心分離(5000rpm、
20分間)して上澄を得、上澄中のG、−CD量を分析
した。すなわち上澄中のCD全モル数を100としたと
きの62−CDのモル%として求めた。結果を表−4に
示す。
表−4
原料 反応生成物 低温放置
α−CD 7.0 24.9β−CD
1.6 38.6沈てん剤処理 45.3 64.2 実施例2 実施例1におけるα−CDを原料とした反応生成物1m
lを「トヨパールHW −40J (Superfi
ne)2.6X100cmのカラムに負荷し、55℃で
22rnf/hrの流速にて10%エタノールで溶出し
、2.2mA’ずつ分画したところ、第1図に示す如く
、各成分は明確に分離された。
1.6 38.6沈てん剤処理 45.3 64.2 実施例2 実施例1におけるα−CDを原料とした反応生成物1m
lを「トヨパールHW −40J (Superfi
ne)2.6X100cmのカラムに負荷し、55℃で
22rnf/hrの流速にて10%エタノールで溶出し
、2.2mA’ずつ分画したところ、第1図に示す如く
、各成分は明確に分離された。
実施例3
α−CD1.5gと02 1.5gとを混合し、耐熱性
、耐酸性プルラナーゼ400IU(pH4,5〜5.5
の緩衝液750μlに溶解)添加し、さらにエタノール
250μlを加えて70°Cで48時間反応させた結果
、G、−α−CDの生成率は42%に達した。
、耐酸性プルラナーゼ400IU(pH4,5〜5.5
の緩衝液750μlに溶解)添加し、さらにエタノール
250μlを加えて70°Cで48時間反応させた結果
、G、−α−CDの生成率は42%に達した。
実施例4
β−CD300mgと02300 m gを混合し、実
施例3の酵素液750μlとエタノール250μmを加
えて70°Cで48時間反応させた結果、G2−β−C
Dの生成率は21%に達した。なお、エタノールの最適
濃度は25〜30%であり、45%以上の添加量では無
添加よりも生成率は低下した。
施例3の酵素液750μlとエタノール250μmを加
えて70°Cで48時間反応させた結果、G2−β−C
Dの生成率は21%に達した。なお、エタノールの最適
濃度は25〜30%であり、45%以上の添加量では無
添加よりも生成率は低下した。
実施例5
実施例4の反応液1mlを熱失活した後、pHを4〜5
に調整し、水を加えて全糖濃度を20%にしたのち、市
販結晶グルコアミラーゼ2mgとタカアミラーゼ1mg
および酵母(サツカロミセス・セレビシェの湿潤菌体)
50mgを加えて30°Cで48時間反応させた後、遠
沈して上澄を得、これを濃縮してG、−β−CDを得た
。本標品の純度は78%であり、回収率は生成G2−β
−CDの65%であった。
に調整し、水を加えて全糖濃度を20%にしたのち、市
販結晶グルコアミラーゼ2mgとタカアミラーゼ1mg
および酵母(サツカロミセス・セレビシェの湿潤菌体)
50mgを加えて30°Cで48時間反応させた後、遠
沈して上澄を得、これを濃縮してG、−β−CDを得た
。本標品の純度は78%であり、回収率は生成G2−β
−CDの65%であった。
なお、実施例4の反応液をグルコアミラーゼ。
タカアミラーゼ、酵母の固定化カラムに通してG、−β
−CDを製造することもてきる。
−CDを製造することもてきる。
第1図は10%エタノールによる溶出画分のクロマトグ
ラムである。
ラムである。
Claims (3)
- (1)サイクロデキストリンとマルトースの混合物にプ
ルラナーゼを作用させることを特徴とする分岐サイクロ
デキストリンの製造方法。 - (2)サイクロデキストリンとマルトースの混合物に、
エチルアルコール、プロピルアルコールおよびイソプロ
ピルアルコールよりなる群から選ばれたアルコールまた
はエチレングリコールおよびプロピレングリコールより
なる群から選ばれたグリコールを加え、次いでプルラナ
ーゼを作用させることを特徴とする分岐サイクロデキス
トリンの製造方法。 - (3)サイクロデキストリンとマルトースの混合物にプ
ルラナーゼを作用させて得た反応生成物にタカアミラー
ゼとグルコアミラーゼの混合酵素と酵母を作用させるこ
とを特徴とするグルコシル−サイクロデキストリンの製
造方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP24231490A JPH03130085A (ja) | 1984-10-12 | 1990-09-13 | 分岐サイクロデキストリンの製造方法 |
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP59214001A JPS6192592A (ja) | 1984-10-12 | 1984-10-12 | 分岐サイクロデキストリンの製造方法 |
JP24231490A JPH03130085A (ja) | 1984-10-12 | 1990-09-13 | 分岐サイクロデキストリンの製造方法 |
Related Parent Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP59214001A Division JPS6192592A (ja) | 1984-10-12 | 1984-10-12 | 分岐サイクロデキストリンの製造方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH03130085A true JPH03130085A (ja) | 1991-06-03 |
JPH042237B2 JPH042237B2 (ja) | 1992-01-16 |
Family
ID=26520091
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP24231490A Granted JPH03130085A (ja) | 1984-10-12 | 1990-09-13 | 分岐サイクロデキストリンの製造方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH03130085A (ja) |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS6170996A (ja) * | 1984-09-13 | 1986-04-11 | Nikken Kagaku Kk | マルトシル−α−サイクロデキストリンの製造方法 |
-
1990
- 1990-09-13 JP JP24231490A patent/JPH03130085A/ja active Granted
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS6170996A (ja) * | 1984-09-13 | 1986-04-11 | Nikken Kagaku Kk | マルトシル−α−サイクロデキストリンの製造方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH042237B2 (ja) | 1992-01-16 |
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
EXPY | Cancellation because of completion of term |