JPH02190185A - ポリガラクトサミン分解酵素a−4及びその製造法 - Google Patents
ポリガラクトサミン分解酵素a−4及びその製造法Info
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Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は新規なポリガラクトサミン分解酵素(ポリガラ
クトサミニダーゼ)A−4に関するものである。
クトサミニダーゼ)A−4に関するものである。
更に詳細には、本発明は、ポリガラクトサミンを加水分
解してオリゴガラクトサミンを生成する新規なポリガラ
クトサミン分解酵素A−4及びその製造法に関するもの
である。
解してオリゴガラクトサミンを生成する新規なポリガラ
クトサミン分解酵素A−4及びその製造法に関するもの
である。
一般に、微生物の生産するポリガラクトサミン(ポリα
−1,4ガラクトサミノガラクタン)としては、PFI
OI (特公昭56−12639)及びPF102 (
特願昭6l−134799)が認知されている程度であ
る。
−1,4ガラクトサミノガラクタン)としては、PFI
OI (特公昭56−12639)及びPF102 (
特願昭6l−134799)が認知されている程度であ
る。
近年、微生物、植物あるいは動物の生産する多糖あるい
はそれらのオリゴ糖が種々の生理活性を有することが知
られるようになり、多糖又はそれらのオリゴ糖に関心が
高まっている。
はそれらのオリゴ糖が種々の生理活性を有することが知
られるようになり、多糖又はそれらのオリゴ糖に関心が
高まっている。
また、ポリガラクトサミンの類似多糖として知られるポ
リグルコサミン(キトサン)においてもキチン、キトサ
ン及びそのオリゴ糖が抗腫瘍活性を有する事が発見され
ている。さらにボリガラクトサミン自身においても同様
な生理活性の在ることが見出され(石谷幸喜他日本生化
学会講演要旨集871.1986 )、そのオリゴ糖の
生理活性にも関心が高まっている。生理活性以外の用途
にもポリガラクトサミン、オリゴガラクトサミンが有用
になる可能性があり、特に、オリゴマーは用途分野や作
用面でポリマーにない特性を発揮するものと期待され、
注目されている。
リグルコサミン(キトサン)においてもキチン、キトサ
ン及びそのオリゴ糖が抗腫瘍活性を有する事が発見され
ている。さらにボリガラクトサミン自身においても同様
な生理活性の在ることが見出され(石谷幸喜他日本生化
学会講演要旨集871.1986 )、そのオリゴ糖の
生理活性にも関心が高まっている。生理活性以外の用途
にもポリガラクトサミン、オリゴガラクトサミンが有用
になる可能性があり、特に、オリゴマーは用途分野や作
用面でポリマーにない特性を発揮するものと期待され、
注目されている。
ポリガラクトサミンを酸又はアルカリによって加水分解
することによりオリゴ糖を得ることは可能であるが、オ
リゴマーの収率は非常に悪い。例えば塩酸によってポリ
ガラクトサミンを加水分解する時、ランダムな分解の結
果、得られるオリゴ糖の量はモノ−ガラクトサミン、ジ
−ガラクトサミン、トリーガラクトサミン、テトラ−ガ
ラクトサミン、ペンタ−ガラクトサミンの順であり、重
合度が大きい程その収量は激減するということになる。
することによりオリゴ糖を得ることは可能であるが、オ
リゴマーの収率は非常に悪い。例えば塩酸によってポリ
ガラクトサミンを加水分解する時、ランダムな分解の結
果、得られるオリゴ糖の量はモノ−ガラクトサミン、ジ
−ガラクトサミン、トリーガラクトサミン、テトラ−ガ
ラクトサミン、ペンタ−ガラクトサミンの順であり、重
合度が大きい程その収量は激減するということになる。
そこで、ポリガラクトサミンを分解して1重合度が比較
的大きな種々の重合度のオリゴ糖を得ることのできるポ
リガラクトサミン分解酵素が必要とされるのである。
的大きな種々の重合度のオリゴ糖を得ることのできるポ
リガラクトサミン分解酵素が必要とされるのである。
本発明者らは、広範な微生物についてポリガラクトサミ
ン分解菌を検索した結果、バチルス属に属する細菌が、
新規なポリガラクトサミン分解酵素A−4を生産するこ
とを見出し本発明を完成した。
ン分解菌を検索した結果、バチルス属に属する細菌が、
新規なポリガラクトサミン分解酵素A−4を生産するこ
とを見出し本発明を完成した。
本発明は新規なポリガラクトサミン分解酵素であり、ま
た1本発明は、バチルス属に属し、ポリガラクトサミン
分解酵素A−4生産能を有する菌株を培養し、培養物よ
りポリガラクトサミン分解酵素A−4を採取することを
特徴とする、ポリガラクトサミン分解酵素A−4の製造
法である。
た1本発明は、バチルス属に属し、ポリガラクトサミン
分解酵素A−4生産能を有する菌株を培養し、培養物よ
りポリガラクトサミン分解酵素A−4を採取することを
特徴とする、ポリガラクトサミン分解酵素A−4の製造
法である。
本酵素の理化学的性質は下記のとおりである。
(1)作用及び基質特異性
本酵素はオリゴ及びポリガラクトサミン(α−1,4ポ
リガラクトサミン)に作用しオリゴガラクトサミンを生
成する。
リガラクトサミン)に作用しオリゴガラクトサミンを生
成する。
その他の多糖類、澱粉(α−1,4グルカン)、ラミナ
リン(β−1,3グルカン)、カルボキシメチルセルロ
ース(β−1,4グルカン)、キトサン(β−1,4ゲ
ルコサミノグルカン;脱アセチル化度各々100%、9
0%、79%)、グリコールキトサン、メチルセル口
−ス(β−1,4グルカン)、グリコールキチン(β−
1,4N−アセチルゲルコサミノグルカン)、などには
全く作用しない。
リン(β−1,3グルカン)、カルボキシメチルセルロ
ース(β−1,4グルカン)、キトサン(β−1,4ゲ
ルコサミノグルカン;脱アセチル化度各々100%、9
0%、79%)、グリコールキトサン、メチルセル口
−ス(β−1,4グルカン)、グリコールキチン(β−
1,4N−アセチルゲルコサミノグルカン)、などには
全く作用しない。
(2)至適pl+及び安定pH範囲
酢酸緩衛液を用いた場合、至適pHは4.5である。(
第1図)また、安定pH範■は、PH3,0〜8.0:
MclLvaine氏緩衝液、pH8,O”11.0
: At1eins andPantin氏緩衝液、P
旧1〜12 : Ringet氏緩衝液を用い、第2図
に示すようにpH6,0〜lO,0に安定pH範囲があ
る。この測定は37℃で3時間放置したときの残存活性
を相対値で示した。
第1図)また、安定pH範■は、PH3,0〜8.0:
MclLvaine氏緩衝液、pH8,O”11.0
: At1eins andPantin氏緩衝液、P
旧1〜12 : Ringet氏緩衝液を用い、第2図
に示すようにpH6,0〜lO,0に安定pH範囲があ
る。この測定は37℃で3時間放置したときの残存活性
を相対値で示した。
(3)酵素活性の測定法
酵素活性は基質にPaecilomyces I−1菌
の生産するPF401又はPF102 (その主構成糖
はα−1,4ガラクトサミノガラクタン)を用いた。こ
の0.25%可溶性PF102 (pl+4.5) 1
mM、0.05M酢酸緩衝液(PH4,5)2nQそれ
に酵素溶液1m12を加え37℃、 10分間反応させ
、生じる還元力を5chalas法で測定した。なお酵
素単位は1分間当りに1μモルのガラクトサミンに相当
する還元力を増加させる活性を1単位とした。
の生産するPF401又はPF102 (その主構成糖
はα−1,4ガラクトサミノガラクタン)を用いた。こ
の0.25%可溶性PF102 (pl+4.5) 1
mM、0.05M酢酸緩衝液(PH4,5)2nQそれ
に酵素溶液1m12を加え37℃、 10分間反応させ
、生じる還元力を5chalas法で測定した。なお酵
素単位は1分間当りに1μモルのガラクトサミンに相当
する還元力を増加させる活性を1単位とした。
(4)作用適温及び温度安定性の範囲
10〜100℃の範囲で測定した結果を第3図に示した
。この酵素の至適温度は60℃であり、それ以上で急激
に低下する。
。この酵素の至適温度は60℃であり、それ以上で急激
に低下する。
つぎに温度安定性についてみたものが第4図である。
pH6,0の条件で各温度で15分間保った時の残存
活性を示した。60℃付近までは安定で、それ以上では
急激に低下した。
pH6,0の条件で各温度で15分間保った時の残存
活性を示した。60℃付近までは安定で、それ以上では
急激に低下した。
(5)金属イオン等の影響
各種金属イオン及び阻害剤4X10−mMを含む溶液中
に37℃、10分間放置後、残存酵素活性を測定し、相
対値で示した。(表−1) 表−1,金属等の影響 阻害物 残存活性 aCI CI aC12 MnC1□ 0C12 aS04 uC12 A1□(SO4)3 に2CrO4 NiC1゜ Zn(C)l、Coo)2・2H,0 CaC1□ gS04 PbC1゜ CdC1□ HgC1□ AgN0゜ IC82COOH PCMB 以上の結果から1本酵素は、Hg++、 As4、PC
MBで強く阻害されることがわかった。
に37℃、10分間放置後、残存酵素活性を測定し、相
対値で示した。(表−1) 表−1,金属等の影響 阻害物 残存活性 aCI CI aC12 MnC1□ 0C12 aS04 uC12 A1□(SO4)3 に2CrO4 NiC1゜ Zn(C)l、Coo)2・2H,0 CaC1□ gS04 PbC1゜ CdC1□ HgC1□ AgN0゜ IC82COOH PCMB 以上の結果から1本酵素は、Hg++、 As4、PC
MBで強く阻害されることがわかった。
(6)酵素の精製法
本酵素の単離、精製は常法に従って行うことができる。
硫酸アンモニウム(30〜80%)による沈澱、透析後
、CトセファデックスC−50カラムクロマトグラフイ
ー(第5図)、更にCトセファデックスC−50カラム
クロマトグラフイー(第6図)などの精製手段よって精
製される。
、CトセファデックスC−50カラムクロマトグラフイ
ー(第5図)、更にCトセファデックスC−50カラム
クロマトグラフイー(第6図)などの精製手段よって精
製される。
(7)分子量
本酵素の分子量はポリアクリルアミドゲル電気泳動法に
より測定すると、60,000と計算される。
より測定すると、60,000と計算される。
結果は第7図に示した。
(8)ポリアクリルアミドゲル電気泳動精製酵素を常法
に従って、15%のポリアクリルアミドゲル(PH4、
3)電気泳動にかけた。結果は第8図に示すとうり単一
のバンドが認められた。
に従って、15%のポリアクリルアミドゲル(PH4、
3)電気泳動にかけた。結果は第8図に示すとうり単一
のバンドが認められた。
(9)等電点
常法により等重点ディスク電気泳動を行った。
結果は第9図に示すようにこの酵素の等電点はpI=9
.0である。
.0である。
本酵素は、その作用及び基質特異性において従来全く知
られていない新規酵素である。
られていない新規酵素である。
次に本発明による新規ポリガラクトサミン分解酵素A−
4の製造法について説明する。
4の製造法について説明する。
本発明における使用菌はバチルス属に属し、ポリガラク
トサミン分解酵素A−4を生産する菌であればいかなる
菌株でもよいが、本発明者らが土壌より分離したバチル
スSP、A−4が有利に使用される。
トサミン分解酵素A−4を生産する菌であればいかなる
菌株でもよいが、本発明者らが土壌より分離したバチル
スSP、A−4が有利に使用される。
バチルスsp、 A−4の菌学的性質は下記のとうりで
ある。
ある。
A、細胞の形態
(1)細胞の形および大きさ:短桿菌、0.5〜1.0
μ、 x 3.0〜5.0μm(肉汁および肉汁寒天斜
面培養、37℃、24〜72時間の培養)(2)細胞の
多形状の有無:無し く3)運動性の有無:有り (肉汁寒天半流動高層穿刺培養) (4)胞子の有無:有り、内生胞子および裸の胞子1球
状[トーナー(Dornet)の染色法およびウイッツ
(Witz)の変法] (5)ダラム染色性:陽性 (肉汁寒天斜面培養、37℃、18時間、ヒュッカー(
Hucker)の変法により染色)(6)抗酸性:無し B、各培地における生育状態 (1)肉汁寒天平板培養(37℃、24〜96時間)コ
ロニーの大きさ二人9〜foam、小6〜7m11生育
の程度:生育良好 コロニーの形:円形 コロニーの隆起:台状 コロニーの周辺の形状二金縁 コロニー表面の形状:平滑 コロニーの色:乳白色 コロニーの光沢:光沢有り コロニーの性質:粘稠、不透明 (2)肉汁寒天斜面培養(37℃、24〜96時間)拡
布状に盛上った半透明、乳白色のコロニを形成する。
μ、 x 3.0〜5.0μm(肉汁および肉汁寒天斜
面培養、37℃、24〜72時間の培養)(2)細胞の
多形状の有無:無し く3)運動性の有無:有り (肉汁寒天半流動高層穿刺培養) (4)胞子の有無:有り、内生胞子および裸の胞子1球
状[トーナー(Dornet)の染色法およびウイッツ
(Witz)の変法] (5)ダラム染色性:陽性 (肉汁寒天斜面培養、37℃、18時間、ヒュッカー(
Hucker)の変法により染色)(6)抗酸性:無し B、各培地における生育状態 (1)肉汁寒天平板培養(37℃、24〜96時間)コ
ロニーの大きさ二人9〜foam、小6〜7m11生育
の程度:生育良好 コロニーの形:円形 コロニーの隆起:台状 コロニーの周辺の形状二金縁 コロニー表面の形状:平滑 コロニーの色:乳白色 コロニーの光沢:光沢有り コロニーの性質:粘稠、不透明 (2)肉汁寒天斜面培養(37℃、24〜96時間)拡
布状に盛上った半透明、乳白色のコロニを形成する。
コロニーは凹凸円形の隆起があり、光沢が有る。生育は
良好で、時間と共に拡がってくる0色素は生産しない。
良好で、時間と共に拡がってくる0色素は生産しない。
(3)肉汁液体培養(37℃、24〜96時間)表面に
膜を形成しない0時間とともに全体的に濁ってくる。
膜を形成しない0時間とともに全体的に濁ってくる。
底部に顆粒状の沈澱が形成される。
(4)肉汁ゼラチン穿刺培養(37℃、24〜96時間
)穿刺線に沿って生育し、液化する6表面および内部は
最初filiform、次いで漏斗状に生育し、液化す
る。液化部分は白濁する。
)穿刺線に沿って生育し、液化する6表面および内部は
最初filiform、次いで漏斗状に生育し、液化す
る。液化部分は白濁する。
(5)リドマス・ミルク(37℃、24〜96時間)ブ
ロムクレゾールパープル(BCP)を指示薬として用い
た。1日日から透明化がm祭されたが、色の変化は見ら
れなかった0時間の経過とともに、透明化が進んだが、
酸生成による液の黄変化は見られなかった。従ってペプ
トン化(ミルクが菌のプロテアーゼにより分解し透明化
する。)が起こった。
ロムクレゾールパープル(BCP)を指示薬として用い
た。1日日から透明化がm祭されたが、色の変化は見ら
れなかった0時間の経過とともに、透明化が進んだが、
酸生成による液の黄変化は見られなかった。従ってペプ
トン化(ミルクが菌のプロテアーゼにより分解し透明化
する。)が起こった。
C0生理的性質
(1)硝酸塩の還元:陰性
(2)脱窒反応:陰性
(3)MRテスト:陰性
(4)VPテスト:陰性
(5)インドールの生成:陰性
(6)硫化水素の生成:#1性
(7)澱粉の加水分解:陽性
(8)クエン酸の利用:コーザー、クリステンセン両培
地で利用する。
地で利用する。
(9)無機窒素の利用:硝酸塩、アンモニアとも利用す
る。
る。
(10)色素の生成:なし
くII)ウレアーゼ:陽性
(12)オキシダーゼ:陽性
(13)カタラーゼ:陽性
(14)生育の範囲:生育PH5〜10、至適温度30
〜40℃ (15)酸素に対する態度:好気性 (16) O−Fテスト:発酵 (17)糖類から酸及びガスの生成 酸の生成 ガスの生成 (1) L−アラビノース (2)D−キシロース (3)D−グルコース (4)D−マンノース (5)D−フラクトース (6)D−ガラクトース (7)マルトース (8)シュークロース (9)ラクトース (10)トレハロース (11) D−ソルビトール (12) D−マンニトール (13)イノシトール (14)グリセリン (15)デンプン 十 十 + 十 + + 本菌の形態学的、生理学的諸性質で特徴的なことは、ダ
ラム陽性の桿菌で運動性があり、胞子を形成すること、
それに好気性菌であることからバチルス属に属するもの
と認められた。B。
〜40℃ (15)酸素に対する態度:好気性 (16) O−Fテスト:発酵 (17)糖類から酸及びガスの生成 酸の生成 ガスの生成 (1) L−アラビノース (2)D−キシロース (3)D−グルコース (4)D−マンノース (5)D−フラクトース (6)D−ガラクトース (7)マルトース (8)シュークロース (9)ラクトース (10)トレハロース (11) D−ソルビトール (12) D−マンニトール (13)イノシトール (14)グリセリン (15)デンプン 十 十 + 十 + + 本菌の形態学的、生理学的諸性質で特徴的なことは、ダ
ラム陽性の桿菌で運動性があり、胞子を形成すること、
それに好気性菌であることからバチルス属に属するもの
と認められた。B。
megateriu謙と類似はしているがカタラーゼ活
性陽性、v−p試験陰性、デンプン分解性陽性、クエン
酸資化性陽性、亜硝酸塩の還元陰性、インドールの生成
陰性、 PH6,8で生育すること、 30〜40’
Cで生育すること、ウレアーゼ試験陽性であること等の
違いがあること等から、本菌をBacillus属の新
菌株バチルスsp、 A−4と命名し、通商産業省工業
技術院微生物工業技術研究所に、微工研菌寄第1047
3号(FEBM P−10473)として寄託されてい
る。
性陽性、v−p試験陰性、デンプン分解性陽性、クエン
酸資化性陽性、亜硝酸塩の還元陰性、インドールの生成
陰性、 PH6,8で生育すること、 30〜40’
Cで生育すること、ウレアーゼ試験陽性であること等の
違いがあること等から、本菌をBacillus属の新
菌株バチルスsp、 A−4と命名し、通商産業省工業
技術院微生物工業技術研究所に、微工研菌寄第1047
3号(FEBM P−10473)として寄託されてい
る。
ポリガラクトサミン分解酵素A−4生産菌の培養培地と
しては、炭素源、窒素源、無機物、その他の栄養素を程
よく含有する培地ならば、合成培地あるいは天然培地の
いずれでも使用可能である。
しては、炭素源、窒素源、無機物、その他の栄養素を程
よく含有する培地ならば、合成培地あるいは天然培地の
いずれでも使用可能である。
該培地の好適な例としては、ポリガラクトサミン0.5
%、酵母z*X0.5%、KCI O,05%、K、
HPO40,1%、Mg5O,”?11.OO,05%
、Fe50.0.01%の例が挙げられる。培養温度は
20〜40℃好ましくは25〜35℃の範囲、培養開始
PHは6〜8、好ましくは7付近で24−96時間振盪
又は深部撹拌培養すれば、培地中にポリガラクトサミン
分解酵素が得られる。
%、酵母z*X0.5%、KCI O,05%、K、
HPO40,1%、Mg5O,”?11.OO,05%
、Fe50.0.01%の例が挙げられる。培養温度は
20〜40℃好ましくは25〜35℃の範囲、培養開始
PHは6〜8、好ましくは7付近で24−96時間振盪
又は深部撹拌培養すれば、培地中にポリガラクトサミン
分解酵素が得られる。
そして、ポリガラクトサミン分解酵素は必要に応じて単
離精製される。
離精製される。
例えば、エタノール沈澱法によって粗酵素を分離し、こ
れを水性媒質に溶解し、 CM−セファデックスC−
50イオン交換クロマトグラフイー等の処理によって精
製されたポリガラクトサミン分解酵素A−4が得られる
。
れを水性媒質に溶解し、 CM−セファデックスC−
50イオン交換クロマトグラフイー等の処理によって精
製されたポリガラクトサミン分解酵素A−4が得られる
。
本発明の新規ポリガラクトサミン分解酵素A−4を用い
るとオリゴガラクトサミンを効果的に得ることが出来る
。
るとオリゴガラクトサミンを効果的に得ることが出来る
。
次に本発明の実施例を示す。
実施例1
バチルスsp、 A−4、FERM P−10473を
500mfl三角フラスコ中でグルコース0.5%、酵
母エキス0.1%。
500mfl三角フラスコ中でグルコース0.5%、酵
母エキス0.1%。
ペプトン0.1%、K、HPO40,01%、Mg5O
,・7)120.01%、にC1O,01%の組成を有
する種培地100mMに植菌し、30℃で20時間培養
した。
,・7)120.01%、にC1O,01%の組成を有
する種培地100mMに植菌し、30℃で20時間培養
した。
得られた培養液を300ジャーファーメンタ−の中で、
ポリガラクトサミン(Pr2O3) 0.5%、酵母エ
キス0.5%、KCI 0.05%、 K、HPO40
,1%、 Mg5O,・71120.05%、 Fe5
040.01%の酵素生産培地15Mに植苗し、30℃
で72時間通気(15Q /分)撹拌(200rpm)
で培養した。
ポリガラクトサミン(Pr2O3) 0.5%、酵母エ
キス0.5%、KCI 0.05%、 K、HPO40
,1%、 Mg5O,・71120.05%、 Fe5
040.01%の酵素生産培地15Mに植苗し、30℃
で72時間通気(15Q /分)撹拌(200rpm)
で培養した。
得られた培養液を遠心分離(10000rρ飄)シて。
菌体を除き、遠心上澄に硫酸アンモニウムを0.8飽和
になる様に加え、蛋白質を沈澱させ、更に遠心分離(1
4000rpm) して蛋白質を集め、0.02Mリン
酸緩衝液(PH6,0)で透析し脱塩した。透析内液を
0.02Mリン酸緩衝液(PH6,0)で平衡化したC
トセファデックスC−50カラムにかけ、酵素蛋白質を
吸着させ、同緩衝液で未吸着部分を溶出させた。次いで
、0〜0,5M NaC1で濃度勾配をつけて、吸着さ
れた酵素蛋白質を溶出させた。更に、活性画分を集め再
度、同条件でCトセファデックスC−50カラムにかけ
、吸着画分をO〜0.5M NaC1濃度勾配で溶出
させた。活性画分を集め透析し、脱塩後、凍結乾燥し、
精製酵素蛋白質(ポリガラクトサミン分解酵素A−4)
25gを得た。
になる様に加え、蛋白質を沈澱させ、更に遠心分離(1
4000rpm) して蛋白質を集め、0.02Mリン
酸緩衝液(PH6,0)で透析し脱塩した。透析内液を
0.02Mリン酸緩衝液(PH6,0)で平衡化したC
トセファデックスC−50カラムにかけ、酵素蛋白質を
吸着させ、同緩衝液で未吸着部分を溶出させた。次いで
、0〜0,5M NaC1で濃度勾配をつけて、吸着さ
れた酵素蛋白質を溶出させた。更に、活性画分を集め再
度、同条件でCトセファデックスC−50カラムにかけ
、吸着画分をO〜0.5M NaC1濃度勾配で溶出
させた。活性画分を集め透析し、脱塩後、凍結乾燥し、
精製酵素蛋白質(ポリガラクトサミン分解酵素A−4)
25gを得た。
第1図は本酵素についての至適p)Iを、第2図は安定
PHを、第3図には作用適温を、第4図は温度安定性を
、第5図にはCトセファデツクスC−50のゲル濾過パ
ターンを、第6図は更にCM−セファデックスC−50
のゲル濾過パターンを、第7図はポリアクリルアミドゲ
ル電気泳動法により分子量を測定した結果を、第8図は
ポリアクリルアミドゲル電気泳動の結果を、更に第9図
は等電点ディスク電気泳動の結果を、それぞれ示す図で
ある。 第 1 図 代理人 弁理士 戸 1)親 男 第 図 第 図 温 度 第 図 温 度 第 図 ワラクシ1ン凱 (Ji−5ml) 吸 収(280nm) −(ト一 酵 素 活 a (units/ml) −o−第 図 pH4,3 第 図 0.4 α6 α8 1.0 f 第 図
PHを、第3図には作用適温を、第4図は温度安定性を
、第5図にはCトセファデツクスC−50のゲル濾過パ
ターンを、第6図は更にCM−セファデックスC−50
のゲル濾過パターンを、第7図はポリアクリルアミドゲ
ル電気泳動法により分子量を測定した結果を、第8図は
ポリアクリルアミドゲル電気泳動の結果を、更に第9図
は等電点ディスク電気泳動の結果を、それぞれ示す図で
ある。 第 1 図 代理人 弁理士 戸 1)親 男 第 図 第 図 温 度 第 図 温 度 第 図 ワラクシ1ン凱 (Ji−5ml) 吸 収(280nm) −(ト一 酵 素 活 a (units/ml) −o−第 図 pH4,3 第 図 0.4 α6 α8 1.0 f 第 図
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、下記の理化学的性質を有するポリガラクトサミン分
解酵素A−4。 (1)作用および基質特異性 ポリガラクトサミン(ポリα−1,ガラクトサミノガラ
クタン)に作用してオリゴガラクトサミンを生成する、
ポリヘキソース、キチン、キトサンに対しては全く作用
しない。 (2)至適pH及び安定pH範囲 酢酸緩衝液を用いた場合、至適pHは4.5であり、安
定pH範囲は4.5〜8.0である。 2、バチルス属に属するポリガラクトサミン分解酵素A
−4生産菌を培養し、培養物よりポリガラクトサミン分
解酵素A−4を採取することを特徴とするポリガラクト
サミン分解酵素A−4の製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP601389A JPH02190185A (ja) | 1989-01-17 | 1989-01-17 | ポリガラクトサミン分解酵素a−4及びその製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP601389A JPH02190185A (ja) | 1989-01-17 | 1989-01-17 | ポリガラクトサミン分解酵素a−4及びその製造法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH02190185A true JPH02190185A (ja) | 1990-07-26 |
Family
ID=11626825
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP601389A Pending JPH02190185A (ja) | 1989-01-17 | 1989-01-17 | ポリガラクトサミン分解酵素a−4及びその製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH02190185A (ja) |
-
1989
- 1989-01-17 JP JP601389A patent/JPH02190185A/ja active Pending
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