JPH01321364A - 抗熱帯マラリア原虫スポロゾイト抗体の検出法 - Google Patents
抗熱帯マラリア原虫スポロゾイト抗体の検出法Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
感染を診断するための新規な免疫一酵素的検出法に係る
。
。
さらに詳述すれば、本発明は、熱帯マラリア原虫(Pl
asmodium falciparum)スポロゾイ
トに対する抗体を均一相で検出する免疫酵素的方法に係
る。
asmodium falciparum)スポロゾイ
トに対する抗体を均一相で検出する免疫酵素的方法に係
る。
マラリア(ヒトにおける最ら重大な寄生虫感染の1つで
ある)はプラスモディウム属(Plasmodium)
に属する原虫によって起こり、多段階サイクルに従って
、一部は有を椎性宿主(ヒト)内において、一部はキャ
リヤー、蚊の内部で発現する。
ある)はプラスモディウム属(Plasmodium)
に属する原虫によって起こり、多段階サイクルに従って
、一部は有を椎性宿主(ヒト)内において、一部はキャ
リヤー、蚊の内部で発現する。
感染は、ハマダラカ属(Anopheles)の蚊によ
るスポロゾイト形のプラスモディウム属菌の接種によっ
てヒトにおいて生ずる。
るスポロゾイト形のプラスモディウム属菌の接種によっ
てヒトにおいて生ずる。
ヒトにおいてマラリアを起こさせるプラスモディウム属
菌の主な種は、プラスモディウム・オバーレ(Plas
modium ovale)、プラスモディウム・マラ
リアエ(Plasmodium malariae)、
プラスモデイウム・パイパックス(Plasmodiu
m vivax)及び熱帯マラリア原虫(Plasmo
diun falciparum)である。
菌の主な種は、プラスモディウム・オバーレ(Plas
modium ovale)、プラスモディウム・マラ
リアエ(Plasmodium malariae)、
プラスモデイウム・パイパックス(Plasmodiu
m vivax)及び熱帯マラリア原虫(Plasmo
diun falciparum)である。
特に最後のものは、最も広く分布している種であるだけ
でなく、感染に伴う重篤な病気の発生及び大量死の原因
となる種でもある。
でなく、感染に伴う重篤な病気の発生及び大量死の原因
となる種でもある。
現在、マラリアは、中でもアジア、アフリカ及びアメリ
カの熱帯地域において、薬剤耐性寄生虫の出現及びその
野放しの拡散、及びコン)・ロールシステムの劣化(そ
の結果、ファイトプログラムのコストが上昇する)のた
め復活し、流行している。
カの熱帯地域において、薬剤耐性寄生虫の出現及びその
野放しの拡散、及びコン)・ロールシステムの劣化(そ
の結果、ファイトプログラムのコストが上昇する)のた
め復活し、流行している。
マラリア撲滅キャンペーンを行う際の基本的な要素は、
該キャンペーン前、キャンペーン中及び終了後における
感染の発生に関する情報を得ることである。
該キャンペーン前、キャンペーン中及び終了後における
感染の発生に関する情報を得ることである。
従って、このためには、大規模な研究に適し、同時に高
い感度が付与された診断方法が利用できなければならな
い。
い感度が付与された診断方法が利用できなければならな
い。
当分野では、ヒトにおけるマラリアの診断法として、血
液を顕微鏡によって検査する方法、本質的に蛍光の測定
に基く免疫法(IFA)[E、H,NardinらrB
ull YHOJ 57(Suppl、 1)、 21
1−217(1979)]及び放射能の測定に基く免疫
法(IRMA)[F、 Zavalaら[サイエンス(
science)4228.1436(1985)]が
知られている。
液を顕微鏡によって検査する方法、本質的に蛍光の測定
に基く免疫法(IFA)[E、H,NardinらrB
ull YHOJ 57(Suppl、 1)、 21
1−217(1979)]及び放射能の測定に基く免疫
法(IRMA)[F、 Zavalaら[サイエンス(
science)4228.1436(1985)]が
知られている。
このような公知の方法は、数百又は数千のサンプルを検
査するものであり、中でも、実施に長時間を要するため
、必ずしも疫学的調査には適していない。
査するものであり、中でも、実施に長時間を要するため
、必ずしも疫学的調査には適していない。
さらに、IFA法及びIRMA法は、蛍光物質及び放射
性同位元素の如きあまり安定でなく、かつ非常に有害な
物質の使用に関する欠点を有する。
性同位元素の如きあまり安定でなく、かつ非常に有害な
物質の使用に関する欠点を有する。
当分野では、上記物質の使用を回避し、本質的に呈色反
応において触媒作用を発揮する酵素の使用に基く診断用
(EIA)も公知である。
応において触媒作用を発揮する酵素の使用に基く診断用
(EIA)も公知である。
これらの方法の中で6、ヒトにおけるマラリアの診断を
行うために最も広く利用されている方法は、たとえばF
、 Zavalaらreed、 Proc、J 44.
980(1985); G、 Del Giudic
eら[J、 Cl1n、 Microbiol、J
25、9l−96(1987)の開示の如きELISA
法(同相酵素免疫測定法)である。
行うために最も広く利用されている方法は、たとえばF
、 Zavalaらreed、 Proc、J 44.
980(1985); G、 Del Giudic
eら[J、 Cl1n、 Microbiol、J
25、9l−96(1987)の開示の如きELISA
法(同相酵素免疫測定法)である。
さらに詳述すれば、該公知法によれば、天然又は合成の
抗原を、共有結合又は吸着によって、たとえばポリスチ
レンの如き固状支持体に結合させ、該支持体の残留結合
部位を適当なタンパク質でブロッキングした後、被検血
清と共にインキュベートする。
抗原を、共有結合又は吸着によって、たとえばポリスチ
レンの如き固状支持体に結合させ、該支持体の残留結合
部位を適当なタンパク質でブロッキングした後、被検血
清と共にインキュベートする。
ついで、反応混合物に、検出用酵素に結合した抗ヒト免
疫グロブリン抗体及び酵素に特異な基質(血清が陽性で
ある場合には着色生成物を生ずる)を連続して添加する
。
疫グロブリン抗体及び酵素に特異な基質(血清が陽性で
ある場合には着色生成物を生ずる)を連続して添加する
。
このような方法では、IRMA法及びIFA法における
問題点を解消できるが、所要時間が長いこと(約6時間
)及び煩雑かつ高価な方法によってしか調製され得ない
抗ヒト免疫グロブリン−酵素抗体の如き反応体を使用す
ることに関連する欠点が必ずしも解消されてはいない。
問題点を解消できるが、所要時間が長いこと(約6時間
)及び煩雑かつ高価な方法によってしか調製され得ない
抗ヒト免疫グロブリン−酵素抗体の如き反応体を使用す
ることに関連する欠点が必ずしも解消されてはいない。
さらに、この方法は、現時点では、その利用の際、感度
1 ng(Ab)/μQ(血清)の限界があり、低抗体
含量を有する多数の血清の検査を可能にするものではい
。
1 ng(Ab)/μQ(血清)の限界があり、低抗体
含量を有する多数の血清の検査を可能にするものではい
。
実際、この検査法では、2つの支持体間の吸光度の差か
ら得られる固有の値(specific value)
は、該支持体の均−性及び再現性、従って抗原及びタン
パク質の吸着性に大いに左右される。
ら得られる固有の値(specific value)
は、該支持体の均−性及び再現性、従って抗原及びタン
パク質の吸着性に大いに左右される。
低感度であることにより、ELISA法は、さらに、多
数の[誤った陰性サンプル」の原因となり、一方、同じ
サンプルに相当する支持体(ミクロタイトレージョンに
関しては滴板(slab)の穴)間の差が「誤った陽性
サンプル」を生じうる。
数の[誤った陰性サンプル」の原因となり、一方、同じ
サンプルに相当する支持体(ミクロタイトレージョンに
関しては滴板(slab)の穴)間の差が「誤った陽性
サンプル」を生じうる。
感度の値は、酵素でラベル付けされた(酵素ラベル化)
第2の抗体による抗スポロゾイト抗体−抗原複合体の生
成反応及び最後の呈色反応が不均一相で行われているこ
とから、該検査法において強く影響されることは明らか
である。
第2の抗体による抗スポロゾイト抗体−抗原複合体の生
成反応及び最後の呈色反応が不均一相で行われているこ
とから、該検査法において強く影響されることは明らか
である。
さらに、使用よりも長時間前に抗原により及びタンパク
質によって処理した滴板の如き支持体は、安定性及び保
存性に関する問題点かある。
質によって処理した滴板の如き支持体は、安定性及び保
存性に関する問題点かある。
英国特許出願第8729975号にはヒトにおけるマラ
リアの診断を行う変形ELISA法が開示されており、
該方法では、合成抗原−酵素結合体(該抗原は反応して
、特異的に抗熱帯マラリア原虫スポロゾイト抗体と結合
する)及び固状支持体に適当に結合させたタンパク質(
該タンパク質は抗体−抗原−酵素複合体の抗スポロゾイ
ト抗体を結合させる)を使用する。
リアの診断を行う変形ELISA法が開示されており、
該方法では、合成抗原−酵素結合体(該抗原は反応して
、特異的に抗熱帯マラリア原虫スポロゾイト抗体と結合
する)及び固状支持体に適当に結合させたタンパク質(
該タンパク質は抗体−抗原−酵素複合体の抗スポロゾイ
ト抗体を結合させる)を使用する。
該方法に従って操作することにより、所要時間を効果的
に短縮できるが、不均一相での操作に関連する問題点は
なお残っている。
に短縮できるが、不均一相での操作に関連する問題点は
なお残っている。
従って、本発明は、ヒトにおけるマラリアの診断を、簡
単に、再現性良く、迅速に、感度良くかつ経済的に有利
に実施することを目的とする。
単に、再現性良く、迅速に、感度良くかつ経済的に有利
に実施することを目的とする。
かかる目的は、本発明に従い、合成抗原(P)、合成抗
原−酵素結合体(P−E)、及び抗スポロゾイト抗体−
合成抗原複合体(該合成抗原は遊離の形(P)及びラベ
ル付きの形(P−E)である)を定量的に沈殿させる基
質を使用することにより、均一相において好適な条件下
で行われる免疫酵素法によって達成される。
原−酵素結合体(P−E)、及び抗スポロゾイト抗体−
合成抗原複合体(該合成抗原は遊離の形(P)及びラベ
ル付きの形(P−E)である)を定量的に沈殿させる基
質を使用することにより、均一相において好適な条件下
で行われる免疫酵素法によって達成される。
従って、本発明の目的はヒト血液サンプル中の抗熱帯マ
ラリア原虫スポロゾイト抗体を均一相において測定する
免疫酵素法にある。
ラリア原虫スポロゾイト抗体を均一相において測定する
免疫酵素法にある。
本発明の他の目的は、本発明による方法を実施するため
に必要な反応体を包含してなるヒト血液サンプル中の抗
熱帯マラリア原虫スポロゾイト抗体を検出する診断用キ
ットにある。
に必要な反応体を包含してなるヒト血液サンプル中の抗
熱帯マラリア原虫スポロゾイト抗体を検出する診断用キ
ットにある。
本発明のさらに他の目的については、明細書及び後述の
実施例から明らかになるであろう。
実施例から明らかになるであろう。
特に、本発明による免疫酵素法は、a)ヒト血液の同一
サンプルの一定量2個を、別個にpos、sないし8.
00のリン酸塩緩衝液剤溶液中、濃度0.05%(重量
/容量又は4遣/容量)(W/V又はV/ V)以上の
非イオン系及び/又は弱陰イオン系界面活性剤の存在下
、温度I5ないし35℃で合成抗原−酵素結合体(P−
EXここで、合成抗原は被検サンプル中に存在しうる抗
熱帯マラリア原虫スポロゾイト抗体と反応しうるしので
あり、酵素は呈色反応において触媒作用を発揮するもの
である)と反応させ(ただし、該サンプルの一定量2個
の一方に、予め、抗スポロゾイト抗体−合成抗原−酵素
複合体(Ab−P−E)の生成を完全に阻害する濃度の
未酵素ラベル化合成抗原(P)を混合しておく)、b)
上記工程a)で処理したサンプルに、抗スポロゾイト抗
体−合成抗原−酵素複合体を定量的に沈殿させうる不活
性物質を最終濃度13ないし17%(W/ V)で添加
し、C)上記工程b)で得られた反応混合物から、濾過
又は遠沈により沈殿物を分離し、d)該沈殿物を、前記
不活性物質を最終濃度13ないし17%C3/ V)で
添加した緩衝剤溶液で繰返し洗浄し、e)得られた沈殿
物を、非イオン系及び/又は弱陰イオン系の界面活性剤
を最終濃度0.05%(V/V又はV/ V)以上で含
有するpH4,0ないし5.5の緩衝剤溶液中に、最終
濃度3ないし5%(W/ V)の不活性沈殿化物質の存
在下又は不存在下で溶解させ、「)得られた溶液に、過
酸化水素及び被検サンプルが陽性である際に着色生成物
を生成する無色の酵素基質を添加し、最後に、分光測光
によって色の強さを測定する各工程を包含する。
サンプルの一定量2個を、別個にpos、sないし8.
00のリン酸塩緩衝液剤溶液中、濃度0.05%(重量
/容量又は4遣/容量)(W/V又はV/ V)以上の
非イオン系及び/又は弱陰イオン系界面活性剤の存在下
、温度I5ないし35℃で合成抗原−酵素結合体(P−
EXここで、合成抗原は被検サンプル中に存在しうる抗
熱帯マラリア原虫スポロゾイト抗体と反応しうるしので
あり、酵素は呈色反応において触媒作用を発揮するもの
である)と反応させ(ただし、該サンプルの一定量2個
の一方に、予め、抗スポロゾイト抗体−合成抗原−酵素
複合体(Ab−P−E)の生成を完全に阻害する濃度の
未酵素ラベル化合成抗原(P)を混合しておく)、b)
上記工程a)で処理したサンプルに、抗スポロゾイト抗
体−合成抗原−酵素複合体を定量的に沈殿させうる不活
性物質を最終濃度13ないし17%(W/ V)で添加
し、C)上記工程b)で得られた反応混合物から、濾過
又は遠沈により沈殿物を分離し、d)該沈殿物を、前記
不活性物質を最終濃度13ないし17%C3/ V)で
添加した緩衝剤溶液で繰返し洗浄し、e)得られた沈殿
物を、非イオン系及び/又は弱陰イオン系の界面活性剤
を最終濃度0.05%(V/V又はV/ V)以上で含
有するpH4,0ないし5.5の緩衝剤溶液中に、最終
濃度3ないし5%(W/ V)の不活性沈殿化物質の存
在下又は不存在下で溶解させ、「)得られた溶液に、過
酸化水素及び被検サンプルが陽性である際に着色生成物
を生成する無色の酵素基質を添加し、最後に、分光測光
によって色の強さを測定する各工程を包含する。
工程a)
本発明の方法によれば、工程a)における被検ヒト血液
サンプルは、全血、血清又は血漿である。
サンプルは、全血、血清又は血漿である。
特に、全血を使用する場合には、遊離形又は結合形の抗
原との反応終了後、沈殿又は1濾過によって@濁物質を
除去するか、又は該工程において緩衝剤溶液で希釈した
血液サンプルについて操作を行う。
原との反応終了後、沈殿又は1濾過によって@濁物質を
除去するか、又は該工程において緩衝剤溶液で希釈した
血液サンプルについて操作を行う。
本発明の目的に適する合成抗原は、抗熱帯マラリア原虫
スポロゾイト抗体を認識し、特異的に結合しうるポリペ
プチドである。
スポロゾイト抗体を認識し、特異的に結合しうるポリペ
プチドである。
特に、該ポリペプチドは次のアミノ酸配列によって定義
される。
される。
(Asn−^1a−Asn−Pro)n(式中、Asn
−アスパラギン、^la=lミニアラニン及びPro=
プロリンであり、nは3ないし40である)かかるポリ
ペプチド[熱帯マラリア原虫のサーカムスボロゾイトタ
ンパク質(circumsporozoiticpro
tein)(C3)のペプチドセグメントを正確に再生
するコは、ヨーロッパ特許公開第2096.13号に開
示された種類の重縮合法によって調製される。
−アスパラギン、^la=lミニアラニン及びPro=
プロリンであり、nは3ないし40である)かかるポリ
ペプチド[熱帯マラリア原虫のサーカムスボロゾイトタ
ンパク質(circumsporozoiticpro
tein)(C3)のペプチドセグメントを正確に再生
するコは、ヨーロッパ特許公開第2096.13号に開
示された種類の重縮合法によって調製される。
これらポリペプチドには2つの末端官能基(すなわち−
NH,及び−COOH)のみ存在するため、本発明によ
る結合体の調製に特に有用であり、ポリペプチドと酵素
との間で、該酵素の触媒活性を損うことなく、安定した
共有結合を形成させうる。
NH,及び−COOH)のみ存在するため、本発明によ
る結合体の調製に特に有用であり、ポリペプチドと酵素
との間で、該酵素の触媒活性を損うことなく、安定した
共有結合を形成させうる。
該ポリペプチドと酵素との結合は、一般の方法に従って
行われる。
行われる。
好ましくは、英国特許出願第8729975号に開示さ
れた如くして結合体を調製する。
れた如くして結合体を調製する。
呈色反応において触媒作用を発揮する酵素は、免疫酵素
検出法において一般的に使用される酵素の中から選ばれ
る。
検出法において一般的に使用される酵素の中から選ばれ
る。
かかる酵素の例としては、ペルオキシダーゼ、酸ホスフ
ァターゼ、アルカリホスファターゼ、α−ガラクトシダ
ーゼ及びβ−ガラクトンダーゼがある。
ァターゼ、アルカリホスファターゼ、α−ガラクトシダ
ーゼ及びβ−ガラクトンダーゼがある。
特に、本発明をさらに説明するため(ただし、これに限
定されない)、合成抗原として(Asn −AlaAs
n Pro)to[(NANP)to]を使用し、酵
素としてペルオキシダーゼを使用した。
定されない)、合成抗原として(Asn −AlaAs
n Pro)to[(NANP)to]を使用し、酵
素としてペルオキシダーゼを使用した。
本発明の方法に従い、pH6,5ないし8.00のリン
酸塩緩衝剤溶液(PBS)で適当に希釈した同一の血液
サンプルの一定量2個を、別個に、合成抗原−酵素結合
体CP−E)を濃度t、oないし2.0μ9/IIQで
含有する同じリン酸塩緩衝剤溶液と混合する。
酸塩緩衝剤溶液(PBS)で適当に希釈した同一の血液
サンプルの一定量2個を、別個に、合成抗原−酵素結合
体CP−E)を濃度t、oないし2.0μ9/IIQで
含有する同じリン酸塩緩衝剤溶液と混合する。
特に、緩衝剤溶液は、非イオン系及び/又は弱陰イオン
系の界面活性剤(D)、又はこれら界面活性剤の混合物
(相互比=約1)を最終濃度0.05%(重量/容量又
は容量/容量XW/V又はv7v)以上で含有する。
系の界面活性剤(D)、又はこれら界面活性剤の混合物
(相互比=約1)を最終濃度0.05%(重量/容量又
は容量/容量XW/V又はv7v)以上で含有する。
非イオン系及び弱陰イオン系界面活性剤は、当分野で公
知であって、診断の分野で一般的に使用されているもの
の中から遭ばれる。
知であって、診断の分野で一般的に使用されているもの
の中から遭ばれる。
これら界面活性剤の例としては、Tween −20、
Triton X及びサポニン(非イオン系界面活性剤
)、及びコール酸ナトリウム(Na−C)、デオキンコ
ール酸ナトリウム(Na −Doc)及びナトリウムラ
ウロイル−サルコンネート(Na −L −5arX弱
陰イオン系界面活性剤)がある。
Triton X及びサポニン(非イオン系界面活性剤
)、及びコール酸ナトリウム(Na−C)、デオキンコ
ール酸ナトリウム(Na −Doc)及びナトリウムラ
ウロイル−サルコンネート(Na −L −5arX弱
陰イオン系界面活性剤)がある。
好ましくは、Triton X−1ooを濃度0.05
%又は約0.05%で使用し、又はTriton X−
100とナトリウムラウロイル−サルコシネートとの混
合物(各成分間の比−1)を使用する。
%又は約0.05%で使用し、又はTriton X−
100とナトリウムラウロイル−サルコシネートとの混
合物(各成分間の比−1)を使用する。
本発明によれば、サンプルの一定量2個のうちの一方を
、P−E結合体に対して大モル過剰量の末ラベル化合成
抗原(P)と混合する。これにより、P−Eと競合する
遊離の抗原は、サンプル中に存在しうる抗スポロゾイト
抗体(Ab)と−緒になってAb−P複合体を形成し、
Ab−1’−Eの生成を完全に阻害する。
、P−E結合体に対して大モル過剰量の末ラベル化合成
抗原(P)と混合する。これにより、P−Eと競合する
遊離の抗原は、サンプル中に存在しうる抗スポロゾイト
抗体(Ab)と−緒になってAb−P複合体を形成し、
Ab−1’−Eの生成を完全に阻害する。
本発明によれば、モル比P/PE= 100/ 1では
上記複合体の生成を完全に阻害する。
上記複合体の生成を完全に阻害する。
ついで、このようにして得られた反応混合物を、濃度1
5ないし35℃、好ましくは20ないし30℃において
15ないし30分間、好ましくは20分間インキュベー
トする。
5ないし35℃、好ましくは20ないし30℃において
15ないし30分間、好ましくは20分間インキュベー
トする。
工程b)
本発明による方法の工程b)では、前記工程a)で生成
されたAb−P及びAb−P−E複合体を、反応混合物
に硫酸アンモニウム又は分子量(MY)4000以上の
ポリエチレングリコール(PEG)から選ばれる不活性
物質(反応性でなく、変性作用のないもの)を上記複合
体が定量的に沈殿するのを可能にする最終濃度で添加す
ることによって沈殿させる。
されたAb−P及びAb−P−E複合体を、反応混合物
に硫酸アンモニウム又は分子量(MY)4000以上の
ポリエチレングリコール(PEG)から選ばれる不活性
物質(反応性でなく、変性作用のないもの)を上記複合
体が定量的に沈殿するのを可能にする最終濃度で添加す
ることによって沈殿させる。
好ましくは、PEG−6000を最終濃度13ないし1
7%fJ/ V)で使用する。
7%fJ/ V)で使用する。
この工程では、混合物を穏やかに撹拌しながら、温度1
5ないし35℃、好ましくは20ないし30℃、時間4
0ないし60分で操作を行う。
5ないし35℃、好ましくは20ないし30℃、時間4
0ないし60分で操作を行う。
上述の好適な条件下で操作することにより、PEG−6
000”はサンプル中に存在する免疫グロブリン(Ab
−P及びAb−P−E?1合体を含む)のすべてを沈殿
させ、溶液中に未反応の抗原が残る。
000”はサンプル中に存在する免疫グロブリン(Ab
−P及びAb−P−E?1合体を含む)のすべてを沈殿
させ、溶液中に未反応の抗原が残る。
工程C)
この工程では、遠沈又は濾過によって反応混合物から沈
殿物を分離する。
殿物を分離する。
好ましくは、沈殿物の分離を濾過によって行う。
この場合、少量(μQのオーダー)で操作することによ
り、該方法の工程が簡単になる。
り、該方法の工程が簡単になる。
該目的に関し、たとえばMilliliter Fil
tra−tion System (Millipor
e Corp、)の如き市販の濾過装置を使用できる。
tra−tion System (Millipor
e Corp、)の如き市販の濾過装置を使用できる。
このシステムは、孔サイズ0.22μmを有する濾過板
(filtering 5lab)を包含してなるもの
であり、使用後では、ELISAテストで使用される吸
収剤板(absorbent 5lab)とは異なり、
洗浄され、連続分析に再使用される。
(filtering 5lab)を包含してなるもの
であり、使用後では、ELISAテストで使用される吸
収剤板(absorbent 5lab)とは異なり、
洗浄され、連続分析に再使用される。
工程d)
この工程では、濾過板上にある沈殿物を、沈殿化物質を
最終濃度13ないし17%で含有するPBS/ D緩衝
剤溶液で繰返しく一般に3−4回)洗浄する。
最終濃度13ないし17%で含有するPBS/ D緩衝
剤溶液で繰返しく一般に3−4回)洗浄する。
工程e)
本発明によれば、この工程では最終濃度3ないし5%(
W/V)の沈殿溶液の存在下又は不存在下、上記工程a
)に関して述べたものと同じ濃度で非イオン系又は弱陰
イオン系の界面活性剤を含有するpH4ないし5.5の
0.1M酢酸塩又は酢酸塩−クエン酸塩を一度に又は少
量ずつに分けて添加することにより、沈殿物を溶解させ
る。
W/V)の沈殿溶液の存在下又は不存在下、上記工程a
)に関して述べたものと同じ濃度で非イオン系又は弱陰
イオン系の界面活性剤を含有するpH4ないし5.5の
0.1M酢酸塩又は酢酸塩−クエン酸塩を一度に又は少
量ずつに分けて添加することにより、沈殿物を溶解させ
る。
好ましくは、PGE−60004%及びTriton
X−1000,05%を含有するpH5,0又は約5.
0の緩衝剤溶液を使用する。
X−1000,05%を含有するpH5,0又は約5.
0の緩衝剤溶液を使用する。
分散剤としての界面活性剤の存在は、抗体−抗原−酵素
複合体の安定化及び回収において特に有利である。上述
の濃度で存在する沈殿化物質は、これに対して、酵素応
答の非固有(Bspecific)バックグラウンドを
低下させる機能を果たす。
複合体の安定化及び回収において特に有利である。上述
の濃度で存在する沈殿化物質は、これに対して、酵素応
答の非固有(Bspecific)バックグラウンドを
低下させる機能を果たす。
実際、該物質は、上記PRにおいて、ペルオキシダーゼ
活性を有する非免疫グロブリン性の沈殿物質の多くを不
溶性とする。
活性を有する非免疫グロブリン性の沈殿物質の多くを不
溶性とする。
工程f)
本発明の方法によれば、この工程は、前記工程e)で得
られた混合物に、使用した酵素に対して特異な無色の基
質を添加することによって行なれる。
られた混合物に、使用した酵素に対して特異な無色の基
質を添加することによって行なれる。
酵素がペルオキシダーゼ(E、C,1,11,1,7,
)である場合、特異基質は好ましくはABTS[2,2
−アジノ−ジ−(3−エチル−ベンゾチアゾリン−スル
ホネート月又はTMB(3,3′,5,5′−テトラメ
チル−ベンジジン)である。
)である場合、特異基質は好ましくはABTS[2,2
−アジノ−ジ−(3−エチル−ベンゾチアゾリン−スル
ホネート月又はTMB(3,3′,5,5′−テトラメ
チル−ベンジジン)である。
呈色反応は、過酸化水素の存在下、温度15ないし35
℃、好ましくは20ないし30℃において好適な時間で
行われる。一般に、loないし30分の時間で充分であ
る。
℃、好ましくは20ないし30℃において好適な時間で
行われる。一般に、loないし30分の時間で充分であ
る。
本発明の方法によれば、好ましくはTMB及びH−Ot
を最終濃度それぞれ0.Lzg/麓Q及び1 、 :l
dで使用し、これら条件下での反応時間は10分である
。終了後、強酸(たとえばutso、)を濃度2ないし
3モルで添加して酵素反応を停止させる。。各一定量に
ついて、ブランク(すなわち、血液サンプルの不存在下
における本発明の各工程で調製された物質)に対する分
光測光による吸光度を測定することによって色の強度を
評価する。
を最終濃度それぞれ0.Lzg/麓Q及び1 、 :l
dで使用し、これら条件下での反応時間は10分である
。終了後、強酸(たとえばutso、)を濃度2ないし
3モルで添加して酵素反応を停止させる。。各一定量に
ついて、ブランク(すなわち、血液サンプルの不存在下
における本発明の各工程で調製された物質)に対する分
光測光による吸光度を測定することによって色の強度を
評価する。
各サンプルに関してAb−、P−E複合体に対する固有
値、すなわち固有吸光度(A)は、式 ・^(
サンプル十P−E)−A[サンプル+(P+P−E)]
により、すなわち全吸光度(固有吸光度十非固有吸光度
)と非固有吸光度との間の差によって示される。
値、すなわち固有吸光度(A)は、式 ・^(
サンプル十P−E)−A[サンプル+(P+P−E)]
により、すなわち全吸光度(固有吸光度十非固有吸光度
)と非固有吸光度との間の差によって示される。
本発明によれば、サンプルを「陽性」又は「陰性」に分
類するために使用する判断基準は次のとおりである。
類するために使用する判断基準は次のとおりである。
一固有^〔[^(spec、月と表示する〕か0.10
0より大であり、全A(固有吸光度及び非固有吸光度の
和)の少なくとも30%である場合、該サンプルを「陽
性」とみなす。
0より大であり、全A(固有吸光度及び非固有吸光度の
和)の少なくとも30%である場合、該サンプルを「陽
性」とみなす。
−A(spec、)が0.100より小である(阻害値
(%)がいくらであっても)場合、該サンプルを「陰性
」とみなす。
(%)がいくらであっても)場合、該サンプルを「陰性
」とみなす。
本発明による方法の感度は、抗スポロゾイト抗体が濃度
0.2ng/uQ(血清)又はほぼ0.2ng/ u
QC血清)において検出されうる程度である。
0.2ng/uQ(血清)又はほぼ0.2ng/ u
QC血清)において検出されうる程度である。
さらに、本・発明の方法に従って温度30℃で操作する
ことによって得られる結果が温度2G−25℃で観察さ
れるものと同じであることが確認された。
ことによって得られる結果が温度2G−25℃で観察さ
れるものと同じであることが確認された。
この事実は、該方法が、マラリアが広く流行している熱
帯地域で有利に利用されることを可能にする。
帯地域で有利に利用されることを可能にする。
要約すれば、本発明による方法は、当分野における現状
と比べてかなり有利である、特にELISA法よりも優
れていることを示す。
と比べてかなり有利である、特にELISA法よりも優
れていることを示す。
中でも、該方法か安価であることに加えて、感度が高い
こと、結果の再現性が高いこと、操作が迅速であり、正
確であること等の利点が指摘される。
こと、結果の再現性が高いこと、操作が迅速であり、正
確であること等の利点が指摘される。
本発明による方法の感度は、抗スポロゾイト抗体と合成
抗原との間の複合体の生成反応及び呈色反応が均一相に
おいて所定条件下で起るとの事実によるものである。
抗原との間の複合体の生成反応及び呈色反応が均一相に
おいて所定条件下で起るとの事実によるものである。
さらに、本発明の方法は、各サンプルの固有値を純粋な
(末ラベル化)抗原で阻害することに基くものであるた
め、免疫学診断法による半定屯的応答(該方法の大きい
感度によって増幅される)を提供する。
(末ラベル化)抗原で阻害することに基くものであるた
め、免疫学診断法による半定屯的応答(該方法の大きい
感度によって増幅される)を提供する。
本発明の方法が安価であることに関して、抗原及びテス
トの実施に必要な反応体(市販品)以外に、1’−E結
合体(抗体−抗ヒト結合体よりも安価であるとの利点を
有する)が必要である。
トの実施に必要な反応体(市販品)以外に、1’−E結
合体(抗体−抗ヒト結合体よりも安価であるとの利点を
有する)が必要である。
本発明による方法の利点は、実施が簡単である点にもあ
る。
る。
さらに、該方法は、小サンプル数及び大サンプル数のい
ずれにも適し、融通性があるため、低容量診断要求の衛
生ユニットでの使用にも適している。ヒト血液サンプル
についての抗熱帯マラリア原虫スポロゾイト抗体の検出
には、本発明の方法を実施するに必要なすべての反応体
を包含する分析パック、たとえば合成抗原、合成抗原−
酵素結合体、基質、緩衝剤溶液及び抗原−抗体複合体を
沈殿させる物質でなるキットが好適である。
ずれにも適し、融通性があるため、低容量診断要求の衛
生ユニットでの使用にも適している。ヒト血液サンプル
についての抗熱帯マラリア原虫スポロゾイト抗体の検出
には、本発明の方法を実施するに必要なすべての反応体
を包含する分析パック、たとえば合成抗原、合成抗原−
酵素結合体、基質、緩衝剤溶液及び抗原−抗体複合体を
沈殿させる物質でなるキットが好適である。
この種又は同様の種類の分析パックでは、抗熱帯マラリ
ア原虫スポロゾイト抗体をできるだけ低コストで検出で
きる。
ア原虫スポロゾイト抗体をできるだけ低コストで検出で
きる。
以下の実施例は説明のためのものであって、本発明を限
定するものではない。
定するものではない。
実施例!
健常者及びマラリアに罹った者から採取した未知の源の
血清16検体(参照コード241−711及びKXを付
した)、2人の健常な提供者から採取した血清及びヘパ
リン処理血漿、2種類のモノクロナール(Mab)抗(
NANP:h抗体を添加すること[l及び2ng/μg
(全血清)]によって陽性とした健常者からの血清を使
用した。
血清16検体(参照コード241−711及びKXを付
した)、2人の健常な提供者から採取した血清及びヘパ
リン処理血漿、2種類のモノクロナール(Mab)抗(
NANP:h抗体を添加すること[l及び2ng/μg
(全血清)]によって陽性とした健常者からの血清を使
用した。
EpI)endor4試験管内において、各サンプルを
pH75のPBS/ D緩衝剤溶液(PBS= 0.0
1Mリン酸ナトリウム、 0.3M NaCQ: D=
0.05%Triton X −100゜V/V及び0
.05%すトリウムラウロイルサルコシン。
pH75のPBS/ D緩衝剤溶液(PBS= 0.0
1Mリン酸ナトリウム、 0.3M NaCQ: D=
0.05%Triton X −100゜V/V及び0
.05%すトリウムラウロイルサルコシン。
W/V)によりl:50で希釈した。
実際には、血清、血漿及びMab/陰性血清5μQをP
BS/D 245μgで希釈した。
BS/D 245μgで希釈した。
このように希釈した各サンプルの一定量(50μQ)4
個を、96穴滴板の同一の縦方向列に属する近接する一
連の4つの穴に充填した。従って1つの滴数は22サン
プルが充填されることになる。なお、1番目の列はブラ
ンク(最終酵素反応の基質のみ)として確保している。
個を、96穴滴板の同一の縦方向列に属する近接する一
連の4つの穴に充填した。従って1つの滴数は22サン
プルが充填されることになる。なお、1番目の列はブラ
ンク(最終酵素反応の基質のみ)として確保している。
各サンプルの3番目及び4番目の穴に、合成ペプチド(
IIANP) 、。(P)の蒸留水溶液(Iμg/μ1
2)2It (lを添加した。
IIANP) 、。(P)の蒸留水溶液(Iμg/μ1
2)2It (lを添加した。
つづいて、サンプルを充填したすべての穴に、P−E結
合体のPBS/ D溶液(2μ9/If2)50μQを
添加した。
合体のPBS/ D溶液(2μ9/If2)50μQを
添加した。
室温(20−25℃)に20分間維持した後、1つの穴
にPEG−6000(Fluka)の30%(W/ V
)溶液0.1xQを導入した。
にPEG−6000(Fluka)の30%(W/ V
)溶液0.1xQを導入した。
この溶液は高粘度であるため、各々の穴に小さいスチー
ル製ボール(直径3.1+u)を入れ、滴数をわずかに
回転させることにより、サンプルと良好に混合される。
ル製ボール(直径3.1+u)を入れ、滴数をわずかに
回転させることにより、サンプルと良好に混合される。
滴数を室温に60分間維持し、各々の穴からサンプル0
.11を採取し、濾過板(Millipore、5TG
V 096NS 0.22μつの相当する穴に移した。
.11を採取し、濾過板(Millipore、5TG
V 096NS 0.22μつの相当する穴に移した。
サンプルを吸引濾過し、各回PEG−6000の15%
、 PBS/D溶液0.21JQずつで4回洗浄した。
、 PBS/D溶液0.21JQずつで4回洗浄した。
ついで、各々の穴に、Triton X −100(0
,05%)及びPEG−6000(4%)を含有するp
H5,0の0.1M酢酸塩緩衝剤溶液(ra溶液J)0
.150z(2を導入することによってフィルター上の
沈殿物を溶解させた。ゆるやかに振盪しながら、滴数を
室温に5分間維持した。
,05%)及びPEG−6000(4%)を含有するp
H5,0の0.1M酢酸塩緩衝剤溶液(ra溶液J)0
.150z(2を導入することによってフィルター上の
沈殿物を溶解させた。ゆるやかに振盪しながら、滴数を
室温に5分間維持した。
その後、溶液を吸引によって下方の受容板に集めた。
ついで、同一の「a溶iJ0.1zcを使用して吸引を
繰返して行った。
繰返して行った。
受容板を回収し、各々の穴に、3.3′,5,5′−テ
トラメチルーベンジジシ(TMB)及びH2O,を各々
最終濃度0.1m9/xQ及び1.3mMを含有する溶
液30μQを添加した。
トラメチルーベンジジシ(TMB)及びH2O,を各々
最終濃度0.1m9/xQ及び1.3mMを含有する溶
液30μQを添加した。
10分後、各々ノ穴1: 3 M )I、5o425μ
(tを添加することによって酵素反応を停止させた。つ
いで、滴数リーダーTitertek Multisk
an Plusにより、各々の穴の溶液の吸光度を45
0nmで測定した。
(tを添加することによって酵素反応を停止させた。つ
いで、滴数リーダーTitertek Multisk
an Plusにより、各々の穴の溶液の吸光度を45
0nmで測定した。
得られた結果を第1表に示す。
なお、表中(後述の表を含む)、(a)は固有吸光度十
非固有吸光度を示し、(b)は非固有吸光度を示し、A
(spec、)は固有吸光度を示し、阻害率(%)又は
特異率(%)は本発明の方法の特異性を示す。
非固有吸光度を示し、(b)は非固有吸光度を示し、A
(spec、)は固有吸光度を示し、阻害率(%)又は
特異率(%)は本発明の方法の特異性を示す。
実施例2
下記の溶液を使用して、上記実施例1と同様にして操作
を行った。
を行った。
−Triton X−1000,05%を含有するpH
5,0のo、iM酢酸塩緩衝剤溶液(rb溶液」)でな
る沈殿物用溶媒 −2,2’−アジノ−ジ−(3−エチル−ベンゾチアゾ
リン)−スルホネート(ABTS)及びHtOtを各々
最終濃度!、1u/xQ及び1.3nMで含有する溶液
(30μQ/穴)。
5,0のo、iM酢酸塩緩衝剤溶液(rb溶液」)でな
る沈殿物用溶媒 −2,2’−アジノ−ジ−(3−エチル−ベンゾチアゾ
リン)−スルホネート(ABTS)及びHtOtを各々
最終濃度!、1u/xQ及び1.3nMで含有する溶液
(30μQ/穴)。
酵素反応を停止することなく、15分後及び30分後に
、各々の穴について405r++aにおける吸光度を測
定した。
、各々の穴について405r++aにおける吸光度を測
定した。
第2表及び第3表に、それぞれ反応時間15分及び30
分で得られた結果を示す。
分で得られた結果を示す。
実施例3
沈殿物用溶媒として「a溶液」及び酵素基質としてAB
TSを使用し、反応時間を30分として、上記実施例1
と同様に操作することによって分析法を行った。
TSを使用し、反応時間を30分として、上記実施例1
と同様に操作することによって分析法を行った。
第4表に得られた結果を示す。
実施例4
へBTS基質、反応時間30分及び各種界面活性剤(D
)を各種濃度で含有するPBS/ D緩衝剤溶液を使用
し、陽性の血清(KX)のサンプルについて、上記実施
例 12に記載の如(して操作を行った。
)を各種濃度で含有するPBS/ D緩衝剤溶液を使用
し、陽性の血清(KX)のサンプルについて、上記実施
例 12に記載の如(して操作を行った。
結果を第5表に示す。なお、吸光度は、サンプル0.5
μQを使用し、405nmで測定したものである。
μQを使用し、405nmで測定したものである。
第 5 表
ABTSを使用して30分間処理した
後の405nslこおける吸光度
1界面活性剤(D) P二E P−E+
P 人(spec、) 阻害率(2)′Tween
20(Q、05%) 0.989 0.590
0.399 40Tween 2G(0,
2%) 0.917 0.504
0.413 45Triton
X−100(0,05%) 0.758 G、3
35 0.423 56TriLon X−1
00(0,01%) 0.838 0.340 0
.498 59Triton X−100(0,
2%) 0.759 0.406 0.353
46サボニン(0,05%) 0.741
G、310 0.431 58Na−L
Sar C,(0,05%) 0.630 0.2
84 0.346 55Na−C(0,086
%) 0.876 0.438 0.43
8 5ONa−DOC(0,086%)1.00
5 0.578 0.429 43Trito
n X−200(0,05%)’ 0.686 0.
206 0.480 7ONa−L Sar
C,(0,05%)実施例5 工程e)において沈殿物を溶解させるために各種のpH
値及びPEG−aoooii度の緩衝剤溶液を使用し、
陽性の血清KXについて上記実施例2と同様に操作して
テストを行った。
1界面活性剤(D) P二E P−E+
P 人(spec、) 阻害率(2)′Tween
20(Q、05%) 0.989 0.590
0.399 40Tween 2G(0,
2%) 0.917 0.504
0.413 45Triton
X−100(0,05%) 0.758 G、3
35 0.423 56TriLon X−1
00(0,01%) 0.838 0.340 0
.498 59Triton X−100(0,
2%) 0.759 0.406 0.353
46サボニン(0,05%) 0.741
G、310 0.431 58Na−L
Sar C,(0,05%) 0.630 0.2
84 0.346 55Na−C(0,086
%) 0.876 0.438 0.43
8 5ONa−DOC(0,086%)1.00
5 0.578 0.429 43Trito
n X−200(0,05%)’ 0.686 0.
206 0.480 7ONa−L Sar
C,(0,05%)実施例5 工程e)において沈殿物を溶解させるために各種のpH
値及びPEG−aoooii度の緩衝剤溶液を使用し、
陽性の血清KXについて上記実施例2と同様に操作して
テストを行った。
結果を第6表に示す。
第 6 表
ABTSを使用して20分間処理した
後の4051−における吸光度
pHPEG−6000($) P 二E P−E
+P A(spec、) 阻害率(%)4.5
3 0.506 0.1811 0.326
644.5 4 0.416 G
、155 0.261 634.5 5
0.320 Q、140 0.180
565.0 3 0.492 0.192
0.300 615.0 4 0
.362 0.116 0.246 685.
0 5 0.246 0.063 0.1
83 745.5 3 0.318
0.103 0.215 675.5 4
0.198 0.044 0.154
775.5 5 0.131 0.021
0.110 84比較例 a)ELISAテスト このテストでは、実施例1に示したものと同じサンプル
各0.5μQ及び下記の如く処理した滴板2個を使用し
た。
+P A(spec、) 阻害率(%)4.5
3 0.506 0.1811 0.326
644.5 4 0.416 G
、155 0.261 634.5 5
0.320 Q、140 0.180
565.0 3 0.492 0.192
0.300 615.0 4 0
.362 0.116 0.246 685.
0 5 0.246 0.063 0.1
83 745.5 3 0.318
0.103 0.215 675.5 4
0.198 0.044 0.154
775.5 5 0.131 0.021
0.110 84比較例 a)ELISAテスト このテストでは、実施例1に示したものと同じサンプル
各0.5μQ及び下記の如く処理した滴板2個を使用し
た。
一合成抗原(NANP)0.1μ9/穴を充填し、つい
でBSA(ウシ血清アルブミン)(3%)−PBSを充
填した滴数 −BSAのみ充填した滴数 これら両滴数の各々の穴に、抗ヒト抗体−アルカリホス
ファターゼ結合体(Ab” −PAXサンプル中に存在
しうる抗スポロゾイト抗体(Ab)によりP−Ab−A
b” −P^複合体を生成する)を添加した。
でBSA(ウシ血清アルブミン)(3%)−PBSを充
填した滴数 −BSAのみ充填した滴数 これら両滴数の各々の穴に、抗ヒト抗体−アルカリホス
ファターゼ結合体(Ab” −PAXサンプル中に存在
しうる抗スポロゾイト抗体(Ab)によりP−Ab−A
b” −P^複合体を生成する)を添加した。
常法に従って操作し、p−ニトロフェニルホスフェート
(p−NPP)基質を使用することによって検出を行っ
た。
(p−NPP)基質を使用することによって検出を行っ
た。
30分後、3M NaOH25μaを添加することによ
って酵素反応を停止させた。
って酵素反応を停止させた。
吸光度を405nmで測定した。
固有値rA(spec、)Jは次式によって与えられる
。
。
固有値[A(spec、 )]
=吸光度((HANP)4゜を添加した滴数)−吸光度
(BSAを添加した滴数) 結果を第7表に示す。
(BSAを添加した滴数) 結果を第7表に示す。
b)P−E/セファロース−^−プロティン英国特許出
願第8729975号に開示された方法は、合成抗原−
酵素結合体(P−E)(血液サンプル中に存在する抗ス
ポロゾイト抗体により、Aプロティンに結合する安定な
抗体−合成抗原−酵素複合体(^b−P−E)を生成す
る)を使用して行うことを特徴とする。
願第8729975号に開示された方法は、合成抗原−
酵素結合体(P−E)(血液サンプル中に存在する抗ス
ポロゾイト抗体により、Aプロティンに結合する安定な
抗体−合成抗原−酵素複合体(^b−P−E)を生成す
る)を使用して行うことを特徴とする。
実際には、PBS/Triton X −1000,0
5%緩衝剤溶液を使用し、上記実施例1に記載の如くし
て被検サンプルを調製した。反応20分後、サンプルを
同じ緩衝剤溶液で平衡化したセファロース−Aプロティ
ン樹脂(Pharmacia −Uppsala)を収
容する(市販の凍結乾燥生成物2119/穴)を収容し
た濾過板(Millipore)の穴に移した。
5%緩衝剤溶液を使用し、上記実施例1に記載の如くし
て被検サンプルを調製した。反応20分後、サンプルを
同じ緩衝剤溶液で平衡化したセファロース−Aプロティ
ン樹脂(Pharmacia −Uppsala)を収
容する(市販の凍結乾燥生成物2119/穴)を収容し
た濾過板(Millipore)の穴に移した。
板を室温で30分間インキュベートし、ついで、同じ平
衡化緩衝剤溶液で4回洗浄した。
衡化緩衝剤溶液で4回洗浄した。
各々の穴に、ABTS基質及びH2O,を各々最終濃度
1.1J19/1172及び1.:(aMテ含有すルp
H5,0(7)0.1M酢酸30分後、各々の穴に関し
て反応混合物の色を観察することによってサンプルの「
陽性」又は「陰性」を判定した。
1.1J19/1172及び1.:(aMテ含有すルp
H5,0(7)0.1M酢酸30分後、各々の穴に関し
て反応混合物の色を観察することによってサンプルの「
陽性」又は「陰性」を判定した。
陽性の血清(マラリアに罹患した血清)及びMab含有
血清は、反応混合物血清十P−Hに係る穴において緑−
青色を呈し、血清十P−E+ P混合物を収容する穴に
おいては無色又はわずかに着色していた。陰性の血清は
、同様に、前記2つの反応に係る穴において無色又はわ
ずかに着色しているのみであった。
血清は、反応混合物血清十P−Hに係る穴において緑−
青色を呈し、血清十P−E+ P混合物を収容する穴に
おいては無色又はわずかに着色していた。陰性の血清は
、同様に、前記2つの反応に係る穴において無色又はわ
ずかに着色しているのみであった。
、第8表に、血清16検体を、本発明によるP−E/P
EG法(1)、ELISA法(2)、及びP、E/5−
PA法(3)によって処理して得られた値を、固有A[
A(spec、)]の値、陽性(+)及び陰性(=)の
判定結果と共に表示する。
EG法(1)、ELISA法(2)、及びP、E/5−
PA法(3)によって処理して得られた値を、固有A[
A(spec、)]の値、陽性(+)及び陰性(=)の
判定結果と共に表示する。
第8表に報告したテスト結果の比較から、下記の事実が
観察される。
観察される。
l テストした未知の血清16検体のうちの1検体、す
なわち血清No、632についてのみ、ELISAテス
トでは陰性と判定し、他の2種類の方法では陽性とする
矛盾がある。
なわち血清No、632についてのみ、ELISAテス
トでは陰性と判定し、他の2種類の方法では陽性とする
矛盾がある。
2 陽性の血清の場合、P−E/PEG法は、ABTS
及びTMB基質のいずれによってもELISA法よりも
高いA(spec、)の値を示し、従って、血清No、
632の陽性を検知しうる。
及びTMB基質のいずれによってもELISA法よりも
高いA(spec、)の値を示し、従って、血清No、
632の陽性を検知しうる。
3、血清No、570.620及びKXに関してELI
SA法ではA(spec、)の値が低いため、カット−
オフ値として0.150を採用しなければならず、これ
により、これら3種類の血清を[不明(ボーダーライン
)」と判定しているが、他の2種類の方法では、これら
を(ほか1名)
SA法ではA(spec、)の値が低いため、カット−
オフ値として0.150を採用しなければならず、これ
により、これら3種類の血清を[不明(ボーダーライン
)」と判定しているが、他の2種類の方法では、これら
を(ほか1名)
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 血液サンプル中の抗熱帯マラリア原虫スポロゾイト
抗体を均一相で免疫−酵素的に測定する方法において、 a)ヒト血液の同一サンプルの一定量2個を、別個にp
H6.5ないし8.00のリン酸塩緩衝液剤溶液中、濃
度0.05%(重量/容量又は容量/容量)(W/V又
はV/V)以上の非イオン系及び/又は弱陰イオン系界
面活性剤の存在下、温度15ないし35℃で合成抗原−
酵素結合体(P−E)(ここで、合成抗原は被検サンプ
ル中に存在しうる抗熱帯マラリア原虫スポロゾイト抗体
と反応しうるものであり、酵素は呈色反応において触媒
作用を発揮するものである)と反応させ(ただし、該サ
ンプルの一定量2個の一方に、予め、抗スポロゾイト抗
体−合成抗原−酵素複合体(Ab−P−E)の生成を完
全に阻害する濃度の未酵素ラベル化合成抗原(P)と混
合しておく)、 b)上記工程a)で処理したサンプルに、抗スポロゾイ
ト抗体−合成抗原−酵素複合体を定量的に沈殿させうる
不活性物質を最終濃度13ないし17%(W/V)で添
加し、 c)上記工程b)で得られた反応混合物から、ろ過又は
遠沈により沈殿物を分離し、 d)該沈殿物を、前記不活性物質を最終濃度13ないし
17%(W/V)で添加した緩衝剤溶液で繰返し洗浄し
、 e)得られた沈殿物を、非イオン系及び/又は弱陰イオ
ン系の界面活性剤を最終濃度0.05%(W/V又はV
/V)以上で含有するpH4.0ないし5.5の緩衝剤
溶液中に、最終濃度3ないし5%(W/V)の不活性沈
殿化物質の存在下又は不存在下で溶解させ、 f)得られた溶液に、過酸化水素及び被検サンプルが陽
性である際に着色生成物を生成する無色の酵素基質を添
加し、最後に、分光測光によって色の強さを測定する、 ことを特徴とする、抗熱帯マラリア原虫スポロゾイト抗
体の検出法。 2 請求項1記載の方法において、前記工程a)におけ
るヒト血液の被検サンプルが、全血、血清又は血漿であ
る、抗熱帯マラリア原虫スポロゾイト抗体の検出法。 3 請求項1記載の方法において、前記合成抗原が、ア
ミノ酸配列 (Asn−Ala−Asn−Pro)n (ここで、Asn=アスパラギン、Ala=アラニン及
びPro=プロリンであり、nは3ないし40である)
で定義されるものである、抗熱帯マラリア原虫スポロゾ
イト抗体の検出法。 4 請求項1記載の方法において、前記工程a)におけ
る酵素がペルオキシダーゼ、酸ホスファターゼ、アルカ
リホスファターゼ、α−ガラクトシダーゼ又はβ−ガラ
クトシダーゼである、抗熱帯マラリア原虫スポロゾイト
抗体の検出法。 5 請求項1記載の方法において、前記工程a)におけ
る非イオン系界面活性剤がTween−20、Trit
onX−100、又はサポニンであり、弱陰イオン系界
面活性剤がコール酸ナトリウム、デオキシコール酸ナト
リウム又はナトリウムラウロイル−サルコシネートであ
る、抗熱帯マラリア原虫スポロゾイト抗体の検出法。 6 請求項1記載の方法において、前記工程b)におけ
る不活性物質が硫酸アンモニウム又は分子量4000以
上のポリエチレングリコールである、抗熱帯マラリア原
虫スポロゾイト抗体の検出法。 7 請求項6記載の方法において、ポリエチレングリコ
ールが分子量6000のものである、抗熱帯マラリア原
虫スポロゾイト抗体の検出法。 8 請求項1記載の方法において、前記工程b)におけ
る操作を、温度15ないし35℃、対応する操作時間3
0分ないし1.5時間で行う、抗熱帯マラリア原虫スポ
ロゾイト抗体の検出法。 9 請求項8記載の方法において、温度が20ないし3
0℃の範囲内であり、反応時間が60分又は約60分で
ある、抗熱帯マラリア原虫スポロゾイト抗体の検出法。 10 請求項1記載の方法において、前記工程e)にお
ける緩衝剤溶液がpH5.0であり、前記不活性物質が
濃度4%(W/V)で存在する、抗熱帯マラリア原虫ス
ポロゾイト抗体の検出法。 11 請求項1記載の方法において、前記酵素がペルオ
キシダーゼであり、前記工程f)における基質が2,2
−アジノ−ジ−(3−エチル−ベンゾチアゾリンスルホ
ネート)(ABTS)又は3,3′,5,5′−テトラ
メチル−ベンジジン(TMB)である、抗熱帯マラリア
原虫スポロゾイト抗体の検出法。 12 請求項1記載の方法を実施するに必要な反応体を
含有してなる、ヒト血液サンプル中の抗熱帯マラリア原
虫スポロゾイト抗体を検出するための診断用キット。
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