JPH01181798A - 胆汁酸測定用試験紙 - Google Patents
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Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Measuring And Recording Apparatus For Diagnosis (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は体液中の胆汁酸の量を測定する試験紙に関する
。
。
(従来の技術)
胆汁に含有される胆汁酸は血液、尿などの体液中にも微
量含有される。このような体液中の胆汁酸は肝胆道系疾
患によりその量が変化し、特に血液中の胆汁酸量はこの
ような疾患の鋭敏なマーカーとなることが知られている
。例えば、乳児の胆道閉塞症においては血液中もしくは
尿中の胆汁酸量が増加することが知られている。
量含有される。このような体液中の胆汁酸は肝胆道系疾
患によりその量が変化し、特に血液中の胆汁酸量はこの
ような疾患の鋭敏なマーカーとなることが知られている
。例えば、乳児の胆道閉塞症においては血液中もしくは
尿中の胆汁酸量が増加することが知られている。
胆道閉塞症は乳児約1万人あたり1人という高率で発生
しており、患者は迅速な手術が必要とされる。疾病の認
知が遅れた場合には死亡率も高い。このような疾患を早
期発見するためにも体液中、特に、血液中の胆汁酸を集
団検診時などに精度良く測定することが望まれる。
しており、患者は迅速な手術が必要とされる。疾病の認
知が遅れた場合には死亡率も高い。このような疾患を早
期発見するためにも体液中、特に、血液中の胆汁酸を集
団検診時などに精度良く測定することが望まれる。
胆汁酸を含有する試料溶液中の胆汁酸量を測定する方法
は、例えば、特公昭59−13197号、特開昭56−
144096号勿よび特開昭56−151499号公報
に開示されている。
は、例えば、特公昭59−13197号、特開昭56−
144096号勿よび特開昭56−151499号公報
に開示されている。
それによれば、まず、胆汁酸を含む試料を酸性下で熱処
理しく特公昭59−13197号公報)、あるいは、オ
キサミド酸、ピルビン酸などを添加して(特開昭56−
144096号公報、特開昭56−151499号公報
)乳酸脱水素酵素(LDH)などの、測定を妨害する酵
素を失活させる。次いで、これに3α−ヒドロキシステ
ロイドデヒドロゲナーゼ(3α−H5D)、ニコチンア
ミドアデニンジヌクレオチド(NAD+)、ジアホラー
ゼおよびテトラゾリウム塩を含有する反応用溶液をPH
8〜9のアルカリ条件下で反応させる。胆汁酸の水酸基
は3α−H5Dの存在下でNAD+と反応してカルボニ
ル基となり次のようにケト型の胆汁酸を生じる。
理しく特公昭59−13197号公報)、あるいは、オ
キサミド酸、ピルビン酸などを添加して(特開昭56−
144096号公報、特開昭56−151499号公報
)乳酸脱水素酵素(LDH)などの、測定を妨害する酵
素を失活させる。次いで、これに3α−ヒドロキシステ
ロイドデヒドロゲナーゼ(3α−H5D)、ニコチンア
ミドアデニンジヌクレオチド(NAD+)、ジアホラー
ゼおよびテトラゾリウム塩を含有する反応用溶液をPH
8〜9のアルカリ条件下で反応させる。胆汁酸の水酸基
は3α−H5Dの存在下でNAD+と反応してカルボニ
ル基となり次のようにケト型の胆汁酸を生じる。
NADHはジアホラーゼの存在下で電子受容性の色原体
であるテトラゾリウム塩と反応して次のようにホルマザ
ンを生じる。NADHは再び酸化されてNAD+となる
。テトラゾリウム塩の代わりにレザズリンを用いてもよ
く、この場合はレゾルフィンが生成する。
であるテトラゾリウム塩と反応して次のようにホルマザ
ンを生じる。NADHは再び酸化されてNAD+となる
。テトラゾリウム塩の代わりにレザズリンを用いてもよ
く、この場合はレゾルフィンが生成する。
生じたホルマザン(レゾルフィン)のモル数はNADH
のモル数(つまり、胆汁酸のモル数)に相当する。その
ため、このホルマザンの吸光度(レゾルフィンの蛍光強
度)を測定することにより胆汁酸を定量することが可能
である。
のモル数(つまり、胆汁酸のモル数)に相当する。その
ため、このホルマザンの吸光度(レゾルフィンの蛍光強
度)を測定することにより胆汁酸を定量することが可能
である。
このような方法により試料中の胆汁酸を感度良(測定す
ることができるが、溶液系での反応を利用した測定法で
あるため煩雑な操作を必要とする。そのため、マススク
リーニングや簡便に胆汁酸を検出するためには不適当で
ある。
ることができるが、溶液系での反応を利用した測定法で
あるため煩雑な操作を必要とする。そのため、マススク
リーニングや簡便に胆汁酸を検出するためには不適当で
ある。
このような欠点を解決するため、特開昭61−2681
99号公報では、高分子素材からなる担体に3α−H5
D1NAD+、ジアホラーゼ$よびテトラゾリウム塩か
らなる試薬系組成物が担持された胆汁酸測定用試験紙が
開示された。
99号公報では、高分子素材からなる担体に3α−H5
D1NAD+、ジアホラーゼ$よびテトラゾリウム塩か
らなる試薬系組成物が担持された胆汁酸測定用試験紙が
開示された。
この試験紙と体液中の胆汁酸が接触すると、溶液法の場
合と同様に胆汁酸の水酸基が3α−H5Dの存在下でN
AD+と反応してカルボニル基となりケト型胆汁酸を生
じる。NADHはジアホラーゼの存在下でテトラゾリウ
ム塩と反応してホルマザンを生じる。NADHは再び酸
化されてNAD+となる。生じたホルマザンのモル数は
NADHのモル数即ち胆汁酸のモル数に相当する。その
ため、このホルマザンによる呈色を肉眼または光学機器
を用いて測定し胆汁酸の量を測定する。
合と同様に胆汁酸の水酸基が3α−H5Dの存在下でN
AD+と反応してカルボニル基となりケト型胆汁酸を生
じる。NADHはジアホラーゼの存在下でテトラゾリウ
ム塩と反応してホルマザンを生じる。NADHは再び酸
化されてNAD+となる。生じたホルマザンのモル数は
NADHのモル数即ち胆汁酸のモル数に相当する。その
ため、このホルマザンによる呈色を肉眼または光学機器
を用いて測定し胆汁酸の量を測定する。
この場合、体液中に胆汁酸以外に試験紙の試薬系組成物
と反応することができる成分が存在し、その結果測定を
不正確なものにすることがある。特に重症患者由来の体
液の場合に、真の胆汁酸値からのズレが大きくなる例が
多い。そのような悪影響を与える成分としては、乳酸と
乳酸脱水素酵素(LDH)、アルコールとアルコール脱
水素酵素、グルタミン酸とグルタミン酸デヒドロゲナー
ゼ、アルデヒド類とアルデヒド脱水素酵素および/また
はホルムアミドとホルムアミドデヒドロゲナーゼ等があ
る。
と反応することができる成分が存在し、その結果測定を
不正確なものにすることがある。特に重症患者由来の体
液の場合に、真の胆汁酸値からのズレが大きくなる例が
多い。そのような悪影響を与える成分としては、乳酸と
乳酸脱水素酵素(LDH)、アルコールとアルコール脱
水素酵素、グルタミン酸とグルタミン酸デヒドロゲナー
ゼ、アルデヒド類とアルデヒド脱水素酵素および/また
はホルムアミドとホルムアミドデヒドロゲナーゼ等があ
る。
例えば、乳酸と乳酸脱水素酵素(LDH)が存在すると
、試験紙の試薬系組成物中のNAD+と反応して、乳酸
はピルビン酸を生じ、伎成したNADHは、ジアホラー
ゼの存在下でテトラゾリウム塩をホルマザンとし該試験
紙を呈色せしめる。
、試験紙の試薬系組成物中のNAD+と反応して、乳酸
はピルビン酸を生じ、伎成したNADHは、ジアホラー
ゼの存在下でテトラゾリウム塩をホルマザンとし該試験
紙を呈色せしめる。
テトラゾリウム塩 ホルマザン
この例のよう杏ζ、胆汁酸を測定すべき体液中に乳酸と
乳酸脱水素酵素が存在する場合には、試験紙の呈色には
胆汁酸による呈色に乳酸が乳酸脱水素酵素によって脱水
素反応したことによる呈色が加わるため、真の胆汁酸量
を測定することができない。
乳酸脱水素酵素が存在する場合には、試験紙の呈色には
胆汁酸による呈色に乳酸が乳酸脱水素酵素によって脱水
素反応したことによる呈色が加わるため、真の胆汁酸量
を測定することができない。
このような欠点を除くため、特公昭59−13197号
公報では、検体である体液を酸性(p)fO,1〜6.
0)にし次いで熱処理(温度20〜45℃、時間1〜3
0分間)することにより、体液中の酵素を予め失活させ
てお(こと、特開昭61−268199号公報の明細書
中では、検体である体液に予めオキサミド酸、ピルビン
酸などを加えLDH反応などを阻害させることが提案さ
れている。
公報では、検体である体液を酸性(p)fO,1〜6.
0)にし次いで熱処理(温度20〜45℃、時間1〜3
0分間)することにより、体液中の酵素を予め失活させ
てお(こと、特開昭61−268199号公報の明細書
中では、検体である体液に予めオキサミド酸、ピルビン
酸などを加えLDH反応などを阻害させることが提案さ
れている。
しかしながら、このような処理は検査技師にとって煩雑
で面倒なことであり、余分な時間を要するという問題点
があった。
で面倒なことであり、余分な時間を要するという問題点
があった。
(発明が解決しようとする問題点)
本発明は上記従来の問題点を解決するものであり、その
目的は体液中の胆汁酸を共存生体成分の影響を受けるこ
となく、正確かつ簡便に測定できる試験紙を提供するこ
とにある。
目的は体液中の胆汁酸を共存生体成分の影響を受けるこ
となく、正確かつ簡便に測定できる試験紙を提供するこ
とにある。
(問題点を解決するための手段詔よび作用)高分子素材
からなる担体の同一個所にの3α−ヒドロキシステロイ
ドデヒドロゲナーゼ、ニコチンアミドアデニンジヌクレ
オチドもしくはニコチンアミドアデニンジヌクレオチド
7オスフエイト、ジアホラーゼおよびテトラゾリウム塩
からなる試薬系組成物と◎エチレンジアミン四酢酸(E
DTA)、エチレングリコールビス(β−アミノエチル
エーテル) N 、 N 、 N’、N’四酢酸(EG
TA)、EDTAないしはEGTAのアルカリ金属塩か
ら成る群の中から選ばれる一つ以上の添加剤Iとθオキ
サミド酸、ピルビン酸、蓚酸、8−クロロ−4ヒドロキ
シ−5メチルキノリン−3カルボン酸およびこれらの塩
から成る群の中から選ばれる一つ以上の添加剤■とが、
担持されたことを特徴とする胆汁酸測定用試験紙により
上記目的が達成される。
からなる担体の同一個所にの3α−ヒドロキシステロイ
ドデヒドロゲナーゼ、ニコチンアミドアデニンジヌクレ
オチドもしくはニコチンアミドアデニンジヌクレオチド
7オスフエイト、ジアホラーゼおよびテトラゾリウム塩
からなる試薬系組成物と◎エチレンジアミン四酢酸(E
DTA)、エチレングリコールビス(β−アミノエチル
エーテル) N 、 N 、 N’、N’四酢酸(EG
TA)、EDTAないしはEGTAのアルカリ金属塩か
ら成る群の中から選ばれる一つ以上の添加剤Iとθオキ
サミド酸、ピルビン酸、蓚酸、8−クロロ−4ヒドロキ
シ−5メチルキノリン−3カルボン酸およびこれらの塩
から成る群の中から選ばれる一つ以上の添加剤■とが、
担持されたことを特徴とする胆汁酸測定用試験紙により
上記目的が達成される。
更に好ましくは、高分子素材からなる担体の同一個所に
■3α−ヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼ、ニコ
チンアミドアデニンジヌクレオチドもしくはニコチンア
ミドアデニンジヌクレオチド7オスフエイト、ジアホラ
ーゼおよびテトラゾリウム塩からなる試薬系組成物と◎
エチレンジアミン四酢酸(EDTA)、エチレングリコ
ールビス(β−アミノエチルエーテル)N 、 N 、
N’、 N’四酢酸(EGTA)、EDTAないしは
EGTAのアルカリ金属塩から成る群の中から選ばれる
一つ以上の添加剤Iとθオキサミド酸、ピルビン酸、蓚
酸、8−クロロ−4ヒドロキシ−5メチルキノリン−3
カルボン酸およびこれらの塩から成る群の中から選ばれ
る一つ以上の添加剤■とが担持された部分Aと、部分A
に担持されたものから3α−ヒドロキシステロイドデヒ
ドロゲナーゼのみを欠く成分が担持された部分Bとの組
合せよりなることを特徴とする胆汁酸測定用試験紙によ
り上記目的が達成される。
■3α−ヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼ、ニコ
チンアミドアデニンジヌクレオチドもしくはニコチンア
ミドアデニンジヌクレオチド7オスフエイト、ジアホラ
ーゼおよびテトラゾリウム塩からなる試薬系組成物と◎
エチレンジアミン四酢酸(EDTA)、エチレングリコ
ールビス(β−アミノエチルエーテル)N 、 N 、
N’、 N’四酢酸(EGTA)、EDTAないしは
EGTAのアルカリ金属塩から成る群の中から選ばれる
一つ以上の添加剤Iとθオキサミド酸、ピルビン酸、蓚
酸、8−クロロ−4ヒドロキシ−5メチルキノリン−3
カルボン酸およびこれらの塩から成る群の中から選ばれ
る一つ以上の添加剤■とが担持された部分Aと、部分A
に担持されたものから3α−ヒドロキシステロイドデヒ
ドロゲナーゼのみを欠く成分が担持された部分Bとの組
合せよりなることを特徴とする胆汁酸測定用試験紙によ
り上記目的が達成される。
本発明の試験紙に用いられる担体は公知のすべての担体
が用いられつる。すなわち、それらは高分子素材からな
り、具体的には、天然もしくは合成繊維からなる抄紙や
不織布のほかメンブレンフィルターなどである。試料が
尿または血清である場合には、市販の濾紙など天然もし
くは合成繊維からなる抄紙や不織布が好適に用いられる
。試料が全血である場合には、合成繊維からなる抄紙や
不織布、メンブレンフィルターなどが好適に用いられる
。メンブレンフィルターとしては、穴径が0.1〜0,
4μmの酢酸セルロース系の膜が好ましい。合成紙とし
ては、例えば、種水化学工業M製のセルポア(親水性タ
イプ)が好適である。
が用いられつる。すなわち、それらは高分子素材からな
り、具体的には、天然もしくは合成繊維からなる抄紙や
不織布のほかメンブレンフィルターなどである。試料が
尿または血清である場合には、市販の濾紙など天然もし
くは合成繊維からなる抄紙や不織布が好適に用いられる
。試料が全血である場合には、合成繊維からなる抄紙や
不織布、メンブレンフィルターなどが好適に用いられる
。メンブレンフィルターとしては、穴径が0.1〜0,
4μmの酢酸セルロース系の膜が好ましい。合成紙とし
ては、例えば、種水化学工業M製のセルポア(親水性タ
イプ)が好適である。
本発明に使用される試薬系組成物は、胆汁酸を基質とす
る3α−H3DおよびNAD+、更にNAD+の反応生
成物であるNADHを基質とするジアホラーゼおよび発
色基質であるテトラゾリウム塩から構成される。
る3α−H3DおよびNAD+、更にNAD+の反応生
成物であるNADHを基質とするジアホラーゼおよび発
色基質であるテトラゾリウム塩から構成される。
上記試薬系組成物において、NAD+の代わりにニコチ
ンアミドアデニンジヌクレオチドフナスフエイト(NA
DP+)が用いられてもよい。NADP+もNAD+と
同様に補醪素として働き、還元されると還元型ニコチン
アミドアデニンジヌクレオチドフォスフエイト(NAD
PH)を生じ、NADPHもジアホラーゼの基質として
働く。
ンアミドアデニンジヌクレオチドフナスフエイト(NA
DP+)が用いられてもよい。NADP+もNAD+と
同様に補醪素として働き、還元されると還元型ニコチン
アミドアデニンジヌクレオチドフォスフエイト(NAD
PH)を生じ、NADPHもジアホラーゼの基質として
働く。
以下の説明において、NAD+はNADP+であっても
よ<NADHはNADPHであってもよいものとする。
よ<NADHはNADPHであってもよいものとする。
これらの試薬系組成物のうち、NAD+、ジアホラーゼ
および発色基質は、3α−H5Dの働きで体液中の胆汁
酸と反応して試験紙を呈色せしめるばかりでなく、体液
中に含まれる乳酸脱水素酵素などの酸化還元系の酵素と
その基質(例えば乳酸)と反応して試験紙を呈色せしめ
る。
および発色基質は、3α−H5Dの働きで体液中の胆汁
酸と反応して試験紙を呈色せしめるばかりでなく、体液
中に含まれる乳酸脱水素酵素などの酸化還元系の酵素と
その基質(例えば乳酸)と反応して試験紙を呈色せしめ
る。
そこで本発明者らは、該試験紙の同一個所に前記試薬系
組成物と共に、エチレンジアミン四酢酸(EDTA)、
エチレングリコールビス(β−アミノエチルエーテル)
N、N、N’ 、N’ 四酢酸(EGTA)、ED
TAないしはEGTAのアルカリ金属塩から成る群の中
から選ばれる一つ以上の添加mIと、オキサミド酸、ピ
ルビン酸、蓚酸、S−クロロ−4ヒドロキシ−5メチル
キノリン−3カルボン酸セよびこれらの塩から成る群の
中から選ばれる一つ以上の添加剤■とが担持された試験
紙を調製し、体液中の胆汁酸を測定したところ、共存生
体成分の影響を殆どうけることなく、胆汁酸量を正確に
測定できることが分かり、本発明を完成した。
組成物と共に、エチレンジアミン四酢酸(EDTA)、
エチレングリコールビス(β−アミノエチルエーテル)
N、N、N’ 、N’ 四酢酸(EGTA)、ED
TAないしはEGTAのアルカリ金属塩から成る群の中
から選ばれる一つ以上の添加mIと、オキサミド酸、ピ
ルビン酸、蓚酸、S−クロロ−4ヒドロキシ−5メチル
キノリン−3カルボン酸セよびこれらの塩から成る群の
中から選ばれる一つ以上の添加剤■とが担持された試験
紙を調製し、体液中の胆汁酸を測定したところ、共存生
体成分の影響を殆どうけることなく、胆汁酸量を正確に
測定できることが分かり、本発明を完成した。
添加剤の使用量は、添加剤Iは担体100mあたり1〜
10.000■、添加剤■は担体1゜Odあたり0.1
〜500Mgの範囲で充分にその効果を発揮できる。
10.000■、添加剤■は担体1゜Odあたり0.1
〜500Mgの範囲で充分にその効果を発揮できる。
添加剤工の担体への担持に際しては、EDTAJ3よび
EGTAはPHが7以下の時、水に溶解しにくいので、
これらのアルカリ金属塩、例えば、EDTAモノナトリ
ウム、EDTAジナトリウム、EGTAジカリウム塩等
の形で添加する方が水に溶解し易く、使用しゃすい。
EGTAはPHが7以下の時、水に溶解しにくいので、
これらのアルカリ金属塩、例えば、EDTAモノナトリ
ウム、EDTAジナトリウム、EGTAジカリウム塩等
の形で添加する方が水に溶解し易く、使用しゃすい。
また添加剤を担体へ担持するに際しては、■試薬系組成
物の二部を含浸させる時と同時に行う方法@該試薬系組
成物の全部を含浸させる時と同時に行う方法θ該試薬系
組成物を含浸させる時とは別に、添加剤の溶液だけを含
浸させる方法などがあり、また添加剤Iと添加剤■とを
、同時にあるいは別々に含浸させる方法が考えられるが
、いずれの方法も使用可能である。しかし、テトラゾリ
ウム塩を含まない試薬系組成物を溶解した水溶液中に添
加剤Iおよび添加剤■も同時に溶解しておくことにより
、これらを同時に含浸させる方法が、工程数が増えない
ので好ましい。
物の二部を含浸させる時と同時に行う方法@該試薬系組
成物の全部を含浸させる時と同時に行う方法θ該試薬系
組成物を含浸させる時とは別に、添加剤の溶液だけを含
浸させる方法などがあり、また添加剤Iと添加剤■とを
、同時にあるいは別々に含浸させる方法が考えられるが
、いずれの方法も使用可能である。しかし、テトラゾリ
ウム塩を含まない試薬系組成物を溶解した水溶液中に添
加剤Iおよび添加剤■も同時に溶解しておくことにより
、これらを同時に含浸させる方法が、工程数が増えない
ので好ましい。
次に試験紙の調製方法および使用方法について詳しく説
明する。
明する。
NAD+、3α−H3D、ジアホラーゼ、添加剤工およ
び添加剤■を蒸溜水に溶解した水溶液を調製する。これ
を前記のような担体に含浸させた後、凍結乾燥を行う。
び添加剤■を蒸溜水に溶解した水溶液を調製する。これ
を前記のような担体に含浸させた後、凍結乾燥を行う。
ここで用いられる酵素の由来は特に限定されないが、耐
有機溶剤性、経時安定性などに優れた酵素が好ましい。
有機溶剤性、経時安定性などに優れた酵素が好ましい。
このような酵素として、3α−H5Dとしてはシュード
モナステストステローニ(Pseudomonaste
stosteroni )由来のものが、そしてジアホ
ラーゼとしてはバチルスステアロサーモフィルス(Ba
ci 11us stearothermophil
us )由来のものが好適に用いられる。3α−H5D
およびジアホラーゼは担体100cllあたりそれぞれ
0.1〜l00001Uの割合で、NADPは0.1〜
100Mgの割合で担持される。過少であると胆汁酸に
よる発色が充分にあこらず、過剰であるとその分解生成
物により酵素反応が阻害される。
モナステストステローニ(Pseudomonaste
stosteroni )由来のものが、そしてジアホ
ラーゼとしてはバチルスステアロサーモフィルス(Ba
ci 11us stearothermophil
us )由来のものが好適に用いられる。3α−H5D
およびジアホラーゼは担体100cllあたりそれぞれ
0.1〜l00001Uの割合で、NADPは0.1〜
100Mgの割合で担持される。過少であると胆汁酸に
よる発色が充分にあこらず、過剰であるとその分解生成
物により酵素反応が阻害される。
上記水溶液中に酵素や補酵素の活性化剤や安定化剤が含
有されていてもよい。酵素活性化剤としては、例えばト
リトンX−100(商品名)などの界面活性剤が好適に
用いられる。そして酵素安定化剤としては、例えばウシ
血清アルブミン(BSA)などの蛋白質が好適に用いら
れる。上記界面活性剤や蛋白質が添加されていると、N
ADPや酵素(3α−1(SDおよびジアホラーゼ)が
これら化合物に包含される。
有されていてもよい。酵素活性化剤としては、例えばト
リトンX−100(商品名)などの界面活性剤が好適に
用いられる。そして酵素安定化剤としては、例えばウシ
血清アルブミン(BSA)などの蛋白質が好適に用いら
れる。上記界面活性剤や蛋白質が添加されていると、N
ADPや酵素(3α−1(SDおよびジアホラーゼ)が
これら化合物に包含される。
このような界面活性剤や蛋白質は、後述のテトラゾリウ
ム塩を担持させる工程で使用される非水溶媒に溶解しな
いため、非水溶液中の色原体であるテトラゾリウム塩と
上記酵素や補酵素が直接接触するのが避けられる。その
結果、保存中における下地の発色が抑制される。
ム塩を担持させる工程で使用される非水溶媒に溶解しな
いため、非水溶液中の色原体であるテトラゾリウム塩と
上記酵素や補酵素が直接接触するのが避けられる。その
結果、保存中における下地の発色が抑制される。
さらに、増粘剤が含有されていてもよい。増粘剤により
、いわゆる窓枠現象が抑制される。
、いわゆる窓枠現象が抑制される。
窓枠現象とは、例えば、上記水溶液を担体に含浸させて
乾燥させるときに水溶液中の溶質が担体周辺部に移動し
て濃縮されたり、得られた試験紙に検体溶液を滴下した
ときに試験紙に含有されているNADP、3α−H8D
などの試薬が試験紙周辺部に移行して濃縮される現象を
いう。
乾燥させるときに水溶液中の溶質が担体周辺部に移動し
て濃縮されたり、得られた試験紙に検体溶液を滴下した
ときに試験紙に含有されているNADP、3α−H8D
などの試薬が試験紙周辺部に移行して濃縮される現象を
いう。
このような窓枠現象が起こると胆汁酸の測定が正確にな
されない。上記増粘剤としては、メチルセルロース、ポ
リエチレングリコール(PEG)などが挙げられる。増
粘剤が含まれると担体(試験紙)に含浸された液相の粘
度が増大するため溶質の移動が抑制され、その結果、窓
枠現象が抑制される。上記酵素活性化剤、酵素安定化剤
、増粘剤などはそれぞれ担体Zoo−あたり200y以
下、好ましくは1〜100wgの割合で担持される。
されない。上記増粘剤としては、メチルセルロース、ポ
リエチレングリコール(PEG)などが挙げられる。増
粘剤が含まれると担体(試験紙)に含浸された液相の粘
度が増大するため溶質の移動が抑制され、その結果、窓
枠現象が抑制される。上記酵素活性化剤、酵素安定化剤
、増粘剤などはそれぞれ担体Zoo−あたり200y以
下、好ましくは1〜100wgの割合で担持される。
このように酵素などを含む水溶液が含浸された担体の凍
結乾燥工程では、充分に水分を除去することが重要であ
る。担体に水分が残留していると次工程で担持されるテ
トラゾリウム塩の安定性が極端に低下する。
結乾燥工程では、充分に水分を除去することが重要であ
る。担体に水分が残留していると次工程で担持されるテ
トラゾリウム塩の安定性が極端に低下する。
次に、上記凍結乾燥後の担体にテトラゾリウム塩を非水
溶媒に溶解させた溶液を含浸させる。
溶媒に溶解させた溶液を含浸させる。
テトラゾリウム塩としては、ニトロテトラゾリウムブル
ー(NTB)もしくはニトロブルーテトラゾリウム(N
BT)と呼ばれる3・3′−(3・3′−ジメトキシ−
4・4′−ビフェニレン)−ビス[2−(p−二トロフ
ェニル)−5−フェニル−2H−テトラゾリウムクロラ
イド]が好適に用いられる。
ー(NTB)もしくはニトロブルーテトラゾリウム(N
BT)と呼ばれる3・3′−(3・3′−ジメトキシ−
4・4′−ビフェニレン)−ビス[2−(p−二トロフ
ェニル)−5−フェニル−2H−テトラゾリウムクロラ
イド]が好適に用いられる。
非水溶媒は、テトラゾリウム塩を溶解させることが可能
であればよく、メタノール、エタノールなどのアルコー
ル類;酢酸エチルなどが用いられる。
であればよく、メタノール、エタノールなどのアルコー
ル類;酢酸エチルなどが用いられる。
テトラゾリウム塩は担体100dあたり0.1〜500
wgの割合で担持される。過少であると胆汁酸による発
色が充分に詔こらず、過剰であると溶媒に溶けにくくな
り、また下地の色が濃くなるので色調の変色の判別が難
しくなる。テトラゾリウム塩溶液を含浸させた担体は速
やかに、好ましくは凍結乾燥により、乾燥される。
wgの割合で担持される。過少であると胆汁酸による発
色が充分に詔こらず、過剰であると溶媒に溶けにくくな
り、また下地の色が濃くなるので色調の変色の判別が難
しくなる。テトラゾリウム塩溶液を含浸させた担体は速
やかに、好ましくは凍結乾燥により、乾燥される。
このようにして得られた試験紙を、適当な大きさの細片
に裁断しプラスチックフィルム製のスティックの端に貼
着させて試験紙が作製される。
に裁断しプラスチックフィルム製のスティックの端に貼
着させて試験紙が作製される。
この試験紙を用いて体液などの検体中の胆汁酸の測定が
行われる。
行われる。
試験紙に検体を滴下させると、従来の技術の項で述べた
反応機構による反応が生じ、ホルマザンが生成し試験紙
が呈色される。この反応は、通常1〜300秒で起る。
反応機構による反応が生じ、ホルマザンが生成し試験紙
が呈色される。この反応は、通常1〜300秒で起る。
検体中の胆汁酸濃度は次の手順で測定される。
■ 適当な反射光測定装置を使用して、検体が滴下され
た試験紙部分に一定波長の光を照射しその反射光強度を
求める。
た試験紙部分に一定波長の光を照射しその反射光強度を
求める。
◎ 検体滴下からの経過時間を変えて(例えば、検体滴
下から10秒後と120秒後)この測定を2回行う。
下から10秒後と120秒後)この測定を2回行う。
反射光強度は反応が進み呈色が進むと減少する。
θ 2回の測定値の差、すなわち、この経過時間内の反
射光強度の減少度を求める。
射光強度の減少度を求める。
■ この反射光強度の差を、予め濃度既知の標準胆汁酸
溶液を検体として作成された、反射光強度の差と胆汁酸
濃度との関係を示す検量線と比較することにより、検体
中の胆汁酸濃度を決定する。
溶液を検体として作成された、反射光強度の差と胆汁酸
濃度との関係を示す検量線と比較することにより、検体
中の胆汁酸濃度を決定する。
本発明によると、従来の胆汁酸測定試験紙の試薬系組成
物に、添加剤I右よび添加剤■を加えたところ、胆汁酸
の測定には何ら影響を与えることなく、胆汁酸以外によ
って呈色する反応をほぼ完全に抑制することができた。
物に、添加剤I右よび添加剤■を加えたところ、胆汁酸
の測定には何ら影響を与えることなく、胆汁酸以外によ
って呈色する反応をほぼ完全に抑制することができた。
この作用について次に考察する。
胆汁酸以外でこの試験紙の呈色を起こす原因物質は、■
前述のLDI’iやアルコール脱水素酵素(AD1’!
)などの各種の酵素とその基質、@発色基質(テトラ
ゾリウム塩)(対する還元物質(例えばアスコルビン酸
)、などが考えられる。
前述のLDI’iやアルコール脱水素酵素(AD1’!
)などの各種の酵素とその基質、@発色基質(テトラ
ゾリウム塩)(対する還元物質(例えばアスコルビン酸
)、などが考えられる。
そして、これらの呈色原因物質の反応には、以下に示す
ように金属が微妙に関与している。
ように金属が微妙に関与している。
すなわち、■に関しては、これらの酵素類は二価の金属
イオンを含有し、これらの金属イオンの存在で酵素活性
を発現する場合が多い。例えば、アルコール脱水素酵素
やアルカリホスフデターゼは亜鉛、アミラーゼはカルシ
ウム、エノラーゼはマグネシウムをその活性発現に必要
とする。
イオンを含有し、これらの金属イオンの存在で酵素活性
を発現する場合が多い。例えば、アルコール脱水素酵素
やアルカリホスフデターゼは亜鉛、アミラーゼはカルシ
ウム、エノラーゼはマグネシウムをその活性発現に必要
とする。
@に関しては、例えば、アスコルビン酸の還元作用の発
現には、金属の酸化作用が関与していると考えられてい
る。
現には、金属の酸化作用が関与していると考えられてい
る。
一方、添加剤Iに含まれるEDTA%EGTAまたはこ
れらのアルカリ金属塩は、アルカリ土類金属、希土類、
遷移金属ときわめて安定な水溶性の錯塩を形成して、金
属を捕捉する。また、微量の金属またはイオンを錯イオ
ンにすることにより、その触媒としての作用を妨げる性
質がある(下記に示すアスコルビン酸が酸化されること
の抑制は、この性質による)。
れらのアルカリ金属塩は、アルカリ土類金属、希土類、
遷移金属ときわめて安定な水溶性の錯塩を形成して、金
属を捕捉する。また、微量の金属またはイオンを錯イオ
ンにすることにより、その触媒としての作用を妨げる性
質がある(下記に示すアスコルビン酸が酸化されること
の抑制は、この性質による)。
そこで、EDTA、gGTAまたはこれらのアルカリ金
属塩が試験紙に添加されると、EDTAなどの金属イオ
ン捕捉作用によって、LDH,ADI(などの脱水素酵
素、その他この試薬系に影響を与える体液中の諸要素類
の酵素活性の抑制、および体液中のアスコルビン酸など
の還元性を有する物質が酸化されなくなるため、アスコ
ルビン酸などによる発色基質の還元反応の抑制などが起
こると推定される。尚、この時、3α−H8Dおよびジ
アホラーゼの活性発現には、金属イオンは関係していな
いように思われる。従って、添加剤■により胆汁酸の測
定に影響を与えることな(、胆汁酸以外の物質による呈
色反応が抑制できたものと考えられる。
属塩が試験紙に添加されると、EDTAなどの金属イオ
ン捕捉作用によって、LDH,ADI(などの脱水素酵
素、その他この試薬系に影響を与える体液中の諸要素類
の酵素活性の抑制、および体液中のアスコルビン酸など
の還元性を有する物質が酸化されなくなるため、アスコ
ルビン酸などによる発色基質の還元反応の抑制などが起
こると推定される。尚、この時、3α−H8Dおよびジ
アホラーゼの活性発現には、金属イオンは関係していな
いように思われる。従って、添加剤■により胆汁酸の測
定に影響を与えることな(、胆汁酸以外の物質による呈
色反応が抑制できたものと考えられる。
また、添加剤■のオキサミド酸、ピルビン酸、蓚酸、s
−クロロ−4ヒドロキシ−5メチルキノリン−3カルボ
ン酸およびこれらの塩は、いずれもLDi(の阻害作用
を有する。従って、これらを使用すると、LDHを触媒
とする体液中の乳酸の反応が抑制される。
−クロロ−4ヒドロキシ−5メチルキノリン−3カルボ
ン酸およびこれらの塩は、いずれもLDi(の阻害作用
を有する。従って、これらを使用すると、LDHを触媒
とする体液中の乳酸の反応が抑制される。
以上のように添加剤■および添加剤■の作用により、胆
汁酸以外の物質による呈色反応がそれぞれ単独で使用す
る場合に比べて、より完全に抑制される。
汁酸以外の物質による呈色反応がそれぞれ単独で使用す
る場合に比べて、より完全に抑制される。
本発明に詔いて、更にいかなる検体に右いても常に正確
に胆汁酸の定量を行うには、一般の生化学物質の分析等
で通常実施されるブランク測定を行うことが好ましい。
に胆汁酸の定量を行うには、一般の生化学物質の分析等
で通常実施されるブランク測定を行うことが好ましい。
即ち対照の試験紙(ブランク測定用)を準備し、一つの
検体を前述したような胆汁酸試験紙と対照の試験紙(ブ
ランク測定用)で試験し、それぞれの反射光強度の差を
胆汁酸の量に相当させるような測定方法である。
検体を前述したような胆汁酸試験紙と対照の試験紙(ブ
ランク測定用)で試験し、それぞれの反射光強度の差を
胆汁酸の量に相当させるような測定方法である。
このような測定方法には、次のような試験紙が使用され
る。
る。
高分子素材からなる担体の同一個所に■3α−ヒドロキ
システロイドデヒドロゲナーゼ、ニコチンアミドアデニ
ンジヌクレオチドもしくはニコチンアミドアデニンジヌ
クレオチドフォスフエイト、ジアホラーゼ右よびテトラ
ゾリウム塩からなる試薬系組成物と@エチレンジアミン
四酢酸(EDTA )、エチレングリコールビス(β−
アミノエチルエーテル) N 、 N 、 N’、 N
’四酢酸(EGTA)、EDTAないしはEGTAのア
ルカリ金属塩から成る群の中から選ばれる一つ以上の添
加剤工とθオキサミド酸、ピルビン酸、蓚酸、8−クロ
ロ−4ヒドロキシ−5メチルキノリン−3カルボン酸お
よびこれらの塩から成る群の中から選ばれる一つ以上の
添加剤■とが担持された部分Aと、部分Aに担持された
ものから3α−ヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼ
のみを欠く成分が担持された部分Bとの組合せよりなる
ことを特徴とする胆汁酸測定用試験紙である。
システロイドデヒドロゲナーゼ、ニコチンアミドアデニ
ンジヌクレオチドもしくはニコチンアミドアデニンジヌ
クレオチドフォスフエイト、ジアホラーゼ右よびテトラ
ゾリウム塩からなる試薬系組成物と@エチレンジアミン
四酢酸(EDTA )、エチレングリコールビス(β−
アミノエチルエーテル) N 、 N 、 N’、 N
’四酢酸(EGTA)、EDTAないしはEGTAのア
ルカリ金属塩から成る群の中から選ばれる一つ以上の添
加剤工とθオキサミド酸、ピルビン酸、蓚酸、8−クロ
ロ−4ヒドロキシ−5メチルキノリン−3カルボン酸お
よびこれらの塩から成る群の中から選ばれる一つ以上の
添加剤■とが担持された部分Aと、部分Aに担持された
ものから3α−ヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼ
のみを欠く成分が担持された部分Bとの組合せよりなる
ことを特徴とする胆汁酸測定用試験紙である。
との試験紙の調製は、次のように行われる。
試験紙の部分Aは、■試薬系組成物と◎添加剤Iとの添
加剤■とを、前述のようにして担体に担持せしめて調製
される。試験紙の1分Bは、部分Aに担持せしめた成分
から3α−H9Dのみを欠く成分を、同様にして担体に
担持せしめて調製される。このようにして得られた試験
紙の部分A、Bを、適当な大きさの細片に哉断しプラス
チックフィルム製のスティックの端(貼着させて試験紙
が作製される。この時、試験紙の部分A、Bは、別々の
スティックに貼着されても良いし、または、−枚のステ
ィックの両端に貼着されても良い。
加剤■とを、前述のようにして担体に担持せしめて調製
される。試験紙の1分Bは、部分Aに担持せしめた成分
から3α−H9Dのみを欠く成分を、同様にして担体に
担持せしめて調製される。このようにして得られた試験
紙の部分A、Bを、適当な大きさの細片に哉断しプラス
チックフィルム製のスティックの端(貼着させて試験紙
が作製される。この時、試験紙の部分A、Bは、別々の
スティックに貼着されても良いし、または、−枚のステ
ィックの両端に貼着されても良い。
この試験紙を使用して、
検体中の胆汁酸濃度は次の手順で測定される。
■ 適当な反射光測定装置を使用して、検体が滴下され
た試験紙部分昏こ一定波長の光を照射しその反射光強度
を求める。
た試験紙部分昏こ一定波長の光を照射しその反射光強度
を求める。
@ 検体滴下からの経過時間を変えて(例えば、検体滴
下から10秒後と120秒後)この測定を2回行う。
5反射光強度は反応が進み呈色が
進むと減少する。
下から10秒後と120秒後)この測定を2回行う。
5反射光強度は反応が進み呈色が
進むと減少する。
02回の測定値の差、すなわち、この経過時間内の反射
光強度の減少度を求める。
光強度の減少度を求める。
■ この測定を同一検体に右いて試験紙の部分AとBに
ついて行い、その反射光強度減少度をそれぞれRef(
6)、 Ref QS)とする。
ついて行い、その反射光強度減少度をそれぞれRef(
6)、 Ref QS)とする。
■ Δ= Ref (A) −Ref (B)を求め、
予め濃度既知の標準胆汁酸溶液を検体として作成された
、Ref (A) −Ref @と胆汁酸濃度との関係
を示す検量線と比較することにより、検体中の胆汁酸濃
度を決定する。
予め濃度既知の標準胆汁酸溶液を検体として作成された
、Ref (A) −Ref @と胆汁酸濃度との関係
を示す検量線と比較することにより、検体中の胆汁酸濃
度を決定する。
この試験紙を使用すると、このように、試験紙の部分A
に生じた呈色度から試験紙の部分Bに生じた呈色度を減
じた値を使用して、検体中の胆汁酸量を求められるので
、検体中の共存成分による胆汁酸測定値への影響が除か
れる。
に生じた呈色度から試験紙の部分Bに生じた呈色度を減
じた値を使用して、検体中の胆汁酸量を求められるので
、検体中の共存成分による胆汁酸測定値への影響が除か
れる。
(実施例)
以下に本発明を実施例につき説明する。
(施例1
(4)胆汁酸測定用試験紙の調製:3α−H5D301
U、ジアホラー−¥6800IU、β−NAD+ 1
0.2 j9、EDTA−2Na (同仁化学製)1
00sy、オキサミド酸ナトリウム5■、PEG16s
y、B5Al00Mg右よびTritonX (商品名
) 10 Ill を蒸留水10idに溶解した。この
水溶液を300−の濾紙(Whatmann K 3
) に含浸させ、凍結乾燥した。
U、ジアホラー−¥6800IU、β−NAD+ 1
0.2 j9、EDTA−2Na (同仁化学製)1
00sy、オキサミド酸ナトリウム5■、PEG16s
y、B5Al00Mg右よびTritonX (商品名
) 10 Ill を蒸留水10idに溶解した。この
水溶液を300−の濾紙(Whatmann K 3
) に含浸させ、凍結乾燥した。
次に、ニトロブルーテトラゾリウム(和光純薬製、NT
B)の0.034W/W%!タノール溶液を調整し、こ
れを上記凍結乾燥後の濾紙に含浸させた後、速やかに乾
燥させた。このようにして得られた試験紙を6 sw
X 10 mの小片に切断し、試験紙の部分Aを得た。
B)の0.034W/W%!タノール溶液を調整し、こ
れを上記凍結乾燥後の濾紙に含浸させた後、速やかに乾
燥させた。このようにして得られた試験紙を6 sw
X 10 mの小片に切断し、試験紙の部分Aを得た。
次に上記の試薬組成中3α−H3Dを除いた以外は全く
同様な方法で試験紙の部分Bを調製した。
同様な方法で試験紙の部分Bを調製した。
これらの試験紙の部分A、Bを6 X 60 satの
ポリスチレンフィルム製のスティックの端に両面テープ
で貼着して胆汁酸測定用試験紙を得た。
ポリスチレンフィルム製のスティックの端に両面テープ
で貼着して胆汁酸測定用試験紙を得た。
■)反射光測定装置
反射光強度は第1図に示す装置を使用して測定した。
この測定装置lは、試薬を含浸させた胆汁酸測定用試験
紙部分2を載置する透明板3と、この透明板3の下方に
配置された発光素子4と、迷光防止板5を介してこの発
光素子4の近傍に配置された受光素子6と、この受光素
子6で検知された試験紙2からの反射光の強度を数値表
示する表示手段8とを有する。
紙部分2を載置する透明板3と、この透明板3の下方に
配置された発光素子4と、迷光防止板5を介してこの発
光素子4の近傍に配置された受光素子6と、この受光素
子6で検知された試験紙2からの反射光の強度を数値表
示する表示手段8とを有する。
表示手段8は増巾・測定回路・A−D変換器7を介して
受光素子6に電気的に接続される。発光素子4と増巾・
測定回路・A−D変換器7とは測定用スイッチ9にて接
続されている。発光素子4′としては、500〜600
nm付近に発光スペクトルの極大を有する発光ダイオー
ド(スタンレー社製のEBG5504、S)が用いられ
る。受光素子6としては、500〜600nm付近の波
長の光に感度を有する光検出素子、シリコンホトダイオ
ード(浜松ホトニクス社製の51226−5BQ)がる
。
受光素子6に電気的に接続される。発光素子4と増巾・
測定回路・A−D変換器7とは測定用スイッチ9にて接
続されている。発光素子4′としては、500〜600
nm付近に発光スペクトルの極大を有する発光ダイオー
ド(スタンレー社製のEBG5504、S)が用いられ
る。受光素子6としては、500〜600nm付近の波
長の光に感度を有する光検出素子、シリコンホトダイオ
ード(浜松ホトニクス社製の51226−5BQ)がる
。
測定装置1を用い、胆汁酸は次のようにして測定される
。ポリスチレンフィルム製のスティック21の発端に、
胆汁酸測定用試験紙部分2を貼着し、この試験紙部分2
に検体(尿、血清、検量線作成用標準液など)を滴下す
る。検体の滴下と同時に図外のタイマーをオンとし、同
時にこの試験紙部分2側を透明体3に対向させるかたち
で透明板3上に載置する。遮光カバー22を閉じる。そ
して、経時的に測定用スイッチ9をオンにし発光素子4
を発光させる。試験紙部分2にて反射された光を受光素
子6にて受け、増巾・測定回路・A−D変換器7を経て
表示手段8にて反射光強度を数値表示させる。
。ポリスチレンフィルム製のスティック21の発端に、
胆汁酸測定用試験紙部分2を貼着し、この試験紙部分2
に検体(尿、血清、検量線作成用標準液など)を滴下す
る。検体の滴下と同時に図外のタイマーをオンとし、同
時にこの試験紙部分2側を透明体3に対向させるかたち
で透明板3上に載置する。遮光カバー22を閉じる。そ
して、経時的に測定用スイッチ9をオンにし発光素子4
を発光させる。試験紙部分2にて反射された光を受光素
子6にて受け、増巾・測定回路・A−D変換器7を経て
表示手段8にて反射光強度を数値表示させる。
(C) 検量線の作成
正常人プール血清に胆汁酸(コール酸ナトリウム)を加
えて、胆汁酸濃度O%10.25.50.100μmo
l/l の標準胆汁酸溶液を調製した。
えて、胆汁酸濃度O%10.25.50.100μmo
l/l の標準胆汁酸溶液を調製した。
実施例1(A)で調製した試験紙の部分A、Bに標準胆
汁酸溶液を20μE滴下させた。滴下10秒後と120
秒後に540 nmにおける反射光強度を実施例103
)の反射光測定装置を使用して測定し、それらの測定値
から10秒と120秒後の反射光強度の差を求めた。試
験紙の部分A、Bについてこの差をそれぞれRef (
A) 、 Ref (B)とし、△= Ref (A)
−Ref (B)を求めると、第1表のようになった
。
汁酸溶液を20μE滴下させた。滴下10秒後と120
秒後に540 nmにおける反射光強度を実施例103
)の反射光測定装置を使用して測定し、それらの測定値
から10秒と120秒後の反射光強度の差を求めた。試
験紙の部分A、Bについてこの差をそれぞれRef (
A) 、 Ref (B)とし、△= Ref (A)
−Ref (B)を求めると、第1表のようになった
。
(以下余白)
第1表
第2図に示す検量線が得られた。反射光強度差としてR
ef(A)のみをとれば、ブランク測定を行わない試験
紙に相当し、Ref (A) −Ref (B)をとれ
ば、ブランク測定を行う場合に相当する。
ef(A)のみをとれば、ブランク測定を行わない試験
紙に相当し、Ref (A) −Ref (B)をとれ
ば、ブランク測定を行う場合に相当する。
た以外は実施例1 (C)と全く同様にして、肝疾患患
者血清の胆汁酸濃度測定した。
者血清の胆汁酸濃度測定した。
肝疾患患者血清として、2検体について測定した。それ
ぞれの検体名を検体1詔よび検体2として、その反射光
強度の差を第2表に示す。
ぞれの検体名を検体1詔よび検体2として、その反射光
強度の差を第2表に示す。
第2表
Ref CA) 、Δ= Ref CA) −Ref
03)の値を第2図の検量線と比較することにより、胆
汁酸濃度は次のように求まった。
03)の値を第2図の検量線と比較することにより、胆
汁酸濃度は次のように求まった。
Ref(4)からのみ測定
検体1 = 291trnol/1
検体2 = 58 pmol/I
Ref (A) −Ref (B)から測定検体1 =
27 ttmol/1 検体2 = 50 prnol/1 また、この患者血清中の胆汁酸の濃度を溶液法の胆汁酸
測定キット「エンザバイル」(第−化学薬品膜)を用い
て測定すると、検体1 = 28 pmol/l 、検
体2 = 51 ttrnol/lとなった。
27 ttmol/1 検体2 = 50 prnol/1 また、この患者血清中の胆汁酸の濃度を溶液法の胆汁酸
測定キット「エンザバイル」(第−化学薬品膜)を用い
て測定すると、検体1 = 28 pmol/l 、検
体2 = 51 ttrnol/lとなった。
この値を本発明の試験紙で求めた値と比較すると、検体
1については、Ref(4)からのみの測定値(29p
rnol/l ) 右よびRef(A)−Ref(B
)からの測定値(27μmo//lりと良く一致した。
1については、Ref(4)からのみの測定値(29p
rnol/l ) 右よびRef(A)−Ref(B
)からの測定値(27μmo//lりと良く一致した。
検体2については、 Ref(4)−Ref[F])か
らの測定値(50μmoI!elりと良く一致したが、
Ref (A)からのみの測定値(58pmol/Iり
とは、かなりずれていた。
らの測定値(50μmoI!elりと良く一致したが、
Ref (A)からのみの測定値(58pmol/Iり
とは、かなりずれていた。
比較例1
実施例1(4)に記述した試験紙の調製法において、E
DTA−2Naおよびオキサミド酸ナトリウムを除いた
以外は、全く同様にして調製した試験紙を用いて、実施
例1と同様にして実施例1と同じ検体の胆汁酸濃度を測
定した。
DTA−2Naおよびオキサミド酸ナトリウムを除いた
以外は、全く同様にして調製した試験紙を用いて、実施
例1と同様にして実施例1と同じ検体の胆汁酸濃度を測
定した。
標準胆汁酸濃度と反射光強度の差の関係は第3表のよう
になり、これから第3図に示した検量線が得られた。
になり、これから第3図に示した検量線が得られた。
(以下余白)
第3表
実施例1と同じ検体の胆汁酸濃度を測定すると、その反
射光強度の差は第4表のようになった。
射光強度の差は第4表のようになった。
第4表
Ref (A) 、Δ= Ref CA) −Ref
(B)の値を第3図の検量線と比較することにより、胆
汁酸濃度は次のように求まった。
(B)の値を第3図の検量線と比較することにより、胆
汁酸濃度は次のように求まった。
Ref(4)からのみ測定
検体1 = 55 pmof/1
φ体2 = 110 pmol/I
R6f (A) −Ref Q3)から測定検体1 =
32 pmol/1 検体2 = 56 ttrnol/1 この結果を実施例1のエンザバイルで測定した値と比較
すると、検体1,2ともに、Ref(A)からのみ測定
したときは、エンザバイルの測定値と大きく異っており
、Ref囚−uef(B)から測定したときも、エンザ
バイルの測定値とは、かなりずれていた。
32 pmol/1 検体2 = 56 ttrnol/1 この結果を実施例1のエンザバイルで測定した値と比較
すると、検体1,2ともに、Ref(A)からのみ測定
したときは、エンザバイルの測定値と大きく異っており
、Ref囚−uef(B)から測定したときも、エンザ
バイルの測定値とは、かなりずれていた。
以上、実施例1と比較例1より、EDTA−2Na 詔
よびオキサミド酸ナトリウムを添加した試験紙を使用す
ると、Ref(A)からのみの測定の場合、検体によっ
ては(例、検体2)エンザバイルでの測定値とかなりず
れるものがあるが、これらの添加剤を含まない試験紙で
の測定値に比較してエンザバイルの測定値にはるかに近
い値を示す。
よびオキサミド酸ナトリウムを添加した試験紙を使用す
ると、Ref(A)からのみの測定の場合、検体によっ
ては(例、検体2)エンザバイルでの測定値とかなりず
れるものがあるが、これらの添加剤を含まない試験紙で
の測定値に比較してエンザバイルの測定値にはるかに近
い値を示す。
また、Ref (A) −Ref (B)から測定する
と、EDTA−2Na およびオキサミド酸ナトリウム
を添加した試験紙のときは、これらを添加しない試験紙
に比し、エンザバイルの測定値により近い測定値が得ら
れることが分った。
と、EDTA−2Na およびオキサミド酸ナトリウム
を添加した試験紙のときは、これらを添加しない試験紙
に比し、エンザバイルの測定値により近い測定値が得ら
れることが分った。
実施例2
実施例1(4)に記述した試験紙の調製法において、E
DTA−2Na 1004 の代わりに、EGTA−2
Na 1004(シグマ社製)を加えた以外は、全(
同様にして調製した試験紙を用いて、実施例1と同様に
して検量線を作成した。
DTA−2Na 1004 の代わりに、EGTA−2
Na 1004(シグマ社製)を加えた以外は、全(
同様にして調製した試験紙を用いて、実施例1と同様に
して検量線を作成した。
この試験紙を用いて、実施例1と同じ検体について胆汁
酸濃度を求めると、次のようになった。
酸濃度を求めると、次のようになった。
Ref(A)からのみ測定
検体1 = 30 txrnol/1
検体2 = 6’ Oprnol/1
・Ref (A) −Ref 03)から測定 ゛検
体1 = 29 prnol/1 検体2 = 51 pmol/1 実施例3 実施例1(4)に記述した試験紙の調製法にぷいて、オ
キサミド酸ナトリウム5ηの代わりに、ピルビン酸51
1Pを加えた以外は、全(同様にして調製した試験紙を
用いて、実施例1と同様にして検量線を作成した。
体1 = 29 prnol/1 検体2 = 51 pmol/1 実施例3 実施例1(4)に記述した試験紙の調製法にぷいて、オ
キサミド酸ナトリウム5ηの代わりに、ピルビン酸51
1Pを加えた以外は、全(同様にして調製した試験紙を
用いて、実施例1と同様にして検量線を作成した。
この試験紙を用いて、実施例1と同じ検体について胆汁
酸濃度を求めると、次のようになった。
酸濃度を求めると、次のようになった。
Ref(A)からのみ測定
検体1 = 27 ttrnoI!/1検体2 = 5
7 prnol/I Ref (A) −Ref (B)から測定検体1 =
28 smog/l 検体2 = 49 prnol/1 実施例4 実施例1(4)に記述した試験紙の調製法に右い゛て、
EDTA 2NalOOqの代わりに、EGTA−2
Na 100s+y(シグマ社製)を、オキサミド酸
ナトリウム5qの代わりに、ピルビン酸511Pを加え
た以外は、全く同様にして調製した試験紙を用いて、実
施例1と同様にして検量線を作成した。
7 prnol/I Ref (A) −Ref (B)から測定検体1 =
28 smog/l 検体2 = 49 prnol/1 実施例4 実施例1(4)に記述した試験紙の調製法に右い゛て、
EDTA 2NalOOqの代わりに、EGTA−2
Na 100s+y(シグマ社製)を、オキサミド酸
ナトリウム5qの代わりに、ピルビン酸511Pを加え
た以外は、全く同様にして調製した試験紙を用いて、実
施例1と同様にして検量線を作成した。
この試験紙を用いて、実施例1と同じ検体について胆汁
酸濃度を求めると、次のようになった。
酸濃度を求めると、次のようになった。
Ref(4)からのみ測定
検体1 = 29 pmol/1
検体2 = 61 pmol/I
Ref (A) −Ref (B)から測定、検体l=
29 pmol/1 検体2 = 52 ttmol/1 以上、実施例2,3詔よび4のいずれの試験紙の測定値
においても、添加剤としてEDTA−2Na右よびオキ
サミド酸ナトリウムを使用した実施例1とほぼ同じ結果
を示した。
29 pmol/1 検体2 = 52 ttmol/1 以上、実施例2,3詔よび4のいずれの試験紙の測定値
においても、添加剤としてEDTA−2Na右よびオキ
サミド酸ナトリウムを使用した実施例1とほぼ同じ結果
を示した。
(発明の効果)
本発明の胆汁酸測定用試験紙は、高分子素材からなる担
体の同一個所にの3αヒドロキシステロイドデヒドロゲ
ナーゼ、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドもしく
はニコチンアミドアデニンジヌクレオチドフォスフエイ
ト、ジアホラーゼ$よびテトラゾリウム塩からなる試薬
系組成物と◎エチレンジアミン西酢酸(EDTA)、エ
チレングリコールビス(β〜ルアミノエチルエーテル
N 、 N 、 N’ 、 N’四酢酸(EGTA)、
1i:DTAないしはEGTAのアルカリ金属塩から成
る群の中から選ばれる一つ以上の添加剤工とθオキサミ
ド酸、ピルビン酸、蓚酸、8−クロロ−4ヒドロキシ−
5メチルキノリン−3カルボン酸およびこれらの塩から
成る群の中から選ばれる一つ以上の添加剤■とが、担持
されたことを特徴とするものである。ので、体液中の共
存成分の影響を除いて、胆汁酸の量を測定することが出
来、胆汁酸量を正確番こ測定し得る。
体の同一個所にの3αヒドロキシステロイドデヒドロゲ
ナーゼ、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドもしく
はニコチンアミドアデニンジヌクレオチドフォスフエイ
ト、ジアホラーゼ$よびテトラゾリウム塩からなる試薬
系組成物と◎エチレンジアミン西酢酸(EDTA)、エ
チレングリコールビス(β〜ルアミノエチルエーテル
N 、 N 、 N’ 、 N’四酢酸(EGTA)、
1i:DTAないしはEGTAのアルカリ金属塩から成
る群の中から選ばれる一つ以上の添加剤工とθオキサミ
ド酸、ピルビン酸、蓚酸、8−クロロ−4ヒドロキシ−
5メチルキノリン−3カルボン酸およびこれらの塩から
成る群の中から選ばれる一つ以上の添加剤■とが、担持
されたことを特徴とするものである。ので、体液中の共
存成分の影響を除いて、胆汁酸の量を測定することが出
来、胆汁酸量を正確番こ測定し得る。
更に、本発明の対照試験紙を使用し、Ref(A)−R
efl)から胆汁酸濃度を求めれば、体液中の種々の共
存物質の影響を更に抑制して、あらゆる種類の肝胆道系
疾患の検体中1の胆汁酸の量を常に正確に測定し得ると
共に、同時再現性も向上する。
efl)から胆汁酸濃度を求めれば、体液中の種々の共
存物質の影響を更に抑制して、あらゆる種類の肝胆道系
疾患の検体中1の胆汁酸の量を常に正確に測定し得ると
共に、同時再現性も向上する。
従って、試験紙という簡便な方法で、しかも短時間のう
ちに、溶液法のような煩雑な方法で得られる値に匹敵す
る正確さで胆汁酸の量を測定し得、本発明法は、集団検
診での病気の早期発見や、ベツドサイドでの緊急時の検
査などに利用価値が高い。
ちに、溶液法のような煩雑な方法で得られる値に匹敵す
る正確さで胆汁酸の量を測定し得、本発明法は、集団検
診での病気の早期発見や、ベツドサイドでの緊急時の検
査などに利用価値が高い。
第1図は、本発明で使用した反射光測定装置を示す概略
図、 第2図は、標準胆汁酸溶液を本発明の試験紙で測定した
時の標準胆汁酸濃度と反射光強度差の関係を示す検量線
、 第3図は、標準胆汁酸溶液を従来法の試験紙で測定した
時の標準胆汁酸濃度と反射光強度差の関係を示す検量線
である。 1−・胆汁酸測定装置、2・・・胆汁酸測定用試験紙部
分、3・・・透明板、4・・−発光素子、5・・・迷光
防止板、6・・・受光素子、7・・・増巾・測定回路・
A−D変換器、8・・・表示手段、9・・・測定用スイ
ッチ、21・・・プラスチック製スティック、22・・
・遮光カバー。 以 上
図、 第2図は、標準胆汁酸溶液を本発明の試験紙で測定した
時の標準胆汁酸濃度と反射光強度差の関係を示す検量線
、 第3図は、標準胆汁酸溶液を従来法の試験紙で測定した
時の標準胆汁酸濃度と反射光強度差の関係を示す検量線
である。 1−・胆汁酸測定装置、2・・・胆汁酸測定用試験紙部
分、3・・・透明板、4・・−発光素子、5・・・迷光
防止板、6・・・受光素子、7・・・増巾・測定回路・
A−D変換器、8・・・表示手段、9・・・測定用スイ
ッチ、21・・・プラスチック製スティック、22・・
・遮光カバー。 以 上
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1)高分子素材からなる担体の同一個所に[イ]3α−
ヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼ、ニコチンアミ
ドアデニンジヌクレオチドもしくはニコチンアミドアデ
ニンジヌクレオチドフォスフェイト、ジアホラーゼおよ
びテトラゾリウム塩からなる試薬系組成物と[ロ]エチ
レンジアミン四酢酸(EDTA)、エチレングリコール
ビス(β−アミノエチルエーテル)N,N,N′,N′
四酢酸(EGTA)、EDTAないしはEGTAのアル
カリ金属塩から成る群の中から選ばれる一つ以上の添加
剤 I と[ハ]オキサミド酸、ピルビン酸、蓚酸、8−
クロロ−4ヒドロキシ−5メチルキノリン−3カルボン
酸およびこれらの塩から成る群の中から選ばれる一つ以
上の添加剤IIとが、担持されたことを特徴とする胆汁酸
測定用試験紙。 2)高分子素材からなる担体の同一個所に[イ]3α−
ヒドロキシステロイドデヒドロゲナーゼ、ニコチンアミ
ドアデニンジヌクレオチドもしくはニコチンアミドアデ
ニンジヌクレオチドフォスフェイト、ジアホラーゼおよ
びテトラゾリウム塩からなる試薬系組成物と[ロ]エチ
レンジアミン四酢酸(EDTA)、エチレングリコール
ビス(β−アミノエチルエーテル)N,N,N′,N′
四酢酸(EGTA)、EDTAないしはEGTAのアル
カリ金属塩から成る群の中から選ばれる一つ以上の添加
剤 I と[ハ]オキサミド酸、ピルビン酸、蓚酸、8−
クロロ−4ヒドロキシ−5メチルキノリン−3カルボン
酸およびこれらの塩から成る群の中から選ばれる一つ以
上の添加剤IIとが担持された部分Aと、部分Aに担持さ
れたものから3α−ヒドロキシステロイドデヒドロゲナ
ーゼのみを欠く成分が担持された部分Bとの組合せより
なることを特徴とする胆汁酸測定用試験紙。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP529988A JPH0683679B2 (ja) | 1988-01-12 | 1988-01-12 | 胆汁酸測定用試験紙 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP529988A JPH0683679B2 (ja) | 1988-01-12 | 1988-01-12 | 胆汁酸測定用試験紙 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH01181798A true JPH01181798A (ja) | 1989-07-19 |
JPH0683679B2 JPH0683679B2 (ja) | 1994-10-26 |
Family
ID=11607369
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP529988A Expired - Lifetime JPH0683679B2 (ja) | 1988-01-12 | 1988-01-12 | 胆汁酸測定用試験紙 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0683679B2 (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0781852A1 (en) * | 1994-09-13 | 1997-07-02 | Kabushiki Kaisha Kyoto Daiichi Kagaku | Integral multilayer analytical element for assaying sulfate-conjugated bile acid |
JP2016073220A (ja) * | 2014-10-03 | 2016-05-12 | 株式会社シード | アカントアメーバの消毒評価方法 |
-
1988
- 1988-01-12 JP JP529988A patent/JPH0683679B2/ja not_active Expired - Lifetime
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0781852A1 (en) * | 1994-09-13 | 1997-07-02 | Kabushiki Kaisha Kyoto Daiichi Kagaku | Integral multilayer analytical element for assaying sulfate-conjugated bile acid |
EP0781852A4 (en) * | 1994-09-13 | 2000-04-12 | Kyoto Daiichi Kagaku Kk | MULTI-LAYER MONOBLOCK ANALYTICAL ELEMENT FOR THE TITRATION OF SULFATE CONJUGATE BILIC ACID |
JP2016073220A (ja) * | 2014-10-03 | 2016-05-12 | 株式会社シード | アカントアメーバの消毒評価方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0683679B2 (ja) | 1994-10-26 |
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