JPH01110624A - 細胞増殖抑制剤 - Google Patents
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Landscapes
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- Heterocyclic Compounds Containing Sulfur Atoms (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
- Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
[産業上の利用分野]
本発明は、細胞増殖抑制作用、血管新生抑制作用を有し
、癌または自己免疫疾患の治療および予防に用いられる
細胞増殖抑制剤に関するものである。
、癌または自己免疫疾患の治療および予防に用いられる
細胞増殖抑制剤に関するものである。
[従来技術]
細胞増殖は生物が成長あるいは生命を維持していくうえ
で欠くことの出来ない機能である。高等動物では多くの
組織や臓器が各々独自の増殖機構を有しており、それら
は様々な制御機構によって調節されている。近年、生体
内から数10種類の細胞増殖を正に制御する物質、即ち
“細胞増殖因子”が分離、精製されつつあり、個体の形
成、維持に重要な役割を果たしていることが明らかにさ
れている。一方、細胞増殖の異常、特に制御を外れた無
制限の増殖が各種の疾患と関係しているとの報告ら多い
。例えば、ガンはその典型といえる。
で欠くことの出来ない機能である。高等動物では多くの
組織や臓器が各々独自の増殖機構を有しており、それら
は様々な制御機構によって調節されている。近年、生体
内から数10種類の細胞増殖を正に制御する物質、即ち
“細胞増殖因子”が分離、精製されつつあり、個体の形
成、維持に重要な役割を果たしていることが明らかにさ
れている。一方、細胞増殖の異常、特に制御を外れた無
制限の増殖が各種の疾患と関係しているとの報告ら多い
。例えば、ガンはその典型といえる。
またガン細胞は増殖を維持していくために、血管の新生
を促進させる物質を放出して、ガン組織周辺やその内部
に脈管を形成させることが分かってきているが、この因
子(血管新生因子)が血管内皮細胞に対して強力な増殖
促進活性を持つことが明らかにされつつある。またこの
ような血管新生は慢性炎症、糖尿病性網膜症、乾せん、
リウマチ性関節炎等の病態時にも認められ、これらの疾
患の進展に対する関与が示唆されている。
を促進させる物質を放出して、ガン組織周辺やその内部
に脈管を形成させることが分かってきているが、この因
子(血管新生因子)が血管内皮細胞に対して強力な増殖
促進活性を持つことが明らかにされつつある。またこの
ような血管新生は慢性炎症、糖尿病性網膜症、乾せん、
リウマチ性関節炎等の病態時にも認められ、これらの疾
患の進展に対する関与が示唆されている。
また、免疫担当細胞特にリンパ球の活性化にも種々の細
胞増殖因子が関与していることが分かってきており、自
己免疫疾患あるいはアレルギー疾患の憎悪因子の一つと
して、これら細胞増殖因子の過剰産生や過剰応答が考え
られている。従って、上記疾患に関与している細胞増殖
因子に対して選択的に阻害したり、応答を抑制する薬物
が開発されれば、これらの疾患に対して有効な予防、治
療手段となりうるし、臓器移植時の拒否反応の抑制にも
有効と思われる。
胞増殖因子が関与していることが分かってきており、自
己免疫疾患あるいはアレルギー疾患の憎悪因子の一つと
して、これら細胞増殖因子の過剰産生や過剰応答が考え
られている。従って、上記疾患に関与している細胞増殖
因子に対して選択的に阻害したり、応答を抑制する薬物
が開発されれば、これらの疾患に対して有効な予防、治
療手段となりうるし、臓器移植時の拒否反応の抑制にも
有効と思われる。
[発明が解決しようとする課題]
本発明はヒドロキサム酸誘導体を含有してなる細胞増殖
抑制剤を提供するものである。
抑制剤を提供するものである。
[課題を解決するための手段]
本発明は、
一般式
(式中、R’、R’は同一または異なってメチル基また
はメトキシ基を示すか、R1とR2が互いに結合しR1
とR2で−CH=CH−CH=CH−を示す。
はメトキシ基を示すか、R1とR2が互いに結合しR1
とR2で−CH=CH−CH=CH−を示す。
R3は置換されていてもよい芳香族基または異項環基を
、nは2〜8の整数を示す。)で表わされるヒドロキサ
ム酸誘導体を有効成分として含有してなる細胞増殖抑制
剤。
、nは2〜8の整数を示す。)で表わされるヒドロキサ
ム酸誘導体を有効成分として含有してなる細胞増殖抑制
剤。
である。
本発明の細胞増殖抑制剤は有効成分として一般式(I)
で表わされるヒドロキサム酸を含む組成物である。
で表わされるヒドロキサム酸を含む組成物である。
萌記一般式(I)中、R3で示される芳香族基としては
たとえばフェニル基、ナフチル基、インダニル基(4−
インダニル、5−インダニル)などのアリール基があげ
られ、異項環基としては酸素原子。
たとえばフェニル基、ナフチル基、インダニル基(4−
インダニル、5−インダニル)などのアリール基があげ
られ、異項環基としては酸素原子。
窒素原子および硫黄原子の少なくとも一個を環構成原子
として含有する5または6員環の単環性化合物または二
環性化合物があげられその具体例としては、たとえばチ
エニル基(2−チエニル、3−チエニル)、フリール基
(2−フリール、3−フリール)、ピリジル基(2−ピ
リジル、3−ピリジル、4−ピリジル)、キノリル基(
4−キノリル、8−キノリル)、イソキノリル(4−イ
ソキノリル、8−イソキノリル)などがあげられる。な
かでもフェニル。
として含有する5または6員環の単環性化合物または二
環性化合物があげられその具体例としては、たとえばチ
エニル基(2−チエニル、3−チエニル)、フリール基
(2−フリール、3−フリール)、ピリジル基(2−ピ
リジル、3−ピリジル、4−ピリジル)、キノリル基(
4−キノリル、8−キノリル)、イソキノリル(4−イ
ソキノリル、8−イソキノリル)などがあげられる。な
かでもフェニル。
チエニルが好ましい。これら芳香族基および異項環基は
環上の任意の位置に1〜5個、好ましくは1〜3個の置
換基を有していてらよく、この上う゛な置換基としては
たとえばフッ素、塩素、臭素などのハロゲン原子、メチ
ル、エチル、プロピルなど炭素数1〜3のアルキル基、
メトキシ、エトキシ、プロポキンなど炭素数I〜3のア
ルコキシ基などがあげられる。R3としては、フェニル
、4−フルオロフェニル、4−メトキシフェニル、5−
メチル−2−チエニルが好ましい。nは4〜6の整数が
好ましく、さらに好ましくは5.6である。
環上の任意の位置に1〜5個、好ましくは1〜3個の置
換基を有していてらよく、この上う゛な置換基としては
たとえばフッ素、塩素、臭素などのハロゲン原子、メチ
ル、エチル、プロピルなど炭素数1〜3のアルキル基、
メトキシ、エトキシ、プロポキンなど炭素数I〜3のア
ルコキシ基などがあげられる。R3としては、フェニル
、4−フルオロフェニル、4−メトキシフェニル、5−
メチル−2−チエニルが好ましい。nは4〜6の整数が
好ましく、さらに好ましくは5.6である。
一般式(I)で表わされる化合物は
(式中、各記号は前記と同意義である)で表わされる化
合物にカルボン酸活性化剤を反応させてカルボキシル基
における反応性誘導体に導びきついでこれにヒドロキシ
ルアミンを反応させることによって製造することができ
る。
合物にカルボン酸活性化剤を反応させてカルボキシル基
における反応性誘導体に導びきついでこれにヒドロキシ
ルアミンを反応させることによって製造することができ
る。
化合物(It)とカルボン酸活性化剤の反応において、
カルボン酸活性化剤としてはたとえばチオニルクロライ
ド、五塩化リン、クロル炭酸エステル(クロル炭酸メチ
ル、クロル炭酸エチル)、オキザリルクロライド、カル
ボジイミド類(例、N、N−ジシクロへキシルカルボジ
イミド(DCC))などがあげられるが、カルボジイミ
ド類とパラニトロフェノールまたはヒドロキシコハク酸
イミドを併用してもよい。この反応は通常たとえば塩化
メチレン。
カルボン酸活性化剤としてはたとえばチオニルクロライ
ド、五塩化リン、クロル炭酸エステル(クロル炭酸メチ
ル、クロル炭酸エチル)、オキザリルクロライド、カル
ボジイミド類(例、N、N−ジシクロへキシルカルボジ
イミド(DCC))などがあげられるが、カルボジイミ
ド類とパラニトロフェノールまたはヒドロキシコハク酸
イミドを併用してもよい。この反応は通常たとえば塩化
メチレン。
クロロホルムなどのハロゲン化炭化水素類、テトラヒド
ロフラン(THF)、ジオキサン、ジメチルエーテル、
ジエチルエーテル、イソプロピルエーテルなどのエーテ
ル類、N、N−ジメチルホルムアミドまたはこれらの混
合溶媒などの存在下におこなわれる。反応温度は通常−
10℃〜50℃である。
ロフラン(THF)、ジオキサン、ジメチルエーテル、
ジエチルエーテル、イソプロピルエーテルなどのエーテ
ル類、N、N−ジメチルホルムアミドまたはこれらの混
合溶媒などの存在下におこなわれる。反応温度は通常−
10℃〜50℃である。
この反応において、カルボン酸活性化剤とじて塩化チオ
ニル、オキザリルクロライドまたは五塩化リンを用いた
場合は反応性誘導体として酸ハライドが得られ、カルボ
ン酸活性化剤としてクロル炭酸エステルを用いた場合に
は反応性誘導体として混合酸無水物が得られ、またカル
ボン酸活性化剤としてカルボジイミド類を用いた場合に
は反応性誘導体として活性エステルが得られる。
ニル、オキザリルクロライドまたは五塩化リンを用いた
場合は反応性誘導体として酸ハライドが得られ、カルボ
ン酸活性化剤としてクロル炭酸エステルを用いた場合に
は反応性誘導体として混合酸無水物が得られ、またカル
ボン酸活性化剤としてカルボジイミド類を用いた場合に
は反応性誘導体として活性エステルが得られる。
化合物(II)のカルボキシル基における反応性誘導体
とヒドロキシルアミンとの反応は、該反応性誘導体が酸
ハライドである場合はたとえばジクロルメタン、テトラ
ヒドロフラン、アセトンなどの溶媒中、脱酸剤(ピリジ
ン、トリエチルアミン、炭酸カリウム、炭酸ナトリウム
、炭酸水素カリウム、炭酸水素ナトリウムなど)の存在
下に無水または含水条件下に行なわれる。反応温度は一
り0℃〜30℃程度である。該反応性誘導体が活性エス
テルまたは混合酸無水物である場合は化合物(II)と
カルボン酸活性化剤との反応で用いた溶媒と同様な溶媒
中で行なうことができる。この場合の反応温度は通常O
〜30℃で反応時間は1〜5時間である。
とヒドロキシルアミンとの反応は、該反応性誘導体が酸
ハライドである場合はたとえばジクロルメタン、テトラ
ヒドロフラン、アセトンなどの溶媒中、脱酸剤(ピリジ
ン、トリエチルアミン、炭酸カリウム、炭酸ナトリウム
、炭酸水素カリウム、炭酸水素ナトリウムなど)の存在
下に無水または含水条件下に行なわれる。反応温度は一
り0℃〜30℃程度である。該反応性誘導体が活性エス
テルまたは混合酸無水物である場合は化合物(II)と
カルボン酸活性化剤との反応で用いた溶媒と同様な溶媒
中で行なうことができる。この場合の反応温度は通常O
〜30℃で反応時間は1〜5時間である。
かくして製造されるヒドロキサム酸誘導体(I)は、自
体公知の分離、精製手段(例、クロマトグラフィー、結
晶化法)などにより単離採取することができる。
体公知の分離、精製手段(例、クロマトグラフィー、結
晶化法)などにより単離採取することができる。
ヒドロキサム酸誘導体(I)は、構造上キノン核側鎖ア
ルファ(α)炭素において不斉中心をもつため光学活性
を有する化合物が存在する。従って化合物(I)は光学
活性化合物およびラセミ化合物のいずれも含むことを意
味する。
ルファ(α)炭素において不斉中心をもつため光学活性
を有する化合物が存在する。従って化合物(I)は光学
活性化合物およびラセミ化合物のいずれも含むことを意
味する。
化合物(Dは各種細胞(内皮細胞、リンパ球、ガン細胞
など)の増殖抑制作用を有し、そのため、血管新生抑制
作用、免疫抑制作用、ガン細胞増殖抑制作用を有する。
など)の増殖抑制作用を有し、そのため、血管新生抑制
作用、免疫抑制作用、ガン細胞増殖抑制作用を有する。
しかも毒性、副作用は極めて低い。したがって化合物(
I)は哺乳動物(マウス、ラット、ウサギ、サル、馬1
人など)に対して糖尿病性網膜症、乾せん、リウマチ、
慢性炎症、自己免疫疾患。
I)は哺乳動物(マウス、ラット、ウサギ、サル、馬1
人など)に対して糖尿病性網膜症、乾せん、リウマチ、
慢性炎症、自己免疫疾患。
癌などの諸疾患の治療および予防に有用である。
また臓器移植時における拒否反応の抑制にも有用である
。
。
さらに、化合物(+)は、多価不飽和脂肪酸(リノール
酸、γ−リルン酸、α−リルン酸、アラキドン酸、ジホ
モ−γ−リルン酸、エイコサペンタエン酸)の代謝改善
、特に過酸化脂肪酸の生成抑制作用(抗酸化作用)ある
いは5−リポキシゲナーゼ系代謝産物(例、ロイコトリ
エン類、5−ヒドロキシエイコサテトラエン酸、5−パ
ーオキシエイコサテトラエン酸、リボキシン類など)の
生成抑制作用も有しており、哺乳動物に対して気管支喘
息、炎症、即時性アレルギー、動脈硬化、アテローム変
性動脈硬化、脂肪肝、肝炎、肝硬変、過敏症肺臓炎など
の諸疾患に対、して治療および予防効果が期待され、た
とえば抗喘息剤、抗アレルギー剤、脳循環器系改善剤、
冠状動脈硬化予防剤、免疫調整剤、プロスタグランジン
−トロンボキサン代謝改善剤。
酸、γ−リルン酸、α−リルン酸、アラキドン酸、ジホ
モ−γ−リルン酸、エイコサペンタエン酸)の代謝改善
、特に過酸化脂肪酸の生成抑制作用(抗酸化作用)ある
いは5−リポキシゲナーゼ系代謝産物(例、ロイコトリ
エン類、5−ヒドロキシエイコサテトラエン酸、5−パ
ーオキシエイコサテトラエン酸、リボキシン類など)の
生成抑制作用も有しており、哺乳動物に対して気管支喘
息、炎症、即時性アレルギー、動脈硬化、アテローム変
性動脈硬化、脂肪肝、肝炎、肝硬変、過敏症肺臓炎など
の諸疾患に対、して治療および予防効果が期待され、た
とえば抗喘息剤、抗アレルギー剤、脳循環器系改善剤、
冠状動脈硬化予防剤、免疫調整剤、プロスタグランジン
−トロンボキサン代謝改善剤。
脂肪肝、肝炎、肝硬変、過敏症肺臓炎治療剤などの医薬
として有用である。
として有用である。
本発明の細胞増殖抑制剤は、その有効成分である化合物
(I)自体をそのまま投与することもできるが、一般に
は種々の自体公知の薬学的に許容される担体、賦形剤な
どと混合した医薬組成物として投与される。このような
医薬組成物の剤形としてはたとえば錠剤、カプセル剤(
ソフトカプセル。
(I)自体をそのまま投与することもできるが、一般に
は種々の自体公知の薬学的に許容される担体、賦形剤な
どと混合した医薬組成物として投与される。このような
医薬組成物の剤形としてはたとえば錠剤、カプセル剤(
ソフトカプセル。
マイクロカプセルを含む)、顆粒剤、散剤、ソロツブ剤
、液剤、注射剤、半開などがあげられ、これらは常法に
よって調整することができる。本発明の細胞増殖抑制剤
は経口的もしくは非経口的に人を含む哺乳動物に投与す
ることができる。投与量は投与対象、投与ルート、症状
などによっても異なるが、たとえば、成人1日当り通常
約0.1mg/ kg 〜40mg/kg体重程度、好
ましくは0.2mg/ kg〜20mg/ kg体重程
度を経口的または非経口的に投与するのが好都合である
。
、液剤、注射剤、半開などがあげられ、これらは常法に
よって調整することができる。本発明の細胞増殖抑制剤
は経口的もしくは非経口的に人を含む哺乳動物に投与す
ることができる。投与量は投与対象、投与ルート、症状
などによっても異なるが、たとえば、成人1日当り通常
約0.1mg/ kg 〜40mg/kg体重程度、好
ましくは0.2mg/ kg〜20mg/ kg体重程
度を経口的または非経口的に投与するのが好都合である
。
化合物(II)はたとえば特開昭61−44840に記
載の方法によって製造することができる。
載の方法によって製造することができる。
[発明の効果]
本発明に係る細胞増殖抑制剤は細胞増殖抑制作用を何し
、血管の新生を阻止し、癌細胞の増殖を抑制し、免疫を
抑制するため、制癌剤として用いられるほか、臓器移植
時における拒否反応を抑制するために用いることができ
る。
、血管の新生を阻止し、癌細胞の増殖を抑制し、免疫を
抑制するため、制癌剤として用いられるほか、臓器移植
時における拒否反応を抑制するために用いることができ
る。
[実施例]
参考例1
7−(4−メトキシフェニル)−7−(3,5,6−ド
リメチルー1.4−ベンゾキノン−2−イル)−へブタ
ン酸(I,3g、 3.3mmol)をジクロルメタ
ン(20d)に溶かし、オキザリルクロライド(l滅)
を室温にて加えた。反応液を50°Cで1時間攪拌した
後、減圧下に溶媒を留去した。得られた残留物をTHF
(5d)に溶かし、ヒドロキシルアミン塩酸塩(Ig、
14mmol)のTl1r’(I0d)と飽和重曹
水(I0りの混合液に室温下で滴下した。
リメチルー1.4−ベンゾキノン−2−イル)−へブタ
ン酸(I,3g、 3.3mmol)をジクロルメタ
ン(20d)に溶かし、オキザリルクロライド(l滅)
を室温にて加えた。反応液を50°Cで1時間攪拌した
後、減圧下に溶媒を留去した。得られた残留物をTHF
(5d)に溶かし、ヒドロキシルアミン塩酸塩(Ig、
14mmol)のTl1r’(I0d)と飽和重曹
水(I0りの混合液に室温下で滴下した。
室温にて1時間攪拌後反応液に酢酸エチル(20蔵)を
加えた。有機層を水洗、乾燥後、減圧濃縮して7−(4
−メトキシフェニル)−7−(3,5゜6−ドリメチル
ー1.4−ベンゾキノン−2−イル)−ヘプタノヒドロ
キサム酸(0,6g、42%)を得た。物性は第1表に
化合物N018として記載した。同様にして第1表中の
化合物No、I、4゜10.11.+ 2.13,14
.+ 5.16.17.19゜20.2 +、22,2
3,24.25および26を製造した。
加えた。有機層を水洗、乾燥後、減圧濃縮して7−(4
−メトキシフェニル)−7−(3,5゜6−ドリメチル
ー1.4−ベンゾキノン−2−イル)−ヘプタノヒドロ
キサム酸(0,6g、42%)を得た。物性は第1表に
化合物N018として記載した。同様にして第1表中の
化合物No、I、4゜10.11.+ 2.13,14
.+ 5.16.17.19゜20.2 +、22,2
3,24.25および26を製造した。
参考例2
7〜(4−フルオロフェニル)−7−(3,5,6−ド
リメヂルー1.4−ベンゾキノン−2−イル)−へブタ
ン酸(0,8g、 2.2mmol)をジクロルメタ
ン(2Mりに溶かし、オキザリルクロライド(0,5威
)を室温にて加えた。反応液を50℃で1時間攪拌した
後、減圧下に溶媒を留去した。得られた残留物をTHF
(5d)に溶かし、ヒドロキシルアミン塩酸塩(0、5
g、 7 mmol)のTI−IF’(I0−)と飽
和重曹水(I0Ml)の混合液に室温下で滴下した。室
温にて1時間攪拌後反応液に酢酸エチル(20Ml)を
加えた。有機層を水洗、乾燥後、減圧濃縮し、残留物を
イソプロピルエーテルから再結晶して7−(4−フルオ
ロフェニル’I−7−(3。
リメヂルー1.4−ベンゾキノン−2−イル)−へブタ
ン酸(0,8g、 2.2mmol)をジクロルメタ
ン(2Mりに溶かし、オキザリルクロライド(0,5威
)を室温にて加えた。反応液を50℃で1時間攪拌した
後、減圧下に溶媒を留去した。得られた残留物をTHF
(5d)に溶かし、ヒドロキシルアミン塩酸塩(0、5
g、 7 mmol)のTI−IF’(I0−)と飽
和重曹水(I0Ml)の混合液に室温下で滴下した。室
温にて1時間攪拌後反応液に酢酸エチル(20Ml)を
加えた。有機層を水洗、乾燥後、減圧濃縮し、残留物を
イソプロピルエーテルから再結晶して7−(4−フルオ
ロフェニル’I−7−(3。
5.6−ドリメチルー1.4−ベンゾキノン−2−イル
)−ヘプタノヒドロキサム酸(0,7g、85%)を得
た。物性は第1表に化合物No、6として記載した。同
様にして第1表中の化合物No、2.3,5゜7.9お
よび18製造した。
)−ヘプタノヒドロキサム酸(0,7g、85%)を得
た。物性は第1表に化合物No、6として記載した。同
様にして第1表中の化合物No、2.3,5゜7.9お
よび18製造した。
(以 下 余 白)
実施例1
(カプセル剤)
(I)化合物No、 5 50mg(
2)微粉末セルロース 30mg(3)ラク
トース 37mg(4)ステアリン
酸マグネシウム 3mg計120mg (I)、(2)、(3)および(4)を混合してゼラチ
ンカプセルに充填した。
2)微粉末セルロース 30mg(3)ラク
トース 37mg(4)ステアリン
酸マグネシウム 3mg計120mg (I)、(2)、(3)および(4)を混合してゼラチ
ンカプセルに充填した。
実施例2
(軟カプセル剤)
(I)化合物No、13 50mg(
2)トウモロコン油 100mg計150
mg 実施例3 (錠剤) (I)化合物No、 6 50mg(
2)ラクトース 34mg(3)ト
ウモロコン澱粉 10.6mg(4)トウ
モロコシ澱粉(のり状) 5mg(5)ステアリ
ン酸マグネシウム 0.4mg(6)カルボキシメ
チルセルロースカルシウム0mg 計120mg 常法に従ってこれらを混合して錠剤機により打錠した。
2)トウモロコン油 100mg計150
mg 実施例3 (錠剤) (I)化合物No、 6 50mg(
2)ラクトース 34mg(3)ト
ウモロコン澱粉 10.6mg(4)トウ
モロコシ澱粉(のり状) 5mg(5)ステアリ
ン酸マグネシウム 0.4mg(6)カルボキシメ
チルセルロースカルシウム0mg 計120mg 常法に従ってこれらを混合して錠剤機により打錠した。
実験例1 〔モルモット多形核白血球由来の5=リボキ
シゲネースに対する阻害作用(I0−5M))5−リボ
キンゲネースは、モルモット腹腔臼「1球より得た酵素
標品を用いた。リボキンゲネーヌ活性測定には25μM
[I−”C]アラキドン酸(5x l O’cpm)を
基質として、50mMリン酸緩衝液(pH7,4)、2
mMCaC12t、2mM ATPおよび酵素を含む反
応液(200μm2)を用いた。25℃で、2分間ブレ
インキュベートした後、[1−I′C]アラキドン酸(
5X 10 ’cpm)を添加し、25℃で3分間反応
後、その反応液を酸性にし、アラキドン酸および代謝産
物をエーテルで抽出した。エーテル屓の放射活性はシリ
カゲル薄層クロマトグラフィーで石油エーテル゛エチル
エーテル:酢酸(I5:85:0.1)の展開溶媒を用
い、−10℃で展開した。展開後、薄層プレートのオー
トラジオグラフィーをとった後、薄層プレートから放射
活性部位のシリカゲルをかき取り、生成物の放射活性を
計数した。薬物は反応開始2分前に添加した。
シゲネースに対する阻害作用(I0−5M))5−リボ
キンゲネースは、モルモット腹腔臼「1球より得た酵素
標品を用いた。リボキンゲネーヌ活性測定には25μM
[I−”C]アラキドン酸(5x l O’cpm)を
基質として、50mMリン酸緩衝液(pH7,4)、2
mMCaC12t、2mM ATPおよび酵素を含む反
応液(200μm2)を用いた。25℃で、2分間ブレ
インキュベートした後、[1−I′C]アラキドン酸(
5X 10 ’cpm)を添加し、25℃で3分間反応
後、その反応液を酸性にし、アラキドン酸および代謝産
物をエーテルで抽出した。エーテル屓の放射活性はシリ
カゲル薄層クロマトグラフィーで石油エーテル゛エチル
エーテル:酢酸(I5:85:0.1)の展開溶媒を用
い、−10℃で展開した。展開後、薄層プレートのオー
トラジオグラフィーをとった後、薄層プレートから放射
活性部位のシリカゲルをかき取り、生成物の放射活性を
計数した。薬物は反応開始2分前に添加した。
実験例2 〔血小板膜画分とU−46619(PGI+
2/TXA2)の結合阻害反応〕 モルモットの採血および血小板膜画分の調製はニス・シ
ー・ハング(S、C」ung)らの方法[Biochi
m。
2/TXA2)の結合阻害反応〕 モルモットの採血および血小板膜画分の調製はニス・シ
ー・ハング(S、C」ung)らの方法[Biochi
m。
Biophys Acta、 728.171−178
(I983)]に帛じて行なった。パートレー(Ila
rtle)系モルモットをエーテル麻酔下、心臓から採
血し、3.15%クエン酸ナトリウム液(最終濃度1m
Mアスピリン含有)に懸濁した(クエン酸ナトリウム液
:全血= I 二9)。
(I983)]に帛じて行なった。パートレー(Ila
rtle)系モルモットをエーテル麻酔下、心臓から採
血し、3.15%クエン酸ナトリウム液(最終濃度1m
Mアスピリン含有)に懸濁した(クエン酸ナトリウム液
:全血= I 二9)。
クエン酸ナトリウム加血液を300 Orpm、5−6
秒間遠心し、platelet rich pla
sma(P RP )を分離した。PRPをさらに48
00rpm、10分間4℃で遠心し、血小板ペレットを
得た。血小板ペレットは30鑓の25mM Tris−
HCf2緩衝液(5m M M g CQ を含有、p
H7,4)で洗浄し、同じ緩衝液で@濁し、血小板は5
OniCatOrを用いて、破壊した後、110000
rpでlhr遠心し、膜画分を緩衝液で懸濁した。蛋白
定量はBiorad proteinassayキット
を用いて行ない、1−1.5mg/旙蛋白に調製した。
秒間遠心し、platelet rich pla
sma(P RP )を分離した。PRPをさらに48
00rpm、10分間4℃で遠心し、血小板ペレットを
得た。血小板ペレットは30鑓の25mM Tris−
HCf2緩衝液(5m M M g CQ を含有、p
H7,4)で洗浄し、同じ緩衝液で@濁し、血小板は5
OniCatOrを用いて、破壊した後、110000
rpでlhr遠心し、膜画分を緩衝液で懸濁した。蛋白
定量はBiorad proteinassayキット
を用いて行ない、1−1.5mg/旙蛋白に調製した。
Binding assayは次の方法で行なった。[
3H]U−466194HM、薬液10−’−10−’
Mおよび血小板膜画分100μg蛋白からなる反応液を
25°C(室温)で30分インキュベートした。反応液
はグラスフィルター(GF/C)でろ過し、上記緩衝液
で2回洗浄し、グラスフィルターを液体シンチレータ−
(アニオン系)4dに入れ、放射能活性を測定した。
3H]U−466194HM、薬液10−’−10−’
Mおよび血小板膜画分100μg蛋白からなる反応液を
25°C(室温)で30分インキュベートした。反応液
はグラスフィルター(GF/C)でろ過し、上記緩衝液
で2回洗浄し、グラスフィルターを液体シンチレータ−
(アニオン系)4dに入れ、放射能活性を測定した。
化合物番号 ICs。(M)
8 6.0
14 2.6
実験例3 〔ヒト層相静脈血管内皮細胞の細胞増殖阻害
の検定〕 ヒト血管内皮細胞はヒト屑帯静脈より、トリプシン酵素
溶液による潅流法により得られ、GIT培地(大五栄養
化学)に、2.5%ウシ胎児血清および2.Ong/戒
のヒト組み替え線維芽細胞増殖因子(以下、rFGFと
略す。当社生物工学研究所において作製)を添加した培
養液にて継代維持されたものを使用した。
の検定〕 ヒト血管内皮細胞はヒト屑帯静脈より、トリプシン酵素
溶液による潅流法により得られ、GIT培地(大五栄養
化学)に、2.5%ウシ胎児血清および2.Ong/戒
のヒト組み替え線維芽細胞増殖因子(以下、rFGFと
略す。当社生物工学研究所において作製)を添加した培
養液にて継代維持されたものを使用した。
2x103個のヒト血管内皮細胞の懸ω液、100μC
を、96穴培養皿(Nunc、1−67008)に播種
し、ガス制御恒温槽で培養する。翌日、終濃度2ng/
dになるようなrFGFと、種々の濃度の検体を含む培
地、100μQを加えた。検体はジメチルスルホキシド
(以下、DMSO)溶液に溶解し、DMSO終濃度が0
.25%以下になるように培養液にて希釈した。3日間
培養の後、検体を含む培養液を吸引除去し、1mg/蔵
のMTT溶液(3−(4,5−ジメチル−2−チアゾリ
ル)−2゜5−ジフェニル−2H−テトラゾリウムブロ
マイドを培養液に溶解)をlOOμQ加え、4時間保温
した。その後、100μgの10%SDS溶液(ソジウ
ムドデシルスルフェート水溶液)を加えて5−6時間保
温して、細胞およびMTT色素を可溶化し、分光光度計
にてOD 6110値を測定した。検体を加えない対照
群のOD値を100%とし、50%のOD値を与える化
合物濃度、ICs。値により各検体の、内皮細胞増殖阻
害活性を比較検討した。
を、96穴培養皿(Nunc、1−67008)に播種
し、ガス制御恒温槽で培養する。翌日、終濃度2ng/
dになるようなrFGFと、種々の濃度の検体を含む培
地、100μQを加えた。検体はジメチルスルホキシド
(以下、DMSO)溶液に溶解し、DMSO終濃度が0
.25%以下になるように培養液にて希釈した。3日間
培養の後、検体を含む培養液を吸引除去し、1mg/蔵
のMTT溶液(3−(4,5−ジメチル−2−チアゾリ
ル)−2゜5−ジフェニル−2H−テトラゾリウムブロ
マイドを培養液に溶解)をlOOμQ加え、4時間保温
した。その後、100μgの10%SDS溶液(ソジウ
ムドデシルスルフェート水溶液)を加えて5−6時間保
温して、細胞およびMTT色素を可溶化し、分光光度計
にてOD 6110値を測定した。検体を加えない対照
群のOD値を100%とし、50%のOD値を与える化
合物濃度、ICs。値により各検体の、内皮細胞増殖阻
害活性を比較検討した。
l 10
2 0.63
3 1.25
4 0.63
5 0.63
6 1.25
7 1.25
8 0.63
9 1.25
11 5・012
0.0813 <0
.08 14 <0.63 15 <0.6316
1.25実験例4 (IL−2
依存性細胞(NKC−3)の細胞増殖阻害の検定〕 96穴平底マイクロプレートの各式にNKC−3細胞(
4X105個/穴)を50μm2.IL−2溶液(0,
067U/d)を20μQ1更に検体(DMSO溶液)
を40μa入れ、37℃で20時間培養した(培養液:
RPMr l 640−20%EC9)。
0.0813 <0
.08 14 <0.63 15 <0.6316
1.25実験例4 (IL−2
依存性細胞(NKC−3)の細胞増殖阻害の検定〕 96穴平底マイクロプレートの各式にNKC−3細胞(
4X105個/穴)を50μm2.IL−2溶液(0,
067U/d)を20μQ1更に検体(DMSO溶液)
を40μa入れ、37℃で20時間培養した(培養液:
RPMr l 640−20%EC9)。
各式にMTT溶液20μQを加え、37℃で4時間保温
した。続いて各式にlO%SDS溶液lOOμQを加え
、37℃で一晩放置して、細胞およびMTT色素を可溶
化し、分光光度計にて590nmの吸光度を測定した。
した。続いて各式にlO%SDS溶液lOOμQを加え
、37℃で一晩放置して、細胞およびMTT色素を可溶
化し、分光光度計にて590nmの吸光度を測定した。
検体を加えない場合の吸光度を100として、50%吸
光度を与える化合物濃度をrcso値とした。
光度を与える化合物濃度をrcso値とした。
化合物番号 IC6゜(M)
5 4、lX10−5
実験例5 〔ニワトリ胚漿尿膜法による血管新生抑制活
性アッセイ法〕 培養ニワトリ胚漿尿膜を使用する血管新生抑制活性のア
ッセイ法は、ティラーらの方法の変法を用いて評価した
[ティラーほか、S、Taylor & J。
性アッセイ法〕 培養ニワトリ胚漿尿膜を使用する血管新生抑制活性のア
ッセイ法は、ティラーらの方法の変法を用いて評価した
[ティラーほか、S、Taylor & J。
Folkman、 Nature、 297.307(
I982)]。3日齢の有精卵の殻を除去して培養し、
10(または11)日齢に達した胚を使用した。血管新
生物質であるE CG S (endothelial
cell growth supplement。
I982)]。3日齢の有精卵の殻を除去して培養し、
10(または11)日齢に達した胚を使用した。血管新
生物質であるE CG S (endothelial
cell growth supplement。
コラボレイチプリサーチ社)ととらに検体(I00μg
)の水溶液または水懸濁液を透明プラスチック製ディス
ク上で乾固し、漿尿膜上に付置し、2(または3)日後
に実体顕微鏡下に血管新生の有無をコントロールと比較
して判定した。
)の水溶液または水懸濁液を透明プラスチック製ディス
ク上で乾固し、漿尿膜上に付置し、2(または3)日後
に実体顕微鏡下に血管新生の有無をコントロールと比較
して判定した。
化合物番号 有 効 性
8 +
9 +
+4 +
15 +
実験例6
各群5匹ずつの雄性ICRマウス(8週齢)を使用した
。3日間検体(化合物番号5) 100 mg/ kg/dayを皮下投与した。投与液
は0.5%アラビアゴムを含む生理食塩水に溶解し10
0 mg/ l OMl/に’g体重で投与した。
。3日間検体(化合物番号5) 100 mg/ kg/dayを皮下投与した。投与液
は0.5%アラビアゴムを含む生理食塩水に溶解し10
0 mg/ l OMl/に’g体重で投与した。
[結果]
薬物投与開始後4日間の観察機関中、死亡例はなく、体
重減少等の異状は観察されなかった。
重減少等の異状は観察されなかった。
代理人 弁理士 岩 1) 弘
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、一般式 ▲数式、化学式、表等があります▼( I ) (式中、R^1、R^2は同一または異なってメチル基
またはメトキシ基を示すか、R^1とR^2が互いに結
合しR^1とR^2で−CH=CH−CH=CH−を示
す。 R^3は置換されていてもよい芳香族基または異項環基
を、nは2〜8の整数を示す。)で表わされるヒドロキ
サム酸誘導体を有効成分として含有してなる細胞増殖抑
制剤。 2、一般式( I )中、nが4〜6である請求項1記載
の細胞増殖抑制剤。 3、一般式( I )中R^3がメチルで置換されていて
もよいチエニル基である請求項1記載の細胞増殖抑制剤
。 4、一般式 ▲数式、化学式、表等があります▼( I ′) (式中R^1およびR^2は前記と同意義であり、R^
4は水素原子、メチル基、メトキシ基、塩素原子または
フッ素原子を示す。)で表わされる請求項1記載の細胞
増殖抑制剤。
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---|---|---|---|
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JP18914387 | 1987-07-29 | ||
JP18736688A JP2639568B2 (ja) | 1987-07-29 | 1988-07-27 | 細胞増殖抑制剤 |
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JPH01110624A true JPH01110624A (ja) | 1989-04-27 |
JP2639568B2 JP2639568B2 (ja) | 1997-08-13 |
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ID=26504315
Family Applications (1)
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JP18736688A Expired - Lifetime JP2639568B2 (ja) | 1987-07-29 | 1988-07-27 | 細胞増殖抑制剤 |
Country Status (1)
Country | Link |
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JP (1) | JP2639568B2 (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2014516051A (ja) * | 2011-05-26 | 2014-07-07 | インディアナ ユニバーシティー リサーチ アンド テクノロジー コーポレーション | Ape1媒介疾患を処置するためのキノン化合物 |
-
1988
- 1988-07-27 JP JP18736688A patent/JP2639568B2/ja not_active Expired - Lifetime
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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JP2014516051A (ja) * | 2011-05-26 | 2014-07-07 | インディアナ ユニバーシティー リサーチ アンド テクノロジー コーポレーション | Ape1媒介疾患を処置するためのキノン化合物 |
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