JP7846883B2 - 尿および他のサンプルにおける無細胞dnaの分析 - Google Patents
尿および他のサンプルにおける無細胞dnaの分析Info
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Description
本出願は、2016年11月30日に出願された「尿および他のサンプルにおける無細胞DNAの分析」と題する米国仮特許出願第62/427,999号からの優先権を主張し、全ての目的のために、その内容全体が参照により本明細書に組み込まれる。
「生物学的サンプル」は、対象(例えば、妊婦、癌に罹患している人もしくは癌に罹患していると疑われる人、臓器移植レシピエント、または臓器(例えば、心筋梗塞における心臓、卒中における脳、または貧血における造血系など)が関与する疾患プロセスを有すると疑われる対象)から得られ、目的の1つ以上の核酸分子(複数可)を含有する任意のサンプルを指す。生物学的サンプルは、血液、血漿、血清、尿、膣液、水腫(例えば精巣の)からの液、膣洗浄流体、胸水、腹水、脳脊髄液、唾液、汗、涙、痰、気管支肺胞洗浄液、乳首からの吸引液、体の異なる部分からの吸引液などの体液であり得る。便サンプルも使用することができる。種々の実施形態では、無細胞DNAのために濃縮された生物学的サンプル(例えば、遠心分離プロトコルを介して得られた血漿サンプル)におけるDNAの大部分は無細胞であり得、例えば、50%超、60%超、70%超、80%超、90%超、95%超、または99%超のDNAは無細胞であり得る。遠心分離プロトコルは、例えば、3,000g×10分で流体部分を得ることと、残留細胞を除去するために30,000gでさらに10分間再遠心分離することを含み得る。
サンプル(例えば、血液および尿)は複数の組織型を含むことができ、各サンプルは無細胞DNAの異なる割合に寄与する。異なるタイプの組織のDNAは典型的には異なるメチル化パターンを有するので、特定のサンプルにおいて測定されたメチル化レベルを使用して、サンプル中の複数の組織型それぞれの寄与度を決定することができる。例えば、その全体が参照により本明細書に組み込まれる、米国特許出願公開第2016/0017419号に記載されているように、デコンボリューションのプロセスは、組織特異的メチル化パターンを使用して寄与度を決定することができる。
造血細胞は、一貫して、比較的安定した濃度で存在する血漿cfDNAに対する優勢な寄与体であるが(22、27)、尿中cfDNAの量と組成は非常に変動しやすい。例えば、cfDNAに対する腎臓の寄与は、臨床的に安定している腎移植患者において、4.2~94%、または104~3,970GE/ml尿の範囲で変動し得る。この組成変動の度合によって、尿中の総cfDNA濃度の変動(移植患者からの225~25,710GE/ml尿)が悪化し、単一の供給源からのcfDNAを高感度検出することのみを目的とするアッセイが、なぜ検出できないレベルのサンプルに遭遇することがあるのか、を説明し得る。これは、恒常性平衡に維持されている血漿の内容物間の違いを際立たせるが、排泄尿の内容物は、泌尿器系を一回一方向に通過した後の恒常性要件の排出性副産物である。様々な水和状態は総cfDNA濃度に影響を及ぼし得ると考えられるが、希釈効果は各組織からの寄与比率の変動を説明することができない。
メチル化デコンボリューションの原理は、生物からのDNA混合物の組成を決定するための単一のメチル化ゲノム部位(メチル化マーカー)を用いて説明することができる。生物は、哺乳動物またはヒトを含む動物であり得る。組織Aがゲノム部位に対して完全にメチル化されている、すなわち100%のメチル化密度(MD)であり、組織Bが完全にメチル化されていない、すなわち0%のMDであると仮定する。この例では、メチル化密度は、CpGジヌクレオチドが目的の領域でメチル化されているという状況で、シトシン残基の割合を指す。
MDC=MDA×a+MDB×b、
式中、MDA、MDB、MDCはそれぞれ組織A、組織BおよびDNA混合物CのMDを表し、aおよびbは、DNA混合物Cに対する組織AおよびBの寄与比率である。この特定の例では、組織AおよびBがDNA混合物の唯一の2つの構成要素であると仮定されている。したがって、a+b=100%である。したがって、組織Aおよび組織BはそれぞれDNA混合物に60%および40%寄与すると計算される。
Σkpk=100%
さらに、全ての臓器の寄与は非負である必要があり得る。
公に利用可能なメチロームおよびに異なる組織から得られた正常サンプルおよび病理学的サンプルの全ゲノムのバイサルファイトシークエンシングに基づいて、参照メチロームを組み立てることができる。サンプル組織は、腎皮質、腎髄質、尿管、膀胱尿路上皮、膀胱筋、前立腺(内腔、中枢、および末梢)、ならびに精嚢を含むがこれらに限定されない組織に由来し得る。サンプルの組織および細胞組成は手術中に得られ、肉眼的解剖によって確認され得る。
腎移植患者およびHSCT患者からのそれぞれ26および5尿サンプルについて、全ゲノムバイサルファイトシークエンシングを行った。ゲノム全体にわたる19,418個のDMRのメチル化密度により、腎臓、尿路上皮、B細胞、T細胞、および好中球に由来するDNAの割合を決定することができた。ドナー特異的SNPにより、各尿サンプル中の腎臓および血球由来のDNA断片の割合を同定することができ、メチル化デコンボリューションの精度をドナー特異的SNPにより決定されたゴールドスタンダードと比較した。メチル化デコンボリューションからの血球の寄与比率は、B細胞、T細胞、および好中球の合計であった。
このセクションでは、尿路上皮および膀胱腫瘍DNAのメチロームを用いて、尿中cfDNAのメチルデコンボリューションを説明する。デコンボリューションは、異なる組織からのDNAの絶対量のばらつきを説明することができる。しかし、上記のように、尿中の異なる組織の寄与には高い変動性がある。したがって、1つのソースからの寄与が低いまたは高い場合、それは必ずしも異常ではない。
膀胱癌の大部分は、尿路上皮細胞から生じる移行上皮癌である。しかしながら、膀胱腫瘍由来のDNAのメチル化は、正常な尿路上皮に類似しているか、または大きく異なりかつ明瞭なメチル化パターンを示し得る。膀胱腫瘍が細胞回転を増加させ、正常尿路上皮に似たcfDNA断片を放出する可能性があるという理由で、膀胱癌患者からの尿中cfDNAへの尿路上皮の寄与比率を、無癌対照と比較して調べた。
膀胱癌は、悪性の変化を受けた尿路上皮細胞から発生すると考えられているので、膀胱腫瘍のメチロームと正常尿路上皮との間の類似点と相違点を同定するために、膀胱腫瘍サンプルを8.5倍カバレッジに配列決定した。膀胱腫瘍と正常尿路上皮との間でメチル化密度が類似している(<10%の差)7201のDMRを同定した。その後、腎臓、B細胞、T細胞、および好中球と共に、尿路上皮に関するこの定義を用いてメチル化デコンボリューションを行った。
最後に、好中球、T細胞、B細胞、腎臓、および正常尿路上皮と共に、別個の参照パターンとして膀胱腫瘍メチロームを含んだ。したがって、正常および腫瘍尿路上皮は別々の組織として扱われる。腫瘍尿路上皮は生検腫瘍に基づいて決定された。腫瘍参照パターンは、1つまたは複数のそのような生検腫瘍に基づいて決定することができる。複数の生検を使用する場合、腫瘍参照パターンは、生検の全部または特定の割合(例えば、50%超)で発生するDMRに限定され得る。異なる腫瘍生検もまた、異なる参照パターンを有する別個の組織とみなすことができ、それによって腫瘍細胞の特定の群の分類が可能になる。6つの細胞/組織にわたってDMRを同定し、同定されたDMRをメチル化デコンボリューションにおいて使用した。
図5は、本発明の実施形態による、罹患組織型の組織特異的メチル化パターンを使用して生物の生物学的サンプルを分析する方法500を示すフローチャートである。生物学的サンプルは、第1の組織型を含む、複数の組織型由来の無細胞DNA分子の混合物を含む。方法500を使用して、特定の臓器における疾患のレベルを決定でき、例えば、その臓器の病変細胞に対応する組織特異的メチル化パターンがデコンボリューションに使用される。方法500は、コンピュータシステムを使用して実行することができる。
cfDNA断片の長さは、全ゲノム配列解析を使用して、単一塩基対の分解能に確認することができる。具体的には、尿中cfDNAの長さは、ペアエンド超並列シークエンシングを用いて一塩基対の分解能で決定し、異なる断片長での頻度のサイズプロファイルプロットで可視化することができる。尿中cfDNA断片の大部分は比較的短い。正常対照の排泄尿において、中央値のcfDNA断片長は65~80bpである。サイズプロファイル分析における異なる長さでのcfDNA断片の頻度の可視化は、<100bpのcfDNA断片において明確な10bpの周期性を明らかにし、ピークの頻度はトラフの頻度の最大3倍である。
以前の研究では、胎児由来の尿中cfDNA断片は、母性由来の断片(Tsui et al.PLos One2012)よりも短いことを示した。ここでは、特に同種移植片由来のcfDNAがレシピエント由来の断片と比較して異なるサイズプロファイルになる場合、移植尿中cfDNA断片のサイズを調べる。
血漿cfDNAのサイズと組成は、循環中に均衡を達成するように見え、末梢血の繰り返しサンプリングとほぼ一貫したままである。これとは対照的に、尿は腎臓で産生され、尿管を通って一方向に膀胱へと下降し、そこで排尿される前に蓄えられる。
尿路の異なる部分から尿をサンプリングすることによって、腎盂で長いcfDNA断片の割合が大きいことが分かった。尿が尿路を下降するにつれて、cfDNAの絶対濃度が減少し、50~80bpの間で最も顕著である特徴的な10塩基対(bp)周期性を有するより短い断片の割合が増加する。
腎盂尿および排泄尿間で観察された差異の一部は、cfDNAのインビボ分解に起因し得る。第1の機会(図8A)で腎盂尿および排泄尿の差を観察した後、第2の採取(図8B)のために、より多くの量の腎盂尿を採取し、追加の尿を密封容器に入れ、37℃で培養した。腎盂尿のインビトロ培養は、尿路における尿のインビボ通過および膀胱における貯蔵を模倣する。尿を容器から取り出し、3時間、6時間、および24時間培養で処理した。
単一尿サンプル由来の尿中cfDNA断片の長さ、すなわち尿中cfDNAの分解の程度は、中央値長、70bpより長い断片の割合(P>70と標識)、および断片化(周期性)指標などのいくつかの定量的尺度を用いて、特徴付けることができる。70bpより長い断片の割合(P>70bp)は、70bpより長い断片の数を断片の総数で割ってパーセントとして表すことで決定することができる。
PI=(F(50)+F(60)+F(70))-(F(55)+F(65)+F(75))
式中、F50、F60、F70、F55、F65、およびF75は、その特定の長さにおけるcfDNA断片の頻度を表す。高い周期性指数は、トラフと比較したピークにおけるcfDNA断片間の頻度の大きな差、つまりより大きい周期性の振幅を表す。図10Aおよび図10Bに示すように、10bpの周期性が50~80bpの間で最も顕著であり、周期性の振幅は、50、60、および70bpのピーク長の頻度の合計と、55、65、および75bpのトラフ長の合計との差によって表すことができる。
興味深いことに、全体的なCpG部位のメチル化密度は排泄尿と比べて腎盂尿でより高く、腎盂は37℃で培養されるので、全体的なCpG部位のメチル化密度の漸進的な減少がある。インビトロ培養中の尿中cfDNAの絶対濃度、断片サイズ、および全体的なCpG部位メチル化密度の変化を考慮して、これらの因子がメチル化デコンボリューションに影響を与えるかどうかを評価した。腎盂における尿中cfDNAのメチル化デコンボリューションによる全体的なメチル化密度および異なる組織による寄与比率は、37℃でのインビトロ培養中に変動するが、血球、腎臓、および尿路上皮由来の寄与比率はランク付けに関して一定のままである。(表5)
腎盂内の尿中cfDNA断片のサイズプロファイルが高割合の長い断片を有していたので、37℃での腎盂尿のインビトロ培養の効果を調べた。腎盂尿を、PCNを介して採取し、qPCRによる絶対cfDNA濃度、および各時点からのサイズプロファイルを確かめるために異なる時点で一定分量を得ながら、37℃に保った。
排泄尿のサイズ変化を経時的に調べた。非バイサルファイトシークエンシングのために適切なDNAを3時間間隔で収集した。驚くべきことに、0~12時間のcfDNAの連続的なサイズプロファイルは静的なままであり、排泄尿のサイズプロファイルの典型的なものである。対照対象からの排泄cfDNAのサイズプロファイルが、37℃で最長12時間までの培養中一定のままであるという事実は、安定したサイズプロファイルが一定の時点以降維持されることを示す。この安定したサイズプロファイルは、排泄尿サンプルに最も一般的に見られるパターンである。
イメージングは腎臓結石を同定できることもあるが、例えば、MRIまたはCTスキャンなどのイメージングから腎臓の炎症レベルを決定することは困難である。
癌から放出されたcfDNAは、非癌細胞から放出されたcfDNAと比較して異なる長さであることが実証された(31、32)。下部尿路腫瘍からの大量のcfDNAの放出が、排泄尿の全体的なサイズプロファイルを乱すのに十分な異なるサイズのcfDNA断片に寄与する可能性があるという理由で、2症例の筋肉浸潤性膀胱癌を選択した。これらのサンプルのサイズおよびメチル化パターンを評価する全ゲノムのバイサルファイトシークエンシングのために根治的膀胱摘出術を受けているこれらの2人の患者についての手術前後の尿サンプルを採取した。結果は、膀胱癌症例が、長い断片のより大きい割合を有する尿中cfDNAを有することを示す。
図15Aおよび15Bは、2例の筋肉浸潤性膀胱癌からの術前および術後の尿サンプルのサイズプロファイルを示す。術前サンプルは線1502および1506で表される。術後サンプルは線1504および1508で表される。両方の術前サンプルは、より大きな割合の長い断片を有する異常なサイズプロファイルを示し、サイズプロファイルは術後サンプルにおいて正常である。これは、図15Aの術前サンプル:中央値131bp、P>70 90.1%、PI0.10、図15Bの術前サンプル:中央値143bp、P>70 96.2%、PI0.04、図15Aの術後サンプル:中央値80bp、P>70 60.0%、PI1.6、および図15Bの術後サンプル:中央値93bp、P>70 72.7%、PI1.61で、要約サイズ統計にも反映されている。
図18は、本発明の実施形態による、あるサイズの尿中cfDNAを用いて膀胱癌を検出するために生物の尿サンプルを分析する方法1800のフローチャートを示す。尿サンプルは、正常細胞および潜在的に癌に関連する細胞に由来するDNAを含む。尿サンプル中の少なくとも一部のDNAは無細胞である。
膀胱癌を検出することに加えて、cfDNA断片のサイズを分析して、腫瘍のステージを示すことができる。浸潤性高悪性度の尿路上皮癌は、長い断片の割合がより大きいことと関連している。
癌は、全体的な低メチル化(33)およびコピー数異常(34)によって特徴付けられてもよく、これらの変化は癌患者の血漿中で検出されてもよい(7)。全ゲノムバイサルファイトシークエンシングは、1MBビン(または所定の長さおよび/または位置を有し得る他のサイズの領域)によってゲノム全体のメチル化密度を決定し、ゲノム全体の遺伝子座にマッピングされた断片数に基づいてコピー数変化があるかどうかを決定することできる。正常対照におけるメチル化密度およびコピー数は、無癌サンプルからのcfDNAの配列決定に基づいて決定することができる。対照と比較して3を超えるZスコア差(または他の値、例えば所望の感度および特異度に基づいて選択される)がある場合、CNAおよびメチル化の変化は有意であるとみなすことができる。尿サンプルについては、他のサンプル、例えば血漿についての閾値とは異なる特定の閾値を決定することができる。
筋肉侵襲性疾患を有する膀胱癌患者からの対をなす腫瘍組織および排泄尿を得た。全体的な低メチル化は、尿中cfDNAおよび原発性膀胱腫瘍の両方で見られた。膀胱腫瘍はまた、ゲノム全体にわたってコピー数異常を示した。尿中cfDNAにおける増減の位置は、腫瘍において見られたものを反映していた(図20)。これらの結果は、尿中cfDNAにおいて観察可能な低メチル化およびコピー数異常が原発性膀胱癌において見られる異常の代表例であることを示した。
高メチル化についてのcfDNAを分析することによって癌を検出することは慣例的ではないが、高メチル化を使用して、癌のレベルの分類を決定できることを見出した。尿中cfDNAに寄与している正常組織(血球、腎臓、尿路上皮)において一貫してメチル化されていない1,082,774のCpG部位(例えば<2%)を同定した。非メチル化は、2%、5%、または10%未満でメチル化されている部位を指してもよい。これらの部位は、腫瘍においてより一般的にメチル化されており、したがって正常組織と比較して高メチル化されている。例として、高メチル化部位は、30%、40%、50%、60%、70%、80%、または90%を超えてメチル化され得る。膀胱癌症例および対照からの尿サンプル中のこれらのCpG部位における全体的なメチル化密度を計算した。
図24A~24Dは、根治的膀胱摘出術を受けている2人の膀胱癌患者の術前(図24Aおよび24C)および術後(図24Bおよび24D)のcf尿を示す(T22およびT23)。内側の環(例えば環2402)はメチル化密度を表し、外側の環(例えば環2404)はコピー数変化を表す。低メチル化およびコピー数の減少は赤色に着色され(例えば、点2406)、環の中心に向かっているが、高メチル化およびコピー数増加は緑色に着色され(例えば、点2408)、環の中心から離れている。灰色の点(例えば、点2410)は、対照から有意な逸脱がないことを表す。膀胱癌に関連するCNAおよび低メチル化は、術前尿中で明らかに観察可能であるが(図24Aおよび24C)、術後サンプル中のcf尿(図24Bおよび24D)は、無癌対照と同等のコピー数およびメチル化レベルで正規化する。
図26は、低悪性度(Ta)の非侵襲性乳頭状尿路上皮腫瘍(PUNLMP)を有する膀胱癌患者におけるメチル化およびコピー数異常を示すCircosプロットである。内側の環はメチル化密度を表し、外側の環はコピー数の変化を表す。低メチル化およびコピー数の減少は赤色に着色されて環の中心に向かっているが、高メチル化およびコピー数の増加は緑色に着色されて環の中心から離れている。灰色の点は対照から有意な偏差がないことを表す。図中のデータは、患者の尿の配列決定から得られた。第10染色体のコピー数増加(セクション2602)は、低悪性度の組織像を有する超低悪性度疾患の患者に見られる。それゆえ、低悪性度疾患または早期癌は、コピー数異常を用いて同定することができる。
明らかな転移が見られない膀胱癌を持つ2人の患者では、CNAおよび低メチル化は、尿中のcfDNAで検出されたが、血漿のcfDNAでは検出されなかった。
図30は、本発明の実施形態による、対象の第1のサンプルおよび血液サンプルを分析することによって対象の第1の臓器内の癌を同定する方法を示すフローチャートである。第1のサンプルが、第1の臓器由来であり、または第1のサンプルが生物を出るのと同様に第1の臓器を通過し、かつ血液サンプルとは異なる。第1のサンプルおよび血液サンプルは両方とも、正常細胞由来の、および潜在的に癌に関連する細胞由来のDNAを含む。第1のサンプルおよび血液サンプルの両方において少なくとも一部のDNAは無細胞である。第1のサンプルの例は、尿、唾液、または便である。
ブロック3060および3070内の領域の量の閾値は、カウントされた領域に対する不均衡の強さに依存し得る。例えば、癌の分類を決定するための閾値として使用される領域の量は、各領域における異常を検出するために使用される特異度および感度(異常閾値)に依存し得る。例えば、異常閾値が低い(例えば、2のzスコア)場合、量閾値は高い(例えば150)ように選択されてもよい。しかし、異常閾値が高い(例えば、3のzスコア)場合、量閾値はより低くてもよい(例えば、50)。異常を示す領域の量も重み付けされた値とすることができ、例えば、高い不均衡を示す1つの領域は、わずかな不均衡を示す領域よりも高く重み付けすることができる(すなわち、異常について正および負よりも多い分類がある)。
メチル化について、態様は、CNAについてと同じであり得る。一実施形態では、全領域のメチル化レベルを決定し、閾値と比較することができる。
全ゲノムバイサルファイトシークエンシングにより、全体的なメチル化状態、コピー数異常(CNA)、およびメチル化デコンボリューションによる膀胱腫瘍寄与を同時に評価できる。46人の膀胱癌患者と39人の対照において膀胱癌を検出するこれらの分析方法の能力を評価した。対照の平均値に加えて、3つの標準偏差に基づいて、正常上限を設定した。これらの基準を用いて陽性と判定された対照はなく、100%の特異度を示した。
図31A~31Cは、46人の膀胱癌患者および39人の対照について、低メチル化を伴う1mbビンの割合、コピー数異常を伴う1mbビンの割合、およびメチル化デコンボリューションからの膀胱腫瘍寄与の箱ひげ図をそれぞれ示す。図31D~31Fは、低メチル化についての対応するROC曲線を示す図であり、図31Dは図31Aに対応するROC曲線を示し、図31Eは図31Bに対応するROC曲線を示し、図31Fは図31Cに対応するROC曲線を示す。膀胱腫瘍寄与は、組織特異的メチル化シグネチャおよび異なる組織にわたって変化する非組織特異的メチル化シグネチャを使用して導き出された。
図33は、生物の尿サンプルを分析する方法3300を示す。生物は、本明細書に記載の任意の生物であり得る。尿サンプルは、正常細胞由来のおよび潜在的に癌に関連する細胞由来のDNAを含み得る。尿サンプル中の少なくとも一部のDNAは無細胞であり得る。
1つのミスマッチを有するリードの割合を使用して、浅い深度のシーケンシングを用いて腫瘍量を推定した。これを使用して、膀胱癌症例を正常な対照と区別することができる。尿路上皮癌は体細胞変異の蓄積を特徴とする。膀胱癌は、高い体細胞変異率(メガベースあたり約8変異)を有し得る(Glaser et al.,Nat.Rev.Urol.,2017)。膀胱癌患者における膀胱腫瘍に由来する尿中cfDNAは、参照ゲノムと比較してミスマッチを示す断片の割合が増加していてもよい。参照ゲノムと比較したミスマッチは、生殖細胞系列の変動、体細胞変異、またはシークエンシングエラーが原因で起こり得る。参照ゲノムと比較してミスマッチを有するリード数を評価できるが、ヒトゲノムの1倍カバレッジ未満での全ゲノムバイサルファイトシークエンシングは、体細胞変異を正確に同定するには不十分である。膀胱癌症例および対照由来の尿中cfDNAは、一般的な生殖細胞系の変動を抱えており、それは参照ゲノムに対するミスマッチとして検出することができる。これに加えて、膀胱癌症例における体細胞変異のより高い発生率は、ヒト参照ゲノムと比較して単一のミスマッチを有するより高い割合のリードに寄与し得る。
尿中細菌叢の研究は、尿路中の微生物が、尿路感染症の他に、泌尿器疾患と関連していることを提示した。ヒトゲノムにマッピングされていない配列決定されたcfDNAリードのメタゲノム解析を行った。マッピングされていないリードは、病原体に存在する1Mマーカー遺伝子の参照にマッピングされた。病原体は、約13,500の細菌性および古細菌性ゲノムならびに約3,500のウイルス性ゲノムを含み得、BSMapを用いてマッピングされ得る。サンプルあたり平均25,000個のリードをマーカー遺伝子参照にマッピングすることができた。Metaphlan2を使用して、豊富な種の表の中で異なる微生物からの寄与比率を同定した。
上記に示した特定の結果を得るために、特定の技術を以下に記載する。一例に使用されたそのような技術は、他の例にも使用することができる。
移植データは、尿サンプルを11人の腎移植患者と臨床的に安定した2人の造血幹細胞移植(HSCT)患者から採取した。尿サンプルはまた、腎結石を有する患者、および5人の膀胱癌患者から採取された。可能であれば早朝の尿サンプルは避けて、朝の来診中または手術前の朝に尿サンプルを採取した。前述したように、30~50mLの尿を単純滅菌ボトルに採取し、4℃で保存し、採取から1時間以内に処理した(12、23)。尿の無細胞部分を遠心分離および上清の濾過によって単離した。
DNAライブラリは、製造業者の説明書に従ってKAPA HTPライブラリ調製キット(Kapa Biosystems)を用いて最大500ngの尿中cfDNAで調製した(7)。75bpペアエンドモードを使用したIllumina HiSeq2500シーケンサーを使用して、バイサルファイトおよび非バイサルファイトDNAシークエンシングを前述のとおり実施した(24、25)。ベースコーリングおよび品質管理の後、データは、メチル化データ解析パイプラインMethy-Pipeにより処理された(26)。
尿中cfDNAの抽出および定量化のために、尿中cfDNAは、前述のように抽出して定量化した(11、12、23)。ほとんどのサンプルで30~50mLの尿、最大250mLがインビトロ培養実験に必要であった。手短に言えば、新鮮な尿を簡素な無菌ボトルに採取し、アリコートをSiemens Multistix10SGシステムを用いて試験し、Roche Cobas8000を用いてクレアチニン濃度についてアッセイした。残りの尿サンプルについて、pH8(Invitrogen)で0.5モル/LのEDTAを添加して10ミリモル/Lの最終EDTA濃度にし、ヌクレアーゼ活性を阻害した(9)。EDTAはエチレンジアミン四酢酸に相当する。
全ての腎移植およびHSCT患者のために、約250万のドナーとレシピエントのSNPを、メーカーのプロトコルに従って、Illumina Omni2.5SNPアレイを使用して検索した。ドナーおよびレシピエント生殖細胞系DNAは、バッフィーコート、口腔スワブ、または腎臓組織のいずれかから得た。これにより、移植症例ごとにドナーおよびレシピエントに固有のSNPを特定することができた。ドナーおよびレシピエント特異的対立遺伝子の知識を超並列シークエンシングの結果と組み合わせて使用して、尿中のドナーおよびレシピエント特異的cfDNA断片の割合を正確に確かめることが可能になった。
異なるヒト組織由来の全ゲノムバイサルファイトシークエンシングデータを用いて、メチル化デコンボリューション用の参照メチロームを構築した。正常サンプル中の尿中cfDNAの主要原因は、血球(血漿cfDNAの主要成分であり、腎臓後系でも放出される可能性がある)、腎臓、および尿路全体を覆った尿路上皮であろうと仮定した。好中球、B細胞、およびT細胞のための全ゲノムバイサルファイトシークエンシングデータは、公的に利用可能なリソース(Human Epigenome Atlas、www.genboree.org/epigenomeatlas/index.rhtml)、(28)から入手した。この研究を始めたとき、腎臓または尿路上皮に関して利用可能な全ゲノムのメチル化データはなかった。したがって、死体の腎移植症例由来の組織ならびに腎尿管摘出術および根治的膀胱摘出術を受けている患者由来の隣接正常組織を得ることによって独自の参照メチロームを構築した。腎臓参照は、6人の患者から得られた、皮質および髄質の腎臓組織からのバイサルファイトシークエンシングデータを使用して編集され、35倍の一倍体ゲノムカバレッジに配列決定された。尿路上皮参照は、40倍の一倍体ゲノムカバレッジに配列決定された6人の患者の尿管および膀胱から得られた尿路上皮を含む。膀胱癌参照は、根治的膀胱摘出術中に得られ、8.5倍の一倍体ゲノムカバレッジに配列決定された膀胱腫瘍に基づいた。
メチル化デコンボリューションの目的は、尿中cfDNA内の各組織の寄与比率を決定することであった。サンらにより記載されたようにメチル化デコンボリューションを行った(22)。簡潔に言うと、特定のマーカーで観察されたメチル化密度は、各組織からの寄与比率、および各組織中のそのマーカーのメチル化密度によって影響を受けた。
ゲノム全体のメチル化密度および1Mbビンによるコピー数は、8人の正常対照からの尿中cfDNAデータを用いて決定された。メチル化密度またはコピー数の有意な増加または減少は、正常対照の平均と比較して3を超えるzスコアとして定義された。全体的なメチル化密度およびコピー数変化は、circosプロットを使用して表した(35)。
図38は、本発明の一実施形態によるシステム3800を示す。示されたシステムは、サンプルホルダ3810内の無細胞DNA分子などのサンプル3805を含み、サンプル3805はアッセイ3808と接触して物理的特徴3815の信号を提供することができる。サンプルホルダの例は、アッセイのプローブおよび/もしくはプライマー、または液滴が(アッセイを含む液滴と共に)移動するチューブを含むフローセルであり得る。サンプルからの蛍光強度値などの物理的特徴3815は、検出器3820によって検出される。検出器は、データ信号を構成するデータ点を得るために、間隔(例えば、周期的な間隔)を空けて測定を行うことができる。一実施形態では、アナログデジタル変換器は、検出器からのアナログ信号をデジタル形式へと複数回変換する。データ信号3825は、検出器3820から論理システム3830へ送信される。データ信号3825は、ローカルメモリ3835、外部メモリ3840、または記憶装置3845に保存することができる。
X.参照
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Claims (23)
- 生物の生物学的サンプルを分析する方法であって、前記生物学的サンプルが尿サンプルであり、前記生物学的サンプルが複数の組織型からの無細胞DNA分子の混合物を含み、前記方法が、
Nが10以上の整数である、N個のゲノム部位を同定することと、
M個の組織型のそれぞれについて、
前記N個のゲノム部位でN個の組織特異的メチル化レベルを得ること、ここでNがM以上であり、前記組織特異的メチル化レベルがN×Mの寸法のマトリックスAを形成し、前記M個の組織型の第1の組織型が第1の臓器の第1の疾患に対応する第1の罹患組織型に対応し、ここで前記第1の罹患組織型が、癌性の尿路上皮細胞であり、ここで前記M個の組織型の第2の組織型が通常の尿路上皮であり、そしてここで前記M個の組織型の第3の組織型が、第1の臓器の第2の疾患に対応する第2の罹患組織型であり;
コンピュータシステムによって、前記生物学的サンプルからの複数の無細胞DNA分子を分析することであって、前記複数の無細胞DNA分子が少なくとも1,000個の無細胞DNA分子であり、前記無細胞DNA分子を分析することが、以下の:
前記生物に対応する参照ゲノム中の前記無細胞DNA分子の位置を同定することと、
前記N個のゲノム部位のうちのいずれか1つにそれぞれ位置する前記複数の無細胞DNA分子のセットを同定することと、
前記複数の無細胞DNA分子の前記セットを用いて、前記N個のゲノム部位のN個の混合物メチル化レベルを測定することと、
前記M個の組織型それぞれの前記N個の混合物メチル化レベルおよび前記N個の組織特異的メチル化レベルを使用して、前記コンピュータシステムによって、前記混合物中の前記第1の罹患組織型の第1の寄与度を決定することと、
前記生物内の前記第1の臓器の前記第1の疾患のレベルを決定するために、前記第1の罹患組織型の前記第1の寄与度を使用することと、を含む、方法。 - 前記方法が、
前記M個の組織型それぞれの前記N個の混合物メチル化レベルおよび前記N個の組織特異的メチル化レベルを使用して、前記コンピュータシステムによって、前記混合物中の前記第2の罹患組織型の第2の寄与度を決定することと、
前記生物内の前記第1の臓器についての前記第2の疾患のレベルを決定するために、前記第2の罹患組織型の前記第2の寄与度を使用することと、をさらに含む、請求項1に記載の方法。 - 前記M個の組織型のうちの第4の組織型が、第2の臓器の第3の疾患に対応する第3の罹患組織型に対応し、前記方法が、
前記M個の組織型それぞれの前記N個の混合物メチル化レベルおよび前記N個の組織特異的メチル化レベルを使用して、前記コンピュータシステムによって、前記混合物中の前記第2の罹患組織型の第2の寄与度を決定することと、
前記生物内の前記第2の臓器についての前記第3の疾患のレベルを決定するために、前記第3の罹患組織型の前記第2の寄与度を使用することと、をさらに含む、請求項1に記載の方法。 - 前記第1の臓器が膀胱である、請求項1に記載の方法。
- 前記第1の疾患が、膀胱癌である、請求項4に記載の方法。
- 前記第1の疾患のレベルが、当該膀胱癌が存在することである、請求項5に記載の方法。
- 前記第1の疾患が癌である、請求項1に記載の方法。
- 前記第1の疾患のレベルが、当該癌が存在することである、請求項7に記載の方法。
- 前記方法が、エチレンジアミン四酢酸(EDTA)を添加することによって前記尿サンプルを調製することをさらに含む、請求項1に記載の方法。
- 前記生物学的サンプル中の無細胞DNAおよび細胞DNAの寄与比率を決定することをさらに含む、請求項1に記載の方法。
- 前記N個のゲノム部位が閾値量未満の個体間変動を有する部位を含む、請求項1に記載の方法。
- 前記M個の組織型が、腎臓、好中球、B細胞、およびT細胞を含む、請求項1に記載の方法。
- 前記M個の組織型が、小腸を含む、請求項1に記載の方法。
- 前記N個のゲノム部位が、腫瘍尿路上皮生検の特定の割合で生じる示差的メチル化領域において生じる領域内の部位を含む、請求項1に記載の方法。
- 生物の第1の臓器についての第1の疾患のレベルを決定するため、第1疾患組織型の第1の寄与度を使用することが、第1の寄与度をカットオフ値と比較することを含む、請求項1に記載の方法。
- 前記M個の組織型の第4の組織型が、第2の臓器の第1の疾患に対応する第3の罹患組織型に対応し、ここで前記第2の臓器が第1の臓器ではない、請求項1に記載の方法。
- 前記第2の臓器が腎臓であり、そして前記第2の臓器の第1の疾患が、糸球体腎炎またはネフローゼ症候群である、請求項16に記載の方法。
- 前記第1の疾患が、非筋肉侵襲性癌であり、そして第2疾患が筋肉侵襲性癌である、請求項1に記載の方法。
- 請求項1~18のいずれか一項に記載の方法を実行するためのコンピュータシステムを制御するための複数の指令を格納するコンピュータ読み取り可能媒体を含むコンピュータ製品。
- 請求項19に記載のコンピュータ製品と;
前記コンピュータ読み取り可能媒体に格納された指示を実行するための1又は複数のプロセッサを含む、システム。 - 請求項1~18のいずれか一項に記載の方法を実行する手段を含むシステム。
- 請求項1~18のいずれか一項に記載の方法を実行するように構成されたシステム。
- 請求項1~18のいずれか一項に記載の方法のいずれかのステップをそれぞれ実行するモジュールを備えるシステム。
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