JP7450959B2 - 酵母菌およびそのエルゴチオネイン製造における用途 - Google Patents

酵母菌およびそのエルゴチオネイン製造における用途 Download PDF

Info

Publication number
JP7450959B2
JP7450959B2 JP2022074976A JP2022074976A JP7450959B2 JP 7450959 B2 JP7450959 B2 JP 7450959B2 JP 2022074976 A JP2022074976 A JP 2022074976A JP 2022074976 A JP2022074976 A JP 2022074976A JP 7450959 B2 JP7450959 B2 JP 7450959B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
fermentation
rpm
ergothioneine
vol
yeast
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
JP2022074976A
Other languages
English (en)
Other versions
JP2023101370A (ja
Inventor
リーチン ヂョウ
ティン シィァン
メイシュェ ヤン
ウェンシュ ポン
チェングゥァン シン
ガン リィゥ
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Xiamen Oamic Biotechnology Co Ltd
Original Assignee
Xiamen Oamic Biotechnology Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Xiamen Oamic Biotechnology Co Ltd filed Critical Xiamen Oamic Biotechnology Co Ltd
Publication of JP2023101370A publication Critical patent/JP2023101370A/ja
Application granted granted Critical
Publication of JP7450959B2 publication Critical patent/JP7450959B2/ja
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14—Fungi; Culture media therefor
    • C12N1/16—Yeasts; Culture media therefor
    • C12N1/165—Yeast isolates
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00—Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04—Alpha- or beta- amino acids
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/02—Separating microorganisms from their culture media
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14—Fungi; Culture media therefor
    • C12N1/16—Yeasts; Culture media therefor
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14—Fungi; Culture media therefor
    • C12N1/16—Yeasts; Culture media therefor
    • C12N1/18—Baker's yeast; Brewer's yeast
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14—Fungi; Culture media therefor
    • C12N1/16—Yeasts; Culture media therefor
    • C12N1/18—Baker's yeast; Brewer's yeast
    • C12N1/185—Saccharomyces isolates
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/01—Preparation of mutants without inserting foreign genetic material therein; Screening processes therefor
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00—Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04—Alpha- or beta- amino acids
    • C12P13/24—Proline; Hydroxyproline; Histidine
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P17/00—Preparation of heterocyclic carbon compounds with only O, N, S, Se or Te as ring hetero atoms
    • C12P17/10—Nitrogen as only ring hetero atom
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/005—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor after treatment of microbial biomass not covered by C12N1/02 - C12N1/08
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/645—Fungi ; Processes using fungi
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/645—Fungi ; Processes using fungi
    • C12R2001/85—Saccharomyces
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

CCTCC CCTCC M 20211505
本発明は、バイオテクノロジー分野に関する。具体的には、酵母菌およびそのエルゴチ
オネイン製造における用途に関する。
エルゴチオネイン（Ｅｒｇｏｔｈｉｏｎｅｉｎｅ）は、天然に存在するアミノ酸であり
、ヒスチジンのチオ尿素誘導体であり、イミダゾール環上に硫黄原子を１つ含有する。エ
ルゴチオネインは、１９０９年に、Ｍ．Ｃ．Ｔａｎｒｅｔがライ麦麦角菌（学名：Ｃｌａ
ｖｉｃｅｐｓ ｐｕｒｐｕｒｅａ）から単離して発見し、最初に精製された麦角菌にちな
んで名付けられた。その構造は、１９１１年に確定された。エルゴチオネインは、水に溶
けやすい水溶性物質であり、優れた熱安定性およびｐＨ安定性を有する。エルゴチオネイ
ンは、強力な抗酸化活性を有する天然物質であり、酸性（ｐＨ２）からアルカリ性（ｐＨ
１２）までの条件の影響をほとんど受けないという特性を有する。ヒトでは、エルゴチオ
ネインは、食物からしか得ることができず、赤血球、骨髄、肝臓、腎臓、精液および目の
中に蓄積される。
キノコなどの担子菌や一部の細菌は、エルゴチオネインを生合成できる。キノコは、エ
ルゴチオネインを豊富に含む食品である。エルゴチオネインは、ヒラタケにおける含有量
が特に豊富である。放線菌（例えば、マイコバクテリウム・スメグマチス）や一部の真菌
（例えばアカパンカビ）も、エルゴチオネインを生合成可能である。エルゴチオネインの
代謝経路は、ヒスチジンのメチル化から始まり、ヘルシニンを生成した後、システインか
ら硫黄原子を導入して、エルゴチオネインを得る。枯草菌、大腸菌、プロテウス・ブルガ
リスおよびレンサ球菌などの他の種類の細菌、ならびに酵母菌中の真菌は、エルゴチオネ
インを生合成することができない。
従来、エルゴチオネインの製造方法には、化学合成法、抽出法および生物発酵合成法の
３種がある。本発明を実現する過程において、発明者は、従来技術において少なくとも次
の課題が存在することを見出した。化学方法で、Ｌ－エルゴチオネインを合成することは
非常に難しく、その難点は、原料２－メルカプトイミダゾールの製造であり、かつα炭素
の酸性が反応を容易にし、一部または全部のラセミ化を発生させることである。原料が高
価であり、合成コストが高いため、製品の販売価格が高くなり、エルゴチオネインの用途
を限られたものとしている。天然生物抽出法は、食用菌の子実体、ブタの血、動物組織、
麦角および穀物からエルゴチオネインを抽出するものであるが、上記原料におけるエルゴ
チオネインの含有量は低く、原料の不純物が多く、薬物が残留し、抽出コストが高い等の
問題があり、エルゴチオネインの産業化に不利である。キノコ菌糸体深層発酵技術でエル
ゴチオネインを生物学的に製造することは、低コストでエルゴチオネインを大量生産する
主流の方向であり、代謝調節等の発酵過程制御手段によって、エルゴチオネインの収率を
効果的に高め、生産コストを下げることができる。より重要なことは、製品の安全性を保
証することができ、エルゴチオネインの用途を拡大できることである。しかしながら、キ
ノコ菌糸体深層発酵技術によるエルゴチオネインの生産は、発酵周期が長く、最大生産量
は１３５．７ｍｇ／Ｌでしかない（ジィァン ウェンシァ，リィゥ チー，ヂョウ タオ
。エルゴチオネインの菌株生産およびエルゴチオネインの製造方法［Ｐ］．ＣＮ２０１２
１０３９２４１７．８）。これまで、天然エルゴチオネインの大規模な生合成は、依然と
して産業において実現することができなかった。
そのため、コストが低く、生産量が高く、発酵周期が短い天然エルゴチオネインの製造
方法が望まれている。
上記問題を解決するため、本願は、酵母菌およびその用途を提供する。
第１の態様として、本願は、従来の変異誘発およびスクリーニングにより得られ、受託
番号がＣＣＴＣＣ Ｍ ２０２１１５０５であり、菌株がすでに２０２１年１１月２９日
に中国培養細胞系統保存機関（ＣＣＴＣＣ，武漢大学）に保存されており、分類が分裂酵
母（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｐｏｍｂｅ）と命名されている酵母菌を
提供する。前記酵母菌は、いずれもエルゴチオネインの製造に用いることができ、収率が
高く、コストが低く、製造速度が速い等の長所を有する。
第２の態様として、本願は、エルゴチオネインの製造方法を提供する。前記エルゴチオ
ネインの製造方法は、次のことを含む。前記酵母菌を、発酵培地および任意選択の基質と
混合し、発酵させた後、細胞を破砕、単離し、エルゴチオネインを得る。前記酵母菌は、
エルゴチオネインの製造に用いることができ、それを用いてエルゴチオネインを製造する
ことは、得られるエルゴチオネインの収率が高く、コストが低く、製造速度が速いという
長所を有する。前記製造方法は、コストが低く、環境に配慮し、製品の品質が高く、収率
が高く、不純物が少なく、薬物残留が少なく、発酵周期が短い等の長所を有する。
第３の態様として、本願は、前記製造方法を採用して得られるエルゴチオネインを提供
する。前記エルゴチオネインは、不純物が少なく、薬物残留が少なく、不純物および化学
残留が少なく、製品の品質が高い。
第４の態様として、本願は、エルゴチオネインの製造における、第１の態様に記載の酵
母菌の用途を提供する。
発明の詳細な説明
上記課題を解決するため、本願は、次の技術手法を提供する。
第１の態様では、酵母菌を提供する。
受託番号がＣＣＴＣＣ Ｍ ２０２１１５０５であり、菌株がすでに２０２１年１１月
２９日に中国培養細胞系統保存機関（ＣＣＴＣＣ，武漢大学）に保存されており、分類が
分裂酵母（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｐｏｍｂｅ）と命名されている酵
母菌。
一実施形態において、天然エルゴチオネインを大規模に生合成可能な酵母菌を提供する
。本願は、主に、複合変異誘発育種によって、天然エルゴチオネインを多く生成する酵母
菌種を選定し、そのうち好ましい株をＯＭＫ－７９と命名した。この酵母菌株は、すでに
２０２１年１１月２９日に中国培養細胞系統保存機関（ＣＣＴＣＣ，武漢大学）に保存さ
れており、分類は分裂酵母（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｐｏｍｂｅ）と
命名されており、受託番号はＣＣＴＣＣ Ｍ ２０２１１５０５である。
第２の態様では、エルゴチオネインの製造方法を提供する。
次のことを含むエルゴチオネインの製造方法。第１の態様に記載の酵母菌を、発酵培地
および任意選択の基質と混合し、発酵させた後、細胞を破砕、単離し、エルゴチオネイン
を得る。いくつかの実施形態において、エルゴチオネインの製造方法は、次のことを含む
。第１の態様に記載の酵母菌を、種子液培地に接種して拡大培養し、種子液を得て、種子
液を、発酵培地および任意選択の基質と混合し、発酵させた後、細胞を破砕、単離し、エ
ルゴチオネインを得る。いくつかの実施形態において、エルゴチオネインの製造方法は、
次のことを含む。第１の態様に記載の酵母菌を活性化し、活性化酵母菌含有培地を得て、
活性化酵母菌含有培地を種子液培地に接種して拡大培養し、種子液を得て、種子液を、発
酵培地および任意選択の基質と混合し、発酵させた後、細胞を破砕、単離し、エルゴチオ
ネインを得る。
前記活性化は、第１の態様に記載の酵母菌を活性化培地に接種し、２０℃～４０℃、回
転速度１００ｒｐｍ～４００ｒｐｍの条件下で１６時間～６０時間増殖させることを含む
。いくつかの実施例において、前記活性化は、第１の態様に記載の酵母菌を活性化培地に
接種し、２５℃～３５℃、回転速度１５０ｒｐｍ～３００ｒｐｍの条件下で２４時間～４
８時間増殖させることを含む。
前記活性化培地は、酵母エキス、ペプトンおよびグルコースを含んでよい。いくつかの
実施例において、前記活性化培地は、酵母エキス３ｇ／Ｌ～３０ｇ／Ｌ、ペプトン３ｇ／
Ｌ～３０ｇ／Ｌおよびグルコース５ｇ／Ｌ～５０ｇ／Ｌを含む。いくつかの実施例におい
て、前記活性化培地は、酵母エキス３ｇ／Ｌ～３０ｇ／Ｌ、ペプトン３ｇ／Ｌ～３０ｇ／
Ｌおよびグルコース５ｇ／Ｌ～５０ｇ／Ｌを含み、残部は水である。いくつかの実施例に
おいて、前記活性化培地は、酵母エキス１０ｇ／Ｌ、ペプトン１０ｇ／Ｌおよびグルコー
ス２０ｇ／Ｌを含む。いくつかの実施例において、前記活性化培地は、酵母エキス１０ｇ
／Ｌ、ペプトン１０ｇ／Ｌおよびグルコース２０ｇ／Ｌを含み、残部は水である。
前記拡大培養の温度は、２０℃～４０℃であってよい。いくつかの実施例において、前
記拡大培養の温度は、２５℃～３５℃である。いくつかの実施例において、前記拡大培養
の温度は、２５℃～３０℃である。いくつかの実施例において、前記拡大培養の温度は、
２５℃、２６℃、２７℃、２８℃、２９℃、３０℃、３１℃、３２℃、３３℃、３４℃ま
たは３５℃である。
前記拡大培養の回転速度は、１００ｒｐｍ～９００ｒｐｍであってよい。いくつかの実
施例において、前記拡大培養の回転速度は、１５０ｒｐｍ～６００ｒｐｍである。いくつ
かの実施例において、前記拡大培養の回転速度は、２００ｒｐｍ～５００ｒｐｍである。
いくつかの実施例において、前記拡大培養の回転速度は、１００ｒｐｍ、１５０ｒｐｍ、
２００ｒｐｍ、２５０ｒｐｍ、３００ｒｐｍ、３５０ｒｐｍ、４００ｒｐｍ、４５０ｒｐ
ｍ、５００ｒｐｍ、５５０ｒｐｍ、６００ｒｐｍ、７００ｒｐｍ、８００ｒｐｍまたは９
００ｒｐｍである。
前記拡大培養の時間は、１６時間～２００時間であってよい。いくつかの実施例におい
て、前記拡大培養の時間は、１６時間～１００時間である。いくつかの実施例において、
前記拡大培養の時間は、１６時間～５０時間である。いくつかの実施例において、前記拡
大培養の時間は、１６時間～４８時間である。いくつかの実施例において、前記拡大培養
の時間は、１６時間、１７時間、１８時間、１９時間、２０時間、２１時間、２２時間、
２３時間、２４時間、３０時間、３５時間、４０時間、４５時間または４８時間である。
前記拡大培養は、活性化酵母菌含有培地を、０．００５％ｖｏｌ～３０％ｖｏｌ接種量
で種子液培地に接種することを含む。拡大培養の接種量は、大きな範囲で調整することが
でき、極めて少量の接種量でも拡大培養を成功させることができ、これは本分野の技術の
常識であるため、前記拡大培養は、活性化酵母菌含有培地を０．００５％ｖｏｌ～３０％
ｖｏｌの接種量で種子液培地に接種することを含んでよい。いくつかの実施例において、
前記拡大培養は、活性化酵母菌含有培地を０．５％ｖｏｌ～２０％ｖｏｌの接種量で種子
液培地に接種することを含む。いくつかの実施例において、前記拡大培養は、活性化酵母
菌含有培地を１％ｖｏｌ～１０％ｖｏｌの接種量で種子液培地に接種することを含む。い
くつかの実施例において、前記拡大培養は、活性化酵母菌含有培地を１％ｖｏｌ～５％ｖ
ｏｌの接種量で種子液培地に接種することを含む。いくつかの実施例において、前記拡大
培養は、活性化酵母菌含有培地を１％ｖｏｌ、２％ｖｏｌ、３％ｖｏｌ、４％ｖｏｌ、５
％ｖｏｌ、６％ｖｏｌ、７％ｖｏｌ、８％ｖｏｌ、９％ｖｏｌ、１０％ｖｏｌ、１５％ｖ
ｏｌ、２０％ｖｏｌ、２５％ｖｏｌまたは３０％ｖｏｌの接種量で種子液培地に接種する
ことを含む。
前記種子液と発酵培地の体積比は、１：２００～３：１０であってよい。いくつかの実
施例において、前記種子液と発酵培地の体積比は、１：１５０～２：１０である。いくつ
かの実施例において、前記種子液と発酵培地の体積比は、１：１００～１：１０である。
いくつかの実施例において、前記種子液と発酵培地の体積比は、１：１００～１：２０で
ある。
前記基質の添加量は、０～１０ｇ／Ｌであってよく、酵母菌は、アルギニン、ヒスチジ
ン、メチオニンまたはシステイン等の物質を代謝生成することができるが、基質を追加す
ることにより、エルゴチオネインの収率を高めることができる。いくつかの実施例におい
て、前記基質の添加量は、０、０．５ｇ／Ｌ、０．６ｇ／Ｌ、０．７ｇ／Ｌ、０．８ｇ／
Ｌ、０．９ｇ／Ｌ、１．０ｇ／Ｌ、１．２ｇ／Ｌ、１．３ｇ／Ｌ、１．４ｇ／Ｌ、１．５
ｇ／Ｌ、２．０ｇ／Ｌ、２．５ｇ／Ｌ、３．０ｇ／Ｌ、３．２ｇ／Ｌ、３．５ｇ／Ｌ、４
．０ｇ／Ｌ、４．５ｇ／Ｌ、５．０ｇ／Ｌ、５．５ｇ／Ｌ、６．０ｇ／Ｌ、６．５ｇ／Ｌ
、７．０ｇ／Ｌ、７．５ｇ／Ｌ、８．０ｇ／Ｌ、８．５ｇ／Ｌ、９．０ｇ／Ｌ、９．５ｇ
／Ｌまたは１０．０ｇ／Ｌである。
前記基質は、アルギニン、ヒスチジン、メチオニンまたはシステインから選ばれる少な
くとも１種を含んでよい。いくつかの実施例において、前記基質は、アルギニン、ヒスチ
ジン、メチオニンおよびシステインから選ばれるものを含んでよい。
前記発酵培地は、炭素源を含んでよい。
前記炭素源は、スクロース、フルクトース、キシロース、エタノール、メタノール、グ
リセロール、グルコース、セルロース、デンプン、セロビオースまたはその他のグルコー
ス含有ポリマーから選ばれる少なくとも１種を含んでよい。いくつかの実施例において、
前記炭素源は、グリセロールである。
いくつかの実施例において、前記製造方法は、第１の態様に記載の酵母菌を、発酵培地
および任意選択の基質と混合し、好適な培養条件下で増殖させることを含む。酵母菌は、
回分発酵、単一流加発酵、混合流加発酵もしくは連続発酵またはその組み合わせにおいて
増殖させてよい。
いくつかの実施例において、前記基質は、第１の態様に記載の酵母菌の潜伏期、指数関
数的増殖期または静止期に発酵システムに加えてよい。
前記第１の態様に記載の酵母菌は、発酵培地において、懸濁していても、固定化してい
てもよい。
前記発酵培地は、リン酸、ＣａＳＯ４、Ｋ２ＳＯ４、ＫＯＨ、ＭｇＳＯ４・７Ｈ２Ｏ、
グリセロール、酵母エキス、ペプトン、消泡油および無菌水を含んでよい。いくつかの実
施例において、前記発酵培地は、１％ｖｏｌ～７％ｖｏｌのリン酸、０．０３ｗｔ％～０
．３ｗｔ％のＣａＳＯ４、１ｗｔ％～６ｗｔ％のＫ２ＳＯ４、０．１ｗｔ％～２ｗｔ％の
ＫＯＨ、０．５ｗｔ％～５ｗｔ％のＭｇＳＯ４・７Ｈ２Ｏ、１ｗｔ％～１２ｗｔ％のグリ
セロール、０．１ｗｔ％～２ｗｔ％の酵母エキス、０．１ｗｔ％～２ｗｔ％のペプトン、
０．０１％ｖｏｌ～１％ｖｏｌの消泡油を含み、残部は水である。いくつかの実施例にお
いて、前記発酵培地は、２．２７％ｖｏｌのリン酸、０．０９３ｗｔ％のＣａＳＯ４、１
．８２ｗｔ％のＫ２ＳＯ４、０．４１３ｗｔ％のＫＯＨ、１．４９ｗｔ％のＭｇＳＯ４・
７Ｈ２Ｏ、４ｗｔ％のグリセロール、０．５ｗｔ％の酵母エキス、０．５ｗｔ％のペプト
ン、０．１％ｖｏｌの消泡油を含み、残部は水である。
前記種子液培地は、酵母エキス、ペプトンおよびグルコースを含んでよい。いくつかの
実施例において、前記種子液培地は、酵母エキス３ｇ／Ｌ～３０ｇ／Ｌ、ペプトン３ｇ／
Ｌ～３０ｇ／Ｌおよびグルコース５ｇ／Ｌ～５０ｇ／Ｌを含む。いくつかの実施例におい
て、前記種子液培地は、酵母エキス３ｇ／Ｌ～３０ｇ／Ｌ、ペプトン３ｇ／Ｌ～３０ｇ／
Ｌおよびグルコース５ｇ／Ｌ～５０ｇ／Ｌを含み、残部は水である。いくつかの実施例に
おいて、前記種子液培地は、酵母エキス１０ｇ／Ｌ、ペプトン１０ｇ／Ｌおよびグルコー
ス２０ｇ／Ｌを含む。いくつかの実施例において、前記種子液培地は、酵母エキス１０ｇ
／Ｌ、ペプトン１０ｇ／Ｌおよびグルコース２０ｇ／Ｌを含み、残部は水である。
前記発酵の温度は、２０℃～４０℃であってよい。いくつかの実施例において、前記発
酵の温度は、２５℃～３５℃である。いくつかの実施例において、前記発酵の温度は、２
５℃～３０℃である。いくつかの実施例において、前記発酵の温度は、２５℃、２６℃、
２７℃、２８℃、２９℃、３０℃、３１℃、３２℃、３３℃、３４℃または３５℃である
。
前記発酵の時間は、１６時間～２００時間であってよい。一般に、培養時間が長いほど
、より大量の天然エルゴチオネインが生成される。そのため、酵母菌を１６時間から２０
０時間培養してよい。いくつかの実施例において、前記発酵の時間は、２４時間～２００
時間であってよい。いくつかの実施例において、前記発酵の時間は、４８時間～２００時
間であってよい。いくつかの実施例において、前記発酵の時間は、１００時間～２００時
間であってよい。いくつかの実施例において、前記発酵の時間は、１４０時間～２００時
間であってよい。
前記発酵の空気の流速は、０．８Ｌ／分～８Ｌ／分であってよい。いくつかの実施例に
おいて、前記発酵の空気の流速は、１Ｌ／分～７Ｌ／分である。いくつかの実施例におい
て、前記発酵の空気の流速は、２Ｌ／分～６Ｌ／分である。いくつかの実施例において、
前記発酵の空気の流速は、３Ｌ／分～５Ｌ／分である。いくつかの実施例において、前記
発酵の空気の流速は、１Ｌ／分、２Ｌ／分、３Ｌ／分、４Ｌ／分、５Ｌ／分、６Ｌ／分、
７Ｌ／分または８Ｌ／分である。
前記発酵のガス圧は、０～０．６ＭＰａであってよい。いくつかの実施例において、前
記発酵のガス圧は、０．０５ＭＰａ～０．６ＭＰａである。いくつかの実施例において、
前記発酵のガス圧は、０．０６ＭＰａ～０．５０ＭＰａである。いくつかの実施例におい
て、前記発酵のガス圧は、０．０７ＭＰａ～０．４０ＭＰａである。いくつかの実施例に
おいて、前記発酵のガス圧は、０．０７ＭＰａ～０．３０ＭＰａである。いくつかの実施
例において、前記発酵のガス圧は、０．０７ＭＰａ～０．２０ＭＰａである。いくつかの
実施例において、前記発酵のガス圧は、０．０７ＭＰａ～０．１０ＭＰａである。いくつ
かの実施例において、前記発酵のガス圧は、０．０５ＭＰａ、０．０６ＭＰａ、０．０７
ＭＰａ、０．０８ＭＰａ、０．０９ＭＰａ、０．１０ＭＰａ、０．１５ＭＰａ、０．２０
ＭＰａ、０．２５ＭＰａ、０．３０ＭＰａ、０．３５ＭＰａまたは０．４０ＭＰａである
。
前記発酵の発酵システムｐＨは、４．０～７．０であってよい。いくつかの実施例にお
いて、前記発酵の発酵システムｐＨは、４．０、４．５、５．０、５．５、６．０、６．
５または７．０である。
前記発酵システムｐＨは、アンモニア水を添加することにより調節することができる。
いくつかの実施例において、前記発酵システムとは、前記酵母菌を基質および培地と混
合した後に形成されるシステムをいう。いくつかの実施例において、発酵システムは、基
質を加える前に、前記酵母菌を培地と混合した後に形成されるシステムである。いくつか
の実施例において、発酵システムは、前記酵母菌を培地と混合した後に形成されるシステ
ムである。
前記発酵の初期撹拌速度は、１００ｒｐｍ～９００ｒｐｍであってよい。いくつかの実
施例において、前記発酵の初期撹拌速度は、１５０ｒｐｍ～６００ｒｐｍである。いくつ
かの実施例において、前記発酵の初期撹拌速度は、２００ｒｐｍ～５００ｒｐｍである。
いくつかの実施例において、前記発酵の初期撹拌速度は、１００ｒｐｍ、１５０ｒｐｍ、
２００ｒｐｍ、２５０ｒｐｍ、３００ｒｐｍ、３５０ｒｐｍ、４００ｒｐｍ、４５０ｒｐ
ｍ、５００ｒｐｍ、５５０ｒｐｍ、６００ｒｐｍ、７００ｒｐｍ、８００ｒｐｍまたは９
００ｒｐｍである。
発酵ステップにおいて、溶存酸素量が５０％に低下するまで発酵したときに、グリセロ
ールを補い、初期撹拌速度に加えて１００ｒｐｍ～６００ｒｐｍ（例えば、１００ｒｐｍ
、１５０ｒｐｍ、２００ｒｐｍ、２５０ｒｐｍ、３００ｒｐｍ、３５０ｒｐｍ、４００ｒ
ｐｍ、４５０ｒｐｍ、５００ｒｐｍ、５５０ｒｐｍまたは６００ｒｐｍ）増加を続けるよ
う撹拌速度を増加し、グリセロールを持続的に補い、測定した湿重量生物量が３０ｇ／Ｌ
～３００ｇ／Ｌ（例えば３０ｇ／Ｌ、５０ｇ／Ｌ、１００ｇ／Ｌ、１５０ｇ／Ｌ、１８０
ｇ／Ｌ、１９０ｇ／Ｌ、２００ｇ／Ｌ、２１０ｇ／Ｌ、２２０ｇ／Ｌ、２５０ｇ／Ｌまた
は３００ｇ／Ｌ）に達するまで撹拌速度の増加を維持してよい。いくつかの実施例におい
て、発酵ステップにおいて、溶存酸素量が５０％に低下するまで発酵したときに、基質を
加え、グリセロールを補い、初期撹拌速度に加えて１００ｒｐｍ～６００ｒｐｍ増加を続
けるよう撹拌速度を増加し、グリセロールを持続的に補い、測定した湿重量生物量が３０
ｇ／Ｌ～３００ｇ／Ｌに達するまで撹拌速度の増加を維持してよい。
前記グリセロールを補う量は、２０ｇ／Ｌ～２２０ｇ／Ｌであってよい。いくつかの実
施例において、前記グリセロールを補う量は、２０ｇ／Ｌ、３０ｇ／Ｌ、４０ｇ／Ｌ、５
０ｇ／Ｌ、６０ｇ／Ｌ、７０ｇ／Ｌ、７５ｇ／Ｌ、８０ｇ／Ｌ、９０ｇ／Ｌ、１００ｇ／
Ｌ、１１０ｇ／Ｌ、１２０ｇ／Ｌ、１３０ｇ／Ｌ、１４０ｇ／Ｌ、１５０ｇ／Ｌ、１６０
ｇ／Ｌ、１７０ｇ／Ｌ、１８０ｇ／Ｌ、１９０ｇ／Ｌ、２００ｇ／Ｌまたは２２０ｇ／Ｌ
である。
前記単離ステップは、遠心分離、抽出、真空蒸留または樹脂吸着等を採用して単離およ
び精製を行ってよい。いくつかの実施例において、前記単離ステップは、抽出、真空蒸留
または樹脂吸着等を採用して単離および精製を行い、均質（例えば純度９０％以上）のエ
ルゴチオネインを得ることを含む。いくつかの実施例において、エルゴチオネインは、酵
母菌の抽出物に単離され、この場合、エルゴチオネインは、単離することができるが、均
質になるまで精製する必要はない。
いくつかの実施例において、エルゴチオネインの製造方法は、次のことを含む。第１の
態様に記載の酵母菌を、発酵培地および任意選択の基質と混合し、発酵温度２０℃～４０
℃、空気の流速０．８Ｌ／分～８Ｌ／分、ガス圧０～０．６ＭＰａ、ｐＨ４．０～７．０
、撹拌速度１００ｒｐｍ～９００ｒｐｍの条件下で発酵させ、溶存酸素量が５０％に低下
するまで発酵したときに、グリセロールを補い、初期撹拌速度に加えて１００ｒｐｍ～６
００ｒｐｍ増加を続けるよう撹拌速度を増加し、グリセロールを持続的に補い、測定した
湿重量生物量が２００ｇ／Ｌに達するまで撹拌速度の増加を維持する。次いで、細胞を破
砕、単離し、エルゴチオネインを得る。前記基質は、アルギニン、ヒスチジン、メチオニ
ンまたはシステインから選ばれる少なくとも１種を含む。前記発酵培地は、１％ｖｏｌ～
７％ｖｏｌのリン酸、０．０３ｗｔ％～０．３ｗｔ％のＣａＳＯ４、１ｗｔ％～６ｗｔ％
のＫ２ＳＯ４、０．１ｗｔ％～２ｗｔ％のＫＯＨ、０．５ｗｔ％～５ｗｔ％のＭｇＳＯ４
・７Ｈ２Ｏ、１ｗｔ％～１２ｗｔ％のグリセロール、０．１ｗｔ％～２ｗｔ％の酵母エキ
ス、０．１ｗｔ％～２ｗｔ％のペプトン、０．０１％ｖｏｌ～１％ｖｏｌの消泡油を含み
、残部は水である。
いくつかの実施例において、エルゴチオネインの製造方法は、次のことを含む。第１の
態様に記載の酵母菌を種子液培地に接種して拡大培養し、種子液を得て、種子液を、発酵
培地および任意選択の基質と混合し、発酵温度２０℃～４０℃、空気の流速０．８Ｌ／分
～８Ｌ／分、ガス圧０～０．６ＭＰａ、ｐＨ４．０～７．０、撹拌速度１００ｒｐｍ～９
００ｒｐｍの条件下で発酵させ、溶存酸素量が５０％に低下するまで発酵したときに、グ
リセロールを補い、初期撹拌速度に加えて１００ｒｐｍ～６００ｒｐｍ増加を続けるよう
撹拌速度を増加し、グリセロールを持続的に補い、測定した湿重量生物量が２００ｇ／Ｌ
に達するまで撹拌速度の増加を維持する。次いで、細胞を破砕、単離し、エルゴチオネイ
ンを得る。前記基質は、アルギニン、ヒスチジン、メチオニンまたはシステインから選ば
れる少なくとも１種を含む。前記発酵培地は、１％ｖｏｌ～７％ｖｏｌのリン酸、０．０
３ｗｔ％～０．３ｗｔ％のＣａＳＯ４、１ｗｔ％～６ｗｔ％のＫ２ＳＯ４、０．１ｗｔ％
～２ｗｔ％のＫＯＨ、０．５ｗｔ％～５ｗｔ％のＭｇＳＯ４・７Ｈ２Ｏ、１ｗｔ％～１２
ｗｔ％のグリセロール、０．１ｗｔ％～２ｗｔ％の酵母エキス、０．１ｗｔ％～２ｗｔ％
のペプトン、０．０１％ｖｏｌ～１％ｖｏｌの消泡油を含み、残部は水である。
いくつかの実施例において、エルゴチオネインの製造方法は、次のことを含む。第１の
態様に記載の酵母菌を活性化し、活性化酵母菌含有培地を得て、活性化酵母菌含有培地を
種子液培地に接種して拡大培養し、種子液を得て、種子液を、発酵培地および任意選択の
基質と混合し、発酵温度２０℃～４０℃、空気の流速０．８Ｌ／分～８Ｌ／分、ガス圧０
～０．６ＭＰａ、ｐＨ４．０～７．０、撹拌速度１００ｒｐｍ～９００ｒｐｍの条件下で
発酵させ、溶存酸素量が５０％に低下するまで発酵したときに、グリセロールを補い、初
期撹拌速度に加えて１００ｒｐｍ～６００ｒｐｍ増加を続けるよう撹拌速度を増加し、グ
リセロールを持続的に補い、測定した湿重量生物量が２００ｇ／Ｌに達するまで撹拌速度
の増加を維持する。次いで、細胞を破砕、単離し、エルゴチオネインを得る。
第３の態様では、第２の態様により得られるエルゴチオネインを提供する。
第２の態様に記載の製造方法により得られるエルゴチオネイン。第２の態様に記載の製
造方法により得られるエルゴチオネインは、不純物が少なく、薬物残留が少なく、不純物
および化学残留が少なく、製品の品質が高い。
第４の態様では、エルゴチオネインの製造における、第１の態様に記載の酵母菌の用途
を提供する。
エルゴチオネインの製造における、第１の態様に記載の酵母菌の用途。
有益な効果
従来技術と比べ、上記技術手法の一実施例は、少なくとも次の有益な技術的効果のうち
１種を含む。
（１）本願で提供する酵母菌は、エルゴチオネインの製造に用いることができ、得られ
るエルゴチオネインは収率が高く、コストが低く、製造速度が速く、優れた産業化の前途
を有する。
（２）本願で提供する酵母菌は、継代可能回数が多く、継代後の収率安定性が良好であ
る。
（３）本願で提供するエルゴチオネインの製造方法は、生物発酵合成の方法を採用し、
化学合成等の方法と比べ、高価な原料を必要とせず、コストの大幅な削減に有利であり、
製造過程における有毒・有害な化学試薬の使用を大幅に減少させることができ、環境に配
慮し、製品の不純物および化学残留の削減に有利であり、製品の品質向上に有利である。
（４）本願で提供するエルゴチオネインの製造方法は、他の天然生物抽出法と比べ、収
率が高く、不純物が少なく、薬物残留が少なく、製造コストが低い等の長所を有する。
（５）本願で提供するエルゴチオネインの製造方法は、他の発酵技術と比べ、発酵周期
が短く、収率が高く、コストが低いという長所を有し、量産に有利である。
（６）本願で提供する製造方法によって、有機溶媒および有毒・有害な試薬を加える必
要がなく、生物発酵の方法によって製造するものであり、得られるエルゴチオネインは、
天然、安全で、環境に配慮し、有機溶媒の残留がない。
実施例１におけるエルゴチオネインの合成の模式図である。 実施例１におけるエルゴチオネイン標準品の高速液体クロマトグラムである。 実施例１におけるＭＭ１菌株の発酵液の高速液体クロマトグラムである。図２と対比し、図３にはエルゴチオネインが存在することを証明できる。 実施例３における天然エルゴチオネインの合成の模式図である。
用語の定義
本文の上文において、「おおよそ」または「約」等の表現を使用しているかどうかにか
かわらず、この開示の数字はすべて近似値である。開示されている数字に基づき、それぞ
れの数字の数値には、±１％、±２％、±３％、±４％または±５％の差異など、±１０
％以下の差異または当業者が合理的と認める差異が表れることがある。
「および／または」という用語は、選択肢におけるいずれか１つまたは選択肢における
いずれか２つもしくは複数の組み合わせを意味すると理解すべきである。
「任意選択」、「任意選択の」または「任意選択で」という用語は、その後に記載され
る事由または状況が、かならずしも現れないことを意味する。例えば「第１の態様に記載
の酵母菌を、発酵培地および任意選択の基質と混合」とは、「第１の態様に記載の酵母菌
を、発酵培地および基質と混合」または「第１の態様に記載の酵母菌を、発酵培地と混合
」することをいう。
「接種量」という用語は、活性化酵母菌含有培地の体積が接種後の種子液培地および活
性化酵母菌の培地の総体積に占める体積パーセント、または種子液を発酵培地に接種した
後、種子液の体積が種子液および発酵培地の総体積に占める体積パーセントをいう。
「ＯＤ６００」という用語は、測定した６００ｎｍ波長における光学密度をいう。
「ｗｔ％」という用語は、質量パーセントをいう。
「％ｖｏｌ」という用語は、体積パーセントをいう。
「ＳＡＭ」という用語は、Ｓ－アデノシルメチオニンをいい、菌体細胞内で天然に存在
する中間代謝生成物である。
「ＳＡＨ」という用語は、Ｓ－アデノシルホモシステインをいい、ＳＡＭから脱メチル
化した後に生成され、菌体細胞内で天然に存在する中間代謝物質である。
本明細書の記述において、「１つの実施例」、「いくつかの実施例」、「例」、「具体
例」、または「いくつかの例」などの用語を参照した記述は、この実施例または例を組み
合わせて記述された具体的な特徴、構造、材料または特長が、本文の少なくとも１つの実
施例または例に含まれていることをいう。本明細書において、上記用語の模式的な記載は
、必ずしも同じ実施例または例に対するものではない。さらに、記載された具体的な特徴
、構造、材料または特長は、いずれか１つまたは複数の実施例または例を適切な方式で組
み合わせてもよい。また、互いに矛盾しない場合には、当業者は、本明細書に記載された
異なる実施例または例および異なる実施例または例の特徴を結合し組み合わせてもよい。
当業者が本文の技術手法をよりよく理解することができるようにするため、次に、非制
限的な実施例をさらに開示し、本文についてさらに詳細に説明する。
本文で使用する試薬は、いずれも市販のものであるか、または本願に記載の方法で製造
することができる。
別段の規定がある場合を除き、以下の具体実施例の前記各培地の配合は、次のとおりで
ある。
前記ＹＰＤ培地（酵母エキスペプトングルコース培地）の配合は、酵母エキス１０ｇ／
Ｌ、ペプトン１０ｇ／Ｌおよびグルコース２０ｇ／Ｌであり、残部は水である。
前記ＹＰＤ寒天培地（酵母エキスペプトングルコース寒天培地）の配合は、酵母エキス
１０ｇ／Ｌ、ペプトン１０ｇ／Ｌ、グルコース２０ｇ／Ｌおよび寒天粉１５ｇ／Ｌであり
、残部は水である。
前記０．０２％塩化リチウム（変異誘発剤として）を含むＹＰＤ寒天培地の配合は、酵
母エキス１０ｇ／Ｌ、ペプトン１０ｇ／Ｌ、グルコース２０ｇ／Ｌ、寒天粉１５ｇ／Ｌお
よび塩化リチウム０．２ｇ／Ｌであり、残部は水である。
本願に記載の複合変異誘発育種技術は、当業者が熟知する常套の変異誘発方法である。
前記方法は、本願の説明のために用いられるにすぎず、本願の保護範囲を制限するもので
はないと理解すべきである。当業者にとって、本願の主旨および実質的な前提から逸脱せ
ずに、前記方法における培地成分、含有量、培養条件、変異誘発条件に対して行われる各
種変更または修正も、本願の保護範囲に属す。
本願に記載の好ましい紫外線変異誘発では、酵母菌種懸濁液を紫外線ランプ下２５～３
５ｃｍで１５～２５分照射処理する。本願に記載の好ましい塩化リチウム変異誘発では酵
母菌種懸濁液を０．０１～０．０２％塩化リチウム（変異誘発剤として）含有培地上に塗
布し、１８～３７℃で１６～７２時間培養する。
具体的には、前記酵母菌種懸濁液の製造は、１８～３７℃で１６～７２時間培養した出
芽酵母、メタノール資化酵母、分裂酵母、トルラスポラ・デルブリュッキまたはクルイベ
ロミセス・ラクティス菌液を取り、遠心分離によって菌液内の菌体を収集し、無菌水で菌
体を２～３回洗浄した後、適量のツウイーン８０を加え、再懸濁振盪処理して細胞を分散
させ、無菌水で細胞密度を約１００００００個／ｍＬに調整する。
用語「ｒｐｍ」は、回転速度「回毎分」を表し、「℃」は温度単位「摂氏度」を表し、
「Ｌ」は体積単位「リットル」を表し、「ｍＬ」は体積単位「ミリリットル」を表し、「
ｐＨ」は酸アルカリ度を表し、「ｇ」は質量単位「グラム」を表し、「Ｍｐａ」は圧力単
位「メガパスカル」を表す。
実施例１：酵母菌種のスクリーニング
細胞浮遊液の製造
単離した出芽酵母、メタノール資化酵母、分裂酵母、トルラスポラ・デルブリュッキま
たはクルイベロミセス・ラクティス菌を、酵母エキスペプトングルコース（ＹＰＤ）培地
１０ｍＬを入れた５０ｍＬ三角フラスコ中に接種し、２８℃および回転速度２５０ｒｐｍ
で４８時間増殖させ、遠心分離によって菌液内の菌体を収集し、無菌水１０ｍＬで菌体を
３回洗浄した後、無菌水１０ｍＬで再懸濁し、５０ｍＬ三角フラスコの中に置き、マイク
ロピペットで５μＬのツウィーン８０を加え、２８℃および回転速度２５０ｒｐｍで３０
分振盪し、細胞を分散させた。ＯＤ６００の測定によって、各酵母菌種の細胞密度がわか
り、適量の無菌水を加えて細胞密度を約１００００００個／ｍＬに調整した。
紫外線変異誘発
細胞密度約１００００００個／ｍＬの各酵母菌懸濁液１０ｍＬをそれぞれ吸い取り、滅
菌した直径９０ｍｍのペトリ皿の中にそれぞれ置き、ペトリ皿をマグネチックスターラー
の天板上に置き、蓋を開き、紫外線ランプの垂直下方３０ｃｍで紫外照射を行い、照射時
間は２０分とした。
塩化リチウム変異誘発
紫外変異誘発した各酵母菌懸濁液１０ｍＬをそれぞれ取り、すべて０．０２％塩化リチ
ウム（変異誘発剤として）含有ＹＰＤ寒天培地上に塗布し、クラフト紙で包み、２８℃培
養器の中で７２時間培養した。
酵母菌のスクリーニング
成長が良好で、シングルコロニーの直径が比較的大きい紫外線変異誘発および塩化リチ
ウム変異誘発を経た各酵母菌の変異株をそれぞれ選び、ＹＰＤ寒天培地に平板画線し、２
８℃恒温培養器の中で４８時間培養した。各酵母菌種から約５００個の突然変異株を選ん
だ。各突然変異株を、ＹＰＤ培地１０ｍＬを入れた５０ｍＬ三角フラスコの中に接種し、
２８℃および回転速度２５０ｒｐｍで４８時間増殖し、菌液を得た。細胞を破砕し、遠心
分離することにより、エルゴチオネインを含む上澄液を収集し、エルゴチオネイン標準品
および前記上澄液を取り、上澄液における発酵で得られたエルゴチオネインの含有量を高
速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）で測定した。複合変異誘発前の各酵母菌種の溶液
を取り、対照とした。
紫外線および塩化リチウム複合変異誘発前に、各酵母菌は、ＨＰＬＣ測定でエルゴチオ
ネインが検出されなかった。紫外線および塩化リチウム複合変異誘発後に、一部の酵母菌
で、エルゴチオネインを合成する能力が検出され、細胞内で一定量のエルゴチオネインを
蓄積可能な分裂酵母一株を選び、ＭＭ１と命名した。エルゴチオネインの生成量（すなわ
ち、前記上澄液におけるエルゴチオネインの含有量）は、約６２．６ｍｇ／Ｌであった（
図１参照）。この変異誘発分裂酵母菌株ＭＭ１を、グリセロールを用いて零下８０℃で保
存し、５回継代し、エルゴチオネインの生成量は安定していた。
実施例２：分裂酵母菌株ＭＭ１の再スクリーニング
細胞浮遊液の製造
分裂酵母菌株ＭＭ１を、ＹＰＤ培地１０ｍＬを入れた５０ｍＬ三角フラスコの中にそれ
ぞれ接種し、２８℃および回転速度２５０ｒｐｍで４８時間増殖させ、遠心分離によって
菌液内の菌体を収集し、無菌水１０ｍＬで菌体を３回洗浄した後、無菌水１０ｍＬで再懸
濁し、５０ｍＬ三角フラスコの中に置き、マイクロピペットで５μＬのツウィーン８０を
加え、２８℃および回転速度２５０ｒｐｍで３０分振盪し、細胞を分散させた。ＯＤ６０
０の測定によって、分裂酵母菌株ＭＭ１の細胞密度がわかり、適量の無菌水を加えて細胞
密度を約１００００００個／ｍＬに調整した。
紫外線変異誘発
１０ｍＬ、細胞密度約１００００００個／ｍＬの分裂酵母菌株ＭＭ１懸濁液をそれぞれ
吸い取り、滅菌した直径９０ｍｍのペトリ皿の中に置き、ペトリ皿をマグネチックスター
ラーの天板上に置き、蓋を開き、紫外線ランプの垂直下方３０ｃｍで紫外照射を行い、照
射時間は２０分とした。
塩化リチウム変異誘発
紫外変異誘発した分裂酵母菌株ＭＭ１懸濁液１０ｍＬをそれぞれ取り、すべて０．０２
％塩化リチウム（変異誘発剤として）含有ＹＰＤ寒天培地上に塗布し、クラフト紙で包み
、２８℃培養器の中で７２時間培養した。
分裂酵母のスクリーニング
成長が良好で、シングルコロニーの直径が比較的大きい紫外線変異誘発および塩化リチ
ウム変異誘発を経た分裂酵母菌株ＭＭ１の変異株５００個をそれぞれ選び、ＹＰＤ寒天培
地に平板画線し、２８℃恒温培養器の中で４８時間培養した。さらに、突然変異株を、Ｙ
ＰＤ培地１０ｍＬを入れた５０ｍＬ三角フラスコの中に接種し、２８℃および回転速度２
５０ｒｐｍで４８時間増殖し、菌液を得た。細胞を破砕し、遠心分離することにより、エ
ルゴチオネインを含む上澄液を収集し、エルゴチオネイン標準品および前記上澄液を取り
、前記上澄液におけるエルゴチオネインの含有量を高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬ
Ｃ）で測定した。再スクリーニング前の分裂酵母菌株ＭＭ１を含む溶液を取り、対照とし
た。
紫外線および塩化リチウム複合変異誘発後に、細胞内で一定量のエルゴチオネインを蓄
積可能な分裂酵母菌一株を再スクリーニングし、ＭＭ２と命名した。約５９８ｍｇ／Ｌ（
すなわち、前記上澄液におけるエルゴチオネインの含有量）のエルゴチオネインを生成す
ることができた。この変異誘発分裂酵母菌株ＭＭ２を、グリセロールを用いて零下８０℃
で保存し、５回継代し、エルゴチオネインの生成量は安定していた。
分裂酵母菌株ＭＭ２に対して、紫外線および塩化リチウム複合変異誘発を再度行い、複
数回の複合変異誘発を経た後、最終的に、エルゴチオネインを多く生成した分裂酵母菌株
一株を選び、ＯＭＫ－７９と命名した（この菌株の受託番号はＣＣＴＣＣ Ｍ ２０２１
１５０５であり、２０２１年１１月２９日に中国培養細胞系統保存機関（ＣＣＴＣＣ，武
漢大学）に保管された）。この変異誘発分裂酵母菌株ＯＭＫ－７９を、グリセロールを用
いて零下８０℃で保存し、５回継代し、エルゴチオネインの生成量は安定していた。
実施例３：エルゴチオネインの発酵生産
分裂酵母菌株ＯＭＫ－７９を、ＹＰＤ培地５０ｍＬを入れた２５０ｍＬ三角フラスコの
中に接種し、２８℃および回転速度２５０ｒｐｍで４８時間増殖して、菌株を活性化させ
た。活性化後のＯＭＫ－７９菌株を、１％の接種量で、ＹＰＤ培地１５０ｍＬを入れた１
Ｌ三角フラスコの中に移し、２８℃および回転速度２５０ｒｐｍで１８時間増殖し、種子
液を得た。分裂酵母ＯＭＫ－７９種子液１００ｍＬを、発酵培地３Ｌの中に接種し、発酵
させた。発酵は、５Ｌのラボテスト規模バイオリアクターの中で行い、温度およびｐＨ値
をそれぞれ２８～３０℃および４．０～７．０に制御した。上記発酵の期間全体で、空気
の流速を３Ｌ／分に保持し、圧力を０．０８Ｍｐａに維持し、ｐＨはアンモニア水を添加
することにより制御し、初期撹拌速度は２００ｒｐｍとした。
溶存酸素量（ＤＯ）が５０％まで低下したら（発酵の約２４時間後）、グリセロールを
補い始め、測定した生物量が２００ｇ／Ｌ（湿重量）に達するまで撹拌速度を６００ｒｐ
ｍに増加し、補うグリセロールの量は、約７５ｇ／Ｌとした。グリセロールを補ってから
１２０時間後に、発酵液の菌体細胞密度が飽和に達し、ＯＤ６００値は最高で４００に達
し得る。グリセロールを補い始めた後の発酵期間全体で、空気の流速を４Ｌ／分に保持し
、圧力を０．１０Ｍｐａに維持した。発酵終了後に、細胞を破砕し、遠心分離し、エルゴ
チオネインを含む上澄液を収集し、前記上澄液におけるエルゴチオネインの含有量を高速
液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）で測定し、その含有量は７．６ｇ／Ｌであった。
実施例４：エルゴチオネインの生産最適化
分裂酵母菌株ＯＭＫ－７９を、ＹＰＤ培地５０ｍＬを入れた２５０ｍＬ三角フラスコの
中に接種し、２８℃および回転速度２５０ｒｐｍで４８時間増殖して、菌株を活性化させ
た。活性化後のＯＭＫ－７９菌株を、１％の接種量で、ＹＰＤ培地１５０ｍＬを入れた１
Ｌ三角フラスコの中に移し、２８℃および回転速度２５０ｒｐｍで１８時間増殖し、種子
液を得た。分裂酵母ＯＭＫ－７９種子液１００ｍＬを、発酵培地３Ｌの中に接種し、発酵
させた。発酵は、５Ｌのラボテスト規模バイオリアクターの中で行い、温度およびｐＨ値
をそれぞれ２８～３０℃および５．０～６．０に制御した。上記発酵の期間全体で、空気
の流速を３Ｌ／分に保持し、圧力を０．０８Ｍｐａに維持し、ｐＨはアンモニア水を添加
することにより制御し、初期撹拌速度は２００ｒｐｍとした。
溶存酸素量（ＤＯ）が５０％まで低下したら（発酵の約２４時間後）、グリセロールお
よび基質を補い始めた。基質は、それぞれ１ｇ／Ｌのアルギニン、１ｇ／Ｌのヒスチジン
、１ｇ／Ｌのメチオニンまたは１ｇ／Ｌのシステインとした。グリセロールおよび基質を
補い始めた後、測定した生物量が２００ｍｇ／ｍＬ（湿重量）に達するまで撹拌速度を６
００ｒｐｍまで徐々に増加し、補うグリセロールの量は、約７５ｇ／Ｌとした。グリセロ
ールおよび基質を補ってから１２０時間後に、発酵液の菌体細胞密度が飽和に達し、ＯＤ
６００値は最高で４００に達し得る。グリセロールおよび基質を補い始めた後の発酵期間
全体で、空気の流速を４Ｌ／分に保持し、圧力を０．１０Ｍｐａに維持した。発酵終了後
に、細胞を破砕し、遠心分離し、エルゴチオネインを含む上澄液を収集し、前記上澄液に
おけるエルゴチオネインの含有量を高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）で測定した
。実験によって、基質であるアルギニン、ヒスチジン、メチオニンおよびシステインを補
うことは、いずれもエルゴチオネインの生産に対して促進作用を有し、上澄液におけるエ
ルゴチオネインの含有量は、それぞれ１０．７ｇ／Ｌ（基質はアルギニン）、９．８ｇ／
Ｌ（基質はヒスチジン）、９．２ｇ／Ｌ（基質はメチオニン）および８．４ｇ／Ｌ（基質
はシステイン）であった。
実施例５：エルゴチオネインの発酵最適化
分裂酵母菌株ＯＭＫ－７９を、ＹＰＤ培地５０ｍＬを入れた２５０ｍＬ三角フラスコの
中に接種し、２８℃および回転速度２５０ｒｐｍで４８時間増殖して、菌株を活性化させ
た。活性化後のＯＭＫ－７９菌株を、１％の接種量で、ＹＰＤ培地１５０ｍＬを入れた１
Ｌ三角フラスコの中に移し、２８℃および回転速度２５０ｒｐｍで１８時間増殖し、種子
液を得た。分裂酵母ＯＭＫ－７９種子液１００ｍＬを、発酵培地３Ｌの中に接種し、発酵
させた。発酵は、５Ｌのラボテスト規模バイオリアクターの中で行い、温度およびｐＨ値
をそれぞれ２８～３０℃および５．０～６．０に制御した。上記発酵の期間全体で、空気
の流速を３Ｌ／分に保持し、圧力を０．０８Ｍｐａに維持し、ｐＨはアンモニア水を添加
することにより制御し、初期撹拌速度は２００ｒｐｍとした。
溶存酸素量（ＤＯ）が５０％まで低下したら（発酵の約２４時間後）、グリセロール、
１．３ｇ／Ｌのアルギニン、０．８ｇ／Ｌのヒスチジン、０．６ｇ／Ｌのメチオニンおよ
び０．５ｇ／Ｌのシステインを補い始めた。グリセロールおよび基質を補い始めた後、測
定した生物量が２００ｍｇ／ｍＬ（湿重量）に達するまで撹拌速度を６００ｒｐｍまで徐
々に増加し、補うグリセロールの量は、約７５ｇ／Ｌとした。グリセロールおよび基質を
補ってから１２０時間後に、発酵液の菌体細胞密度が飽和に達し、ＯＤ６００値は最高で
４００に達し得る。グリセロールおよび基質を補い始めた後の発酵期間全体で、空気の流
速を４Ｌ／分に保持し、圧力を０．１０Ｍｐａに維持した。発酵の約１４８時間後に、細
胞を破砕し、遠心分離し、エルゴチオネインを含む上澄液を収集し、前記上澄液における
エルゴチオネインの含有量を高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）で測定し、その含
有量は１２．５ｇ／Ｌであった。
本願の方法は、すでに好ましい実施例によって記述されており、関係者は、明らかに、
本願の内容、主旨および範囲内で、本文に記載の方法および用途を修正し、または適宜変
更し、組み合わせて、本願の技術を実現し、適用することができる。当業者は、本文の内
容により、工程パラメータを適宜改善し、実現することができる。なお、類似するあらゆ
る入れ替えおよび修正は、当業者にとって容易なものであり、いずれも本願に含まれると
みなされる。

Claims (6)

  1. 受託番号がＣＣＴＣＣ Ｍ ２０２１１５０５である酵母菌を活性化し、活性化酵母菌含有培地を得て、
    活性化酵母菌含有培地を１％ｖｏｌ～５％ｖｏｌの接種量で酵母エキス、ペプトンおよびグルコースを含む種子液培地に接種して、温度２５℃～３０℃、回転速度２００ｒｐｍ～５００ｒｐｍ、培養の時間は１６時間～４８時間の条件下で拡大培養し、種子液を得て、
    種子液を、発酵培地および基質の前者又は両者と混合し、前記種子液と発酵培地の体積比は１：１００～１：２０であり、発酵温度２５℃～３０℃、発酵の時間は１４０時間～２００時間、空気の流速３Ｌ／分～５Ｌ／分、ガス圧０．０７ＭＰａ～０．１０ＭＰａ、ｐＨ４．０～７．０、撹拌速度２００ｒｐｍ～５００ｒｐｍの条件下で発酵させ、溶存酸素量が５０％に低下するまで発酵したときに、グリセロールを補い、初期撹拌速度に加えて１００ｒｐｍ～６００ｒｐｍ増加を続けるよう撹拌速度を増加し、グリセロールを持続的に補い、測定した湿重量生物量が３０～３００ｇ／Ｌに達するまで撹拌速度の増加を維持し、次いで、細胞を破砕、単離し、７．６ｇ／Ｌ～１２．５ｇ／Ｌのエルゴチオネインを取得し、前記発酵培地は、リン酸、ＣａＳＯ ４ 、Ｋ ２ ＳＯ ４ 、ＫＯＨ、ＭｇＳＯ ４ ・７Ｈ ２ Ｏ、炭素源、酵母エキス、ペプトン、消泡油および水を含むエルゴチオネインの製造方法。
  2. 前記基質は、アルギニン、ヒスチジン、メチオニンまたはシステインから選ばれる少なくとも１種を含み、
    前記炭素源は、スクロース、フルクトース、キシロース、エタノール、メタノール、グリセロール、グルコース、セルロース、デンプン、セロビオースまたはその他のグルコース含有ポリマーから選ばれる少なくとも１種を含む、請求項１に記載の製造方法。
  3. 前記発酵培地は、１％ｖｏｌ～７％ｖｏｌのリン酸、０．０３ｗｔ％～０．３ｗｔ％のＣａＳＯ４、１ｗｔ％～６ｗｔ％のＫ２ＳＯ４、０．１ｗｔ％～２ｗｔ％のＫＯＨ、０．５ｗｔ％～５ｗｔ％のＭｇＳＯ４・７Ｈ２Ｏ、１ｗｔ％～１２ｗｔ％のグリセロール、０．１ｗｔ％～２ｗｔ％の酵母エキス、０．１ｗｔ％～２ｗｔ％のペプトン、０．０１％ｖｏｌ～１％ｖｏｌの消泡油を含み、残部は水である、
    請求項１又は２に記載の製造方法。
  4. 前記種子液培地は、酵母エキス３ｇ／Ｌ～３０ｇ／Ｌ、ペプトン３ｇ／Ｌ～３０ｇ／Ｌ、グルコース５ｇ／Ｌ～５０ｇ／Ｌを含む、請求項１又は２に記載の製造方法。
  5. 前記グリセロールを補う量は、２０ｇ／Ｌ～２２０ｇ／Ｌである、請求項１又は２に記載の製造方法。
  6. 受託番号がＣＣＴＣＣ Ｍ ２０２１１５０５である酵母菌を活性化し、活性化酵母菌含有培地を得て、
    活性化酵母菌含有培地を１％ｖｏｌ～５％ｖｏｌの接種量で酵母エキス３ｇ／Ｌ～３０ｇ／Ｌ、ペプトン３ｇ／Ｌ～３０ｇ／Ｌ、グルコース５ｇ／Ｌ～５０ｇ／Ｌを含む種子液培地に接種して、温度２５℃～３０℃、回転速度２００ｒｐｍ～５００ｒｐｍ、培養の時間は１６時間～４８時間の条件下で拡大培養し、種子液を得て、
    種子液を、発酵培地および基質の前者又は両者と混合し、前記種子液と発酵培地の体積比は１：１００～１：２０であり、発酵温度２５℃～３０℃、発酵の時間は１４０時間～２００時間、空気の流速３Ｌ／分～５Ｌ／分、ガス圧０．０７ＭＰａ～０．１０ＭＰａ、ｐＨ４．０～７．０、撹拌速度２００ｒｐｍ～５００ｒｐｍの条件下で発酵させ、溶存酸素量が５０％に低下するまで発酵したときに、グリセロールを補い、初期撹拌速度に加えて１００ｒｐｍ～６００ｒｐｍ増加を続けるよう撹拌速度を増加し、グリセロールを持続的に補い、測定した湿重量生物量が２００ｇ／Ｌに達するまで撹拌速度の増加を維持し、次いで、細胞を破砕、単離し、７．６ｇ／Ｌ～１２．５ｇ／Ｌのエルゴチオネインを取得し、前記基質は、アルギニン、ヒスチジン、メチオニンまたはシステインから選ばれる少なくとも１種を含み、前記発酵培地は、１％ｖｏｌ～７％ｖｏｌのリン酸、０．０３ｗｔ％～０．３ｗｔ％のＣａＳＯ４、１ｗｔ％～６ｗｔ％のＫ２ＳＯ４、０．１ｗｔ％～２ｗｔ％のＫＯＨ、０．５ｗｔ％～５ｗｔ％のＭｇＳＯ４・７Ｈ２Ｏ、１ｗｔ％～１２ｗｔ％のグリセロール、０．１ｗｔ％～２ｗｔ％の酵母エキス、０．１ｗｔ％～２ｗｔ％のペプトン、０．０１％ｖｏｌ～１％ｖｏｌの消泡油を含み、残部は水であることを含むエルゴチオネインの製造方法。
JP2022074976A 2022-01-07 2022-04-28 酵母菌およびそのエルゴチオネイン製造における用途 Active JP7450959B2 (ja)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202210017520 2022-01-07
CN202210017520.8 2022-01-07

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JP2023101370A JP2023101370A (ja) 2023-07-20
JP7450959B2 true JP7450959B2 (ja) 2024-03-18

Family

ID=87070270

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2022074976A Active JP7450959B2 (ja) 2022-01-07 2022-04-28 酵母菌およびそのエルゴチオネイン製造における用途

Country Status (3)

Country Link
US (1) US20230220428A1 (ja)
JP (1) JP7450959B2 (ja)
CN (1) CN116445302A (ja)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN112638391A (zh) * 2018-06-08 2021-04-09 能值股份有限公司 用于使真菌菌丝体生长并且从其形成可食用产品的方法

Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2016104437A1 (ja) 2014-12-22 2016-06-30 国立大学法人 岡山大学 エルゴチオネインの産生方法
WO2016121285A1 (ja) 2015-01-30 2016-08-04 キッコーマン株式会社 エルゴチオネイン生産能が増強された形質転換糸状菌及びエルゴチオネインの製造方法
JP2017225368A (ja) 2016-06-21 2017-12-28 国立大学法人 岡山大学 エルゴチオネインの産生方法
WO2020221795A1 (en) 2019-04-30 2020-11-05 Danmarks Tekniske Universitet Methods for production of ergothioneine
CN112251392A (zh) 2020-10-26 2021-01-22 天津科技大学 一种生产麦角硫因的基因工程菌株及其应用
CN113234652A (zh) 2021-04-10 2021-08-10 江南大学 高效合成麦角硫因的工程菌的构建方法与应用
JP2021141826A (ja) 2020-03-10 2021-09-24 株式会社クレハ エルゴチオネインの生産方法

Patent Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2016104437A1 (ja) 2014-12-22 2016-06-30 国立大学法人 岡山大学 エルゴチオネインの産生方法
WO2016121285A1 (ja) 2015-01-30 2016-08-04 キッコーマン株式会社 エルゴチオネイン生産能が増強された形質転換糸状菌及びエルゴチオネインの製造方法
JP2017225368A (ja) 2016-06-21 2017-12-28 国立大学法人 岡山大学 エルゴチオネインの産生方法
WO2020221795A1 (en) 2019-04-30 2020-11-05 Danmarks Tekniske Universitet Methods for production of ergothioneine
JP2021141826A (ja) 2020-03-10 2021-09-24 株式会社クレハ エルゴチオネインの生産方法
CN112251392A (zh) 2020-10-26 2021-01-22 天津科技大学 一种生产麦角硫因的基因工程菌株及其应用
CN113234652A (zh) 2021-04-10 2021-08-10 江南大学 高效合成麦角硫因的工程菌的构建方法与应用

Also Published As

Publication number Publication date
CN116445302A (zh) 2023-07-18
JP2023101370A (ja) 2023-07-20
US20230220428A1 (en) 2023-07-13

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Wisselink et al. Novel evolutionary engineering approach for accelerated utilization of glucose, xylose, and arabinose mixtures by engineered Saccharomyces cerevisiae strains
DK2855711T3 (da) Gærstammer der er i stand til at nedbryde xylose og er resistente over for inhibitorer, fremgangsmåde til at opnå samme og anvendelse deraf
CN109136109B (zh) 一种出芽短梗霉菌株及其应用
CA2719280A1 (en) Novel ethanol-producing yeast
JP7450959B2 (ja) 酵母菌およびそのエルゴチオネイン製造における用途
Amza et al. High cell density cultivation of Lipomyces starkeyi for achieving highly efficient lipid production from sugar under low C/N ratio
Bai et al. Ammonium lactate production by Lactobacillus lactis BME5-18M in pH-controlled fed-batch fermentations
TWI540208B (zh) 用於培養酵母菌細胞的種菌培養基及其用途
Aponte et al. Impact of different spray-drying conditions on the viability of wine Saccharomyces cerevisiae strains
JP2018082704A (ja) Ｃ５糖を含む基質においてバイオマスを産生するための酵母菌株
RU2539092C1 (ru) РЕКОМБИНАНТНЫЙ ШТАММ ДРОЖЖЕЙ Schizosaccharomyces pombe - ПРОДУЦЕНТ МОЛОЧНОЙ КИСЛОТЫ
CN108841736B (zh) 一种具有多重耐受性的乙醇浓醪发酵高产菌株及其应用
CN106754448B (zh) 一种重组酵母菌株及其应用
CN112940952B (zh) 一株高产己酸乙酯酵母菌及其应用
EP3845658B1 (en) Method for preparing vanillin by fermentation with eugenol as substrate
CN110951794A (zh) 一种提高酿酒酵母工程菌生产葡萄糖二酸的发酵方法
CN104894186B (zh) 一种提高酵母空间诱变菌株甘露聚糖含量的方法
CN110982716B (zh) 用于生产天然酪醇的菌株及天然酪醇的制备方法
CN115948258B (zh) 产pefa的沼泽红酵母xy11菌株及其应用
CN109811017B (zh) 一种基于溶氧与pH调控高山被孢霉产EPA的发酵方法
Saini et al. Comparative physiology of Kluyveromyces marxianus and Saccharomyces cerevisiae during batch cultivation on glucose as a sole carbon source
EP3663391B1 (en) A strain for the production of natural tyrosol and a preparation method of natural tyrosol
Du et al. Optimization of fermentation conditions for trehalose production by a marine yeast
Abd-Elsalam Role of the biomass and pelleted forms of Aspergillus ochraceus ATCC 3150 on the 11 α-hydroxylation of progesterone
CN113308505A (zh) 一种提高虫草素发酵产量的方法

Legal Events

Date Code Title Description
A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20220428

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20230425

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20230724

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20230822

A601 Written request for extension of time

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A601

Effective date: 20231122

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20240119

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20240130

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20240228

R150 Certificate of patent or registration of utility model

Ref document number: 7450959

Country of ref document: JP

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150