JP7366014B2 - アデノウイルス及びその用途 - Google Patents
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Description
特定のアデノウイルスへの曝露は、特定のアデノウイルス血清型に対する免疫応答をもたらし、アデノウイルスベクターの有効性に影響を及ぼす可能性がある。ヒトアデノウイルスによる感染はヒトにおいて一般的であるため、ヒト集団におけるヒトアデノウイルスに対する中和抗体の有病率は高い。個体におけるこのような中和抗体の存在は、ヒトアデノウイルス骨格に基づく遺伝子導入ベクターの有効性を低減すると予想され得る。有効性の低減を回避するための1つの方法は、中和抗体の標的であるアデノウイルスカプシドタンパク質上のエピトープを置き換えることである。カプシドタンパク質上の標的配列は、低い有病率であり、したがって中和抗体がヒト集団において希少である他のアデノウイルスに由来するタンパク質配列で置き換えられ得る。
(a)そのカプシド内に誘導体カプシドタンパク質を含むアデノウイルスが、非改変カプシドタンパク質を含むアデノウイルスと比較して、実質的に同じ又は低い血清有病率を保持し;且つ/又は
(b)そのカプシド内に誘導体カプシドタンパク質を含むアデノウイルスが、非改変カプシドタンパク質を含むアデノウイルスと比較して、実質的に同じ又は高い宿主細胞感染性を保持し;且つ/又は
(c)そのカプシド内に誘導体カプシドタンパク質を含むアデノウイルスが、非改変カプシドタンパク質を含むアデノウイルスと比較して、実質的に同じ又は高い免疫原性を保持し;且つ/又は
(d)そのカプシド内に誘導体カプシドタンパク質を含むアデノウイルスが、非改変カプシドタンパク質を含むアデノウイルスと比較して、実質的に同じ又は高いレベルの導入遺伝子生産性を保持する場合、機能的であると考えられる。
免疫原性組成物は、本発明における使用のための免疫学的有効量の精製された又は部分的に精製されたヒト又はサル(例えば、ゴリラ)アデノウイルスベクターを含む組成物である。前記組成物は、当該技術分野においてよく知られる方法に従ってワクチン(「免疫原性組成物」とも称される)として製剤化され得る。このような組成物は、免疫応答を増強させるためのアジュバントを含み得る。製剤における各々の構成成分の最適な比は、本開示に鑑みて当業者によく知られる技術によって決定され得る。
本発明の別の一般的な態様は、必要とする対象において免疫応答を誘導する方法に関する。方法は、例えば、本明細書に記載されるアデノウイルスベクター及び薬学的に許容される担体を含むワクチンを対象に投与することを含み得る。また、本明細書ではワクチンを作製する方法も提供される。方法は、本明細書に記載されるアデノウイルスベクターを薬学的に許容される担体と組み合わせることを含む。
本発明はまた、以下の非限定的な実施形態を提供する。
新規のゴリラアデノウイルス単離物のBLY6(JAd1-WTとも命名される)が、同定され、且つ配列決定された。このゴリラアデノウイルス単離物は、系統学的にヒトアデノウイルス種E(HAdV-E)に属することが見出された。BLY6の全ゲノムヌクレオチド配列は、配列番号5であると決定された。
pBLY6.dE1.dE3(配列番号8;図5)及びpBLY6.dE1.dE3.5IXP(配列番号9;図6)は、単離物BLY6に基づく全長のE1及びE3欠失アデノウイルスベクターゲノムを保有するプラスミドである。これらのプラスミド内に含有されるAdベクターゲノム配列は、それぞれ配列番号13又は配列番号14において記載される。これらのプラスミドの各々の内部において、アデノウイルスベクターゲノムは、2つのSwaI制限酵素部位に隣接する(すなわち、1つのSwaI部位が、ベクターゲノムいずれの末端にも位置する)。これらのSwaI部位は、好適なE1補完細胞(HEK293、911、及びPER.C6細胞など)のトランスフェクションによるウイルスレスキューの前にプラスミド骨格からのAdベクターゲノムの切除を容易にすることを意味する。これらのプラスミドによって構成されるAdベクターゲノムはさらに、E1欠失、E3欠失の位置、及び右逆位末端配列(RITR)に隣接して導入される特定の制限酵素部位を保有する。これらの制限酵素部位は、完全Adゲノムプラスミドの文脈において固有なものとして選択された。それらは、前記のそれぞれの位置又はその任意の組合せのいずれかで挿入される1つ以上の導入遺伝子発現カセットを保有するAdベクターの標準的な分子クローニング手法による容易な構築を可能にする「導入遺伝子挿入部位」となる。Adベクターの設計及びプラスミドの構築は、以下の節においてより詳細に記載される。
BLY6に基づくAdベクターゲノムはそれぞれ、E1欠失、E3欠失、異なる導入遺伝子挿入部位、並びに天然E4オープンリーディングフレーム(orf)6及びorf6/7のヒトアデノウイルス-5(HAdV-5)のものとの置換を含むように設計された。各アデノウイルスのE1領域は、AsiSI制限酵素部位配列を含む導入遺伝子挿入部位により欠失され、且つ置換された。各アデノウイルスのE3領域は、FseI制限酵素部位配列を含む導入遺伝子挿入部位により欠失され、且つ置換された。別の導入遺伝子挿入部位は、各アデノウイルスの右逆位末端配列(ITR)に隣接するPacI制限酵素部位配列の挿入によって作製された。E4 orf6及びorf6/7コード配列を含むBLY6配列は、配列番号6によって置換された。この置換配列は、ヒトアデノウイルス-5(HAdV-5)のE4 orf6及びorf6/7コード配列(GenBank配列AC_000008の塩基対32914~34077)を含む。
pBLY6.dE1.dE3(配列番号8)は、遺伝子合成(GenScriptによって実施される)及び標準的な分子クローニング手順のいくつかの工程によって構築された。第一に、所望のAdベクターゲノムの左末端を含有する(すなわち、前述のE1欠失を内部に持つ)3586bp DNA断片(配列番号15)が合成され、MfeI-NdeI制限断片として、EcoRI及びNdeI消化pBR322(GenBank受入番号-J01749.1)に結合されて、BLY6中間体プラスミド1を得た。第二に、所望のAdベクターゲノムの右末端を含有する(すなわち、前述のE3欠失、部分的なE4配列置換、及びrITRに隣接する導入遺伝子挿入部位を内部に持つ)4138bp断片(配列番号16)が合成され、BamHI-NdeI制限断片として、BamHI及びNdeI消化BLY6中間体プラスミド1に結合されて、BLY6中間体プラスミド2を得た。第三に、中間のAdベクターゲノム断片を含有する4563bp断片(配列番号17)が合成され、BamHI-MfeI制限断片として、BamHI及びMfeI消化BLY6中間体プラスミド2に結合されて、BLY6中間体プラスミド3(配列番号18)を得た。第四に、BLY6ウイルスゲノム(配列番号5)の18987bp BsrGI-BsrGI制限断片が、BsrGI消化BLY6中間体プラスミド3に結合されて、最終プラスミドpBLY6.dE1.dE3(配列番号8)を得た。
それぞれアデノウイルスベクターゲノム配列配列番号22及び配列番号23を含む、アデノウイルスベクターBLY6.Fluc(JAd1NVT003とも命名される)及びBLY6.RSVF-2A-GLuc(JAd1NVT001とも命名される)は、対応するAdベクターゲノムプラスミド(すなわち、pBLY6.Fluc及びpBLY6.RSVF-2A-GLuc)のE1補完PER.C6細胞へのトランスフェクションによって作製された。10%ウシ胎仔血清(FBS)及び10mM MgCl2が補充されたダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)中の接着培養物として増殖されたPER.C6細胞へのトランスフェクションの前に、Adベクターゲノムプラスミドは、SwaIで消化されて、プラスミドから対応するアデノウイルスベクターゲノムを放出した。トランスフェクションは、リポフェクタミントランスフェクション試薬(Invitrogen;Carlsbad、CA)を用いて標準的な手順に従って実施された。ウイルスレスキュートランスフェクションの回収後、PER.C6細胞培養物に対する複数回の連続的な感染ラウンドによって、ウイルスをさらに増幅した。ウイルスを、以前に記載された2工程の塩化セシウム(CsCl)密度勾配超遠心法を用いて粗製のウイルス回収物から精製した(Havenga et al.,「Novel replication-incompetent adenoviral B-group vectors:high vector stability and yield in PER.C6 cells」,J.Gen.Virol.87(8):2135-43(2006))。ウイルス粒子(VP)力価は、以前に記載された分光光度法に基づく手順によって測定された(Maizel et al.,「The polypeptides of adenovirus:I.Evidence for multiple protein components in the virion and a comparison of types 2,7A,and 12」,Virology, 36(1):115-25(1968))。
実施例2及び3は、本明細書で生成された新規のベクターであるBLY6に基づくアデノウイルスベクターの免疫原性を評価するために実施された実験を記載する。これらの実験では、筋肉内免疫後のマウスにおいて、ベクターにコードされる(モデル)抗原に対する体液性及び細胞性免疫応答を誘導する能力について新規のベクターが評価された。ベクターは、2つの異なる抗原:ホタルルシフェラーゼ(FLuc)及びRSV-FA2-2A-GLuc(RSVF-2A-GLuc)を用いて試験された。RSVF-2A-GLucは、呼吸器多核体ウイルス株A2融合糖タンパク質、口蹄疫ウイルス2Aペプチド、及びガウシアルシフェラーゼ(GLuc)で構成されるキメラタンパク質である。各ベクターは、同じ抗原をコードする導入遺伝子カセットを保有するヒトアデノウイルス26型(HAdV-26、本明細書ではAd26とも称される)又はヒトアデノウイルス49型(HAdV-49、本明細書ではAd49とも称される)に基づくベンチマークベクターと並べて比較された。それぞれの抗原に対する免疫応答は、酵素免疫スポットアッセイ(ELISPOT)、酵素結合免疫吸着測定(ELISA)、及びRSVF-2A-GLuc抗原の場合は呼吸器多核体ウイルス中和アッセイ(VNA)などのよく知られる免疫学的アッセイを用いて測定された。
新規のアデノウイルスベクターBLY6の細胞性免疫原性を評価するために、Balb/Cマウスを、Ad26.FLuc、Ad49.Fluc(陽性対照)、ホタルルシフェラーゼを発現するBLY6ベクター(BLY6.FLuc)、又は導入遺伝子をコードしないアデノベクター(空のAd26)で筋肉内注射によって免疫化した。投与のために2つのベクター用量が試験された:マウス毎に109及び1010ウイルス粒子(vp)。免疫化の2週間後、マウスを屠殺し、脾細胞を15量体の重複FLucペプチドプールで一晩刺激した(実験構成 図1A)。細胞性免疫応答を、IFN-γ分泌細胞の相対的な数を測定するエクスビボELISPOTアッセイによって決定した(図1B)。結果は、高用量の免疫化(1010)で、BLY6により誘導される細胞性免疫応答が、Ad26.Flucに関して見られる応答とほとんど同程度に高かったことを示す。対照的に、低用量の免疫化(109)で、BLY6.Flucは、Ad26.Flucより強い応答をもたらした。
新規のアデノウイルスベクターBLY6の免疫原性はさらに、ベクターにコードされた(モデル)ワクチン抗原としてRSV-FA2-2A-GLuc(RSVF-2A-GLuc)を用いて評価された。Balb/Cマウスを、Ad26.RSVF-2A-GLuc(陽性対照)若しくはBLY6.RSVF-2A-GLuc(両方ともにマウス毎に108、109及び1010ウイルス粒子)、又はAd26.FLuc若しくはBLY6.FLuc(両方ともにマウス毎に1010ウイルス粒子)で筋肉内において免疫化した。8週後にマウスを屠殺し、血清試料及び脾細胞を回収した(図2A)。様々な免疫パラメータを下記のとおりに評価した。
新規のBLY6アデノウイルスワクチンベクターとしてのそれらの潜在的な有用性に関して、本明細書で作製される新規アデノウイルスベクターは、好ましくは、ヒトアデノウイルス血清型HAdV-5及びHAdV-35に基づくベクターなどの、ワクチンベクターとして現在既に開発中の既存のアデノウイルスベクターとは血清学的に異なるであろう。したがって、交差中和試験を、HAdV-4、HAdV-5、HAdV-26、HAdV-35及びHAdV49に基づく新規のBLY6アデノウイルスベクター及びいくつかの既存のベクター間で実施した。この目的のため、これらのアデノウイルスベクターの1つに対してそれぞれ産生されるマウス抗血清は、アデノウイルス中和アッセイにおいて各種ベクターの各々に対して試験された。このアッセイのために使用されるマウス抗血清は、マウス当たり1010ベクター粒子によるそれらの免疫化の2週間又は8週間後にBalb/Cマウスから回収された。アデノウイルス中和アッセイは、以前に記載されたとおりに行われた(Spangers et al 2003.J.Clin.Microbiol.41:5046-5052)。簡潔に述べると、1:16の希釈度から始めて、血清を2倍ずつ段階希釈し、続いてホタルルシフェラーゼ(FLuc)を発現するアデノウイルスベクターと事前に混合した後、A549細胞とともに(細胞当たり500個のウイルス粒子の感染の多重度で)一晩インキュベートした。感染の24時間後に測定された感染細胞ライセートにおけるルシフェラーゼ活性レベルは、ベクター感染効率を表した。所与のベクターに対する中和力価は、ベクター感染効率の90%の低減をもたらすことができる最高の血清希釈度として定義された。中和力価は、以下のカテゴリーに任意に分けられた:<16(中和なし)、16~200、200~2,000、及び>2,000。結果は、試験されたベクターの間で大部分が交差中和を示さない(図3)。ベクターBLY6とAd26の間で見られたいくつかのわずかな、一方向の交差中和があっただけで、BLY6抗血清は、16.12(すなわち、16の検出下限値のすぐ上)のAd26に対して中和力価を表示し、Ad26抗血清は、BLY6に対して中和力価を示さなかった。このように、新規のアデノウイルスベクターBLY6は、試験されたパネルに含まれるヒトアデノウイルスベクター、すなわち、Ad26、Ad35、Ad49、Ad5及びAd4と交差中和を示さないか、又は非常にわずかに示した。したがって、このベクターは、場合によっては、例えば、異種プライム-ブーストワクチン接種レジメンの文脈において、或いは又はさらに、異なる疾患若しくは抗原に対する一連の2回以上の継続的なワクチン接種の文脈において、連続的な免疫化におけるこれらの又は他の異なるアデノウイルスベクターの1種以上と組み合わせて使用され得る。
有効なワクチンベクターとしてのそれらの潜在的な使用のために重要なことは、本明細書に記載される新規のアデノウイルスベクターが、ワクチン標的集団における高レベルの既存の抗ベクター体液性免疫によって妨げられないことである。したがって、BLY6ベクターは、米国(US)及び欧州連合(EU)に居住する18歳~55歳までの成人に由来する200名のヒトコホート血清試料内のそれらの血清有病率について評価された。ベクターは、実施例3において実行され且つ以前に記載されたとおりの標準的なアデノウイルス中和アッセイを実施することによって、ヒト血清試料による中和について試験された(Spangers et al 2003.J.Clin.Microbiol.41:5046-5052)。簡潔に述べると、1:16の希釈度から始めて、血清を2倍ずつ段階希釈し、続いてホタルルシフェラーゼ(FLuc)を発現するアデノウイルスベクターと事前に混合した後、A549細胞とともに(細胞当たり500個のウイルス粒子の感染の多重度で)一晩インキュベートした。感染の24時間後に測定された感染細胞ライセートにおけるルシフェラーゼ活性レベルは、ベクター感染効率を表した。所与のベクターに対する中和力価は、ベクター感染効率の90%の低減をもたらすことができる最高の血清希釈度として定義された。中和力価は、以下のカテゴリーに任意に分けられた:<16(中和なし)、16~300、300~1,000、1,000~4000及び>4000。
臨床試験及びそれ以降に使用されるアデノウイルスベクターは、スケーラブルな無血清アデノウイルス生産プラットフォームで高力価まで容易に生産可能である必要がある。本明細書で懸濁PER.C6細胞又はsPER.C6とも呼ばれる懸濁適応PER.C6(登録商標)細胞は、バイオリアクターでのアデノウイルスベクターの大規模製造を支援し、高力価で臨床グレードのベクター製剤、例えば、HAdV-26又はHAdV-35に基づくE1欠損ベクターを大量にもたらすことが示されているため、このようなプラットフォームとなる(欧州特許第2536829B1号明細書、欧州特許第2350268B1号明細書)。
以下の態様を包含し得る。
[1] 配列番号1のアミノ酸配列又は配列番号1のアミノ酸配列とその全長にわたって少なくとも95%同一であるアミノ酸配列を有するヘキソン超可変領域包含ポリペプチドを含むヘキソンポリペプチド又はその機能的誘導体をコードする単離された核酸配列。
[2] 前記ヘキソンポリペプチドが、配列番号1のアミノ酸配列を有するヘキソン超可変領域包含ポリペプチドを含む、上記[1]に記載の単離された核酸配列。
[3] 前記ヘキソンポリペプチド又はその機能的誘導体が、配列番号2のアミノ酸配列又は配列番号2のアミノ酸配列とその全長にわたって少なくとも95%同一であるアミノ酸配列を含む、上記[2]に記載の単離された核酸配列。
[4] ファイバーポリペプチド又はその機能的誘導体をコードする核酸配列をさらに含む、上記[1]~[3]のいずれか一項に記載の単離された核酸配列。
[5] 前記ファイバーポリペプチドが、(1)配列番号10のアミノ酸配列を含むファイバーノブポリペプチド配列、(2)配列番号11のアミノ酸配列を含むファイバーシャフトポリペプチド配列、及び(3)配列番号12のアミノ酸配列を含むファイバーテールポリペプチド配列からなる群から選択される少なくとも1つを含み、好ましくは、前記ファイバーポリペプチド又はその機能的誘導体が、配列番号3のアミノ酸配列又は配列番号3のアミノ酸配列とその全長にわたって少なくとも95%同一であるアミノ酸配列を含む、上記[4]に記載の単離された核酸配列。
[6] (1)配列番号10のアミノ酸配列を含むファイバーノブポリペプチド配列;(2)配列番号11のアミノ酸配列を含むファイバーシャフトポリペプチド配列、及び(3)配列番号12のアミノ酸配列を含むファイバーテールポリペプチド配列からなる群から選択される少なくとも1つを含むファイバーポリペプチドをコードする単離された核酸配列。
[7] 前記ファイバーポリペプチドが、配列番号3のアミノ酸配列を含む、上記[6]に記載の単離された核酸配列。
[8] 上記[1]~[7]のいずれかに記載の核酸を含むベクター。
[9] アデノウイルスベクターであり、且つ導入遺伝子をさらに含む、上記[8]に記載のベクター。
[10] 前記アデノウイルスベクターがさらに、E1欠失及びE3欠失のうちの少なくとも1つを含む、上記[9]に記載のアデノウイルスベクター。
[11] 前記アデノウイルスベクターが、1種以上のヒトアデノウイルス核酸配列を含むキメラアデノウイルスベクターであり、好ましくは、前記ヒトアデノウイルス核酸配列が、ヒトアデノウイルス-4、ヒトアデノウイルス-5、ヒトアデノウイルス-26、又はヒトアデノウイルス-35のうちの少なくとも1つに由来する、上記[9]又は[10]に記載のアデノウイルスベクター。
[12] 前記アデノウイルスベクターが、配列番号13及び配列番号14からなる群から選択される核酸配列を含む、上記[9]~[11]のいずれか一項に記載のアデノウイルスベクター。
[13] 上記[8]~[12]のいずれか一項に記載のベクターを含む組換え細胞。
[14] (a)上記[13]に記載の組換え細胞を、前記ベクターを産生するための条件下で増殖させること;及び
(b)前記組換え細胞から前記ベクターを単離することを含む、
ベクターを作製する方法。
[15] 上記[9]~[12]のいずれか一項に記載のアデノウイルスベクターを含む免疫原性組成物。
[16] 必要とする対象において免疫応答を誘導する方法であって、上記[15]に記載の免疫原性組成物を前記対象に投与することを含む、方法。
[17] 上記[9]~[12]のいずれかに記載のアデノウイルスベクターを薬学的に許容される担体と組み合わせることを含む、ワクチンを作製する方法。
Claims (8)
- 配列番号13の核酸配列を含む、アデノウイルスベクター。
- 配列番号8の核酸配列を含む、アデノウイルスベクター。
- アデノウイルスベクターの導入遺伝子挿入部位に、導入遺伝子が挿入された、請求項1又は2に記載のアデノウイルスベクター。
- 請求項1~3のいずれか一項に記載のベクターを含む組換え細胞。
- (a)請求項4に記載の組換え細胞を、前記ベクターを産生するための条件下で増殖させること;及び
(b)前記組換え細胞から前記ベクターを単離することを含む、
ベクターを作製する方法。 - 請求項1~3のいずれか一項に記載のアデノウイルスベクターを含む免疫原性組成物。
- 必要とする対象において免疫応答を誘導する方法で用いるための、請求項6に記載の免疫原性組成物であって、前記方法が、前記免疫原性組成物を前記対象に投与することを含む、免疫原性組成物。
- 請求項1~3のいずれかに記載のアデノウイルスベクターを薬学的に許容される担体と組み合わせることを含む、ワクチンを作製する方法。
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