JP7325853B2 - 消化管粘膜用保護接着剤 - Google Patents
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Description
さらに、抗ヘリコバクター製剤は、ビスマス剤、メトロニダゾールまたはチニダゾール、アモキシシリン、クラリスロマイシン、テトラサイクリン、フラゾリドンのうちの1種または複数種からなる。
さらに、胃酸抑制剤、抗ヘリコバクター製剤および保護接着剤の他の成分の重量比は0.001-0.05:0.001-1:1-20である。
消化管は基本的に酸性または弱酸性の環境にあるため、本発明の目的は達成され得る。本発明では、効果を説明する際に、胃部環境を主として説明するが、本発明は胃部に制限されるわけではなく、本発明は、人体のすべての消化管(食道、胃、腸などを含む)に適用できる。
本発明では、科学的な原理を採用し、胃酸条件下でゲル化物質を胃腸粘膜の表面においてコロイド膜を形成し、胃酸とペプシンの粘膜に対する消化作用を遮断し、潰瘍の癒合を促進する。
1.アルギン酸カリウム 12g
2.塩化カルシウム 1g
3.クエン酸ナトリウム 2g
4.ポリリジン 10g
上記成分を1mol水酸化ナトリウムを用いて調製した0.01molのpH9.0リン酸塩溶液500mlに溶解し、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。硬化液は塩化カルシウムを用いて調製した1.1%の水溶液を採用し、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。
1.アミド化低メトキシルペクチン 15g
2.塩化カルシウム 1g
3.クエン酸ナトリウム 2.5g
4.ポリリジン 12g
上記成分を1mol水酸化ナトリウムを用いて調製した0.01molのpH9.0リン酸塩溶液600mlに溶解し、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。硬化液は塩化カルシウムを用いて調製した1.1%の水溶液を採用し、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。
1.アルギン酸ナトリウム 11g
2.クエン酸ナトリウム 4g
3.塩化カルシウム 1.5g
4.ポリリジン 10g
上記成分を1mol水酸化ナトリウムを用いて調製した0.01molのpH9.0リン酸塩溶液500mlに溶解し、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。硬化液はグルコン酸カルシウムを用いて調製した2%の水溶液を採用し、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。
1.アルギン酸ナトリウム 11g
2.クエン酸ナトリウム 4g
3.グルコン酸カルシウム 6g
4.ポリリジン 10g
上記成分を1mol水酸化ナトリウムを用いて調製した0.01molのpH9.0リン酸塩溶液600mlに溶解し、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。硬化液は塩化カルシウムを用いて調製した1.7%の水溶液を採用し、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。
1.アルギン酸カリウム 10g
2.クエン酸ナトリウム 4g
3.乳酸カルシウム 2.8g
4.ポリリジン 10g
上記成分を1mol水酸化ナトリウムを用いて調製した0.01molのpH9.0リン酸塩溶液600mlに溶解し、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。硬化液は乳酸カルシウムを用いて調製した5%の水溶液を採用し、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。
以上の実施例の液体はそのまま実験に用いられる。
上記液体をそれぞれ2ml取り、新鮮な豚皮の内側面に塗布し、次いで硬化液をスプレーし、コロイド膜の形成状況を観察した。結果として、実施例1から実施例5のいずれにおいてもコロイド膜が形成された。
安全性研究試験
実施例1-5に対して以下の生物学的試験を行った。
1)口腔粘膜刺激
12mlコロイド液を直径15cmの滅菌ペトリ皿に入れ、次いで固定液を入れ、30分間後に生理食塩水で過剰な固定液を除去し、さらに3cm2/mlで生理食塩水を加え、37℃で72時間浸出し、試験液を調製した。サンプルの試験液を用いて直径が5mm以下の綿球を作成し、3匹のゴールデンハムスターの片側の頬袋に置いた。接触時間は毎回少なくとも5min、1日1回、合計4回であった。最後の接触の24h後に頬袋を目視観察し、安楽死させた。頬袋の代表的な組織サンプルを取り、4%ホルムアルデヒド溶液に入れて固定した後、組織切片を作成して組織学的評価を行った。結果として、刺激指数はいずれも0であり、試験サンプルは口腔粘膜刺激性を有しなかった。
12mlコロイド液を直径15cmの滅菌ペトリ皿に入れ、次いで固定液に入れ、30分間後に生理食塩水で過剰な固定液を除去し、さらに3cm2/mlで培地を加え、37℃で24時間浸出し、試験液を調製した。そして、GB/T16886.5に規定の細胞毒性試験に従ってMTT法により測定した結果、細胞毒性はいずれも0-1レベルの範囲内であった。
12mlコロイド液を直径15cmの滅菌ペトリ皿に入れ、次いで固定液に入れ、30分間後に生理食塩水で過剰な固定液を除去し、さらに3cm2/mlで培地を加え、37℃で72時間浸出し、試験液を調製した。そして、GB/T16886.10に規定の方法に従って皮膚感作試験を行った結果、いずれも感作作用が観察されなかった。
組織接着力の測定(組織残留量法)
実施例1-5に対してそれぞれ以下の試験を行った。
SDラットを取り、24h禁食させ、ペントバルビタールナトリウム溶液(40mg/kg)を腹腔内注射して麻酔させ、解剖して胃を取り出して生理食塩水(37℃)に入れ、生理食塩水で胃の内壁を洗浄し、洗浄した胃を2時間内で使用した。所定面積の胃組織(2cm×2cm)を切り出し、ポリエチレン膜に固定し、0.5ml保護接着剤を胃粘膜の創面に均一に塗布し、そして硬化液をスプレーした。胃組織を相対湿度92.5%の恒湿密閉容器に20分間静置し、上記のように処理された胃組織を洗い流し傾斜槽に固定し、傾斜槽の角度を60度に調整し、蠕動ポンプの流速を20ml/minに調整し、胃組織を0.1mol/L塩酸で5min洗い流し、洗液を重量が既知のビーカーに収集し、70℃で乾燥させ、重量を計量した。組織接着力を接着百分率で表す。
胃組織接着百分率(Bg/%)Bg/%={[M-(G-g-m)]/M}x100%
式中、Mは粘膜保護接着剤の重量(0.5ml、同じ条件下で乾燥)、gは空ビーカーの重量、Gはビーカーと乾燥後残渣との総重量、mは同じ体積洗液に含まれる固形物の量(ブランク対照)である。B値は大きいほど接着力は高くなる。
動物試験
動物を2群に分け、体重は約3kgであった。実験群6匹、対照群6匹。
接着層成分
イガイ接着タンパク質 25g
塩化ナトリウム 0.9g
上記成分を蒸留水100mlに溶解し、酢酸でpH=5.0に調整し、1本あたり2.0mlで包装し、放射線照射で滅菌した。
アルギン酸ナトリウム 7.5g
塩化カルシウム 0.5g
クエン酸ナトリウム 2.5g
上記成分を蒸留水に溶解し、水酸化ナトリウムでpH8.5に調整し、質量濃度3.0%の溶液に調製し、さらに1g/100ml溶液でグリセリンを加え、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。
接着層成分
イガイ接着タンパク質 5g
塩化ナトリウム 0.9g
上記の成分を蒸留水100mlに溶解し、クエン酸でpH=5.0に調整し、1本あたり2.0mlで包装し、放射線照射で滅菌した。
ペクチン 4g
アルギン酸ナトリウム 8g
塩化カルシウム 3g
EDTA 2g
上記の成分を蒸留水に溶解し、水酸化ナトリウムでpH8.5に調整し、質量濃度2.5%に調製し、5g/100mlでポリビニルアルコールを加え、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌して保存した。
接着層成分
イガイ接着タンパク質 10g
塩化ナトリウム 0.9g
上記の成分を蒸留水100mlに溶解し、酢酸でpH=5.0に調整し、1本あたり2.0mlで包装し、放射線照射で滅菌した。
アルギン酸ナトリウム 10g
グルコン酸カルシウム 3g
クエン酸ナトリウム 2.5g
水酸化ナトリウム(pH調整剤)でpH8.0に調整し、調製過程においてpHを弱塩基性に保持した。上記成分を蒸留水に溶解し、質量濃度3.5%に調製し、100mlあたりマンニトール0.15gおよびソルビトール0.15gを加え、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌して保存した。
接着層成分
イガイ接着タンパク質 25g
塩化ナトリウム 0.9g
以上の成分を蒸留水100mlに溶解し、クエン酸でpH=5.0に調整し、1本あたり2.0mlで包装し、放射線照射で滅菌した。
アルギン酸カリウム 10g
乳酸カルシウム 1.4g
塩化カルシウム 0.5g
クエン酸ナトリウム 2.5g
適量の水酸化ナトリウム(pH調整剤)でpH9.0に調整し、調製過程においてpHを弱塩基性に保持した。上記成分を蒸留水に溶解し、質量濃度3%に調製し、1g/100mlでポリエチレングリコールを加え、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌して保存した。
接着層成分
イガイ接着タンパク質 12g
塩化ナトリウム 0.9g
上記成分を蒸留水100mlに溶解し、酢酸でpH=5.0に調整し、1本あたり2.0mlで包装し、放射線照射で滅菌した。
アルギン酸ナトリウム 10g
乳酸カルシウム 1.4g
クエン酸ナトリウム 2.5g
水酸化ナトリウム(pH調整剤)でpH8.5に調整し、調製過程においてpHを弱塩基性に保持した。上記成分を蒸留水に溶解し、質量濃度3%に調製し、1g/100mlでグリセリンを加え、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌して保存した。
胃カメラを用いて接着層成分を胃粘膜創面にスプレーし、さらに胃カメラを用いて保護層成分を接着層成分がスプレーされた胃粘膜創面にスプレーした。
インビトロコロイド膜形成試験
上記接着層成分1mlおよび保護層成分の液体2mlをそれぞれ取り、新鮮な豚胃の内側面に塗布し、次いで希塩酸を含む人工胃液をスプレーし、コロイド膜の形成状況を観察した。結果として、実施例6から実施例10のいずれにおいてもコロイド膜が形成された。
安全性研究試験
実施例6-10に対して以下の生物学的試験を行った。
1)皮内刺激:サンプルの試験液0.2mlを皮内に駐車し、注射の2時間、24時間および72時間後に水腫および赤い腫れ状況を観察した結果、すべての実施例では、反応は0-1レベルであった。
組織接着力の測定(組織残留量法)
実施例6-10に対してそれぞれ以下の試験を行った。
SDラットを取り、24h禁食させ、ペントバルビタールナトリウム溶液(40mg/kg)を腹腔内注射して麻酔させ、解剖して胃を取り出して生理食塩水(37℃)に入れ、生理食塩水で胃の内壁を洗浄し、洗浄した胃を2時間内で使用した。所定面積の胃組織(2cm×2cm)を切り出し、ポリエチレン膜に固定し、0.3ml接着層成分を創面に塗布し、そして0.5ml保護層成分を胃粘膜創面に均一に塗布した。胃組織を相対湿度92.5%の恒湿密閉容器に20分間静置し、上記のように処理された胃組織を洗い流し傾斜槽に固定し、傾斜槽の角度を60度に調整し、蠕動ポンプの流速を20ml/minに調整し、胃組織を0.1mol/L塩酸で5min洗い流し、洗液を重量が既知のビーカーに収集し、70℃で乾燥させ、重量を計量した。組織接着力を接着百分率で表す。
胃組織接着百分率(Bg/%) Bg/%={[M-(G-g-m)]/M}x100%
式中、Mは粘膜保護接着剤の重量(0.5ml、同じ条件下で乾燥)、gは空ビーカーの重量、Gはビーカーと乾燥後残渣との総重量、mは同じ体積洗液に含まれる固形物の量(ブランク対照)である。B値は大きいほど接着力は高くなる。
動物試験
動物を2群に分け、体重は約3kgであった。実験群6匹、対照群6匹。
1.ポロキサマー407 18g
2.ポロキサマー188 0.5g
3.ヒドロキシプロピルメチルセルロース 0.5g
4.アルギン酸ナトリウム 0.3g
上記の成分を4℃で60ml純水に透明な液体となるように完全に溶解し、100mlまで希釈し、1本あたり5mlで包装した。高温蒸気で滅菌した。低温で保存した。
1.ポロキサマー407 20g
2.ポロキサマー188 1g
3.ヒドロキシプロピルメチルセルロース 0.5g
4.アルギン酸ナトリウム 0.4g
上記の成分を4℃で60ml純水に透明な液体となるように完全に溶解し、100mlまで希釈し、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。低温で保存した。
1.ヒドロキシブチルキトサン 5g
2.ポロキサマー188 0.5g
3.コラーゲン 2g
4.アミド化低メトキシルペクチン 1g
上記の成分を4℃で60ml純水に透明な液体となるように完全に溶解し、100mlまで希釈し、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。低温で保存した。
1.ヒドロキシブチルキトサン 8g
2.ポロキサマー188 0.5g
3.コラーゲン 2g
4.脱アセチル化ジェランガム 0.2g
上記の成分を4℃で60ml純水に透明な液体となるように完全に溶解し、100mlまで希釈し、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。低温で保存した。
1.ポリN-イソプロピルアクリルアミド 10g
2.ポロキサマー188 0.5g
3.コラーゲン 2g
4.脱アセチル化ジェランガム 0.2g
上記の成分を4℃で60ml生理食塩水に透明な液体となるように完全に溶解し、100mlまで希釈し、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。低温で保存した。
以上の実施例の液体はそのまま実験に用いられる。
インビトロコロイド膜形成試験
上記液体をそれぞれ2ml取り、新鮮な豚皮の内側面に塗布し、次いで固定液をスプレーし、37℃インキュベーターに置いて10分間静置し、コロイド膜の形成状況を観察した。結果として、実施例11から実施例15のいずれにおいてもコロイド膜が形成された。
安全性研究試験
実施例11-15に対して以下の生物学的試験を行った。
1)口腔粘膜刺激
5mlコロイド液を直径9cmの滅菌ペトリ皿に入れ、固定液をスプレーした後、37℃インキュベーターに置いて30分間インキュベートして成膜させ、さらに3cm2/mlで生理食塩水を加え、37℃で72時間浸出し、試験液を調製した。サンプルの試験液を用いて直径が5mm以下の綿球を作成し、3匹のゴールデンハムスターの片側の頬袋に置いた。接触時間は毎回少なくとも5min、1日1回、合計4回であった。最後の接触の24h後に頬袋を目視観察し、安楽死させた。頬袋の代表的な組織サンプルを取り、4%ホルムアルデヒド溶液に入れて固定した後、組織切片を作成して組織学的評価を行った。結果として、刺激指数はいずれも0であり、試験サンプルは口腔粘膜刺激性を有しなかった。
5mlコロイド液を直径9cmの滅菌ペトリ皿に入れ、固定液をスプレーした後、37℃インキュベーターに置いて30分間インキュベートして成膜させ、さらに3cm2/mlで培地を加え、37℃で24時間浸出し、試験液を調製した。そして、GB/T16886.5に規定の細胞毒性試験に従ってMTT法により測定した結果、細胞の増殖率はいずれも76%-89%の範囲内であった。
5mlコロイド液を直径9cmの滅菌ペトリ皿に入れ、固定液をスプレーした後、37℃インキュベーターに置いて30分間インキュベートして成膜させ、さらに3cm2/mlで培地を加え、37℃で72時間浸出し、試験液を調製した。そして、GB/T16886.10に規定の方法に従って皮膚感作試験を行った結果、いずれも感作作用が観察されなかった。
組織接着力の測定(組織残留量法)
実施例11-15に対してそれぞれ以下の試験を行った。
SDラットを取り、24h禁食させ、ペントバルビタールナトリウム溶液(40mg/kg)を腹腔内注射して麻酔させ、解剖して胃を取り出して生理食塩水(37℃)に入れ、生理食塩水で胃の内壁を洗浄し、洗浄した胃を2時間内で使用した。所定面積の胃組織(2cm×2cm)を切り出し、ポリエチレン膜に固定し、0.5ml保護接着剤を37℃に加温した胃粘膜の創面に均一に塗布し、そして固定液をスプレーした。胃組織を相対湿度92.5%の恒湿密閉容器に20分間静置し、上記のように処理された胃組織を洗い流し傾斜槽に固定し、傾斜槽の角度を60度に調整し、蠕動ポンプの流速を20ml/minに調整し、胃組織を0.1mol/L塩酸で5min洗い流し、洗液を重量が既知のビーカーに収集し、70℃で乾燥させ、重量を計量した。組織接着力を接着百分率で表す。
胃組織接着百分率(Bg/%) Bg/%={[M-(G-g-m)]/M}x100%
式中、Mは粘膜保護接着剤の重量(0.5ml、同じ条件下で乾燥)、gは空ビーカーの重量、Gはビーカーと乾燥後残渣との総重量、mは同じ体積洗液に含まれる固形物の量(ブランク対照)である。B値は大きいほど接着力は高くなる。
動物試験
動物を2群に分け、体重は約3kgであった。実験群6匹、対照群6匹。
<実施例16>
1.アルギン酸カリウム 12g
2.塩化カルシウム 1g
3.クエン酸ナトリウム 2g
4.ポリリジン 10g
上記の成分を1mol水酸化ナトリウムでpH8.0に調整した生理食塩水溶液1500mlに溶解し、1本あたり15mlで包装し、高温蒸気で滅菌し、注射隆起剤を得た。
1.アミド化低メトキシルペクチン 15g
2.塩化カルシウム 1g
3.クエン酸ナトリウム 2.5g
4.ポリリジン 12g
上記の成分を1mol水酸化ナトリウムでpH8.0に調整した生理食塩水溶液1500mlに溶解し、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。
1.アルギン酸ナトリウム 11g
2.クエン酸ナトリウム 4g
3.塩化カルシウム 1.5g
4.ポリリジン 10g
上記の成分を1mol水酸化ナトリウムでpH8.0に調整した生理食塩水溶液1500mlに溶解し、1本あたり15mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。
1.アルギン酸ナトリウム 11g
2.クエン酸ナトリウム 4g
3.グルコン酸カルシウム 6g
4.ポリリジン 10g
上記の成分を1mol水酸化ナトリウムでpH8.0に調整した生理食塩水溶液1500mlに溶解し、1本あたり15mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。
1.アルギン酸カリウム 10g
2.クエン酸ナトリウム 4g
3.乳酸カルシウム 2.8g
4.ポリリジン 10g
上記の成分を1mol水酸化ナトリウムでpH8.0に調整したリン酸塩溶液1500mlに溶解し、1本あたり15mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。
以上の実施例の製品をそのまま実験に用いられる。
実施例16-20で調製された注射隆起剤に対して以下の生物学的試験を行った。
1)口腔粘膜刺激
0.2g/mlで生理食塩水を加えて試験液を調製した。サンプルの試験液を用いて直径が5mm以下の綿球を作成し、3匹のゴールデンハムスターの片側の頬袋に置いた。接触時間は毎回少なくとも5min、1日1回、合計4回であった。最後の接触の24h後に頬袋を目視観察し、安楽死させた。頬袋の代表的な組織サンプルを取り、4%ホルムアルデヒド溶液に入れて固定した後、組織切片を作成して組織学的評価を行った。結果として、刺激指数はいずれも0であり、試験サンプルは口腔粘膜刺激性を有しなかった。
1)試験材料
(1)スーパーマーケットから新鮮な豚胃を3つ購入、実験まで4℃で冷蔵庫に保存。実験は豚の屠殺から12h以内で実施。
(2)実験台、注射器、タイマー、待ち針、糸、カメラ、直定規、白い発泡板、23G、25G(Gauge,略称:G)注射針。
待ち針で豚胃を直方形発泡板に固定し、粘膜下に実施例16-20の注射隆起剤および生理食塩水(対照)溶液(合計6群)をそれぞれ1ml注射したら、豚胃の粘膜下に直ちに隆起が形成された。直定規および糸を用いて各群の隆起の高さを測定し(0min)、デジタルカメラで撮影して各群の粘膜の隆起の高さを正確に記録した。5、15、30および60min後にそれぞれ同じ部位で隆起の高さを測定し、デジタルカメラで撮影して記録した。豚胃の粘膜下注射実験を独立して3回繰り返した。結果から分かるように、本発明は良好な粘膜隆起効果を有する。試験結果を表1に示す。
<実施例21>
医薬組成物成分
シメチジン 0.4g
アモキシシリン 1g
アミド化低メトキシルペクチン 6g
アルギン酸ナトリウム 4g
塩化カルシウム 0.7g
クエン酸ナトリウム 2.5g
カルボキシメチルセルロース 2g
上記の成分を蒸留水に溶解して質量濃度3%に調製し、1本あたり2.5mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。
医薬組成物の原料
ラニチジン 0.2g
アモキシシリン 1g
低メトキシルペクチン 6g
アルギン酸ナトリウム 4g
クエン酸ナトリウム 2.5g
塩化カルシウム 0.7g
カルボキシメチルセルロース 2g
上記の成分を蒸留水に溶解して質量濃度3%に調製し、1本あたり2.5mlで包装し、滅菌して保存した。
医薬組成物の原料
プロトンポンプ阻害剤凍結乾燥粉末 0.03g
アモキシシリン 1g
低メトキシルペクチン 7g
アルギン酸ナトリウム 3g
クエン酸ナトリウム 2.5g
グルコン酸カルシウム 3g
カルボキシメチルセルロース 2g
重曹(pH調整剤):pH8.0に調整
プロトンポンプ阻害剤凍結乾燥粉末は専用溶媒で調製された。調製過程において、pHを弱塩基性に保持した。上記の成分を蒸留水に溶解して質量濃度3%に調製し、1本あたり2.5mlで包装し、滅菌して保存した。
医薬組成物の原料
プロトンポンプ阻害剤凍結乾燥粉末 0.03g
クラリスロマイシン 0.4g
メトロニダゾール 0.5g
低メトキシルペクチン 7g
アルギン酸ナトリウム 3g
クエン酸ナトリウム 2.5g
乳酸カルシウム 1.4g
カルボキシメチルセルロース 2g
重曹(pH調整剤):pH8.0に調整
プロトンポンプ阻害剤凍結乾燥粉末は専用溶媒で調製された。調製過程において、pHを弱塩基性に保持した。上記の成分を蒸留水に溶解して質量濃度3%に調製し、1本あたり2.5mlで包装し、滅菌して保存した。
医薬組成物の原料
プロトンポンプ阻害剤凍結乾燥粉末 0.03g
アモキシシリン 0.8g
メトロニダゾール 0.3g
低メトキシルペクチン 7g
アルギン酸ナトリウム 3g
クエン酸ナトリウム 2.5g
乳酸カルシウム 1.4g
カルボキシメチルセルロース 2g
重曹(pH調整剤):pH8.0に調整
プロトンポンプ阻害剤凍結乾燥粉末は専用溶媒で調製された。調製過程において、pHを弱塩基性に保持した。上記の成分を蒸留水に溶解して質量濃度3%に調製し、1本あたり2.5mlで包装し、滅菌して保存した。
インビトロコロイド膜形成試験
上記液体をそれぞれ2ml取り、新鮮な豚皮の内側面に塗布し、そして希塩酸を含む人工胃液をスプレーし、コロイド膜の形成状況を観察した。結果として、実施例21から実施例25のいずれにおいてもコロイド膜が形成された。
安全性研究試験
健康なラットとマウスに対して実施例1~5で調製された製剤30mlをそれぞれ単回強制経口投与したところ、明らかな急性毒性反応がなく、動物の死亡も引き起こされなかった。強制経口投与の用量が臨床推奨用量の100倍の場合、マウスには明らかな急性毒性反応がなかったが、ラットには下痢、活動低下などの反応があり、急性毒性の標的臓器は肝臓と脾臓であった。
ヘリコバクターピロリ誘導マウス胃潰瘍に対する保護作用(実施例21~25で調製された製剤)
潰瘍モデルの構築および群分け
ヘリコバクターピロリNCTC11637をブルセラブロス培地に接種し、直ちに微好気バッグに入れ、35℃で72h培養した。75匹のICRマウスを雌雄それぞれ半分ずつ選び、乱数表により110匹のマウスを実験群(95匹)および対照群(15匹)に分けた。実験群のマウスに対してそれぞれHp菌液200μl(菌5×108CFU含有)を強制経口投与し、2日間隔で3回させた。すべての動物を強制経口投与処理前に24h禁食、4h断水させ、強制経口投与した後、引き続き4h禁食、断水させた。対照群に対して等量のブルセラブロス培地を強制経口投与した。6週間後、ランダムに実験群のマウスを5匹安楽死させ、胃前庭部組織を取り、HPへの感染に成功したか否かを確認するためにウレアマイシン、細菌学的塗抹検査および組織学的検査を行った。
実施例1群、実施例2群、実施例3群、実施例4群、実施例5群および対照群は、自由に摂食、飲水させた。対照群以外は、それぞれ胃カメラにより胃壁粘膜表面に2つの創面を作り、十分に止血した。すなわち、水対照群(同体積の水を強制経口投与)、実施例1群(0.3ml/20g)、実施例2群(0.3ml/20g)、実施例3群(0.3ml/20g)、実施例4群(0.3ml/20g)、実施例5群(0.3ml/20g)となった。1日1回で14日連続して強制経口投与し、14日目に強制経口投与した後、48時間禁食させ始め、断水させなかった。頸椎脱臼でマウスを安楽死させ、開腹し、噴門と幽門を結紮し、胃内に1%ホルムアルデヒド溶液1.0mlを注射し、胃を同じ濃度のホルムアルデヒド溶液内に30分間固定し、胃を摘出した後、胃大弯に沿って切開し、胃の外を逆さまに内容物を取り除き、水で洗浄して胃内残渣を取り除いた。腺胃部粘膜の潰瘍程度を観察し、マウスの潰瘍面の程度に応じて治癒、有効、無効に分けた。
マウス70、体重18-20g、雌マウスと雄マウスの数が同じ。10匹/群で対照群、モデル群、実施例群1-5の7群にランダムに分けた。
治癒:マウス潰瘍面が完全に消えた。
有効:マウス潰瘍面が良好に改善し、潰瘍面の患部が1/2以上癒合した。
無効:マウス潰瘍面に明らかな改善がなく、潰瘍面の患部の癒合が1/2未満であった。
実験結果を表3に示す。
ラット氷酢酸実験性胃潰瘍に対する保護作用(実施例21~25で得られた製剤)
イヌ64匹、体重9-12kg。雌雄に制限がない。8匹/群で対照群、モデル群、比較例1群、比較例2群、比較例3群、実施例1群、実施例3群、実施例5群の8群にランダムに分けた。上記試験例と同様に、実施例1群は実施例21の製剤に対応し、実施例3群は実施例23の製剤に対応し、実施例5群は実施例25の製剤に対応する。
有効:潰瘍面が良好に改善し、潰瘍面の患部が1/2以上癒合した。
無効:潰瘍面に明らかな改善がなく、潰瘍面の患部の癒合が1/2未満であった。
モデル群との比較から分かるように、本発明の製剤は、胃潰瘍に対して明らかな治療作用を有する。実施例と比較例の比較から分かるように、本発明の製剤を胃カメラによりスプレーすることにより、治療効果は顕著に向上した。
<実施例26>
1.アルギン酸ナトリウム 11g
2.クエン酸ナトリウム 4g
3.β-デキストラン 0.2g
4.塩化カルシウム 1.5g
5.ポリリジン 10g
上記の成分を1mol水酸化ナトリウムを用いて調製した0.01molのpH9.0リン酸塩溶液500mlに溶解し、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。硬化液はグルコン酸カルシウムを用いて調製した2%の水溶液を採用し、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。
1.アルギン酸カリウム 10g
2.クエン酸ナトリウム 4g
3.乳酸カルシウム 2.8g
4.β-デキストラン 0.15g
5.ポリリジン 10g
上記の成分を1mol水酸化ナトリウムを用いて調製した0.01molのpH9.0リン酸塩溶液600mlに溶解し、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。硬化液は、乳酸カルシウムを用いて調製した5%の水溶液を採用し、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。
1.ポロキサマー407 18g
2.ポロキサマー188 0.5g
3.ヒドロキシプロピルメチルセルロース 0.5g
4.アルギン酸ナトリウム 0.3g
5.β-デキストラン 0.15g
上記の成分を4℃で60ml純水に透明な液体となるように完全に溶解し、100mlまで希釈し、1本あたり5mlで包装した。高温蒸気で滅菌した。低温で保存した。
硬化液は塩化カルシウムを用いて調製した1.1%の水溶液を採用し、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。
1.ポリN-イソプロピルアクリルアミド 10g
2.ポロキサマー188 0.5g
3.コラーゲン 2g
4.脱アセチル化ジェランガム 0.2g
5.β-デキストラン 0.15g
上記の成分を4℃で60ml生理食塩水に透明な液体となるように完全に溶解し、100mlまで希釈し、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。低温で保存した。
硬化液は、乳酸カルシウムを用いて調製した5%の水溶液を採用し、1本あたり5mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。
1.アルギン酸ナトリウム 11g
2.クエン酸ナトリウム 4g
3.塩化カルシウム 1.5g
4.ポリリジン 10g
5.β-デキストラン 0.15g
上記の成分を1mol水酸化ナトリウムでpH8.0に調整した生理食塩水溶液1500mlに溶解し、1本あたり15mlで包装し、高温蒸気で滅菌した。
医薬組成物の原料
ラニチジン 0.2g
アモキシシリン 1g
低メトキシルペクチン 6g
アルギン酸ナトリウム 4g
クエン酸ナトリウム 2.5g
塩化カルシウム 0.7g
カルボキシメチルセルロース 2g
β-デキストラン 0.15g
上記の成分を蒸留水に溶解して質量濃度3%に調製し、1本あたり2.5mlで包装し、滅菌して保存した。
1、サンプルの製造
1.1製品説明書に従ってDMEM培養液(高糖)を調製し、10μg/mLウシインスリン、50mg/mLゲンタマイシン、10%ウシ胎児血清を補充した。実施例では、0.2gサンプルをDMEM培養液に入れ、37℃で24時間浸出し、液体部分を取り、0.22μm微孔濾過膜で濾過除菌し、4℃冷蔵庫で使用まで保存した。
1.2ヒト胃粘膜上皮細胞の培養
37℃、飽和湿度、5%CO2無菌インキュベーターで培養し、2-3dごとに培養液を交換し、3-4dごとに継代し、細胞濃度を70%-80%の融合度に維持した。
2.1ヒト胃粘膜上皮細胞GES-1の増殖に対する影響
対数成長期の細胞を取り、濃度を2.0×104個/mLに調整し、100μL/ウェルで96ウェルプレートに接種し、37℃、飽和湿度、5%CO2無菌インキュベーターで24h培養した後、培養液を交換し、実験群に対してそれぞれ実施例の浸出液を200μL加え、ブランク群に対して10%FBSのDMEMを加え、溶媒ブランク群に対して対応する培養液を加え、各群に対して6つの並行実験を設け、24h、48h培養した後、MTS溶液20μLを加え、引き続き4h培養し、吸光度(A492)を測定し、細胞増殖率を計算した。
3、胃粘膜上皮細胞の遊走に対する影響
3.1人胃粘膜上皮細胞GES-1の遊走に対する影響の細胞遊走モデル構築過程
対数成長期のヒト胃粘膜上皮細胞を6X105個の細胞/ウェルで24ウェルプレートに接種(400μL/ウェル)し、37℃、5%CO2のインキュベーターで24h培養し、細胞間に比較的緊密に連結された単層が形成された後、直径1.5mmのキャピラリーで培養皿の中央に垂直に線を引き、顕微鏡下で創面の両側を同時に観察できた。線を引いた後、元の培養液を吸い出し、各ウェルを200μLリン酸緩衝溶液(PBS)で2回洗浄して壁に付着されていない細胞を除去し、さらに各ウェルに本部分の各実施例の浸出液400μLを加え、対照群(CK)に対してはDMEM培養液400μLのみを加えた。ソフトウェアImage pro plus 6.0によりそれぞれ0、6、12、24hの創面癒合情况を測定した。
4、結果
4.1実施例の胃粘膜上皮細胞に対する増殖促進の結果
試験結果から分かるように、実施例は胃粘膜細胞の増殖を明らかに促進でき、増殖の速度はブランクの1.5倍以上であった。
試験結果から分かるように、実施例は胃粘膜細胞の遊走を明らかに促進でき、遊走の速度はブランクの2倍以上であった。
Claims (15)
- 保護層と、生体接着剤とを含む消化管粘膜用保護接着剤であって、
前記保護層の有効成分は、ゲル化物質、水溶性カルシウム塩およびカルシウムイオン錯化剤であり、
前記ゲル化物質は、ペクチン、アルギン酸塩、および脱アセチル化ジェランガムのうちの1種または複数種であり、
前記水溶性カルシウム塩は塩化カルシウム、乳酸カルシウム、グルコン酸カルシウムのうちの1種または複数種であり、
前記生体接着剤は、ポリリジンであり、前記ゲル化物質とポリリジンとの重量比は3:1-3であり、
前記消化管粘膜用保護接着剤のpH値は7以上であることを特徴とする、消化管粘膜用保護接着剤。 - カルシウムイオン錯化剤は、クエン酸、クエン酸塩、EDTAおよびEDTAナトリウム塩のうちの1種または複数種であることを特徴とする、請求項1に記載の消化管粘膜用保護接着剤。
- 前記ペクチンは、低メトキシルペクチンおよびアミド化低メトキシルペクチンのうちの1種または2種であることを特徴とする、請求項1に記載の消化管粘膜用保護接着剤。
- 前記アルギン酸塩は、アルギン酸ナトリウムおよびアルギン酸カリウムのうちの1種または2種であることを特徴とする、請求項1に記載の消化管粘膜用保護接着剤。
- ゲル化物質とカルシウムイオン錯化剤との重量比は3-6:1であることを特徴とする、請求項1に記載の消化管粘膜用保護接着剤。
- 保護層成分には、0.3-5wt%の可塑剤がさらに含まれることを特徴とする、請求項1に記載の消化管粘膜用保護接着剤。
- 前記可塑剤は、グリセリン、ポリエチレングリコール、ポリビニルアルコール、マンニトールおよびソルビトールのうちの1種または複数種であることを特徴とする、請求項6に記載の消化管粘膜用保護接着剤。
- 前記保護接着剤は、固定液をさらに含み、固定液は水溶性カルシウム溶液であることを特徴とする、請求項1に記載の消化管粘膜用保護接着剤。
- 前記水溶性カルシウムは塩化カルシウム、乳酸カルシウム、グルコン酸カルシウムのうちの1種または複数種であることを特徴とする、請求項8に記載の消化管粘膜用保護接着剤。
- 水溶性カルシウム溶液の濃度は0.3%-5%であることを特徴とする、請求項8に記載の消化管粘膜用保護接着剤。
- 前記保護接着剤は、有効量の潰瘍、腫瘍を治療するための医薬化合物または組成物をさらに含むことを特徴とする、請求項1に記載の消化管粘膜用保護接着剤。
- 前記保護接着剤は、胃酸抑制剤、抗ヘリコバクター製剤をさらに含むことを特徴とする、請求項1に記載の消化管粘膜用保護接着剤。
- 胃酸抑制剤は、プロトンポンプ阻害剤またはH2受容体拮抗剤であることを特徴とする、請求項12に記載の消化管粘膜用保護接着剤。
- 抗ヘリコバクター製剤は、ビスマス剤、メトロニダゾールまたはチニダゾール、アモキシシリン、クラリスロマイシン、テトラサイクリン、フラゾリドンのうちの1種または複数種からなることを特徴とする、請求項12に記載の消化管粘膜用保護接着剤。
- 前記保護接着剤は、甘草多糖、β-デキストラン、党参多糖、ソラガム、エリンギデキストラン、燕麦デキストラン、マイタケ多糖、穀物デキストラン、酵母デキストラン、霊芝多糖のうちの1種または複数種をさらに含むことを特徴とする、請求項1に記載の消化管粘膜用保護接着剤。
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