JP7289480B2 - セルラーゼ剤の製造方法ならびに当該セルラーゼ剤を用いた糖化発酵産物の製造方法 - Google Patents
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Description
トリコデルマ属微生物を、pH1以上かつ5未満にて、少なくとも2つのグルコースがβ-1,4結合した多糖を含有する培地にて培養し、セルラーゼ剤を生産させる工程
を含み、
該セルラーゼ剤の濾紙分解活性に対する該セルラーゼ剤におけるβ-グルコシダーゼ活性の比率が3より低い。
上記方法で製造されたセルラーゼ剤で処理したセルロース材料を含有する培地を用いて、β-グルコシダーゼ表層提示微生物を培養し、糖化発酵産物を得る工程
を含む。
上記方法で製造されたセルラーゼ剤で処理したキシロース含有多糖を含む材料を含有する培地を用いて、キシロースを代謝しかつキシロシダーゼを表層提示する微生物を培養し、糖化発酵産物を得る工程を含む。
上記方法で製造されたセルラーゼ剤で該セルラーゼ剤が分解する多糖を含む材料を処理する工程、および
該処理された材料を含む培地で該表層提示微生物を培養する工程
を含み、
該表層提示微生物は、該処理された材料から該微生物が代謝する糖を生成する酵素を表層提示する。
本明細書において「セルラーゼ剤」とは、セルロースを含む植物細胞壁成分の分解能を有する酵素のうち、少なくとも1つの酵素を含み、セルラーゼ剤全体として植物細胞壁成分の分解能を有する組成物をいう。セルラーゼ剤が分解能を有する細胞壁成分としては、セルロースおよびヘミセルロース、ならびにそれらの分解物が挙げられ、この「分解物」は、二糖以上からなる糖である。セルロースは、グルコースがβ-1,4グリコシド結合(「β-1,4結合」ともいう)により直鎖状に重合した高分子である。ヘミセルロースは、植物細胞壁成分のうち、セルロースおよびペクチン以外の不溶性食物繊維の総称であり、キシラン、マンナン、ガラクタンなどから構成される。
本発明において用いられる「表層提示微生物」について以下に説明する。表層提示微生物は、目的分子(例えば、酵素のようなタンパク質)をその菌体細胞の表層に提示する微生物をいう。
本発明においては、上記のセルラーゼの製造方法で製造されたセルラーゼ剤(「TPセルラーゼ剤」)で、TPセルラーゼ剤が分解する多糖基質を含む材料(「TPセルラーゼ剤分解基質含有材料」)を処理し、この処理物から該微生物が代謝する糖を生成する酵素を表層提示する微生物の培養に用いることができる。「TPセルラーゼ剤分解基質含有材料」として、例えば、セルロース材料およびキシロース含有多糖を含む材料ならびにこれらの混合物が挙げられる。例えば、TPセルラーゼ剤でセルロース材料を処理し、この処理物をβ-グルコシダーゼ表層提示微生物の培養に用いることができる。β-グルコシダーゼ表層提示微生物は、このような培養によって、糖化発酵産物を生産し得る。TPセルラーゼ剤で、キシロース含有多糖を含む材料を処理し、この処理物を、キシロースの代謝能を有しかつキシロシダーゼを表層提示する微生物(「キシロース代謝キシロシダーゼ表層提示微生物」)の培養に用いることができる。「キシロース含有多糖」とは、キシロースを構成成分に含む多糖をいい、少なくとも二糖のキシロースを含む。例えば、キシロース代謝キシロシダーゼ表層提示微生物は、このような培養によって、糖化発酵産物を生産し得る。
本実施例においては、種々の測定を下記のように行った。
β-グルコシダーゼ表層提示酵母の調製のため、宿主酵母としてサッカロマイセス・セレビシエTJ14株(Moukamnerdら、Appl. Microbiol. Biotechnol.、2010年、第88巻、p.87-94)を用いた。プラスミドpAUR101-SED1p-OptBGL-SED1-SAG1t(K. Onoderaら,Biochemical Engineering Journal 128 (2017) 195-200:アスペルギウス・アクレアータス由来のβ-グルコシダーゼ遺伝子を含む)をStuIで切断後、酢酸リチウム法によりTJ14株を形質転換し、β-グルコシダーゼ表層提示酵母を得た。
トリコデルマ・リーセイRUT-C30(ATCC56765)の菌株の7日培養菌糸懸濁液5mLを、500mLバッフル付き三角フラスコ中に入れた前培養培地(マンデルス培地に1(w/v)%アビセル(結晶性セルロース)を添加したもの)100mLに接種し、28℃にて175rpmで3日間、前培養した。次いで、この前培養液50mLを、3Lジャー中の本培養培地(マンデルス培地に0.2(w/v)%ペプトンおよび2(w/v)%アビセルを添加したもの)1Lに接種し、通気条件0.2L/分にて上記菌株を培養した。
(2-1:SDS-PAGEによるタンパク質の組成検討)
実施例1の方法で得られたセルラーゼ剤(5ロット分)および市販の改良型セルラーゼ製剤(セルラーゼSS(ナガセケムテックス株式会社製)およびCellic CTec2(ノボザイムズ社製:本明細書中では単に「CTec2」ともいう))をSDS-PAGEに供し、タンパク質の組成を調べた。図2は、SDS-PAGEによるタンパク質の分離および検出(クマシーブリリアントブルー(CBB)染色による)の結果を示す電気泳動図である(レーンM1およびM2:分子量マーカー、レーン1:セルラーゼSS、レーン2:CTec2、ならびにレーン3~7:実施例1の方法で得られたセルラーゼ剤(5ロット分))。
実施例1の方法で得られたセルラーゼ剤の中で濾紙分解活性が25.4FPU/mLを示したロット(「2-2」中においては「実施例1のセルラーゼ剤」)について、β-グルコシダーゼ活性(50℃にて測定)を測定した。濾紙分解活性(FPU)(「A」)に対するβ-グルコシダーゼ活性(U)(「B」)の比率(「B/A」)を算出した。以下の表1に示す市販セルラーゼ製剤とトリコデルマ・リーセイの他の菌株および遺伝子改変株については、それらを記載する文献値に基づき同様にB/Aを求めた。この結果を併せて表1に示す(表1中の文献Aは、Hsieh et al. Biotechnology for Biofuels (2015) 8:52であり、および文献Bは、Moreno et al. Biotechnology for Biofuels 2013, 6:160である)。
実施例1の本培養にて調整していた培養時pHを3.5から5.0に変更し、生産される酵素の活性に影響があるかを調べた。図3は、本培養の培養開始から171時間後の培養上清中の各酵素活性(β-グルコシダーゼ活性(BGL:U/mL)、セロビオヒドロラーゼ活性(CBH:U/mL)および濾紙分解活性(FPA:FPU/mL))の結果を示す。各酵素活性について、pH5.0調整(左)および3.5調整(右)の結果を示す。
サトウキビバガスを200℃にて30分間水蒸気により蒸煮し、さらに水洗後の水不溶画分を水分が約70重量%になるまで濾布を用いて脱水した固形分(蒸煮バガス)をセルロース系バイオマスとして使用した。実施例1の方法で得られたセルラーゼ剤を、セルロース系バイオマスの糖化発酵の際に使用した。糖化発酵を以下のように行った。
実施例3は1バッチ発酵培養であったが、本実施例では酵母菌体回収を伴う7バッチの繰り返し発酵培養を行った。手順は、以下の点を変更した以外は、実施例3と同様である。
実施例3に記載のように調製した蒸煮バガスをアビセルの代わりに用いた以外は、実施例1と同様にして、トリコデルマ・リーセイRUT-C30の前培養および本培養を行った。本実施例では、本培養を168時間行った。前培養で1(w/v)%の蒸煮バガスを、本培養で蒸煮バガス中のセルロース含量を考慮して4(w/v)%の蒸煮バガスを添加した。
実施例1の方法で得られたセルラーゼ剤の代わりに、実施例5の方法で得られたセルラーゼ剤を用いたこと以外は、実施例3と同様に糖化発酵を行った。糖化発酵の培養における初期酵母濃度を2g(湿重量)/Lとした。結果を図7に示す(a:エタノール濃度およびb:セロビオース濃度)。
実験室酵母サッカロマイセス・セレビシエBY4741株を宿主に用いた以外は、調製例1と同じ方法にてβ-グルコシダーゼ表層提示酵母を調製した。このβ-グルコシダーゼ表層提示酵母と、野生型酵母サッカロマイセス・セレビシエBY4741株とを用いたこと以外は、実施例6と同様に糖化発酵を行った。結果を図8に示す(A:エタノール濃度およびB:セロビオース濃度)。
宿主酵母として、ウラシルおよびロイシン栄養要求性マーカーを付与したサッカロマイセス・セレビシエTJ14株を用いた。この宿主酵母は、サッカロマイセス・セレビシエTJ14株(Moukamnerdら、Appl. Microbiol. Biotechnol.、2010年、第88巻、p.87-94)において、ウラシル生合成遺伝子破壊用プライマー対(URA3破壊用フォワードプライマー(配列番号1)およびリバースプライマー(配列番号2))とロイシン生合成遺伝子破壊用プライマー対(Leu2破壊用フォワードプライマー(配列番号3)およびリバースプライマー(配列番号4))を使用して、loxP配列で挟まれた薬剤耐性マーカーを有するpUG6系プラスミド(EUROSCARFより入手)をテンプレートにしたPCRによって得られたPCR断片を導入し、酵母のウラシル生合成遺伝子およびロイシン生合成遺伝子の一部を相同組換えすることによって調製した。キシロース代謝遺伝子(ピチア・スチピチス由来キシロースレダクターゼ(XR)遺伝子、ピチア・スチピチス由来キシリトールデヒドロゲナーゼ(XDH)遺伝子、およびサッカロマイセス・セレビシエ由来キシルロキナーゼ(XK)遺伝子)を含むプラスミドpIU-X3(Appl. Microbiol. Biotechnol., 2006 Oct;72(6):1136-43に記載のプラスミドpIUX1X2XK)をPstIで切断後、酢酸リチウム法により宿主酵母を形質転換した。ウラシル要求性を相補した株のスクリーニングにより、キシロース代謝能力を有するTJ14ΔL-X3(キシロース代謝酵母:この株を「X3株」ともいう)を取得した。続いて、GAPDHプロモーター支配下にアスペルギルス・オリゼ(Aspergillus oryzae)由来のキシロシダーゼ遺伝子(xyd)(Katahiraら(APPLIED AND ENVIRONMENTAL MICROBIOLOGY, Sept.2004, p.5407-5414に記載のXylA遺伝子)をα-アグルチニンと融合するように発現する表層提示型プラスミドpRS405-XydをHpaIで切断してTJ14ΔL-X3株を形質転換した。このpRS405-Xydは、pRS405(ロイシン合成遺伝子を含む)(Stratageneより入手)をNotIで消化し、GAPDHプロモーター(配列番号5)、リソプス・オリゼ(R.oryzae)由来グルコアミラーゼ分泌シグナル(SS)遺伝子(塩基配列(配列番号6)およびコードされる分泌シグナルペプチドのアミノ酸配列(配列番号7))、アスペルギルス・オリゼ由来β-キシロシダーゼ遺伝子(塩基配列(配列番号8)およびコードされるタンパク質のアミノ酸配列(配列番号9))、α-アグルチニン遺伝子(塩基配列(配列番号10)は、C末端から320アミノ酸(配列番号11)をコードする領域を含む)およびGAPDHターミネーター(配列番号12)を含むDNA(配列番号13)を、上記NotIで消化したpRS405に挿入して得た。ロイシン要求性を相補した株のスクリーニングにより、キシロース代謝能力とキシロオリゴ糖の分解能力の両方を有するTJ14-X3-Xyd株(キシロース代謝キシロシダーゼ表層提示酵母:この株を「X3-Xyd #1株」ともいう))を取得した。
(8-1:キシラン液化発酵)
50mLコーニング管に、5×YP培地2mL(2g)、キシラン2g、滅菌水2mL(2g)および実施例1の方法で得られたセルラーゼ剤3mL(3g)を入れ、サーモブロックローテーターによる回転(目盛5)下にて50℃にて4時間混合し、液化液を得た。液化液について、混合開始時では、約4.4g/kgのグルコース、約13.7g/kgのキシロース、および約47.3g/kgの還元糖が存在していたのに対し、混合終了時には、約6.2g/kgのグルコース、約32.4g/kgのキシロース、および約73.2g/kgの還元糖が存在していた。
実施例1と同様に171時間後の培養上清を濃縮して得られた濃縮液について、酵素活性を測定した。濾紙分解活性が24.4FPU/mL、BGL活性が4.8U/mL(50℃)または2.2U/mL(35℃)、EG活性が614.5U/mL、CBH活性が4.6U/mL、Xyn活性が12.3U/mL、Xyd活性が5.8U/mL、そしてタンパク質濃度が27.5mg/mLであった。キシラナーゼおよびキシロシダーゼについては、本実施例のキシラン液化および酵素活性で示されるように、セルラーゼ剤中に明らかに含まれることを確認した。
ラクトバチルス・プランタルムΔldhL1::PxylAB-xpk1::tkt-Δxpk2::PxylAB株(Yoshidaら, Appl. Microbiol. Biotechnol., 2011, Vol.92, 67-76:「PxylAB株」)に、pCUA-Rumal2816(pCUAのBamHI-EcoRI間にルミノコッカス・アルブス(Ruminococcus albus)由来のβ-グルコシダーゼ遺伝子(GenBank Sequence ID:X15415.1)をクローニングしたプラスミド(pCUプラスミド(Okanoら, Appl Microbiol Biotechnol、2007年、第75巻、p.1007-1013)のNdeI-BamHI間にPgsAアンカー(バシルス・ズブチリス由来のポリ-γ-グルタミン酸生合成酵素複合体PgsBCAのサブユニット)を挿入したプラスミド(pCUA)を用意し、このpCUAのBamHI-EcoRI間に上記β-グルコシダーゼ遺伝子をクローニングして作製した)をエレクトロポレーション法により導入し、エリスロマイシン5μg/mLを含むMRS培地で形質転換体のコロニーを取得し、形質転換乳酸菌株(β-グルコシダーゼ表層提示乳酸菌:この株を「pCUA-Rumal2816株」ともいう)を得た。本形質転換乳酸菌株の菌体β-グルコシダーゼ活性は、1日培養時点で1.41U/g(乳酸菌湿重量)であった。
実施例3と同様にして、実施例1の方法で得られたセルラーゼ剤を用いてバガス液化液を調製した。この液化液は約24重量%の固形分を含み、約21g/Lのグルコースと約32g/Lのセロビオース(バイオマスから酵素糖化により遊離した糖)が存在していた。本ロットのセルラーゼ剤は、濾紙分解活性が29.2FPU/mLであり、BGL活性が0.8U/mL(50℃)または0.21U/mL(35℃)であった。
Claims (9)
- 糖化発酵産物の製造方法であって、
セルラーゼ剤で処理したセルロース材料を含有する培地を用いて、β-グルコシダーゼ表層提示微生物を培養し、糖化発酵産物を得る工程
を含み、
該セルラーゼ剤が、トリコデルマ属微生物を、pH3.5以上5未満にて、少なくとも2つのグルコースがβ-1,4結合した多糖を含有する培地にて培養することにより得られたセルラーゼを含み、そして
該セルラーゼ剤の濾紙分解活性に対する該セルラーゼにおけるβ-グルコシダーゼ活性の比率が0.2より低い、方法。 - 前記β-グルコシダーゼ表層提示微生物の酵素力価が、前記セルラーゼ剤の濾紙分解活性に対する該微生物のβ-グルコシダーゼ活性の比率として、0.02~2.5である、請求項1に記載の方法。
- 前記セルロース材料がセルロース系バイオマスである、請求項1または2に記載の方法。
- 前記糖化発酵産物がエタノールである、請求項1から3のいずれかに記載の方法。
- 前記β-グルコシダーゼ表層提示微生物がβ-グルコシダーゼ表層提示酵母である、請求項1から4のいずれかに記載の方法。
- 前記糖化発酵産物が乳酸である、請求項1から3のいずれかに記載の方法。
- 前記β-グルコシダーゼ表層提示微生物がβ-グルコシダーゼ表層提示乳酸菌である、請求項1から3、および6のいずれかに記載の方法。
- 糖化発酵産物の製造方法であって、
セルラーゼ剤で処理したキシロース含有多糖を含む材料を含有する培地を用いて、キシロースを代謝しかつキシロシダーゼを表層提示する微生物を培養し、糖化発酵産物を得る工程
を含み、
該セルラーゼ剤が、トリコデルマ属微生物を、pH3.5以上5未満にて、少なくとも2つのグルコースがβ-1,4結合した多糖を含有する培地にて培養することにより得られたセルラーゼを含み、そして
該セルラーゼ剤の濾紙分解活性に対する該セルラーゼにおけるβ-グルコシダーゼ活性の比率が0.2より低い、方法。 - 表層提示微生物の培養方法であって、この方法は、
セルラーゼ剤で該セルラーゼ剤が分解する多糖を含む材料を処理する工程、および
該処理された材料を含む培地で該表層提示微生物を培養する工程
を含み、
該セルラーゼ剤が、トリコデルマ属微生物を、pH3.5以上5未満にて、少なくとも2つのグルコースがβ-1,4結合した多糖を含有する培地にて培養することにより得られたセルラーゼを含み、
該セルラーゼ剤の濾紙分解活性に対する該セルラーゼにおけるβ-グルコシダーゼ活性の比率が0.2より低く、そして
該表層提示微生物が、該処理された材料から該微生物が代謝する糖を生成する酵素を表層提示する、
方法。
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