JP7247100B2 - ハリ改善作用を有する物質のスクリーニング方法 - Google Patents
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Description
[1] 血管内皮細胞における接着分子の遺伝子発現を指標とした、ハリ改善作用を有する物質のスクリーニング方法。
[2] 前記接着分子が、VE-カドヘリン又はインテグリンα5である、項目1に記載のスクリーニング方法。
[3] 候補薬剤を含む培地で血管内皮細胞を培養し、
血管内皮細胞における接着分子の遺伝子発現を測定し、
対照に比較して前記発現が増加した場合に、候補薬剤をハリ改善作用を有する物質として決定する
を含む、項目1又は2に記載のハリ改善作用を有する物質のスクリーニング方法。
[4] 前記対照が、候補薬剤が添加されない血管内皮細胞培養物における遺伝子発現である、項目1~3のいずれか一項に記載のスクリーニング方法。
[5] 前記遺伝子発現が、血管内皮細胞におけるmRNA量又はタンパク質量により決定される、項目1~4のいずれか一項に記載のスクリーニング方法。
[6] VE-カドヘリン及びインテグリンα5からなる群から選ばれる少なくとも1の血管内皮細胞における接着分子の発現促進剤を含む、ハリ改善剤。
[7] 美容目的のハリ改善方法であって、VE-カドヘリン及びインテグリンα5からなる群から選ばれる少なくとも1の血管内皮細胞における接着分子の発現促進剤を適用することを含む、前記ハリ改善方法。
[8] 美容目的のハリ改善方法であって、37~39℃の温熱処置を皮膚に適用することを含む、前記ハリ改善方法。
[9] 前記温熱処理により、血管内皮細胞における接着分子の発現が促進される、項目8に記載のハリ改善方法。
[10] 前記接着分子が、VE-カドヘリン又はインテグリンα5である、項目9に記載のハリ改善方法。
候補薬剤を含む培地で血管内皮細胞を培養し、
血管内皮細胞における接着分子の遺伝子発現を測定し、
対照に比較して前記発現が増加した場合に、候補薬剤をハリ改善作用を有する物質として決定する
を含む。ここで、対照は、候補薬剤が含まれない培地で培養している点で異なる場合の接着分子の遺伝子発現である。対照についての実験は、本発明のスクリーニング方法と並行して行われていてもよいし、予め行われていてもよい。
キュートメーター(400mbar)を用いて、頬部位の皮膚のハリ指標Ur/Ufを測定した(26歳~39歳の女15名)。また、アジア人の男女(20代~40代)より手術の余剰として採取した皮膚を購入(ILS-Bio社)し、頬部位の皮膚試料を採取し、ImPACTの技術を用い、ヒト皮膚切片を透明化した。一次抗体としてPBSで100倍希釈された抗CD31ヒツジ抗体(:R&Dsystems)を用い、二次抗体としてPBSで200倍希釈されたAlexaFluoro594標識抗ヒツジIgG抗体(Invitrogen)を用いた。染色された皮膚試料をライトシート顕微鏡(カールツァイス社)において観察した。画像解析ソフト(Imaris)を用いて、血管の平均太さ(μm)及び血管密度(%)を測定し、予め測定された皮膚のハリ指標Ur/Ufに対してプロットしたヒストグラムを得た(図1)。ハリ指標と、血管平均太さ及び血管密度とは、それぞれ相関した。
6ウェルプレートのうちの3つのウェルを使って皮膚モデルを下記の方法で作製した。氷上で50mLチューブに0.3%コラーゲン16.7mL入れ、10.6mLのDMEM(-)培地を撹拌しながらゆっくり入れることにより、コラーゲンゲルを調製した。次にヒト線維芽細胞(HF)を、DMEM(-)培地中で10×105 cells/mLに調製した。ヒト臍帯血静脈内皮細胞(HUVEC)を、0.5%FBSを添加したEBM2培地中で10×105 cells/mLとなるように調製した。HF群においては、調製されたHF培養物を2ml分取し、そしてHF-HUVEC群においては調製されたHF培養物及びHUVEC培養物それぞれ2ml分取した。6mLの0.5%FBS添加 EBM2培地と混合して10mLの細胞液を調製した。調製した細胞液10mlとコラーゲンゲル溶液10mLを氷上でよく撹拌し、6ウェルプレートのウェルに、1ウェルあたり6mlを入れた。5%加湿雰囲気下において37℃で一晩振とうさせた後、37℃で5日間静置して、HF皮膚モデル及びHF-HUVEC皮膚モデルを作成した。HF-HUVEC皮膚モデルでは、HUVEC細胞が血管の形状をとることが観察された(データ未掲載)。これらの皮膚モデルにおいてレオメーター(PHYSICA MCR300)を用いPP12のジグで弾力を測定した(図2)。HF皮膚モデルの弾力と、HF-HUVEC皮膚モデルの弾力とでは、有意差があった(p<0.05)。
実施例2のHF-HUVEC皮膚モデルの調製の際に、(振とう培養前から毎日)にアンジオポエチン1(Ang1)を500ng/mlの濃度で培地に添加した。皮膚モデルにおいて、血管内皮細胞を認識する抗CD31ヒツジ抗体(R&D systems)と、二次抗体としてAlexaFluor594標識抗ヒツジ抗体(Invitrogen)を用いて血管内皮細胞を可視化し、蛍光顕微鏡により観察した。皮膚モデル作製前にPKH67 Green Fluorescent Cell Linker Kit(Sigma)を用いて線維芽細胞を可視化し、蛍光顕微鏡により観察した。アンジオポエチン1の添加により、血管様の形状が増加することが観察された(図3A)。画像解析ソフト(Imaris)を用いて、血管の長さ(μm)(図3B)、体積(μm3)(図3C)、及び交差領域(μm2)(図3D)を測定したところ、アンジオポエチン1の添加により、血管様構造の体積が増大した(図3C)(*:p<0.05)。また、レオメーター(PHYSICA MCR300)を用いPP12のジグで弾力を測定したところ、アンジオポエチン1の添加により皮膚のハリが増大した(図3E)(*:p<0.05)。アンジオポエチン1は、血管新生作用を有するため、その作用により皮膚モデルにおいて、血管体積を増大できるものと考えられる。
HUVEC細胞において、siRNAを用いて、VE-カドヘリン(cad)、インテグリンα3(inta3)、インテグリンα5(inta5)、及びインテグリンα6(inta6)の遺伝子発現を抑制した。siRNAとして、Ambion Silencer Select SiRNA、CDH5 (ID:s2780、s2781、s2782)、ITGA3(ID:s7541、s7542、s7543)、ITGA5(ID:s7547、s7548.s7549)、ITGA6(ID:s7492、s7493、s7494)を使用した。HUVEC細胞を10×105 cells/mLに調製した。各細胞を沈殿させ、培地を吸い取った後にキットの溶液100μLを加え混合した。混合された細胞に上述のsiRNA(Ambion)をそれぞれ各1μLずつ加えて全量を4D-Nucleofecter(Lonza)のキュベットに移した。CELL TYPEをHUVECにセットし4D-Nucleofecterスタートさせて遺伝子導入を行った。遺伝子導入が終わった各キュベットにEBM2(+)培地を500μL加え、あらかじめEBM2(+)培地を10mL入れておいた10cmシャーレにキュベットの内容物の全量を加えた。37℃で一晩静置し、翌日この細胞を使って実施例2と同様にして皮膚モデルを作製した。各siRNAを導入された細胞について、定量的PCRを行い、目的の遺伝子発現が抑制されていることを確認した(データ未掲載)。
HUVEC細胞の代わりに、若齢被験者(0歳)の血管内皮細胞、老齢被験者(50歳)の血管内皮細胞を用いて、実施例2と同様にして皮膚モデルを作成した。作成された皮膚モデルにおいて、レオメーター(PHYSICA MCR300)を用いPP12のジグで弾力を測定した(図6A)。若齢被験者の皮膚モデルの弾力と、老齢被験者の皮膚モデルの弾力とでは、有意差があった(*:p<0.05)。
ヒト臍帯血静脈内皮細胞(HUVEC)を、0.5%FBSを添加したEBM2培地中で10×105 cells/mLとなるように調製し、5%CO2加湿雰囲気下において37℃で培養した。候補薬剤として、化粧品素材ライブラリーを用いた。候補薬剤を添加し、6時間培養を行った。培養後、培地を取り除き、RNeasy mini kit(QIAGEN)を使って細胞からRNAを抽出した。抽出したRNAの濃度をnano dropで測定し、RNace-free waterで100ng/mlに調製した。調製したRNAはTaqMan RNA-to-C 1-Step Kit(Applied Biosystems)を使って、VE-カドヘリン遺伝子についてのプライマーを用いてReal Time PCR(Roche Light Cycler480II)で定量した。
ヒト臍帯血静脈内皮細胞(HUVEC)を、0.5%FBSを添加したEBM2培地中で10×105 cells/mLとなるように調製し、5%CO2加湿雰囲気下において37℃で培養した。候補薬剤を添加し、6時間培養を行った。培養後、培地を取り除き、RNeasy mini kit(QIAGEN)を使って細胞からRNAを抽出した。抽出したRNAの濃度をnano dropで測定し、RNace-free waterで100ng/mlに調製した。調製したRNAはTaqMan RNA-to-C 1-Step Kit(Applied Biosystems)を使って、インテグリンα5遺伝子についてのプライマーを用いてReal Time PCR(Roche Light Cycler480II)で定量した。
血管内皮細胞において、VE-カドヘリン遺伝子及びインテグリンα5遺伝子発現を促進する作用を有するシベリアニンジンのハリ改善作用を調べるため、20名の30代女性において、シベリアニンジンエキスの8週間摂取試験を行った。試験開始時、4週後、及び8週後において、頬の弾力をキュートメーターMPA580(インテグラル社)により測定したところ、8週後において肌弾力が有意に増加した(p<0.05:図9)。
健常女性(14名)の頬に対し、Eyeron & Lipronを39℃で5分間適用した。適用前後において、頬の皮膚の弾力をキュートメーターMPA580(インテグラル社)により測定した(図10)。適用前後で、有意に皮膚の弾力が改善した(p<0.05)。
ヒト臍帯血静脈内皮細胞(HUVEC)を、0.5%FBSを添加したEBM2培地中で10×105 cells/mLとなるように調製した。細胞を播種後、5%CO2加湿雰囲気下において、29℃、33℃、及び37℃の温度に分けて培養を行った。1日間培養後、細胞を回収し、RNeasy mini kit(QIAGEN)を使って細胞からRNAを抽出した。抽出したRNAの濃度をnano dropで測定し、RNace-free waterで100ng/mlに調製した。調製したRNAはTaqMan RNA-to-C 1-Step Kit(Applied Biosystems)を使って、インテグリンα5遺伝子及びVE-カドヘリンについてのプライマーを用いてReal Time PCR(Roche Light Cycler480II)で定量した(図11)。VE-カドヘリンの遺伝子発現量は、29℃~37℃まで温度が高くなるにつれて増加した。インテグリンα5の遺伝子発現量は、29℃と33℃との間では変化がなかったものの、37℃において遺伝子発現量が高かった。
Claims (2)
- 血管内皮細胞におけるVE-カドヘリン又はインテグリンα5の遺伝子発現を指標とした、ハリ改善作用を有する物質のスクリーニング方法であって、以下の(1)乃至(3)の工程:
(1) 候補薬剤を含む培地で血管内皮細胞を培養し、血管内皮細胞におけるVE-カドヘリン又はインテグリンα5の遺伝子発現を測定する工程;
(2) 候補薬剤が添加されない培地で血管内皮細胞を培養し、血管内皮細胞におけるVE-カドヘリン又はインテグリンα5の遺伝子発現を測定する工程、
(3) 前記(2)の工程で測定された遺伝子発現に比較して、前記(1)の工程で測定された遺伝子発現が増加した場合に、前記候補薬剤を、ハリ改善作用を有する物質として決定する工程
を含む、前記スクリーニング方法。 - 前記遺伝子発現が、血管内皮細胞におけるmRNA量又はタンパク質量により決定される、請求項1に記載のスクリーニング方法。
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