JP7162537B2 - 幹細胞の中胚葉系細胞への分化誘導用培地および中胚葉系細胞の製造方法 - Google Patents
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Description
[1]ROCK阻害剤、骨形成因子(BMP)、繊維芽細胞増殖因子(FGF)、およびアクチビンを含む、幹細胞の中胚葉系細胞への分化誘導用培地;
[2]ROCK阻害剤が、Y-27632である、[1]に記載の培地;
[3]BMPが、BMP4である、[1]または[2]に記載の培地;
[4]FGFが、FGF-2である、[1]~[3]のいずれか一つに記載の培地;
[5]アクチビンが、アクチビンAである、[1]~[4]のいずれか一つに記載の培地;
[6]中胚葉系細胞が、心筋前駆細胞または心筋細胞である、[1]~[5]のいずれか一つに記載の培地;
[7]幹細胞が、多能性幹細胞または間葉系幹細胞である、[1]~[6]のいずれか一つに記載の培地;
[8]幹細胞から中胚葉系細胞を製造する方法であって、幹細胞を[1]~[7]のいずれか一つに記載の培地で培養する段階を含む、方法;
[9]幹細胞から心筋前駆細胞または心筋細胞を製造する方法であって、
(1)幹細胞を[1]~[7]のいずれか一つに記載の培地で培養する段階、次いで
(2)Wnt阻害剤を含む培地で培養する段階を含む、方法;
[10]Wnt阻害剤が、IWR-1およびIWP-2である、[9]に記載の方法;
[11]培養が、浮遊培養である、[8]~[10]のいずれか一つに記載の方法;
[12]幹細胞が、多能性幹細胞または間葉系幹細胞である、[8]~[11]のいずれか一つに記載の方法;
[13]ROCK阻害剤、BMP、FGF、およびアクチビンを含む、幹細胞の中胚葉系細胞への分化誘導を補助するための組成物;ならびに
[14][8]~[12]のいずれか一つに記載の方法によって得られる細胞群であって、90%以上が中胚葉系細胞である、細胞群。
本発明の培地は、ROCK阻害剤、BMP、FGF、およびアクチビンを含む、幹細胞の中胚葉系細胞への分化誘導用培地である。本発明の培地は、幹細胞用基礎培地に、ROCK阻害剤、BMP、FGF、およびアクチビンを含む成分を添加した培地である。
本発明の方法は、幹細胞から中胚葉系細胞を製造する方法であって、幹細胞を前記1の本発明の培地で培養する段階を含む、方法である。
本発明の組成物は、ROCK阻害剤、BMP、アクチビン、およびFGFを含む、幹細胞の中胚葉系細胞への分化誘導を補助するための組成物である。上記の組成物に含まれるROCK阻害剤、BMP、アクチビン、およびFGFの種類、濃度等については、前記1のとおりである。例示的な実施形態では、用いられるROCK阻害剤はY-27632、BMPはBMP4、アクチビンはアクチビンA、FGFはFGF-2である。上記の組成物は、液体組成物であってもよく、凍結乾燥品などの粉末状組成物であってもよい。
本発明の細胞群は、上述した本発明の方法によって得られる細胞群であって、約90%以上が分化誘導により得られた中胚葉系細胞である、細胞群である。当該細胞群では、約90%以上、例えば約91%、約92%、約93%、約94%、約95%、約96%、約97%、約98%、約99%、またはそれ以上が、中胚葉系細胞である。
幹細胞として、多能性幹細胞であるiPS細胞株253G1を用いた(Nakagawa, M. et. al. Nature Biotechnology 26: 101-106 (2008))。MEF細胞(CF-1 MEF)をフィーダー細胞として用いた。iPS細胞用の培地にて維持培養を行った。iPS細胞用の培地として、KnockOut(商標) DMEM/F12に、KnockOut(商標) Serum Replacement(KSR)(終濃度20%)、0.1mM MEM非必須アミノ酸溶液、1mM L-グルタミン、0.1mM β-メルカプトエタノール、4ng/mL FGF-2を添加したものを用いた。培養したiPS細胞を1mg/mlディスパーゼとセルスクレーパーで剥離した後に継代を行った(Split Ratio=1:5~1:6)。
AccutaseまたはAccuMax(Innovative Cell Technologies)を用いて細胞を剥離した。トリパンブルーで染色後、血球算定盤を用いて生細胞を計数した。
AccuMaxを用いて細胞塊を剥離した後、0.5~2×106個の細胞をFixation/Permeabilization solutionで懸濁し、静置した(4℃、30分または一晩)。Perm/Wash(商標)バッファーで細胞を2回洗浄した。次いで、Anti-Troponin, Cardiac Isoform Mouse-Mono(13-11), Ab-1(1:100)、またはPurified Mouse IgG1, k Isotype Ctrlを一次抗体として添加し、静置した(4℃、30分または一晩)。Perm/Wash(商標)バッファーで細胞を2回洗浄した。次いで、Alexa Flour 488 goat anti-mouse IgG1(1:100)を二次抗体として添加した。Perm/Wash(商標)バッファーで細胞を2回洗浄した。2% FBS in PBSで細胞を1回洗浄後、再懸濁し、Cell Sorter SH800(Sony)を用いてサンプルの測定と解析を行った。
StemPro(登録商標)-34 SFM(Thermo Fisher Scientific)にL-アスコルビン酸2-リン酸三ナトリウム(終濃度50μg/mL)、2mM L-グルタミン、および400μM 1-チオグリセロールを添加した培地を用いた(以下、「基礎培地」という)。図1に概説される培養条件(条件1~4)に従って、iPS細胞を心筋細胞へと分化誘導させた。
条件1~3については、10μM Y-27632を含む基礎培地で1日間培養した(条件1:Day-3~-2、条件2:Day-2~-1、条件3:Day-1~0)。培養後、条件1、2については、さらに、基礎培地でそれぞれ2日間、1日間培養した(条件1:Day-2~0、条件2:Day-1~0)。その後、10ng/mL BMP-4、5ng/mL FGF-2、および6ng/mL アクチビンAを含む基礎培地で3日間培養した(条件1~3:Day0~3)。
条件4については、10μM Y-27632、10ng/mL BMP-4、5ng/mL FGF-2、および6ng/mL アクチビンAを含む基礎培地で1日間の撹拌培養の後(条件4:Day0~1)、10ng/mL BMP-4、5ng/mL FGF-2、および6ng/mL アクチビンAを含有する基礎培地で2日間培養した(条件4:Day1~3)。
それぞれの条件で培養後、リアクターから細胞塊を回収して遠心管に移した。基礎培地で細胞塊を洗浄した後、4μM IWR-1および10μM IWP-2を含有する基礎培地で再懸濁し、3日間培養した(条件1~4:Day3~6)。その後、培地を5ng/mL VEGFおよび10ng/mL FGF-2を含有する基礎培地に置換して、最大10日間培養した(条件1~4:Day6~)。これらの培地での培養では、2日毎に培地交換を行った。
条件AおよびC~Eについては、各条件の培地で1日間の培養の後(条件AおよびC~E:Day0~1)、各培地を10μM Y-27632を除いた培地に置換して、2日間培養した(条件AおよびC~E:Day1~3)。条件BおよびFについては、各条件で1日間培養した後(条件BおよびF:Day0~1)、培地を交換し、さらに同じ条件で2日間培養した(条件BおよびF:Day1~3)。
それぞれの条件で培養後、リアクターから細胞塊を回収して遠心管に移した。基礎培地で細胞塊を洗浄した後、4μM IWR-1および10μM IWP-2を含有する基礎培地で再懸濁し、3日間培養した(条件A~F:Day3~6)。その後、培地を5ng/mL VEGFおよび10ng/mL FGF-2を含有する基礎培地に置換して、最大10日間培養した(条件A~F:Day6~)。
また、細胞が生存した各条件における心筋細胞マーカー(Cardiac Troponin T:cTnT)の最大値は以下の表のとおりであった(図6)。
実施例2の条件Aの条件下で分化誘導して得られた心筋細胞塊を含む培養液(2ml)を12 well plate MICROPLATE with Lid(IWAKI)へ移し、ライカ DMi1 倒立顕微鏡(Leica)にて観察した。その結果、各々の心筋細胞塊が自律的に一定の周期で拍動していることを確認した。
Calcium Kit-Fluo 4(同仁化学研究所)を用いて、細胞塊、ならびに基板上に接着させた細胞のCa+イメージングを行った。実施例2の条件Aの条件下で16日間分化誘導を行って細胞塊を得た。得られた細胞塊をPBSで洗浄した後にLoading Bufferに懸濁し、MATUNAMI GLASS BOTTOM DISH Hydro 35mm dish(松浪硝子工業株式会社)に移した。その後、37℃で1時間インキュベートを行った。インキュベート後に、Loading Bufferを除去しPBSで洗浄を行った。得られた細胞塊をRecording Mediumに移し替え、ECLIPSE Ts2(Nikon)にて、蛍光観察を行った。同様に、実施例2の条件Aの条件下で16日間分化誘導を行って得た細胞塊をAccuMax(Innovation cell technologies)で処理し、細胞塊を剥離した。剥離した細胞塊をDMEM+10%FBSに懸濁し、40μm ストレーナー(FALCON)に懸濁液を通した。予めヒト組換えラミニン-221(0.5μg/cm2、ベリタス)でコートしたMATUNAMI GLASS BOTTOM DISH Hydro 35mm dish上に、1×106細胞/wellとなるよう、DMEM+10%FBSで希釈した細胞を播種し、DMEM+10%FBS中で7日間培養した。その後、上記と同様の操作で、基板上に接着させた細胞のCa+イメージングを行った。その結果、細胞塊、ならびに接着させた細胞について、拍動と同調して、Ca+濃度が上昇する様子を確認することができた。
実施例2の条件Aの条件下で16日間分化誘導を行って得た細胞塊をAccuMax(Innovation cell technologies)で処理し、細胞塊を剥離した。DMEM+10%FBSに懸濁し、40μm ストレーナー(FALCON)に懸濁液を通した。予めフィブロネクチン(5μg/cm2、Sigma)でコートした24 well plate MICROPLATE with Lid(IWAKI)に、4×104細胞/wellとなるよう、DMEM+10%FBSで希釈した細胞を播種し、DMEM+10%FBS中で6日間培養した。培養上清を除き、PBSで3回洗浄後、Fixation/Permeabilization solutionで細胞の固定を行った(4℃、60分または一晩)。PBSで3回洗浄後、PBS+3%FBSでのブロッキングを室温にて、30分間行った。液を捨て、各種抗体を含むPBS+1%FBSに置換した(4℃、60分または一晩)。液を捨て、0.1%FBS/PBSTに置換し、5分間静置して洗浄した(静置洗浄)。この洗浄操作を3回行った。洗浄液を除去後、各種二次抗体を添加した(室温、60分間)。PBSで5分間の静置洗浄を3回行った後、DAPI(Life technologies)で処理した(室温、15分間)。PBSで3回洗浄後、EVOS FL Auto(Life technologies)で、蛍光測定を行った。使用した抗体とその濃度を以下に示す。
[使用した抗体とその濃度]
Anti-Troponin Cardiac Isoform Mouse-Mono(13-11),Ab-1(Thermo Fisher Scientific): 2μg/ml(100倍希釈)
Anti-Sarcomeric Alpha Actinin ab9465(abacam):2.5μg/ml(50倍希釈)
Purified Mouse IgG1,k Isotype Control(Biolegend):2μg/mlまたは2.5μg/ml
Myosin Heavy Chain(MHC) Antibody(R&D systems):2.5μg/ml(200倍希釈)
Negative Control Mouse IgG2b(Dako):2.5μg/ml
Alexa Fluor 488 A21121およびAlexa Fluor 488 A11001(Thermo Fisher Scientific):20μg/ml(100倍希釈)
その結果、心筋マーカーであるcTnT、α-Actinin、およびMHCが、分化誘導させたiPS由来心筋細胞において発現していることを確認した。
実施例2の条件Aの条件下で14日間分化誘導を行って得た細胞塊をAccuMax(Innovation cell technologies)で処理し、細胞塊を剥離した。DMEM+10%FBSに懸濁し、40μm ストレーナー(FALCON)に懸濁液を通した。予め、multi-electrode dish MED-P530A(アルファメッドサイエンティフィック株式会社)の電極を囲う様にシリコンで枠を作成した後、内部をフィブロネクチン(約5μg/cm2、Sigma)でコートした。枠内に1×105個の細胞を播種し、37℃、5%CO2インキュベーター内で1時間静置させた。細胞が沈降、接着した事を確認した後に、培地を補充して4日間培養を行った。細胞外電位の測定はMED64(アルファメッドサイエンティフィック株式会社)で行った。その結果、誘導した心筋細胞で脱分極と再分極が自律的に発生することを確認した。
幹細胞および培養方法
幹細胞として、多能性幹細胞であるiPS細胞株253G1を用いた(Nakagawa, M. et. al. Nature Biotechnology 26: 101-106 (2008))。フィーダーフリーでのiPS細胞の培養は以下の条件で行った。iMatrix(登録商標)511で0.5ng/cm2で培養器をコーティングした。 iPS細胞用の培地として、StemFit(登録商標)AK02Nを使用した。0.5×TrypLE(商標)にて細胞を剥離した後、StemFit(登録商標)AK02NにY―276314を10μM添加した培地にて、4-8×104細胞/T-25フラスコ(Corning)に継代を行った。培養1日以降はStemFit(登録商標)AK02Nで培地交換を行い、維持培養した。
Claims (5)
- 人工多能性幹細胞(iPS細胞)から心筋細胞を製造する方法であって、培養0日目~
1日目はY-27632、BMP-4、FGF-2、およびアクチビンAを含む基礎培地
で、次いで培養1日目~3日目はBMP-4、FGF-2、およびアクチビンAを含む基
礎培地でiPS細胞を培養する分化誘導段階を含む方法であって、前記分化誘導段階の前に胚葉体(EB)形成期間を設けない、方法。 - さらに、Wnt阻害剤を含む培地で培養する段階を含む、請求項1に記載の方法。
- Wnt阻害剤が、IWR-1およびIWP-2である、請求項2に記載の方法。
- 培養が浮遊培養である、請求項1~3のいずれか一項に記載の方法。
載の方法。 - 培地中のY-27632の濃度が5~20μM、BMP-4の濃度が5~20ng/m
l、FGF-2の濃度が2.5~10ng/ml、アクチビンAの濃度が3~12ng/
mlである、請求項1に記載の方法。
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