JP7124062B2 - 尿試料中の検体の存在の検出方法 - Google Patents
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Description
本出願は、平成29年8月28日に出願された米国仮出願第62/550,852号、及び平成29年12月21日に出願された米国仮出願第62/608,656号に対する優先権を主張するものであり、参照としてその全体を本明細書で援用する。
精度管理物質は、尿マトリックスと、
癌細胞、藻類細胞、酵母細胞、卵白、又はこれらの任意の組合せと、を含む。
(実施例)
(赤血球陽性尿の調製)
1)ヒト血液(7~8ml)を10mLヘパリン採血管に採取し、室温で2日間保存した結果、赤血球は安定した。
2)一定分量10μLの安定化血液を、表1に示すように、3種類の異なる培地(10mL)に別々に加えた。各調製物からの一定分量3mLをUrised2で分析した。
表1:安定化赤血球の尿検体の様々な調製液
3)上記のストックから、希釈液として各培地を用いて3000/μL及び500/μLの赤血球を目標として希釈試料を作製した。
表2:目標赤血球濃度を得るための希釈試料の調製
4)表3に示すように、同様の希釈を尿ストック及び2日齢の赤血球(ヘパリン採血管中で2日齢の全血)で陰性尿を用いて繰り返し、1000、800、400、100及び50/μLの赤血球濃度を得た。10mLの陰性尿に10μLの2日齢全血を加えてストックを作製した。ストックの赤血球濃度は6875.44/μLであった。
表3:目標赤血球濃度による直線性試料の調製
(ハイブリドーマ細胞を用いた非扁平上皮細胞及び白血球陽性尿の調製)
1)ハイブリドーマ細胞(マウス脾臓細胞と骨髄腫細胞(p653細胞)とのハイブリダイゼーション)を、内部手続き後にシーメンス・ヘルスケ研究室内で培養した。細胞は生育培地で得た。10mLの培養液に細胞を加え、遠心分離(5~7分で200~500g)して保存液を除去し、培地中に再懸濁し、細胞をCO2インキュベーターに入れた。十分な量の細胞が増殖したら、培地を遠心分離により除去し、細胞をリン酸緩衝生理食塩水中に回収した。
2)次いで、細胞をMDM(寒天)培地中の2%ホルムアルデヒドで24時間、2~8℃で固定した。ホルムアルデヒド溶液を遠心分離により除去し、固定細胞をMDM培地中に再懸濁した。
3)0.5mLの細胞懸濁液(conc.=500/μL)を陰性尿5mLに加えた。懸濁液を均質にし、表4に示すように、試料をUrised2で分析した。
表4:陰性尿中のハイブリドーマ細胞懸濁液の複数のバッチ処理における白血球及び非扁平上皮細胞の濃度
(ヒト肺癌上皮細胞由来非扁平上皮細胞陽性試料の調製(M1975))
1)ヒトM1975細胞をダルベッコイーグル改変培地で培養し、2~8℃で2%ホルムアルデヒド中で24時間固定した。保存した細胞をリン酸緩衝生理食塩水(ウシ血清アルブミン(BSA)とアジ化物で)に24時間保存した。
2)陰性尿(3mL)に細胞懸濁液(100μL)を添加した。一定分量3mLをUrised2で分析した。その結果、非扁平上皮細胞濃度=31.68/μLであった。
3)陰性尿(3mL)に細胞懸濁液(500μL)を添加した。一定分量3mLをUrised2で分析した。その結果、非扁平上皮細胞濃度=176.44/μLであった。(図3)
4)1.5mLの500μL-懸濁液を1.5mLの陰性尿(バッチ処理-2ストック)で希釈した。一定分量3mLをUrised2で分析した。表5に示すように、結果は非扁平上皮細胞濃度=77.88/μLを示した。
5)再現性を確認するため、陰性尿(3mL)に細胞浮遊液(500μL)を加えて別のセットを作製した。一定分量3mLをUrised2で分析した。その結果、非扁平上皮細胞濃度=164.12/μLであった。
6)500μL-懸濁液の2回目のバッチ1.5mLを1.5mLの陰性尿(バッチ-3原液)で希釈した。一定分量3mLをUrised2で分析した。表5に示すように、NEC濃度は82.28/μLであった。
表5:陰性尿に添加したM1975細胞懸濁液を加えて調製した非扁平上皮細胞陽性尿材料の複数のバッチ処理における非扁平上皮細胞の濃度
表6:M1975細胞懸濁液を陰性尿に添加して調製した非扁平上皮細胞陽性尿材料の複数のバッチ処理における非扁平上皮細胞の濃度
(酵母細胞の酵母陽性試料の作製)
1)酵母細胞(ペニシリウム・ロックフォルティ又はパン酵母)を、37℃でショ糖存在下(約0.5%)でリン酸緩衝生理食塩水溶液及び陰性尿中で別々に培養した。
2)酵母陽性臨床尿検体から得た酵母細胞も、1mLの酵母陽性尿検体を40mLの沈渣陰性尿に加えて培養した。臨床分離尿試料中に見られる酵母細胞は、一般的には、カンジダ・アルビンカスである。酵母細胞は、炭水化物の非存在下及び1mLの5%ショ糖溶液の存在下で培養した。混合物を室温で24時間保持し、酵母細胞が増殖できるようにした。
3)上記の方法で培養した酵母細胞を陰性尿試料に加え、試料をUrised2及びAtellicaUAS800で分析した。
表7:実験室で培養した酵母細胞懸濁液を陰性尿に添加して調製した酵母陽性尿材料の複数のバッチ処理における酵母濃度
(卵白由来のMUC陽性試料の調製)
1)5mLの陰性尿に約1mLの卵白を加えた。
2)容器を非常にゆっくりと反転させて混合液を混合した。
3)AtellicaUAS800で試料を分析した。
1)水中の10mLのアミミドロ藻類懸濁液を3000rpmで2分間遠心分離した。遠心分離後、上清を除去し、残留物を残りの1mL容積の懸濁液に再懸濁した。
2)1mLの遠心再懸濁液を3mLの陰性尿と混合した。
3)混合試料をUrised2で試験した。
(実施形態)
実施形態1.顕微鏡による尿沈渣分析装置と共に使用する精度管理物質であって、
尿マトリックスと、
癌細胞、藻類細胞、酵母細胞、卵白、又はこれらの任意の組合せと、
を含む精度管理物質。
実施形態2.癌細胞がSKBR~3細胞又はH-1975細胞である、実施形態1に記載の精度管理物質。
実施形態3.藻細胞が珪藻である、実施形態1に記載の精度管理物質。
実施形態4.酵母細胞が、尿又は出芽酵母中に含まれる天然に存在する酵母(カンジダ・アルビンカス)である、実施形態1に記載の精度管理物質。
実施形態5.結晶、細菌細胞、精子細胞、白血球、赤血球、硝子円柱、又はこれらの任意の組合せをさらに含む、実施形態1~4のいずれか1つに記載の精度管理物質。
実施形態6.被験者由来の尿試料中の検体の存在を検出する方法であって、
精度管理物質中の成分の形態を決定するために、顕微鏡による尿沈渣分析装置を用いて実施形態1~5のいずれか1つに記載の精度管理物質を分析し、
精度管理物質中の成分の形態と尿試料中の検体の形態とを比較し、精度管理物質中の成分の形態と尿試料中の検体の形態とが一致することは、尿試料中での検体の存在を示す、検出方法。
実施形態7.
(i)検体が非扁平上皮細胞であり、精度管理物質が癌細胞を含み、
(ii)検体が異常な円柱であり、精度管理物質が藻細胞を含み、
(iii)検体が酵母細胞であり、精度管理物質が酵母細胞を含み、
(iv)被検体が粘液であり、精度管理物質が卵白を含み、
(v)(i)~(iv)の任意の組合せを含む、実施形態6に記載の検出方法。
実施形態8.癌細胞がSKBR-3細胞又はH-1975細胞である、実施形態7に記載の検出方法。
実施形態9.藻類細胞が珪藻類である、実施形態7に記載の検出方法。
実施形態10.酵母細胞が、尿又は出芽酵母中に含まれる天然に存在する酵母(カンジダ・アルビンカス)である、実施形態7に記載の検出方法。
実施形態11.被験者由来の尿試料中の1つ以上の検体の存在を同定する際に使用する、実施形態1~5のいずれか1つに記載の精度管理物質。
実施形態12.顕微鏡による尿分析装置と共に使用する精度管理物質の製造における癌細胞、藻類細胞、酵母細胞、卵白、又はそれらの任意の組合せの使用方法。
Claims (4)
- 被験者由来の尿試料中の検体の存在の検出方法であって、
顕微鏡による尿沈渣分析装置を用いて尿マトリックス、並びに、SKBR-3細胞若しくはH-1975細胞である癌細胞、珪藻である藻類細胞、卵白又はこれらの任意の組み合わせを含有する精度管理物質を分析して前記精度管理物質中の成分の形態を決定し、
前記精度管理物質中の前記成分の形態と前記尿試料中の検体の形態とを比較し、前記検体の形態と前記精度管理物質中の成分の形態とが一致することにより、前記尿試料中での前記検体の存在が示されることを特徴とする、検出方法。 - (i)前記検体が非扁平上皮細胞であって、前記精度管理物質が癌細胞を含むか、
(ii)前記検体が異常な円柱であって、前記精度管理物質が藻類細胞を含むか、
(iii)前記検体が粘液であって、前記精度管理物質が卵白を含むか、又は
(iv)前記(i)~(iii)の任意の組合せを含む、
請求項1に記載の検出方法。 - 前記精度管理物質が、更に、結晶、細菌細胞、精子細胞、白血球、赤血球若しくは硝子円柱、又はこれらの任意の組合せを更に含む、請求項1又は2に記載の検出方法。
- 前記精度管理物質が被験者由来の尿試料中の1つ以上の検体の存在を同定するために使用される請求項1~3のいずれか1項に記載の検出方法。
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