JP7114711B2 - 植物用生育補助剤及び植物の生育方法 - Google Patents
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Description
本発明の目的は、葉内に薬剤を効率的に取り込ませることができ、粒子からの薬剤の溶出特性に優れる植物用生育補助剤を提供することにある。
(1)葉内に薬剤を効率的に取り込ませることができる。
(2)粒子からの薬剤の適度な溶出性を有し、薬剤の徐放性に優れ、薬効の持続性に優れる。
(3)上記(1)と(2)により、少量の使用量で植物の生育促進等が可能であり、植物の生育性に優れる。
本発明における生分解性樹脂(A)としては、生分解性を有する樹脂、即ち、微生物分解、酵素分解又は生物による摂食が可能である樹脂であれば特に制限なく用いることができる。それらの樹脂の中でも、生分解性を評価するOECD301Cの試験方法に基づく易分解性の条件を満たす樹脂を使用することが好ましい。生分解性樹脂(A)は1種を単独で用いてもよく、2種以上を併用してもよい。加水分解されやすく、粒子(P)からの疎水性薬剤(B)の溶出性と徐放性とのバランスに優れるという観点からは、ポリ乳酸、ポリカプロラクトン、ポリグリコール酸及び乳酸-グリコール酸共重合体並びにこれらの樹脂のいずれかからなるセグメント(ポリ乳酸、ポリカプロラクトン、ポリグリコール酸又は乳酸-グリコール酸共重合体からなるセグメント)とSP値が5~15である樹脂からなるセグメントとを有する樹脂からなる群から選ばれる少なくとも1種の樹脂が好ましい。一態様において、生分解性樹脂(A)として、ポリ乳酸、ポリカプロラクトン、ポリグリコール酸又は乳酸-グリコール酸共重合体からなるセグメントとSP値が5~15である樹脂からなるセグメントとを有する樹脂及びポリ乳酸からなる群より選択される少なくとも1種がより好ましく、ポリ乳酸、及び/又は、ポリ乳酸からなるセグメントとSP値が5~15である樹脂からなるセグメントとを有する樹脂がさらに好ましい。
SP値が5~15である樹脂からなるセグメントとして、エチレンオキサイド(以下EOと略記)の単独重合体、EOとプロピレンオキサイド(以下POと略記)との共重合体(以下EO-PO共重合体と記載)又はイオン性モノマーの重合体からなるセグメントが好ましい。
装置:「HLC-8120GPC」[東ソー(株)製]
カラム:「Guardcolumn HXL-H」(1本)、「TSKgel GMHXL」(2本)[いずれも東ソー(株)製]
試料溶液:0.25重量%のテトラヒドロフラン溶液
溶液注入量:100μL
流量:1mL/分
測定温度:40℃
検出装置:屈折率検出器
基準物質:標準ポリスチレン
本発明におけるSP値の計算方法は、Robert F Fedorsらの著による文献(Polymer Engineering and Science,Feburuary,1974,Vol.14,No.2 P.147~154)に記載の方法による。
EOの単独重合体又はEO-PO共重合体を用いる場合、ポリ乳酸、ポリカプロラクトン、ポリグリコール酸又は乳酸-グリコール酸共重合体が有するカルボキシル基(水酸基のみを有する場合、酸無水物等でカルボキシル基に変換後)とEOの単独重合体又はEO-PO共重合体が有する水酸基とを反応させることにより上記2種のセグメントを有する樹脂を得ることができる。
イオン性モノマーを用いる場合、例えばポリ乳酸、ポリカプロラクトン、ポリグリコール酸又は乳酸-グリコール酸共重合体が有する水酸基に不飽和カルボン酸無水物を反応させて不飽和2重結合を導入してこれに上記イオン性モノマーを重合させることにより上記2種のセグメントを有する樹脂を得ることができる。
装置:「Waters Alliance 2695」[Waters社製]
カラム:「Guardcolumn Super H-L」(1本)、「TSKgel SuperH2000、TSKgel SuperH3000、TSKgel SuperH4000(いずれも東ソー(株)製)を各1本連結したもの」
試料溶液:0.25重量%のテトラヒドロフラン溶液
溶液注入量:10μL
流量:0.6mL/分
測定温度:40℃
検出装置:屈折率検出器
基準物質:標準ポリエチレングリコール
粒子(P)における生分解性樹脂(A)の含有量は、薬剤の溶出制御の観点から20~95重量%が好ましく、20~80重量%がより好ましく、さらに好ましくは30~70重量%である。一態様において、粒子(P)が生分解性樹脂(A)としてポリ乳酸、ポリカプロラクトン、ポリグリコール酸及び乳酸-グリコール酸共重合体並びにこれらの樹脂のいずれかからなるセグメントとSP値が5~15である樹脂からなるセグメントとを有する樹脂からなる群から選ばれる少なくとも1種を含有する場合、ポリ乳酸、ポリカプロラクトン、ポリグリコール酸及び乳酸-グリコール酸共重合体、並びに、これらの樹脂のいずれかからなるセグメントの合計含有量が、粒子(P)中に20~80重量%が好ましく、30~70重量%がより好ましい。
本発明における疎水性薬剤(B)における疎水性とは、25℃におけるオクタノール/水分配係数(LogPow)が0を超えるものを意味する。オクタノール/水分配係数(LogPow)は、薬発第291号,62基局,第171号 OECD Test Guideline ([C(81)30 最終別添1])107において規定されている化学物質の分配係数(1-オクタノール/水)測定方法に準じて測定することができる。
好ましい疎水性薬剤(B)としては、例えば、上市されている農薬では、チアジニル(LogPow=3.68)、アシベンゾラル-S-メチル(LogPow=3.1)、イソチアニル(LogPow=2.96)、ベンジルアミン(LogPow=1.09)、カルプロパミド(LogPow=4.2)、ベノミル(LogPow=1.3)、ピロキロン(LogPow=1.42)、チオファネートメチル(LogPow=1.5)、チオジカルブ(LogPow=1.62)、ホスチアゼート(LogPow=1.68)、チウラム(LogPow=1.73)、メタラキシル(LogPow=1.75)、メチダチオン(LogPow=2.2)、ベンスルタップ(LogPow=2.2)、メトミノストロビン(LogPow=2.32)、フラメトピル(LogPow=2.36)、フルスルファミド(LogPow=2.8)、キャプタン(LogPow=2.8)、フェリムゾン(LogPow=2.89)、ミクロブタニル(LogPow=2.9)、フルバリネート(LogPow=2.9)、TPN(クロロタロニル)(LogPow=2.92)、ボスカリド(LogPow=2.96)、ペフラゾエート(LogPow=3.0)、フサライド(LogPow=3.01)、ジエトフェンカルブ(LogPow=3.02)、フルオルイミド(LogPow=3.04)、プロシミドン(LogPow=3.14)、フルトラニル(LogPow=3.17)、ジチアノン(LogPow=3.2)、シアゾファミド(LogPow=3.2)、フェンブコナゾール(LogPow=3.23)、メパニピリウム(LogPow=3.28)、ダイアジノン(LogPow=3.3)、イプロベンホス(LogPow=3.37)、イソプロチオラン(LogPow=3.3)、クレソキシムメチル(LogPow=3.4)、ビフェナゼート(LogPow=3.4)、フェニトロチオン(LogPow=3.43)、ピラクロホス(LogPow=3.77)、アクリナトリン(LogPow=5.25)、ジフルフェニカン(LogPow=4.9)、フィプロニル(LogPow=4)、フルアズロン(LogPow=5.1)、フルフェノクスロン(LogPow=4.01)、ヘキサフルムロン(LogPow=4.68)、ルフェニュロン(LogPow=5.12)、テフルベンズロン(LogPow=4.3)、テフルスリン(LogPow=6.5)、テトラコナゾール(LogPow=3.53)、チアゾピル(LogPow=3.89)及びトランスフルスリン(LogPow=5.46)等が挙げられる(LogPowはいずれも25℃におけるLogPow)。
また、植物の生育を促進する疎水性農業用薬剤(25℃におけるLogPowが1~10のもの)としては脂溶性ビタミン類等が挙げられ、その他開発が進んでいる25℃におけるLogPowが1~10の薬剤としてはスフィンゴ脂質等が挙げられる。疎水性薬剤(B)は、1種を単独で用いても2種以上を併用してもよい。
本発明における粒子(P)は、生分解性樹脂(A)と疎水性薬剤(B)とを含有する。
粒子(P)における生分解性樹脂(A)と疎水性薬剤(B)の重量比[(A):(B)]は、疎水性薬剤(B)の溶出性の観点から、5:1~30:1が好ましく、より好ましくは5:1~20:1である。
本発明において、HLB(Hydrophile-Lipophile Balance)値とは、無機性/有機性のバランスを示す尺度であり、HLB値が高いほど無機性が高いことを意味する。HLB値としては、小田法により下記の計算式で算出した値を用いる。
HLB=10×無機性/有機性
小田法は、例えば「界面活性剤入門」(2007年 三洋化成工業株式会社発行)212頁に記載されている。HLB値を導き出すための有機性の値及び無機性の値については前記「界面活性剤入門」213頁に記載の表の値を用いて算出することができる。
生分解性樹脂(A)と疎水性薬剤(B)とを混合する際に(B)の分散剤として界面活性剤(C)を用いた場合、粒子(P)中に(C)が存在する形態で粒子(P)が(C)を含有する。
また、粒子(P)は、例えば生分解性樹脂(A)及び疎水性薬剤(B)を親水性溶媒に溶解させた後、界面活性剤(C)を溶解させた水に滴下することで、容易に製造できるが、この場合、生分解性樹脂(A)と疎水性薬剤(B)からなる粒子の表面に界面活性剤(C)が吸着した形態で粒子(P)が(C)を含有する。
尚、本発明における親水性溶媒とは、20℃の水100gに20g以上溶解する溶媒を意味する。
界面活性剤(C)の水溶液における(C)の濃度は、ハンドリング性の観点から0.01~1重量%であることが好ましい。
生分解性樹脂(A)及び疎水性薬剤(B)の親水性溶媒溶液を界面活性剤(C)の水溶液に滴下する際、スターラー等を用いて親水性溶媒溶液を100~500rpmで攪拌しながら滴下することが好ましい。
メジアン径が1nm未満のものは工業的に製造困難であり、300nmを超えると粒子(P)の植物への取り込みが不充分となり、また、疎水性薬剤(B)の粒子(P)からの溶出性が不良となる。
本発明におけるメジアン径は、動的光散乱測定装置[例えば、動的光散乱式粒分布測定装置LB-550(HORIBA社製)、Zetasizer Ultra(マルバーン・パナリティカル社製)及びDelsaMax CORE(ベックマン・コールター社製)]等で測定できる。
本発明の植物用生育補助剤(X)は、生分解性樹脂(A)と疎水性薬剤(B)とを含有する粒子(P)を含有する。
本発明の植物用生育補助剤(X)は、更に水及びオクタノール/水分配係数(LogPow)が1未満、好ましくは0以下の薬剤(硫酸アンモニウム等の肥料及び農薬等)、展着剤(ノニオン性界面活性剤、アニオン性界面活性剤、カチオン性界面活性剤及びシリコーン系展着剤等)等を含有することができる。展着剤には、分子量が2,000以上(好ましくは2,000~80,000)の化合物を使用することができる。
植物に散布又は塗布する際には、植物用生育補助剤(X)の水分散体の形態で使用することが好ましい。葉に適用する場合には、植物が有する葉の一部に散布又は塗布してもよく、全ての葉に散布又は塗布してもよい。
植物用生育補助剤(X)の水分散体における(X)の重量割合は、散布性及び植物の生育性の観点から、水分散体の重量を基準として、粒子(P)の重量割合として、好ましくは0.5~15重量%、より好ましくは1~10重量%である。
また、葉に散布等で適用する場合、葉の面積に対する使用量(好ましくは散布量)は、粒子(P)の使用量(散布量)として、好ましくは1~200g/m2、より好ましくは3~100g/m2である。
葉面散布又は塗布は、葉の表側、裏側のいずれに行ってもよく、両側に行ってもよい。
育苗シート用材料(Y)及び/又は育苗シート(Z)を設置した土に、種子を播種し、出芽させ、緑化を行い、緑化の期間に植物用生育補助剤(X)を苗の葉に適用する。植物用生育補助剤(X)の葉への適用(好ましくは葉面散布)は、葉の表側、又は、裏側のいずれに行ってもよく、葉の両側に行ってもよい。育苗シート用材料(Y)及び/又は育苗シート(Z)は、育苗箱などに設置することができ、該材料(Y)及び/又はシート(Z)の上に土(床土)を入れ、種子を播種することが好ましい。
種子は、上記の植物の種子が好ましい。播種前には、種子の予備措置(種子の選別、浸種及び催芽など)を行ってもよい。床土や、種子の播種、出芽、緑化及び硬化の条件等は、植物の種類に応じて選択又は調整すればよい。硬化後には、苗を本田又は本畑に移植することが好ましい。
通常、田植機で植えられる苗は、育苗床と呼ばれる床の中で育てられるが、例えば以下のような育苗工程が望ましい。
1)種子の予備措置
1-1)種モミ選別:消毒の後、塩水選により浮モミを除去し、水洗の後乾燥する。
1-2)浸種:5日間浸水して、種モミの吸水を均一にする。
その間、毎日の水替えと、水切りにより酸素補給を繰り返す。
1-3)催芽:酸素補給の後、32℃の温湯で10時間浸種してハト胸状態にする。
2)床土の調整
通気性と水はけのよい団粒構造の土を選び、pH5に調整する。元肥を配合する。
3)土入れ
育苗床に床土を入れ鎮圧し平面にする。
4)播種
苗床に均一にまいて灌水し、種モミの腹を落付かせる。
まきムラを手直しする。
5mm厚に土を入れ、均し平面にする。
6)育苗器による出芽そろえ、32℃で2日間で鞘葉長1.2cmくらいに仕立てる。
7)予備緑化
酸素補給、灌水の後育苗床でチラチラ光線を当て、25℃で1日、20℃で1日管理する。
8)緑化
ハウス内で昼間30℃、夜間12℃で8日間、毎日数回、充分灌水を繰り返して2.5葉を展開させる。
9)硬化
昼間20℃、夜間10℃の管理で10日間、自然条件になじむ3.5葉令の苗に徐々に育てる。
育苗シート用材料(Y)は吸水性高分子材料(D)を含有することが好ましく、必要に応じて肥料(E)を含有してもよい。さらに、フィラー(F)を含有する育苗シート用材料であることが好ましい。
なお、吸水倍率は下記の方法で測定される。
[イオン交換水の吸水倍率の測定法]
ナイロン製の網袋(250メッシュ)に吸水性高分子材料の試料L(g)を入れ、これを袋ごと過剰のイオン交換水に浸す。浸漬60分後に袋ごと空中に引き上げ、静置して15分間水切りした後、重量M(g)を測定して下式より吸水倍率を求める。
なお網袋のみを用いて上記と同様の操作を行い、この分の重量N(g)をブランクとして差し引く。
イオン交換水の吸水倍率=(M-N)/L
なお、pH値は下記の方法で測定される。
〔pH値の測定法〕
25℃のイオン交換水100重量部に対して吸水性高分子材料1重量部を入れ、25℃で8時間、恒温槽中で放置して、前記吸水性高分子材料を膨潤させ吸水体を作製する。吸水体の温度が25℃であることを温度計で確認し、pHメーターを吸水体に差し込み、pH値がほぼ安定したことを確認した後、値を読み取る。なお、吸水性高分子材料の吸水倍率が小さい場合には、吸水性高分子材料の吸水体とイオン交換水が分離して2相になるので、撹拌して均一にした後、pHメーターを差し込み、値を測定する。撹拌及び均一化してもすぐに2相に再び分離する場合は、撹拌下にpHメーターを差し込み、値を測定する。
育苗シート(Z)は、前記育苗シート用材料(Y)と、育苗シート基材とを有する育苗シートである。該育苗シート基材としては、シート(G)が挙げられる。
容器に、ポリ乳酸[Mw=60,000、シグマアルドリッチ(株)製]50mg、チアジニル[LogPow=3.68、富士フイルム和光純薬(株)製]5mgをアセトン10mLに溶解させた。EO-PO共重合体[ニューポール PE-128、数平均分子量(Mn)31,000、EO/PO=6.1(モル比)(EO-PO共重合体中のEOの重量割合:82.2重量%)、HLB=4.89、三洋化成工業(株)製]50mgをイオン交換水20mLに溶解し、マグネチックスターラー HS-30D[アズワン(株)製]を用いて200rpmで撹拌させている25℃の上記水溶液に対して、25℃の上記ポリ乳酸溶液を5分間滴下して、更に同じ撹拌速度で、25℃で20分間撹拌を続けた。その後、溶媒をエバポレーターで減圧留去し、凍結乾燥することで粒子(P-1)を得た。粒子(P-1)のメジアン径は190nmであった。
ポリ乳酸としてポリ乳酸[RESOMER R203S、Mw=23,000、シグマアルドリッチ(株)製]を用いること以外は製造例1と同じ操作を行い、粒子(P-2)を得た。粒子(P-2)のメジアン径は155nmであった。
EO-PO共重合体としてEO-PO共重合体[ニューポール PE-78、Mn=9,350、EO/PO=4.8(モル比)(EO-PO共重合体中のEOの重量割合:78.6重量%)、HLB=5.01、三洋化成工業(株)製]を用いること以外は製造例1と同じ操作を行い、粒子(P-3)を得た。粒子(P-3)のメジアン径は180nmであった。
界面活性剤として、製造例1で使用したEO-PO共重合体の代わりにEO-PO共重合体[ニューポール PE-78、Mn=9,350、三洋化成工業(株)製]、ポリ乳酸としてポリ乳酸[RESOMER R203S、Mw=23,000、シグマアルドリッチ(株)製]を用いること以外は製造例1と同じ操作を行い、粒子(P-4)を得た。粒子(P-4)のメジアン径は120nmであった。
疎水性薬剤としてチアジニルの代わりにカルプロパミド[LogPow=4.2、富士フイルム和光純薬(株)製]を用いること以外は製造例1と同じ操作を行い、粒子(P-5)を得た。粒子(P-5)のメジアン径は170nmであった。
ポリ乳酸を乳酸-グリコール酸共重合体[RESOMER RG505、Mw=61,500、シグマアルドリッチ(株)製]に変更すること以外は製造例1と同じ操作を行い、粒子(P-6)を得た。粒子(P-6)のメジアン径は186nmであった。
フラスコに、ポリ乳酸[Mw=60,000、シグマアルドリッチ(株)製]1.4gとEO-PO共重合体[ニューポール PE-128、Mn=31,000、SP値9.24、三洋化成工業(株)製]0.7gを混合し、180℃で加熱溶融させた。その後、ジ(2-エチルヘキサン酸)すず触媒を添加(1.4mg)し、窒素置換後、180℃で15時間加熱し、ポリ乳酸にEO-PO共重合体が結合したポリマーを得た。容器に、上記ポリ乳酸にEO-PO共重合体が結合したポリマー50mg、チアジニル[LogPow=3.68、富士フイルム和光純薬(株)製]5mgをアセトン10mLに溶解させた。この溶液をマグネチックスターラー HS-30D[アズワン(株)製]を用いて200rpmで撹拌させている25℃のイオン交換水20mLに対して、25℃で5分間滴下して、更に同じ撹拌速度で25℃で20分間撹拌を続け、その後、溶媒をエバポレーターで減圧留去することで粒子(P-7)を得た。粒子(P-7)のメジアン径は180nmであった。
EO-PO共重合体として、下記の方法で製造したEO-PO共重合体(Mn=31,000、EO/PO=0.5(モル比)(EO-PO共重合体中のEOの重量割合:27.2重量%)、HLB=4.89)を用いること以外は製造例1と同じ操作を行い、粒子(P-8)を得た。粒子(P-8)のメジアン径は170nmであった。
(EO-PO共重合体の製造)
撹拌機、温度計、圧力計、耐圧滴下ボンベ、減圧及び窒素導入ラインの付いたオートクレーブ中にエチレングリコール0.2重量部(1モル)、水酸化カリウム0.43重量部を加え撹拌を開始し窒素封入し130℃に昇温した後、圧力-0.1MPaGで1時間脱水した。次いで160℃に昇温し、圧力0.3MPaG以下で1,2-プロピレンオキサイド72.3重量部(388モル)を6時間かけて逐次滴下し、同温度で圧平衡になるまで1時間撹拌した。次いでエチレンオキサイド27.4重量部(194モル)を3時間かけて逐次滴下し、同温度で圧平衡になるまで1時間撹拌した。その後60℃に冷却し、酢酸0.32重量部で中和し、EO-PO共重合体を得た。
ポリ乳酸の代わりに、生分解性を有しないポリスチレン[Mw=50,000、富士フイルム和光純薬(株)製]を用いること以外は製造例1と同じ操作を行い、粒子(P’-1)を得た。粒子(P’-1)のメジアン径は165nmであった。
上記粒子(P-1)~(P-8)又は(P’-1)20mgが生理食塩水3mLに分散した分散液を用意し、分画分子量(MWCO)14,000である透析膜を用いて、外槽の溶液である生理食塩水150mLに対して、透析を行った。外槽溶液に溶出した薬剤の溶出率[100×溶出した薬剤重量/初期の粒子中の薬剤重量(%)]を所定の時間毎にHPLC装置を用いて測定した。その結果を表1に示す。
<製造例9>
エッペンチューブにベンジルアミン[LogPow=1.09、富士フイルム和光純薬(株)]50μLと0.1M リン酸緩衝液 pH7.2[富士フイルム和光純薬(株)製]50μLを入れ混合した。その溶液に、5μLのNa125I溶液(3.7GBq/mL、NEN Research Products社製)を加えた。クロラミンT[富士フイルム和光純薬(株)製]を0.1Mリン酸緩衝液(pH7.2)溶液で溶解させ、0.5mg/mL濃度となるように調製したクロラミンT溶液200μLを上記エッペンチューブに添加し、25℃で2分間、放射線同位体ラベル化反応を行った。次に、200μLの4mg/mL二亜硫酸ナトリウムのリン酸緩衝液(pH7.2)を加えて、反応を停止させた。ラベル化されていない未反応のNa125IはPD10カラム(GEヘルスケア社製)を用いて除去した。
チアジニルに代えて、製造例9で作製した放射線同位体ラベル化ベンジルアミンを用いたこと以外は、製造例1と同じ操作を行い、粒子(P-9)を得た。粒子(P-9)のメジアン径は185nmであった。
チアジニルに代えて、製造例9で作製した放射線同位体ラベル化ベンジルアミンを用いたこと以外は、製造例4と同じ操作を行い、粒子(P-10)を得た。粒子(P-10)のメジアン径は125nmであった。
チアジニルに代えて、製造例9で作製した放射線同位体ラベル化ベンジルアミンを用い、ポリ乳酸としてポリ乳酸[RESOMER RG756S、Mw=96,000、シグマアルドリッチ(株)製]を用いたこと以外は製造例1と同じ操作を行い、粒子(P’-2)を得た。粒子(P’-2)のメジアン径は360nmであった。
粒子(P-9)20mgが生理食塩水3mLに分散した分散液を用意した。市販のハーブ苗のポット(直径9cm)の葉1枚に、葉からこぼれないように留意しながら粒子(P-9)の分散液(ナノ粒子分散液)100μLを、葉の表側に噴霧した。25℃で1時間静置した後、分散液を噴霧した葉を切り取り、イオン交換水の入った容器に1分間浸漬して容器から取り出した。容器の水を新鮮なイオン交換水に交換し、更に葉を容器内の新鮮なイオン交換水に1分間浸漬して引き上げる操作を計3回繰り返すことで、葉表面に付着していたラベル化薬剤を除去した。その葉(対象葉試料)をガンマカウンター(ARC-301B、Aloka社製)のサンプル容器にセットして、放射線量を測定して下式から取り込み率(%)を算出した。
取り込み率(%)=[(対象葉試料の放射線量)/(ナノ粒子分散液100μLの放射線量)]×100
また、別のハーブ苗ポットを用いて、上記と同様に分散液の植物への噴霧操作をした後、25℃で3時間静置した葉についても、粒子(P-9)の取り込み率を測定した。その結果を表2に示す。
粒子(P-9)の代わりに粒子(P-10)を用いること以外は実施例9と同じ操作を行い、葉への粒子(P-10)の取り込み率を測定した。その結果を表2に示す。
粒子(P-9)の代わりに粒子(P’-2)を用いること以外は実施例9と同じ操作を行い、葉への粒子(P’-2)の取り込み率を測定した。その結果を表2に示す。
<内包率の評価方法>
エッペンチューブ中のナノ粒子(P)の水分散体1mLを遠心分離(4℃、15,000rpm、30分)により沈降させた後で上澄み液除去した。遠心沈降後のナノ粒子(P)にアセトニトリルを添加することでポリ乳酸を溶解させ、分光光度計により内包率を算出した。
吸水性樹脂サンフレッシュGT-1(三洋化成工業(株)製、吸水倍率400倍、pH7.0)4.9gと粉砕パルプ(フィラー)17.5gを混合して、育苗シート用材料(Y-1)を得た。
得られた育苗シート用材料(Y-1)を、透水性シート(580mm×280mm)上に、均一に散布した後、他方の透水性シート(580mm×280mm)を重ね合わせ、更にエンボス加工した。この様にして育苗シート(Z-1)を作製した。
また、上記のフィラー(粉砕パルプ)を、育苗シート用材料(Y-2)として使用して、育苗シート(Z-2)を作製した。育苗シート(Z-2)は、上記の育苗シート(Z-1)の製造において、吸水性樹脂サンフレッシュGT-1を使用しなかった以外は、育苗シート(Z-1)と同じ方法で作製した。
1.供試品種:ヒノヒカリ(イネ)、ハウス桃太郎(トマト)
2.育苗箱:内のり面積580×280mm/箱
3.育苗シート:面積580×280mm/枚
4.播種:180g/箱(乾籾換算)
5.培土:イナホ倍土(いなほ化工株式会社製):ビートモス=3:1(容積比)(床土・覆土に使用)
6.薬剤処理:種子消毒はベントレートT(200倍液)48時間処理
7.出芽処理:積み重ね方式、加温出芽(32℃×2日間)
8.緑化処理:ビニールハウス畑育苗
育苗床期間中の根張り、及び地上部生育状態は、各部の長さを測定することにより、評価した。
・根張り
◎:根の長さが8cm以上
○:根の長さが5cm以上8cm未満
△:根の長さが3cm以上5cm未満
×:根の長さが3cm未満
・地上部生育状態
◎:地上部の長さが12cm以上
○:地上部の長さが8cm以上12cm未満
△:地上部の長さが4cm以上8cm未満
×:地上部の長さが4cm未満
5千分の1アールのポットに水田土壌(植壌土)を2.9kg充填して、上記の方法で育てた2~3葉期の幼苗10本を2cmの深さに移植し水を加えて3cmの灌水状態にした。25℃で表3又は表4に記されている所定の期間(水田に移してから評価するまでの日数(日))静置した後、ナノ粒子(P)の分散液(又はチアジニル溶液)を噴霧した葉を切り取り、イオン交換水の入った容器に1分間浸漬して容器から取り出した。容器の水を新鮮なイオン交換水に交換し、更に葉を容器内の新鮮なイオン交換水に1分間浸漬して引き上げる操作を計3回繰り返すことで、葉表面に付着していたナノ粒子(P)(又はチアジニル)を除去した後に、上記の葉から8分間植物トータルタンパク質抽出キット(コスモバイオ(株)製)を用いて蛋白質を抽出し、その中に含まれる抵抗性誘導マーカーのPR1蛋白質量を以下のように調べた。全蛋白質量はMicro BCATM protein assay kit(THERMO Fisher Scientific社製)によって定量し、各実験での葉の全蛋白質量が同じとなるように、全蛋白質量が多い葉の抽出液をイオン交換水で希釈することで、標準化したものを以降の電気泳動に使用した。
試験は各5回実施し、PR1蛋白質量の評価は、以下に詳述するウェスタンブロッティング(電気泳動、転写及び発色を含む)により評価した。
電気泳動は、葉から抽出した抽出液10μLに、サンプルバッファー溶液10μLを添加した混合液を用いて以下の条件で実施した。
試料溶液:各実施例又は各比較例で得た葉の抽出液
ポリアクリルアミドゲル:E-R15L e・パジェル[アトー(株)製]
電気泳動槽:WSE-1100P パジェラン-R[アトー(株)製]
電気泳動時間:90分
サンプルバッファー溶液:4X Laemmli サンプルバッファー[バイオ・ラッド(株)製]900μLと2-メルカプトエタノール100μLの混合液
転写は、上記条件で電気泳動後、転写メンブレンを用いて以下の条件で実施した。
転写メンブレン:Amersham Hybond P0.45 PVDF[GEヘルスケア(株)製]
転写液:AE-1465EzFastBlot[アトー(株)製]を純水で10倍に希釈した液
電圧/電流:12V/400mA
転写時間:30分
上記条件で転写後、その転写メンブレンをブロッキング、次いで一次抗体及び二次抗体で抗原抗体反応を行った。本試験においては、一次抗体としてAnti-PR1 Antibody(イネ:MybioSource社製、トマト:Agrisera社製)を使用し、二次抗体として、horseradish peroxidase HRP標識二次抗体を用い、ImageQuant LAS4000を用いて以下の条件で発色させた。
検出器:ImageQuant LAS4000(富士フイルム株式会社製品)
ブロッキング時間:45分
一次抗体反応時間:120分
二次抗体反応時間:60分
(1)~(3)の操作の後、転写メンブレンにPR1蛋白質のバンドが検出された後、そのバンドの濃さをイメージJ(National Institutes of Health,USA)によって、定量した。実施例11~14の場合、実施例11~14毎の定量したバンドの濃さを、比較例3のバンドの濃さで除し、この値を実施例11~14毎のPR1蛋白質量比とした。同様にチアジニル溶液で所定期間処理した比較例で得られたバンドの濃さで、同じ日数ナノ粒子(P)を処理した実施例で得られたバンドの濃さを除したものをPR1蛋白質量比とした。その評価結果を表3(イネ)及び表4(トマト)に示す。PR1蛋白質量比が多いほど、抵抗性が向上していることを意味している。
PR1蛋白質量比が1.0以上100以下であれば良好な抵抗性を示しており、1.0を下回ると病害に対する抵抗性を示し難い。一方で、100以上であれば抵抗性以外の薬害といった負の効果を有する生理機能を反映していることが多く、正しく抵抗性の評価ができていないことを意味する。
上記の<抵抗誘導性の評価>に記載の方法と同様にして、幼苗をナノ粒子(P)またはチアジニルで処理した後、所定時間(表3~4に示す水田に移してから評価するまでの日数(日))後の葉表面の薬害度を評価した。具体的には、薬害は肉眼観察により、下記の指標で観察した。
(薬害指数)
0:無害(健全)、1:微少害、2:小害、3:中害、4:大害、5:完全枯死
上記の<抵抗誘導性の評価>に記載の方法と同様にして、幼苗をナノ粒子(P)またはチアジニルで処理した後、所定期間(表3~4に示す水田に移してから評価するまでの日数(日))後の地上部生育状態を評価した。具体的には、地上部生育状態は、各部の長さを測定することにより、評価した。チアジニル溶液で所定期間処理した比較例で得られた地上部の長さで、同じ日数ナノ粒子(P)を処理した実施例で得られた地上部の長さを除したものを地上部生育比として算出した。
Claims (4)
- 生分解性樹脂(A)と25℃におけるオクタノール/水分配係数(LogPow)が1~10である疎水性薬剤(B)と、エチレンオキサイドとプロピレンオキサイドとの共重合体(EO-PO共重合体)とを含有するメジアン径が1~300nmの粒子(P)を含有し、
EO-PO共重合体におけるEOの重量割合が50~90重量%であり、
粒子(P)における生分解性樹脂(A)と疎水性薬剤(B)との重量比[(A):(B)]が5:1~20:1であり、
粒子(P)におけるEO-PO共重合体と疎水性薬剤(B)との重量比[EO-PO共重合体:(B)]が20:1~5:1である植物用生育補助剤(X)。 - 前記生分解性樹脂(A)が、ポリ乳酸、ポリカプロラクトン、ポリグリコール酸及び乳酸-グリコール酸共重合体並びにこれらの樹脂のいずれかからなるセグメントとSP値が5~15である樹脂からなるセグメントとを有する樹脂からなる群から選ばれる少なくとも1種の樹脂である請求項1記載の植物用生育補助剤。
- 葉面散布に用いられる請求項1又は2記載の植物用生育補助剤。
- 請求項1~3のいずれか記載の植物用生育補助剤(X)を用いる植物の生育方法。
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