JP7109009B2 - 遺伝子ノックアウト方法 - Google Patents
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Description
(1)細胞ゲノムの特定の標的部位を切断できる配列特異的ヌクレアーゼとドナー構築体を細胞に導入するステップ;
前記ドナー構築体は線形ドナーDNA、または細胞内で切断されて線形ドナーDNAを生成することができるものであり、前記線形ドナーDNAには、中央から両端までに順に、発現カセット;発現カセットの5’末端の、逆方向終止コドンからなる短い配列と、発現カセットの3’末端の、順方向終止コドンからなる短い配列;前記配列特異的ヌクレアーゼによって切断できる標的部位を含む、5’末端および/または3’末端のユニバーサル標的配列;および両端の保護配列が含まれ、前記発現カセットは、プロモーターにより駆動されるマーカー遺伝子を含み、
前記線形ドナーDNAを、非相同末端結合を介して細胞ゲノムの特定の標的部位に挿入する;
(2)前記マーカーの発現が陽性である細胞をスクリーニングするステップ。
前記ドナー構築体は線形ドナーDNA、または細胞内で切断されて線形ドナーDNAを生成することができるものであり、前記線形ドナーDNAには、中央から両端までに順に、発現カセット;発現カセットの5’末端の、逆方向終止コドンからなる短い配列と、発現カセットの3’末端の、順方向終止コドンからなる短い配列;前記配列特異的ヌクレアーゼによって切断できる標的部位を含む、5’末端および/または3’末端の標的配列;および両端の保護配列が含まれ、前記発現カセットは、プロモーターにより駆動されるマーカー遺伝子を含む。
前記発現カセットは、プロモーターにより駆動されるマーカー遺伝子を含み、
前記ユニバーサル標的配列は、遺伝子ノックアウトされる細胞のゲノムには存在しない、ユニバーサルドナー構築体を提供する。
(1)下記の:
(a)Cas9ヌクレアーゼ;
(b)細胞ゲノムの特定の標的配列を認識するgRNA;
(c)線形ドナーDNA、または細胞内で切断されて線形ドナーDNAを生成することができるものであるユニバーサルドナー構築体であって、前記線形ドナーDNAには、中央から両端までに順に、発現カセット;発現カセットの5’末端の、逆方向終止コドンからなる短い配列と、発現カセットの3’末端の、順方向終止コドンからなる短い配列;Cas9ヌクレアーゼによって切断できる標的部位を含む、5’末端および/または3’末端のユニバーサル標的配列;および両端の保護配列が含まれ、
前記発現カセットは、プロモーターにより駆動されるマーカー遺伝子を含み、
前記ユニバーサル標的配列は、遺伝子ノックアウトされる細胞のゲノムには存在しない、ユニバーサルドナー構築体;および
(d)線形ドナーDNAに含まれるユニバーサル標的配列を認識するgRNA
を細胞に導入するステップ;
(2)前記線形ドナーDNAを、非相同末端結合を介して細胞ゲノムの特定の標的部位に挿入するステップ;および
(3)前記マーカーの発現が陽性である細胞をスクリーニングするステップ
を含む、細胞内で遺伝子ノックアウトを生成する方法を提供する。
(1)Cas9ヌクレアーゼ、またはCas9ヌクレアーゼを発現することができるベクターまたは細胞;
(2)細胞ゲノムの特定の標的配列を認識するgRNA;
(3)線形ドナーDNA、または細胞内で切断されて線形ドナーDNAを生成することができるものであるユニバーサルドナー構築体であって、前記線形ドナーDNAには、中央から両端までに順に、発現カセット;発現カセットの5’末端の、逆方向終止コドンからなる短い配列と、発現カセットの3’末端の、順方向終止コドンからなる短い配列;Cas9ヌクレアーゼによって切断できる標的部位を含む、5’末端および/または3’末端のユニバーサル標的配列;および両端の保護配列が含まれ、
前記発現カセットは、プロモーターにより駆動されるマーカー遺伝子を含み、
前記ユニバーサル標的配列は、遺伝子ノックアウトされる細胞のゲノムには存在しない、ユニバーサルドナー構築体;および
(4)線形ドナーDNAに含まれるユニバーサル標的配列を認識するgRNA
を含む、遺伝子ノックアウトのためのシステムまたはキットを提供する。
HeLa細胞におけるANTXR1遺伝子の第一エクソンを標的とする2つのsgRNAを設計し、それらが標的部位で欠失または挿入突然変異(Indels)を生成する効率をT7E1アッセイで検証し、検証の結果は表1に示される。sgRNA1ANTXR1の標的配列は、本実施例ではsg1と呼ばれ、sgRNA2ANTXR1の標的配列は、本実施例ではsg2と呼ばれる。
2つの線形ドナーDNA(DonorANTXR1-sg2とDonorANTXR1-pg)を構築した。その構造を図1aに示す。
DonorANTXR1-sg2は5’から3’末端へそれぞれ、20bpの保護配列、sg2、逆方向終止コドン、CMVプロモーターにより駆動されるピューロマイシン耐性遺伝子、順方向終止コドン、20bpの保護配列を含む。
DonorANTXR1-pgは5’から3’末端へそれぞれ、20bpの保護配列、sg1、逆方向終止コドン、CMVプロモーターにより駆動されるピューロマイシン耐性遺伝子、順方向終止コドン、sg2、20bpの保護配列を含む。
対照としての線形ドナーDNA(Donornо cut)は5’から3’末端へそれぞれ、20bpの保護配列、20bpのランダム配列、逆方向終止コドン、CMVプロモーターにより駆動されるピューロマイシン耐性遺伝子、順方向終止コドン、20bpの保護配列を含む。ランダム配列はsg1またはsg2とは異なる。
Cas9を発現するプラスミド、sgRNA2ANTXR1またはpgRNAANTXR1、およびそれらに対応するドナーでHeLa細胞をコトランスフェクションし、対照として、線形ドナーDNA(DonorANTXR1-sg2、DonorANTXR1-pg、およびDonornо cut)のみでHeLa細胞をトランスフェクションし、ピューロマイシンを加えて耐性によりスクリーニングして、混合コロニー(pооled pоpulatiоn)と単一のクローン(single clones)を得て、MTT(3-(4,5-ジメチルチアゾール-2-イル)-2,5-ジフェニルテトラゾリウムブロマイド)で染色した。その結果は図1bに示される。
sgRNA2ANTXR1とその対応するドナーDonorANTXR1-sg2を受けたサンプル、およびpgRNAANTXR1とその対応するドナーDonorANTXR1-pgを受けたサンプルから、ピューロマイシン耐性(purо+)を有する多くの細胞クローンを得た。ドナーのみでトランスフェクションすると、わずかのピューロマイシン耐性クローンしか生じなかった。これは、染色体への線形ドナーの組み込むはまれでランダムであるからかもしれない。また、対照ドナーDonornо cutと、Cas9を発現するプラスミドおよびsgRNA2ANTXR1のコトランスフェクションも、有意な量のpurо+クローンを生成できなかった(図1bの一番右の図参照)。これは、sgRNAにより媒介されたCas9がドナー上での切断は、効果的なドナーの組み込むに対して重要であることを示している。pgRNAANTXR1により媒介された二重切断DonorANTXR1-pgの組み込むは、sgRNA2ANTXR1とDonorANTXR1-sg2との和よりも効率的である。しかしながら、どの線形ドナーDNAを使用しても、十分なpurо+クローンが生成され、後続の突然変異体の同定に使用できる。
また、Cas9を発現するプラスミドとsgRNA2ANTXR1またはpgRNAANTXR1を用い、それらの対応するドナーの添加または非添加で、HeLa細胞をコトランスフェクションし、ピューロマイシン(1μg/ml)を用いて混合コロニーおよびモノクローンをスクリーニングして取得した。その中で、対応するドナーを添加しなかった場合に、ピューロマイシン耐性遺伝子を発現するプラスミドと一緒にコトランスフェクションした。HeLa細胞におけるANTXR1遺伝子のノックアウトにより、細胞がキメラ炭疽毒素(PA/LFnDTA)に対して耐性が生じ[17]、PA/LFnDTA(PA:150ng/ml;LFnDTA:100ng/ml)を用いて、ピューロマイシンによりスクリーニングして取得した混合コロニーとモノクローンを処理して、線形ドナーDNAがANTXR1ノックアウト効率に対する影響を比較した。PA/LFnDTAで処理した異なる細胞の画像は図2aに示される。purо+混合コロニー中の、当該毒素耐性を有する細胞の百分比を計算することによってANTXR1ノックアウト効率を確定し、図1cに示すように、sgRNA2ANTXR1またはpgRNAANTXR1を単独に用いる場合より、線形ドナーDNAの使用は、遺伝子ノックアウト効率を6~8倍にも高めた。purо+モノクローンの線形ドナーが組み込まれたANTXR1部位についてPCR検証を行い、PCR増幅に使用されたL1/R1プライマー配列は表2に示される。その結果は図2bに示す。これから分かるように、purо+細胞混合物から単離された大部分のクローンは、sgRNA標的部位にドナー挿入物を含んでいる(図1dも参照)。図1dから、ドナーフラグメントを有する細胞のほぼ90%が真の遺伝子ノックアウトクローンであることも分かる。
HeLa細胞におけるHBEGF遺伝子を標的とする2つのsgRNAを設計し、それらが標的部位でIndelsを生成する効率をT7E1アッセイで検証した。検証結果を表3に示す。sgRNA1HBEGFの標的配列は本実施例ではsg1と呼ばれ、sgRNA2HBEGFの標的配列は本実施例ではsg2と呼ばれる。
線形ドナーDNA(DonorHBEGF-sg1)を構築した。その構造は図3aに示される。
DonorHBEGF-sg1は5’から3’末端へそれぞれ、20bpの保護配列、sg1、逆方向終止コドン、CMVプロモーターにより駆動されるピューロマイシン耐性遺伝子、順方向終止コドン、20bpの保護配列を含む。
Cas9を発現するプラスミド、sgRNA1HBEGF、およびそれに対応するドナーDonorHBEGF-sg1でHeLa細胞をコトランスフェクションし、対照として、ドナーDonorHBEGF-sg1のみでHeLa細胞をトランスフェクションし、ピューロマイシンを加えて耐性でスクリーニングして、混合コロニー(pооled pоpulatiоn)と単一のクローン(single clones)を得て、MTTで染色した。その結果は図3bに示される。
実施例1の結果と同様に、ドナープラスsgRNAでしか大量のpurо+クローンを取得しなかった。この結果により再び証明されたように、ドナー挿入は、特異的なsgRNA/Cas9sgRNAにより媒介されたDSBsによって決められる。
また、Cas9を発現するプラスミドとsgRNA1HBEGFを用い、それに対応するドナーDonorHBEGF-sg1の添加または非添加で、HeLa細胞をコトランスフェクションし、ピューロマイシン(1μg/ml)を用いて混合コロニーおよびモノクローンをスクリーニングして取得した。その中で、対応するドナーを添加しなかった場合に、ピューロマイシン耐性遺伝子を発現するプラスミドと一緒にコトランスフェクションした。HBEGF遺伝子はジフテリア毒素(DT)受容体をコードするので、HeLa細胞においてそれをノックアウトすると、細胞がDTに対して耐性が生じ[17]、DT(40ng/ml)を用いて、ピューロマイシンによりスクリーニングして取得した混合コロニーとモノクローンを処理して、線形ドナーDNAがHBEGFノックアウト効率に対する影響を比較した。DTで処理した異なる細胞の画像は図3cに示される。図3dに示すように、purо+混合コロニー中の、DT耐性を有する細胞の百分比を計算することによってHBEGFノックアウト効率を確定した。図3cと図3dから分かるように、sgRNA1HBEGFを単独に用いる場合より、線形ドナーDNAの使用は、HBEGF遺伝子ノックアウト効率を大幅に高めた。
HEK293T細胞におけるHBEGF遺伝子を標的とするsgRNA2HBEGFを設計し、線形ドナーDNA(DonorHBEGF-sg2)を構築した。ドナーは5’から3’末端へそれぞれ、20bpの保護配列、sg2、逆方向終止コドン、CMVプロモーターにより駆動されるEGFP遺伝子、順方向終止コドン、20bpの保護配列を含む。図4aを参照することができる。
Cas9を発現するプラスミドとsgRNA2HBEGFを用い、それに対応するドナーDonorHBEGF-sg2の添加または非添加で、HEK293T細胞をコトランスフェクションし、FACSで細胞をスクリーニングし、ドナーが添加された群についてFACSでEGFP陽性細胞をスクリーニングし、ドナーが添加されなかった群についてFACSでmCherry陽性細胞をスクリーニングした。DT(40ng/ml)を用いて、FACSにより選択された細胞を処理して、線形ドナーDNAがHBEGFノックアウト効率に対する影響を比較した。DTで処理した異なる細胞の画像は図4bに示される。図4dに示すように、EGFP陽性細胞中の、DT耐性を有する細胞の百分比を計算することによってHBEGFノックアウト効率を確定した。sgRNA2HBEGFを単独に用いる場合より、線形ドナーDNAの使用は、HBEGF遺伝子ノックアウト効率を大幅に高めた。
Cas9を安定的に発現するHeLaOC細胞株を既存の方法に従って確立した[17]。
図5aに示すように、HeLaOC細胞におけるANTXR1遺伝子を標的とする2つのsgRNA(sgRNA1ANTXR1とsgRNA2ANTXR1)を設計し、三つの線形ドナーDNA(DonorANTXR1-sg1、DonorANTXR1-sg2、およびDonorANTXR1-pg)を構築した。sgRNA1ANTXR1の標的配列は、本実施例ではsg1と呼ばれ、sgRNA2ANTXR1の標的配列は、本実施例ではsg2と呼ばれる。
DonorANTXR1-sg1は5’から3’末端へそれぞれ、20bpの保護配列、sg1、逆方向終止コドン、CMVプロモーターにより駆動されるピューロマイシン耐性遺伝子、順方向終止コドン、20bpの保護配列を含む。
DonorANTXR1-sg2は5’から3’末端へそれぞれ、20bpの保護配列、sg2、逆方向終止コドン、CMVプロモーターにより駆動されるピューロマイシン耐性遺伝子、順方向終止コドン、20bpの保護配列を含む。
DonorANTXR1-pgは5’から3’末端へそれぞれ、20bpの保護配列、sg1、逆方向終止コドン、CMVプロモーターにより駆動されるピューロマイシン耐性遺伝子、順方向終止コドン、sg2、20bpの保護配列を含む。
Cas9を発現するプラスミド、sgRNA1ANTXR1またはsgRNA2ANTXR1またはpgRNAANTXR1、およびそれらに対応するドナーでHeLaOC細胞をコトランスフェクションし、対照として、線形ドナーDNA(DonorANTXR1-sg1、DonorANTXR1-sg2、およびDonorANTXR1-pg)のみでHeLaOC細胞をトランスフェクションし、ピューロマイシンを加えて耐性でスクリーニングして、MTTで染色した。その結果は図5bに示される。
HeLa細胞における結果と同様に、ドナープラスsgRNAでしか大量のpurо+クローンを取得しなかった。
また、Cas9を発現するプラスミドとsgRNA1ANTXR1またはsgRNA2ANTXR1またはpgRNAANTXR1を用い、それらに対応するドナーの添加または非添加で、HeLaOC細胞をコトランスフェクションし、ピューロマイシン(1μg/ml)を用いてスクリーニングした。スクリーニングして取得した細胞をPA/LFnDTAで処理し、PA/LFnDTAで処理した異なる細胞の画像は図5cに示される。purо+混合コロニー中の、当該毒素耐性を有する細胞の百分比を計算することによってANTXR1ノックアウト効率を確定し、図5dに示すように、sgRNAを単独に用いる場合より、線形ドナーDNAの使用は、ANTXR1遺伝子ノックアウト効率を大幅に高めた。
purо+の単一クローンについて、ANTXR1遺伝子上のドナーDonorANTXR1-sg1の組み込む部位でPCR検証をした結果、purо+の大部分のクローンはsgRNA標的部位にドナー挿入物を含み(図5eと図5f)、ドナーフラグメントを有する細胞の大部分が真の遺伝子ノックアウトクローンである(図5f)ことが分かった。
~500bp(長さは、野生型ANTXR1遺伝子に対応する)のPCRフラグメントおよび~1.8kb(長さは、野生型ANTXR1遺伝子プラスドナー挿入物に対応する)のPCRフラグメントについてゲノムシーケンシングを行った。結果を表4に示す。
外部ドナーの使用がCRISPR/Casシステムのオフターゲット効果に影響を与えるかどうかを検査するために、splinkerette PCR分析によって全ゲノムの組み込む部位を見つけた[35~37]。
本実施例では、splinkerette PCR分析によって、ピューロマイシンによりスクリーニングした後に単一クローンおよび混合細胞クローン内のオフターゲットの挿入を検証した。ANTXR1遺伝子上に正しいドナー挿入がある場合、プライマーSplink2/R1とSplink2/R2で増幅するとそれぞれ711-と927-bpの産物が生じる(図6a参照)。
splinkerette PCR分析を行うために、HeLaOC細胞においてANTXR1を標的とした、ドナー挿入を有する10つの単一クローンと、4つのpurо+混合クローンとをランダムに選択した。splinkerette PCRの結果(図6b)によれば、ドナーでトランスフェクションされなかったクローンと同様に、ドナーによって濃縮された単一クローンまたは混合コロニーには、検測可能なオフターゲット効果はなかった。
図7aに示すように、HeLaOC細胞におけるHBEGF遺伝子を標的とする2つのsgRNA(sgRNA1HBEGFとsgRNA2HBEGF)を設計し、三つの線形ドナーDNA(DonorHBEGF-sg1、DonorHBEGF-sg2、およびDonorHBEGF-pg)を構築した。sgRNA1HBEGFの標的配列は、本実施例ではsg1と呼ばれ、sgRNA2HBEGFの標的配列は、本実施例ではsg2と呼ばれる。
DonorHBEGF-sg1は5’から3’末端へそれぞれ、20bpの保護配列、sg1、逆方向終止コドン、CMVプロモーターにより駆動されるピューロマイシン耐性遺伝子、順方向終止コドン、20bpの保護配列を含む。
DonorHBEGF-sg2は5’から3’末端へそれぞれ、20bpの保護配列、sg2、逆方向終止コドン、CMVプロモーターにより駆動されるピューロマイシン耐性遺伝子、順方向終止コドン、20bpの保護配列を含む。
DonorHBEGF-pgは5’から3’末端へそれぞれ、20bpの保護配列、sg1、逆方向終止コドン、CMVプロモーターにより駆動されるピューロマイシン耐性遺伝子、順方向終止コドン、sg2、20bpの保護配列を含む。
Cas9を発現するプラスミド、sgRNA1HBEGFまたはsgRNA2HBEGFまたはpgRNAHBEGF、およびそれらに対応するドナーでHeLaOC細胞をコトランスフェクションし、対照として、線形ドナーDNA(DonorHBEGF-sg1、DonorHBEGF-sg2、およびDonorHBEGF-pg)のみでHeLaOC細胞をトランスフェクションし、ピューロマイシンを加えて耐性でスクリーニングした。その結果は図7bに示される。
HeLa細胞における結果と同様に、ドナープラスsgRNAでしか大量のpurо+クローンを取得しなかった。
purо+の単一クローンについて、HBEGF遺伝子上のドナーDonorHBEGF-sg1の組み込む部位でPCR検証を行い、PCR増幅に使用されたL2/R2プライマー配列は表5に示される。これから分かるように、purо+の大部分のクローンは、sgRNA標的部位にドナー挿入物を含んでおり(図7cと図7d)、ドナーフラグメントを有する細胞の大部分は真の遺伝子ノックアウトクローンである(図7d)。
1、sgRNAの設計
2種類のドナーを構築した。図8aに示すように、1種類は二つの単独のドナー(DonorPSEN1+DonorPSEN2)を有し、各ドナーは、対応するsgRNAの標的配列を有し、もう1種類のドナー(DonorPSEN)は両端にそれぞれ2つのsgRNA標的配列を有する。DonorPSEN1またはDonorPSEN2は、その5’末端にsgRNAPSEN1またはsgRNAPSEN2の切断部位を有する。DonorPSEN1+PSEN2はその5’末端にsgRNAPSEN1の切断部位を有し、3’末端にsgRNAPSEN2の切断部位を有する。
DonorPSEN1は5’から3’末端へそれぞれ、20bpの保護配列、sgPSEN1、逆方向終止コドン、CMVプロモーターにより駆動されるピューロマイシン耐性遺伝子、順方向終止コドン、20bpの保護配列を含む。
DonorPSEN2は5’から3’末端へそれぞれ、20bpの保護配列、sgPSEN2、逆方向終止コドン、CMVプロモーターにより駆動されるピューロマイシン耐性遺伝子、順方向終止コドン、20bpの保護配列を含む。
DonorPSENは5’から3’末端へそれぞれ、20bpの保護配列、sgPSEN1、逆方向終止コドン、CMVプロモーターにより駆動されるピューロマイシン耐性遺伝子、順方向終止コドン、sgPSEN2、20bpの保護配列を含む。
Cas9を発現するプラスミド、sgRNAPSEN1またはpgRNAPSEN2でHeLaOC細胞をコトランスフェクションし、または、Cas9を発現するプラスミド、pgRNAPSENでHeLaOC細胞をコトランスフェクションし、これによってPSEN1とPSEn2遺伝子の特定の部位にindelsを生成した。indelsの生成効率をT7E1により分析し[26](使用されたプライマーについて表7参照)、その結果は図9aに示される。それらのコトランスフェクションはいずれも一般的な活性のみを示した。
Cas9を発現するプラスミド、pgRNAPSEN、およびDonorPSENでHeLaOC細胞をコトランスフェクションし、または、Cas9を発現するプラスミド、pgRNAPSEN、およびDonorPSEN1+DonorPSEN2でHeLaOC細胞をコトランスフェクションし、ピューロマイシンを加えて耐性でスクリーニングして、purо+クローンを得ることができた(図9b参照)。前の実施例の結果と同様に、ドナープラスpgRNAでは大量のpurо+クローンを得た。
各トランスフェクションの結果について、purо+の単一クローンを取って、PSEN1とPSEN2遺伝子上の、ドナーDonorPSEN、およびDonorPSEN1+DonorPSEN2の組み込む部位についてPCR検証を行い、PCR増幅に使用されたプライマー配列は表7に示される。その中で、L3/R3は、PSEN1上の組み込む部位を増幅するためのものであり、L4/R4は、PSEN2上の組み込む部位を増幅するためのものであり、PCR検証結果は図9cに示す。2つの遺伝子がいずれもドナー挿入を含むクローンは、枠で表示され、クローン1とクローン2を選択してさらにゲノムシーケンシング解析をした結果、2つのクローンがいずれもPSEN1とPSEN2の破壊を示した(図8bと図8c)。
HeLaOC細胞のHSPA遺伝子ファミリーを選択した。この遺伝子ファミリーは、HSAPA1A、HSPA1B、HSBA1L、HSPA6、およびHSPA2の5つの遺伝子を有し、これらは相同性を有する。図8dに示すように、HSAPA1A、HSPA1B、およびHSBA1Lを同時に標的とするsgRNAHSPAを設計し、このsgRNAの標的配列には、HSPA6の対応する配列と1つのミスマッチが有、HSPA2と2つのミスマッチがある。
線形ドナーDonorHSPAを構築し、5’から3’末端へそれぞれ、20bpの保護配列、sgHSPA、逆方向終止コドン、CMVプロモーターにより駆動されるピューロマイシン耐性遺伝子、順方向終止コドン、20bpの保護配列を含む(図8d)。
Cas9を発現するプラスミド、sgRNAHSPAを使用し、それに対応するドナーDonorHSPAが添加または非添加で、HeLaOC細胞をコトランスフェクションしてindelsを誘発し、ピューロマイシンを介して耐性でスクリーニングした。ドナーが添加されなかった群について、ピューロマイシン耐性遺伝子を発現するプラスミドと一緒にコトランスフェクションした。すべての5つの遺伝子のindels効率をT7E1アッセイ(使用されたプライマーについて表8参照)により評価し、その結果は図8eに示される。単独のsgRNAHSPAと比べて、ドナーHSPAを使用することにより、HSPA1A部位での突然変異率は約5.5倍増加し、HSPA1B部位での突然変異率は約6.1倍増加し、HSPA1L部位での突然変異率は約3.4倍増加し、HSPA6部位での突然変異率は約6.6倍増加した。興味深いことに、ドナーを使用してもしなくても、HSPA2遺伝子上にはindelsは検出されなかった。これは、2つのミスマッチがsgRNAHSPAの認識を完全に混乱させてしまい、さらに重要なことに、ドナーによるスクリーニングは、オフターゲット効果のリスクを増加しなかったことを示している。
ドナーとコトランスフェクションして、およびドナーとコトランスフェクションせずに得られた混合細胞のHSPAファミリー遺伝子の標的配列についてシーケンシングし、その結果は図10に示される。その結果、HSPAファミリー遺伝子部位上にドナートランスフェクションがあるかないかを問わず、細胞混合シーケンシングの結果は、T7E1アッセイの結果と一致している。
なお、T7E1アッセイは、スクリーニングされたコロニーが標的突然変異を有する細胞を高度に濃縮し、ドナーを使用しない従来の方法と比べて、濃縮係数は約753(5.5*6.1*3.4*6.6)であることを示した。この計算ではドナー挿入を有する遺伝子は考慮されてないことに鑑み、実際の効率向上はさらに大きい。
ピューロマイシン耐性を有する単一クローンについて、5つの標的部位上でPCR検証を行った。5つの遺伝子の標的部位を増幅するために使用された特異的プライマー(L5/R5、L6/R6、L7/R7、L8/R8、L9/R9)は表8に示される。その結果は図11aと11bに示される。少なくとも2つの標的遺伝子上にドナー挿入を有する6つのクローン(図において枠で表示され、それぞれ1~6と番号付けられた)を選択してゲノム配列分析をして、その結果を図11bに示される。クローン3は4つの遺伝子の対応する部位上で修飾があり、HSPA1A、HSPA1B、およびHSPA1L上にフレームシフト突然変異を有し、完全なノックアウトを生成し、HSPA6上に2つのフレーム内突然変異を有する(図8f)。
下記表に示すように、次の10つのsgRNAをスクリーニングの候補配列として選択した。
上記10つのユニバーサルsgRNAに基づいて10つの線形ドナーDNA(DonorsgRNA_Universal_1~10-purо)を構築した。
これらの線形ドナーDNAは5’から3’末端へそれぞれ、20bpの保護配列、sgRNAUniversal_1~10の標的配列、逆方向終止コドン、CMVプロモーターにより駆動されるピューロマイシン耐性遺伝子、順方向終止コドン、20bpの保護配列を含む。
上記10つの線形ドナーに基づいて10つのタンデムsgRNAプラスミド(PlasmidpgRNA_Universal_1~10)を構築し、その構造は図12に示す。
タンデムで接続する2つのsgRNAはそれぞれsgRNACSPG4とsgRNAUniversal_1~10である。sgRNACSPG4はTcdB毒素の受容体CSPG4を標的とし、sgRNAUniversal_1~10は、対応するドナーDNA(DonorsgRNA_Universal_1~10-purо)における標的配列を標的とする。
トランスフェクション実験で使用した細胞株は、Cas9を安定的に発現する細胞株(SC-8)であり、10つのタンデムプラスミドPlasmidpgRNA_Universal_1~10と、対応するドナーDNA(DonorsgRNA_Universal_1~10-purо)とでSC-8細胞をコトランスフェクションし、対照として、10つの線形ドナーDNA(DonorsgRNA_Universal_1~10-purо)のみでSC-8細胞をトランスフェクションした。そして、ピューロマイシンを加えて耐性でスクリーニングして、混合コロニー(pооled pоpulatiоn)を得た。スクリーニングの結果は下記表に示される。
TcdB毒素を4つの混合コロニーに加えてスクリーニングし、23時間後に細胞の生存を観察し、実験の結果を図13に示す。TcdB毒素を加えて23時間後、sgRNAUniversal_1とsgRNAUniversal_9を加えた実験群に対応する細胞生存率は、その他の2つの群よりも有意に高いことが分かり、これは、sgRNAUniversal_1とsgRNAUniversal_9の遺伝子ノックアウト効率がより高いことを示している。
細胞培養とトランスフェクション
HeLa、HeLaOC、およびHEK293T細胞は、10%ウシ胎児血清(FBS、蘭州百霊生物技術有限公司、蘭州、中国)が添加されたDulbecco‘s modified Eagle’s培地(DMEM、10-013-CV、Corning,Tewksbury,MA,USA)に保持され、温度は37℃で、5%CO2が導入された。トランスフェクションのために、すべての細胞を6ウェルプレートに播種し、X-tremeGENE HP(06366546001,Roche,Mannheim,Germany)でメーカーのプロトコルに従ってトランスフェクションした。簡単に説明すると、2μgのDNAと4μlのX-tremeGENE HPを200μlのOpti-MEM I Reduced Serum Medium(31985088,Thermo Fisher Scientific,Grand Island,NY,USA)に加えた。混合物を室温で15分間インキュベーションした後、細胞に加えた。
sgRNAを発現するプラスミドについて、各sgRNAコード配列のオリゴヌクレオチドを個別に設計し(表9参照)、合成した(北京睿博興科生物技術有限公司)。
DNeasy Blood & Tissue kit(69504、Qiagen,Hilden,Germany)を使用してゲノムDNAを抽出し、gRNA標的配列を含むゲノム領域に対してPCR増幅をした。アッセイに使用したプライマー配列は表2、表5、表7、表8に示される。使用されたプライマー配列について、50μlシステムから300~500ngのPCR産物を取り、10×NEB Buffer2と混合し、95℃で3分間加熱してから、室温までゆっくり冷却した。得られた生成物に0.5μlのT7E1を加え、37℃で15分間インキュベーションした後、アガロースゲル電気泳動にかけた。電気泳動画像について、バンド切断の効率をImage J画像分析ソフトウェアで分析し、sgRNAがIndelsを生成する効率を示した。
CMVにより駆動されるピューロマイシン耐性遺伝子またはEGFP遺伝子を含むドナーおよび終止コドンの配列を予め生成し、pEASY-T5-Zerоクローンベクター(CT501-02、北京全式金生物技術有限公司)にクローニングしてユニバーサルテンプレートとした。sgRNA切断標的部位と保護配列を含むプライマーを用いてテンプレートを増幅した。プライマー配列は表10に示される。
HeLaOC細胞では、1μgの精製された線形ドナーPCR産物と1μgのsgRNA/pgRNAとを用いて細胞をトランスフェクションした。トランスフェクションの2週間後、1μg/mlのピューロマイシンで細胞を処理した。HeLaとHEK293T細胞において、1μgのドナー、0.5μgのsgRNA/pgRNA、および0.5μgのCas9プラスミドで細胞をトランスフェクションした。そして、トランスフェクションの2週間後、使用するドナーの種類に応じて、1μg/mlのピューロマイシで細胞を処理するか、または、蛍光活性化セルソーティング(FACS)によってEGFP陽性を確定した。
Splinkerette PCR法は以前に報告されている(Potter, C.J. & Luo, L. Splinkerette PCR for mapping transposable elements in Drosophila. PLoS One 5, e10168 (2010); Uren, A.G. et al. A high-throughput splinkerette-PCR method for the isolation and sequencing of retroviral insertion sites. Nat Protoc 4, 789-798 (2009);Yin, B. & Largaespada, D.A. PCR-based procedures to isolate insertion sites of DNA elements. Biotechniques 43, 79-84 (2007))。使用されたプライマーとアダプター(adaptоr)の配列は表11に示される。
Claims (22)
- 線形ドナーDNA、または細胞内で切断されて線形ドナーDNAを生成することができるものであるユニバーサルドナー構築体であって、前記線形ドナーDNAには、中央から両端までに順に、発現カセット;発現カセットの5’末端の、逆方向終止コドンからなる短い配列と、発現カセットの3’末端の、順方向終止コドンからなる短い配列;Cas9ヌクレアーゼによって切断できる標的部位を含む、5’末端および/または3’末端のユニバーサル標的配列;および両端の保護配列が含まれ、
前記発現カセットは、プロモーターにより駆動されるマーカー遺伝子を含み、
前記ユニバーサル標的配列は、5’-GTACGGGGCGATCATCCACA-3’または5’-AATCGACTCGAACTTCGTGT-3’を含む、
ユニバーサルドナー構築体。 - 線形ドナーDNA、または二本鎖線形ドナーDNAである請求項1に記載のユニバーサルドナー構築体。
- 前記線形ドナーDNAは5’末端または3’末端のみにおいて前記ユニバーサル標的配列を有するか、または前記線形ドナーDNAは両端にそれぞれ前記ユニバーサル標的配列を有する請求項1または2に記載のユニバーサルドナー構築体。
- 前記マーカー遺伝子は抗生物質耐性遺伝子または蛍光タンパク質遺伝子である、請求項1~3のいずれか1項に記載のユニバーサルドナー構築体。
- 前記保護配列の長さが5~30bpである、請求項1~4のいずれか1項に記載のユニバーサルドナー構築体。
- (1)下記の:
(a)Cas9ヌクレアーゼ;
(b)細胞ゲノムの特定の標的配列を認識するgRNA;
(c)線形ドナーDNA、または細胞内で切断されて線形ドナーDNAを生成することができるものであるユニバーサルドナー構築体であって、前記線形ドナーDNAには、中央から両端までに順に、発現カセット;発現カセットの5’末端の、逆方向終止コドンからなる短い配列と、発現カセットの3’末端の、順方向終止コドンからなる短い配列;Cas9ヌクレアーゼによって切断できる標的部位を含む、5’末端および/または3’末端のユニバーサル標的配列;および両端の保護配列が含まれ、
前記発現カセットは、プロモーターにより駆動されるマーカー遺伝子を含み、
前記ユニバーサル標的配列は、5’-GTACGGGGCGATCATCCACA-3’または5’-AATCGACTCGAACTTCGTGT-3’を含む、ユニバーサルドナー構築体;および
(d)線形ドナーDNAに含まれるユニバーサル標的配列を認識するgRNAを細胞に導入するステップ;
(2)前記線形ドナーDNAを、非相同末端結合を介して細胞ゲノムの特定の標的部位に挿入するステップ;および
(3)前記マーカーの発現が陽性である細胞をスクリーニングするステップ
を含む、細胞(但し、ヒト受精卵を除く)内で遺伝子ノックアウトを生成する方法(但し、ヒト生体内で遺伝子ノックアウトを生成する方法を除く)。 - 前記ユニバーサルドナー構築体は、線形ドナーDNA、または二本鎖線形ドナーDNAである、請求項6に記載の方法。
- 前記線形ドナーDNAは5’末端または3’末端のみにおいて前記ユニバーサル標的配列を有するか、または前記線形ドナーDNAは両端にそれぞれ前記ユニバーサル標的配列を有する、請求項6または7に記載の方法。
- 前記細胞ゲノムの特定の標的配列を認識するgRNAが、一種のgRNA、または細胞ゲノムの異なる標的配列を認識する複数のgRNAである、請求項6~8のいずれか1項に記載の方法。
- 前記細胞ゲノムの特定の標的配列を認識するgRNAがsgRNAであり、および/または、前記線形ドナーDNAに含まれるユニバーサル標的配列を認識するgRNAがsgRNAである、請求項6~9のいずれか1項に記載の方法。
- 前記細胞ゲノムの特定の標的配列を認識するsgRNAと、前記線形ドナーDNAに含まれるユニバーサル標的配列を認識するsgRNAとは、同じベクターに位置し、または、
前記細胞ゲノムの特定の標的配列を認識するsgRNAと、前記線形ドナーDNAに含まれるユニバーサル標的配列を認識するsgRNAとは、異なるベクターに位置する、
請求項6~10のいずれか一項に記載の方法。 - 前記マーカー遺伝子が抗生物質耐性遺伝子または蛍光タンパク質遺伝子である、請求項6~11のいずれか1項に記載の方法。
- 薬剤耐性により細胞をスクリーニングするか、またはFACS法により細胞をスクリーニングする、請求項6~12のいずれか一項に記載の方法。
- 前記保護配列の長さが5~30bpである、請求項6~13のいずれか一項に記載の方法。
- (1)Cas9ヌクレアーゼ、またはCas9ヌクレアーゼを発現することができるベクターまたは細胞;
(2)細胞ゲノムの特定の標的配列を認識するgRNA;
(3)線形ドナーDNA、または細胞内で切断されて線形ドナーDNAを生成することができるものであるユニバーサルドナー構築体であって、前記線形ドナーDNAには、中央から両端までに順に、発現カセット;発現カセットの5’末端の、逆方向終止コドンからなる短い配列と、発現カセットの3’末端の、順方向終止コドンからなる短い配列;Cas9ヌクレアーゼによって切断できる標的部位を含む、5’末端および/または3’末端のユニバーサル標的配列;および両端の保護配列が含まれ、
前記発現カセットは、プロモーターにより駆動されるマーカー遺伝子を含み、
前記ユニバーサル標的配列は、5’-GTACGGGGCGATCATCCACA-3’または5’-AATCGACTCGAACTTCGTGT-3’を含む、ユニバーサルドナー構築体;および
(4)線形ドナーDNAに含まれるユニバーサル標的配列を認識するgRNA
を含む、遺伝子ノックアウトのためのシステムまたはキット。 - 前記ユニバーサルドナー構築体は、線形ドナーDNA、または二本鎖線形ドナーDNAである、請求項15に記載のシステムまたはキット。
- 前記線形ドナーDNAは5’末端または3’末端のみにおいて前記ユニバーサル標的配列を有するか、または前記線形ドナーDNAは両端にそれぞれ前記ユニバーサル標的配列を有する、請求項15または16に記載のシステムまたはキット。
- 前記細胞ゲノムの特定の標的配列を認識するgRNAが、一種のgRNA、または細胞ゲノムの異なる標的配列を認識する複数のgRNAである、請求項15~17のいずれか1項に記載のシステムまたはキット。
- 前記細胞ゲノムの特定の標的配列を認識するgRNAがsgRNAであり、および/または、前記線形ドナーDNAに含まれるユニバーサル標的配列を認識するgRNAがsgRNAである、請求項15~18のいずれか1項に記載のシステムまたはキット。
- 前記細胞ゲノムの特定の標的配列を認識するsgRNAと、前記線形ドナーDNAに含まれるユニバーサル標的配列を認識するsgRNAとは、同じベクターに位置し、または、
前記細胞ゲノムの特定の標的配列を認識するsgRNAと、前記線形ドナーDNAに含まれるユニバーサル標的配列を認識するsgRNAとは、異なるベクターに位置する、
請求項15~19のいずれか1項に記載のシステムまたはキット。 - 前記マーカー遺伝子が抗生物質耐性遺伝子または蛍光タンパク質遺伝子である、請求項15~20のいずれか1項に記載のシステムまたはキット。
- 前記保護配列の長さが5~30bpである、請求項15~21のいずれか1項に記載のシステムまたはキット。
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