JP7046160B2 - ３次元細胞培養のための培養容器およびこれを利用した３次元細胞共培養方法 - Google Patents
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Description
本発明は、３次元細胞培養のための培養容器およびこれを利用した３次元細胞共培養方法に関し、より詳細には、従来とは異なって、培養容器の底面から離隔した位置で細胞が培養されることによって、３次元細胞培養構造物に必要な空気の供給が円滑な３次元細胞培養のための培養容器およびこれを利用した３次元細胞共培養方法に関する。
細胞の培養は、バイオ分野研究において最も基本となる研究方法であって、生命体の機能研究だけでなく、人体疾患を研究するのにも非常に広範囲に用いられている。一般的な真核細胞（ｅｕｋａｒｙｏｔｉｃ ｃｅｌｌ）の細胞培養方法が開発および確立されて以来、４０年余りが経過したが、付着細胞（ａｄｈｅｒｅｎｔ ｃｅｌｌ）の成長を支持するために現在まで最も頻繁に使用されている方法は、ポリスチレン（ｐｏｌｙｓｔｙｒｅｎｅ），ポリプロピレン（ｐｏｌｙｐｒｏｐｙｌｅｎｅ）、ポリエチレン（ｐｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅ）、ポリカーボネート（ＰＣ）のような合成ポリマー樹脂あるいはガラス（ｇｌａｓｓ）よりなる基質からなる２次元表面で細胞を培養することである。
しかしながら、単層細胞培養方法である２次元的細胞培養法により成長する細胞は、細胞が良好に付着し得るように処理された培養容器の表面に付着して成長するので、３次元的生体組織環境で成長する細胞と多くの差異点を示す。したがって、２次元的および３次元的細胞培養は、全般的な形態学的差異を示し、また、通常の２次元的細胞培養を通じて起こる受容体の発現、遺伝子の転写調節、細胞の移動およびアポトーシス（ａｐｏｐｔｏｓｉｓ）など多くの複雑な生命現象が実際生体組織環境で起こる現象と大きく異なっているので、２次元的細胞培養方法は、３次元上で細胞が成長する生体の生理的環境を正確に反映できないという問題点を有している。
実際に、肥満、糖尿、動脈硬化などのような代謝性疾患（ｍｅｔａｂｏｌｉｃ ｄｉｓｅａｓｅ）の治療剤の開発時に、初期試験管内（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）実験では優れた薬効を示した薬物が生体内（ｉｎ ｖｉｖｏ）動物実験では薬効が顕著に劣るなど新薬の開発に多くの困難が伴っている。このような問題を解決するためには、治療剤の開発の初期段階から薬物の正確な効能および毒性を予測できる生体内モデルと類似した試験管内モデルが必要である。
従来の細胞培養容器は、３次元細胞の培養時に空間的限界によって空気の供給と循環が円滑でないため、３次元細胞の成長と組織形成が十分に行われにくいので、薬物スクリーニングや毒性試験に適用するのに困難があった。
したがって、このような問題点を解決するために、３次元細胞の速い成長に適しており、かつ、２次元と３次元の共培養も可能な細胞培養容器に対する技術開発が要求されている。
本発明は、前記問題点を解決するためのものであって、従来とは異なって、培養容器の底面から離隔した位置で細胞が培養されることによって、３次元細胞培養構造物に必要な空気循環と供給が円滑な３次元細胞培養のための培養容器およびこれを利用した３次元細胞共培養方法を提供することを目的とする。
培養容器上に３次元構造体を別に支持する支持部の構造を具現することによって、３次元構造体の挿入と獲得および除去が容易であることを目的とする。
また、３次元培養に最適化した支持部の構造によって、空気循環と培養液内栄養成分の円滑な供給により３次元細胞培養だけでなく、二つ以上の細胞を共培養する場合、これを効率的に維持できることを目的とする。
本発明による３次元細胞培養方法は、細胞の成長が速く、多様なサイズ調節が可能であり、３次元培養分化した細胞は、動物代替試験に適用して、薬物スクリーニングや毒性試験などに効果的に利用することができる。
また、支持部領域が内側に掘られた形態で設計することによって、柱に突出した支持部による外観収縮現象を防止して、耐久性が高い３次元細胞培養のための培養容器およびこれを利用した３次元細胞共培養方法を提供することを目的とする。
また、損傷した人体組織機能を復元するための３次元細胞培養および分化あるいは組織培養容器として活用可能であることを目的とする。
上記目的を達成するための本発明による３次元細胞培養のための培養容器は、前記培養容器の底面上に位置する柱によりウェル（ｗｅｌｌ）が形成され、前記ウェルの内部には、前記柱から突出した少なくとも一つの支持部を含むことができる。
前記支持部は、前記培養容器の底面から離隔して前記柱の２０～６０％の高さに位置することができる。
または、前記支持部は、前記培養容器の底面に接する形態であって、前記柱の側面に沿って支持部が形成され得る。ここで、前記支持部の最上端は、前記培養容器から前記柱の２０～６０％の高さに位置することができる。
本発明による３次元細胞培養のための培養容器において、前記ウェルの断面部を基準として、前記柱から前記支持部の終端までの距離は、前記ウェルの直径対比１５～３０％でありうる。
また、前記支持部と接する前記柱領域のうち少なくとも一部と前記柱領域に接する前記支持部領域のうち少なくとも一部が除去され得る。
また、本発明による３次元細胞培養のための培養容器は、前記培養容器の底面上に位置する柱によりウェル（ｗｅｌｌ）が形成され、前記ウェルの内部には、前記培養容器の底面から突出した少なくとも一つの支持部を含み、前記支持部の上端表面のうち少なくとも一部が凹状に掘られた形態で構成され得る。前記支持部の上端表面は、端部領域と中央部領域に区分され、前記中央部領域は、凹状に掘られた形態であり、前記端部領域は、フラットにしたり、突出方向に凸状に突出した形態であり、前記支持部の上端表面で、前記端部領域は、１０～３０％、前記中央部領域は、７０～９０％の面積を占めることができる。
前記支持部の上端は、曲面形態で構成され、前記支持部の最上端は、前記柱の２０～６０％の高さに位置することができる。
また、本発明による３次元細胞共培養方法は、培養容器の底面上に位置する柱により形成されたウェル（ｗｅｌｌ）の内部に前記柱または前記底面から突出した少なくとも一つの支持部を含む３次元細胞培養のための培養容器を準備する準備段階と、第１細胞を前記ウェルの内部に接種する接種段階と、前記第１細胞を培養した後、上澄み液を除去し、培養液を少なくとも一部交換する交換段階と、第２細胞が接種された３次元構造体を前記支持部上に位置させて共培養する共培養段階とを含むことができる。
前記共培養段階の後に、１～５日間隔で前記培養液を交替する交換段階；をさらに含むことができる。
本発明の３次元細胞培養のための培養容器およびこれを利用した３次元細胞共培養方法によれば、従来とは異なって、培養容器の底面から離隔した位置で細胞が培養されることによって、３次元細胞培養構造物に必要な酸素供給が円滑であるという長所がある。
培養容器上に３次元構造体を別に支持する支持部の構造を具現することによって、３次元構造体の挿入と獲得および除去が容易であるという長所がある。
また、３次元培養に最適化された支持部の構造によって、３次元細胞培養だけでなく、２種類以上の細胞共培養を効率的に進行できるという長所がある。
本発明による３次元細胞培養方法は、細胞の成長が速く、多様なサイズ調節が可能であり、生体模写モデルあるいは動物代替試験法で薬物スクリーニングや薬効確認、毒性試験などにさらに効果的であるという長所がある。
また、支持部領域が内側に掘られた形態で設計することによって、柱に突出した支持部による外観収縮現象を防止して、耐久性が高いという長所がある。
また、損傷した人体組織機能を復元するための３次元細胞培養および組織培養容器として活用可能であるという長所がある。
以下、本発明による３次元細胞培養のための培養容器およびこれを利用した３次元細胞共培養方法について本発明の好ましい一つの実施例を添付の図面を参照して詳細に説明する。本発明は、下記の実施例によりさらに良好に理解され得、下記の実施例は、本発明の例示目的のためのものであり、添付の特許請求の範囲により限定される保護範囲を制限しようとするものではない。
図１および図２に示されたように、本発明の３次元細胞培養のための培養容器１００の第１実施例は、培養容器の底面１１０上に位置する柱１２０によりウェル（ｗｅｌｌ）１４０が形成され、前記ウェル１４０の内部には、前記柱１２０から突出した少なくとも一つの支持部１３０を含むことができる。
まず、培養容器の底面１１０は、基礎を形成する面であって、ポリスチレン（ＰＳ）、ポリプロピレン（ＰＰ）、ポリエチレン（ＰＥ）、ポリカーボネート（ＰＣ）、ガラスなど細胞培養に適用されるいずれの素材で構成されてもよい。
前記柱１２０は、培養容器の底面１１０に接して形成され、底面１１０と同じ素材で構成されることが好ましく、一体に形成され得る。柱１２０は、一つの培養容器の底面１１０上に複数個位置することができ、各柱１２０ごとにウェル１４０が形成され得る。図４に示されたように、１６ウェル、９６ウェルのように多様な数のウェルを有するように構成され得る。
柱１２０の断面形態は、円形または多角形であってもよく、好ましくは、楕円形または円形、最も好ましくは、円形でありうる。
前記支持部１３０は、前記培養容器の底面１１０から離隔して前記底面１１０から前記柱１２０の２０～６０％の高さに位置することが好ましく、より好ましくは２５～５０％の高さに位置し、最も好ましくは３０～３５％の高さに位置することが効果的である。２０％未満の高さに位置する場合には、下部での細胞への円滑な空気循環および供給が難しく、６０％を超過する高さに位置する場合には、支持部１３０上に載置される３次元細胞構造体とウェル１４０に入れた他の細胞間の共培養が行われにくいという問題がある。
また、図２に示されたように、前記ウェル１４０の断面部を基準として、前記柱１２０から前記支持部１３０の終端までの距離は、ウェル１４０の直径対比１５～３０％であることが好ましく、より好ましくは２０～２５％、最も好ましくは２２～２３％であることが効果的である。１５％未満である場合には、３次元細胞構造体を安定的に支持しにくく、３０％を超過する場合には、支持部１３０の底面１１０からの離隔効果が劣り、すなわち円滑な空気循環および供給が難しいため、細胞成長に悪影響を与える問題がある。
前記支持部１３０の個数は、２～５個であることが好ましく、より好ましくは、３～４個、最も好ましくは、３個であることが効果的である。２個未満の場合には、事実上３次元細胞構造体の支持が不可能であり、５個を超過する場合には、支持部１３０と培養容器の底面１１０間のオープン空間が過度に狭いため、空気循環および供給、２種以上の細胞共培養などの効率が顕著に低下する問題がある。
図３に示されたように、本発明の３次元細胞培養のための培養容器１００の第２実施例は、前記支持部１３０は、前記培養容器の底面１１０に接する形態であって、前記柱１２０の側面に沿って支持部１３０が形成され得る。
このように、前記培養容器の底面１１０から柱１２０の側面に沿って支持部１３０が形成されるので、一体に形成が容易であり、製造工程が単純になり、経済性が高まるという長所がある。それだけでなく、支持部１３０が柱１２０の側面に沿って柱形態で形成されるので、より高い安定性と耐久性を有する。
ここで、前記支持部１３０の最上端は、前記培養容器の底面１１０から前記柱１２０の２０～６０％の高さに位置することが好ましく、より好ましくは、２５～５０％の高さに位置し、最も好ましくは、３０～３５％の高さに位置することが効果的である。２０％未満の高さに位置する場合には、下部での細胞への円滑な酸素供給が難しく、６０％を超過する高さに位置する場合には、支持部１３０上に載置される３次元細胞構造体とウェル１４０に入れた他の細胞間の共培養が行われにくいという問題がある。
図５および図６に示されたように、本発明の３次元細胞培養のための培養容器１００の第３実施例は、前記支持部１３０と接する前記柱１２０領域のうち少なくとも一部と前記柱１２０領域に接する前記支持部１３０領域のうち少なくとも一部が除去され得る。
ここで、支持部１３０領域のうち除去された一部の領域と支持部１３０と接する柱１２０領域のうち除去された一部は、図５および図６に示されたアンダーカット領域１５０であって、ウェル１４０の内部に形成された支持部１３０の表面を除いた残りの領域は、全部除去されることが好ましい。
また、図７および図８に示されたように、本発明の３次元細胞培養のための培養容器１００の第４実施例は、培養容器の底面１１０上に位置する柱１２０によりウェル（ｗｅｌｌ）１４０が形成され、ウェル１４０の内部には、前記培養容器の底面１１０から突出した少なくとも一つの支持部１３０を含むことができる。これは、柱１２０でなく、培養容器の底面１１０上に支持部１３０が突出することによって、培養容器の底面１１０との３次元細胞構造体を離隔させる役割をする。
前記支持部１３０の最上端は、前記培養容器の底面１１０から前記柱１２０の２０～６０％の高さに位置することが好ましく、より好ましくは、２５～５０％の高さに位置し、最も好ましくは、３０～３５％の高さに位置することが効果的である。２０％未満の高さに位置する場合には、下部での細胞への円滑な酸素供給が難しく、６０％を超過する高さに位置する場合には、支持部１３０上に載置される３次元細胞構造体とウェル１４０に入れた他の細胞間の共培養が行われにくい問題がある。
図８に示されたように、前記ウェル１４０の断面部を基準として、前記支持部１３０の直径は、ウェル１４０の直径対比２～１０％であることが好ましく、より好ましくは、４～８％、最も好ましくは、５～６％であることが効果的である。２％未満である場合には、３次元細胞構造体を安定的に支持しにくく、１０％を超過する場合には、支持部１３０の培養容器の底面１１０からの離隔効果が劣り、すなわち円滑な空気循環と栄養成分の供給が難しいため、細胞成長に悪影響を与える問題がある。
また、図９に示されたように、本発明の３次元細胞培養のための培養容器１００の第５実施例は、前記支持部１３０の上端が曲面形態１３１で構成され得る。曲面で形成されることによって、角のある領域による細胞損傷を防止できると共に、細胞が接種された３次元構造体がさらに安定的に支持され得るので、生存率が高まる長所がある。
図１０に示されたように、本発明の３次元細胞培養のための培養容器１００の第６実施例は、前記支持部１３０の上端表面のうち少なくとも一部が凹状に掘られた形態で構成され得る。支持部１３０上端の中央部位が最も深いように凹状に掘られているので、細胞支持がさらに安定的であるので、共培養の効率と生存率を顕著に向上させることができる。また、細胞が支持部１３０に接触する面が最小化され、凹状に掘られた面は、円滑な空気循環効果を最大化させることができるので、細胞成長に効果的である。
前記支持部１３０の上端表面は、端部領域と中央部領域１３２に区分され、前記中央部領域１３２は、凹状に掘られた形態であり、前記端部領域は、フラットにしたり突出方向に凸状に突出した形態でありうる。細胞が端部領域にのみ接触することになって、損傷を最小化すると共に、円滑な空気循環により生存率が非常に高くなるという長所がある。
前記支持部１３０の上端表面で、前記端部領域は、１０～３０％、前記中央部領域は、７０～９０％の面積を占めることができ、より好ましくは、前記端部領域は、１５～２０％、前記中央部領域は、８０～８５％の面積を占めることが効果的である。これは、細胞が安定的に支持されるための最適な面積を提供すると共に、細胞成長および生存率を最大限高めることができるように、数回の実験を通じて最適化された面積範囲である。
次に、本発明の３次元細胞培養方法は、準備段階Ｓ１０と、培養段階Ｓ１１とを含むことができる。これは、本発明の３次元細胞培養のための培養容器構造を利用して効果的に細胞を培養できる方法である。
まず、準備段階Ｓ１０は、培養容器の底面上に位置する柱により形成されたウェル（ｗｅｌｌ）の内部に前記柱から突出した少なくとも一つの支持部または前記培養容器の底面から突出した少なくとも一つの支持部を含む３次元細胞培養のための培養容器を準備する段階である。前記準備段階Ｓ１０で、前記支持部の最上端は、前記柱または前記培養容器の底面から前記柱の２０～６０％の高さに位置することができる。
培養段階Ｓ１１は、細胞が接種された３次元構造体を前記支持部上に位置させて培養する段階である。３次元培養に最適化された支持部の構造によって、３次元細胞培養が効率的に進行される。
次に、本発明の３次元細胞共培養方法は、準備段階Ｓ２０と、接種段階Ｓ２１と、交換段階Ｓ２２と、共培養段階Ｓ２３とを含むことができる。これは、第１細胞と第２細胞を本発明の３次元細胞培養のための培養容器構造を利用して効果的に共培養できる方法である。
まず、準備段階Ｓ２０は、培養容器上に位置する柱により形成されたウェル（ｗｅｌｌ）の内部に前記柱から突出した少なくとも一つの支持部または前記培養容器の底面から突出した少なくとも一つの支持部を含む３次元細胞培養のための培養容器を準備する段階である。前記準備段階Ｓ２０で、前記支持部の最上端は、前記柱または前記培養容器の底面から前記柱の２０～６０％の高さに位置することができる。
接種段階Ｓ２１は、第１細胞を前記ウェルの内部に接種する段階である。すなわち第１細胞と培養液をウェルの内部に接種することができる。
ここで、第１細胞は、第２細胞と共培養が可能ないずれの細胞であってもよいが、正確には、付着細胞であってもよく、間葉系細胞あるいは間葉系幹細胞、脂肪前駆細胞、脂肪細胞、平滑筋細胞（Ｓｍｏｏｔｈ Ｍｕｓｃｌｅ Ｃｅｌｌ，ＳＭＣ）またはマクロファージ（ｍａｃｒｏｐｈａｇｅ）のうち少なくとも一つでありうる。
交換段階Ｓ２２は、前記第１細胞を培養した後、上澄み液を除去し、培養液を少なくとも一部交換する段階である。ウェル内の培養液から第１細胞培養によって発生した上澄み液を除去し、培養液の一部または全部を交換することによって、共培養効率を高めることができる。
共培養段階Ｓ２３は、第２細胞が接種された３次元構造体を前記支持部上に位置させて共培養する段階である。ここで、３次元構造体は、ビーズまたは支持体の形態であることが好ましい。
ここで、前記第２細胞は、培養可能な真核細胞であってもよく、より詳細には、上皮細胞、線維芽細胞、骨芽細胞、軟骨細胞、幹細胞、臍帯血細胞、臍帯由来間葉系幹細胞（Ｕｍｂｉｌｉｃａｌ ｃｏｒｄ ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ，ＵＣＭＳＣ）、脂肪由来間葉系幹細胞（Ａｄｉｐｏｓｅ ｄｅｒｉｖｅｄ ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ，ＡＤＭＳＣ）または骨髄由来間葉系幹細胞（Ｂｏｎｅ ｍａｒｒｏｗ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ，ＢＭＭＳＣ）のうち少なくとも一つでありうる。
最後に、交換段階Ｓ２４は、前記共培養段階Ｓ２３の後に、１～５日間隔で前記培養液を交替する段階である。より好ましくは、２～３日間隔で交替することが効果的である。これは、細胞培養に必要な栄養成分の供給と培養中に生成される細胞生存阻害物質を除去することによって、細胞または組織が持続的に成長するようにするためである。
実施例１：培養容器の製作および滅菌
本開発の実施例としてラピッドプロトタイピング（ＲＰ；ｒａｐｉｄ ｐｒｏｔｏｔｙｐｉｎｇ）装備を利用した任意形状製作（ＳＦＦ；ｓｏｌｉｄ ｆｒｅｅｆｏｒｍ ｆａｂｒｉｃａｔｉｏｎ）方式で１層、１層積層して形状を製作する３Ｄプリンティング技術を利用して培養容器を製作し、滅菌は、電子ビーム加速器を使用して行った。
本開発の実施例としてラピッドプロトタイピング（ＲＰ；ｒａｐｉｄ ｐｒｏｔｏｔｙｐｉｎｇ）装備を利用した任意形状製作（ＳＦＦ；ｓｏｌｉｄ ｆｒｅｅｆｏｒｍ ｆａｂｒｉｃａｔｉｏｎ）方式で１層、１層積層して形状を製作する３Ｄプリンティング技術を利用して培養容器を製作し、滅菌は、電子ビーム加速器を使用して行った。
実施例２：第１細胞培養
本発明の３次元細胞培養のための培養容器を利用した３次元細胞培養の効果を測定するための実験として次のような条件で実験を実施した。
本発明の３次元細胞培養のための培養容器を利用した３次元細胞培養の効果を測定するための実験として次のような条件で実験を実施した。
－細胞：３Ｔ３－Ｌ１（脂肪前駆細胞）（２．４５×１０６ｃｅｌｌｓ／５ｍＬ／Ｔｕｂｅ）、脂肪由来間葉系幹細胞（ＡＤＭＳＣ）
－培養期間：７日間培養
－細胞計数：０、３、７日目細胞計数
－アルギネート混合：１．３％濃度
－培養期間：７日間培養
－細胞計数：０、３、７日目細胞計数
－アルギネート混合：１．３％濃度
第１細胞は、３Ｔ３－Ｌ１（脂肪前駆細胞）であって、具体的に、冷凍保管された第１細胞を３７℃恒温水槽で解凍して１５ｍｌのチューブに移った後、基本培地（ＤＭＥＭ＋ １％ａｎｔｉｂｉｏｔｉｃｓ）を追加して１，５００ＲＰＭで５分間遠心分離して上澄み液を除去し、もう一度基本培地を追加して前記の方法を繰り返すことによって、凍結保存液成分を完全に除去した後、１００ｍｍの培養皿にＤＭＥＭ＋１％ａｎｔｉｂｉｏｔｉｃｓ＋１０％ＦＢＳを含む培地とともに細胞を接種して、３７℃、５％二酸化炭素培養器で培養し、４～５日後に十分に細胞が増殖すると、０．０５％ｔｒｙｐｓｉｎ－ＥＤＴＡを処理して、培養容器のウェル当たり細胞を１×１０３濃度で接種した。
実施例３：第２細胞が含まれたビーズの製作
第２細胞は、脂肪由来間葉系幹細胞（Ａｄｉｐｏｓｅ ｄｅｒｉｖｅｄ ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ，ＡＤＭＳＣ）であって、第２細胞が接種された３次元構造体をビーズ形態に製作した。
第２細胞は、脂肪由来間葉系幹細胞（Ａｄｉｐｏｓｅ ｄｅｒｉｖｅｄ ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ，ＡＤＭＳＣ）であって、第２細胞が接種された３次元構造体をビーズ形態に製作した。
ビーズは、培養液、アルギネートおよびゼラチンをチューブに投入して６５℃下で溶かすメルティング段階と、前記チューブの温度を３７℃に下げ、前記チューブに前記第２細胞（２．４５×１０６ｃｅｌｌｓ／５ｍＬ／Ｔｕｂｅ）を投入して、５００ＲＰＭで２分間撹拌する撹拌段階と、前と記チューブ内の混合物をビーズ形態に作り、塩化カルシウム溶液に入れて架橋させ製造する製造段階とを含んで製造された。
撹拌後には、遠心分離を通じて１５００ＲＰＭでバブルを除去する。前記製造段階で、塩化カルシウム溶液の濃度は、５％にした。
前記架橋されたビーズは、リン酸緩衝食塩水（ｐｈｏｓｐｈａｔｅ ｂｕｆｆｅｒｅｄ ｓａｌｉｎｅ，ＰＢＳ）で洗浄し、１０％ウシ胎児血清が含有された培養液に入れて、３７℃、５％二酸化炭素培養器で培養することによって、前記第２細胞が接種されたビーズ形態の３次元構造体を製造した。
実施例４：支持体の製作と滅菌工程
支持体は、ポリカプロラクトンを利用して製作した。まず、ポリカプロラクトンをチューブに投入して９０℃下で６５０～７３０ｋＰａの圧力を加えた後には、エアコントローラーの吸入機能を利用して３次元支持体を製作し、電子ビーム加速度を利用して滅菌工程を処理した。
支持体は、ポリカプロラクトンを利用して製作した。まず、ポリカプロラクトンをチューブに投入して９０℃下で６５０～７３０ｋＰａの圧力を加えた後には、エアコントローラーの吸入機能を利用して３次元支持体を製作し、電子ビーム加速度を利用して滅菌工程を処理した。
実施例５：第２細胞が含まれた支持体を利用した３次元細胞培養
第２細胞が含まれた支持体を利用した３次元細胞培養は、第２細胞を２５μｌずつ４個のドロップ（ｄｒｏｐ）支持体上に接種した後、１時間の間培養し、１ｍｌ培地添加し、３７℃、５％二酸化炭素の条件下で培養することによって、前記第２細胞が接種された支持体形態の３次元構造体を製造した。
第２細胞が含まれた支持体を利用した３次元細胞培養は、第２細胞を２５μｌずつ４個のドロップ（ｄｒｏｐ）支持体上に接種した後、１時間の間培養し、１ｍｌ培地添加し、３７℃、５％二酸化炭素の条件下で培養することによって、前記第２細胞が接種された支持体形態の３次元構造体を製造した。
図１１および図１２に示されたように、本発明による培養容器を使用して実施した３次元細胞培養は、一般的な培養容器を利用した２次元細胞培養とは異なって、培養時間が経過するほど細胞数が減少せずに増加することが分かる。すなわち、本発明の培養容器で３次元細胞培養がさらに持続的に行われ得ることを実際の実験で確認することができた。
以上、本発明の好ましい実施例を説明したが、本発明は、多様な変化と変更および均等物を使用することができる。本発明は、前記実施例を適切に変形して同一に応用できることが明確である。したがって、前記記載内容は、下記特許請求の範囲の限界により定められる本発明の範囲を限定するものではない。
本発明は、３次元細胞培養のための培養容器およびこれを利用した３次元細胞共培養方法に関するものであって、産業上の利用可能性がある。
Claims (10)
- ３次元細胞培養のための培養容器において、
前記培養容器の底面上に位置する中空の柱のそれぞれの内部に形成されたウェル（ｗｅｌｌ）と、前記ウェルの内部に３つまたは４つが互いに離隔して形成され、前記柱から突出した複数の支持部とを含み、
前記複数の支持部は、その最上端が前記柱の２０～６０％の高さに位置し、細胞が接種された３次元構造体に対する支持が可能な３次元細胞培養のための培養容器。 - 前記支持部は、前記培養容器の底面から離隔して位置することを特徴とする請求項１に記載の３次元細胞培養のための培養容器。
- 前記支持部は、前記培養容器の底面に接する形態であって、前記柱の側面に沿って支持部が形成されることを特徴とする請求項１に記載の３次元細胞培養のための培養容器。
- 前記ウェルの断面部を基準として、前記柱から前記支持部の終端までの距離は、前記ウェルの直径対比１５～３０％であることを特徴とする請求項１に記載の３次元細胞培養のための培養容器。
- 前記支持部と接する前記柱領域のうち少なくとも一部と前記柱領域に接する前記支持部領域のうち少なくとも一部が除去されたことを特徴とする請求項３に記載の３次元細胞培養のための培養容器。
- ３次元細胞培養のための培養容器において、
前記培養容器の底面上に位置する中空の柱のそれぞれの内部に形成されたウェル（ｗｅｌｌ）と、前記ウェルの内部に３つまたは４つが互いに離隔して形成され、前記培養容器の底面から突出した複数の支持部とを含み、
前記複数の支持部は、その上端表面のうち少なくとも一部が凹状に掘られた形態で構成され、その最上端が前記柱の２０～６０％の高さに位置し、細胞が接種された３次元構造体に対する支持が可能な３次元細胞培養のための培養容器。 - 前記支持部の上端表面は、端部領域と中央部領域に区分され、前記中央部領域は、凹状に掘られた形態であり、前記端部領域は、フラットにしたり突出方向に凸状に突出した形態であり、前記支持部の上端表面で、前記端部領域は、１０～３０％、前記中央部領域は、７０～９０％の面積を占めることを特徴とする請求項６に記載の３次元細胞培養のための培養容器。
- 前記支持部の上端は、曲面形態で構成されていることを特徴とする請求項６に記載の３次元細胞培養のための培養容器。
- 培養容器の底面上に位置する中空の柱のそれぞれの内部に形成されたウェル（ｗｅｌｌ）と、該ウェルの内部に３つまたは４つが前記柱または前記底面から突出し、互いに離隔して形成された複数の支持部とをそれぞれ含む培養容器を利用した３次元細胞共培養方法であって、
前記培養容器を準備する準備段階と、
第１細胞を前記ウェルの内部に接種する接種段階と、
前記第１細胞を培養した後、上澄み液を除去し、培養液を少なくとも一部交換する交換段階と、
第２細胞が接種された３次元構造体を前記支持部上に位置させて共培養する共培養段階と、を含み、
前記準備段階で、前記支持部の最上端は、前記柱の２０～６０％の高さに位置する３次元細胞共培養方法。 - 前記共培養段階の後に、１～５日間隔で前記培養液を交替する交換段階；をさらに含むことを特徴とする請求項９に記載の３次元細胞共培養方法。
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