JP7036722B2 - 磁性ガラス粒子による核酸の連続的な補足 - Google Patents

Description

「液体生検（ｌｉｑｕｉｄ ｂｉｏｐｓｙ）」の概念が近年注目を集めている。固体組織から試料を採取する代わりに、液体生検が、細胞、細胞外小胞（エキソソームなど）、及び／又は無細胞分子（ＤＮＡ、ＲＮＡ、又はたんぱく質）を補足する。これらの成分は、血液（又は、血漿若しくは血清）、尿、及び痰といった生物流体において収集することができる。これらの成分の存在は、例えば、がん、腫瘍、自己免疫疾患、心血管イベント、ウイルス、細菌性若しくは病原性感染、又は薬物反応に関するものと関連し得る。目的の分子は、エキソソームといった細胞外体としばしば関連するか、又は流体中における「無細胞」と関連し得る。

液体生検はいくつかの生物流体のいずれかを用いて実施することができ、そして最小限に侵襲性（例えば、静脈切開による血液採取）又は非侵襲性（尿採取）であり得る。したがって、液体生検は、採取の容易さ、患者監視のための反復採取の容易さ、患者黙認の高い可能性、患者に対する資料収集の精密さ、及び収集部位の特定化され難さに関して魅力的である。

液体生検の１つの欠点は、核酸の濃度が比較的低いため、下流の分析のために充分な材料を得るには大量の核酸が必要とされ得るということである。核酸補足キット及び装置は、典型的には０．２～１ｍｌの範囲の少量の試料向けに、典型的に設計されている。

磁性粒子は核酸補足に非常に有用であるが、強磁性分子は磁場に曝された後、個々に磁化されるようになる。最初の磁気分離ステップ後の磁性分子の連続的な再利用は、粒子がさらなる核酸と効率的に結合することができないと考えられるため、現在は推奨されていない。例えば、一度粒子が個別に磁化されると、それらの粒子はあらゆる非占有的な核酸結合部位を阻害する凝集塊を形成する。

本発明は、複数回の連続した磁気補足及び精製に同一の磁性ガラス粒子（ＭＧＰ）を用いる核酸補足のための、方法及び組成物を提供する。これらの方法は、自動化システムにて使用される比較的小さな容器内の大量の液体試料を処理するために有用である。

液体試料中の核酸を補足する方法であって、以下：（ａ）液体試料からの核酸をＭＧＰと非共有結合させる条件下において、容器中の液体試料の第１アリコートをＭＧＰと接触させること（ＭＧＰはガラス中に少なくとも１つの磁気コアを含み、強磁性かつ非多孔性である）、（ｂ）ＭＧＰへ磁場を印加すること；（ｃ）ＭＧＰから未結合の液体試料を取り除くこと；（ｄ）液体試料の第２アリコートをＭＧＰと接触させること；（ｅ）液体試料の第２アリコート中にＭＧＰを再懸濁すること；（ｆ）ＭＧＰをピペット操作して、液体試料の第２アリコートを通じてＭＧＰを混合すること；（ｇ）磁場を前記ＭＧＰへ印加すること；（ｈ）ＭＧＰから未結合の液体試料を取り除くこと；及び、（ｉ）随意に、少なくとも１つの液体試料のさらなるアリコート（例えば、第３、第４、第５、又は第６アリコート）に対してステップ（ｄ）～ステップ（ｈ）を繰り返すこと、を含む方法を提供する。いくつかの実施形態において、ステップ（ｆ）は、ＭＧＰを液体試料の第２（又はそれ以降の）アリコートの上部へとピペット操作すること、及びＭＧＰを分注することを含む。いくつかの実施形態において、本方法は、液体試料の第３、第４、第５、又は第６アリコートに対して実施される。

いくつかの実施形態において、ＭＧＰは０．５～１５μｍの平均直径（例えば１～１０μｍ、０．８～２μｍ）を有する。いくつかの実施形態において、ガラスは少なくとも１つの金属酸化物を含む。いくつかの実施形態において、金属酸化物は、ＳｉＯ₂、Ｂ₂Ｏ₃、Ａｌ₂Ｏ₃、Ｋ₂Ｏ、ＣａＯ、及びＺｎＯから選択される。いくつかの実施形態において、ガラスは、モル％の順に、ＳｉＯ₂、Ｂ₂Ｏ₃、Ａｌ₂Ｏ₃、Ｋ₂Ｏ、ＣａＯ、及びＺｎＯを含む。いくつかの実施形態において、ガラスは、モル％の順に、ＳｉＯ₂、Ｂ₂Ｏ₃、Ａｌ₂Ｏ₃、Ｋ₂Ｏ、及びＣａＯを含む。

いくつかの実施形態において、ステップ（ａ）～ステップ（ｉ）は、カオトロープ（例えば、グアニジンチオシアネート、塩酸グアニジン、又は尿素）の存在下において実施される。いくつかの実施形態において、本方法は、ＭＧＰからの核酸を、例えば、ステップ（ａ）～ステップ（ｉ）に存在するよりも低濃度のカオトロープを備える液体若しくは緩衝液中へと溶出すること、又は実質的にカオトロープを欠くこと（例えば、水又は緩衝液）を更に含む。いくつかの実施形態において、ステップ（ｃ）は、ＭＧＰから未結合の液体試料を取り除くこと、ＭＧＰを洗浄すること、及びＭＧＰから未結合の材料を取り除くことを含む。いくつかの実施形態において、ステップ（ｈ）は、ＭＧＰから未結合の液体試料を取り除くこと、ＭＧＰを洗浄すること、及びＭＧＰから未結合の材料を取り除くことを含む。いくつかの実施形態において、ステップ（ｃ）及びステップ（ｈ）は、ＭＧＰから未結合の液体試料を取り除くこと、ＭＧＰを洗浄すること、及びＭＧＰから未結合の材料を取り除くことを含む。

いくつかの実施形態において、液体試料は、血液、血漿、血清、尿、唾液、精液、脳脊髄液、又はそのライセートである。いくつかの実施形態において、液体試料は、血漿又は血清である。いくつかの実施形態において、液体試料は、尿である。いくつかの実施形態において、液体試料は、少なくとも２ｍｌ、例えば、４、５、１０、５０、２～１０、４～５０、又は２～１００ｍｌの量である。いくつかの実施形態において、液体試料は、２～１００ｍｌの量である。

いくつかの実施形態において、容器は、５ｍｌ以下（例えば、３、２、又は１ｍｌ以下）を保持する（例えば、５ｍｌ以下の最大作業容量を有する）。いくつかの実施形態において、容器は、０．２～１．５又は０．５～２ｍｌを保持する。いくつかの実施形態において、容器は、マルチウェルプレート中のウェル又はカートリッジである。いくつかの実施形態において、容器は管である。

いくつかの実施形態において、本方法は、自動化された装置にて実行される。いくつかの実施形態において、ステップ（ｂ）～ステップ（ｉ）は、自動化された装置にて実行される。いくつかの実施形態において、本方法は、例えば自動化された装置内において、ＭＧＰから核酸を溶出させることを更に含む。

いくつかの実施形態において、核酸はＲＮＡである。いくつかの実施形態において、核酸はＤＮＡである。いくつかの実施形態において、本方法は、逆転写（例えば、液体試料がＲＮＡを含む場合）、及び／又はＰＣＲ（例えば液体試料又は逆転写ｃＤＮＡ産物中のＤＮＡを増幅するため）を更に含む。いくつかの実施形態において、逆転写及び／又はＰＣＲは、ＭＧＰの存在下において実行される。いくつかの実施形態において、逆転写及び／又はＰＣＲは、ＭＧＰの非存在下、例えば溶出後に実行される。いずれの場合においても、逆転写及び／又はＰＣＲは、分離に使用される同一の自動化装置、又は別々の自動化装置のいずれかにおいて自動化することができる。

図１は、最初の補足を行った後に同一の試料から核酸の補足を３回行う、核酸の連続した補足のための開示された方法の実施形態を示す。最初に、試料及び磁性ガラス粒子（ＭＧＰ）を容器内にて混合し（接触させ）、磁石を容器に取り付けて核酸結合ＭＧＰを回収し、未結合の液体を吸引し、そして磁石を取り外す。図１は、さらなる試料を、ビーズ破壊（Ｂｅａｄ Ｂｒｅａｋ）、混合、及び吸引／分注のステップのために加えることを示す。ビーズ補足及び未結合の液体（廃棄ライセート）の除去は、前述と同様に実行する。

Ｉ．序論
流体を含有する大量の液体試料（例えば、液体生検）、非侵襲性胎胎児検査、及び潜在的な病原体（ウイルス性、細菌性、真菌性）は、診断試験に使用されることが増えている。これらの液体試料は自動化に適合する容器（例えば、ウェル又は管）と比べて大きくてもよく、しばしば核酸が低い濃度で希釈される。本発明の方法は、１組の磁性粒子を用いて、大量の液体から、合理化し自動化された核酸又はたんぱく質を補足することを可能にする。液体のアリコートは連続して磁性粒子に曝される。各々の連続する操作では、ビーズ面のより多くが液体試料由来の核酸又はたんぱく質に占有されるようになる。連続して曝露させることにより、充分な核酸をＰＣＲ又は配列決定といった下流アッセイのために集めることができる。

本方法は、磁性ガラス粒子（ＭＧＰ）を液体試料の第１アリコートへ曝露し、随意に混合し、磁場をＭＧＰへ印加して塊（ペレット）を形成し、そしてＭＧＰ塊から未結合の液体を分離する、初回の操作に関する。その後、ＭＧＰ塊を液体試料の第２アリコートへ曝し、物理的に破壊する（例えば、ピペットチップによるか、又は液体ピペット操作の力による）。次いで、破壊したＭＧＰを第２アリコート全体へ分散し（例えば、均一に分散する）、ＭＧＰを混合させ、そして試料中にて核酸と結合させる。再び磁場をＭＧＰに印加して塊を形成し、未結合の液体を取り除く。第３、第４、第５、又はさらなる連続した操作は、充分な核酸又はたんぱく質が集まるまで、又は液体試料全体がＭＧＰに曝されるまで、実行することができる。

ＩＩ．定義
用語「磁性ガラス粒子」又は「ＭＧＰ」とは、核酸を非共有結合するガラスを含む粒子、及び磁場に応答する少なくとも１つの磁気コア（例えば、磁気コアの分散体）を指す。ガラスは必ずしも純粋なシリカである必要は無いが、シリカが成分であってもよい。ＭＧＰは、標準的なピペットチップでピペット操作して懸濁液（典型的に、０．５～１５μｍ）を形成するために充分小さい。ＭＧＰは平均してほぼ球状であり、そして多孔質又は非多孔質であってもよい。磁気コアは、強磁性又は常磁性（磁場の存在下においてのみ磁化される）であってもよい。好適なＭＧＰは、例えば米国特許出願第６２５５４７７号明細書及び同第６５４５１４３号明細書にてより詳細に説明されている。用語「ペレット」、「塊」、及び同種の用語は、磁場の存在下において形成されるＭＧＰの分類を指す。

用語「核酸」、「ポリヌクレオチド」、及び「オリゴヌクレオチド」とは、ヌクレオチド（例えば、リボヌクレオチド又はデオキシリボヌクレオチド）のポリマーを指し、天然素材である核酸（アデノシン、グアニジン、シトシン、ウラシル、及びチミジン）、非天然素材である核酸、及び修飾された核酸を含む。この用語はポリマーの長さ（例えば、モノマーの数）によって制限されない。核酸は一本鎖又は二本鎖であってもよく、一般的に５’－３’ホスホジエステル結合を含有するが、場合によりヌクレオチド類似体はその他の結合を有していてもよい。モノマーは、典型的にはヌクレオチドと称される。用語「非天然ヌクレオチド」又は「修飾ヌクレオチド」とは、修飾された窒素塩基、糖、若しくはリン酸基を含有するか、又はその構造中に非天然部分を組み込むヌクレオチドを指す。非天然ヌクレオチドの例として、ジデオキシヌクレオチド、ビオチン化、アミノ化、脱アミノ化、アルキル化、ベンジン化、及びフルオロフォア標識ヌクレオチドが挙げられる。

用語「たんぱく質」、「ペプチド」、及び「ポリペプチド」とは、アミノ酸ポリマー、又は２つ以上の相互作用若しくは結合アミノ酸ポリマーの組を指す。この用語は、１つ以上のアミノ酸残基が対応する天然アミノ酸の人口化学模倣物及び天然アミノ酸ポリマーである、アミノ酸ポリマー（これらのポリマーは修飾された残基及び非天然アミノ酸ポリマーを含有する）を指す。

用語「アミノ酸」とは、天然及び合成アミノ酸、並びに天然アミノ酸と同様に機能するアミノ酸類似体及びアミノ酸模倣体を指す。天然に存在するアミノ酸は、遺伝暗号によってコード化されるアミノ酸、及び後に修飾されるそれらのアミノ酸（例えば、ヒドロキシプロリン、ガンマ－カルボキシグルタミン酸、及びＯ－ホスホセリン）である。アミノ酸類似体とは、天然アミノ酸と同一の基本的化学構造を有する化合物、例えば、水素と結合する炭素、カルボキシル基、アミノ基、及びＲ基（例えば、ホモセリン、ノルロイシン、メチオニンスルホキシド、メチオニンメチルスルホニウム）を指す。そのような類似体は修飾されたＲ基（例えば、ノルロイシン）又は修飾されたペプチド骨格を有し得るが、天然アミノ酸と同一の基本的化学構造を保持し得る。アミノ酸模倣物とは、アミノ酸の一般的な化学構造とは異なる構造を有するが、天然アミノ酸と同様に機能する化学物質を指す。

用語「抗体」とは、抗原又はあらゆる所望の標的を特異的に結合して認識する、免役グロブリン遺伝子由来のフレームワーク領域又はその断片を含む、ポリペプチドを指す。典型的に、「可変領域」は抗体（又はその機能的等価物）の抗原結合領域を含有し、結合の特異性及び親和性において最も重要である。Ｐａｕｌ，Ｆｕｎｄａｍｅｎｔａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ（２００３）を参照されたい。

インタクトな抗体は、重鎖定常領域によって定義されるアイソタイプにしたがって記載することができる。抗体の軽鎖はカッパ又はラムダのいずれかに分類される。重鎖は、ガンマ、ミュー、アルファ、デルタ、又はイプシロンとして分類され、それぞれ順に、アイソタイプクラス、ＩｇＧ、ＩｇＭ、ＩｇＡ、ＩｇＤ、及びＩｇＥを定義する。

抗体は、インタクトな免役グロブリンとして、又は特異的な抗原結合活性を含む多数の特徴がはっきりした断片のいずれかとして存在し得る。そのような断片は種々のペプチターゼでの消化によって生産され得る。ペプシンは、ヒンジ領域にてジスルフィド結合下において抗体を昇華して、Ｆａｂのダイマー（それ自体がジスルフィド結合によってＶＨ－ＣＨ１へ結合した軽鎖である）であるＦ（ａｂ）’２を生産する。Ｆ（ａｂ）’２は、ヒンジ領域にて受スルフィド結合を破壊し、それによりＦ（ａｂ）’２ダイマーをＦａｂ’モノマーへ変換するために、緩和な条件下において還元してもよい。Ｆａｂ’モノマーは本質的に、ヒンジ領域の一部を有するＦａｂである（Ｆｕｎｄａｍｅｎｔａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ（Ｐａｕｌ ｅｄ．，３ｄ ｅｄ．１９９３）を参照されたい）。種々の抗体断片はインタクトな抗体の消化に関して定義されるが、当業者は、そのような断片が、化学的に、又は組換えＤＮＡ方法論を用いてのいずれかによって、新規に合成され得ることは理解されよう。したがって、抗体という用語はまた、本明細書にて使用される場合、全抗体の修飾によって生産される抗体断片、又は組換えＤＮＡ方法論を用いて新規に合成される抗体断片（例えば、単鎖Ｆｖ）、若しくはファージディスプレイライブラリ（例えば、ＭｃＣａｆｆｅｒｔｙ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ ３４８：５５２－５５４（１９９０）を参照されたい）を用いて同定される抗体断片のいずれかも含む。

用語「補足」、「補足すること」、「結合」又は「結合すること」とは、ＭＧＰ結合核酸の文脈において、例えばカオトロピック又はイオン性相互作用による非共有結合を指す。ＭＧＰ核酸相互作用は、溶出（例えば、非共有相互作用を棒愛する溶出緩衝液を用いる）によって破壊することができる。この用語はまた、ＭＧＰとたんぱく質との結合（例えば、抗体－抗原、受容体－リガンド、又はストレプトアビジン－ビオチン相互作用を介する）も指すことができる。そのような実施形態において、標的結合部分（例えば、抗体）はＭＧＰと結合して、液体試料中の標的の特異的親和性精製を可能にする。

用語「プライマー」とは、好適な条件下において、核酸ポリメラーゼによってポリヌクレオチド鎖合成の開始点として作用する短い核酸（典型的には、約８～４０、６～２０、１２～５０、又は１５～２５ヌクレオチドのオリゴヌクレオチド）を指す。特に指示されない限り、「伸展産物（ｅｘｔｅｎｓｉｏｎ ｐｒｏｄｕｃｔ）」は、合成の際にプライマーの３’末端から伸びるポリヌクレオチド鎖である。ポリヌクレオチド合成及び増幅反応は、典型的には適切な緩衝液、ｄＮＴＰ及び／又はｒＮＴＰ、並びに１つ以上の随意の補助因子を含み、好適な温度で実施される。プライマーは、典型的には、標的配列をハイブリッド形成することができ、そして標的配列に対して少なくとも実質的に相補的である、少なくとも１ヶ所の領域を含む。この領域は、典型的には約１５～約４０ヌクレオチド長であり、０、１、２、又は３つのミスマッチを含む。

用語「増幅産物（ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｐｒｏｄｕｃｔ）」という用語は、増幅反応の生産物を指す。増幅産物は、ポリヌクレオチド合成の各操作を開始するために使用されるプライマーを含む。「単位複製配列」は増幅の標的とされる配列であり、本用語はまた、増幅産物を指すためにも使用することもできる。単位複製配列の５’及び３’境界は、順方向及び逆方向プライマーによって定義される。

用語「試料」又は「生物学的試料」とは、核酸を含有するか、又は含有すると推定されるあらゆる組成物を指す。本用語は、細胞、組織、又は血液の精製又は分離された成分（例えば、ＤＮＡ、ＲＮＡ、たんぱく質、無細胞部分、又は細胞ライセート）を含む。本開示の装置に関して、資料は、液体（例えば、血液又は血液成分（血漿又は血清）、尿、精液、唾液、痰、粘膜、精液、涙、リンパ液、脳脊髄液、口／喉洗浄液（ｍｏｕｔｈ／ｔｈｒｏａｔ ｒｉｎｓｅ）、気管支肺胞洗浄液、スワブから洗浄した材料など）である。試料はまた、株化細胞を含む個体から得た細胞のインビトロ培養物の成分及び構成要素を含んでいてもよい。液体試料はまた、個体から直接得た試料（例えば、細胞ライセート又は赤血球が枯渇した血液）から部分的に処理することもできる。

本開示の文脈において、用語「未結合の液体」又は「未結合の試料」とは、ＭＧＰ（例えば、核酸又はその他の標的が枯渇した液体）と結合していない、その他の成分（例えば、たんぱく質性材料又は細胞片）を指す。未結合の液体は、残存する核酸又は標的の量を含んだままでもよい。

エキソソーム、微細胞、及びアポトーシス小体を含む細胞外小胞は、生体液中に存在する細胞由来の小胞（膜封入体）であり、例えば、血液及び尿である。細胞外小胞は、細胞から放出（例えば、細胞膜から直接）され得るか、又は多胞体が細胞膜と融合する際に形成され得る。細胞外小胞は、典型的には、それらの起源の細胞に由来するそのような核酸及びたんぱく質などの成分を含む。エキソソームは、典型的には直径４０～１２０ｎｍであり、微小胞は、典型的には直径５０～１０００ｎｍであり、アポトーシス体は、典型的には直径５００～２０００ｎｍである。

「対照」試料又は値とは、試験試料又は試験条件との比較のために、参照（通常、既知の参照）として働く試料を指す。例えば、試験試料は、試験条件から（例えば、本発明に記載の方法を用いて処理される試料から）取得することができ、既知の条件（例えば、本発明に記載の方法を用いて処理されない試料から、又は既知の量の核酸を有する試料から）からの試料と比較することができる。対照はまた、多数の試験又は結果から集められた平均値又は範囲を表すこともできる。対照はまた、反応条件に対して調製することもできる。例えば、核酸の存在に対する正の対照は、試料中に存在するとして知られている配列を検出するプライマー又はプローブを含むことができる一方で、負の対象は核酸を有しないであろう。当業者は、対照をあらゆる数のパラメータを評価するために設計してもよいことは理解されよう。対照をインビトロ用途のために設計してもよい。当業者は、どの対照が所与の状況において有益であり、対照値との比較に基づくデータを分析することができるかを理解されよう。対照はまた、データの重要性を判断するためにも有益である。例えば、所与のパラメータの値が対照において広く変化している場合、試験試料における変動は有意でないと考えられる。

特に指示されない限り、本明細書にて使用される技術用語及び科学用語は、当業者により一般的に理解されるものと同一の意味を有する。例えば、Ｌａｃｋｉｅ，ＤＩＣＴＩＯＮＡＲＹ ＯＦ ＣＥＬＬ ＡＮＤ ＭＯＬＥＣＵＬＡＲ ＢＩＯＬＯＧＹ，Ｅｌｓｅｖｉｅｒ（４ｔｈ ｅｄ．２００７）；Ｓａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．，ＭＯＬＥＣＵＬＡＲ ＣＬＯＮＩＮＧ，Ａ ＬＡＢＯＲＡＴＯＲＹ ＭＡＮＵＡＬ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇｓ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓ（Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇｓ Ｈａｒｂｏｒ，Ｎ．Ｙ．１９８９）；Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．：Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ １９８７，Ｊ．Ｗｉｌｅｙ ａｎｄ Ｓｏｎｓ，ＮＹ；Ｐｆａｆｆｌ，Ｍｅｔｈｏｄｓ：Ｔｈｅ ｏｎｇｏｉｎｇ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ ｏｆ ｑＰＣＲ，ｖｏｌ．５０ （２０１０）；ｖａｎ Ｐｅｌｔ－Ｖｅｒｋｕｉｌ ｅｔ ａｌ．Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ ａｎｄ Ｔｅｃｈｎｉｃａｌ Ａｓｐｅｃｔｓ ｏｆ ＰＣＲ Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ，Ｓｐｒｉｎｇｅｒ（２０１０）を参照されたい。

ＩＩＩ．連続する核酸補足のための方法及び構成要素
Ａ．生体試料
本開示の方法で使用される生体試料は核酸又はたんぱく質を含む液体である。試料の種類として、血液（血漿又は血清を含む）、尿、唾液、精液、口若しくは鼻洗浄液、脳脊髄液、痰、細胞懸濁液（血液など）、細胞又は組織由来のライセートなどが挙げられる。試料は、単一の個体（例えば、患者）、又は個体の集団から得ることができる。

本発明の方法はまた、例えば、食品若しくは植物試料から、又は面をぬぐうこと（例えば、病院内にて）によって調製された液体に適用することもできる。

細胞を含む試料では、細胞を分離し（例えば、大きさに基づく濾過又は遠心分離を用いる）、それによりエキソソーム、微小胞、ウイルス粒子、又は自由に循環するものに核酸を含む、無細胞核酸（ｃｆＮＡ）を残した。或いは、細胞を溶解し、ＭＧＰの存在下において、又は細胞ライセートをＭＧＰへ加える前のいずれかにおいて、細胞核酸を得ることができる。

Ｂ．磁性ガラス粒子
磁性ガラス粒子（ＭＧＰ）は当該技術分野において公知であり、例えば、米国特許出願第６２５５４７７号明細書及び同第６５４５１４３号明細書に記載されている。本開示の方法に使用する粒子は強磁性である。粒子は直径０．５～１５μｍ（例えば、１～１０、０．８～２、又は１～１．５μｍ）で、平均してほぼ球状である。いくつかの実施形態において、粒子は非多孔性である。

ＭＧＰはガラスで被覆された単一の磁気コアを有していてもよく、又はいくつかの磁性物体が注入されたガラスを含んでいてもよい。磁性体はマグネタイト（Ｆｅ₃Ｏ₄）又はＦｅ₂Ｏ₃（例えば、ガンマ－Ｆｅ₂Ｏ₃）のような鉄又は酸化鉄であってもよい。バリウムフェライト、ニッケル、コバルト、Ａｌ－Ｎｉ－Ｆｅ－Ｃｏ合金、又はその他の強磁性体を用いることができる。金属酸化物はまた、磁気コア（例えば、酸化アルミニウム、酸化鉄、酸化クロム、酸化銅、酸化マンガン、酸化鉛、酸化スズ、酸化チタン、酸化亜鉛、又は酸化ジルコニウム）に含まれていてもよい。

ガラス成分は、典型的には、シリカ系（例えば、酸化ケイ素及びガラス粉末、アルキルシリカ、ケイ酸アルミニウム、又はＮＨ２活性化シリカ）である。いくつかの実施形態において、ガラスは少なくとも１つの金属酸化物（例えば、ＳｉＯ₂、Ｂ₂Ｏ₃、Ａｌ₂Ｏ₃、Ｋ₂Ｏ、ＣａＯ、及び／又はＺｎＯ）を含む。いくつかの実施形態において、ガラスは、ＳｉＯ₂、Ｂ₂Ｏ₃、Ａｌ₂Ｏ₃、Ｋ₂Ｏ、及びＣａＯをモル％の順に含む。いくつかの実施形態において、ガラスは、ＳｉＯ₂、Ｂ₂Ｏ₃、Ａｌ₂Ｏ₃、Ｋ₂Ｏ、ＣａＯ、及びＺｎＯをモル％の順に含む。いくつかの実施形態において、ＳｉＯ₂に加えて、ガラスは、Ｂ₂Ｏ₃（０～３０％）、Ａｌ₂Ｏ₃（０～２０％）、ＣａＯ（０～２０％）、ＢａＯ（０～１０％）、Ｋ₂Ｏ（０～２０％）、Ｎａ₂Ｏ（０～２０％）、ＭｇＯ（０～１８％）、Ｐｂ₂Ｏ₃（０～１５％）、ＺｎＯ（０～６％）を含むことができる。いくつかの実施形態において、ガラスは、約７０～７５％のＳｉＯ２、約１４～１６％のＢ₂Ｏ₃、約４～６％のＡｌ₂Ｏ₃、約４～５％のＫ₂Ｏ、約２～３％のＣａＯ、及び約０～５％のＺｎＯを含む。適切なＭＧＰは、ＲｏｃｈｅよりＭａｇＮＡＰｕｒｅキットとして購入することができる。

核酸はカオトロピック溶液中のＭＧＰと結合する。カオトロピック溶液は、グアニジンチオシアネート（ＧｕＳＣＮ）、塩酸グアニンジン（ｇｕａｎｉｎｄｉｎｅ ｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅ）、尿素、ヨウ化ナトリウム、過塩素酸ナトリウム、チオシアン酸イオン、ヨードイオン、過塩素酸イオン、硝酸イオン、臭素イオン、アセテートイオン、塩素イオン、フッ素イオン、若しくは硫黄イオン、又はこれらの組合せを含み得る。いくつかの実施形態において、カオトロープは約１～１０Ｍ（例えば、２～８Ｍ又は４～６Ｍ）で溶液中に存在し、核酸を結合させる。

Ｃ．自動化
本発明の方法は、手動、半自動化、又は自動化された形式で実施することができる。当然、自動化は、複数の試料及び多段階処理、異なる処理のステップでの試料間及び試料内汚染、反復した損傷、並びに血液試料といった潜在的有害物質への曝露を処理するために費やす時間を削減するために有用である。

ＭＧＰを用いて磁気分離を行えるあらゆる機器を使用することができる。装置に応じて、試料は多槽（ｍｕｌｔｉｖｅｓｓｅｌ）カートリッジ若しくはプレート中、又は個々の容器中にて処理することができる。自動化機器で使用するための容器（例えば、管又はウェルの処理）は、典型的には５０μｌ～４ｍｌ、より典型的には１～２ｍｌの液体容量を保持する。

本開示の方法を自動化するために使用することのできる機器の例として、これらに限定されないが、ＭａｇＮＡ Ｐｕｒｅ機器（Ｒｏｃｈｅ）、Ｄｙｎａｍａｇ（登録商標）機器（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ）、ＱＩＡｓｙｍｐｈｏｎｙ（登録商標）システム（Ｑｉａｇｅｎ）、及びＭａｘｗｅｌｌ（登録商標）機器（Ｐｒｏｍｅｇａ）が挙げられる。

本明細書において、機器は、処理全体（例えば、連続するアリコート中の大量の試料を処理容器へピペット操作、ＭＧＰに対しする核酸補足の連続的な実行、ＭＧＰ磁性収集、未結合の液体の除去、次の試料アリコートにおけるＭＧＰの再懸濁、及びＭＧＰからの核酸の溶出）を実行することができる。いくつかの配置において、機器は、ＭＧＰに対する核酸補足の連続的な実行、ＭＧＰ沈降、未結合の液体の除去、及び次の試料アリコートにおけるＭＧＰの再懸濁を実行する。いくつかの配置において、同一の大量の液体試料が連続して複数回アクセスされる。いくつかの配置において、使用者又は機器は、補足などのために連続してアクセスされる大量の液体試料を、複数のアリコート中へ「プレアリコート（ｐｒｅａｌｉｑｕｏｔ）」する。

Ｄ．さらなる処理及び検出
浄化試料からの核酸のさらなるは、標準的な方法（例えば、上のＳａｍｂｒｏｏｋに記載の通り）に従って達成することができる。液体生検中に存在する核はしばしば短く、例えば、５０～５０００ヌクレオチド長である。選択した精製方法はこのことを考慮すべきである。従来法として、有機抽出、エタノール沈殿、及び再懸濁；並びにガラス又は電磁ビーズ上における分離とそれに続く溶出が挙げられる。ＤＮＡ及びＲＮＡのためのキット（例えば、Ｒｏｃｈｅ社のＨｉｇｈ Ｐｕｒｅキット及びＰｒｏｍｅｇａ社のＷｉｚａｒｄキット）もまた市販されている。

核酸は、典型的には分析前にビーズから溶出されるが、ＭＧＰはいくつかのアッセイ（例えば、ＭＧＰ、ＰＣＲ、又は溶出がサザンブロット法といったアッセイの一部として発生する場合における、核酸とハイブリット形成した標識プローブの検出）に適合する。溶出条件は、核酸とＭＧＰ（例えば、水、核酸をＭＧＰと結合するために使用されるよりも低いカオトロープ濃度を有する緩衝液、及び／又は高温）との非共有結合的な（例えば、カオトロピック又はイオン性）相互作用を妨害し、これは当業者によって理解されるであろう。

精製した核酸試料は、例えば、次世代配列決定、マイクロアレイ（ＲＮＡ又はＤＮＡ）、サザン若しくはノーザンブロット法、又は核酸増幅（例えば、あらゆるプライマー依存方法を用いる）を用いた検出に使用することができる。ＤＮＡに基づく方法は、増幅及び検出（例えば、ＰＣＲ）に使用することができる。いくつかの例において、リアルタイム又は定量ＰＣＲが使用される（ＲＴＰＣＲ又はｑＰＣＲ）。ｑＰＣＲは、ＰＣＲ処理の各サイクル中に生成された産物の信頼できる検出及び測定を可能にする。そのような技術は当該技術分野にて周知であり、キット及び試薬は、例えば、Ｒｏｃｈｅ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｓｙｓｔｅｍｓ、Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、Ｂｉｏ－Ｒａｄなどから購入することができる。例えば、Ｐｆａｆｆｌ（２０１０）Ｍｅｔｈｏｄｓ：Ｔｈｅ ｏｎｇｏｉｎｇ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ ｏｆ ｑＰＣＲ ｖｏｌ．５０を参照されたい。いくつかの例において、分子プライマー－プローブのプローブ部分は二重標識されている（例えば、失活材及びフルオロフォア（例えば、Ｇａｓｐａｒｉｃ ｅｔ ａｌ．（２０１０）Ａｎａｌ．Ｂｉｏａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．３９６：２０２３を参照のこと）を有するＴａｑＭａｎ、ＣＰＴ、ＬＮＡ、又はＭＧＢプローブ）。

いくつかの例において、予備逆転写ステップ（リアルタイムＰＣＲと混同されないようＲＴ－ＰＣＲとも呼ばれる）が実行される。例えば、Ｈｉｅｒｒｏ ｅｔ ａｌ．（２００６） ７２：７１４８を参照されたい。用語「ｑＲＴ－ＰＣＲ」とは、本明細書にて使用される場合、定量ＰＣＲに続く逆転写を指す。どちらの反応も中断すること（例えば、試薬の追加）なく単一の管にて実行することができる。例えば、ポリＴプライマーはポリＡ尾部を有する試料において全てのｍＲＮＡを逆転写するために使用してもよいか、又はプライマーはｃＤＮＡ中へ逆転写される特定の標的転写物に特異的であるように設計されていてもよい。ｃＤＮＡは、本発明の分枝プライマー－プローブ、又はそのプライマー対若しくはプライマー組のその他のメンバーと共に使用される、初期鋳型鎖を形成することができる。例えば核酸配列ベース増幅（ＮＡＳＢＡ）又は転写媒介増幅（ＴＭＡ）といった、さらなるＲＮＡに基づく増幅方法もまた使用することができる。

検出装置は当該技術分野において周知であり、選択した標識に対して適切に選択され得る。定量ＰＣＲに適した検出装置として、ｃｏｂａｓ（登録商標）、及びＬｉｇｈｔ Ｃｙｃｌｅｒ（登録商標）システム（Ｒｏｃｈｅ）、ＰＲＩＳＭ７０００及び７３００リアルタイムＰＣＲシステム（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）などが挙げられる。

たんぱく質は、ビーズに結合した標的結合部分との相互作用を妨害することによって溶出することができる。高温を用いてもよく、又はｐＨ若しくは塩濃度を変えることによって、温度を上昇させてもよい。ストレプトアビジン－ビオチン相互作用について、ホルムアミド溶液を用いてもよい。

たんぱく質は、典型的には免役アッセイ又は活性アッセイを用いて検出する。免役アッセイとして、様々な種類のＥＬＩＳＡ、ウェスタンブロット法、ＦＡＣＳ、又は標識抗体を用いるその他の検出（例えば、Ｒｉｃｈ、Ｔｈｅ Ｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ Ｈａｎｄｂｏｏｋ（Ｅｌｓｅｖｉｅｒ ４^th ｅｄ．２０１３）を参照されたい）が挙げられる。当業者は、標的たんぱく質（例えば、キナーゼ標的のリン酸活性）に依存する適切な活性アッセイを検出する方法を理解するであろう。

ＩＶ．実施例
大量の液体（例えば、４ｍｌ以上）から核酸を精製する方法は、０．５～２ｍｌの範囲の試料量を収容することができる、典型的な自動化プラットフォームに提供される。このアプローチは図１に示す通り、ＭＧＰ上の核酸の補足の連続する操作のためである。

実施例１
精製された株化細胞ＤＮＡ及び線状化プラスミドの既知の量をＰＢＳにスパイクし、回収率（収量）をｑＰＣＲによって測定した。４ｍｌの試料を、適切な大きさの管中において４．５ｍｌのＭａｇＮＡＰｕｒｅ ９６溶解緩衝液（Ｒｏｃｈｅ）及びプロテイナーゼＫで溶解した。ライセートをボルテックスして混合し、その後機器１又は機器２のいずれかの機器デッキへ乗せた。溶解した試料のアリコートをＭＧＰへの自動化核酸補足のためにプロセスウェルへ加えた。ＭＧＰを初期ステップに加え、ピペット操作によって試料と混合した。ＭＧＰを、プロセスウェルの側面へ取り付けた磁石を使用して補足し、液状可溶化物を吸引し、核酸結合ＭＧＰのみをプロセスウェル内に残した。同一の試料の次のアリコートを同一のプロセスウェルへ加え、ＭＧＰと混合した。混合は、ウェルの底にてピペット操作することによって磁化されたＭＧＰの塊を破壊することを含む。この時点で、ビーズを液体体積の底半分に懸濁した。ビーズ懸濁液をプロセスウェルの底からピペット操作して上部へ分注し、ＭＧＰを液体中へ流した。この処理を繰り返して、ＭＧＰを第２アリコート中の核酸へ確実に曝露させた。ＭＧＰ補足及び吸引ステップを第１の操作と同様に繰り返し、試料の次のアリコートを同一のプロセスウェルに加え、ＭＧＰなどと混合した。全試料量８．５ｍｌを、同一のＭＧＰを用いて同一のプロセスウェル中で処理した。

ベースラインプロトコル１（ビーズ破壊を欠くが、同一の吸引及び分配を含む）を用いる結合／ビーズ補足の使用は、ゲノムＤＮＡ及び線状化プラスミドは機器２（各々８１．７％及び８５．２％）における結合／ビーズ補足と比較して、機器１（各々７８．６％及び７９．８％）において合理的な効率で補足されたということを示した。

結果は、図１に示す通り、上述の修正された方法（プロトコル２）を用いて比較した。プロトコル２（機械的再懸濁及び磁化ＭＧＰの混合を含む）は、ベータグロビンの回収率において１０．７％増加させ、ｐＥＦ０５６の回収率において２２．２％増加させた。全ての連続する操作をこの修正プロトコル２に使用した。結果を表１に示す。

実施例２
ビーズ破壊方法を図１の通りに繰り返した。この実施例において、既知の量の標的ＤＮＡ断片を血液中にスパイクし、回収率（収量）をｑＰＣＲによって測定した。８ｍｌの血漿を使用した。ビーズに適用される４つのアリコート（４回の核酸結合全てに渡って再使用された）が必要とされた。加えて、連続した結合の後にビーズから核酸を取り除くために使用した溶出温度は、大幅に低下した。これは、標的として使用される小さな断片長と潜在的に合わせて、表１に示した収率よりも低い収率をもたらした。

ビーズが連続した操作において標的核酸を結合するのに有効でなかった場合、予想される最大収率は２５％であり、すなわち、４回の操作のうち初回のみが標的核酸を産出し得る。しかしながら、表２に示すように、優位な標的核酸は連続した操作にて結合し、ｑＰＣＲで回収された。

前述の発明は明瞭化及び理解の目的のためある程度詳細に記載されているが、形態及び詳細において種々の変更がなされ得ることは、本開示を読むことで当業者にも明白となるであろう。例えば、上述の全ての組成物及び技術は、様々な組合せで使用することができる。

Claims (16)

1. 液体試料中の核酸を捕捉する自動化方法であって、以下：
   （ａ）前記液体試料からの核酸を磁性ガラス粒子（ＭＧＰ）と非共有結合させる条件下において、容器中の前記液体試料の第１アリコートを前記ＭＧＰと接触させ、ここで前記ＭＧＰは非多孔性であり、ガラス中に少なくとも１つの強磁性磁気コアを含み；
   （ｂ）前記ＭＧＰへ磁場を印加して、ＭＧＰの凝集塊を形成させ；
   （ｃ）前記ＭＧＰの凝集塊から未結合の液体試料を取り除き；
   （ｄ）前記液体試料の第２アリコートを前記ＭＧＰ凝集塊と接触させ；
   （ｅ）前記液体試料の前記第２アリコートの底半分において、前記容器の底においてピペッティングを行って、ＭＧＰの凝集塊を壊すことにより、前記ＭＧＰを再懸濁し；
   （ｆ）前記第２アリコートの底半分から前記容器内で、前記第２アリコートの上部へ前記ＭＧＰをピペッティングし、それにより第２アリコート内で前記ＭＧＰを分布させ；
   （ｇ）磁場を前記ＭＧＰへ印加してMGPの凝集塊を形成し；そして、
   （ｈ）前記ＭＧＰの凝集塊から未結合の液体試料を取り除き
   を含む、前記方法。
2. 少なくとも１つの液体試料のさらなるアリコートに対してステップ（ｄ）～ステップ（ｈ）を繰り返す工程をさらに含む、請求項１に記載の方法。
3. 前記ＭＧＰが０．５～１５μｍの平均直径を有する、請求項１又は２に記載の方法。
4. 前記ガラスが少なくとも１つの金属酸化物を含む、請求項１～３のいずれか一項に記載の方法。
5. 前記少なくとも１つの金属酸化物が、ＳｉＯ₂、Ｂ₂Ｏ₃、Ａｌ₂Ｏ₃、Ｋ₂Ｏ、ＣａＯ、及びＺｎＯから選択される、請求項４に記載の方法。
6. 前記液体試料が、血液、血漿、血清、尿、又はそのライセートである、請求項１～５のいずれか一項に記載の方法。
7. 前記液体試料が少なくとも２ｍｌの量である、請求項１～６のいずれか一項に記載の方法。
8. 前記液体試料が２ｍｌ～１００ｍｌの量である、請求項７に記載の方法。
9. 前記容器が０．５ｍｌ～２ｍｌの量を保持する、請求項１～８のいずれか一項に記載の方法。
10. 前記ＭＧＰから前記核酸を溶出させること及び分離させることを更に含む、請求項１～９のいずれか一項に記載の方法。
11. ステップ（ｅ）が、前記液体試料中の前記ＭＧＰをピペット操作することを含む、請求項１～１０のいずれか一項に記載の方法。
12. 前記核酸がＲＮＡである、請求項１～１１のいずれか一項に記載の方法。
13. 前記核酸がＤＮＡである請求項１～１１のいずれか一項に記載の方法。
14. 前記容器がマルチウェルプレート中のウェル又は管である、請求項１～１３のいずれか一項に記載の方法。
15. ステップ（ｃ）が、前記ＭＧＰから未結合の液体試料を取り除くこと、前記ＭＧＰを洗浄すること、及び前記ＭＧＰから未結合の材料を取り除くことを含む、請求項１～１４のいずれか一項に記載の方法。
16. ステップ（ｈ）が、前記ＭＧＰから未結合の液体試料を取り除くこと、前記ＭＧＰを洗浄すること、及び前記ＭＧＰから未結合の材料を取り除くことを含む、請求項１～１５のいずれか一項に記載の方法。

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