JP7021851B2 - in vitroで成長させた感染性Plasmodiumスポロゾイト - Google Patents
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Description
この出願は、2014年5月2日に出願された米国仮出願第61/987,834号および2014年6月25日に出願された米国仮出願第62/016,981号(各々の内容は、それらの全体が参考として本明細書に援用される)に対する優先権を主張する。
「いずれかの感染性疾患を真に克服したことがある唯一のツール:有効で…手頃なワクチンが、依然として必要とされている…そこで、世界的なマラリア共同体は、あまりにも現状に甘んじていた…GlaxoSmithKlineの…RTS,SプラスアジュバントAS01は、中程度かつ期限付きの有効性を有する第一世代の前赤内期(pre-erythrocyte-stage)ワクチンである…我々は、次世代…ワクチンをさらに20年間待つ余裕がない…。」
- 匿名、The Lancet、2010年4月24日
現在、上述のワクチンおよび試薬に使用される寄生生物Pf SPZ全体は、無菌的Anopheles蚊を飼育し、これに無菌的Pf生殖母細胞を感染させ、Pf寄生生物を、蚊の中でin vivoでスポロゴニーを経てスポロゾイト期へと進行させ、続いて蚊から唾液腺を手作業で解剖し、無菌的スポロゾイトを単離および精製することにより得られた(米国特許第7,229,627号;米国特許第8,367,810号)[17]。この製造アプローチは、これらの産物の全臨床治験における使用のために十分な量の生きた無菌的精製Pf SPZを産生することができるが、この方法論は、労働集約的であり、昆虫飼育管理および寄生生物解剖のために相当な資源を必要とする。特に、蚊の唾液腺からの解剖は、ヒト宿主域のPf SPZおよび他のPlasmodium種SPZの産生における技術的で時間のかかるステップである。
Plasmodium寄生生物発達の蚊宿主期を図1に示す。in vitroでPlasmodium生活環の無性部分(脊椎動物宿主期)を樹立するための努力は成功したが[18]、有性(蚊宿主期)およびスポロゴニー部分でこれを達成するための相当な努力が為されたものの、ヒト宿主域の臨床的に関連した感染性Plasmodiumスポロゾイト、特に、Pf SPZを産生するためのこのような努力は不成功であった。P.gallinaceum(鳥類宿主域)およびPfオーキネートのin vitro変態は、少数のオーシストおよびSPZをもたらしたが、これらのスポロゾイトの感染性は実証されなかった[19~20]。P.berghei(齧歯類宿主域)のin vitro変態は、オーシストおよびSPZを産生したが、SPZは、蚊由来のSPZよりもはるかに低い感染性であった[21]。
例えば、本発明は以下の項目を提供する。
(項目1)
生殖母細胞期からスポロゾイト期までのスポロゴニーが蚊に対して外側にある、ヒト宿主域のin vitro飼育された感染性Plasmodiumスポロゾイト。
(項目2)
いかなる付随する蚊材料もない、項目1に記載のin vitro飼育された感染性Plasmodiumスポロゾイト。
(項目3)
蚊において飼育されたヒト宿主域のPlasmodiumスポロゾイトの少なくとも70%、80%または90%のヒト肝細胞感染性である、項目1または2に記載のin vitro飼育された感染性Plasmodiumスポロゾイト。
(項目4)
無菌的である、項目1~3のいずれかに記載のin vitro飼育されたPlasmodiumスポロゾイト。
(項目5)
薬学的使用に適する、項目4に記載のin vitro飼育されたPlasmodiumスポロゾイト。
(項目6)
前記Plasmodiumスポロゾイトの種が、P.falciparumである、項目1~5のいずれかに記載のin vitro飼育されたPlasmodiumスポロゾイト。
(項目7)
ヒト宿主域のin vitro飼育されたPlasmodium寄生生物の培養物であって、前記寄生生物が、in vitroでスポロゴニー発達を起こした培養物。
(項目8)
前記寄生生物が、発達のスポロゾイト期に達した、項目7に記載の培養物。
(項目9)
前記スポロゾイト期寄生生物が、蚊において飼育された同じ種のヒト宿主域Plasmodiumスポロゾイトの少なくとも70%、80%または90%のヒト肝細胞感染性である、項目8に記載の培養物。
(項目10)
無菌的である、項目7~9のいずれかに記載の培養物。
(項目11)
前記スポロゾイト期寄生生物が、薬学的使用に適する、項目10に記載の培養物。
(項目12)
ヒト宿主域の前記Plasmodiumの種が、P.falciparumである、項目7~11のいずれかに記載の培養物。
(項目13)
等しい数のステージV生殖母細胞から蚊において発達した同じPlasmodium種のオーシストと比較して、少なくとも10~20、10~30、10~39または10~40倍多いオーシストが、in vitroで発達する、項目7~12のいずれかに記載の培養物。
(項目14)
ヒト宿主域の感染性Plasmodiumスポロゾイトの培養物であって、いかなる付随する蚊材料もない培養物。
(項目15)
前記Plasmodiumスポロゾイトが、蚊において飼育された同じ種のヒト宿主域Plasmodiumスポロゾイトの少なくとも70%、80%または90%のヒト肝細胞感染性である、項目14に記載の培養物。
(項目16)
前記Plasmodiumスポロゾイトが、無菌的である、項目14または15に記載の培養物。
(項目17)
前記Plasmodiumスポロゾイトが、薬学的使用に適する、項目16に記載の培養物。
(項目18)
前記Plasmodiumスポロゾイトの種が、P.falciparumである、項目14~17のいずれかに記載の培養物。
(項目19)
ヒト宿主域のPlasmodiumスポロゾイトを前記スポロゾイトのスポロゴニー発達の間にin vitroで培養する方法であって、
a.赤血球細胞の存在下で、鞭毛放出培養培地においてヒト宿主域Plasmodium生殖母細胞を培養するステップと、
b.レクチンにより前記赤血球細胞を凝集させるステップと、
c.接合子、配偶子、生殖母細胞および凝集した赤血球細胞を含む混合物を収集するステップと、
d.マトリックスを含む担体上で、オーキネート培養培地において前記混合物を培養するステップであって、オーキネート期寄生生物が、前記マトリックスに浸透するステップと、
e.前記オーキネート培地をオーシスト培地に交換するステップと、
f.これにより産生されたPlasmodiumスポロゾイト期寄生生物を回収するステップと
を含む、方法。
(項目20)
前記Plasmodiumスポロゾイトの種が、P.falciparumである、項目19に記載の方法。
(項目21)
蚊における同じ種の等しい数のヒトPlasmodium生殖母細胞からのオーシスト産生と比べて、ヒト宿主域Plasmodiumオーシストの産生を増加させるための方法であって、
a.赤血球細胞の存在下で、鞭毛放出培養培地においてヒト宿主域Plasmodium生殖母細胞を培養するステップと、
b.レクチンにより前記赤血球細胞を凝集させるステップと、
c.接合子、配偶子、生殖母細胞および凝集した赤血球細胞を含む混合物を収集するステップと、
d.マトリックスを含む担体上で、オーキネート培地においてステップcの前記混合物を培養するステップであって、前記寄生生物が、オーキネートへと分化し、前記オーキネートが、前記マトリックスに進入し、オーシスト期へと分化するステップと、
e.前記オーキネート培地をオーシスト培養培地と置き換えるステップと、
f.ヒト宿主域のオーシスト期Plasmodium寄生生物を定量化するステップと
を含み、
g.等しい数のヒト宿主域Plasmodium生殖母細胞から、蚊において発達した同じ種のオーシストと比較して、in vitroで発達したヒト宿主域のより多くのPlasmodiumオーシストを産生する、方法。
(項目22)
前記Plasmodiumオーシストの種が、P.falciparumである、項目21に記載の方法。
(項目23)
項目1~6のいずれかに記載のin vitro飼育されたPlasmodiumスポロゾイトを含むワクチン組成物。
(項目24)
Plasmodium特異的抗原に対する被験体における免疫応答を誘導する方法であって、項目1~6のいずれかに記載のin vitro飼育されたPlasmodiumスポロゾイトまたは項目23に記載のワクチンを前記被験体に投与するステップを含む、方法。
本明細書において、寄生生物発達に関する「in vitro」とは、インタクトな宿主生物(宿主生物全体とも称される)に依存せず、かつそれに対して外側を意味する。例えば、ヒト宿主域のPlasmodium寄生生物のin vitro発達は、生きた動物宿主、例えば、蚊に対して外側かつそれに依存しない発達ステージを経て進む寄生生物の培養を含む。
in vitro飼育された生きた感染性スポロゾイト、特に、Plasmodiumスポロゾイト-弱毒化されたスポロゾイトおよび病原性スポロゾイトの組成物が開示されている。ある特定の実施形態では、本願は、生殖母細胞期からスポロゾイト期までのスポロゴニーが蚊に対して外側にある、ヒト宿主域のin vitro飼育されたPlasmodiumスポロゾイトの培養物を対象とする。一部の実施形態では、in vitro飼育された感染性Plasmodiumスポロゾイトは、いかなる付随する蚊材料もない。ある特定の実施形態では、生殖母細胞期からスポロゾイト期までのスポロゴニーは、蚊に対して外側で発生した。
a.ECLコーティングされたLab-Tekスライドの細胞培養および播種。8ウェルPermanox Lab-Tekチャンバースライドを、ECL細胞付着マトリックスで1~2時間、37±2℃でコーティングする。HC-04(1F9)細胞を完全DMEM/F-12培地(CM)で希釈して、ウェル当たり0.3mLにおける4×104の生存可能な細胞で播種する。洗浄し、24±4時間、37±2b℃および5±2%CO2でインキュベートする;
b.感染およびウェル当たりの添加したSPZの数の計算:in vitro産生されたPfスポロゾイトを2分間、13,200rpm(相対遠心力16,100)、22±2℃で、固定角ローターを使用して遠心分離する。上清を廃棄し、ペレットをCMに再懸濁する。Lab Tekスライドの各ウェルから培地を吸引し廃棄する。50μLのin vitro SPZ懸濁液/ウェルを3連で添加する。感染スポロゾイト懸濁液をCMにおいて1:10希釈し、セロメーターおよび位相差顕微鏡を使用して、スポロゾイトの数を計数し、ウェル当たりの添加したSPZの数を計算する。チャンバースライドを37±2℃および5±2%CO2で3時間±10分間インキュベートする。対照ウェルをPf SPZで汚染しないように慎重に、1000μLピペットチップを使用して、各ウェルからスポロゾイトを含有する過剰な培養培地を穏やかに吸引することにより、単層を0.3mL DMEM/F-12完全培地で3回洗浄する。最終洗浄後に、各ウェルに0.3mLのDMEM/F-12完全培地を添加する;
c.培養物の維持:培養培地を毎日交換して、肝臓期の成功裏の発達および培養物の維持を確実にする。感染6日後にチャンバースライド培養物を氷冷メタノールで固定する。4±2℃で貯蔵する;
d.間接免疫蛍光アッセイ(IFA)のための染色:スライドからPBSを廃棄し、続いて各ウェルに2~3滴のイメージiT-FXシグナルエンハンサーを添加し、37±2℃で30±3分間インキュベートする。イメージエンハンサー溶液を廃棄し、培養物をPBSで3回洗浄する。100μLの希釈された抗PfMSP-1モノクローナルマウス抗体を3連のウェルに添加し、37±2℃で60~70分間インキュベートする。インキュベーション期間の終わりに、抗体溶液を廃棄し、PBSで洗浄する。Alexa Fluor 488抗マウスIgGを、0.02%エバンスブルー入りのPBSにおいて1:200希釈する。100μLの希釈されたAlexa 488抗マウスIgGを3連のウェルに添加する。スライドを37±2℃で60~70分間インキュベートする。DAPI入りのVectashieldマウント用媒体を使用して、カバーガラスをマウントし、観察時まで光を避けて2~8℃で貯蔵する;および
e.Pf肝臓期の評価および数え上げ:400×倍率の落射蛍光顕微鏡を使用して、抗体反応性を示すPf肝臓期/ウェルの数を評価および記録する。全3個のウェルにおける肝臓期寄生生物の数を計数し、平均を報告する。
ある特定の実施形態では、本願は、ヒト宿主域のin vitro飼育されたPlasmodium寄生生物の培養物を対象とし、前記寄生生物は、in vitroでスポロゴニー発達を起こしているか、またはそれを起こした。
Plasmodium寄生生物を培養するおよび/またはin vitro飼育された生きた感染性Plasmodiumスポロゾイトの培養物を作製する方法、ならびにin vitro飼育された弱毒化Plasmodiumスポロゾイトを培養および/またはその組成物を作製する方法が開示されている。
a.赤血球細胞の存在下で、鞭毛放出培養培地においてヒト宿主域Plasmodium生殖母細胞を培養するステップと、
b.レクチンを使用して赤血球細胞を凝集させるステップと、
c.接合子、配偶子、生殖母細胞および凝集細胞を含む混合物を収集するステップと(一部の実施形態では、これは、遠心分離およびペレットの収集によって達成される)、
d.マトリックスを含む担体上でオーキネート培地において前記混合物を培養するステップであって、前記寄生生物が、オーキネートへと分化し、前記オーキネートが、前記マトリックスに進入し、オーシスト期へと分化するステップと、
e.前記オーキネート培地をオーシスト培養培地と置き換えるステップと、
f.これにより産生されたPlasmodiumスポロゾイト期寄生生物を回収するステップと
を含む方法を対象とする。
ある特定の実施形態では、本願は、同じ種の、等しい数のヒト宿主域Plasmodium生殖母細胞から蚊において発達したオーシストと比較して、Plasmodiumオーシストの産生を増加させるためのin vitro方法であって、
a.赤血球細胞の存在下で、鞭毛放出培養培地においてヒト宿主域Plasmodium生殖母細胞を培養するステップと、
b.レクチンを使用して前記赤血球細胞を凝集させるステップと、
c.接合子、配偶子、生殖母細胞および凝集細胞を含む混合物を収集するステップと(一部の実施形態では、これは、遠心分離およびペレットの収集により達成される)、
d.マトリックスを含む担体上でオーキネート培地において、前記混合物を培養するステップであって、前記寄生生物が、オーキネートに分化し、前記オーキネートが、前記マトリックスに進入し、オーシスト期へと分化するステップと、
e.前記オーキネート培地をオーシスト培養培地と置き換えるステップと、
f.オーシスト培地を、S2細胞を含有するオーシスト培地(S2細胞は、培地交換の際の細胞損失を補充するために添加される)に40~80(好ましくは、48~72時間)毎に置き換えることにより、寄生生物培養を続けるステップと、
g.ヒト宿主域のオーシスト期Plasmodium寄生生物を定量化するステップと
を含み、
h.等しい数のヒト宿主域Plasmodium生殖母細胞から蚊において発達した同じ種のオーシストと比較して、in vitroで発達したヒト宿主域のより多くのPlasmodiumオーシストを産生する方法を対象とする。
マラリアを予防するためのワクチンにおける免疫原として、in vitro飼育されたPlasmodiumスポロゾイトおよび弱毒化されたin vitro飼育されたPlasmodiumスポロゾイト(例えば:両者共に参照により本明細書に組み込まれる、U.S.7,229,627;USSN61/783,326を参照)を使用する方法が開示されている。抗マラリア薬およびワクチンの有効性の評価に有用な、また、抗マラリア剤、特に、Plasmodium感染の無性赤血球期を標的とするクロロキン等の抗マラリア薬と併せて、防御免疫を付与するためのワクチンレジメンにおいて有用な、in vitro飼育された病原性寄生生物を使用する方法も開示されている。
in vitroで多数のP.falciparumオーキネートを再現性よく産生および精製するための最適化方法
異なる齢数の、高いおよび低い生殖母細胞密度での生殖母細胞培養物からのオーキネート産生を評価した。生殖母細胞誘導14~22日後の(表1)、高および低密度培養物の両方に由来するオーキネートおよび後期レトルトを再現性よく産生した(図2A~図2B)。レトルトは、接合子からオーキネートへのその発達における、寄生生物の中間形態であり、オーキネートおよび後期レトルトは両者共に(図2A~図2B)、蚊においてオーシストへと変態する。誘導18日後の生殖母細胞培養物から寄生生物を採取した。初期レトルト(図2A)が先ず、ほぼ14時間で観察され、オーキネートは、オーキネート培養開始24時後から観察された。光学顕微鏡で検鏡した培養物のギムザ染色したスメアは、培養物における丸い大配偶子および接合子、ならびに三日月形の生殖母細胞およびオーキネートの混合物を示した。顕著な核の存在によって、接合子を大配偶子から区別した。顕著な核の存在および周囲の赤血球膜の欠如によって、オーキネートを生殖母細胞から区別した。2種の他のアプローチを使用して、変換および精製率の推定をもたらした。先ず、寄生生物の異なるステージで発現される分子に対するモノクローナル抗体(mAb)をスクリーニングした:Pfs48/45は、成熟大生殖母細胞および大配偶子において、Pfs230は、大配偶子および接合子において、Pfs25は、配偶子およびオーキネートにおいて、PfCelTOSは、オーキネートおよびPfSPZにおいて発現された(データ図示せず)。Pfs230は、生殖母細胞および大配偶子に局在化した一方、Pfs48/45は、配偶子およびレトルトに局在化した。Pfs25は、生殖母細胞に変動して局在化したが、レトルトおよびオーキネートに強く発現された。Pfs25(黒矢印は、緑色染色を指す)および赤血球抗原、グリコホリンA(白矢印は、赤色染色を指す)(図3A~図3B)に対する抗体で培養寄生生物を標識することにより、それぞれ赤血球膜の存在または非存在に基づき、生殖母細胞をオーキネートから区別した。
in vitroにおけるオーキネートからのP.falciparumスポロゾイトの産生
第1のステップは、オーシストを効率的に産生することであった。簡潔に説明すると、in vitro培養物からステージV生殖母細胞を鞭毛放出培地(FBS、0.1%グルコース、0.1%重炭酸ナトリウムおよび0.022%キサンツレン酸)へと移し、インキュベーション後に、接合子を改変オーキネート培地(20%FBS、RPMI培地、0.25%トレハロース、0.25%デキストロース、0.04%重炭酸ナトリウム、10ユニット/mLペニシリンおよび10μg/mLストレプトマイシン)へと移し、改変マトリゲルコーティングされた8ウェルスライド上に重層した。8ウェルスライドをコーティングするために、マトリゲルをRPMI培地で希釈し、8ウェルスライドに注いだ。このようなスライドを37℃で2時間インキュベートし、過剰な培地を除去した。接合子を重層する前に、マトリゲルの上にDrosophila Schneider S2細胞を播種することにより、マトリゲルコーティングされたスライドをさらに改変した。分化したオーキネートは、マトリゲルに侵入した。インキュベーション24時間後に、オーキネートからオーシスト培地(SchneiderのDrosophila培地、20%FBS、0.04%重炭酸ナトリウム、0.25%トレハロース、50μg/mLヒポキサンチン、0.1M HEPES、必須アミノ酸(1×、GIBCO)、0.04μg/mLパラ-アミノ安息香酸(PABA)、10ユニット/mLペニシリンおよび10μg/mLストレプトマイシン、1.5%リポタンパク質、0.1%コレステロールおよびビタミン(1×、GIBCO))への交換の際に、マトリゲルに侵入しなかった未分化接合子およびオーキネートを洗い流した。オーキネートおよびオーシスト培地の両方において、S2細胞を添加した(図4)。抗Pfs25および抗Pf CSP mAbを使用したIFAによって検出された3日目(図4、上パネル)および8日目(図4、下パネル)のオーシストを示す。8日間培養物をIFAのために透過処理した。8日目のオーシストにおける点状染色は、出芽PfSPZを示唆した。中央パネル(図4)において、矢印は、培養において発達する7~8日目のオーシストを示す。初期実験後に、コーティングに使用されるマトリゲルの濃度および各ウェルに播種される接合子の数等、培養条件を改変して、ステージV生殖母細胞から8日目のオーシストへの発達の変態効率を有意に増加させた。この改変in vitro培養プロトコールを使用して、ステージV生殖母細胞から8日目のオーシストへの2.4~12.5%(平均8.3%)変態が、一貫して達成された(表2)。これは、in vitro培養プロトコールの改変前の初期に記録された0.13%の大きな改善であった。蚊におけるステージV生殖母細胞からオーシストへの変態効率は、Sanaria(Liら、発表準備中)で行われた74回の独立的膜供給アッセイにおいて0.22%であった。この変態効率は、文献[22、23]において報告されたものに匹敵した。in vitroでの8.3%の変態効率は、蚊において観察されるものよりも39倍高かった(表2、3)。in vitroで(図4、図5A、図8A~図8C)および蚊において(図5B)発達するオーシストのサイズおよび構造は同様であった。図5Aは、抗(ant-)PfCSP mAbで染色されたin vitro培養された7日目のオーシストのIFAを示し、マーキュロクロム染色された蚊中腸の7日目のオーシストを示す(図5B)。
in vitro飼育されたP.falciparumスポロゾイトおよびAnopheles stephensi蚊において個体発生的に発達したP.falciparumスポロゾイトがそれぞれ、同様の効率でヒト肝細胞細胞株(HC-04)内に侵入および発達することの実証。
効力の評価に慣例的に使用される6日間肝細胞アッセイにおいて、in vitro飼育されたPf SPZをその感染性に関して検査した。このアッセイは、典型的には、凍結保存前後のPf SPZにより行われる。新鮮および凍結保存されたPf SPZは、形態学的に同一の6日肝臓期寄生生物を産生するが、凍結保存による効力の5~25%損失がある[5]。in vitro飼育されたPf SPZは、新鮮蚊由来PfSPZとより類似しており、したがって、製造キャンペーンにおいて作製された新鮮PfSPZ由来の読み出し情報と比較を行った。7連続産生キャンペーンにおいて、Pf MSP-1を発現する20.7~32.7の成熟した6日目の寄生生物は、50,000の蚊で産生された新鮮Pf SPZから発達した(表4)。in vitro飼育されたPfSPZを、HC-04細胞(in vivoで産生されたPf SPZの感染を支持することが示されたヒト肝細胞細胞株)を蒔いた3ウェルに接種し[24、25]、6日間インキュベートした(図9A上パネル、表4)。図9A~図9Bは、in vitro飼育されたPf SPZ(図9A上パネル)または蚊で産生された、無菌的、精製、凍結保存されたPf SPZ(図9B下パネル)による感染後の、HC-04細胞における6日肝臓期の共焦点顕微鏡像を示す。4回の独立的6日間肝細胞アッセイにおいて、56,598±7,294 Pf SPZ/ウェルで播種されたin vitro産生されたPf SPZは、28.6±7.0 Pf MSP1を発現する6日目の寄生生物を産生した(表4)。これは、このアッセイにおける新鮮、無菌的、精製されたPf SPZにより観察される25.7±4.1 Pf MSP1発現寄生生物に匹敵し(表4)、凍結保存されたPf SPZによるものよりも僅かに多かった(データ図示せず)。これらのデータは、18日目のin vitro産生されたPf SPZが、15日目のin vitro飼育されたPf SPZよりも感染性であったことも示唆した。in vitroおよびin vivo(蚊)産生されたPf SPZ由来のHC-04細胞において発達した6日目の寄生生物のサイズは、同様であった(図9A~図9B)。顕微鏡写真のための陽性対照として、蚊唾液腺由来の無菌的、精製、凍結保存されたPf SPZをHC-04細胞においてインキュベートし、Pf MSP1発現を評価した(図9B)。これらのデータは、in vitro産生されたPf SPZが、蚊で産生された新鮮Pf SPZと同じほどに肝細胞培養物において感染性であったことを実証した。
Claims (16)
- 生殖母細胞期から成熟かつ運動能力があるスポロゾイト期までのスポロゴニーが蚊の生体外で起こる、ヒト宿主域のin vitro飼育された感染性Plasmodiumスポロゾイトであって、ここで、前記in vitro飼育された感染性Plasmodiumスポロゾイトは、蚊において飼育されたヒト宿主域のPlasmodiumスポロゾイトの少なくとも70%のヒト肝細胞感染性であり、前記in vitro飼育された感染性Plasmodiumスポロゾイトが、以下:
a.マトリックスの非存在下かつ赤血球細胞の存在下で、鞭毛放出培養培地においてヒト宿主域PlasmodiumステージV生殖母細胞を接合子期まで培養するステップと、
b.接合子、配偶子および生殖母細胞を含む混合物を収集するステップと、
c.マトリックスを含む担体上で、オーキネート培養培地において前記混合物を培養するステップであって、オーキネート期寄生生物が、前記マトリックスに浸透するステップと、
d.前記オーキネート培養培地をオーシスト培地に交換するステップと、
e.aからdのステップにより産生された前記in vitro飼育された感染性Plasmodiumスポロゾイト期寄生生物を回収するステップと
を含む方法により産生される、in vitro飼育された感染性Plasmodiumスポロゾイト。 - 前記in vitro飼育されたPlasmodiumスポロゾイトが無菌的である、請求項1に記載のin vitro飼育された感染性Plasmodiumスポロゾイト。
- 前記in vitro飼育されたPlasmodiumスポロゾイトが薬学的使用に適する、請求項2に記載のin vitro飼育された感染性Plasmodiumスポロゾイト。
- 前記Plasmodiumスポロゾイトの種が、P.falciparumである、請求項1~3のいずれか1項に記載のin vitro飼育された感染性Plasmodiumスポロゾイト。
- 請求項1に記載のin vitro飼育された感染性Plasmodiumスポロゾイトを含む培養物。
- 前記スポロゾイトが、発達の成熟スポロゾイト期に達した、請求項5に記載の培養物。
- 無菌的である、請求項5または6に記載の培養物。
- 前記in vitro飼育された感染性スポロゾイトが、薬学的使用に適する、請求項7に記載の培養物。
- ヒト宿主域の前記Plasmodiumの種が、P.falciparumである、請求項5~8のいずれかに記載の培養物。
- 等しい数のステージV生殖母細胞から蚊において発達した同じPlasmodium種のオーシストと比較して、少なくとも10~20倍多いオーシストが、in vitroで発達する、請求項1~9のいずれかに記載の培養物。
- ヒト宿主域のPlasmodiumスポロゾイトをin vitroで産生する方法であって、
a.マトリックスの非存在下かつ赤血球細胞の存在下で、鞭毛放出培養培地においてヒト宿主域PlasmodiumステージV生殖母細胞を接合子期まで培養するステップと、
b.ステップaの培養物から、接合子、配偶子および生殖母細胞を含む混合物を収集するステップと、
c.マトリックスを含む担体上で、オーキネート培養培地において前記混合物を培養するステップであって、オーキネート期寄生生物が、前記マトリックスに浸透するステップと、
d.前記オーキネート培養培地をオーシスト培地に交換するステップと、
e.aからdのステップにより産生されたPlasmodiumスポロゾイト期寄生生物を回収するステップと
を含む、方法。 - 前記Plasmodiumスポロゾイトの種が、P.falciparumである、請求項11に記載の方法。
- 蚊における同じ種の等しい数のヒトPlasmodium生殖母細胞からのオーシスト産生と比べて、ヒト宿主域Plasmodiumオーシストの産生を増加させるための方法であって、
a.マトリックスの非存在下かつ赤血球細胞の存在下で、鞭毛放出培養培地においてヒト宿主域PlasmodiumステージV生殖母細胞を接合子期まで培養するステップと、
b.接合子、配偶子および生殖母細胞を含む混合物を収集するステップと、
c.マトリックスを含む担体上で、オーキネート培地においてステップcの前記混合物を培養するステップであって、前記寄生生物が、オーキネートへと分化し、前記オーキネートが、前記マトリックスに進入し、オーシスト期へと分化するステップと、
d.前記オーキネート培地をオーシスト培養培地と置き換えるステップと、
e.ヒト宿主域のオーシスト期Plasmodium寄生生物を定量化するステップとを含み、
等しい数のヒト宿主域Plasmodium生殖母細胞から、蚊において発達した同じ種のオーシストと比較して、in vitroで発達したヒト宿主域のより多くのPlasmodiumオーシストを産生する、方法。 - 前記Plasmodiumオーシストの種が、P.falciparumである、請求項13に記載の方法。
- 請求項1~4のいずれかに記載のin vitro飼育された感染性Plasmodiumスポロゾイトを含むワクチン組成物。
- Plasmodium特異的抗原に対する被験体における免疫応答を誘導するための組成物であって、請求項1~4のいずれかに記載のin vitro飼育された感染性Plasmodiumスポロゾイトまたは請求項15に記載のワクチン組成物を含む、組成物。
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