JP6808995B2

JP6808995B2 - Ｆｃ結合性タンパク質の定量方法

Info

Publication number: JP6808995B2
Application number: JP2016122476A
Authority: JP
Inventors: 直紀山中; 陽介寺尾; 大江　正剛; 正剛大江
Original assignee: Tosoh Corp
Current assignee: Tosoh Corp
Priority date: 2016-06-21
Filing date: 2016-06-21
Publication date: 2021-01-06
Anticipated expiration: 2036-06-21
Also published as: JP2017227490A

Description

本発明はＦｃ結合性タンパク質の定量方法に関する。

Ｆｃ結合性タンパク質（Ｆｃレセプター）は、免疫グロブリン分子のＦｃ領域に結合する一群の分子である。Ｆｃレセプターはその結合する免疫グロブリンの種類によって分類されており、ＩｇＧのＦｃ領域に結合するＦｃγレセプター、ＩｇＥのＦｃ領域に結合するＦｃεレセプター、ＩｇＡのＦｃ領域に結合するＦｃαレセプター等がある（非特許文献１）。また、各レセプターは、その構造の違いによりさらに細かく分類され、Ｆｃγレセプターの場合、ＦｃγＲＩ、ＦｃγＲＩＩ、ＦｃγＲＩＩＩの存在が報告されている（非特許文献１）。

Ｆｃγレセプターの一つであるＦｃγＲＩＩＩａはナチュラルキラー細胞（ＮＫ細胞）やマクロファージなどの細胞表面に存在しており、ヒト免疫機構の中でも重要なＡＤＣＣ（抗体依存性細胞傷害）活性に関与している重要なレセプターである。このＦｃγＲＩＩＩａとヒトＩｇＧとの親和性は結合の強さを示す結合定数（Ｋ_Ａ）が１０^７Ｍ^−１以下であることが報告されている（非特許文献２）。ヒトＦｃγＲＩＩＩａのアミノ酸配列（配列番号１）はＵｎｉＰｒｏｔ（Ａｃｃｅｓｓｉｏｎｎｕｍｂｅｒ：Ｐ０８６３７）などの公的データベースに公表されている。また、ＦｃγＲＩＩＩａの構造上の機能ドメイン、細胞膜を貫通するためのシグナルペプチド配列および細胞膜貫通領域の位置についても同様に公表されている。図１にヒトＦｃγＲＩＩＩａの構造略図を示す。尚、図１中の番号はアミノ酸番号を示しており、その番号は配列番号１に記載のアミノ酸番号に対応する。すなわち、配列番号１中の１番目のメチオニン（Ｍｅｔ）から１６番目のアラニン（Ａｌａ）までがシグナル配列（Ｓ）、１７番目のグリシン（Ｇｌｙ）から２０８番目のグルタミン（Ｇｌｎ）までが細胞外領域（ＥＣ）、２０９番目のバリン（Ｖａｌ）から２２９番目のバリン（Ｖａｌ）までが細胞膜貫通領域（ＴＭ）および２３０番目のリジン（Ｌｙｓ）から２５４番目のリジン（Ｌｙｓ）までが細胞内領域（Ｃ）とされている。尚、ＦｃγＲＩＩＩａはＩｇＧ１からＩｇＧ４まであるヒトＩｇＧサブクラスのうち、特にＩｇＧ１とＩｇＧ３に対し強く結合する一方、ＩｇＧ２とＩｇＧ４に対する結合は弱いことが知られている。

近年になり見出されたＦｃ結合性タンパク質の予想外の免疫抑制的な生物学的特性により、自己免疫疾患または自己免疫症候群、移植物の拒絶および悪性リンパ増殖の領域において医薬として注目を浴びつつある（非特許文献３）。このようなＦｃ結合性タンパク質の産業利用への関心が高まっている中、その製造工程において抽出液や粗精製液中に含まれるＦｃ結合性タンパク質は、酵素結合免疫吸着法（ＥＬＩＳＡ法）により定量可能であった。ところが、ＥＬＩＳＡ法は操作が煩雑なことに加え、製造工程管理で要求される感度より過剰に高感度であることから、高倍率に希釈して測定しなければならず、測定誤差が大きいという問題があった。かかる問題の解決方法の一つとしてヒトＦｃγＲＩにおいて液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）を用いた方法が考えられ、陽イオン交換クロマトグラフィーによるアルギニンを利用した精製方法および定量方法が報告されている（特許文献１）。しかしながら、Ｆｃ結合性タンパク質の分子の中にはこれらの方法でＨＰＬＣを行うとその特性（表面電荷）により、ＨＰＬＣカラムに目的分子が結合しない場合や未結合分子（不純物）を溶出前或いは溶出後に十分に洗い出せないなどの問題があった。また、Ｆｃ結合性タンパク質を含む試料の中にはこれらの方法でＨＰＬＣを行なうと溶液中の夾雑物の影響によりＨＰＬＣカラムへの吸着阻害やＦｃ結合性タンパク質の溶出位置付近に不純物が溶出されるなどの問題もあり、これらの解決が求められていた。

特開２０１４−１２５４３７号公報

Ｊ．Ｖ．Ｒａｖｅｔｃｈ等，Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，９，４５７，１９９１Ｊ．Ｇａｌｏｎ等，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，２７，１９２８−１９３２，１９９７ＴｏｓｈｉｙｕｋｉＴａｋａｉ，Ｊｐｎ．Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，２８，３１８，２００５

Ｆｃ結合性タンパク質の定量に関しては特許文献１の開示がある。しかしながら、Ｆｃ結合性タンパク質の中にはその分子特性から前記方法では高効率に定量することができなかった。

そこで本発明の目的は、陽イオン交換クロマトグラフィーを用いてＦｃ結合性タンパク質を簡便かつ高精度に定量する方法を提供することにある。

本願発明者らは、前記課題を解決するため鋭意検討した結果、陽イオン交換クロマトグラフィーにおいて溶出ピークの分離条件を最適化することで前記課題を解決できることを見出し、本発明を完成するに至った。

すなわち本発明は以下の発明を包含する。
[１] 陽イオン交換クロマトグラフィー用担体を充填したカラムに平衡化液を添加してカラムを平衡化させ、前記担体にヒトＦｃ結合性タンパク質を含む試料を添加してＦｃ結合性タンパク質を前記担体に吸着させ、前記担体に吸着した不純物を洗浄・除去し、前記担体に吸着したＦｃ結合性タンパク質を、塩を含む溶出液により溶出させる方法であって、前記塩を含む溶出液の塩化ナトリウム濃度が０．１Ｍであり、その後塩化ナトリウム濃度を０．２Ｍまでのリニアグラジエントで溶出することを特徴とする定量方法。
[２] 前記Ｆｃ結合性タンパク質を含む試料が、Ｆｃ結合性タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターで宿主を形質転換して得た形質転換体の抽出物であることを含む、[１]に記載の定量方法。
[３] 宿主が大腸菌であることを特徴とする、[２]に記載の定量方法。
[４] 前記Ｆｃ結合性タンパク質が、
（ｉ）配列番号１に記載のアミノ酸配列のうち少なくとも１７番目のグリシンから１９２番目のグルタミンまでのアミノ酸を含むタンパク質、または
（ｉｉ）配列番号１に記載のアミノ酸配列のうち少なくとも１７番目のグリシンから１９２番目のグルタミンまでのアミノ酸を含み、かつ前記アミノ酸のうちの一つ以上が他のアミノ酸に置換、挿入または欠失したタンパク質である、
[１]から[３]のいずれかに記載の定量方法。
以下、本発明を詳細に説明する。

本発明においてヒトＦｃ結合性タンパク質とは、ヒトＦｃγＲＩＩＩａの細胞外領域（具体的には天然型ヒトＦｃγＲＩＩＩａの場合、配列番号１に記載のアミノ酸配列のうち１７番目から２０８番目までの領域）を構成するタンパク質のことをいう。ただし必ずしもヒトＦｃγＲＩＩＩａの細胞外領域の全領域でなくてもよく、ヒトＦｃγＲＩＩＩａ細胞外領域を構成するポリペプチドのうち、少なくとも抗体（ＩｇＧ）のＦｃ領域に結合する本来の機能を発現し得る領域のポリペプチドを含んでいればよい。Ｆｃ結合性タンパク質の一例として、
（ｉ）配列番号１に記載のアミノ酸配列のうち少なくとも１７番目のグリシンから１９２番目のグルタミンまでのアミノ酸を含むタンパク質や、
（ｉｉ）配列番号１に記載のアミノ酸配列のうち少なくとも１７番目のグリシンから１９２番目のグルタミンまでのアミノ酸において特定位置におけるアミノ酸置換が生じたタンパク質、
があげられる。

本発明の定量方法において陽イオン交換クロマトグラフィー用担体に添加する、Ｆｃ結合性タンパク質を含むアプライ液を調製するには、ヒト細胞から直接抽出してもよいし、Ｆｃ結合性タンパク質をコードするポリヌクレオチドを適切な宿主に導入して得られた形質転換体の抽出物を用いてもよいが、前記タンパク質を安定的にかつ大量に得られる点で後者が好ましい。

Ｆｃ結合性タンパク質をコードするポリヌクレオチドは、直接ヒト細胞から抽出して得てもよいが、前記ヒト細胞からの抽出物を核酸増幅することで得る方法や、既知のヌクレオチド配列を基に人工的に直接得た方が好ましい。前記ポリヌクレオチドを人工的に合成するには、前記ポリヌクレオチドの全長をＤＮＡ自動合成機などで直接合成してもよいが、化学合成した数十塩基からなるオリゴヌクレオチド群をＰＣＲ法によりアッセンブリーさせることによって完全長の遺伝子を作製する、ＤＮＡＷｏｒｋｓ法（ＮｕｃｌｅｉｃＡｃｉｄＲｅｓ．，３０，ｅ４３，２００２）やＳｙｎｔｈｅｔｉｃＧｅｎｅＤｅｓｉｇｎｅｒ法（ＰｒｏｔｅｉｎＥｘｐｒＰｕｒｉｆ．，４７，４４１−４４５，２００６）を用いると、より効率的な合成が可能である。

Ｆｃ結合性タンパク質をコードするポリヌクレオチドのヌクレオチド配列を、Ｆｃ結合性タンパク質のアミノ酸配列情報から変換して得る場合、アミノ酸配列として変化しない範囲であれば任意のヌクレオチド配列が選択できるが、好ましくは発現させる宿主におけるコドンの使用頻度を考慮の上、変換するのが好ましい。コドンの使用頻度は公的データベース（ＣｏｄｏｎＵｓａｇｅＤａｔａｂａｓｅかずさＤＮＡ研究所ＨＰ参照）を用いることで解析することができる。

本発明においてＦｃ結合性タンパク質は、抗体結合活性を損なわない範囲で任意のオリゴペプチドを付加してもよい。前記任意のオリゴペプチドの例として、６残基程度のヒスチジンからなるＨｉｓタグ配列やｃ−ｍｙｃ抗原配列といった分析や精製を容易にするためのタグ配列、微生物での分泌発現を促すためのシグナルペプチドなどが挙げられる。Ｆｃ結合性タンパク質に前記タグ配列を付加する場合は、Ｎ末端側またはＣ末端側に付加してもよいし、抗体結合活性を失わない範囲であればタンパク質内に挿入してもよい。Ｆｃ結合性タンパク質に前記シグナルペプチドを付加する場合はＮ末端側に付加すればよく、公知のシグナルペプチドの中から発現に用いる宿主に応じて適宜選択して用いればよい。尚、Ｆｃ結合性タンパク質を発現させる宿主として大腸菌を用いる場合は、前記シグナルペプチドとしてｐｅｌＢ、ＤｓｂＡ、ＭａｌＥ、ＴｏｒＴといったペリプラズムにタンパク質を分泌させるシグナルペプチドを挙げることができる（特開２０１１−０９７８９８号）。また、宿主として枯草菌や麹菌を用いる場合は、プロテアーゼやアミラーゼのシグナルペプチドが挙げられる。

本発明においてＦｃ結合性タンパク質をコードするポリヌクレオチド（以下、Ｆｃ結合性タンパク質のポリヌクレオチドとする）を用いて宿主を形質転換する際、Ｆｃ結合性タンパク質のポリヌクレオチドそのものを用いてもよいが、発現ベクター（例えば、原核細胞や真核細胞の形質転換に通常用いるバクテリオファージ、コスミドやプラスミドなど）の適切な位置にポリヌクレオチドを挿入したものを用いるとより好ましい。尚、前記発現ベクターは形質転換する宿主内で安定に存在し複製できるものであれば特に制限はなく、大腸菌を宿主とする場合はｐＥＴプラスミドベクター、ｐＵＣプラスミドベクター、ｐＴｒｃプラスミドベクター、ｐＣＤＦプラスミドベクター、ｐＢＢＲプラスミドベクターが例示できる。また前記適切な位置とは、発現ベクターの複製機能、所望の抗生物質マーカー、伝達性に関わる領域を破壊しない位置を意味する。前記発現ベクターにポリヌクレオチドを挿入する際は、発現に必要なプロモーターといった機能性ポリヌクレオチドに連結される状態で挿入すると好ましい。宿主が大腸菌である場合の前記プロモーターの例として、ｔｒｐプロモーター、ｔａｃプロモーター、ｔｒｃプロモーター、ｌａｃプロモーター、Ｔ７プロモーター、ｒｅｃＡプロモーター、ｌｐｐプロモーター、さらにはλファージのλＰＬプロモーター、λＰＲプロモーターが挙げられる。

前記方法により作製したＦｃ結合性タンパク質のポリヌクレオチドを挿入した発現ベクターで宿主を形質転換するには当業者が通常用いる方法で行えばよい。例えば、宿主として大腸菌を選択する場合にはコンピテントセル法、ヒートショック法、エレクトロポレーション法などにより形質転換すればよい。

形質転換体を培養する方法については特に限定はなく、通常の液体培地やそれを寒天で固めた固体培地を用いればよい。固体培地の形状にも限定はなく、斜面培地であってもよいし平板培地であってもよい。培地の組成としては形質転換体が増殖し、かつＦｃ結合性タンパク質が発現し得るものであればよい。炭素源としては、糖蜜、グルコース、フルクトース、マルトース、ショ糖、デンプン、乳糖、グリセロール、酢酸などが用いられる。窒素原としては酢酸アンモニウム、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、ペプトン、コーンスティープリカー、酵母エキスなどが用いられる。無機塩としてはリン酸一ナトリウム、リン酸二ナトリウム、リン酸一カリウム、リン酸二カリウムなどのリン酸塩、塩化ナトリウムなどが用いられる。金属イオンとしては塩化マグネシウム、硫酸マグネシウム、硫酸鉄（ＩＩ）、硫酸鉄（ＩＩＩ）、塩化鉄（ＩＩ）、塩化鉄（ＩＩＩ）、クエン酸鉄、硫酸アンモニウム鉄、塩化カルシウム・二水和物、硫酸カルシウム、硫酸亜鉛、塩化亜鉛、硫酸銅、塩化銅、硫酸マンガン、塩化マンガンなどが用いられる。ビタミン類としては酵母エキス、ビオチン、ニコチン酸、チアミン、リボフラビン、イノシトール、ピリドキシンなどが用いられる。尚、固体培地を用いる場合には前記の組成の培地に寒天やジェランガムといった固形化剤を加熱溶解させた後に、培養に用いる試験管やシャーレに分注し、さらに目的の温度まで冷却して固形化することで得られる。

形質転換体の培養温度は１０℃から４０℃が好ましい。培養のｐＨは用いる宿主の性質に応じて設定され、大腸菌や枯草菌の場合にはｐＨは６から８が好ましく、酵母や麹菌ではより低いｐＨ４から７が好ましい。また、培養時間は任意に設定できるが、Ｆｃ結合性タンパク質が十分に生産される時間であることが好ましく、通常は数時間から２００時間の間に設定すればよい。尚、宿主が麹菌の場合は小麦麩麹等の固形培養法を行うことも可能である。この場合は小麦麩等を湿潤状態で加熱滅菌した後、Ｆｃ結合性タンパク質を含むプラスミドにて形質転換した菌を植菌し、１０℃から４０℃で培養する。培養中は培養容器を静置しておけばよいが、より好ましくは１日に１回以上、任意のスピードで任意の時間、容器内の麹を撹拌する。これにより、完全に静置した場合より高い生産性が得られる。撹拌の方法は、雑菌の混入が防げる方法であれば特に限定はされない。

Ｆｃ結合性タンパク質のポリヌクレオチドを含むベクターに誘導性のプロモーターを含んでいる場合は、目的タンパク質が良好に発現できるような条件下で誘導すればよい。誘導剤としてはＩＰＴＧ（Ｉｓｏｐｒｏｐｙｌ β−Ｄ−１−ｔｈｉｏｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ）を例示することができる。宿主が大腸菌の場合、培養液の濁度（６００ｎｍにおける吸光度）を測定し、約０．５から１．０となった時に適当量のＩＰＴＧを添加後、引き続き培養することで、Ｆｃ結合性タンパク質の発現を誘導することができる。ＩＰＴＧの添加濃度は０．００５から１．０ｍＭの範囲から適宜選択すればよいが、０．０１から０．５ｍＭ程度が好ましい。ＩＰＴＧ誘導に関する種々の条件は当該技術分野において周知の条件で行えばよい。

得られた形質転換体培養液から抽出物を得るには、遠心分離操作により菌体を集めた後、一般的な細胞抽出方法により抽出物を得ればよい。抽出方法の例として、超音波破砕処理、フレンチプレス処理等の物理的破砕による方法や、リゾチーム等の酵素処理や、界面活性剤による処理方法が挙げられる。

本発明の定量方法はＦｃ結合性タンパク質を含む溶液（アプライ液）を、陽イオン交換クロマトグラフィーを用いて定量することを特徴としている。尚、Ｆｃ結合性タンパク質を含む溶液が形質転換体の抽出物の場合、脱塩操作を行うことが好ましい。脱塩は透析や希釈等、当業者にとって一般的な方法で行えばよい。脱塩の目安として前記抽出液の電気伝導度が７０ｍＳ／ｃｍ以下、好ましくは１０ｍＳ／ｃｍ以下となるまで行えばよい。前記抽出液のｐＨに特に限定はないが、ｐＨ３からｐＨ８の間が好ましく、さらに好ましくはｐＨ５からｐＨ７の間である。尚、脱塩操作およびｐＨ調整操作において、Ｆｃ結合性タンパク質を含む溶液に沈殿物が生じた場合、そのままアプライ液として陽イオン交換クロマトグラフィー用担体に添加してもよいが、遠心分離やろ過などの当業者が通常行う方法により清澄化してから添加した方が好ましい。

本発明の精製方法で用いる、陽イオン交換クロマトグラフィー用担体はタンパク質精製に用いる陽イオン交換能を有した担体であれば特に限定はなく、一例として、ＴＯＹＯＰＥＡＲＬＳＰ−６５０、ＴＳＫｇｅｌＳＰ−５ＰＷ（何れも東ソー製）といったスルホプロピル基を導入した担体、ＴＯＹＯＰＥＡＲＬＣＭ−６５０、ＴＳＫｇｅｌＣＭ−５ＰＷ、ＴＳＫｇｅｌＣＭ−ＳＴＡＴ（何れも東ソー製）といったカルボキシメチル基を導入した担体が挙げられる。尚、前述した例のうち、ＴＳＫｇｅｌＳＰ−５ＰＷ、ＴＳＫｇｅｌＣＭ−５ＰＷ、ＴＳＫｇｅｌＣＭ−ＳＴＡＴは高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）用カラムとして販売されており、Ｆｃ結合性タンパク質の精製量が少量の場合や、ＨＰＬＣによるＦｃ結合性タンパク質の定量をする場合に特に有用である。

本発明の定量方法を実施する際、陽イオン交換クロマトグラフィー用担体を充填したカラムは予め緩衝液（平衡化液）で平衡化しておく。緩衝液の種類はｐＨ３からｐＨ８で緩衝能を有する緩衝液であれば特に限定はなく、好ましくはｐＨ５からｐＨ７で緩衝能を有する緩衝液である。一例として、酢酸緩衝液、ＭＥＳ緩衝液、リン酸緩衝液が挙げられる。

本発明の定量方法では予め前述した平衡化液で平衡化した陽イオン交換クロマトグラフィー用担体を充填したカラムにＦｃ結合性タンパク質を含む溶液（アプライ液）を添加することでＦｃ結合性タンパク質を前記担体に選択的に吸着させた後、平衡化液を添加して前記担体に吸着しない夾雑物を洗浄する。その後、塩化ナトリウム等の水溶性の塩を含む緩衝液（溶出液）を添加し、前記担体に吸着したＦｃ結合性タンパク質を溶出させることでＦｃ結合性タンパク質を簡便に定量することができる。溶出液の塩濃度は緩衝液（溶出液）のｐＨおよび前記担体の性質により適宜決定すればよい。また、Ｆｃ結合性タンパク質を溶出させる際、高濃度の塩を含む緩衝液（溶出液）で一段階に溶出してもよく、任意に塩濃度を段階的に上昇させてもよく（ステップグラジエント）、直線的濃度勾配で塩濃度を上昇させてもよい（リニアグラジエント）が、リニアグラジエントで溶出させると好ましい。例えば緩衝液が２０ｍＭの酢酸緩衝液（ｐＨ５．０）であり、水溶性の塩として塩化ナトリウムを用いる場合、塩化ナトリウム濃度０Ｍから１Ｍまでのリニアグラジエントで溶出させればよい。

陽イオン交換クロマトグラフィー用担体にＦｃ結合性タンパク質を含むアプライ液を添加してＦｃ結合性タンパク質を前記担体に吸着させる工程と、前記担体に吸着したＦｃ結合性タンパク質を、溶出液を用いて溶出させる工程により得られたＦｃ結合性タンパク質を含む溶液はＨＰＬＣにより得られる溶出ピーク面積から前記タンパク質を定量することができる。具体的には陽イオン交換クロマトグラフィー用担体を充填したカラムの出口側にオンライン検出器を設けて、溶出液を経時的にモニターやサンプリングをし、得られた溶出液のクロマトグラムのピーク面積から、溶出したＦｃ結合性タンパク質を定量すればよい。前記検出器としてはＦｃ結合性タンパク質を検出できるものであれば限定はなく、例えば示差屈折率計、電気伝導度計、蛍光検出器、紫外検出器、可視検出器が挙げられるが、タンパク質の紫外線吸収を利用して測定する紫外検出器を用いた検出が簡便であり好ましい。紫外検出器を用いて検出する場合、その波長はカルボニル基の吸収に基づく２１０から２３０ｎｍ、または芳香族アミノ酸の吸収に基づく２６０から２９０ｎｍの波長を用いればよい。前者の波長域には高感度で分析できる利点があり、後者の波長域には夾雑物の影響を受けにくいという利点がある。またポストカラム反応でニンヒドリンやフェニルイソチオシアネート等でＦｃ結合性タンパク質を修飾後、可視検出器、紫外検出器、蛍光検出器等を用いて検出してもよい。

Ｆｃ結合性タンパク質を定量する際は予めＥＬＩＳＡ法や紫外検出器を用いた方法等で定量した既知濃度のＦｃ結合性タンパク質溶液を用いて検量線を作成し、未知濃度のＦｃ結合性タンパク質を含む溶液を前記作成した検量線に基づき定量すればよい。

本発明は陽イオン交換クロマトグラフィー用担体にＦｃ結合性タンパク質を含むアプライ液を添加してＦｃ結合性タンパク質を前記担体に吸着させる工程と前記担体に吸着したＦｃ結合性タンパク質を、塩を含む溶出液を用いて溶出させる工程とを含むＦｃ結合性タンパク質の定量方法である。本発明の定量方法は高速液体クロマトグラフィーにより得られる溶出ピーク面積から前記試料に含まれるＦｃ結合性タンパク質を定量することができる。
前記定量方法はＥＬＩＳＡ法等、従来のＦｃ結合性タンパク質の定量法と比較し簡便であること、また従来の定量法では定量することが困難であった特性の異なるＦｃ結合性タンパク質の定量が高精度、高効率に可能となるため、Ｆｃ結合性タンパク質の工業的生産において生産管理や品質管理が容易となることが考えられる。

ヒトＦｃγＲＩＩＩａの概略構造図。実施例１で測定したＦｃ結合性タンパク質の典型的なクロマトグラム。実施例１で測定した精製Ｆｃ結合性タンパク質の検量線（縦軸：溶出ピーク面積、横軸：Ｆｃ結合性タンパク質濃度）。実施例２で測定した試料のクロマトグラム。実施例３で測定した試料のクロマトグラム（ａ：実施例２（１）の方法で得たタンパク質抽出液、ｂ：ａの試料に精製Ｆｃ結合性タンパク質を２μｇ添加した試料、ｃ：ａの試料に精製Ｆｃ結合性タンパク質を４μｇ添加した試料）。実施例３の結果を示すグラフ（縦軸：溶出ピーク面積から算出した試料濃度、横軸：タンパク質抽出液に添加した精製Ｆｃ結合性タンパク質量）。

以下、実施例を用いて、本発明をさらに詳細に説明するが、本発明は当該例に限定されるものではない。

実施例１
（１）以下の方法により、標準Ｆｃ結合性タンパク質を調製した。
（１−１）Ｆｃ結合性タンパク質を生産する組換え大腸菌（形質転換体）（特開２０１６−２３１５２）を約６０時間培養後、当該培養液より大腸菌菌体を得た。
（１−２）（１−１）で得られた菌体を４０ｍＭ塩化ナトリウム、１ｍＭＥＤＴＡ、２ｍＭＭｇＳＯ_４、２５０Ｕ／ＬＢｅｎｚｏｎａｓｅ（メルク社製）、０．０５ｇ／Ｌリゾチーム（太陽化学社製）および０．５％ＴｒｉｔｏｎＸ−１００（商品名）を含む２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）に懸濁し、撹拌することで菌体内からタンパク質を抽出した。
（１−３）（１−２）で得られた抽出液を遠心分離し、沈殿物を除去することで清澄な溶液を回収した。
（１−４）（１−３）で得られた清澄化液を、予め緩衝液Ａ（２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ６．０））で平衡化したＴＯＹＯＰＥＡＲＬＣＭ−６５０Ｍ（東ソー社製）を充填したカラムに通過させ、緩衝液Ａで非吸着物質を洗浄した後、１Ｍ塩化ナトリウムを含む緩衝液ＡでＦｃ結合性タンパク質を溶出した。

精製Ｆｃ結合性タンパク質は、ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動で単一バンドを、ゲルろ過クロマトグラフィー（カラム：ＴＳＫｇｅｌＧ３０００ＳＷ_ＸＬ（東ソー社製）、溶離液：リン酸緩衝生理食塩水（ｐＨ７．４））で単一ピークをそれぞれ確認した。
（２）（１）に記載の方法で調製した標準Ｆｃ結合性タンパク質を下記に示すＨＰＬＣを用いた方法で測定し、標準Ｆｃ結合性タンパク質の検量線を作成した。
（２−１）ＨＰＬＣ用のポンプとしてＤＰ−８０２０（東ソー社製）を、ＵＶ検出器としてＵＶ−８０２０（東ソー社製）を、カラムとして生体高分子分離用の弱陽イオンカラムＴＳＫｇｅｌＣＭ−ＳＴＡＴ（３．０ｍｍＩ．Ｄ．×３．５ｃｍ）（東ソー製）を用いた。溶離液Ａとして２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ６．０）を、溶離液Ｂとして溶離液Ａに１．０Ｍ塩化ナトリウムを添加したものを用いた。
（２−２）（１）に記載の方法で得られたＦｃ結合性タンパク質を含む溶液を溶離液Ａで希釈することで、Ｆｃ結合性タンパク質濃度０．０３から０．１２ｇ／Ｌの溶液を調製した。尚、タンパク質濃度の測定は溶液の２８０ｎｍの吸光度から算出しており、Ｆｃ結合性タンパク質のアミノ酸組成より１ｍｇ／ｍＬ水溶液の２８０ｎｍにおける吸光度を１．７８として算出している。
（２−３）予め溶離液Ａを１ｍＬ／ｍｉｎで通液することでカラムを平衡化後、（２−２）の溶液８０μＬを導入し、溶離液Ａを２分間通液した。その後、塩化ナトリウム濃度が０Ｍから０．５Ｍまでの直線濃度勾配を１０分間で実施し、Ｆｃ結合性タンパク質を溶出した。溶出物は２８０ｎｍの吸光度で検出し、ＵＶ検出器にてピーク面積を求めた。
（２−４）Ｆｃ結合性タンパク質の濃度に対する溶出ピーク面積をプロットし検量線を作成した。

典型的な精製Ｆｃ結合性タンパク質のクロマトグラムを図２に、検量線を図３にそれぞれ示す。

実施例２
（１）以下の方法により、Ｆｃ結合性タンパク質を含むタンパク質抽出液を調製した。
（１−１）Ｆｃ結合性タンパク質を生産する組換え大腸菌（形質転換体）を約６０時間培養後、当該培養液１００μＬから遠心分離により菌体を回収した。
（１−２）回収した菌体に１ｍＬのＢｕｇＢｕｓｔｅｒ溶液を加えて室温で２０分間振とうすることでＦｃ結合性タンパク質を抽出し、遠心分離により上清を回収した。尚、ＢｕｇＢｕｓｔｅｒ溶液は市販抽出試薬（メルク社製）をトリス緩衝生理食塩水で１０倍に希釈後、更にリゾチーム（太陽化学社製）を終濃度０．３ｍｇ／ｍＬに、Ｂｅｎｚｏｎａｓｅ（メルク社製）を終濃度２５０Ｕ／ｍＬになるようそれぞれ添加して調製した。
（１−３）実施例２（１−２）で得られた抽出液を遠心分離し、沈殿物を除去することで溶液を回収した。
（２）ＨＰＬＣ法による定量を行った。
（２−１）実施例１（２−１）に従って分析準備を行い、予め溶離液Ａを１ｍＬ／ｍｉｎで通液することでカラムを平衡化後、実施例２（１）の方法で得たＦｃ結合性タンパク質を含む抽出液２０μＬを導入し、溶離液Ａを２分間通液した。その後、塩化ナトリウム濃度が０．１Ｍの溶離液で夾雑不純物を洗浄し、続いて塩化ナトリウム濃度が０．１Ｍから０．２Ｍまでの直線濃度勾配を５分間で実施し、Ｆｃ結合性タンパク質を溶出した。溶出物は２８０ｎｍの吸光度で検出し、ＵＶ検出器にてピーク面積を求めた。

得られたＦｃ結合性タンパク質の溶出ピークの面積、希釈倍率および検量線より試料中のＦｃ結合性タンパク質濃度を計算したところ、２．３ｍｇ／ｍＬと計算された。試料のクロマトグラムを図４に示す。
（３）ＥＬＩＳＡ法による定量を行った。
（３−１）予めヒトＩｇＧ溶液（化血研製）を固定化し、１％牛血清アルブミンでブロッキングした９６穴プレート（Ｎｕｎｃ社製）にトリス緩衝生理食塩水により適当な濃度に希釈した試料（実施例２（１）の方法で得たタンパク質抽出液）１００μＬを添加後、３０℃で１時間保温した。また、実施例１（１）の方法で得た精製Ｆｃ結合性タンパク質を用いて希釈系列（濃度０．０６から１ｍｇ／Ｌ）を作製し、併せて同プレートに１００μＬ添加し保温した。
（３−２）ＴＢＳＴ（０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０を含むトリス緩衝生理食塩水）でプレートを洗浄後、トリス緩衝生理食塩水で１０，０００倍に希釈した抗ＣＤ１６抗体（Ｒ＆ＤＳＹＳＴＥＭＳ社製、ＭＡＢ２５４６）を１００μＬ添加し、３０℃で１時間保温した。
（３−３）ＴＢＳＴでプレートを洗浄後、トリス緩衝生理食塩水で１０，０００倍に希釈したＭｏｕｓｅＩｇＧ−ｈｅａｖｙａｎｄｌｉｇｈｔｃｈａｉｎｃｒｏｓｓ−ａｄｓｏｒｂｅｄ抗体（ＢＥＴＨＹＬ社製、Ａ９０−２１６Ｐ）を１００μＬ添加し、３０℃で１時間保温した。
（３−４）ＴＢＳＴでプレートを洗浄後、ＴＭＢＭｉｃｒｏｗｅｌｌＰｅｒｏｘｉｄａｓｅＳｕｂｓｔｒａｔｅＳｙｓｔｅｍ（ＫＰＬ社製）を５０μＬ添加し、室温で３分間放置することで発色後、１Ｍリン酸を５０μＬ加えることで反応を停止した。
（３−５）マイクロプレートリーダー（テカン社製インフィニット２００）を用いて４５０ｎｍの吸光度を測定し、精製Ｆｃ結合性タンパク質の希釈系列を用いて作成した検量線より試料中のＦｃ結合性タンパク質濃度を求めた。

その結果、Ｆｃ結合性タンパク質濃度は２．５ｍｇ／ｍＬと計算され、ＨＰＬＣ法で求めた濃度とほぼ同じ値となった。

実施例３
（１）実施例２（１）の方法で得たタンパク質抽出液２００μLに実施例１（１）の方法で得た精製Ｆｃ結合性タンパク質溶液（０．２から０．８ｍｇ／ｍＬに調整）２００μＬをそれぞれ混合し、測定試料とした。

（２）実施例１（２−１）に従って分析準備を行い、予め溶離液Ａを１ｍＬ／ｍｉｎで通液することでカラムを平衡化後、実施例３（１）の方法で調製したＦｃ結合性タンパク質を含む抽出液２０μＬを導入し、溶離液Ａを５分間通液した。その後、塩化ナトリウム濃度が０．１Ｍの溶離液で夾雑不純物を洗浄し、続いて塩化ナトリウム濃度が０．１Ｍから０．２Ｍまでの直線濃度勾配を５分間で実施し、Ｆｃ結合性タンパク質を溶出した。溶出物は２８０ｎｍの吸光度で検出し、ＵＶ検出器にてピーク面積を求めた。

本例で測定した各試料のクロマトグラムを図５に示す。また本例で測定した各試料中に添加したＦｃ結合性タンパク質量に対するＦｃ結合性タンパク質の溶出ピーク面積をプロットしたところ、添加した精製Ｆｃ結合性タンパク質量が４μｇまで添加量に応じて直線性が得られた。このことから本定量法における試料負荷量は少なくとも５．５μｇまで測定可能であることを証明した（図６）。

Claims

陽イオン交換クロマトグラフィー用担体を充填したカラムにアルギニンを含まない平衡化液を添加してカラムを平衡化させ、前記担体にヒトＦｃ結合性タンパク質を含む試料を添加してＦｃ結合性タンパク質を前記担体に吸着させ、前記担体に吸着した不純物を、アルギニンを含まず０．１Ｍ濃度の塩化ナトリウムを含むリン酸緩衝液を用いて洗浄・除去し、前記担体に吸着したＦｃ結合性タンパク質を、アルギニンを含まず塩を含む溶出液により溶出させる方法であって、
前記溶出が、０．１Ｍ濃度の塩化ナトリウムを含むリン酸緩衝液により溶出を開始し０．２Ｍ濃度の塩化ナトリウムを含むリン酸緩衝液で溶出を終了するリニアグラジエントで溶出することを特徴とし、
前記Ｆｃ結合性タンパク質が、ヒトＦｃγＲＩＩＩａである、
方法。
前記Ｆｃ結合性タンパク質を含む試料が、Ｆｃ結合性タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターで宿主を形質転換して得た形質転換体の抽出物であることを含む、請求項１に記載の定量方法。
宿主が大腸菌であることを特徴とする、請求項２に記載の定量方法。