JP6604975B2 - 免疫細胞療法のためのペプチドスクリーニング方法 - Google Patents
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Description
〔1〕免疫細胞療法において患者に投与するための樹状細胞の刺激に使用するn個の腫瘍関連抗原由来ペプチドを選択するためのスクリーニング方法であって(nは1以上の整数を表す)、
患者に由来する単核球細胞を、接着細胞と浮遊細胞とに分離する工程と、
浮遊細胞を用いて、腫瘍関連抗原由来ペプチドを選択する工程と、
を含むスクリーニング方法;
〔2〕腫瘍関連抗原由来ペプチドの選択工程は、
各腫瘍関連抗原由来ペプチド候補と、浮遊細胞とを接触させてインキュベートし、浮遊細胞の増殖率が高い方からn個の腫瘍関連抗原由来ペプチドを選択する、上記〔1〕に記載のスクリーニング方法;
〔3〕浮遊細胞の増殖率が高い方からn個の腫瘍関連抗原由来ペプチドを選択する工程は、n個のペプチドがすべて異なる腫瘍関連抗原に由来するように選択する、上記〔2〕に記載のスクリーニング方法;
〔4〕患者が、腫瘍関連抗原由来ペプチドで刺激した樹状細胞を既に投与されたことがある場合であって、
浮遊細胞の増殖率が高い方から腫瘍関連抗原由来ペプチドを選択する工程において、前回投与された腫瘍関連抗原由来ペプチドと、少なくとも1つ違うものを含むように選択する、上記〔2〕又は〔3〕に記載のスクリーニング方法;
〔5〕nは3又は4である、上記〔1〕から〔4〕のいずれか1項に記載のスクリーニング方法;
〔6〕免疫細胞療法において患者に投与するための樹状細胞を含む組成物の製造方法であって、
接着細胞を未成熟樹状細胞に分化させる工程と、
未成熟樹状細胞を、上記〔1〕から〔5〕に記載のスクリーニング方法で選択された腫瘍関連抗原由来ペプチドと接触させ、成熟樹状細胞に分化させる工程と、
を含む製造方法;
〔7〕接着細胞を未成熟樹状細胞に分化させる工程は、IL−4及びGM−CSFを培地に添加することによって行う、上記〔6〕に記載の組成物の製造方法;
〔8〕未成熟樹状細胞を成熟樹状細胞に分化させる工程は、腫瘍関連抗原由来ペプチド及びOK−432を培地に添加することによって行う、上記〔6〕又は〔7〕に記載の組成物の製造方法;
に、関する。
腫瘍関連抗原由来ペプチドには、一方又は両方の末端に、そのペプチドの生成、精製、安定化、結合、又は検出等に関連する目的のために追加された1又は2以上のアミノ酸が結合していてもよい。
本明細書において「アミノ酸」は、その最も広い意味で用いられ、天然アミノ酸に加え、人工のアミノ酸変異体や誘導体を含む。アミノ酸は慣用的な一文字表記又は三文字表記で示される場合もある。本明細書においてアミノ酸又はその誘導体としては、天然タンパク質性L-アミノ酸;非天然アミノ酸;アミノ酸の特徴である当業界で公知の特性を有する化学的に合成された化合物などが挙げられる。非天然アミノ酸の例として、主鎖の構造が天然型と異なる、α,α-二置換アミノ酸(α-メチルアラニンなど)、N-アルキル-α-アミノ酸、D-アミノ酸、β-アミノ酸、α-ヒドロキシ酸や、側鎖の構造が天然型と異なるアミノ酸(ノルロイシン、ホモヒスチジンなど)、側鎖に余分のメチレンを有するアミノ酸(「ホモ」アミノ酸、ホモフェニルアラニン、ホモヒスチジンなど)、及び側鎖中のカルボン酸官能基がスルホン酸基で置換されるアミノ酸(システイン酸など)が挙げられるがこれらに限定されない。
(1)材料
培養用容器は、ディッシュ(培養面積55cm2)またはフラスコ(培養面積25cm2)を使用した。Ficoll溶液は、Ficoll−Paque PREMIUM(GEヘルスケア)を使用した。サイトカインは、GM−CSF、及びIL−4をそれぞれ最終濃度50ng/mLで使用した。培地は、基礎培地AIM−V(Gibco)を使用した。培地にピシバニール(OK−432)を5KE/2mLの濃度で添加した。
Ficoll溶液を用いた比重遠心法により、末梢血から単核球分画を採取し、1.0−1.3×106個/mLの濃度で細胞を播種した。
培養容器を30分以上インキュベートし、接着細胞を確認してから浮遊細胞を含む上清を回収し、接着細胞の培地はGM−CSF及びIL−4含有培地(10%自己血漿)へ交換した。
上記(2)の浮遊細胞を含む上清を遠心(1200rpm、5分)した。細胞ペレットを確認し、上清を廃棄した。そこにIL−2(175IU/mL)含有AIM−Vを加え、予め腫瘍関連抗原由来ペプチド候補、VEGFR1を2種類(配列番号:1及び2)、VEGFR2を4種類(配列番号:3−6)、Her2を4種類(配列番号:7−10)、EGFRを3種類(配列番号:11−13)、及びhTERTを3種類(配列番号:14−16)、それぞれ5μgをコーティングした96ウェルプレートに、100μL(1×104〜1×105cells)/ウェルずつ分注した。72時間培養後にCell titer Glo 2.0溶液(プロメガ)を50μL/ウェル添加し、ルミノメーターで生細胞数を測定した。ペプチド非添加ウェルの細胞数を1としたときの、それぞれのペプチドを分注したウェルの細胞数を計算した。
様々なHLA-A型をもつ癌患者12名の結果を表1に示す。1以上の細胞数を示したウェルの腫瘍関連抗原由来ペプチドを、細胞増殖率が高いペプチドとして選択した。さらにその中より、数値が高く、腫瘍関連抗原の種類が重複しないように3又は4種類の腫瘍関連抗原由来ペプチドを患者ごとに選択した(丸印)。
各ペプチドはHLA-A型に適合するように設計されたが、HLA-A型が適合しなくても細胞増殖促進効果があることがわかった。
上記1.(2)の接着細胞は5日間−10日間培養した後、OK−432を0.05KE/mLの濃度で添加し、さらに48時間培養した。また、OK−432による成熟樹状細胞化刺激を行うのと同時に、上記1.(3)で選択した3又は4種類の腫瘍関連抗原由来ペプチドをそれぞれの患者由来の接着細胞に10〜20μg/mL添加した。
上記1.の方法により、それぞれのペプチドを分注したウェルの細胞数を計算し、腫瘍関連抗原由来ペプチドを3又は4種類を患者ごとに選択した(表2、1回目)。その後、上記2.の方法により腫瘍関連抗原由来ペプチドで刺激した樹状細胞を患者に投与した。
樹状細胞を患者に投与してから一定の期間が経過した後、再度同患者末梢血から単核球分画を採取した。上記1.の方法により、それぞれのペプチドを分注したウェルの細胞数を計算し、腫瘍関連抗原由来ペプチドを3又は4種類を患者ごとに選択した(表2、2回目)。その後、上記2.の方法により腫瘍関連抗原由来ペプチドで刺激した樹状細胞を患者に投与した。
2回目の樹状細胞の投与から一定の期間が経過した後、再々度同患者末梢血から単核球分画を採取した。上記1.の方法により、それぞれのペプチドを分注したウェルの細胞数を計算し、腫瘍関連抗原由来ペプチドを3又は4種類を患者ごとに選択した(表2、3回目)。その後、上記2.の方法により腫瘍関連抗原由来ペプチドで刺激した樹状細胞を患者に投与した。
表2に示すように、患者由来の浮遊細胞と各ペプチドとの反応性は毎回同じ結果にはならず、選択するペプチドの組み合わせは異なるものとなった。従って、この方法を用いれば同じペプチドを長期間使用することによって生じる免疫逃避による治療抵抗性を回避することが可能となる。
健常人被験者の浮遊細胞を用いて上記1.の方法により、それぞれのペプチドを分注したウェルの細胞数を計算し、数値が最大となった腫瘍関連抗原由来ペプチド(丸印)と最低となったペプチド(三角印)を選択した(表3)。その後、上記2.の方法により、腫瘍関連抗原由来ペプチドで刺激した樹状細胞の最終回収細胞数を比較したところ、丸印のペプチドを添加した樹状細胞の方が三角印のペプチドを添加した樹状細胞より最終的に回収できた細胞数が多かった(表3)。
また、本発明に係るスクリーニング方法で選択された腫瘍関連抗原由来ペプチドで樹状細胞を刺激した場合(スクリーニングあり)と、スクリーニングを行わずにHLA−A型に適合した腫瘍関連抗原由来ペプチドで樹状細胞を刺激した場合(スクリーニングなし)とで、最終的に回収できた樹状細胞の細胞数を比較したところ、有意差はないものの、スクリーニングありの群で多い傾向が認められた(データ非表示)。
本発明は治療抵抗性のみならず、自己樹状細胞療法における重要な課題の一つである、投与細胞数の増加にも大いに貢献できるものである。
上記1−3.の方法に従い選択された腫瘍関連抗原由来ペプチドを添加した樹状細胞(変動型分子標的樹状細胞)と活性化リンパ球との併用治療成績を図2(a)、図2(b)、および図3(a)に示す。また、上記1−3.の方法に従い選択された腫瘍関連抗原由来ペプチドを添加した樹状細胞(変動型分子標的樹状細胞)を併用療法を用いずに単独で投与した場合の治療成績を図3(b)に示す。活性化リンパ球とは患者由来のPBMCをIL−2(175IU/mL)含有のAIM−V及びリンパ球拡大培養用培地であるKBM培地(コージンバイオ)、ALys培地(ニプロ)等を用いて2週間培養し、1.2×1010個以上まで増殖させたものを生理的食塩水100mLに溶解し、点滴バックに充填したものを指す。樹状細胞を投与した日を三角印、リンパ球を投与した日を丸印で示した。
症例1の肺がん患者では、2回の投与共に、VEGFR1(配列番号:2)、VEGFR2(配列番号:6)、Her2(配列番号:9)、及びEGFR(配列番号:13)のペプチドを選択した(図2、a)。治療開始から3週間後に腫瘍マーカーであるSCC(正常値2ng/mL以下)の低下と倦怠感および呼吸苦の改善がみられた。
症例2の膵臓がん患者では、前半2回の投与ではVEGFR1(配列番号:2)、VEGFR2(配列番号:6)、Her2(配列番号:10)、及びEGFR(配列番号:13)のペプチドを選択し、後半2回の投与ではVEGFR1(配列番号:2)、VEGFR2(配列番号:6)、Her2(配列番号:10)、及びEGFR(配列番号:12)のペプチドを選択した(図2、b)。治療開始から4週間後に腫瘍マーカーであるCA19−9(正常値37U/mL以下)の低下がみられた。
症例3の乳がん患者では、1回目の投与はVEGFR2(配列番号:6)Her2(配列番号:7)、EGFR(配列番号:11)、hTERT(配列番号:14)のペプチドを選択した。約1か月後の2回目投与ではVEGFR1(配列番号:1)、VEGFR2(配列番号:6)、Her2(配列番号:7)、EGFR(配列番号:11)のペプチドを選択した。両治療日とも、活性化リンパ球を同時に投与した。2回目の治療日から1週間後のエコー画像により腫瘍径が約半分に縮小したことが確認された(図3、a)。
症例4の肺がん患者では、2週間ごとに、併用療法を用いずに、樹状細胞のみを3回投与した。1回目の投与はVEGFR1(配列番号:1)、VEGFR2(配列番号:4)、Her2(配列番号:7)、EGFR(配列番号:13)を、2回目の投与はVEGFR1(配列番号:1)、VEGFR2(配列番号:6)、Her2(配列番号:10)、hTERT(配列番号:15)、3回目の投与はVEGFR1(配列番号:2)、VEGFR2(配列番号:4)、Her2(配列番号:9)、hTERT(配列番号:15)のペプチドを選択した。3回目を投与した翌日のCTの画像により、腫瘍がほぼ消失したことが確認された(図3、b)。
Claims (5)
- 免疫細胞療法において患者に投与するための樹状細胞の刺激に使用するn個の腫瘍関連抗原由来ペプチドを選択するためのスクリーニング方法であって(nは1以上の整数を表す)、
前記患者に由来する単核球細胞を、接着細胞と浮遊細胞とに分離する工程と、
複数の腫瘍関連抗原由来ペプチドを担体に固相化し、前記担体に前記浮遊細胞を添加し、前記浮遊細胞の増殖率が高いn個の腫瘍関連抗原由来ペプチドを選択する工程と、
を含むスクリーニング方法。 - 前記腫瘍関連抗原由来ペプチドの選択工程は、
各腫瘍関連抗原由来ペプチド候補と、前記浮遊細胞とを接触させてインキュベートし、前記浮遊細胞の増殖率が高い方からn個の腫瘍関連抗原由来ペプチドを選択する、請求項1に記載のスクリーニング方法。 - 前記浮遊細胞の増殖率が高い方からn個の腫瘍関連抗原由来ペプチドを選択する工程は、n個のペプチドがすべて異なる腫瘍関連抗原に由来するように選択する、請求項2に記載のスクリーニング方法。
- 前記患者が、腫瘍関連抗原由来ペプチドで刺激した樹状細胞を既に投与されたことがある場合であって、
前記浮遊細胞の増殖率が高い方から腫瘍関連抗原由来ペプチドを選択する工程において、前回投与された腫瘍関連抗原由来ペプチドと、少なくとも1つ違うものを含むように選択する、請求項2又は3に記載のスクリーニング方法。 - 前記nは3又は4である、請求項1から4のいずれか1項に記載のスクリーニング方法。
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