JP6491600B2 - アルカリ水溶液を用いた多孔質セルロースビーズの製造方法 - Google Patents
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Description
セルロースは酸、塩基性溶媒に耐性があり、修飾することで様々な置換基を付加させることができる。そのためセルロース多孔質ビーズは、様々な物質の吸着体として利用されている(特許文献1、2)。
上述した様に多孔質セルロースビーズは、その製造方法について改善の余地がある。さらに、こういった多孔質セルロースビーズを含む多糖類多孔質ビーズは、それを用いてリガンド固定化用担体にする際にも解決課題を有する。すなわち、多糖類多孔質ビーズはリガンド固定化用担体として有用であり、例えば、非特許文献1は、多孔質セルロースビーズ担体にアフィニティリガンドを固定化して吸着体として使用することを教示する。この様なリガンドを固定した多糖類多孔質ビーズは、一般にカラムに充填され、このカラムに処理対象を通液することで対象物が吸着される。しかし、リガンド固定化用担体の強度が低いと、送液圧力によって担体の圧密化が生じたり、圧損が大きくなるなどの不具合が生じる。特に処理スケールの大型化や高線速化が進むほど、作用圧が増大するため、リガンド固定化用担体の高強度化が強く求められる。
本発明者らは、第1の態様(多孔質セルロースビーズの改善)について前記課題に基づき鋭意検討を行った結果、下記発明(1)のようにすると上記課題が解決することを見出し、第1態様(多孔質セルロースビーズの改善)に関する発明を完成させるに至った。好ましくは下記発明(2)以降であってもよい。
(1)a)低温のアルカリ水溶液とセルロースとを混合して作製したセルロース微分散液に、b)水を加えてセルローススラリーとした後、d)凝固溶媒に接触させることを特徴とする、多孔質セルロースビーズの製造方法。
(2)前記b)工程の後、c)セルローススラリーを昇温し、その後、前記d)工程を行う前記(1)記載の多孔質セルロースビーズの製造方法。
また本発明者らは、前記第2態様の課題を解決するために鋭意検討を重ねた結果、特定の強度向上手段が、担体の強度のみならず、意外なことにリガンドによる吸着量をも維持・改善することを知見した。具体的には、多糖類多孔質ビーズを収縮処理すると、圧縮強度が向上し、それによって圧密化や圧損を防止できるだけでなく、リガンドを固定化した場合の吸着量も維持・改善されること、好ましくは改善されることを見出し、第2態様(リガンド固定化様担体の改善)に関する発明も完成した。
(16)多糖類多孔質ビーズを下記式によって定まる収縮率で10%以上収縮させ、架橋することによって得られるリガンド固定化用担体。
収縮率(%)=(1−V2/V1)×100
(式中、V1は収縮前の多糖類多孔質ビーズのゲル体積を示し、V2は収縮後の多糖類多孔質ビーズのゲル体積を示す。)
(17)多糖類多孔質ビーズを水溶性有機溶媒、およびアルカリ水と接触させる架橋工程を経て製造される前記(16)に記載のリガンド固定化用担体。
(18)前記収縮工程で架橋剤を共存させ、収縮させつつ架橋することによって製造される、或いは
前記収縮工程後、得られた収縮ビーズを架橋する架橋工程を実施することよって製造される前記(17)に記載のリガンド固定化用担体。
(19)前記架橋工程によって得られるビーズに対して、該ビーズを架橋剤およびアルカリ水と接触させる追加架橋工程を1回以上実施する前記(18)に記載のリガンド固定化用担体。
(20)前記多糖類がセルロースまたはアガロースである前記(16)〜(19)のいずれかに記載のリガンド固定化用担体。
(21)前記水溶性有機溶媒が、アルコール溶媒、スルホキシド溶媒、アミド溶媒、ケトン溶媒、およびエーテル溶媒から選択される少なくとも1種である前記(17)〜(20)のいずれかに記載のリガンド固定化用担体。
(22)追加架橋工程でアルコール溶媒を用いない前記(19)〜(21)のいずれかに記載のリガンド固定化用担体。
(23)前記(16)〜(22)のいずれかに記載の担体にリガンドを固定化した吸着体。
(24)前記リガンドがアフィニティリガンドである前記(23)に記載の吸着体。
(25)前記アフィニティリガンドが、プロテインA、プロテインG、またはプロテインLである前記(24)に記載の吸着体。
(26)アフィニティクロマトグラフィーによる抗体の精製方法であって、前記(24)又は(25)に記載の吸着体に、供給原料を接触させて抗体を吸着させ、吸着体に吸着した抗体を適宜洗浄する段階、吸着体から抗体を遊離させる溶出液を添加し、溶出液から抗体を回収する段階を含んでなる方法。
第1態様に関する本発明の製造方法によれば、溶液温度、水酸化ナトリウム濃度を変更することにより、セルロースビーズの粒子径、内部構造を変化させることが可能であり、様々な物質の吸着体として利用可能な多孔質セルロースビーズを提供することが可能となる。
第2態様に関する本発明では、多糖類多孔質ビーズを架橋するだけでなく、所定量以上収縮させているため、圧縮強度を向上できる。このようにして圧縮強度を向上させた多糖類多孔質ビーズを担体としてリガンドを固定させると、強度のみならず、吸着量も維持・改善、好ましくは改善できる。
1.多孔質セルロースビーズの改善(第1の態様)
(1)セルロース微分散液
本発明(第1の態様)の製造方法では、セルロースをまず、アルカリ水溶液と混合して低温のセルロース微分散液にする。低温に保持することが、優れた多孔質セルロースビーズの製造に貢献する。この微分散液調製工程では、例えば、アルカリ濃度10wt%以下、7.5wt%以上(好ましくは、8wt%以上、特に9〜8wt%)、温度−5〜10℃程度(好ましくは0℃〜4℃)のアルカリ水溶液に微分散させる。或いはアルカリ水溶液と混合して、混合液(微分散液)のアルカリ濃度及び温度を、例えば、前記範囲にする。アルカリ水溶液には水酸化ナトリウム水溶液、水酸化カリウム水溶液が挙げられる。
またセルロースの重合度は、例えば、1000以下、好ましくは500以下、さらに好ましくは300以下である。重合度の下限は、例えば、10以上、好ましくは100以上、さらに好ましくは200以上である。
アルカリ水溶液にセルロースを微分散させた後、水を添加し、スラリー温度を上昇させることが好ましい。この昇温工程は必須ではなく、温度を変更することなく水を添加してセルローススラリーを調製してもよいが、いずれにしても水添加して微分散液をスラリーにすると、優れた多孔質セルロースビーズが製造される。
セルローススラリーのアルカリ濃度は、例えば、3wt%以上であり、5wt%以上、9wt%以下が好ましく、更に好ましくは5wt%以上、8wt%以下(特に7wt%以下)である。本発明において、アルカリ濃度を低くするほどビーズ粒子径を小さくすることが出来るが、アルカリ濃度が5wt%以下(特に3wt%未満)になるとセルロースが微分散しなくなる。
セルローススラリーのセルロースの濃度は、例えば、1wt%以上、好ましくは2wt%以上であり、その上限は、例えば、7wt%以下、好ましくは5.4wt%以下である。
セルローススラリーにおいて、微分散液から存在する水の量(初期水量)と、添加される水の量(加水量)との質量比は、例えば、95:5〜30:70、好ましくは90:10〜40:60である。
またセルローススラリー温度は、高くするほどビーズの粒子径を小さくすることが可能であり、高くするほどビーズの細孔径を大きくすることが可能である。具体的温度範囲として、セルローススラリーの温度は4℃以上25℃以下が好ましく、更に好ましくは4℃以上20℃以下である。セルローススラリーの温度が上限以上となるとセルロースが微分散しなくなる。
微分散液を昇温してスラリーにする場合、スラリーと微分散液の温度差は、例えば、1℃以上、好ましくは5℃以上、さらに好ましくは10℃以上であり、その上限は、例えば、30℃以下、好ましくは25℃以下、さらに好ましくは20℃以下である。
上記の様にして得られるセルローススラリーは、その後、凝固液に接触させることで多孔質セルロースビーズにすることが可能であるが、必要に応じて、凝固液に接触させる前にセルローススラリーをセルロースを含有する液滴(水相)を他の液(油相)に分散した液滴を調製してもよい。液滴を形成してからセルロースを凝固することによって、多孔質セルロースビーズの特性がさらに改善される。この液滴作製工程では、セルロース多孔質ビーズを形成させるために、非水溶性を示す液体にセルローススラリーを分散させ、非水溶性液体中にセルロース液滴を形成させる。
前記非水溶性液体としては、ジクロロベンゼンなどのハロゲン化炭化水素類、ヘキサンなどの脂肪族炭化水素類、酢酸エチルなどのエステル類(特に酢酸エステル類)、炭素数6〜12の直鎖状飽和脂肪酸、炭素数16〜24の不飽和脂肪酸、融点が100℃以下の動植物油脂類、水素添加動植物油、動植物油脂類やその水素添加物の高融点画分を分別精製した分別油、飽和脂肪酸トリグリセリド類、食用ワックス類、微細藻類由来油脂類、微生物油脂類、中鎖脂肪酸トリグリセリド類、不飽和脂肪酸トリグリセリド類などが挙げられる。これら非水溶性液体は、単独で又は2種以上組み合わせて使用できる。好ましい非水溶性液体は、ハロゲン化炭化水素類、脂肪族炭化水素類、エステル類など、特にハロゲン化炭化水素類である。
非水溶性液体の量は、セルローススラリーの液滴相を分散可能である限り特に限定されないが、例えば、セルローススラリー100質量部に対して、50質量部以上、好ましくは100質量部以上、より好ましくは200質量部以上であり、その上限は、例えば、5000質量部以下、好ましくは2000質量部以下、より好ましくは1000質量部以下である。
前記液滴作製時には、必要に応じて、界面活性剤を使用してもよい。界面活性剤を使用することによって、セルローススラリーの液滴相を安定して形成できる。界面活性剤としては、ノニオン系界面活性剤が好ましく、特にソルビタンラウレート、ソルビタンステアレート、ソルビタンオレエート、ソルビタントリオレエートなどのソルビタン脂肪酸エステルが例示できる。これら界面活性剤は、単独で用いてもよく、2種以上を組み合わせてもよい。界面活性剤の量は特に限定されず、例えば、セルロース100質量部に対して、10質量部以上、好ましくは30質量部以上、さらに好ましくは50質量部以上であり、その上限は、例えば、1000質量部以下、好ましくは300質量部以下、より好ましくは200質量部以下である。
前記界面活性剤は、例えば、これを非水溶性液体に加えて混合液にした後、この混合液をセルローススラリーと接触させてもよい。
セルローススラリーの分散方法は特に限定しないが、例えば攪拌翼を用いた攪拌やホモジナイザーを用いた攪拌により、非水溶性液体にセルロース液滴を均一に分散させることが可能である。さらに静止型ミキサーも用いることができる。この際の攪拌強度を強くすると、セルロース液滴が小さくなるため、得られるセルロースビーズの粒径は小さくなる。
液滴作製時の温度は、例えば、前記セルローススラリーの温度範囲と同じ範囲で設定できる。この温度範囲を維持する限り、セルローススラリーから液滴作製時には降温してもよく昇温してもよいが、セルローススラリーと液滴作製時の温度差(液滴作製時温度−セルローススラリー温度)は、通常、−5℃以上、好ましくは−3℃以上、より好ましくは−1℃以上であり、その上限は、例えば、5℃以下、好ましくは3℃以下、より好ましくは1℃以下であり、最も好ましい温度差は0℃である。
液滴作製時の温度を前記範囲に調整するには、非水溶性液体(必要により、界面活性剤を含有していてもよい)の温度を、セルローススラリーと混合する前に予め調整しておくことが望ましい。この場合、セルローススラリーと非水溶性液体の温度差(非水溶性液体の温度−セルローススラリー温度)は、通常、−5℃以上、好ましくは−3℃以上、より好ましくは−1℃以上であり、その上限は、例えば、5℃以下、好ましくは3℃以下、より好ましくは1℃以下であり、最も好ましい温度差は0℃である。
このようにして形成させたセルローススラリー又はセルロース液滴分散液体を、セルローススラリーとは混和可能であるがセルロース凝固性を示す液体、すなわち凝固溶媒に接触させる。分散液とセルロース凝固性液体の混合中に、セルロース液滴とセルロース凝固性液体が接触し、セルロースビーズが形成される。その後、形成されたセルロースビーズを回収する。
この凝固工程でのセルローススラリー又はその液滴分散液体と凝固溶媒との混合は、前記液滴作製時と同様の攪拌状態で実施することが推奨される。またこの混合(凝固)時の温度は、セルローススラリー又はその液滴分散液体の温度と同等であるのが好ましく、セルローススラリー又はその液滴分散液体の温度に対して、例えば、±10℃以内、好ましくは±5℃以内、より好ましくは±2℃以内である。
前記凝固溶媒としては、例えば、アルコール類、グリコール類などが使用できる。前記アルコール類としては、例えば、イソブタノール、2−ブタノール、sec−ブタノール、2−メチル−2−プロパノール(すなわちtert−ブタノール)、1−プロパノール、2−プロパノール、エタノール、メタノールなどが使用でき、これらは単独で用いても2種以上を組み合わせてもよい。
また前記グリコール類としては、グリセロール、エチレングリコール、プロピレングリコールなどが例示でき、これらは単独で用いても2種以上を組み合わせてもよい。
本第一態様の発明により得られるセルロースビーズは多孔質ビーズであり、その孔の大きさ、粒子径は、上述したとおり、セルローススラリー温度、アルカリ濃度を変えることで制御することが可能である。
得られた多孔質ビーズは、前記凝固液から濾過、遠心分離などの適当な方法で固液分離し、必要に応じて乾燥することによって単離できる。この単離操作においては、多孔質セルロースビーズを適当な溶媒(水;アルコールなどの水溶性溶媒など)で洗浄してもよい。
この様にして得られる多孔質ビーズのメジアン粒径は、例えば、50μm以上、好ましくは70μm以上であり、その上限は、例えば、100μm以下、95μm以下である。
また前記多孔質セルロースビーズの排除限界分子量は、例えば、1.0×106以上、好ましくは2.3×106以上、より好ましくは1.0×107以上であり、その上限は、例えば、1.0×1011以下、好ましくは8.0×1010以下である。
(6)その他
以上のようにして得られる多孔質セルロースビーズは、様々な物質の吸着体として利用できる。またリガンドを固定化するための担体としても利用できる。担体として使用する場合、多孔質セルロースビーズは架橋されているのが好ましい。多孔質セルロースビーズの架橋方法としては、後述する第2の態様(収縮した後の架橋、または収縮しながらの架橋など)に係る発明をそのまま実施してもよく、公知の架橋方法を実施してもよい。
公知の架橋方法を実施する場合、架橋剤としては、エピクロロヒドリン、エピブロモヒドリン、ジクロロヒドリンなどのハロヒドリン;2官能性ビスエポキシド(ビスオキシラン);グリセロールポリグリシジルエーテルなどの多官能性ポリエポキシド(ポリオキシラン)を挙げることができる。なかでも、特開2008−279366号に示される方法を特に好適に用いることができる。この公報は、本願に参考文献として援用される。
なお多孔質セルロースビーズは、架橋前又は架橋後に分級してもよい。分級後の多孔質セルロースビーズの粒径の下限は、例えば、10μm、好ましく20μm、より好ましくは30μmであり、上限は、例えば、200μm、好ましくは150μm、より好ましくは125μmである。
さらに前記架橋担体には、適宜、リガンドを固定してもよい。リガンドの種類や固定化法は公知の範囲から適宜実施でき、また後述する第2の実施態様と同様にしてもよい。
次にリガンド固定化用担体の改善(第2態様)について説明する。
(1)多糖類多孔質ビーズ
第2態様の発明のリガンド固定化用担体は、多糖類多孔質ビーズを架橋することによって得られる架橋ビーズである。多糖類多孔質ビーズに使用される多糖類には、アガロース、セルロース、デキストリン、キトサン、キチン、及びこれらの誘導体が含まれる。好ましい多糖類はセルロース、アガロースであり、特に好ましくはセルロースである。
Kav=(VR−V0)/(Vt−V0) (1)
Kav=k×Ln(分子量)+b (2)
そして本第2態様(リガンド固定化用担体の改善)に関する発明では前記多糖類多孔質ビーズを収縮させている点に特徴がある。収縮を利用することで圧縮強度を適切に高めることができる。
収縮率(%)=(1−V2/V1)×100
(式中、V1は収縮前の多糖類多孔質ビーズのゲル体積を示し、V2は収縮後の多糖類多孔質ビーズのゲル体積を示す。なお本発明では後述する様に、架橋剤の存在下でビーズを収縮させる場合がある。その様な場合には、前記V1は収縮架橋前の多糖類多孔質ビーズのゲル体積を示し、V2は収縮架橋後の多糖類多孔質ビーズのゲル体積を示す。)
本発明において前記収縮率の下限は、10%、好ましくは15%、より好ましくは20%であり、上限は60%、好ましくは50%である。収縮率を大きくするほど、担体の圧縮強度(圧縮応力)を高めることができる。
本発明では前記多糖類多孔質ビーズの収縮を、架橋と組み合わせている点にも特徴がある。収縮による圧縮強度の向上と架橋による圧縮強度の両方を利用して強度を向上させた多糖類多孔質ビーズを担体としてリガンドを固定させると、吸着量をも維持・改善できる。
前記収縮工程が架橋工程を兼ねない場合(収縮単独工程という)、この工程は、上述した様に、多糖類多孔質ビーズを水溶性有機溶媒、アルカリおよび水と接触させることで実施できる。また前記収縮工程が架橋工程を兼ねる場合(収縮架橋工程)、この工程は、多糖類多孔質ビーズを水溶性有機溶媒、架橋剤、およびアルカリ水と接触させることによって実施できる。これら多糖類多孔質ビーズ、水溶性有機溶媒、アルカリ水、及び必要により架橋剤を接触させる時の手順、量、温度などは適宜設定できる。収縮架橋工程では、好ましくは多糖類多孔質ビーズと架橋剤と水溶性有機溶媒とで分散液を調製し、そこにアルカリ水溶液を加える。アルカリ水溶液を加えて所定時間反応させた後、さらにアルカリ水溶液を1回以上追加してもよい。なおアルカリ水溶液を追加する場合、追加前の架橋反応を本収縮架橋反応という場合がある。
本発明では、前記収縮反応時の架橋(収縮架橋工程)又は収縮反応後の架橋で多糖類多孔質ビーズを架橋した後、得られた架橋ビーズをさらに架橋する追加架橋工程を実施してもよい。この追加架橋工程は1回でもよく、複数回繰り返してもよい。追加架橋工程を1回以上実施することによって架橋ビーズの圧縮強度をさらに高めることができる。
さらに前記収縮工程(収縮架橋工程を含む)に先立って、本発明では、予備的に多糖類多孔質ビーズを架橋する前架橋工程を実施してもよい。前架橋工程は、その架橋の程度(架橋剤濃度など)が小さい点を除けば、前記追加架橋工程と同様の操作を実施できる。前架橋工程を実施することなく、前記収縮工程(収縮架橋工程を含む)を実施することが本発明では好ましい。
上記のようにして得られる架橋ビーズは、リガンド固定化用担体として使用できる。該架橋ビーズの20%圧縮応力の下限は、例えば、0.06MPa、好ましくは0.072MPa、より好ましくは0.092MPaであり、上限は、例えば、0.28MPa、好ましくは0.20MPaである。なお20%圧縮応力は、孔径5.00μmのフィルターの上のビーズ含有スラリーを、振動を与えてもそれ以上沈降しない程度にまで沈降した後、そこからさらに20%圧縮するのに必要な応力のことをいう。
前記架橋ビーズを担体とし、これにリガンドを固定させることで吸着体が得られる。本発明の架橋ビーズ担体は、その強度のわりに、リガンドによる吸着量を維持・改善させることができる。
前記リガンドは吸着対象と親和性を有するものが適宜使用でき、アフィニティリガンド、荷電基、疎水性基などが例示でき、これらは単独で導入してもよく、複数を適宜組み合わせて導入してもよい。これらリガンドは、公知の方法によって導入でき、得られる吸着体は、アフィニティクロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、キレートクロマトグラフィー、疎水性相互作用クロマトグラフィーなどの各種クロマトグラフィー用のカラム充填剤として好適に用いることが出来る。また本発明の架橋ビーズ担体は、その細孔径の大きさから、抗体を目的物質とする分離精製に適しており、アフィニティリガンド、荷電基、疎水基などを導入した前記吸着体は、抗体精製に好ましく使用できる。
本発明において好ましいリガンドは、アフィニティリガンドである。アフィニティリガンドとしては、標的分子として抗体等に特異的に結合しうる特徴を有していれば特に限定されないが、ペプチド性、蛋白質性、または、合成化合物が好ましい。標的分子に対する特異性の視点からペプチド性または蛋白質性リガンドが更に好ましく、その内、抗体アフィニティリガンドがプロテインA、プロテインG、プロテインL、プロテインH、プロテインD、プロテインArp、プロテインFcγR、抗体結合性合成ペプチドリガンド及びそれら類縁物質であることが特に好ましい。なお本明細書においてリガンドとして使用するタンパク質は、それらの変異体も含む意味で使用する。天然物、遺伝子組み換え物等を制限なく使用することができ、一般に製造されている各種変異体を使用できる。抗体結合ドメイン及びその変異体を含むもの、融合蛋白質等であってもよい。例えば、抗体との結合性を改善するため、抗体結合性タンパク質が部位特異的に基材に固定化されるように配列を改変したもの(例えば、特許第4179517号公報、特開2008−214350号公報に記載のリジン残基の位置や数を制御したタンパク質など)を使用することもできる。
なおアフィニティリガンドの導入量は、公知の方法により求めることができる。
なお前記5%DBCは、吸着体を充填したカラムにpH7.4のリン酸塩緩衝液を通液した後、濃度1mg/mLのIgG水溶液を通液することによって測定できる。
また上記精製方法は、他のクロマトグラフィーと組み合わせることで、抗体の精製純度を更に高めることができる。
(実施例1)
粉末状のセルロース(旭化成ケミカルズ社製局方セルロースPH−F20JP)8.65gを112gの水に分散させ、4℃で保持した。そこに34.5wt%水酸化ナトリウム(ナカライテスク株式会社製)水溶液35gを添加し撹拌し、セルロース微分散液を得た。20分撹拌した後、水を16g添加し、水酸化ナトリウム濃度を7.0wt%、セルロース濃度を5.0wt%とし、15℃まで昇温し、セルローススラリーを得た。ソルビタンモノオレエートを9.2g含有した15℃の1,2−ジクロロベンゼン890gに得られたセルローススラリーを分散させ、セルロース液滴分散液を形成した。セルロース液滴分散液は内径85 mmの円筒型容器に入れ、撹拌には翼径45mmの2段タービン翼を用い、その翼間隔は75mmとした。600rpmで分散液を10分撹拌し、メタノールを150ml添加し、ビーズ状のセルロースを得た。なおこのビーズ形成時の温度は、セルロース液滴分散液の形成時の温度と同じにした。得られたビーズの粒子径はレーザ回折/散乱式粒子径分布測定装置(堀場社製LA−950)を用いてメジアン粒径を求めたところ90.2μmを示した。得られたセルロースビーズはメタノールで洗浄した後、水で洗浄した。回収したセルロースビーズの一部を2−メチル−2−プロパノールで置換し、凍結乾燥後、走査型電子顕微鏡(日立製作所S−800、以下SEMと称する)にて解析した。その結果、セルロースビーズは図1に示したような多孔質ビーズであることが確認された。
得られた残りのセルロースビーズを櫛目開き38μmと櫛目開き90μmメッシュを用いて篩分けし、38μmから90μmの範囲のビーズを集め、後述の方法で架橋反応を行った。得られた架橋セルロースビーズについて、後述の方法でカラム充填および測定を行うことによりゲル分配係数(Kav)を算出した。マーカー分子量12400のKav値は0.723、マーカー分子量67000のKav値は0.646、マーカー分子量115000のKav値は0.595、マーカー分子量440000のKav値は0.525を示した。各Kav値から排除限界分子量を計算したところ、6.0×1010を示した。
セルローススラリー温度を10℃まで上昇させることと1,2−ジクロロベンゼン温度を10℃とする以外は実施例1と同様の方法、条件により多孔質セルロースビーズを得た。その結果、得られたビーズの粒子メジアン径は91.4μmを示した。実施例1と同様の方法で架橋反応を行い、Kavを算出した。マーカー分子量12400のKav値は0.562、マーカー分子量67000のKav値は0.429、マーカー分子量115000のKav値は0.377、マーカー分子量440000のKav値は0.307、マーカー分子量660000のKav値は0.261を示した。各Kav値から排除限界分子量を計算したところ、2.4×107を示した。
セルローススラリー温度を20℃まで上昇させることと1,2−ジクロロベンゼン温度を20℃とする以外は実施例1と同様の方法、条件により多孔質セルロースビーズを得た。その結果、得られたビーズの粒子メジアン径は80.3μmを示した。実施例1と同様の方法で架橋反応を行い、Kavを算出した。マーカー分子量12400のKav値は0.645、マーカー分子量67000のKav値は0.528、マーカー分子量115000のKav値は0.487、マーカー分子量440000のKav値は0.400、マーカー分子量660000のKav値は0.374を示した。各Kav値から排除限界分子量を計算したところ、1.5×108を示した。
セルローススラリー温度と1,2−ジクロロベンゼン温度を4℃とする以外は実施例1と同様の方法、条件により多孔質セルロースビーズを得た。その結果、得られたビーズの粒子メジアン径は96.3μmを示した。実施例1と同様の方法で架橋反応を行い、Kavを算出した。マーカー分子量67000のKav値は0.377、マーカー分子量115000のKav値は0.335、マーカー分子量440000のKav値は0.179、マーカー分子量660000のKav値は0.146を示した。各Kav値から排除限界分子量を計算したところ、2.4×106を示した。
図3に実施例1から実施例4の粒子径分布を示したが、ビーズ形成温度が高くなるほどビーズ径は小さくなる。ビーズ形成温度を制御することで簡易に粒子径を制御することができた。また、図4に実施例1から実施例4のKav値を示したが、ビーズ形成温度によりKav値、排除限界分子量を制御することができた。Kav値はマーカータンパク質のビーズ内への拡散挙動を示しており、Kav値が大きいほどビーズ内にタンパク質が拡散しやすい。タンパク質拡散挙動はビーズ細孔径を反映しており、Kav値が大きいほど細孔径が大きいことを示している。よって、実施例1から実施例4はビーズ形成温度によりビーズ細孔径が制御できることを示している。
粉末状のセルロース8.65gを60gの水に分散させ、4℃で保持した。そこに31.9wt%水酸化ナトリウム水溶液27gを添加し撹拌した。20分撹拌した後、水を77g添加し、水酸化ナトリウム濃度を5.0wt%、セルロース濃度5.0wt%とする以外は実施例4と同様の方法、条件により多孔質セルロースビーズを得た。その結果、得られたビーズの粒子メジアン径は83.0μmを示した。
粉末状のセルロース8.65gを128gの水に分散させ、15℃で保持し、そこに34.5wt%水酸化ナトリウム水溶液35gを添加し、水酸化ナトリウム濃度を7wt%とする以外は実施例1と同じ方法、条件によりセルロースを得た。その結果、得られたセルロースは図2に示したようにビーズ状にはならなかった。
粉末状のセルロース8.65gを112gの水に分散させ、4℃で保持し、そこに30.3wt%水酸化ナトリウム水溶液51gを添加し、水酸化ナトリウム濃度を9wt%、セルロース濃度を5.0wt%とした。ソルビタンモノオレエートを9.2g含有した1,2−ジクロロベンゼン890g、4℃に得られたセルローススラリーを分散させ、セルロース液滴分散液を形成した。セルロース液滴分散液は内径85 mmの円筒型容器に入れ、撹拌には翼径45mmの2段タービン翼を用い、その翼間隔は75mmとした。600rpmで分散液を10分撹拌し、メタノールを150ml添加し、ビーズ状のセルロースを得た。この方法は国際公開WO2012−1212158号と同条件である。その結果、得られたビーズの粒子メジアン径は111.0μmを示し、実施例1と同様の方法で架橋反応を行い、Kavを算出した。マーカー分子量12400のKav値は0.518、マーカー分子量67000のKav値は0.356、マーカー分子量115000のKav値は0.311、マーカー分子量440000のKav値は0.152を示した。各Kav値から排除限界分子量を計算したところ、2.1×106を示した。得られたビーズのKav値、排除限界分子量は実施例1から実施例4の条件で得られたビーズのKav値、排除限界分子量よりも小さくなった。
<セルロースビーズの架橋>
各実施例にて得られた多孔質セルロースビーズ40mLを反応容器に移し、2N NaOH水溶液(ナカライテスク社製と蒸留水で調製)を24.4mL加え、40℃に調整した。ここに水素化ホウ素ナトリウム24.4mg、架橋剤としてグリセロールポリグリシジルエーテルを含有するデナコールEX−314(ナガセケムテックス社製)を6.0mL投入し、40℃で5時間攪拌した。反応終了後、吸引濾過をしながら、ビーズの20倍体積量以上の蒸留水で洗浄し、架橋セルロースビーズを得た。
(1)カラム充填
上記多孔質セルロースビーズをRO水に分散させ、1時間脱気した。脱気した多孔質セルロースビーズまたは吸着体を、線速105cm/hでカラム(GEヘルスケア・ジャパン社製Tricorn 10/300)に充填した。その後、pH7.5の溶出液(129mL)を線速26cm/hでカラムに通液した。
(2)マーカー添加
マーカーとして以下のものを用いた。
・Blue Dextran 2000(Pharmacia FIne Chemicals社製)
・Cytochrome C(Wako社製),分子量12400
・Bovine Serum Albumin(Wako社製),分子量67000
・IgG ヒト由来(SIGMA社製),分子量115000
・フェリチン(SIGMA社製),分子量440000
・Thyroglobulin(SIGMA社製),分子量660000
前記溶出液を線速26cm/hでカラムに通液しながら、上記マーカーをpH7.5のバッファーにて5mg/mLに薄めたものを、各々12μLずつ注入した。なお、マーカーの濃度は都度微調整した。
測定器として、DGU−20A3、SCL−10A、SPD−10A、LC−10AD、SIL−20AC、CTO−10AC(それぞれSHIMADZU社製)を用い、測定ソフトウェアとして、LCSolutionを用いた。液量測定には50mLメスシリンダーを用いた。
マーカー注入と同時にUVモニターおよび液量の測定を開始し、
1)ブルーデキストランの最初のピークに対応する液量をV0(mL)とした。
2)各マーカーのピークに対応する液量をVR(mL)とした。
3)カラム内の多孔質セルロースビーズまたは吸着体のトータルボリュームをVt(mL)とした。
4) 算出
各マーカーの分配係数(Kav)を次式で算出した。
Kav=(VR−V0)/(Vt−V0)
5)最大細孔径の算出
各マーカーのKavと分子量の対数をプロットし、直線性を示す部分から下記式の傾きと切片を求めた。
Kav=k×Ln(分子量)+b
次いで、求めた傾きと切片からKavが0の時の分子量、つまり排除限界分子量を求めた。
次にリガンド固定化用担体の改善(第2態様)に関する実施例を示す。第2態様に関する下記実施例において用いた又は得られたセルロース多孔質ビーズ、架橋ビーズ(以下、これらを総称して試料ビーズという場合がある)、及び架橋ビーズにリガンドを結合した吸着体の物性を以下のようにして決定した。
(1)カラム充填処理
試料ビーズをRO水(逆浸透膜精製水)で調製)に分散し、1時間脱気した。脱気した試料ビーズを、線速105cm/hでカラム(GEヘルスケア・ジャパン社製Tricorn 10/300)に充填した。その後、pH7.5の溶出液(129mL)を線速26cm/hでカラムに通液した。
・Blue Dextran 2000(Pharmacia FIne Chemicals社製)
・Thyroglobulin(SIGMA社製),MW660,000
・フェリチン(SIGMA社製),MW440,000
・IgG ヒト由来(SIGMA社製),MW115,000
・Bovine Serum Albumin(Wako社製),MW67,000
・Cytochrome C(Wako社製),MW12,400
・Bacitracin (Wako社製),MW1,400
機器名:DGU−20A3、SCL−10A、SPD−10A、LC−10AD、SIL−20AC、CTO−10AC(いずれも島津製作所製)。
ソフトウェア名:LCSolution
前記溶出液を線速26cm/hでカラムに通液しながら、上記マーカーをpH7.5のバッファーにて5mg/mLに薄めたものを、各々12μLずつ注入した。なお、マーカーの濃度は都度微調整した。マーカー注入と同時にUVモニターおよび液量の測定を開始した。
a)ブルーデキストランの最初のピークに対応する液量をV0(mL)とした。
b)各マーカーのピークに対応する液量をVR(mL)とした。
c)カラム内の試料ビーズのトータルボリュームをVt(mL)とした。
各マーカーのゲル相分配係数(Kav)を次式で算出した。
Kav=(VR−V0)/(Vt−V0)
各マーカーのKavと分子量の対数をプロットし、直線性を示す部分から下記式の傾きと切片を求めた。
Kav=k×Ln(分子量)+b 次いで、求めた傾きと切片からKavが0の時の分子量を求め、それを排除限界分子量とした。
収縮架橋反応前後のセルロース多孔質ビーズの全量を用いて、下記方法により、ゲル体積の総和を算出し、多糖類多孔質ビーズの収縮架橋前の多糖類多孔質ビーズのゲル体積V1、収縮架橋後の多糖類多孔質ビーズのゲル体積V2を求めた。
(ゲル体積測定法)
収縮架橋反応前または収縮架橋反応後の反応液を洗浄し、RO水で置換することでサンプルスラリーを調製した(ゲル体積濃度約30〜70体積%)。このスラリーを50mL遠沈管に加え、これを小型振動器 (SINFONIA TECHNOLOGY社製、VIBRATORY PACKER、VP-4D)上に固定し、上記ビーズ体積の変化がなくなるまで温度25℃で振動を与えた。その後、遠沈管の目盛りから上記ゲル体積V1、V2を測定し、上述の算出式に基づき、収縮率を求めた。
(1)溶液調製
下記A〜E液及び中和液を調製し、使用前に脱泡した。
A液:シグマ社製「Phosphate buffered saline」とRO水(逆浸透膜精製水)で調製)を用いてpH7.4のPBS緩衝液を調製した。
B液:酢酸、酢酸ナトリウム、およびRO水を用いてpH3.5の35mM酢酸ナトリウム水溶液を調製した。
C液:酢酸とRO水を用いて1M酢酸水溶液を調製した。
D液:バクスター社製ガンマガード(ポリクロナール抗体)と前記A液を用いて濃度1mg/mLのIgG水溶液を調製した。
E液:尿素とRO水で6M尿素水溶液を調製した。 中和液:トリス(ヒドロキシメチル)アミノメタンとRO水で2Mのトリス(ヒドロキシメチル)アミノメタンを調製した。
カラムクロマトグラフィー用装置として、AKTAexplorer100(GEヘルスケア社製)を用い、直径0.5cm、高さ15cmのカラムに、吸着体試料(架橋ビーズにリガンドを結合したもの)を3mL入れ、線速230cm/hで0.2MのNaCl水溶液(RO水使用)を15分通液して充填した。フラクションコレクターに15mlの採取用チューブをセットし、溶出液の採取用チューブについては、あらかじめ中和液を入れておいた。
前記カラムにA液を15mL通液し、次いでD液を150mL通液した。次いで、A液を21mL通液後、B液を12mL通液してIgGを溶出させた。次にC液を6mL、E液を6mL、A液を15mL通液した。なお各液の流速は1mL/分とし、吸着体との接触時間が3分となるようにした。
(4)動的吸着量
IgGが5%破過するまでに吸着体に吸着したIgG量と吸着体体積からIgGの動的吸着量(5%DBC)を求めた。
(1)試料調製
試料ビーズに純水を加えてスラリー(濃度約50体積%)を調製した。このスラリーの攪拌による均質化と、それに続く30分以上の減圧による脱泡とからなる均質・脱泡操作を3回繰り返して実施し、脱泡スラリーを得た。この操作とは別に、処理対象を純水に変えて、前記均質・脱法操作を90分以上実施し、脱泡水を得た。
5mLのHANKE SASS WOLF社製ルアロック付ディスポーザブルシリンジ(商標名:NORM−JECT)の先端にディスポーザブルフィルター(孔径5.00μm、親水性)を取り付けた。シリンジのピストンを外し、シリンジ後端側から脱泡水を約3mL投入し、この脱泡水が0mLの標線を下回らないうちに、脱泡スラリーを投入した。ディスポーザブルフィルターの2次側にアスピレーターを接続し、液面がビーズ面を下まわらない様に注意しながら、前記脱泡スラリーを吸引した。ビーズ面の約0.5mL上まで液面が下がったところで吸引を停止した。以降の作業は、液面がビーズ面を下回らないよう、前記脱泡水を適宜追加しながら実施した。振動を与えながら前記脱泡スラリーを追加またはビーズを除去し、ビーズ面を3mLの標線に合わせ、振動を与えてもビーズ面が低下しないことを確認した。ビーズが舞わないようゆっくり脱泡水を溢れるまで追加し、気泡が入らないように注意しながらピストンを挿入した(ビーズ充填シリンジ)。
レオテック社のFUDOH RHEO METERに10Kのロードセルを取り付け、変位速度のダイヤルを2cm/MINに合わせ、前記ビーズ充填シリンジをセットし、ピストンの変位を開始した。変位と応力との関係を記録し、下記式に基づき、20%圧縮応力を求めた。
20%圧縮応力=充填ビーズが20%圧縮された時の応力―ピストンがビーズ面に達する直前の応力
(1)カラム充填処理
試料ビーズ89.5mLをRO水に分散し、線速300cm/hでカラム(MILLIPORE社製、内径2.2cm)に充填した。
(2)測定
AKTApilot (GEヘルスケア社製)にカラムを装填し、流速5mL/分(線速度79cm/hr)でRO水を通液した。以降、5mL/分ずつ流速を上げていき、カラム入口圧が上昇し続け通液不能となった時(本試験では2MPaを超えた時)の線速度を圧密化線速とした。
粉末状のセルロース(旭化成ケミカルズ社製局方セルロース「PH−F20JP」)8.65gを112gの水に分散させ、4℃で保持した。そこに34.5wt%水酸化ナトリウム水溶液35gを添加し撹拌した。20分撹拌した後、水を16g添加し、水酸化ナトリウム濃度を7.0wt%とし、15℃まで昇温した。ソルビタンモノオレエートを9.2g含有する1,2−ジクロロベンゼン890gの溶液の温度を15℃に保ち、この溶液に前記で得られたセルロース微分散液を分散させた。翼径45mm、翼間隔75mmの2段タービン翼を備えた内径85mmの円筒型容器(以下、第1容器という)に前記分散液を入れ、速度600rpmで10分間撹拌し、ついでメタノールを150ml添加し、ビーズ状のセルロースを得た。得られたセルロースビーズをメタノールで洗浄した後、水で洗浄した。得られたセルロースビーズを櫛目開き38μmと櫛目開き90μmのメッシュを用いて篩分けし、38μm〜90μmのセルロース粒子を取得した。
(1)収縮架橋工程
製造例1で得られたセルロース多孔質ビーズ(水洗浄品)のゲル100mLをガラスフィルターの上に載せ、エタノールでリパルプした後、このエタノールを吸引除去する溶媒置換操作を4回実施した。エタノール量は、溶媒置換操作1回目〜3回目:233mL、溶媒置換操作4回目:167mLとした。溶媒置換操作後、翼径39mmのパドル翼を備えた内径85mmの円筒型容器(以下、第2容器という)に移し、同じ溶媒を加えて全体が149mLになる様に容量を調整した後、40℃に加温した。さらにエピクロロヒドリンを80mL加え、回転数200rpmで30分撹拌した。次いで17MのNaOH水溶液10mLと水86mLからなる混合液を添加し、回転数350rpmで1時間30分撹拌することでセルロース多孔質ビーズを収縮架橋させた(この反応を収縮架橋本反応という)。収縮架橋本反応液中のエピクロロヒドリン濃度は24.6体積%であり、有機溶媒比率(エタノール比率)は0.61であり、NaOH濃度は0.70Mであり、セルロース多孔質ビーズ濃度(スラリー濃度)は30.8体積%であった。17MのNaOH水溶液を9.6mL加えて回転数350rpmで1.5時間撹拌する追加処理を3回実施した後、濾過し、濾過物を20%エタノール水で洗浄し、ついで水で洗浄することによって途中架橋ビーズを得た。この収縮架橋工程による収縮率を求め、下記表1に示した。
得られた途中架橋ビーズ全量に水を加えて全体の容量を117mLに調整し、収縮架橋工程で用いた第2容器に移した後、温度40℃に加温した。硫酸ナトリウムを38g加え、回転数150rpmで10分間撹拌した後、エピクロロヒドリン33mLを加え、回転数250rpmで10分間撹拌した。次いで17MのNaOH水溶液を21mL加えて回転数300rpmで2.5時間撹拌し、最後に17MのNaOH水溶液5.1mLを追加してさらに2.5時間撹拌した。反応物を濾過し、濾過物を水洗することによって架橋ビーズを得た。得られた架橋ビーズ全量を、ガラス製三角フラスコに入れ、RO水で希釈して全量を200mLとした後、開口部にアルミニウム箔2枚を重ねて蓋をし、オートクレーブを用いて127℃で60分間加熱し、残存するエポキシ基をグリセリル基に変換した。室温まで放冷後、グラスフィルター上で200mLのRO水で洗浄した。オートクレーブ後のビーズを櫛目開き38μmと櫛目開き90μmのメッシュを用いて篩分けし、38μm〜90μmの架橋ビーズを取得した。
WO2012/133349号を参照して、配向制御型プロテインAとして、WO2012/133349号記載の改変Cドメイン5連結体を調製した。
追加架橋工程で得られた架橋ビーズ3.5mLを遠沈管に入れ、RO水を加えて、全量を6mLとした。これを25℃にてミックスローター(アズワン社製 ミックスローターMR−3)上に取り付けた後、撹拌した。次に過ヨウ素酸ナトリウムをRO水に溶解して、11.16mg/mLの過ヨウ素酸ナトリウム水溶液を2.0mL加え、25℃で1時間撹拌した。反応後、グラスフィルター(シバタ社製 11GP100)上で、濾液の電気伝導度が1μS/cm以下となるまでRO水で洗浄し、ホルミル基含有架橋ビーズを得た。洗浄濾液の電気伝導度は、導電率計(EUTECH INSTRUMENTS社製、ECTester10 Pure+)で測定した。
収縮架橋工程で使用したエタノールを表1に示す各有機溶媒に変更し、収縮架橋工程における有機溶媒比率、エピクロロヒドリン濃度、NaOH濃度、スラリー濃度(セルロース多孔質ビーズ濃度)を表1に示す値に変更する以外は実施例6と同様にした。結果を表1に示す。
(1)収縮架橋工程
製造例1で得られたセルロース多孔質ビーズ(水洗浄品)のゲル15mLをガラスフィルターの上に載せ、表2に示す特定の溶媒15mLでリパルプした後、この特定溶媒を吸引除去する溶媒置換操作を3回実施した。溶媒置換操作後、ゲル全量を遠沈管に入れ、同じ特定溶媒を加えて全体が17.5mLになる様に容量を調整し、さらにエピクロロヒドリンを8.7mL加えて一晩撹拌した。次いで水10.3mLと17MのNaOH水溶液2.1mLを添加し、温度40℃で1時間30分撹拌することでセルロース多孔質ビーズを収縮架橋させた(収縮架橋本反応)。収縮架橋本反応液中のエピクロロヒドリン濃度、有機溶媒比率、NaOH濃度、セルロース多孔質ビーズ濃度(スラリー濃度)を下記表2に示した。17MのNaOH水溶液を1.05mL加えて1.5時間撹拌し、ついで17MのNaOH水溶液を1.05mL加えて2時間撹拌する追加処理を実施した後、濾過し、濾過物を20%の特定溶媒水溶液で洗浄し、ついで水で洗浄することによって途中架橋ビーズを得た。この収縮架橋工程による収縮率を求め、下記表2に示した。
得られた途中架橋ビーズ全量を遠沈管に入れ、水を加えて全体の容量を17.5mLに調整し、温度40℃に加温した。硫酸ナトリウム5.67g、エピクロロヒドリン4.95mL、17MのNaOH水溶液3.14mL加えて温度40℃で2.5時間撹拌し、最後に17MのNaOH水溶液0.76mLを追加してさらに2.5時間撹拌した。反応物を濾過し、濾過物を水洗することによって架橋ビーズを得た。得られた架橋ビーズ全量を、ガラス製三角フラスコに入れ、RO水で希釈して全量を50mLとした後、開口部にアルミニウム箔2枚を重ねて蓋をし、オートクレーブを用いて127℃で60分間加熱した。室温まで放冷後、グラスフィルター上で50mLのRO水で洗浄し、残存するエポキシ基をグリセリル基に変換した。オートクレーブ後のビーズを櫛目開き38μmと櫛目開き90μmのメッシュを用いて篩分けし、38μm〜90μmの吸着体を取得した。
WO2011/118699号の実施例を参照して、改変型プロテインAとして、WO2011/118699号記載のアルカリ耐性を有する改変Cドメイン5連結体を調製した。
追加架橋工程で得られた架橋多孔質セルロースビーズ5mLを遠沈管に入れ、RO水を加えて、全量を7.5mLとした。これを25℃にてミックスローター(アズワン社製 ミックスローターMR−3)上に取り付けた後、撹拌した。次に過ヨウ素酸ナトリウムをRO水に溶解して、12.84mg/mLの過ヨウ素酸ナトリウム水溶液を2.5mL加え、25℃で1時間撹拌した。反応後、グラスフィルター(シバタ社製 11GP100)上で、濾液の電気伝導度が1μS/cm以下となるまでRO水で洗浄し、ホルミル基含有架橋多孔質セルロースビーズを得た。洗浄濾液の電気伝導度は、導電率計(EUTECH INSTRUMENTS社製、ECTester10 Pure+)で測定した。
収縮架橋工程で使用する溶媒を表3に示すものに変更する以外は、実施例9〜10と同様に実施した。結果を表3に示す。また収縮率と20%圧縮応力の関係を図5に示す。
(1)架橋工程1回目
製造例1で得られたセルロース多孔質ビーズ(水洗浄品)のゲル20mLをガラスフィルターの上に乗せ、RO水でリパルプした後、RO水を吸引除去した。このビース全量を遠沈管に入れ、2MのNaOH水溶液を12.2mL加え混合した。さらにグリセロールポリグリシジルエーテル(ナガセケムテックス社製デナコールEX314)6.6mLと硫酸ナトリウム7.6gを加えて、温度40℃で5時間撹拌することでセルロース多孔質ビーズを架橋させた。その後、濾過し、濾過物を水で洗浄することによって途中架橋ビーズを得た。
得られた途中架橋ビース全量を遠沈管に入れ、2MのNaOH水溶液を12.2mL加え混合した。さらにグリセロールポリグリシジルエーテル6.6mLと硫酸ナトリウム7.6gを加えて、温度40℃で5時間撹拌後、濾過し、濾過物を水で洗浄することによって架橋ビーズを得た。得られた架橋ビーズ全量を、ガラス製三角フラスコに入れ、RO水で希釈して全量を50mLとした後、開口部にアルミニウム箔2枚を重ねて蓋をし、オートクレーブを用いて127℃で60分間加熱した。室温まで放冷後、グラスフィルター上で50mLのRO水で洗浄し、残存するエポキシ基をグリセリル基に変換した。オートクレーブ後のビーズを櫛目開き38μmと櫛目開き90μmのメッシュを用いて篩分けし、38μmから90μmの架橋ビーズを取得した。架橋後の収縮率は0%であった。
Claims (15)
- a)アルカリ水溶液とセルロースとを混合して−5℃〜10℃のセルロース微分散液を作製し、
b)セルロース微分散液に水を加えてセルローススラリーとした後、
c)セルローススラリーを昇温し、
d)昇温したセルローススラリーを凝固溶媒に接触させ、
セルロース微分散液とセルローススラリーの温度差が1℃以上、30℃以下であることを特徴とする、多孔質セルロースビーズの製造方法。 - 凝固時の温度が、セルローススラリーまたはセルローススラリーの液滴分散液体の温度に対して、±10℃以内である請求項1に記載の多孔質セルロースビーズの製造方法。
- セルロース微分散液のアルカリ濃度が8wt%以上10wt%以下である、請求項1または2に記載の多孔質セルロースビーズの製造方法。
- セルローススラリーのアルカリ濃度が5wt%以上である、請求項1〜3のいずれか一項に記載の多孔質セルロースビーズの製造方法。
- セルローススラリーを作製する温度が4℃以上20℃以下である、請求項1〜4のいずれか一項に記載の多孔質セルロースビーズの製造方法。
- 前記セルローススラリーを分散媒である非水溶性液体に液―液分散し液滴を作製した後、該液―液分散液を凝固溶媒に接触させる、請求項1〜5のいずれか一項に記載の多孔質セルロースビーズの製造方法。
- 前記セルローススラリーのセルロースの濃度が1〜7wt%である、請求項1〜6のいずれか一項に記載の多孔質セルロースビーズの製造方法。
- 前記セルロースが再生セルロース、結晶性セルロース、微結晶性セルロース、または酢酸セルロースである、請求項1〜7のいずれか一項に記載の多孔質セルロースビーズの製造方法。
- 前記セルロースの重合度が1000以下である、請求項8に記載の多孔質セルロースビーズの製造方法。
- 前記非水溶性液体がジクロロベンゼン、ヘキサン、酢酸エチル、炭素数6〜12の直鎖状飽和脂肪酸、炭素数16〜24の不飽和脂肪酸、融点が100℃以下の動植物油脂類、水素添加動植物油、動植物油脂類やその水素添加物の高融点画分を分別精製した分別油、飽和脂肪酸トリグリセリド類、食用ワックス類、微細藻類由来油脂類、微生物油脂類、中鎖脂肪酸トリグリセリド類、または不飽和脂肪酸トリグリセリド類である、請求項6〜9のいずれか一項に記載の多孔質セルロースビーズの製造方法。
- 前記凝固溶媒がアルコール類またはグリコール類を含有する、請求項1〜9のいずれか一項に記載の多孔質セルロースビーズの製造方法。
- 前記アルコール類がイソブタノール、2−ブタノール、sec−ブタノール、2−メチル−2−プロパノール、1−プロパノール、2−プロパノール、エタノール、及びメタノールからなる群より選択される1種以上である、請求項11に記載の多孔質セルロースビーズの製造方法。
- 前記グリコール類がグリセロール、エチレングリコール、及びプロピレングリコールからなる群より選択される1種以上である、請求項11に記載の多孔質セルロースビーズの製造方法。
- 排除限界分子量が1.0×106〜1.0×1011である、請求項1〜13のいずれか一項に記載の多孔質セルロースビーズの製造方法。
- メジアン粒子径が50μmから100μmである、請求項14に記載の多孔質セルロースビーズの製造方法。
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