JP6226956B2 - 微生物培養試料中の微生物を検出および同定するための方法、システムならびにデバイス - Google Patents
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Description
本明細書において、「微生物培養試料」という用語は、培養培地(例えば、試料中に存在すると推測される1以上の微生物の増殖を支持することができる、血液培養液等)中に処理された、培養培地と混合された、または培養培地と組み合わされた微生物を含有する可能性を持つ、「臨床」または「産業用」試料を含有する組成物を指す。より具体的には、本発明の実施態様により、臨床試料(例えば、血液、糞便、尿または脳脊髄液等)または産業製品試料(例えば、食物、環境中の綿棒またはスポンジ、水、化粧品、衛生用品、医薬品)、または、動物もしくはヒトにより使用または消費されることが意図される他の製品のいずれかにおける微生物の増殖を支持することができる培地を含有する微生物培養試料中の微生物を検出するための方法、システムおよびデバイスが提示される。
−培養物の生存能力を維持する必要性(微生物との複合体形成は、増殖を阻害しない);
−磁性ペレットが形成された時点でそれを確実に再現性良く分散させることにより、SERSおよび磁性試薬を、継続的に試料と相互作用させること;
−SERS−HNWアッセイシグナルを、標的濃度の継続的な変化に対応して、経時的に増加および減少させること;および
−要求される試薬量に桁違いの費用がかかり、および/または、全体量を表すペレットを形成することは不可能であろうと当初予測される、血液培養および産業応用において通常用いられるような大容量で、HNWアッセイを行うことができること(どんな合理的な大きさの磁場も、局所の微小環境から磁性粒子を引き出すのみであることが予測される)
に対応できることは何も示唆されていない。
本発明の実施態様は、培養試料中の微生物を検出および同定するための方法、システムならびにデバイスを目的とする。図1に関連して、通常、当該プロセスには、複数の指標粒子、結合メンバーおよび磁気捕捉粒子を管に入れるステップと、1以上の微生物を含有する可能性のある試料を添加するステップとが含まれる。当該管はまた、微生物の選択増殖または付加的増殖に役立つ培養物、または、増殖培地を含んでも良い。次いで、当該試料をインキュベートし、所定の期間、攪拌する。インキュベーションの間に選択された時点で、または既定のスケジュールで、ペレットが形成されるように管に磁場を適用する。次いで、当該ペレットに、検出および分析される、検出可能なシグナル(例えば、SERSスペクトル)を発する光を当てて調べる。次いで、当該ペレットを分散させ、次の所定の時点で当該プロセスを繰り返しても良い。
本開示の方法、システムおよびデバイスでの使用に適した微生物培養ボトル、チューブ、シリンジ、バイアル、管等(例えば、富化管および検出バイアル)は、一部の実施態様において、ガラスまたはプラスチックから作製されても良い。一部のアプリケーションにおいて、重層的なプラスチックが、ガス透過性を制御するために望ましい。微生物培養管が重層的なプラスチックで作製されている実施態様において、当該ボトルは、射出成形またはブロー成形されていても良く、および、ナイロン、エチレンビニルアルコール(EVOH)、ポリエチレンビニルアルコールまたはそれらのコポリマーもしくは混合物の中間層により分離される、ポリエステル、ポリプロピレン、ポリエチレン、ポリ塩化ビニル、ポリカーボネート、ポリエチレンテレフタレート(PET)、環状オレフィンコポリマー(COC)、またはそれらの任意のコポリマーもしくは混合物の内層および外層を有していても良い。しかしながら、当該管は、他の実施態様においては、重層的なものでなくとも良く、かつ、類似の技術(例えば、射出成形またはブロー成形)を用いて形成されていても良いことを理解されたい。一部のアプリケーションにおいて、当該管の構成要素は、管/試料の相互作用を制御するための、または物理的特性を制御するための表面コーティングまたは化学的な技法で処理されていても良い。一部の実施態様において、当該管は、可視光に対して透明であっても良いが、特定の実施態様においては、そのような透明性は必要とされていない。さらに一部の実施態様において、本開示の管は、滅菌対応であっても良い。さらなる一部の実施態様において、当該管は、好気性または嫌気性培養に適する。1つの実施態様において、当該管は、ガス透過性である。さらに、当該管は、その長さに沿って、沈殿形成および光学的分析を向上させ得る、一定した壁の厚さを含んでいても良い。
本明細書において「指標粒子」とは、試料を除去することなく(例えば、洗浄工程の実施等)、培養試料中で直接検出することができるシグナルを発生させることができる任意の粒子であっても良い。例えば、指標粒子は、(例えば、光源と共に)調査された際に、任意の光学的シグナル(例えば、蛍光またはラマンまたは光学的な画像)を発生させても良い。指標粒子の例としては、SERS活性粒子、量子ドット、近赤外フルオロフォア、または近赤外蛍光粒子が挙げられる。
本明細書において、「特異的結合メンバー」という用語およびその文法的な派生は、少なくとも1つの別れた、相補的な結合分子が存在する分子を指す。特異的結合メンバーは、特異的な分子、例えば対象の微生物に結合する、付着する、またはさもなければ関連する分子である。特定のタイプの特異的結合メンバーが特定のタイプの分子に結合する場合、当該特異的結合メンバーは、「特異的結合の対」と呼称される。例えば、抗体は、抗原に特異的に結合する。従って、「特異的結合の対」は、当該分子のうち1つは化学的または物理的手段を介して、第二の分子に特異的に結合する場合の2つの異なる分子を指す。この意味において、検証される微生物は、特異的結合の対の相互メンバーである。検証される特定の微生物との使用に適した代表的な結合メンバーを、以下に提示する。
本開示実施態様での使用に適した磁気捕捉粒子は、約15%〜約100%の磁気物質(例えば、約15%マグネタイト、約20%マグネタイト、約25%マグネタイト、約30%マグネタイト、約35%マグネタイト、約40%マグネタイト、約45%マグネタイト、約50%マグネタイト、約55%マグネタイト、約60%マグネタイト、約65%マグネタイト、約70%マグネタイト、約75%マグネタイト、約80%マグネタイト、約85%マグネタイト、約90%マグネタイト、約95%マグネタイト、および約15%〜約100%の間の任意の整数のマグネタイト、を含むマグネタイト)から構成されても良い。さらに、当該磁気捕捉粒子は、約100nm〜約12ミクロンの範囲の直径を有しても良い。一部の実施態様において、磁気捕捉粒子は、約400nm〜約8ミクロンの範囲の直径を有する。他の実施態様において、磁気捕捉粒子は、約800nm〜約4ミクロンの範囲の直径を有する。さらに他の実施態様において、磁気捕捉粒子は、約1.6ミクロン〜約3.5ミクロンの範囲(限定されないが、約1.6、約1.7、約1.8、約1.9、約2.0、約2.1、約2.2、約2.3、約2.4、約2.5、約2.6、約2.7、約2.8、約2.9、約3.0、約3.1、約3.2、および約3.3、約3.4、約3.5、および約4.5ミクロンを含む)の直径を有する。磁気捕捉粒子としての使用に適した代表的な粒子は、Bangs Laboratories, Inc. (Fishers, Indiana)、Life Technologies (Carlsbad, CA)、または、Polyscience Laboratories (Warrington, Pennsylvania)から入手することができる。
図24において、臨床試料および産業試料中の病原体の自動化検出に対する、微生物培養試料中の微生物増殖のリアルタイムモニターをもたらすリアルタイムシステム150の実施態様を図示する。システム150には、複数の培養管154を温度制御された筐体内に保持する、カルーセル152が含まれる。例えば、25までの微生物培養管を用いても良い。この実施態様において、管154は、カルーセル152の辺縁周辺に置かれ、それにより、各管は、沈殿および読み取りステーション156へとプログラム可能な頻度(例えば、10〜60分毎に1回の読み取り)で次々に回転して送り出される。沈殿および読み取りステーション156には、光学的読み取りヘッド(落射照明とシグナル採取のための適切なフィルターとレンズを備える)と共に沈殿を形成させるための磁石アセンブリが含まれる。例えば、785nmの波長で安定したレーザーにより照明がなされても良く、採取されたシグナルは、ラマン分光に適した分光計で検出される。所与の試料の沈殿および読み取りの後、カルーセル152は回転し、カルーセル中の次の試料を沈殿および読み取りステーションへ156と送り出す。この順序は、カルーセル152中の全ての試料が読み取られるまで続き、この時点でカルーセルがスピンモードに入り、カルーセルは、次の測定サイクルまで連続的に回転する。カルーセルならびに、沈殿および読み取りステーションは、ロッキングプラットフォームから伸長するアームに乗っている。得られた「オフセットロッキング」モーションにより、線形モーションおよびロッキングモーションの両方を介した攪拌がなされる。ロッキングプラットフォームは、実験期間の間、全ての測定サイクルの段階に対して選択された頻度で操作する。攪拌は複数の目的に役立つ。第一に、1つの測定サイクルの最後から、次の開始まで、SERSおよび磁性粒子と、試料および培養培地を確実に混合し、結合メンバー−微生物−指標粒子複合体を形成させる。第二に、沈殿が読み取られた後、磁性粒子を溶液中に分散させる。第三に、沈殿の間、攪拌は、液体中の磁性粒子を試料管内の様々な空間点から局所的な磁場領域へと移動させ、局所的な磁場の外側の試料の領域の磁性粒子の回収を確実にする。最後に、粒子(例えば、樹脂、木炭、または炭酸カルシウム)を含有する試料中で、沈殿の前および沈殿中の攪拌により、これらの粒子が検出領域へと沈んでしまい、光学シグナルを干渉してしまうことを防ぐことができる。標的生物の濃度を富化プロセスで増加させながら、例えばSERS技術等の光学による微生物の検出および同定が、当該技術の検出閾値に微生物濃度が達するとすぐに、行われる。培養の間連続的にSERSシグナルをモニターすることにより、最小限必要とされる培養時間を用いることができ、病原体または微生物が検出および同定された際には、ユーザーに機器が自動的にアラートを確実に出すことができる。
a)インキュベーター252での動的な混合のための攪拌
b)操作者が装着のためおよび取り外すために、インキュベーター252の正面の外側にチューブを伸長させる
c)沈殿/読み取りアセンブリ254まで、インキュベーター252の後部の外側にチューブを伸長させる
d)安定した物質(例えば、培地または試料の固体成分)を分散させるためにチューブ258を攪拌する
e)ペレットを形成させるために、沈殿/読み取りアセンブリ254でチューブ258および磁石288を攪拌する
f)データ採取のために読み取りヘッド290の上にチューブ258を置く
g)サンプルIDのバーコードリーダーの上にチューブラベルを置く
h)内部標準、画像ベースの検出法、または遠隔診断に対して、ペレットを可視化するためにカメラの上にペレットを置く
i)読み取りの後に、ペレットを分散させるため、チューブ258を攪拌する
j)インキュベーターフロントドア266を操作する
k)インキュベーター後部ドア268を操作する
l)温度勾配を減少させるために、インキュベーター252内の空気を循環させる
図49において、試薬量を最小限化し、大容量を表す(例えば、250mLまで)読み取りを得るように開発された、本発明の一実施態様による攪拌および沈殿法を図示する。これは主に、磁場の適用の間、その長軸方向に沿って培養管を攪拌することにより達成される。ペレットは、長軸方向に沿って、チューブの側面上で形成される。サンプル対チューブ量(例えば、1:2)、チューブの長さ/幅のアスペクト比(例えば、7:1)および攪拌パラメーターの結果の組合せが、パフォーマンスの最適化のために選択されても良い。より大きな容量から粒子を確実に磁石に近づけることにより、攪拌は、より効果的にペレット形成を促進する。さらに、磁場方向から離れた力を適用することにより、攪拌は、非複合体化の細胞、微生物および緩い個体(例えば血液培養試料中の樹脂)、ペレットの外部に維持することを助ける。
1つの例示的な実施態様によると、Salmonellaの検出および同定のための培養試料が、前述の実施態様と連動して提示される。1つの実施態様において、Salmonellaは最初に、富化管内で、非選択的培地で培養され、次いで、検出試薬および第二の選択培地を含有する検出バイアルへと生物学的に封じ込めされた状態で移送される。多くの場合、Salmonellaの検証には、任意選択的な補充がなされた培地を培地調製管に添加することが含まれる。次いで、当該培地を富化管内に分注し、試料を富化管内へ添加する。任意選択的に、試料は、富化管への添加の前にホモジナイズ(例えば、消化または混合により)される。この場合において、ホモジナイザーへの試料の添加と共に、培地調製管からの培地が添加される。ホモジナイズの後、試料を、富化管へと移し、管をフタで閉める。培地および試料が富化管に添加され、富化管のフタが閉められた時点で、一連の管理同定の目的のために管上のバーコードが読み取られても良い。次いで、富化管があらかじめ決められた期間、インキュベートされる。インキュベーションの後で、富化管および検出バイアルが、バーコードリーダーでスキャンされても良い。検出バイアルには、選択培地および、Salmonellaの検出に特異的な検出試薬が含まれる。検出バイアル中の培地が脱水されている場合においては、再構成液が検出バイアルに添加され、当該バイアルは混合のために転倒混和される。次いで、富化容器を傾け、所望量の試料(例えば、100μL)で各貯水容器を満たす。検出バイアルを富化管へと挿入し、生物学的封じ込めでの検出バイアルへの試料の移送のために、開口部内に針をはめ込む。次いで、検出バイアルを、試料のインキュベーションおよび自動化検証(試料の沈殿および光学的分析を含む)のために、リアルタイム自動化システム内に挿入する。陽性試料が検出されると、検出バイアルは取り出され、バーコードスキャナーでスキャンされ、およびさらなる処理のために送られても良い。
図93〜95において、本発明の実施態様と併せて用いられ得る再構成ステーションを図示する。上述のように、再構成液は、検出バイアル中の培地が脱水されている場合に、検出バイアルに添加されても良い。再構成ステーションにより、所望量の測定が容易となり、検出バイアル内に保持される真空状態を保ったまま、再構成液を添加することができる。図93において、再構成ステーション350がブラダー352またはピンチバルブ354を備えた類似の第二の貯水容器を含む場合の実施態様を図示する。再構成ステーション350は、液体がメインの貯水容器から、チュービング358を通って、バルブ354が空いていればブラダー352へと流れるように構成される、自重送り装置である。例えば、レバー356を時計回りに回して、バルブ354でチュービングを閉鎖するために、チュービング358をはめ込む、または締め付けても良い。次いで、ユーザーは、アクセスポート内に配置された針をストッパー364へとはめ込み、チューブ内へと再構成液を引き込むために、検出バイアル360を、アクセスポート362内へと挿入することができる。検出バイアル360をアクセスポート362から取り出した後、ストッパー364は、その中の真空状態を維持するために検出バイアルを密封するように構成される。さらに、ブラダー352は、再構成ステーション350が常に準備状態となるように、自動的に再充填するように構成される。
本発明の実施態様を用いて、細菌血症および真菌血症から生じる血流感染疑いを検出することができる。通常、複数の血液試料は、対象(例えば、患者)の別々の血管から、異なる時間の間隔で、対象の症状(例えば、発熱の所見またはいくつかの他の初診等)に応じて採取される。血液試料量(例えば、成人に対して約3mL〜約10mL、小児試料にたいしては1mL)は、採取の後、血液培養増殖ボトルへと配置することができる。各採取サイクルの典型として、1つの試料は、好気性生物に適した血液培養増殖ボトルへと配置され、そして1つの試料は、嫌気性生物に適した血液培養増殖ボトルへと配置される。
本発明の実施態様での使用に適した代表的な培養培地を、以下に提示する。当業者であれば、本開示の製剤は、特定の実施内容の必要性に応じて改変し得ることが認識される。従って、特定のアプリケーションに応じて、これらの製剤に、CO2、O2、N2およびその組合せを付加し、好気性、嫌気性、または微好気性の増殖に適した環境を作り出すことができる。任意選択的に、一部の培養培地は、培養培地から、培養の間に産生された代謝物、または対象の血液試料中に存在し得る抗生物質または免疫成分等の干渉物を単離する(すなわち、取り出す)ための吸着剤を含有する。例えば、米国特許第5,624,814号(その全体で参照により本明細書に援用される)を参照のこと。例えば、BD BACTEC(商標)Media Plus Anaerobic/F、BD BACTEC(商標)Plus Aerobic/Fおよび、BD BACTEC(商標)PEDS Plus/F(それぞれ、Becton,Dickinson,and Company,Franklin Lakes,New Jerseyより、入手できる)は全て、血液培養培地中の微生物増殖を阻害し得る抗生物質の単離のための樹脂を含有している。当該樹脂は血液のいずれの成分よりも直径が十分に大きく、血液中に存在する哺乳類細胞よりも固い。培養吸着剤の他の例は、食物試料および環境試料中のSalmonellaを選択培養するために用いられている、様々なTetrathionate Broth中に存在する沈殿炭酸カルシウム(1%〜2.5%w/v)である。炭酸カルシウム微粒子は、Salmonellaの増殖によるテトラチオン酸塩の還元により産生される硫酸を中性化する。
BD BACTEC(商標)Myco/F溶解培養バイアルは、好気性微生物の増殖および検出をサポートする。より具体的には、BD BACTEC(商標)Myco/F溶解培養バイアルは、血液検体から抗酸菌、ならびに、血液および滅菌体液から酵母ならびに真菌を採取するための、好気性血液培養培地に対する添加物として用いるための、非選択的培養培地である。
定性BACTEC(商標)12B抗酸菌培地は、臨床検体、唾液、胃、尿、組織、粘液膿性検体、他の体液および他の呼吸分泌物からの抗酸菌の培養および回収、他の抗酸菌からのMycobacterium tuberculosis複合体の区別、ならびに、M.tuberculosisの薬剤感受性テストのために用いることができる。
The BACTEC(商標)LYTIC/10 Anaerobic/F The BACTEC(商標)LYTIC/10 Anaerobic/F培地もまた、本発明の実施態様に適している。
Soybean−Casein Digest Broth
BACTEC(商標)Plus Aerobic/F、および、Plus Anaerobic/F培地は、血液からの微生物(細菌および酵母)の培養および回収のための定性法を提供し、10mLまでの血液の添加ができるように設計されている。これらの大容量サンプルの添加により、全体的に高い検出率と、検出までの時間短縮が得られる。
BD BACTEC(商標)Standard Anaerobic/F Culture Vials Soybean−Casein Digest培養液により、血液からの嫌気性微生物の培養および回収のための定性法が提供される。
BACTEC(商標)培養バイアルのタイプである、PEDS PLUS(商標)/F(CO2との濃縮ダイズ−カゼイン消化物培養液)は、好気培養での使用が意図されており、通常、3mL量未満である小児および他の血液検体からの、好気性微生物(主に、細菌および酵母)の培養および回収を提供する。
BACTEC(商標)Standard/10 Aerobic/F培養バイアル(CO2との濃縮ダイズ−カゼイン消化物培養液)は、好気性血液培養での使用が意図されており、血液からの好気性微生物(主に、細菌および酵母)の培養および回収を提供する。
BacT/ALERT(商標)FAN、BacT/ALERT(商標)FN、およびBacT/ALERT(商標)SN培養バイアル(bioMerieux、Durham、NC)は、嫌気性血液培養での使用が意図されており、血液からの嫌気性微生物(主に、細菌および酵母)の培養および回収を提供する。
ピルビン酸塩有する改変緩衝ペプトン水(mBPWp)およびアクリフラビン−セフスロジン−バンコマイシン(ACV)サプリメントは、FDA Bacteriological Analytical Manual (BAM)により規定された、下痢性大腸菌の検出のための試料富化の培地である。
Frasier Broth BaseおよびFraser Broth Supplementを用いて、Listeria種を選択的に富化し、検出する。The USDA Microbiological Laboratory Guidebook (MLG)は、赤肉、鶏肉、卵および環境試料中のL.monocytogenesの検証の際には、Frasier Brothを使用することを推奨している(USDA MLG Chapter 8.07、2009年8月3日に改訂)。
Tetrathionate Base Broth、Hajnaは、Salmonellaの選択的富化のために設計された培地である。Tetrathionateは、富化の直前にヨウ素およびヨウ化カリウムを添加することにより作製される。The USDA Microbiological Laboratory Manualは、牛豚肉、鶏肉、殺菌卵およびナマズ製品におけるSalmonellaの選択的富化にこの培養液を規定している(USDA MLG Chapter 4.05。2011年1月20日に改訂)。
上述の培養培地に加え、Salmonellaの培養または維持に、いくつかの培養液(限定されないが、以下を含む)が当分野に一般的に知られている。脳心臓浸出培養液、ブリリアントグリーンサルファ富化(BD Difco(商標))、改変ブリリアントグリーン培養液(BD Difco(商標))、緩衝ペプトン水(BD Difco(商標))、緩衝ペプトンカゼイン水(BD Difco(商標))、 Dey−Engly培養液(BD Difco(商標))、EE培養液 Mossel Enrichment(BD Difco(商標))、グラム陰性培養液(BD Difco(商標))、グラム陰性培養液Hajna(BD Difco(商標))、ラクトース培養液(BD Difco(商標))、Letheen培養液(BD Difco(商標))、リジンデカルボキシラーゼ培養液、M培養液(BD Difco(商標))、マロン酸培養液(BD Difco(商標))、MR−VP培養液、栄養培養液、One Broth−Salmonella(Oxoid)、フェノールレッド糖質培養液(BD BBL(商標))、シアン化カリウム培養液、紫糖質培養液(BD BBL(商標))、RapidChek(登録商標)Salmonella第一培地(SDIX)、サプリメント補充RapidChek(登録商標)SELECT(商標)Salmonella第一(SDIX)、RapidChek(登録商標)SELECT(商標)Salmonella第二培地(SDIX)、Rappaport−Vassiliadis培地、改変Rappaport−Vassiliadis培地、Rappaport−Vassiliadis R10培養液(BD Difco(商標))、Rappaport−Vassiliadis Salmonella(RVS)ダイズ培養液(BD Difco(商標))、Rappaport−Vassiliadis Soyaペプトン培養液、セレナイト培養液(BD Difco(商標))、セレナイト−F培養液(BD BBL(商標))、セレナイトシスチン培養液(BD Difco(商標))、テトラチオネート培養液、テトラチオネート(Hajna)培養液、トリプトン培養液、トリプチカーゼソイ培養液、トリプチカーゼソイ培養液(硫酸鉄含有)、Universal Preenrichment培養液、Universal Preenrichment培養液(クエン酸第二鉄アンモニウム無し)および尿素培養液。
上述の培養培地に加え、Listeriaの培養または維持に、いくつかの培養液(限定されないが、以下を含む)が当分野に一般的に知られている。脳心臓浸出(BHI)培養液、緩衝Listeria富化培養液(BLEB)、栄養培養液、紫糖質醗酵培養液ベース(M13015)、デキストロース、エスクリン、マルトース、ラムノース、マンニトールおよびキシロースの0.5%溶液含有、SIM培地、トリプチカーゼソイ培養液(0.6%酵母抽出物含有)、トリプトース培養液、改変Vermont大学(UVM)培養液、モルホリンプロパンスルホン酸緩衝Listeria富化培養液(MOPS−BLEB)、Demi−Frasier、Fraser培養液、Listeria富化培養液(BD Difco(商標)、Oxoid)、One Broth−Listeria(Oxoid)、RapidChek(登録商標)Listeria培地(サプリメント補充)(SDIX)およびRapidChek(登録商標)Listeria F.A.S.T.(商標)培地(SDIX)。
検証される試料中に存在する1以上の微生物の量は、濃度として表すことができる。濃度は、例えば、「ハイ」または「イイエ」応答等の、陽性または陰性型の結果として、定性的に表すことができ、それにより、微生物の存在の有無、または定性値として示すことができる。さらに、培養試料中の所与の微生物の濃度は、相対値、または絶対量(例えば、「定量値」として)表すこともできる。
図54において、大腸菌増殖の検出までの時間を、本発明の様々な実施態様での使用に適したSERS−HNW試薬を用いてまたは用いずに、血液培養試料に対して比較した実験の結果を示す。
図55において、Salmonella Typhimuriumの増殖を、実験の経過中にモニターし、沈殿が生物増殖にネガティブな影響を与えるかを測定した実験の結果を示す。
微生物増殖およびアッセイ実施に対する反復沈殿の効果を検証する実験において、Salmonella Kentucky(ATCC9263)のシングルコロニーを、BD BBL(商標)栄養寒天画線プレートからピックアップし、6mLのSDIX RapidChek(登録商標)Salmonella SELECT(商標)第一培養培地(60μLのファージサプリメントを含有)中で42℃、一晩培養した。一次培養の後、90%の第二および10%の第一SDIX RapidChek(登録商標)Salmonella SELECT(商標)培地からなる、5mLの第二培養培地を調整した。並行して、第一培地へ1:100希釈した一次培養物を調整し、125μLの希釈物を、5mLの第二培地、16μLのSERSタグ、および20μLの磁性ビーズを含有するBD MGIT(商標)チューブへと接種した。一次培養の最終濃度の1:4000希釈物では、およそ2.5×105CFU/mLの播種濃度を得られた。次いで、チューブを、2つのカルーセルベースのシステム(図24を参照のこと)のうちの1つに入れ、24時間、42℃、約1Hzのスピードで線形攪拌した。読み取り頻度を除く全ての実験パラメーターは、2つの機器の間で同じ値で維持した。各機器に対する読み取り頻度は、5または2読み取り/時間のいずれかにセットした。
再現可能な沈殿形成は、再現可能なアッセイシグナルを得るために重要な工程である。本実験は、ペレットを形成する2つの異なる方法を用いる。第一は(固定磁石)、磁石が定位置に固定されて保持され、一方で、チューブは、攪拌スローの幅いっぱいに、磁石の上を移動する。第二の好ましい構成では(連結)、図49に示すように、磁石はチューブに沿って動く。一連の実験において、SERSタグは、トシル活性化磁性粒子に共有結合され、SERS−磁性ビーズ前複合体(PC)を形成した。前複合体化されたビーズは、SERS表面上のチオール(−SH)基と、磁性粒子の表面上のトシル(Tos)基との反応を介した、Dynabeads(登録商標)M−280トシル−活性化磁性粒子へのSERS粒子の共有結合により調整された。PCは、SERSシグナルに関してペレットが調査され得る、ペレット形成テストに対するモデルシステムとしての役割を果たす。水中、ならびに市販のSalmonellaに対する第二培地(SDIX RapidChek(登録商標)Salmonella SELECT(商標))のPCのペレット形成を、固定磁石および連結配置に対して比較した。これらのテストは、平らなベッドシステム構造(例えば、図25を参照のこと)を用いて実施された。
図60において、シングルプレックス形式に対する、血液培養試料(添加血液)内での微生物の検出および同定の例を示す。本実験において、Candida albicans(ATCC 10231)を、30℃、振とう培養で、シングルコロニーからSabouraudデキストロース培養液で一晩培養して増殖させた。培養物を希釈し、ヒト血液中へ、3cfu/mlまたは0cfu/ml(陰性対照として)で、接種した。陽性試料および陰性試料を、検出試薬無しでBACTEC(商標)Std 10 Aerobic/Fボトルへと接種し、ならびに、検出試薬とBACTEC(商標)Std 10 Aerobic/F培地を含有するチューブへ接種した(SERSタグおよび磁性粒子は、Virostat 6411抗Candida albicans抗体に結合されている)。培地に対する血液全体の比率は1:8であった。接種物を、計数のためにBBL(商標)CHROMagar(商標)へと置いた。検出チューブは、カルーセルシステム150(図24を参照のこと)へと挿入し、BACTEC(商標)ボトルは、35℃での増殖の間のリアルタイムモニタリングのために、BACTEC(商標)FX機器へと挿入された。陽性SERSチューブは18時間で検出され、BACTEC(商標)ボトルは30時間で陽性となった。ヒト血液における本シングルプレックスアッセイのためのBACTEC(商標)FXの前に、少なくとも12時間で、SERSシグナルにより検出がなされ、IDが提示される。
図61において、マルチプレックス形式に対する、血液培養試料(添加血液)内での、微生物の検出および同定の例を示す。C.albicans、大腸菌0157、K.pneumoniaeおよびS.aureusの検出に対する、当該4プレックスアッセイにおいて、4つの異なるラマンレポーターを有するSERSタグはそれぞれ、4つの生物のうちの1つに対する抗体に結合されている。(SERSタグに結合された抗体 Virostat6411ポリクローナル抗C.albicans、Biodesign MAV119−499モノクローナル抗−大腸菌O157:H7、バイオデザインC55573Mモノクローナル抗Staphylococcusおよび、Santa Cruz Biotechnology sc−80861モノクローナル抗K.pneumoniae)。4つの微生物に対する捕捉抗体に結合された磁性ビーズと共に、4つの全てのタイプのSERSタグがアッセイ混合物中に存在している。アッセイに存在している磁性ビーズは、Dynal(登録商標)抗大腸菌0157磁性粒子(Life Technologies catalog #710−03)、Virostat 6411 ポリクローナル抗−C.albicansに結合されたDynal(登録商標)M280ビーズ、バイオデザインC55573Mモノクローナル抗Staphylococcusに結合されたDynal(登録商標)M280ビーズ、および、アフィニティーバイオ試薬PA1−7226ポリクローナル抗K.pneumoniaeに結合されたDynal(登録商標)M280ビーズからなる磁性ビーズのプールであった。
図62において、共感染モデルに対する、血液培養試料(添加試料)内の微生物のマルチプレックス検出および同定の例を示す。大腸菌O157:H7(ATCC700728)および、S.epidermidis(ATCC55133)を、BD栄養培養液中で一晩、振とう培養、37℃でシングルコロニーから別々に増殖させた。培養物を希釈し、ウサギ血液中に、大腸菌O157:H7に対しては2.6cfu/ml、S.epidermidisに対しては12.5 cfu/mlで共接種した。陽性試料および陰性試料を、BACTEC(商標)Std 10 Aerobic/Fボトル(SERS試薬無し)へと接種し、ならびに、実施例6に記述される、検出試薬とBACTEC(商標)Std 10 Aerobic/F培地を含有するチューブへ接種した(Virostat6411、Biodesign MAV119−499、Biodesign C55573MおよびSanta Cruz Biotechnology sc−80861に結合されたSERSタグ、ならびに、Virostat 6411、Biodesign C55573Mおよび、Affinity Bioreagents PA1−7226に結合された、Dynal(登録商標)抗大腸菌O157磁性粒子、および、Dynal(登録商標)M280粒子)。血液は、BACTEC(商標)培地で1:8に希釈された。接種物を、計数のためにBBL(商標)CHROMagar(登録商標)へと置いた。SERS試薬を含有する検出チューブは、カルーセルシステム150(図24を参照のこと)へと挿入し、一方で、SERS試薬の無いBACTEC(商標)ボトルは、35℃での増殖の間のリアルタイムモニタリングのために、BACTEC(商標)FX機器へと挿入された。大腸菌O157:H7は、7.9時間でSERSにより検出および同定された一方、S.epidermidisは、11.4時間でSERSにより検出および同定された。BACTEC(商標)ボトルは10.4時間で陽性であったが、同定の情報はまったく提示しなかった。
本実施例において、大腸菌O157:H7(ATCC700728)をグリセロールストックから溶解し、1:8の比率でBACTEC(商標)Plus Aerobic/F培地へと希釈したウサギ血液に接種した。BACTEC(商標)Plus Aerobic/F培地は、特別の処理の必要なく、生物の回収を増加させるための樹脂粒子(17%w/v)を含有している。接種された血液と培地は、プレートカウントにより計数され、5cfu/mlの接種を確認した。試料を、SERSおよび磁性粒子結合体(Biodesign MAV119−499および、G5V119−500抗体)を含有する、3つの複製チューブに置いた。検出チューブは35℃での増殖の間のリアルタイムモニタリングのために、カルーセルシステム150(図24を参照のこと)へと挿入された。図63に結果を示す。カルーセルシステムは、樹脂の存在下で、効率的にペレットを形成し、調査することができた。
沈殿の間の攪拌により、大容量試料であっても、または、低濃度の磁性ビーズでも、磁性粒子が効率的に捕捉された。
カルーセルシステム(図24を参照のこと)において、磁性ペレットを形成させ、全液体量からの磁性複合体を、局所的な磁場を確実に通過させながら、試料を攪拌する。アッセイ中のペレット形成をモニターするために、レーザー調査の間、カメラはペレットの画像を撮影する。
この例において、本発明の実施態様に従う、レーザー、光学、および分光計を必要としない、微生物試料内での微生物の検出法が開示される。この方法には、一連のSERS−HNWアッセイの間、ペレットの形成をモニターするための、読み取りの間に画像を撮影するカメラの使用が含まれる。
図68A、68Bおよび68Cにおいて、消化された牛ひき肉、ホウレンソウの水溶液(リンセート、rinsate)および乳固形分中の大腸菌O157の検出のための、カルーセルシステム(図24を参照のこと)で得られた代表的なデータを示す。
図69において、熱ストレスを与えたS.Enteritidis(ATCC13076)が、牛ひき肉を添加した培養培地中のリアルタイム増殖中に検出された例を示す。Salmonella Enteritidisを、シングルコロニーから振とう培養により、37℃、栄養培養液中、一晩培養して増殖させた。培養物を栄養培養液中で1:100希釈し、20分間、54℃で熱ストレスを与えた。熱ストレスを与えた試料をさらに、栄養培養液で200cfu/mlにまで希釈した。生の牛ひき肉の25gの試料2つを、希釈し、熱ストレスを与えたS.Enteritidisの培養物の1mlのアリコートで接種した。接種材料を、栄養寒天プレート上に、計数のために置いた。接種された牛ひき肉試料は、接種材料が完全に混ざるように、2分間、消化バッグ内で、手でマッサージした。SDIX RapidChek(登録商標)Salmonella SELECT(商標)第一培地(サプリメント含有)を225ml、消化バッグ内の接種試料へと添加した。陰性対照試料は、SDIX RapidChek(登録商標)Salmonella SELECT(商標)第一培地(サプリメント含有)の225mlに入れた25gの生の牛ひき肉で調整された。次いで、各消化バッグを、2分間、Seward Stomacher(登録商標)400で消化させた。次いで、各消化バッグをおよそ22時間、42℃のインキュベーターに置いた。次いで、富化された第一培養物の試料100μlを、4.5 mlのSDIX Salmonella第二培地、0.4mlのSDIX RapidChek(登録商標)Salmonella SELECT(商標)第一培地およびアッセイ試薬を含有するチューブへと添加した。次いで、チューブを、8時間、42℃での増殖の間、リアルタイムモニタリングのために、カルーセルシステム(図24を参照)へと挿入した。陽性試料はおよそ2時間以内に検出され、一方、陰性試料からは、フラットな検出曲線を得た。
図70において、ステンレススチールクーポン(coupon)上でのListeria monocytogenes(ATCC19115)の検出を示す。Listeria monocytogenes(ATCC19115)を、シングルコロニーから、30℃、振とう培養中で一晩、脳心臓浸出培養液中で培養して増殖させた。培養物は、PBS+5%ミルク中で、5x104または0cfu/mlまで希釈した。0.1mlのアリコートを、1“x1”のステンレススチールクーポン上に置き、一晩、空気乾燥させた。翌日、D/E中性化培養液で濡らした綿棒で、何度か表面をぬぐった。次いで、綿棒を、チューブに入った5mlのSDIXListeria培地(サプリメント、SERSタグ、および磁性粒子を含有)に添加した。次いで、30℃での増殖の間のリアルタイムモニタリングのために、カルーセルシステム(図24を参照)にチューブを挿入した。陽性試料はおよそ19〜27時間の間に検出された一方、陰性試料は、フラットな検出曲線となった。
本実施例において、Salmonellaを、線形攪拌およびフラットベッドシステム(図25を参照のこと)を用いて検出した。Salmonella Typhimurium(ATCC 14028)および、Salmonella Enteritidis(ATCC 13076)を、SDIX RapidChek(登録商標)Salmonella SELECT(商標)第一培地(サプリメント含有)中にて、42℃で一晩、別々に培養して増殖させた。各株を、別のSDIX Salmonella第二培地のロットで、1:100希釈した。第二培地中の各株の開始接種は、栄養寒天プレートのプレートカウントにより、1x107CFU/mLであると測定された。各株を、抗Salmonella抗体(Virostat0701)で結合された磁性粒子およびSERSタグを含有するチューブへ、二重(duplicates)で接種した。これらのチューブを、2つの陰性試料(SDIX第二培地および結合SERSタグおよび磁性粒子、Salmonella無し)と共に、42℃での第二富化の間のモニタリングのために、機器に置いた。
本実施例において、同一のSalmonellaアッセイを、異なる攪拌方法(チューブの軸に沿った線形往復運動およびロッキング振動)を用いた2つのカルーセルシステム(図24を参照のこと)で実施した。Salmonella Enteritidis(ATCC13076)およびSalmonella Kentucky(ATCC9263)を、SDIX RapidChek(登録商標)Salmonella SELECT(商標)第一培地(サプリメント含有)中、42℃で一晩、別々に培養して増殖させた。各株を、別のSDIX Salmonella第二培地のロットで、1:100希釈した。第二培地中の各株の開始接種は、栄養寒天プレートのプレートカウントにより、1x107CFU/mLであると測定された。各株を、抗Salmonella抗体(Virostat0701より入手)で結合されたSERSタグおよび磁性粒子を含有するチューブへ、二重(duplicates)で接種した。これらのチューブを、42℃での第二富化の間のモニタリングのために、カルーセルシステムに置いた。各機器は、1時間毎に2回読み取りを行い、30秒間沈殿させ、そして1Hzで攪拌した。
本実施例において、SERSベースのリアルタイムアッセイと、試料処理テスト(通常、従来的なガスセンサーによる陽性血液培養試料の検出の後に行われる)との適合性を検証した。これらの検証を用いて、陽性血液培養ボトルの中から、生物の同定を提示しても良い。これらの検証には、標準チューブコアグラーゼアッセイ、ラテックス凝集アッセイ、グラム染色、発色培地の発色、マニュアルの抗生物質感受性テストおよびプレート培養上の抗真菌阻害が挙げられる。
本実施例は、攪拌の間中、磁石がチューブと共に動き、チューブに対して同じ相対位置に維持されるように、チューブに磁石が連結された構造(例えば、図49参照)を用いた沈殿に関連する。一連の実験において、SERSタグはトシル活性化磁性粒子に共有結合され、SERS−磁性ビーズの前複合体(PC)を形成した。前複合体化されたビーズは、磁性粒子の表面のトシル(Tos)基と、SERS表面上のチオール(−SH)基の反応を介した、Dynabeads(登録商標)M−280トシル活性化磁性粒子への、SERS粒子の共有結合により調製される。PCは、ペレットが、SERSシグナルに関して調査され得る、ペレット形成テストに対するモデルシステムとしての役割を果たす。本実施例において、Salmonellaに対する市販の第二培地(SDIX RapidChek(登録商標)Salmonella SELECT(商標))中でのPCのペレット形成を、様々な攪拌頻度および沈殿時間を用いて比較した。これらのテストは、チューブに面するN極を有する単一棒磁石(図52を参照のこと)と共に、フラットベッドシステム構造(図25を参照のこと)を用いて行われた。
本実験は、様々な攪拌スロー(振幅)および頻度を用いた、ペレットの完全な分散に必要とされる時間の測定に関する。各場合において、ペレットは、磁石がチューブと共に動き、攪拌の間中、チューブに対して同じ相対位置に維持されるように磁石に連結されたチューブの構造(図49を参照)を用いて形成された。本実施例に用いられた磁石は、図52に示されるように、試料チューブに面するN極を有する単一棒磁石であった。
本実施例により、SERSタグの代わりに、近赤外(NIR)蛍光粒子を用いた培養と併せた、均質な(homogenous)洗浄無しのアッセイの実施可能性を示す。本実施例において、蛍光シリカナノ粒子は、シラン−NIR色素結合物(蛍光シグナルを発するため)およびチオール化シラン(抗体結合のための化学的手段を得るため)の両方を組み込む、改変Stober増殖法を用いて組み立てられた。粒子は、透過電子顕微鏡(TEM)、UV/Vis消光分光法、および蛍光分光法により特徴が明らかにされ、そして、比較的単分散であり、輝いていることが判明した。図96において、NIR蛍光シリカナノ粒子のTEM画像(スケールバーは200nm)を図示し、図97において、NIR蛍光ナノ粒子の蛍光スペクトル(OD0.5)および標準ES/HB SERSタグのラマンスペクトル(OD1.2)を図示する。蛍光ナノ粒子は、SERSタグに対する蛍光ナノ粒子濃度、表面積および質量の差を補うために改変された標準的な結合プロトコールを用いて、Listeria抗体と結合された。結合蛍光シリカナノ粒子は、カルーセルシステム150(図24を参照)上で、ホウレンソウとキャベツの10%w/vの混合試料を用いて、Listeria HNWアッセイで検証された。対照のテストは、ホウレンソウおよびキャベツ試料の両方を有するSERSタグを用いて実施された。
Claims (15)
- 試料中の1以上の微生物を検出するための方法であって、
(a)1以上の微生物を含有することが推測される試料を準備するステップと、
(b)前記試料をアッセイバイアル中に配置するステップと、ここで、前記アッセイバイアルには、培養試料を形成するための微生物増殖を支持することができる培養培地、および、前記1以上の微生物に対するアフィニティーを有する特異的結合メンバーの少なくとも1つと関連する、1以上の指標粒子を含有する試薬、ならびに、前記1以上の微生物に対するアフィニティーを有する特異的結合メンバーの少なくとも1つと関連する、1以上の磁気捕捉粒子が配置され、ここで、前記指標粒子と関連する前記結合メンバーは、前記磁気捕捉粒子と関連する前記結合メンバーと同じであっても異なっていても良く、
(c)前記1以上の微生物が試料中に存在する場合、磁気捕捉粒子−微生物−指標粒子の複合体を形成させるために、予め決められた期間、前記培養試料をインキュベートするステップと、
(d)前記アッセイバイアルを攪拌するステップと、
(e)前記複合体が前記アッセイバイアルの局所領域へと移動するように誘導するために、前記磁気捕捉粒子−微生物−指標粒子の複合体を磁場に曝すステップと、
(f)前記指標粒子が前記試料中の前記1以上の微生物を検出するための検出可能なシグナルを発するように誘導するために、前記アッセイバイアルの前記局所領域を光学的に監視するステップと、
(g)前記磁気捕捉粒子−微生物−指標粒子の複合体を分散させるステップと、
(h)(c)〜(g)のステップを1回以上繰り返すステップと
を含む方法。 - (i)(c)〜(g)のステップの繰り返しが、一定時間間隔で起こる、
(ii)ステップ(c)および(d)が、同時に起こる、または、
(iii)ステップ(e)が、磁気捕捉粒子−微生物−指標粒子の複合体を含有するペレットを形成する、請求項1に記載の方法であって、任意選択的に、前記ペレットが、視覚的手段または光学的手段を用いて検出可能である、請求項1に記載の方法。 - 前記試料が、血液試料、食物試料または環境試料を含有する、請求項1に記載の方法。
- 前記試料をアッセイバイアルに配置するステップは、所望量の前記試料を任意の培養培地と共に、管から移動させるステップを含む請求項1に記載の方法であって、ここで、前記管は、
培養試料をその中に受け取るための容器と、ここで、当該容器は開放口と閉鎖口を有し、
前記容器の開放口を液密な接続ではめ込むように構成されたフタと、
前記フタに連結され、かつ、少なくとも1つの貯水容器を含むバスケットと、ここで、前記バスケットは、前記容器の開放口と閉鎖口の間に配置され、前記貯水容器は、その中に培養試料の容積を有するように構成され、
前記フタとともにはめ込まれる少なくとも1つの針アセンブリと、ここで、前記針アセンブリは、前記貯水容器内に伸長する針を備える、
ここで、前記針は、前記貯水容器に含有される試料を選択的に引き抜くように構成され、かつ、前記針は、試料の、前記貯水容器から前記バイアルへの生物学的に封じ込められた移送のために、バイアルをはめ込むようにさらに構成される、
方法。 - 前記試料をアッセイバイアルに配置するステップは、前記磁性粒子および指標粒子が存在していない管から、生物学的に封じ込められた状態で、任意の培養培地と共に前記試料を抽出するステップを含む、請求項1に記載の方法。
- 所望量の試料を測定するための管であって、
請求項1に記載の方法において使用するための培養試料をその中に受け取るための容器と、ここで、当該容器は開放口と閉鎖口を有し、
前記容器の開放口を液密な接続ではめ込むように構成されたフタと、
前記フタに連結され、かつ、少なくとも1つの貯水容器を含むバスケットと、ここで、前記バスケットは、前記容器の開放口と閉鎖口の間に配置され、前記貯水容器は、その中に培養試料の容積を有するように構成され、
前記フタとともにはめ込まれる少なくとも1つの針アセンブリと、ここで、前記針アセンブリは、前記貯水容器内に伸長する針を備える、
を備え、
ここで、前記針は、前記貯水容器に含有される試料を選択的に引き抜くように構成され、かつ、前記針は、試料の、前記貯水容器から前記バイアルへの生物学的に封じ込められた移送のために、バイアルをはめ込むようにさらに構成される、管。 - (i)前記容器が、可視光に対して透過性の物質から構築されている、または、
(ii)前記針が、前記針を覆う防御スリーブ管を備え、前記防御スリーブ管は、前記バイアルが下方に押され、前記針とはめ込まれた際に圧縮されるように構成され、かつ、前記防御スリーブ管は、前記生物学的封じ込められた移送を可能とするために、前記針とのはめ込みから前記バイアルが引き出される際に、前記針を覆うように、その元の形へと戻るように構成される、
請求項6に記載の管。 - 前記バスケットが、
(i)第一の貯水容器および第二の貯水容器、ここで、前記フタが前記第一の貯水容器内に伸長する第一の針を有する第一の針アセンブリおよび前記第二の貯水容器内に伸長する第二の針を有する第二の針アセンブリを規定する、
(ii)前記バスケットを介した液体の排出を補助するように構成されるリブ、または、
(iii)前記容器が直立位置へと戻った後に、過剰量の試料が前記容器へと排出されるように構成される、少なくとも1つの穴
を規定し、任意選択的に、前記第一の針および第一の貯水容器が、第一のタイプのアッセイでの使用のために構成され、前記第二の針および前記第二の貯水容器が、第二のタイプのアッセイでの使用のために構成され、かつ、第一のタイプのアッセイが、第二のタイプのアッセイとは異なり、好ましくは、前記第一の貯水容器が、およそ5mLを保持するように構成され、および、ここで、前記第二の貯水容器が、およそ100μLを保持するように構成される、請求項6に記載の管。 - (i)前記容器が傾けられた際に、前記試料が前記少なくとも1つの貯水容器に容易に入ることができるようにするために、前記少なくとも1つの貯水容器の上にヘッドスペース、
(ii)前記容器を出るガス性副産物をろ過するためのフィルターを受け入れ、かつ、はめ込むための開口部を規定する、前記フタの底面から伸長するベントポスト、または、
(iii)前記フタの底面から外側に伸長する第一のはめ込みポストと、前記バスケットの上面から外側に伸長する第二のはめ込みポスト、ここで、前記第一のはめ込みポストは、前記第二のはめ込みポストと並び、かつ、はめ込むように構成される、
をさらに備える、請求項6に記載の管。 - 前記フタが、
(i)前記容器内に圧力が高まることを防ぐために、無害なガス性の副産物を前記容器から逃がすためのベントを規定する、
(ii)前記バイアルの特定のキャップとの合致を可能とするように構成された、少なくとも1つの適合させた開口部を規定する、または、
(iii)少なくとも1つのバックオフ機構をさらに備え、前記バックオフ機構の付加的な取り外し無しに前記フタが外れてしまうことを防ぐ、
請求項6に記載の管。 - 請求項1に記載の方法において、所望量の試料を測定するための容器とともに使用するためのフタアセンブリであって、
容器の開口部を液密な接続ではめ込むように構成されるフタと、ここで、前記フタは任意選択的にガスケットを含み、
前記フタに連結され、少なくとも1つの貯水容器を備えるバスケットと、ここで、前記貯水容器は、その中に試料の容積を有するように構成され、
前記フタとともにはめ込まれる少なくとも1つの針アセンブリと、ここで、前記針アセンブリは、前記貯水容器内に伸長する針を備える、
を備え、
ここで、前記針は、試料の、前記貯水容器から前記バイアルへの生物学的に封じ込められた移送のために、バイアルをはめ込むように構成される、
フタアセンブリ。 - 前記バスケットが、第一の貯水容器および第二の貯水容器を規定し、かつ、前記フタは、前記第一の貯水容器内に伸長する第一の針を有する第一の針アセンブリおよび前記第二の貯水容器内に伸長する第二の針を有する第二の針アセンブリを規定する、または、前記バスケットが、前記バスケットを介した液体の排出を補助するように構成されるリブを規定する、請求項11に記載のフタアセンブリ。
- 前記第一の針および前記第一の貯水容器が、第一のタイプのアッセイでの使用のために構成され、前記第二の針および前記第二の貯水容器が、第二のタイプのアッセイでの使用のために構成され、かつ、第一のタイプのアッセイは、前記第二のタイプのアッセイとは異なり、かつ、任意選択的に、前記第一の貯水容器が、およそ5mLを保持するように構成され、かつ、前記第二の貯水容器が、およそ100μLを保持するように構成される、請求項12に記載のフタアセンブリ。
- 前記フタが、
(i)無害なガス性の副産物を逃がすためのベントを規定する、
(ii)前記バイアルの特定のキャップとの合致を可能とするように構成された、少なくとも1つの適合させた開口部を規定する、または、
(iii)少なくとも1つのバックオフ機構をさらに備え、前記バックオフ機構の付加的な取り外し無しに前記フタが外れてしまうことを防ぐ、
請求項11に記載のフタアセンブリ。 - (i)前記フタの底面から伸長するベントポストをさらに備え、前記ベントポストが、ガス性副産物のろ過のためのフィルターを受け入れ、かつ、はめ込むための開口部を規定する、
(ii)前記フタの底面から外側に伸長する第一のはめ込みポストと、前記バスケットの上面から外側に伸長する第二のはめ込みポストとをさらに備え、前記第一のはめ込みポストが、前記第二のはめ込みポストと並び、かつ、はめ込むように構成される、または、
(iii)前記針が、前記針を覆う防御スリーブ管を備え、前記防御スリーブ管は、前記バイアルが下方に押され、前記針とはめ込まれた際に圧縮されるように構成され、かつ、前記防御スリーブ管は、前記生物学的封じ込められた移送を可能とするために、前記針とのはめ込みから前記バイアルが引き出される際に、前記針を覆うように、その元の形へと戻るように構成される、
請求項11に記載のフタアセンブリ。
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