JP6158097B2 - 炎症を抑制するためのペプチド - Google Patents
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Description
本出願は、2011年3月18日に出願された米国仮特許出願第61/454,342号の優先権を主張し、その仮特許出願は、引用することにより本明細書の一部をなすものとする。
本開示は、炎症を低減または抑制し、神経炎症を低減または抑制し、神経学的状態を処置するためのペプチド、方法、および組成物に関する。
配列表は、電子形式でのみ本出願の出願と共に提供され、引用することにより本明細書の一部をなすものとする。配列表ファイル9111−WO00_ASFILED_SequenceListing_Text.txtは、2012年3月15日に作成され、サイズは10,938バイトである。
X1−X2−X3−X4−X5(配列番号1)
(式中、X1は、疎水性側鎖を有するアミノ酸または正荷電側鎖を有するアミノ酸から選択され、X2は、疎水性側鎖を有するアミノ酸、正荷電側鎖を有するアミノ酸、または極性非荷電側鎖を有するアミノ酸から選択され、X3は、正荷電側鎖を有するアミノ酸から選択され、X4は、正荷電側鎖を有するアミノ酸から選択され、X5は、疎水性側鎖を有するアミノ酸または正荷電側鎖を有するアミノ酸から選択される)。この態様のいくつかの実施形態は、以下の式IIのペプチドを提供する:
X1−X2−X3−X4−X5−X6−X7−X8−X9(配列番号17)
(式中、X1、X2、X3、X4、およびX5は上記で言及された通りであり、X6、X7、X8、およびX9のそれぞれは、任意のアミノ酸から非依存的に選択され、場合により、欠如している)。
X1−X2−X3−X4−X5(配列番号1)
(式中、X1は、疎水性側鎖を有するアミノ酸または正荷電側鎖を有するアミノ酸から選択され、X2は、疎水性側鎖を有するアミノ酸、正荷電側鎖を有するアミノ酸、または極性非荷電側鎖を有するアミノ酸から選択され、X3は、正荷電側鎖を有するアミノ酸から選択され、X4は、正荷電側鎖を有するアミノ酸から選択され、X5は、疎水性側鎖を有するアミノ酸または正荷電側鎖を有するアミノ酸から選択される)。
X1−X2−X3−X4−X5(配列番号1)
(式中、X1は、疎水性側鎖を有するアミノ酸または正荷電側鎖を有するアミノ酸から選択され、X2は、疎水性側鎖を有するアミノ酸、正荷電側鎖を有するアミノ酸、または極性非荷電側鎖を有するアミノ酸から選択され、X3は、正荷電側鎖を有するアミノ酸から選択され、X4は、正荷電側鎖を有するアミノ酸から選択され、X5は、疎水性側鎖を有するアミノ酸または正荷電側鎖を有するアミノ酸から選択される)。
X1−X2−X3−X4−X5(配列番号1)
(式中、X1は、疎水性側鎖を有するアミノ酸または正荷電側鎖を有するアミノ酸から選択され、X2は、疎水性側鎖を有するアミノ酸、正荷電側鎖を有するアミノ酸、または極性非荷電側鎖を有するアミノ酸から選択され、X3は、正荷電側鎖を有するアミノ酸から選択され、X4は、正荷電側鎖を有するアミノ酸から選択され、X5は、疎水性側鎖を有するアミノ酸または正荷電側鎖を有するアミノ酸から選択される)。
X1−X2−X3−X4−X5(配列番号1)
(式中、X1は、疎水性側鎖を有するアミノ酸または正荷電側鎖を有するアミノ酸から選択され、X2は、疎水性側鎖を有するアミノ酸、正荷電側鎖を有するアミノ酸、または極性非荷電側鎖を有するアミノ酸から選択され、X3は、正荷電側鎖を有するアミノ酸から選択され、X4は、正荷電側鎖を有するアミノ酸から選択され、X5は、疎水性側鎖を有するアミノ酸または正荷電側鎖を有するアミノ酸から選択される)。いくつかの実施形態は、X1がVまたはRであり、X2がS、A、またはHであり、X3がKまたはRであり、X4がKまたはRであり、X5がR、L、またはKである、ペプチドを提供する。
X1−X2−X3−X4−X5−X6−X7−X8−X9(配列番号17)
(式中、X1、X2、X3、X4、およびX5は上記で言及された通りであり、X6、X7、X8、およびX9のそれぞれは、任意のアミノ酸から非依存的に選択され、場合により欠如している)。そのような実施形態では、式IIのペプチドは、5個のアミノ酸残基、6個のアミノ酸残基、7個のアミノ酸残基、8個のアミノ酸残基、または9個のアミノ酸残基を含むことができる。
X1−X2−X3−X4−X5(配列番号1)
(式中、X1は、疎水性側鎖を有するアミノ酸または正荷電側鎖を有するアミノ酸から選択され、X2は、疎水性側鎖を有するアミノ酸、正荷電側鎖を有するアミノ酸、または極性非荷電側鎖を有するアミノ酸から選択され、X3は、正荷電側鎖を有するアミノ酸から選択され、X4は、正荷電側鎖を有するアミノ酸から選択され、X5は、疎水性側鎖を有するアミノ酸または正荷電側鎖を有するアミノ酸から選択される)。いくつかの実施形態は、X1がVまたはRであり、X2がS、A、またはHであり、X3がKまたはRであり、X4がKまたはRであり、X5がR、L、またはKである、ペプチドを提供する。
[実施例]
ペプチドなどの化合物のグリア活性化を抑制する能力を評価するために培養細胞を用いるin vitro方法が開発されている。Laskowitzら、(2001)Exp.Neurol.,167:74〜85。グリア細胞培養物を増殖させ、標準条件下で維持した。培養グリア細胞には、初代マウス混合グリア細胞培養物、マウスBV−2ミクログリア細胞、およびヒトC3ミクログリア細胞が挙げられ得る。接着性グリア細胞を、血清を除去するためにOptiMEM(登録商標)培地(Invitrogen Corp.から入手できる)で洗浄し、ペプチドを含有する新鮮なOptiMEM(登録商標)培地で覆った。
実施例1に記載されているように、ミクログリア活性化の抑制を評価するために、マウスBV−2培養物を調製して、用いた。BV−2細胞の複製試料を、ペプチドなしで、0.3μM、3μM、もしくは30μMのいずれかでのApoE模倣ペプチド(VSKRR、配列番号3)と、または0.3μM、3μM、もしくは30μMのいずれかでの陰性対照ペプチド(VSKKR、配列番号13)とインキュベートした。実施例1に記載されているように、各試料をLPSで刺激し、TNF−α産生について評価した。図1に示されているように、試験された各用量におけるApoE模倣ペプチド(配列番号3)での処理は、未処理の細胞、または陰性対照ペプチド(配列番号13)で処理された細胞と比べて、TNF−α産生の減少を生じた。そのデータは、本明細書に開示されたペプチドが、炎症促進性メディエータの放出を低下させるのに有用であったことを示している。
外傷性脳傷害についての実験マウスモデルを開発した。Laskowitzら(2010)J.Neurotrauma、27:1983〜95。雄マウス(週齢12〜14)を、麻酔導入箱において、酸素中4.3%イソフルランで90秒間、麻酔した。気管を挿管し、酸素と窒素の50/50混合物中1.4%イソフルランで肺を機械的に換気した。表面加熱/冷却を用いて、体温を37℃に維持した。正中切開によって頭蓋の先端を露出させ、解剖学的ランドマークを同定し、凹面の3mm金属ディスクを頭蓋表面に、きっちりと正中線で、かつちょうど尾からブレグマへ、接着剤で固定した。ディスクは、衝撃のエネルギーを拡散し、陥没頭蓋骨骨折の発生率を10%未満へ低下させた。全身麻酔後、マウスを、定位装置内に配置し、頭蓋を露出させた。3mmの頭変位で6.8±0.2m/秒で発射される空気圧衝撃装置(直径:2.0mm、Air−Power,Inc.から入手できる)を用いて、ディスク表面への単一正中線衝撃を送達した。
実施例3に記載されているように、外傷性脳傷害が誘導されてから2時間後、さらには6時間後に、ApoE模倣ペプチド(配列番号3、0.05mg/kgまたは0.2mg/kg)または担体(食塩水)のいずれかをマウス群に尾静脈内注射した。各マウスを、実施例3に記載されているように、傷害前および傷害後に測定されたロトロッド潜時により前庭運動機能について試験した。0.05mg/kgまたは0.2mg/kgのApoE模倣ペプチド(配列番号3)で処理された動物は、ロトロッド潜時の増加によって反映されているように、担体処理と比較して、前庭運動パフォーマンスの有意な向上を示した。図2参照。効果は、5日間の試験期間を通して持続した。データは、本明細書に開示されたペプチドが、外傷性脳傷害を処置するのに有用であることを示している。
実施例3に記載されているように、外傷性脳傷害が誘導されてから2時間後、さらには6時間後に、ApoE模倣ペプチド(配列番号4、0.05mg/kg)または担体(食塩水)のいずれかをマウス群に尾静脈内注射した。各マウスを、実施例3に記載されているように、傷害前および傷害後に測定されたロトロッド潜時により前庭運動機能について試験した。0.05mg/kgのApoE模倣ペプチド(配列番号4)で処理された動物は、ロトロッド潜時の増加によって反映されているように、前庭運動パフォーマンスが向上した。図3参照。効果は、5日間の試験期間を通して持続した。実施例3に記載されているように、外傷性脳傷害が誘導されてから2時間後、さらには6時間後に、ApoE模倣ペプチド(配列番号4、0.05mg/kgまたは0.2mg/kg)または担体(食塩水)のいずれかを他のマウス群に尾静脈内注射した。各マウスを、実施例3に記載されているように、モーリス水迷路を用いて、傷害後28日目、29日目、30日目、および31日目に認知神経科学的パフォーマンスについて試験した。0.05mg/kgまたは0.2mg/kgのいずれかでのApoE模倣ペプチド(配列番号4)で処理された動物は、水迷路潜時によって反映されているように、認知神経科学的転帰の改善を示した。図4参照。データは、本明細書に開示されたペプチドが、外傷性脳傷害を処置するのに有用であることを示している。
実施例3に記載されているように、脳内出血が誘導されてから2時間後、さらには6時間後に、ApoE模倣ペプチド(配列番号4、0.05mg/kg)または担体(食塩水)のいずれかをマウス群に尾静脈内注射した。各マウスを、実施例3に記載されているように、脳内出血が誘導される前および誘導された後に測定されたロトロッド潜時により前庭運動機能について試験した。0.05mg/kgのApoE模倣ペプチド(配列番号4)で処理された動物は、ロトロッド潜時の増加によって反映されているように、前庭運動パフォーマンスが向上した。図5参照。効果は、5日間の試験期間を通して持続した。データは、本明細書に開示されたペプチドが、脳内出血を処置するのに有用であることを示している。
爆風損傷マウス研究を、衝撃波管爆風モデルを用いて実施した。3本の衝撃波管の1セット(図7A)を、実際的なピーク過剰圧、スケーリングされる持続時間、および衝撃量に関する一連の爆風条件を提供するように構築した。ペプチド試験について、1240mm長さ、78mm直径の衝撃波管を用いた。ドライバーセクションは全ての試験について一定であり、対応するブラインドフランジと共にボルトで留められた25mm厚さのスペーサーフランジ、およびドリヴンパイプに取り付けられるスリップオンフランジからなった。このドライバーセクションプロファイルは、管の過剰圧特性を変化させるために変わり得る。漏出を防ぐために、各フランジ間に全面形ガスケット(グラファイト/ブナN材)を据え付けた。ダイヤフラムは、ドライバースペーサーフランジと、ドリヴンセクションに取り付けられるフランジとの間に据え付けられた、いくつかのシートのポリエチレンテレフタレート(PET)フィルムで構成された。ドライバーセクションは、ダイヤフラムが破裂するまでブラインドフランジの裏側の継手を通して高圧ヘリウムで満たされ、衝撃波を、ドリヴン管セクションへ下行させた。
血漿中およびCNS中のApoE模倣ペプチドVSRRR(配列番号4)の量を以下のように決定した。
[LC/選択イオンモニタリング(SIM)/MSを用いるマウス血漿中のVSRRR定量化]
マウス血漿の48μLアリコートを量り取り、2mL 96ウェルプレートの各ウェルに入れた。6μLの安定同位体標識(SIL)型のVSRRRペプチド(「VSRRR[10]」、配列番号4)(50mM重炭酸アンモニウム、pH8、緩衝液中5ピコモル/μL)を加えた。標準物質および品質対照(QC)については、50mM重炭酸アンモニウム中の合成型VSRRRペプチド(「VSRRR」、配列番号4)6μLを加え、マウスPK試料を含有する全てのウェルには等量の50mM重炭酸アンモニウムを加えた。1140μLの50mMギ酸アンモニウム、pH10を加えて、1200μLの最終体積にした。以下のようなOASIS(登録商標)HLB固相抽出(SPE)プロトコールを用いて塩およびタンパク質を除去した:
1.各ウェルへ500μLメタノール(MeOH)×1。
2.500μL 25%アセトニトリル(ACN)/1%トリフルオロ酢酸(TFA)×1(前溶出として)。
3.500μL MeOH×1
4.500μL 50mMギ酸アンモニウム×2
5.各試料混合物の1mLを、OASIS(登録商標)HLBプレート(親水性親油性バランス化逆相吸着剤、Waters Corp.)上の対応するウェルへ直接ピペッティングし、十分にゆっくり減圧した
6.500μL 50mMギ酸アンモニウム×1
7.500μL 10%ACN/50mMギ酸アンモニウム×2
8.500μL 25%ACN/50mMギ酸アンモニウム×1
9.プレート収集洗浄液/通過画分を取り出し、収集プレートへ入れる
10.ゆっくり減圧しながら、100μL 25%ACN/1%TFAで溶出する×3。最終溶出液は約300μLのはずである。
マウス脳の重さを1.5mL Eppendorfチューブ内で計った。脳全体を14mL培養チューブへ移した。組織湿重量100mgあたり2.5pmol/mLのSILペプチドを含む50mMギ酸アンモニウム(pH10)中の8M尿素の1mLを加えた。標準対照およびQCのために、脳組織100mg(1%)あたり10μLのペプチド標準物質を990μLの前述の緩衝液と共に加えて、組織100mgあたり1mLの総体積になった。Tissue Tearorを各試料に約20秒間、用いた。1.5mLの試料を2mL Eppendorfチューブに移した。各試料を、バーストあたり5秒間の3回のバーストでプローブ超音波処理した。その後、試料を37℃で30分間、加熱した。試料を15,000rpmで30分間、遠心分離した。各チューブの底にはほとんど沈殿物が見られず、(1.5mLの総体積から)1mLの試料をピペッティングして、OASIS(登録商標)プレート上に直接入れる場合、回避された。血漿試料についての上記のOasis(登録商標)HLB固相抽出(SPE)プロトコールを用いて、塩およびタンパク質を除去した。抽出後、Speed Vac内で試料を乾燥させ、25μLの1%ACN/0.1%TFA/0.02%HFBA中で復元させた。3μLの試料を、フルスキャンMS方法を用いるSYNAPT(商標)G2 HDMS(商標)(Waters Corp.)へ注入し、合計16.5分間のランタイムであった。関心対象のペプチド(複数可)を、3〜8分間の間、モニターした。
[局所虚血−再灌流モデル]
非定型的中大脳動脈閉塞(MCAO)モデル(Huangら,(1994)Science、265:1883〜1885;Laskowitzら,(1997)J.Cereb.Blood Flow Metab.,17:753〜758)を用いて、脳卒中後の神経学的機能への模倣ペプチドの効果を決定し、脳卒中の治療剤としてのペプチドの効力を評価した。マウスに4.6%イソフルランを麻酔導入した後、気管内挿管し、肺に30%O2/70%N2中1.6%イソフルランで機械的人工換気を施した。正中頸部皮膚切開により右総頸動脈を同定した。外頸動脈を結紮し横切開した。翼口蓋動脈の起点が目に見えるようになる遠位まで内頸動脈を解体した。シリコーンで薄くコーティングされた鈍化の先端を有する6−0ナイロンモノフィラメントを近位外頸動脈断端へ挿入し、内頸動脈中へ11mm進め、中大脳動脈を閉塞した。90分後、血液灌流を回復させるためにフィラメントを除去し、皮膚切口を縫合糸で閉じた。イソフルランを中断し、自発呼吸の回復時、マウスから抜管した。傷害後のマウスを酸素富化環境(FIO2=50%)に1時間置き、その後ケージに戻した。直腸温度を連続的にモニターし、手順の間中、表面加熱/冷却で37℃にサーボ制御した。
2つの群の10〜12週齢の雄C57Bl/6Jマウスである、対照群(n=12)およびVR−55処理群(n=9)にMCAOを施した。対照群マウスには、再灌流傷害の30分後および6時間後に100μLの滅菌生理食塩水溶媒を尾静脈内注射し、VR−55処理群マウスには、再灌流傷害の30分後および6時間後に100μLの滅菌生理食塩水溶媒およびVR−55(配列番号4、0.05mg/kg)を尾静脈内注射した。
Claims (10)
- VSRKR(配列番号2)、
VSKRR(配列番号3)、
VSRRR(配列番号4)、
VARKL(配列番号5)、
RHKKL(配列番号6)、
RHKRR(配列番号9)、または
VARRL(配列番号10)
から選択されるいずれかの配列からなる、5アミノ酸長の単離されたペプチドまたはその塩。 - N末端がアセチル化されている、及び/または、C末端がアミド化されている、請求項1に記載の単離されたペプチドまたはその塩。
- N末端がアセチル化され、C末端がアミド化されているVSRRRである、請求項1に記載の単離されたペプチドまたはその塩。
- N末端がアセチル化され、C末端がアミド化されているVSKRRである、請求項1に記載の単離されたペプチドまたはその塩。
- 請求項1〜4のいずれか1項に記載の単離されたペプチドまたはその塩を含む医薬組成物。
- 薬学的に許容される担体、溶媒、希釈剤、または補助剤をさらに含む、請求項5に記載の組成物。
- 対象において炎症を低減するための、請求項5または6に記載の組成物。
- 前記組成物が、注射、吸入、経皮、静脈内、鼻腔内、頭蓋内、および/またはくも膜下の経路によって投与するためのものである請求項7に記載の組成物。
- 対象において神経学的状態を処置するための、請求項5または6に記載の組成物。
- 前記神経学的状態が、外傷性CNS傷害、くも膜下出血、頭蓋内出血、脳卒中、実験的アレルギー性脳脊髄炎、多発性硬化症、神経炎症、慢性神経学的疾患、ALS、認知症、ニューロパシー、パーキンソン病、およびアルツハイマー病の少なくとも1つから選択される、請求項9に記載の組成物。
Applications Claiming Priority (3)
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|---|---|---|---|
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