JP6120769B2 - 抗菌ペプチド改変体及びそれをコードするポリヌクレオチド - Google Patents
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Description
本出願は、コンピュータ読み取り可能な形式の配列リストを含み、それは、参照により本明細書に援用される。
本発明は、抗菌ペプチドの改変体、該改変体をコードするポリヌクレオチド、該改変体を製造する方法、及び該改変体を用いる方法に関する。
いくつかの種類の抗菌ペプチド(AMP)は文献に記載され、その例には、デフェンシン及びアルファ−螺旋形ペプチドが挙げられる。
本発明は、配列番号2のアミノ酸配列を有する抗菌ペプチドの単離された改変体に関し、これは、配列番号2の成熟ペプチドの1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、15、17、19、及び21位の1以上(いくつか)において変更を含み、ここで、該改変体は抗菌活性を有する。
(同一の残基×100)/(アラインメントの長さ−アラインメント中のギャップの総数)
(同一のデオキシリボヌクレオチド×100)/(アラインメントの長さ−アラインメント中のギャップの総数)
本発明の目的のために、配列番号2に開示されている成熟ペプチドは、別の抗菌ペプチドにおける対応するアミノ酸残基を決定するために用いられる。別の抗菌ペプチドのアミノ酸配列は配列番号2に開示されている成熟ペプチドと整列され、そのアラインメントに基づいて、配列番号2に開示されている成熟ペプチドにおける任意のアミノ酸残基に対応するアミノ酸位置番号がNeedleman−Wunschアルゴリズム(Needleman及びWunsch,1970年,J.Mol.Biol.48:443−453)を用いて決定され、それはEMBOSSパッケージのNeedleプログラム(EMBOSS:The European Molecular Biology Open Software Suite,Riceら,2000年,Trends Genet.16:276−277)(好ましくはバージョン3.0.0)において行われる。
親抗菌ペプチドは、(a)配列番号2の成熟ペプチドと少なくとも60%配列同一性を有するペプチド;(b)(i)配列番号1の配列をコードする成熟ペプチド、若しくは(ii)(i)の全長相補鎖;又は(c)配列番号1の配列をコードする成熟ペプチドと少なくとも60%配列同一性を有するポリヌクレオチドによってコードされたペプチドである。
本発明はまた、抗菌活性を有する改変体を得るための方法に関し、この方法は、(a)配列番号の成熟ペプチドの1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、15、17、19、及び21位に対応する1以上(いくつか)における置換を親の抗菌ペプチドに導入し、ここで、該改変体は抗菌活性を有し;及び(b)改変体を回収することを含む。
本発明はまた、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、15、17、19、及び21位(好ましくは、1、2、4、5、6、8、9、12、13、15、17、及び21位;より好ましくは、4、5、6、8、9、12、13、15、及び17位)に対応する1以上(いくつか)の位置での置換を含む親の抗菌ペプチドの改変体であり、抗菌活性を有する改変体を提供する。一実施形態では、改変体は、好ましくは血液又は血清の存在下で、配列番号2のペプチドと比較して改善された抗菌活性を有する。別の実施形態では、改変体は、配列番号2のペプチドと比較して、少ないタンパク質結合を示す。好ましくは、改変体の抗菌ペプチドは、ほぼ99%の血清タンパク質結合を示す。また、改変体の抗菌ペプチドは、改善された生物学的利用能を示す。好ましくは、皮下の生物学的利用能は、少なくとも30%、より好ましくは少なくとも40%、さらにより好ましくは少なくとも50%、最も好ましくは少なくとも60%である。
G1A、G1D、G1F、G1H、G1I、G1K、G1M、G1Q、G1R、G1S、G1T、G1V、G1W、G1Y、
F2A、F2G、F2H、F2I、F2L、F2M、F2P、F2S、F2V、F2W、F2Y、
C3L、
W4A、W4E、W4F、W4G、W4I、W4L、W4M、W4N、W4Q、W4S、W4T、W4V、W4Y、
Y5E、Y5F、Y5G、Y5H、Y5K、Y5N、Y5R、Y5S、Y5W、
V6A、V6C、V6E、V6F、V6G、V6H、V6I、V6L、V6M、V6N、V6Q、V6R、V6S、V6T、V6W、V6Y、C7V、
V8A、V8F、V8G、V8H、V8I、V8L、V8N、V8S、V8T、V8W、V8Y、
Y9A、Y9D、Y9F、Y9G、Y9H、Y9I、Y9K、Y9M、Y9Q、Y9R、Y9S、Y9T、Y9V、Y9W、
R10K、R10P、R10S、R10T、
N11A、N11G、N11H、N11Q、N11R、N11S、N11Y、
G12A、G12D、G12E、G12F、G12H、G12K、G12N、G12R、G12S、G12Y、
V13A、V13C、V13F、V13G、V13H、V13K、V13L、V13P、V13Q、V13R、V13S、V13T、V13W、V13Y、
V15A、V15C、V15F、V15G、V15H、V15I、V15K、V15L、V15M、V15N、V15P、V15Q、V15R、V15S、V15T、V15W、V15Y、
Y17C、Y17F、Y17G、Y17H、Y17I、Y17K、Y17L、Y17M、Y17N、Y17Q、Y17R、Y17S、Y17T、Y17V、Y17W、
R19D、R19H、R19K、R19M、R19T、R19Y、
N21A、N21C、N21F、N21G、N21H、N21I、N21K、N21L、N21M、N21P、N21Q、N21R、N21S、
N21T、N21W、及びN21Y;
好ましくは、
W4A、Y5H、Y5N、Y5R、V6A、V6F、V8A、Y9K、Y9R、G12R、G12K、V13A、V15I、V15S、及びY17H
からなる群から選択される1以上(いくつか)の置換を含む。
本発明はまた、本発明の改変体のいずれかをコードする単離されたポリヌクレオチドに関する。
本発明はまた、調節配列と適合可能な条件下で、適切な宿主細胞におけるコード配列の発現を指向する1以上(いくつか)の調節配列に作動可能に連結された本発明の改変体をコードするポリヌクレオチドを含む核酸構築物に関する。
本発明はまた、本発明のポリヌクレオチド、プロモータ、並びに転写及び翻訳停止シグナルを含む組換え発現ベクターに関する。種々のヌクレオチド及び調節配列は、1以上(いくつか)の好都合な制限部位で改変体をコードするポリヌクレオチドの挿入又は置換を可能にするために、それらの部位を含むことができる組換え発現ベクターを生成するために一緒に連結されてもよい。あるいは、ポリヌクレオチドは、ポリヌクレオチド配又は該ポリヌクレオチド配列を含む核酸構築物を発現に適切したベクターに挿入することによって発現され得る。発現ベクターを作製する場合、そのコード配列はベクターに位置し、その結果、コード配列は発現のための適切な調節配列により作動可能に連結される。
本発明はまた、本発明の改変体の生成を指向する1以上(いくつか)の調節配列に作動可能に連結された本発明のポリヌクレオチドを含む組か宿主細胞に関する。
生成において都合良く使用される、本発明のポリヌクレオチドを含んで成る組換え宿主にも関する。ポリヌクレオチドを含む構築物又はベクターは、その構築物又はベクターが染色体組み込み体として、又は先に記載されるような自己複製の染色体外ベクターとして維持されるように、宿主細胞に導入される。用語「宿主細胞」は、複製中に生じる突然変異に起因して、親細胞と同一ではない親細胞のいずれかの子孫を包含する。宿主細胞の選択は、改変体をコードする遺伝子及びその供給源に、非常な程度依存する。
本発明はまた、(a)改変体の発現に適した条件下で本発明の宿主細胞を培養し;および(b)該改変体を回収することを含む、改変体を生成する方法に関する。
本発明のポリペプチドはまた、当該技術分野において知られている従来の方法を用いて、インビトロ合成により調製され得る。種々の市販の合成装置、例えばApplied Biosystems Inc.,Beckmanなどによる自動化されたシンセサイザーが市販されている。シンセサイザーを用いることによって、天然に存在するアミノ酸は、天然にないアミノ酸、特にD−異性体(又はD−形)、例えばD−アラニン及びD−イソロイシン、ジアステレオ異性体、異なった長さ又は官能性を有する側鎖等により置換され得る。特定の配列及び調製の様式は、便利性、経済性、必要とされる純度等により決定される。
本発明はまた、改変体を回収できる量で発現及び生成するために、本発明のポリヌクレオチドを含む植物、例えばトランスジェニック植物、植物部分、又は植物細胞に関する。改変体は、植物又は植物部分から回収されてもよい。あるいは、改変体を含有する植物又は植物部分は、食物又は飼料の品質を改良し、例えば栄養価値、嗜好性、及び流動性質を改良するために、又は抗栄養因子を破壊するために使用され得る。トランスジェニック植物は、双子葉植物又は単子葉植物であり得る。単子葉植物の例は、草、例えば湿潤地の草本(ブルーグラス、イチゴツナギ属)、飼草、例えばウシノケグサ、ドクムギ、温帯性草本、例えばヌカボ、及び穀類、例えば小麦、オート麦、ライ麦、大麦、イネ、 モロコシ、ソルガム、及びトウモロコシ(コーン)である。
本発明はまた、抗菌活性を有するポリペプチドの使用する方法に関する。抗菌ポリペプチドは、典型的には、微生物による汚染に晒されるいずれかの遺伝子座で有用である。典型的には、遺伝子座、微生物が殺傷される必要があり、又はそれらの増殖が制御される必要がある、冷却水システムなどの水性システムにおいて存在する。しかしながら、本発明はまた、既知の抗菌組成物が有用である全ての用途、例えば木材、ラテックス、接着剤、グルー、紙、厚紙、布地、革、及び飼料に使用されてもよい。
本発明の化合物は、治療投与のために種々の製剤中に組み込むことができる。より具体的には、本発明の化合物は、適切な医薬的に許容される担体又は希釈剤と組み合わせることによって、医薬組成物に配合され得て、固体、半固体、液体又は気体形態、例えば錠剤、カプセル、粉末、顆粒、軟膏、クリーム、発泡体、溶液、坐剤、注射剤、吸入剤、ゲル、マイクロスフェア、ローション、及びエアロゾルで調製物に配合され得る。例えば、化合物の投与は、種々の手段、例えば経口、頬内、直腸、非経口、腹膜内、皮膚内、経皮内、鞘内などの投与で達成することができる。本発明の抗菌ポリペプチドは、投与後、全身性であってもよく、又は移植の部位で活性用量を保持するように作用するインプラント若しくは他の製剤の使用によって局在化されてもよい。
本方法における使用に関しては、本発明の抗菌ポリペプチドは、他の医薬として活性な薬剤、特に他の抗菌剤を用いて配合されてもよい。対象とする他の薬剤は、当該技術分野において知られている広範囲の種類の抗生物質を含む。抗生物質の種類は、ペニシリン、例えばペニシリンG、ペニシリンV、メチシリン、オキサシリン、カルベニシリン、ナフシリン、アンピシリンなど;ベータ−ラクタマーゼ阻害剤と組み合わせたペニシリン、セファロスポリン、例えばセファクロール、セファゾリン、セフロキシム、モキサラクタムなど;カルバペネム;モノベクタム;アミノグリコシド;テトラサイクリン;マクロリド;リンコマイシン;ポリミキシン;スルホンアミド;キノロン;クロラムフェニコール;メトロニダゾール;スペクチノマイシン;トリメトプリム;バンコマイシン等を包含する。
改善された抗菌活性を有する配列番号2の改変体の単離
配列番号2をコードするcDNAは、プレクタシンのプロ領域(Mygindら;Nature,437,2005)及びサッカロミセス・セレビジア(Saccharomyces cerevisiae)由来の接合因子アルファ−リーダーに融合され、誘導性S.セレビジア発現ベクターに導入し、S.セレビジアに形質転換された。このシステムは、グルコースによって抑制され、ガラクトースによって活性化されるGAL1プロモータを利用する。
アレニシン改変体を発現するおよそ300個のコロニーは、ウマ血液(2.5%若しくは5%)又は5%ウマ血清のいずれかを含むスクリーニングプレート上に播種された(以下のプレートの粗製を参照されたい)。プレートを3時間30℃にてインキュベートし、それらを乾燥させた。次に、42℃に温められた25mlのオーバーレイをプレートに添加した。培地を固化させた後、プレートを3日間30℃にてインキュベートした。
異なる3種のスクリーニングプレートa)、b)及びc)をスクリーニングに用いた:
底層は50mlの1.5%アガロース+1/4のSC培地+2.5%血液+1.5%ガラクトース+0.5%グルコースを含む。第1のオーバーレイは25mlの1%アガロース+1/4のSC培地+2.5%血液+1.5%のガラクトース+0.5%グルコースを含む。最上部オーバーレイは25mlの0.2%MHB(#212322;BD)+1%アガロース(Sigma A−4718)+2.5%ウマ血液、及び大腸菌(ATCC10536)の1.25×106コロニー形成単位(cfu)を含む。
底層は50mlの1.5%アガロース+1/4のSC培地+5%血液+1.5%ガラクトース+0.5%グルコースを含む。第1のオーバーレイは25mlの1%アガロース+1/4のSC培地+5%血液+1.5%のガラクトース+0.5%グルコースを含む。最上部オーバーレイは25mlの0.2%MHB(#212322;BD)+1%アガロース(Sigma A−4718)+5%ウマ血液、及び大腸菌(ATCC10536)の1.25×106コロニー形成単位(cfu)を含む。
底層は50mlの1.5%アガロース+1/2のSC培地+5%血清+1.5%ガラクトース+0.5%グルコースを含む。第1のオーバーレイは25mlの1%アガロース+1/2のSC培地+5%血清+1.5%のガラクトース+0.5%グルコースを含む。最上部オーバーレイは25mlの0.2%MHB(#212322;BD)+1%アガロース(Sigma A−4718)+5%ウマ血液、及び大腸菌(ATCC10536)の1.25×106コロニー形成単位(cfu)を含む。
酵母窒素塩基w/oアミノ酸:3.75g
コハク酸:5.65g
水酸化ナトリウム:3.4g
カザミノ酸ビタミンアッセイ:2.8g
L−トリプトファン:0.05g
水:450ml
pHを6に調整し、培地をオートクレーブし、血液プレートを調製する場合には1/4に希釈し、血清プレートを調製する場合には1/2に希釈した。
MTT:(3−(4,5−ジメチルチアゾール−2−イル)−2,5−ジフェニル−2H−テトラゾリウリムブロミド、Sigma 13,503−8)
タンパク質結合アッセイは以下の通りに行われた。精製されたペプチドは90%血清と混合され、30kDaフィルターを介して遠心分離された。限外濾過された試料と濾過されていない試料は、HPLC測定によって定量され、次に、タンパク質結合が計算された。
好中球減少マウスの腹膜炎/敗血症モデルにおける大腸菌AID#172に対するNZ17074の効果及びED50の評価
導入
この研究の目的は、0.16〜12mg/kgの範囲にあるNZ17074の単回投薬の静脈(i.v.)投与後の投薬量−応答の関係を調べることである。その効果は、好中球減少腹膜炎モデルにおける大腸菌AID#172について試験された。40mg/kgのメロペネムによる処置を陽性対照群として含めた。血液及び腹水中のコロニーカウントは、処置後の5時間で決定された。
・30匹の非近交系のNMRI雌性マウス、25〜30グラム(Harlan Scandinavia)
・Statens Serum Instute,Copenhagen,Denmarkの大腸菌(ATCC10536)。2003年以来、ヒト損傷からの臨床単離物。多剤耐性(アンピシリン、セフタジジム、アズトレオナム、ゲンタマイシン、シプロフロキサシン)。
・酢酸リンガー中のNZ17074、pH6:1.2mg/ml、6.0ml.溶液を使用するまで4℃で保存した。使用された製剤の投薬量の分析は、本研究の生存時期の完了後に行われた。
意図された濃度 測定された濃度
1.2 mg/ml 1.11mg/ml
0.6mg/ml 0.51mg/ml
0.3mg/ml 0.24mg/ml
0.15mg/ml 0.14mg/ml
0.075mg/ml 0.043mg/ml
0.03mg/ml 0.010mg/ml
0.016mg/ml 0.002mg/ml
・ビヒクル(酢酸リンガー、pH6)。この容器を使用するまで4℃にて保存した。
・メロペネム(登録商標)(AstraZeneca,500mgの注入基質、メロペネム)、ロット番号09466C、有効期限:2013年8月。
・水、滅菌。
・0.9%生理食塩水、滅菌。
・シクロホスファミド、Apoda(n登録商標)(A−Pharma、1g)バッチ、番号928491。有効期限:2012年5月。
・5%ウマ血液寒天プレート。
・ラクトースブロモチモールブルー寒天培地。
温度及び湿度は、動物施設において毎日記録された。温度は21℃±2℃であり、冷暖房によって調節することができる。湿度は55±10%であった。1時間あたりの空気交換は約10〜20回であり、明/暗期間は午前6時〜午後6時/午後6時〜午前6時の12時間間隔であった。
1.2mg/mlの溶液を以下のようにPBSビヒクルにおいてさらに希釈した:
0.6mg/ml〜7.5mg/kg: 1.5mlの1.2mg/ml NZ17074+1.5mlのビヒクル
0.3mg/ml〜5.0 mg/kg: 1.5mlの0.6mg/ml NZ17074+1.5 mlのビヒクル
0.15mg/ml〜2.5mg/kg: 1.5mlの0.3mg/ml NZ17074+1.5mlのビヒクル
0.075mg/ml〜1.25mg/kg: 1.5mlの0.15mg/ml NZ17074+1.5mlのビヒクル
0.03mg/ml〜0.63mg/kg: 1.5mlの0.075mg/ml NZ17074+2.25mlのビヒクル
0.016mg/ml〜0.16mg/kg: 1.5mlの0.03mg/ml NZ17074+1.5mlのビヒクル
40mg/kgのメロペネムによる処置を陽性対照群として含めた。全500mgのメロペネム(1アンプル)を10mlの水〜50mg/mlに溶解した。このストック溶液を4mg/ml(0.4mlの50mg/ml+4.6mlの生理食塩水)になるまでさらに希釈した。
全1gのシクロホスファミド(1アンプルのApodan 1g)は、使用の各日に50mlの水に溶解し、約20mg/mlとした。このストック溶液は、−4日目の使用については11mg/ml(16.5mlの20mg/ml+13.5mlの生理食塩水)、−1日目の使用については5mg/kg(8.25mlの20mg/ml+21.75mlの生理食塩水)にさらに希釈された。
マウスは、接種前に、4日間(200mg/kg)及び1日間(100mg/kg)を腹腔内に0.5mlのシクロホスファミド溶液を注射することによって好中球減少にさせた。
5%のウマ血液寒天プレートからの新鮮な一晩の大腸菌AID#172を滅菌生理食塩水に懸濁し、約2×106CFU/mlに希釈した。処置開始の1時間前(−1時間)に、マウスは、腹部の側面下部四分円に0.5mlの大腸菌懸濁液を腹腔内接種された。処置の約30分〜1時間後、マウスは、疼痛緩和として45μlのニューロフェン(30mg/kgに対応する20mgのイブプロフェン/ml)を経口的に処理された。
マウスは、0時間で、NZ17074、メロペネム又はビヒクルの単回投薬を用いて、10ml/kgにて約30秒かけて外側尾静脈にi.v.処理された(表1参照)。投薬量は平均重量30gを基準にした。体重が28〜32gのマウスは、0.30ml溶液を受けた。体重が27〜28gのマウスは、0.25ml溶液を受け、体重が32.1〜36gのマウスは0.35ml溶液を受けた。
マウスは研究中に観察され、それらの挙動及び診療兆候に基づいて0〜5でスコア付けされた。
スコア0:健常
スコア1:感染及び炎症の深刻でない臨床兆候、例えば、苦痛又は活動変化の深刻でない兆候の観察
スコア2:感染様、社会的離脱症状、好奇心の欠如、体位の変化、立毛、または運動パターンの変化
スコア3:感染様不自然な運動、好奇心の欠如、体位の変化、立毛、疼痛、又は運動パターンの変化の重篤な兆候
スコア4:重篤な疼痛、マウスは動物の苦しみを最少にするために即座に屠殺された
スコア5:マウスは死に至った。
コロニーカウントは、0時及び5時にて血液及び腹水から決定された。マウスをCO2+O2で麻酔し1.5mlのEDTA被覆されたエッペンドルフチューブに腋窩の血管切開からの血液を回収した。血液サンプリング後にマウスを即剤に屠殺し、全2mlの滅菌生理食塩水をi.p.注射し、腹部を穏やかにマッサージし、その後、回復し、ピペットで液体をサンプリングした。次に、各々の試料は、生理食塩水に10倍希釈され、20μlのスポットを青色寒天プレート上に適用した。全ての寒天プレートは、周囲空気中で18〜22時間、35℃にてインキュベートされた。
コロニーカウントは、処置開始時、及び処置5時間後に行われた。CFUカウント及びマウスの臨床スコアを表3に示す。CFU数は、計算前にlog10変換された。
この研究の目的は、0.16〜12mg/kgの範囲のNZ17074の単回投薬の静脈内(i.v.)投与後、投薬量−応答の関係を調べることであった。効果は、好中球減少腹膜炎/敗血症モデルにおいて大腸菌AID#172に対して試験された。
*はp<0.05に対応する;<**>はp<0.01に対応する;<***>はp<0.001に対応する。検出限界は1.4log10CFU/mlである。検出できない細菌の試料は1.0log10CFU/mlとして表される。
腹膜炎/敗血症モデル:好中球減少NMRIマウスにおける大腸菌AID#172に対する7.5mg/kgのNZ17074の経時的効果
導入
この研究の目的は、7.5mg/kgの単回投薬の静脈内(i.v.)投与後のNZ17074のインビボ有効性を調べることである。効果は、マウス腹膜炎モデルにおいて通常適用されるムチンの使用を避けるために好中球減少性NMRIマウスの腹膜炎モデルにおける大腸菌AID#172に対して試験された。マウスは、シクロホスファミド注射により好中球減少にさせた。40mg/kgメロペネムによる処置を陽性対照群として含め、ビヒクルによる処置を陰性対照群として含めた。腹水及び血液におけるコロニーカウントは、処置後の2時間及び5時間で決定された。
・30匹の非近交系のNMRI雌性NMRIマウス、28〜32グラムHarlan Scandinavia)
・Statens Serum Instute,Copenhagen,Denmarkの大腸菌AID#172。2003年以来、ヒト損傷からの臨床単離物。多剤耐性(アンピシリン、セフタジジム、アズトレオナム、ゲンタマイシン、シプロフロキサシン)。
・酢酸リンガー中のNZ17074、pH6、1.2ml、0.75mg/ml。研究後に行われる投薬製剤の分析は、訳0.78mg/mlの濃度を示した。
・ビヒクル(酢酸リンガー、pH6)3ml。
・メロネン(登録商標)(Astrazeneca、500mgメロペネン注入気質)。ロット番号09466C 有効期限:2012年8月。
・アポダン(登録商標)(A−Pharme.1gシクロホスファミド)バッチ番号928491(有効期限2012年5月)
・水、滅菌
・0.9%生理食塩水、滅菌
・5%ウシ血液寒天プレート
・ラクトースブロムチモールブルー寒天プレート
温度及び湿度は、動物施設において毎日記録された。温度は21℃±2℃であり、冷暖房によって調節することができる。湿度は55±10%であった。1時間あたりの空気交換は約10〜20回であり、明/暗期間は午前6時〜午後6時/午後6時〜午前6時の12時間間隔であった。マウスは、家庭内品質の水及び食餌に自由に接近した(2016,Harlan)。マウスは、3マウス/ケージでタイプ3マクロローンケージに入れられた。寝床はTapveiのAspen Woodであった。さらに、動物は、入れ子材としてSizzle−nestのペーパーストランドを与えられた。ケージ内で個々を識別するためにマウスの尾をマークした。
0.75mg/mlの各試験化合物の溶液は、注射前の1時間まで+4℃にて保存され、その後、室温で保存された。
全500mgのメロペネム(1アンプル)を10mlの水〜50mg/mlに溶解した。このストック溶液を4mg/ml(0.4mlの50mg/ml+4.6mlの生理食塩水)になるまでさらに希釈した。
全1gのシクロホスファミド(1アンプルのApodan)は、使用の各日に50mlの水に溶解し、約20mg/mlとした。このストック溶液は、−4日目の使用については11mg/ml(16.5mlの20mg/ml+13.5mlの生理食塩水)、−1日目の使用については5.5mg/kg(8.25mlの20mg/ml+21.75mlの生理食塩水)にさらに希釈された。
マウスは、接種前に、4日間(200mg/kg)及び1日間(100mg/kg)を腹腔内に0.5mlのシクロホスファミド溶液を注射することによって好中球減少にさせた。
5%のウマ血液寒天プレートからの新鮮な一晩の大腸菌AID#172を滅菌生理食塩水に懸濁し、約2×106CFU/mlに希釈した。
マウスは、各サンプリングの時間にて感染の兆候について臨床的にスコア付けされた。
スコア0:健常
スコア1:感染及び炎症の深刻でない臨床兆候、例えば、苦痛又は活動変化の深刻でない兆候の観察
スコア2:感染様、社会的離脱症状、好奇心の欠如、体位の変化、立毛、または運動パターンの変化
スコア3:感染様不自然な運動、好奇心の欠如、体位の変化、立毛、疼痛、又は運動パターンの変化の重篤な兆候
スコア4:重篤な疼痛、マウスは動物の苦しみを最少にするために即座に屠殺された
スコア5:マウスは死に至った。
マウスは、0時間で、NZ17074、メロペネム又はビヒクルの単回投薬を用いて、約30秒かけて外側尾静脈にi.v.処理された(表1参照)。投薬量は平均重量30gを基準にした。体重が28〜32gのマウスは、0.30ml溶液を受けた。体重が27〜28gのマウスは、0.25ml溶液を受け、体重が32.1〜36gのマウスは0.35ml溶液を受けた。マウス17は、体重が29.5gであったが、誤って0.35mlを受けた。この投薬量は、このマウスにおけるCFUレベルがグループの他の2匹のマウスと非常に似ていたので、結果に影響を及ぼしたようでない。
コロニーカウントは、表1に従って処理した後、0時、2時及び5時にて血液及び腹水から決定された。
コロニーカウント及びマウスの臨床スコアを表2に示す。CFU数は、計算を行う前にlog10変換され、通常の分布を得る。
NZ17074、7.5 mg/kg
2時間:腹膜−1.63log cfu/ml 血液−2.50log cfu/ml
5時間:腹膜−3.76log cfu/ml 血液−3.74log cfu/ml
メロペネム、40 mg/kg
2時間:腹膜−1.51log cfu/ml 血液−0.82log cfu/ml
5時間:腹膜−1.51log cfu/ml 血液−1.64log cfu/ml
All mice had only mild or no symptoms of infection (Table 2).
全てのマウスは、感染にほとんど影響がないか又は感染がなかった(表2)。
この研究の目的は、NMRIマウスの好中球減少腹膜炎モデルにおいて、7.5mg/kgの単回投薬の静脈内(i.v.)投与後のNZ17074の有効性を調べることであった。ビヒクル処理と比較した3log10CFU/mlを超える有意な(p<0.001)減少は、処置後の5時間で血液及び腹水においてNZ17074について観察された。また、NZ17074による処置後の2時間で、血液及び腹水における有意な減少(p<0.001)が観察された。処置後の5時間での血液及び腹水の両方において、しかし、処置後の2時間での腹水において、ビヒクル群と比較して有意な減少を示した(p<0.01)。
マウスは0.30mlの試験化合物の代わりに0.35mlを受けた。
ビヒクル群と比較して* p<0.05、** p<0.01、*** p<0.001。
好中球減少大腿部感染モデル:大腸菌AID#172に対するNZ17074の有効性及びED50の評価
導入
この研究の目的は、0.16〜12mg/kgの範囲にあるNZ17074の単回投薬の静脈(i.v.)投与後の投薬量−応答の関係を調べることである。その効果は、好中球減少大腿部モデルにおける大腸菌AID#172について試験された。40mg/kgのメロペネムによる処置を陽性対照群として含めた。大腿部中のコロニーカウントは、処置後の5時間で決定された。
・40匹の非近交系のNMRI雌性マウス、25〜30グラム(Harlan Scandinavia)
・Statens Serum Instute,Copenhagen,Denmarkの大腸菌AID#172。2003年以来、ヒト損傷からの臨床単離物。多剤耐性(アンピシリン、セフタジジム、アズトレオナム、ゲンタマイシン、シプロフロキサシン)。
・酢酸リンガー中のNZ17074、pH6:1.2mg/ml、6.0ml.溶液を使用するまで4℃で保存した。使用された製剤の投薬量の分析は、本研究の生存時期の完了後に行われ、以下の結果を得た:
意図された濃度 測定された濃度
1.2mg/ml 1.11mg/ml
0.6mg/ml 0.51mg/ml
0.3mg/ml 0.24mg/ml
0.15mg/ml 0.14mg/ml
0.075mg/ml 0.043mg/ml
0.03mg/ml 0.010mg/ml
0.016mg/ml 0.002mg/ml
・ビヒクル(酢酸リンガー、pH6)。この容器を使用するまで4℃にて保存した。
・メロペネム(登録商標)(AstraZeneca,500mgの注入基質、メロペネム)、ロット番号09466C、有効期限:2013年8月。
・水、滅菌。
・0.9%生理食塩水、滅菌。
・センドキサン(登録商標)(シクロホスファミド、Baxter、1g)バッチ、番号0A671C。有効期限:2013年1月。
・5%ウマ血液寒天プレート。
・ラクトースブロモチモールブルー寒天培地。
温度及び湿度は、動物施設において毎日記録された。温度は21℃±2℃であり、冷暖房によって調節することができる。湿度は55±10%であった。1時間あたりの空気交換は約10〜20回であり、明/暗期間は午前6時〜午後6時/午後6時〜午前6時の12時間間隔であった。
1.2mg/mlの溶液を以下のようにPBSビヒクルにおいてさらに希釈した:
0.6mg/ml〜7.5mg/kg: 1.5mlの1.2mg/ml NZ17074+1.5mlのビヒクル
0.3mg/ml〜5.0 mg/kg: 1.5mlの0.6mg/ml NZ17074+1.5 mlのビヒクル
0.15mg/ml〜2.5mg/kg: 1.5mlの0.3mg/ml NZ17074+1.5mlのビヒクル
0.075mg/ml〜1.25mg/kg: 1.5mlの0.15mg/ml NZ17074+1.5mlのビヒクル
0.03mg/ml〜0.63mg/kg: 1.5mlの0.075mg/ml NZ17074+2.25mlのビヒクル
0.016mg/ml〜0.16mg/kg: 1.5mlの0.03mg/ml NZ17074+1.5mlのビヒクル
40mg/kgのメロペネムによる処置を陽性対照群として含めた。全500mgのメロペネム(1アンプル)を10mlの水〜50mg/mlに溶解した。このストック溶液を4mg/ml(0.4mlの50mg/ml+4.6mlの生理食塩水)になるまでさらに希釈した。
全1gのシクロホスファミド(1アンプルのセンドキサン(登録商標)1g)は、使用の各日に50mlの水に溶解し、約20mg/mlとした。このストック溶液は、−4日目の使用については11mg/ml(16.5mlの20mg/ml+13.5mlの生理食塩水)、−1日目の使用については5mg/kg(8.25mlの20mg/ml+21.75mlの生理食塩水)にさらに希釈された。
マウスは、接種前に、4日間(200mg/kg)及び1日間(100mg/kg)を腹腔内に0.5mlのシクロホスファミド溶液を注射することによって好中球減少にさせた。
5%のウマ血液寒天プレートからの新鮮な一晩の大腸菌AID#172を滅菌生理食塩水に懸濁し、約2×107CFU/mlに希釈した。処置開始の1時間前(−1時間)に、マウスは、左脚に0.05mlの大腸菌懸濁液を筋内接種された。接種前の約30分にて、マウスは、疼痛緩和として45μlのニューロフェン(30mg/kgに対応する20mgのイブプロフェン/ml)を経口的に処理された。
マウスは、0時間で、NZ17074、メロペネム又はビヒクルの単回投薬を用いて、10ml/kgにて約30秒かけて外側尾静脈にi.v.処理された(表1参照)。投薬量は平均重量30gを基準にした。体重が28〜32gのマウスは、0.30ml溶液を受けた。体重が27〜28gのマウスは、0.25ml溶液を受け、体重が32.1〜36gのマウスは0.35ml溶液を受けた。
マウスは研究中に観察され、それらの挙動及び診療兆候に基づいて0〜5でスコア付けされた。
スコア0:健常
スコア1:感染及び炎症の深刻でない臨床兆候、例えば、苦痛又は活動変化の深刻でない兆候の観察
スコア2:感染様、社会的離脱症状、好奇心の欠如、体位の変化、立毛、または運動パターンの変化
スコア3:感染様不自然な運動、好奇心の欠如、体位の変化、立毛、疼痛、又は運動パターンの変化の重篤な兆候
スコア4:重篤な疼痛、マウスは動物の苦しみを最少にするために即座に屠殺された
スコア5:マウスは死に至った。
コロニーカウントは、0時及び5時にて大腿部から決定された。マウスをCO2+O2で麻酔した。その直後、皮膚を除去し、左脚を回収し、−70℃で凍結した。解凍後、Dispomix(登録商標)ドライブを用いて大腿部をホモジナイズした。次に、各々の試料は、生理食塩水に10倍希釈され、20μlのスポットを青色寒天プレート上に適用した。全ての寒天プレートは、周囲空気中で18〜22時間、35℃にてインキュベートされた。
コロニーカウントは、処置開始時、及び処置5時間後に行われた。CFUカウントを表3に示す。CFU数は、計算前にlog10変換された。
星印はビヒクル群とは有意に異なることを示す(Anova;多重比較)。
*はp<0.05に対応する;<**>はp<0.01に対応する。
検出限界は1.4log10CFU/mlである。
Claims (11)
- 配列番号2のアミノ酸配列を有する抗菌ペプチドの単離された改変体であって、
(a)配列番号2のアミノ酸配列を有する抗菌ペプチドと比較して、改善された抗菌活性、又は血清又は血液中のタンパク質への減少したタンパク質結合を有し、
(b)F2A;Y5N又はY5R;V6A;V8A;Y9R;V13A;及びY17Hから選択される1、2又は3個の置換を有し、及び
(c)配列番号3、70、72、235、257、299、308、335又は350のアミノ酸配列を含む、
改変体。 - 配列番号3、70、72、235、257、299、308、335及び350のいずれかのアミノ酸配列からなる、請求項1に記載の改変体。
- 配列番号3、配列番号72又は配列番号350のいずれかのアミノ酸配列を含む、請求項1に記載の改変体。
- 配列番号3、配列番号72又は配列番号350のいずれかのアミノ酸配列からなる、請求項1に記載の改変体。
- 請求項1〜4のいずれか1項に記載の改変体をコードする単離されたポリヌクレオチド。
- 請求項5に記載のポリヌクレオチドを含む核酸構築物。
- 請求項5に記載のポリヌクレオチドを含む発現ベクター。
- 請求項5に記載のポリヌクレオチドを含む宿主細胞。
- 配列番号2のアミノ酸配列を有する抗菌ペプチドの改変体を生産するための方法であって、
a)改変体の発現に適した条件下で請求項8に記載の宿主細胞を培養し;及び
b)該改変体を回収する
ことを含む方法。 - 薬剤として使用するための請求項1〜4のいずれか1項に記載の改変体。
- 細菌感染を治療するための薬剤の製造に使用するための請求項1〜4のいずれか1項に記載の改変体。
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