JP6099569B2 - 組成物およびその製造方法 - Google Patents
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Description
本発明は、最頻粒子径が500nm以下である超微細気泡を含む水とタンパク質を含む組成物を提供する。また本発明は、超微細気泡の最頻粒子濃度が1mlあたり100万個以上である上記の超微細気泡を含む水とタンパク質を含む上記の組成物を提供する。さらには、本発明は粒子径1000nm以下の気泡の粒子濃度が1mlあたり5000万個以上である超微細気泡を含む水とタンパク質を含む上記の組成物を提供する。
酵素類:酵素類としては、酸化還元酵素(コレステロールオキシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、アスコルビン酸オキシダーゼ、ポリフェノールオキシダーゼ、ペルオキシダーゼ等);転移酵素(アシルトランスフェラーゼ、スルホトランスフェラーゼ、トランスグルコシダーゼ等);加水分解酵素(プロテアーゼ、セリンプロテアーゼ、アミラーゼ、リパーゼ、セルラーゼ、グルコアミラーゼ、リゾチーム、等);付加脱離酵素(ペクチンリアーゼ等);異性化酵素(グルコースイソメラーゼ等);合成酵素(脂肪酸シンターゼ、リン酸シンターゼ、クエン酸シンターゼ、ヒアルロン酸リアーゼ、炭酸デヒドラーゼ等);が使用できる。
組み換えタンパク質:組み換えタンパク質としては、タンパク製剤(インターフェロンα、成長ホルモン、インスリン、血清アルブミン)、ワクチン等が使用できる。
抗体:抗体としては、モノクローナル抗体及びポリクローナル抗体が使用できる。
ペプチド:ペプチドとしては、特にアミノ酸を限定するものではなく、ジペプチド、トリペプチド、ポリペプチド等が使用できる。
また水溶性溶媒、たとえばアルコール、グリコール、グリセリン、エーテル、ケトン、エステルなどを加えることもできる。
なお、本発明における超微細気泡の粒子径および個数は、組成物配合後、24時間の時点で測定した数値をいう。
気液混合せん断方式による超微細気泡発生装置である株式会社協和機設製の「BUVITAS」により、日本薬局方精製水を使用して、超微細気泡を発生させた。生成した超微細気泡の粒径をナノ粒子解析システム ナノサイトシリーズ(NanoSight社製)により測定した。測定結果を図1に示す。図の横軸はnm単位での粒子径を、縦軸は1ml当たりのNB粒子数(ナノバブル粒子数)(106個/ml)を示す。また図2に、日本薬局方精製水についての微細気泡の測定結果を示す。
生成した超微細気泡を含む水の最頻粒子径は86nm、最頻粒子径における粒子濃度は7.57×106個/ml、総粒子濃度は6.86×108個/mlであった。
日本薬局方精製水については、粒子濃度が非常に少なく、正規分布が見られないことから測定結果はノイズであると判断された。
以下の実施例においては、大気の超微細気泡を含む水は上記と同様に調整され、ブランクの比較例としては、大気の超微細気泡を含む水の代わりに、日本薬局方精製水を使用したものを用いた。
ストレプトアビジン ペルオキシダーゼを大気の超微細気泡を含む水に50ng/mlになるように加え、チューブに1.0mlずつ分注し、20、50℃の条件で1、3および10日間密栓保存した。次に、保存したストレプトアビジン ペルオキシダーゼ水溶液100μlに、下記の通り調整した基質液を100μl加え発色させた。
(基質液の調整方法)
下記組成からなる試薬を混合して基質液を得た。
o−フェニレンジアミン タブレット(SIGMA−ALDRICH社製):1個
70mMクエン酸緩衝液(クエン酸−リン酸ナトリウム;pH5.0):12.5ml
過酸化水素液:5μl
(酵素濃度および酵素活性残存率の算出方法)
サンプルに4N H2SO4溶液を50μl加え、発色反応を停止させた後、マイクロプレートリーダー(サーモフィッシャーサイエンティフィック株式会社製)で492nmにおける吸光度(A492)を測定した。酵素濃度は、ストレプトアビジン ペルオキシダーゼを用いて作成した検量線から求めた。また、サンプルの初期酵素活性をA、保存後の酵素活性をBとし、次式から「酵素活性残存率」を算出した。
酵素活性残存率(%)=(1−(A−B)/A)×100
なお最頻粒子径における濃度は、最頻粒子径における濃度測定値(106個/ml)×測定時の希釈倍率として計算された。また総粒子濃度は、総粒子濃度における濃度測定値(108個/ml)×測定時の希釈倍率として計算された。
結果を下記の表1および表2に示す。
(酵素液の調整)
ストレプトアビジン ペルオキシダーゼを大気の超微細気泡を含む水に50ng/mlになるように加え、チューブに1.0mlずつ分注し、80℃の条件で30分間密栓保存した。このとき、超微細気泡を含む水の最頻粒子濃度を、それぞれ1mlあたり106個(実施例7および8)、107個(実施例9および10)、108個(実施例11および12)になるように調整した。
次に、保存したストレプトアビジン ペルオキシダーゼ水溶液100μlに、調整した下記試薬(基質液)を100μl加え発色させた。
(基質液の調整)
下記組成からなる試薬を混合して基質液を得た。
o−フェニレンジアミン タブレット(SIGMA−ALDRICH社製):1個
70mMクエン酸緩衝液(クエン酸‐リン酸ナトリウム pH5.0):12.5ml
過酸化水素液:5μl
(酵素濃度および酵素活性残存率の算出方法)
サンプルに4N H2SO4溶液を50μl加え、発色反応を停止させた後、マイクロプレートリーダー(サーモフィッシャーサイエンティフィック株式会社製)で492nmにおける吸光度を測定した。酵素濃度は、ストレプトアビジン ペルオキシダーゼを用いて作成した検量線から求めた。また、サンプルの初期酵素活性をA、保存後の酵素活性をBとし、次式から「酵素活性残存率」を算出した。
酵素活性残存率(%)=(1−(A−B)/A)×100
結果を下記の表3に示す。
総粒子濃度の増大がより優れた結果を提供することが示されている。
なお、実施例8において酵素残存率は0.0%であり、実施例10においては酵素残存率は15.2%となっている。比較例と比較して結果は向上しているものの、80℃で80分という条件下では実施例12におけるように数億個の最頻粒子径濃度と数百億個の総粒子濃度が望ましいと考えられる。
大気の超微細気泡を含む水を用いて、クエン酸緩衝液(pH4.6)、酢酸緩衝液(pH5.7)、リン酸緩衝液(pH7.0)、ホウ酸緩衝液(pH8.9)を調整し、それぞれに、ストレプトアビジン ペルオキシダーゼを50ng/mlになるように加えた。これをチューブに1.0mlずつ分注し、80℃の条件で20分間密栓保存した。ストレプトアビジン ペルオキシダーゼ水溶液100μlに、調整した下記試薬(基質液)を100μl加え発色させた。
(基質液の調整)
下記組成からなる試薬を混合して基質液を得た。
o−フェニレンジアミン タブレット(SIGMA−ALDRICH社製):1個
70mMクエン酸緩衝液(クエン酸‐リン酸ナトリウム pH5.0):12.5ml
過酸化水素液:5μl
(酵素濃度および酵素活性残存率の算出)
サンプルに4N H2SO4溶液を50μl加え、発色反応を停止させた後、マイクロプレートリーダー(サーモフィッシャーサイエンティフィック株式会社製)で492nmにおける吸光度を測定した。酵素濃度は、ストレプトアビジン ペルオキシダーゼを用いて作成した検量線から求めた。また、サンプルの初期酵素活性をA、保存後の酵素活性をBとし、次式から「酵素活性残存率」を算出した。
酵素活性残存率(%)=(1−(A−B)/A)×100
結果を下記の表4に示す。
本発明により広範なpH範囲において優れた安定性が提供されることが示されている。
(酵素液の調整)
プロテアーゼを大気の超微細気泡を含む水に10mg/mlになるように加え、80℃で30分間放置した後、チューブに990μlずつ分注した。アゾカゼイン トリス−Cl(Azocasein Tris−Cl)(1.3M)、CaCl2(20mM)溶液を0.05(w/v)%になるように10μl加え、60℃に設定したヒーティングブロック(ヤマト科学株式会社製)で30分間密栓保存した。
次に10%(w/v)トリクロロ酢酸を1.1ml添加し25〜27℃の室温下で30分間待ち、反応を停止させた。沈殿したタンパク質を分離するため、13000×gで10分間遠心し、上清1mlを別の1M NaOHが1ml入ったチューブに発色させた。
(酵素活性および酵素活性残存率の算出方法)
調整した酵素液を用いて、マイクロプレートリーダー(サーモフィッシャーサイエンティフィック株式会社製)で450nmにおける吸光度(A450)を測定した。また、ブランクにおいても上記と同様に450nmにおける吸光度(A450b)を測定し、次式を用いて「酵素活性」として算出した。
酵素活性(U/ml)=(A450−A450b)/(0.001×30)
*1unit(U)のプロテアーゼ活性は、「450nmにおける吸光度が1分あたり0.001増加すること」と定義する。
次に、サンプルの初期酵素活性をA、30分保存したサンプルの酵素活性をBとし、次式から「酵素活性残存率」を算出した。
酵素活性残存率(%)=(1−(A−B)/A)×100
結果を下記の表5に示す。
本発明によりプロテアーゼについても優れた熱安定性が得られることが示されている。
(試験方法)
(1)カタラーゼを精製水または超微細気泡を含む水(最頻粒子径;100nm、最頻粒子濃度;8.77×106/ml、粒子径1000nm以下の総粒子濃度;6.18×108/ml)にて1mg/ml(3809Unit/ml)水溶液に調整した。
(2)マイクロチューブに分注したカタラーゼ水溶液1mlをサーモシェイカー(500rpm)にて62.5℃×所定の時間(20、30、40、50分)インキュベートした。その後、遠心分離器(14000rpm×5分間)にて沈殿処理した。
(3)処理したカタラーゼ水溶液の上清100μL、3%過酸化水素水200μL、リン酸緩衝液 (500Mm・pH5.8)200μLと精製水100μLをチューブに取り室温×15分間反応させた。
(4)反応させた後、酵素を完全に失活するために100℃×5分間熱処理した。
(5)反応液を100μL分取し、290nmにおける吸光度を測定した。測定した吸光度より検量線を用い過酸化水素分解率を算出した。
結果を図3に示す。
(試験方法)
(1)リパーゼを精製水または超微細気泡を含む水(最頻粒子径;113nm、最頻粒子濃度;36.4×106/ml、粒子径1000nm以下の総粒子濃度;20.9×108/ml)にて0.02mg/ml(23.52Unit/ml)水溶液に調整した。
(2)調整したリパーゼ水溶液を70℃にて5分間インキュベートした。
(3)処理したリパーゼ水溶液50μL、以下に記載された方法で調整された基質液100μL、トリス塩酸緩衝液(pH8.2)50μLを所定の時間×室温で反応させた。
反応液を分取し、410nmにおける吸光度を測定した。
結果を図4に示す。
(基質液の調整)
精製水100mlに0.0135gのp−ニトロフェニルラウレート、0.017gのドデシル硫酸ナトリウム、1.0gのTriton X−100を混合し、65℃にて水溶させた後、冷却した。
Claims (3)
- ペルオキシダーゼと、
最頻粒子径が100nm以下、総粒子密度が1mlあたり6億個以上であり、最頻粒子密度が1mlあたり700万個以上である超微細気泡を含む組成物。 - プロテアーゼと、
最頻粒子径が100nm以下、総粒子密度が1mlあたり200億個以上であり、最頻粒子密度が1mlあたり3億個以上である超微細気泡を含む組成物。 - 前記超微細気泡が空気、酸素、水素、窒素、炭酸ガス、アルゴン、ネオン、キセノン、フッ素化気体および不活性化ガスから選択される1種または2種以上の気体でなる、請求項1又は2に記載の組成物。
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