JP6087706B2 - 細胞死抑制組成物 - Google Patents
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Description
から哺乳動物まで広く存在する酵素である。哺乳動物には、AK1、AK2、AK3の3種類があり、AK1は細胞質に存在し、骨格筋、脳及び赤血球に見出される。AK2はミトコンドリア膜間スペースに、AK3はミトコンドリアマトリックスに存在し、肝臓や腎臓にみられる。
以上のように、正常な神経活動としてニューロンを維持し、記憶を成立させるべくニューロンの新生を行なうためには、脳内の神経細胞、毛細血管やアストロサイトからなる微小環境が重要ある。即ち、細胞外のカリウムイオンを低濃度に保ち静止膜電位を深く維持すること、そのためにはAKの賦活化或いはミトコンドリアにおけるATP生成低下を抑制することは、細胞外環境の恒常性を維持してアポトーシスを抑制する。即ち、ニューロンを保護することであり、認知症の予防や治療に有用であると考えられる。
ジーといった多彩な機能に関わり、認知症、アルツハイマーに代表される神経変性疾患、糖尿病のような代謝疾患、癌、心疾患、脳卒中など多くの疾患との関わりも指摘されている(非特許文献2、3)。
P産生低下を抑制することが確認された。即ち、細胞外カリウムイオン濃度が上昇して起こるATP産生低下に対して、ATP不足を補い、それにより細胞外カリウムイオンを低濃度に保ち、細胞外にカリウムイオンが停滞して生じる細胞死を抑制する。これにより、神経細胞死を原因とするアルツハイマー、認知症、筋萎縮性側索硬化症や、脳梗塞などの虚血性脳機能障害の予後に起きる脳神経細胞死、狭心症、心筋梗塞のような虚血性心疾患、虚血性大腸炎や虚血性視神経症などの虚血性疾患、糖尿病のような代謝疾患、癌、脳卒中の予防・治療に有効であることが示唆された。
すなわち、PC12細胞をKClによる脱分極後にグルタミン酸を添加したときのATP産生量及び細胞生存率の変化を調べた。
1)神経前駆細胞及び培養
ラット副腎髄質由来褐色細胞腫PC12(独立行政法人理化学研究所 バイオリソースセンターより購入)は、1型コラーゲンでコートした100mmディッシュを用いて、1×106個/ディッシュとなるように播種し、10%熱不活性化ウマ血清及び10%熱不活性化ウシ胎児血清(FBS)を有し、抗生物質(100IU/mlのペニシリン及び100mg/mlのストレプトマイシン)を補足した10mlのDMEM(ダルベッコ変法イーグル培地)中で、5%CO2を含む湿気のある雰囲気中37℃に調整したインキュベーターにより維持した。約7日間でコンフルエントに達した。その間、2回の培地交換を行なった。
PC12細胞をKClの添加により細胞外のカリウムイオン濃度を高めて脱分極をさせた後に、神経細胞興奮因子であるグルタミン酸(L-グルタミン酸)を添加することで細胞死を誘導させることが可能なKCl及びグルタミン酸の添加量の検討を行った。1型コラーゲンでコートした96ウェルプレートに、PC12細胞を1×104個/ウェルで播種し、一晩培養した。その後、各ウェルの培地を吸引し、血清無添加のDMEM培地で希釈した0〜70mMKClを100μl/ウェルずつ添加した。24時間後に、0〜30mMグルタミン酸を100μl/ウェルずつ添加し、ウェルの総量200μl/ウェルとした。そして、インキュベーター内にプレートを静置し、24時間後に細胞内ATP量と細胞生存率の測定を行った。
各ウェルから培養上清を150μlずつ抜き、50μl/ウェルずつATP反応試薬(Cell Titer-GloTM LuminescentCell ViabilityAssay、Promega社製)を添加した。添加後、遮光したプレートを2分間振盪させた後、10分間常温で静置した。その後、プレートをホワイトプレートに移し、ルミノメーター(Centro/CentroXS3 LB960、Berthold Technologys社製
)でルシフェラーゼ発光をATP量として測定した。尚、ATP量は培地のみを添加し試験を行った場合の発光率100%とした。
各ウェルから培養上清をアスピレーターで全て吸引し、DMEM培地で10倍に希釈したCCK8試薬を100μl/ウェル添加し、インキュベーターで4時間反応させた後、吸光度計(Multiskan Spectrum 、Thermo Fisher Scientific社製)で吸光度を測定した。尚、細胞生存率は培地のみを添加し試験を行った場合の細胞内ATP量を100%とした。
結果を図1及び2に示す。細胞内ATP量は、10mMグルタミン酸のみの刺激に比べて、50mM以上の KClで処理した後にグルタミン酸刺激した方が、ATPの生成を強く抑制することが確認された。一方、細胞生存率は、10mM以上のグルタミン酸のみの刺激に比べて、50mM以上のKCl添加24時間後に10mM以上のグルタミン酸の添加で更に細胞生存率が低下した。以上から、50mMKClにて脱分極させた後に10mMグルタミン酸の添加でATP生成の抑制及び細胞死を誘導することが確認できた。尚、グルタミン酸添加により、培地のpHが低下するが、グルタミン酸20mM以下では細胞生存率に影響がないことを確認した。
1)神経前駆細胞及び培養
ラット副腎髄質由来褐色細胞腫PC12(独立行政法人理化学研究所 バイオリソースセンターより購入)は、1型コラーゲンでコートした100mmディッシュを用いて、1×106個/ディッシュとなるように播種し、10%熱不活性化ウマ血清及び10%熱不活性化ウシ胎児血清(FBS)を有し、抗生物質(100IU/mlのペニシリン及び100mg/mlのストレプトマイシン)を補足した10mlのDMEM(ダルベッコ変法イーグル培地)中で、5%CO2を含む湿気のある雰囲気中37℃に調整したインキュベーターにより維持した。約7日間でコンフルエントに達した。その間、2回の培地交換を行なった。
1型コラーゲンでコートした96ウェルプレートに、PC12細胞を1×104個/ウェルで播種し、一晩培養した。その後、各ウェルの培地を吸引し、血清無添加のDMEM培地で希釈した110mMKClを50μl/ウェルと、同様の培地で希釈した本発明のるアトラクチレノリドIII(実施例1)、β−オイデスモール(実施例2)、パキマ酸(参考例3)、デヒドロパキマ酸(参考例3)の試料溶液を50μl/ウェルずつ添加した(培養液中カリウムイオン濃度は55mM)。
24時間後に、20mMグルタミン酸を100μl/ウェルずつ添加し、ウェルの総量200μl/ウェルとした(培養液中グルタミン酸濃度は10mM)。そして、インキュベーター内にプレートを静置し、24時間後に細胞内ATP量と細胞生存率、上清中のアデニル酸キナーゼ活性の測定を行った。
各ウェルから培養上清を150μlずつ抜き、50μl/ウェルずつATP反応試薬(Cell Titer-GloTM Luminescent Cell Viability Assay、Promega社製)を添加した。添加後、遮光したプレートを2分間振盪させた後、10分間常温で静置し、ルミノメーター(Centro/CentroXS3 LB960、Berthold Technologys社製)でルシフェラーゼ発光をATP量として測定した。尚、ATP量は培地のみを添加し試験を行った場合の発光率100%とした。
各ウェルから培養上清をアスピレーターで全て吸引し、DMEM培地で10倍に希釈したCCK8試薬を100μl/ウェル添加し、インキュベーターで4時間反応させた後、吸光度計(Multiskan Spectrum 、Thermo Fisher Scientific社製)で吸光度を測定した。尚、細胞生存率は培地のみを添加し試験を行った場合の細胞内ATP量を100%とした。
各ウェルから培養上清を20μlずつホワイトプレートに移した後にルミノメーター(Centro/CentroXS3 LB 960、Berthold Technologies社製)に設置し、オートインジェクターで各ウェルに50μlずつ AK Detection Reagent(ToxiLight BioAssay Kit、LONZA社製)を添加した。5分間静置後、ルミノメーターでルシフェラーゼ発光をAK活性として測定した。尚、AK活性は培地のみを添加し試験を行った場合のAK活性を100%とした。
結果を図3〜5に示す。PC12細胞は55mMKClによる脱分極下、10mMグルタミン酸の添加によりATPの産生が低下し細胞死が誘導されたが、10 nM〜100μMのアトラクチレノリドIII、β-オイデスモール、パキマ酸及びデヒドロパキマ酸を添加することにより、ATP量の低下抑制作用が認められ、CCK8による細胞生存率が110〜120%増加した。
一方、培養上清中のAK活性については、濃度依存的に有意に増加し、特にデヒドロパキマ酸が顕著であった。このAK活性の増加は、各成分添加で細胞死が増えていないことから、AK酵素タンパクが増加したことによる結果であることが示唆される。
すなわち、PC12細胞にKClを添加したときのATP産生量及び細胞生存率、細胞外AK活性の変化を調べた。
1)神経前駆細胞及び培養
ラット副腎髄質由来褐色細胞腫PC12(独立行政法人理化学研究所 バイオリソースセンターより購入)は、1型コラーゲンでコートした100mmディッシュを用いて、1×106個/ディッシュとなるように播種し、10%熱不活性化ウマ血清及び10%熱不活性化ウシ胎児血清(FBS)を有し、抗生物質(100IU/mlのペニシリン及び100mg/mlのストレプトマイシン)を補足した10mlのDMEM(ダルベッコ変法イーグル培地)中で、5%CO2を含む湿気のある雰囲気中37℃に調整したインキュベーターにより維持した。約7日間でコンフルエントに達した。その間、2回の培地交換を行なった。
PC12細胞に対して細胞死誘導に適したKCl添加量の検討を行った。1型コラーゲンでコートした96ウェルプレートに、PC12細胞を1×104個/ウェルで播種し、一晩培養した。その後、各ウェルの培地を吸引し、血清無添加のDMEM培地で希釈した0〜100mMKClを100μl/ウェルずつ添加した。そして、インキュベーター内にプレートを静置し、24時間後に細胞内ATP量と細胞生存率の測定を行った。
各ウェルから培養上清を100μlずつ抜き、50μl/ウェルずつDMEM培地を加えた後、50μl/ウェルずつATP反応試薬(Cell Titer-GloTM LuminescentCell ViabilityAssay、Promega社製)を添加した。添加後、遮光したプレートを2分間振盪させた後、10分間常温で静置した。その後、ルミノメーター(Centro/CentroXS3 LB960、Berthold Technologys社製)でルシフェラーゼ発光をATP量として測定した。尚、ATP量は培地のみを添加し試験を行った場合の発光率100%とした。
各ウェルから培養上清をアスピレーターで全て吸引し、DMEM培地で10倍に希釈したCCK8試薬を100μl/ウェル添加し、インキュベーターで4時間反応させた後、吸光度計(Multiskan Spectrum 、Thermo Fisher Scientific社製)で吸光度を測定した。尚、細胞生存率は培地のみを添加し試験を行った場合の細胞内ATP量を100%とした。
各ウェルから培養上清を20μlずつホワイトプレートに移した後にルミノメーター(Centro/CentroXS3 LB 960、Berthold Technologies社製)に設置し、オートインジェクターで各ウェルに50μlずつ AK Detection Reagent(ToxiLight BioAssay Kit、LONZA社製)を添加した。5分間静置後、ルミノメーターでルシフェラーゼ発光をAK活性として測定した。尚、AK活性は培地のみを添加し試験を行った場合のAK活性を100%とした。
結果を図6〜8に示す。細胞内ATP量は、55mM以上の KCl添加でATPの生成を顕著に低下した。また細胞生存率は、70mM以上のKCl添加で細胞生存率が顕著に低下した。一方、AK活性は90mM以上のKCl添加でAK活性が顕著に増加した。
以上から、70mMKCl添加でATP生成の抑制及び細胞死の誘導、AK活性の増加を確認できた。以上の結果より、PC12細胞に対してKClを添加したときのATP生成量及び細胞生存率の低下に対する効果を確認する試験方法として、PC12細胞を1×104個/ウェルで播種する。続いて、一晩培養後に、血清無添加DMEM培地を用い、70mMKClを100μl/ウェルずつ添加し、24時間後に被験試料を添加し細胞内ATP量、CCK8による細胞生存率及び上清中のAK活性の測定を行うこととした。
1)神経前駆細胞及び培養
ラット副腎髄質由来褐色細胞腫PC12(独立行政法人理化学研究所 バイオリソースセンターより購入)は、1型コラーゲンでコートした100mmディッシュを用いて、1×106個/ディッシュとなるように播種し、10%熱不活性化ウマ血清及び10%熱不活性化ウシ胎児血清(FBS)を有し、抗生物質(100IU/mlのペニシリン及び100mg/mlのストレプトマイシン)を補足した10mlのDMEM(ダルベッコ変法イーグル培地)中で、5%CO2を含む湿気のある雰囲気中37℃に調整したインキュベーターにより維持した。約7日間でコンフルエントに達した。その間、2回の培地交換を行なった。
1型コラーゲンでコートした96ウェルプレートに、PC12細胞を1×104個/ウェルで播種し、一晩培養した。その後、各ウェルの培地を吸引し、血清無添加の70mMKCl 添加DMEM培地で希釈した本発明のアトラクチレノリドI(Stanford Materials company社より購入)、アトラクチレノリドII(Stanford Materials company社より購入)、アトラクチレノリドIII(実施例1)、パキマ酸(参考例3)、デヒドロパキマ酸(参考例3)、β−オ
イデスモール(実施例2)、リグスチリド(参考例4)、アリソールA(和光純薬工業社より購入)、ギンセノシド Rg1(参考例5)、エルゴステロール(和光純薬工業社より購入)の試料溶液を100μl/ウェルずつ添加した(培養液中カリウムイオン濃度は70mM)。24時間後に細胞内ATP量と細胞生存率、上清中のアデニル酸キナーゼ活性の測定を行った。
各ウェルから培養上清を100μlずつ抜き、50μl/ウェルずつDMEM培地を加えた後、50μl/ウェルずつATP反応試薬(Cell Titer-GloTM Luminescent Cell Viability Assay、Promega社製)を添加した。添加後、遮光したプレートを2分間振盪させた後、10分間常温で静置し、ルミノメーター(Centro/CentroXS3 LB960、Berthold Technologys社製)でルシフェラーゼ発光をATP量として測定した。尚、ATP量は培地のみを添加し試験を行った場合の発光率100%とした。
各ウェルから培養上清をアスピレーターで全て吸引し、DMEM培地で10倍に希釈したCCK8試薬を100μl/ウェル添加し、インキュベーターで4時間反応させた後、吸光度計(Multiskan Spectrum 、Thermo Fisher Scientific社製)で吸光度を測定した。尚、細胞生存率は培地のみを添加し試験を行った場合の細胞内ATP量を100%とした。
各ウェルから培養上清を20μlずつホワイトプレートに移した後にルミノメーター(Centro/CentroXS3 LB 960、Berthold Technologies社製)に設置し、オートインジェクターで各ウェルに50μlずつ AK Detection Reagent(ToxiLight BioAssay Kit、LONZA社製)を添加した。5分間静置後、ルミノメーターでルシフェラーゼ発光をAK活性として測定した。尚、AK活性は培地のみを添加し試験を行った場合のAK活性を100%とした。
結果を図9〜20に示す。PC12細胞は70mMKClの添加によりATPの産生が低下し細胞死が誘導されるが、0.1pM〜100nMのアトラクチレノリドI、アトラクチレノリドII、アトラクチレノリドIII、パキマ酸、デヒドロパキマ酸、β−オイデスモール、リグスチリド、アリソールA、ギンセノシド Rg1、エルゴステロールを添加することにより、ATP量の有意な低下抑制作用が認められ、CCK8による細胞生存率も有意に増加した。一方、培養上清中のAK活性も増加したが、細胞賦活化による細胞増殖が促進した結果であると推察される。
粉末化した白朮1kgにメタノールを5L加え、室温で24時間抽出し、ろ過後抽出液を得た。更に、残渣にメタノール3Lを加え、同様に室温24時間して抽出液を得た。これら抽出液を合わせて、減圧濃縮し、白朮抽出エキスを得た。このエキスをヘキサンで抽出し、ヘキサン画分約50gを得た。この画分10gをシリカゲルカラムを用い、ヘキサン/酢酸エチル(100:0→0:100)及びメタノールで順次溶出した。TLCによりアトラクチレノリドIIIが確認された画分約2gについてヘキサンで再結晶すると、アトラクチレノリドIII(350mg)を得た。
粉末化した蒼朮1kgにエタノールを5L加え、室温で24時間抽出し、ろ過後抽出液
を得た。更に、残渣にエタノール3Lを加え、同様に室温24時間抽出後ろ過して抽出液を得た。これら抽出液を合わせて、減圧濃縮し、蒼朮抽出エキスを得た。このエキスを酢酸エチルで抽出し、酢酸エチル画分約30gを得た。この画分10gをシリカゲルカラムを用い、ジエチルエーテル/酢酸エチル(100:2→100:100)で順次溶出し、TLCによりβ−オイデスモールが確認された画分を回収して、β−オイデスモール(180mg)を得た。
粉末化した茯苓5kgにメタノールを加えて3時間加熱還流抽出し、ろ過後、抽出液を減圧濃縮し、茯苓抽出エキスを得た。このエキスをシリカゲルカラムを用い、クロロホルム/メタノール(1:0→1:1)で順次溶出した。次に、所望の画分を90%メタノール溶液を溶媒として、逆相系分取高速液体クロマトグラフィーを繰り返し付し、デヒドロパキマ酸(50mg)、パキマ酸(200mg)を得た。
粉末化したセンキュウ5kgをエタノール25Lに5日間放置し、ろ過後、抽出液を減圧乾燥した。抽出物を水に懸濁し酢酸エチル3Lにて抽出し、酢酸エチル画分を減圧乾燥し、センキュウ抽出エキスを得た。このエキスをシリカゲルカラムを用い、n−ヘキサン/酢酸エチル混液(3:1)を用い、TLCによりリグスチリドが確認された画分を回収して、リグスチリド(1500mg)を得た。
粉末化した人参5kgをメタノール5Lで加熱抽出し、ろ過後、抽出液を減圧乾燥した。抽出物を水3Lに懸濁し、水飽和ブタノールILで抽出し、減圧乾燥して、人参抽出エキスを得た。このエキスをシリカゲルカラムを用い、クロロホルム/メタノール/水混液(65:35:10)下層を用い、TLCによりリグスチリドが確認された画分を回収して、ギンセノシドRg1(100mg)を得た。
白朮100gに精製水を1L加え、100℃で1時間加熱してエキスを煎出し、熱時抽出液を分離し、凍結乾燥したエキス41.5gを得た。
蒼朮100gに精製水を1L加え、100℃で1時間加熱してエキスを煎出し、熱時抽出液を分離し、凍結乾燥したエキス41.4gを得た。
茯苓160gに精製水を1.6L加え、100℃で1時間加熱してエキスを煎出し、熱時抽出液を分離し、凍結乾燥したエキス3.6gを得た。
白朮抽出エキス(実施例6) 1380g
ヒドロキシプロピルセルロース 70g
乳糖 1050g
合計 2500g
上記の各成分を混合し、その混合物を常法により顆粒とし、2.5gずつに分包して実施例9の顆粒剤を得た。
アトラクチレノリドIII(実施例1) 30g
ヒドロキシプロピルセルロース 70g
乳糖 7397g
合計 7500g
上記の各成分を混合し、その混合物を常法により顆粒とし、2.5gずつに分封して実施例10の顆粒剤を得た。
デヒドロパキマ酸(参考例3) 50g
結晶セルロース 200g
乳糖 590g
クロスカルメロースナトリウム 100g
含水二酸化ケイ素 50g
ステアリン酸マグネシウム 10g
小 計 1000g
「日局」製剤総則、錠剤の項に準じて錠剤を製する。すなわち上表に記載の、デヒドロパキマ酸からステアリン酸マグネシウムまでの成分をとり、一錠重量200mgの参考例11の錠剤を得た。
蒼朮抽出エキス(実施例7) 4100g
白糖 8000g
精製水 残 量
合計 90kg
上記成分に精製水を加えて加熱溶解し、冷後、精製水を加えて全量90kgとする。この液を30gずつ容器に分注し、締栓後、加熱殺菌し実施例12の液剤を得た。
猪苓末 4500g
ヒドロキシプロピルセルロース 225g
乳糖 2775g
合計 7500g
上記の各成分を混合し、その混合物を常法により顆粒とし、2.5gずつに分封して参考例13の顆粒剤を得た。
沢瀉末 3000g
ヒドロキシプロピルセルロース 200g
乳糖 4300g
合計 7500g
上記の各成分を混合し、その混合物を常法により顆粒とし、2.5gずつに分封して参考例14の顆粒剤を得た。
Claims (4)
- アトラクチレノリドIII、アトラクチレノリドII、アトラクチレノリドIのいずれか一つ以上からなる神経細胞死抑制用剤。
- アトラクチレノリドIII、アトラクチレノリドII、アトラクチレノリドIのいずれか一つ以上からなる神経細胞賦活用剤。
- アトラクチレノリドIII、アトラクチレノリドII、アトラクチレノリドIのいずれか一つ以上からなる神経細胞死に起因する疾患の治療剤。
- 前記神経細胞死に起因する疾患が、アルツハイマー、認知症、筋萎縮性側索硬化症、パーキンソン病、脳梗塞、脳虚血性疾患、虚血性視神経症、脳卒中のいずれか一つ以上である請求項3に記載の治療剤。
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