JP5960793B2 - 神経保護ペプチド - Google Patents
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Description
X1−G−Y−T−S
(式中、X1は、グルタミン酸またはグルタミンのいずれかである)
のアミノ酸配列を含む。
(a)神経毒剤の存在下にて、CD44v10/6ペプチドを神経細胞と接触させる工程;
(b)神経細胞の細胞死をモニターする工程であって、CD44v10/6ペプチドの非存在下での神経細胞の細胞死の量または時間と比較される、CD44v10/6ペプチドの存在下での神経細胞の細胞死の量または時間の減少が、神経変性疾患の治療に有用な薬物を示す、工程;
を含む方法が提供される。
本発明は、その一部の実施形態において、神経保護ペプチド剤およびその使用に関する。
本発明の発明者らは、CD44V6およびV10エクソン配列に由来する複数のペプチドの機能のキャラクタリゼ−ションを行い、これらのペプチドが、βアミロイド(Aβ)、MPTPおよび6−OHDAなどの神経毒に対する耐性を神経細胞に付与することを発見し、これらのペプチドまたは誘導体が神経変性疾患を治療するための薬物としての役割を果たし得ることが示唆される。
DSTDRIPATIRNDVTGGRR(配列番号:49);または
NSNVNRSLSGDQDTFHPSG(配列番号:50);
からならない。
DSTDRIPATIQATPSSTTE(配列番号:51);または
DSHSTTGTAGDQDTFHPSG(配列番号:52);
からならない。
X1−G−Y−T−S
(式中、X1はグルタミン酸またはグルタミンである)
を含む。
(a)神経毒剤の存在下にて、CD44v10/6ペプチドを神経細胞と接触させる工程;
(b)前記神経細胞の細胞死をモニターする工程であって、前記CD44v10/6ペプチドの非存在下での前期神経細胞の細胞死の量または時間と比較して、前記CD44v10/6ペプチドの存在下での前記神経細胞の細胞死の量または時間の減少が、神経変性疾患の治療に有用な薬物を示す、工程;
を含む方法が提供される。
CD44のエクソン6および10からの活性ペプチドの同定
LifeTein社(South Pleinfield,NJ,USA)によって、純度>95%ですべてのペプチドが合成された。10%ウシ胎仔血清、L−Glutおよび1%ペニシリン−ストレプトマイシン(Beit Haemek社,Israel)が添加されたダルベッコ変法イーグル培地において、N2Aマウス神経芽細胞腫およびSK−N−SHヒト神経芽細胞腫(ATCC)を維持した。5%CO2と共に37℃にてインキュベータ内で細胞を維持した。各実験前に、SK−N−SH細胞を3μMRA(Sigma−Aldrich社)で5日間処理し、その細胞を神経細胞に分化させた。24ウェルプレートで細胞を増殖させ、Aβペプチドで48時間またはMTP(Sigma−Aldrich社,24時間)で処理し、その後、XTT生存率アッセイにかけた。XTT生存率アッセイは、テトラゾリウム塩XTTをホルマザンのオレンジ色化合物に還元する、代謝活性細胞の能力に基づく。水溶性色素の強度は、代謝活性細胞の数に比例する。増殖培地で1:3希釈後の処理に続いて、XTT(Beit Haemek社,Israel)を添加し、1〜2時間インキュベートした。吸光度を420nmで測定した。生存率アッセイの後に、製造元の説明書に従ってカスパーゼ3アッセイ(EnzChek Caspase3 Assay kit,Invitrogen社,Carlsbad,Ca,USA)を行った。
siRNAを用いたin vitroおよびin vivoでの機能喪失実験から、CD44V6およびCD44V10がAD、PDおよびALSなどの神経変性疾患においてある役割を果たしていることが示されている(未発表データ)。CD44Sおよびスプライスバリアントアイソフォームは、シグナル伝達経路を含む複数のタンパク質間相互作用に関与していることが示された(Pontaら[9]によって概説されている)。したがって、本発明の発明者らは、かかる相互作用が、神経細胞死においてCD44V6およびCD44V10機能を仲介し、かつV6またはV10エクソン配列に由来するペプチドがこれらの相互作用の破壊に対して薬物としての役割を果たすのではないかと考えた。実際に、ヒトV6配列に由来する小さなペンタペプチド(NRWHE−配列番号:1)は、Metチロシンキナーゼ受容体を介した肝細胞成長因子(HGF)シグナル伝達を阻害できることが示された[24]。
CD44ペプチドの構造/機能解析
すべての方法が上記の実施例1と同じである。ペプチドおよび6−ヒドロキシドパミンをSigma−Aldrich社(St.Lewis,USA)から購入した。
これらの発見から、V6B、V10AおよびV10Bヒト配列の保存領域に由来する、より小さなペプチドへと、ペプチドスクリーンを拡充することに、本発明の発明者らは駆り立てられた(表1)。
in vivoパーキンソン病モデルにおける本発明の一部のペプチドのIn vivo効果
C57BLマウス(すべてオス,8〜12週齢,Harlan Laboratories Israelから入手)に、投与量100μl/マウスにて腹腔内(IP)注射によって、1日目および2日目に1日2回3時間空けて、18mg/kg MPTP(Sigma−Aldrich社)を投与した。研究0日目および連続して8日間、1mg/kgにて12μl/マウスでPBS(ビヒクル)またはペプチドのうちの1種類をマウスに鼻腔内投与した。in vivo研究で使用されたすべてのペプチドはLifeTein社によって合成され、N末端アセチル化およびC末端アミド化で修飾された。点鼻に関しては、各マウスに穏やかに麻酔をかけ(2.5%イソフルラン)、次いでマウスの首をテーブルに平行にして拘束し、保持しながら、総体積12μlを鼻孔内に投与した。6μlを左鼻孔に2滴(1滴3μl)投与し、続いて15秒保持し、6μlを右鼻孔に2滴(1滴3μl)投与し、続いて15秒保持した。8日目に、脊椎脱臼によってマウスを安楽死させた。安楽死の直後に、脳を取り出し、線条体を解剖し(左および右線条体をプールした)、計量し、ドライアイスで凍結した。80Wで5秒間音波処理することによって、0.1M過塩素酸および10ng/ml 3,4ジヒドロキシベンジルアミン(DHBA)を含有する溶液中で、線条体試料をホモジナイズした。コンディショニングセル5021モデルおよび分析セル5011モデルを備えた電気化学検出器Coulochem II ESAに連結された逆相カラム(GL−Science社,Inertsil ODS−2 5um 4.6×150mm,室温)上のHPLCポンプ(Jasco PU−2080Plus)に直接、各組織抽出物の上清を注入した。コンディショニングセルで0.35V、分析セルで0.1Vおよび0.35Vに作業電位を設定した。移動相は、80mg/L EDTA、125mg/Lヘプタンスルホン酸、メタノール55mlおよびアセトニトリル50mlと共に0.05M一塩基リン酸ナトリウムであった(pH=2.7)。流量は1.5ml/分であった。ドーパミン、DOPACおよびHVA値をライセートタンパク質濃度に正規化した(BCA kit,Pierce)。
in vivo PDモデル、つまりマウスにおけるMPTP注入に関して、MPTPおよび6−OHDAに対して最も有効なペプチドが選択された。このモデルにおいて、MPTPの腹腔内注射(2日連続で3時間おきに18mg/kg)を繰り返した結果、黒質におけるドーパミン作動性ニューロン死および線条体のドーパミン欠乏が起こる。MPTPに曝露する1日前から開始して、1mg/kgで点鼻によって1日2回ペプチド(またはビヒクル)を投与し、研究の最後まで続けた。MPTPの注射から7日後に、マウスを屠殺し、ドーパミン(DA)、3,2−ジヒドロキシフェニル酢酸(DOPAC)およびホモバニリン酸(HVA)の線条体レベルをHPLCによって評価した。8群において9種のペプチドを試験し、DA、DOPACおよびHVAレベルの結果を表2に示す。
本発明の一部の実施形態のペプチド内での活性な部分配列(subsequence)の同定
結果
さらに構造機能分析を行うために、V10A1_N+4(以下「P26」,配列番号:26)が選択された。このペプチドに由来するペプチドを合成し、以下の表3に示す。
Aβ(1−42)損傷からラットを保護する、V10A1_N+4(P26)およびP34ペプチドの海馬内(IH)/脳室内(ICV)注入
動物−Laboratory Animal Center of University of South China,Hengyang,Hunan,Chinaから、オスの成体SDラットを入手した。到着後、食物および水に自由にアクセスできる、温度および湿度が調節された環境内にラットを個々に収容した。午前7時にライトを付けて、動物を12時間の明暗スケジュールで維持した。収容後、ラットを実験者に慣らすために、ラットを1週間手で触った(1日当たり5〜6分/ラット)。National Institutes of Health Guide for the Care and Use of Laboratory Animalsに従って、実験を行い、実験プロトコルは、University Animal Care and Use Committeeによって承認されている。
一元配置分散分析を用いて統計解析を行った。この後に、フィッシャーのLSD検定で比較を行った(SigmaStat 3.2)。すべてのデータを平均±SEMで示した。有意レベルをp<0.05で設定した。
in vivoでのアルツハイマー病(AD)モデルにおけるP26およびV10B1_8(以下、P34)ペプチドの有効性を試験するために、これらのペプチドをAβ(1−42)微量注入ラットモデルにおいて試験した(非特許文献29)。このモデルにおいて、ラットは右海馬内にAβ(1−42)6μgの単回微量注入を受けた。同時に、ペプチド溶液またはPBS(ビヒクル)1μlもまた、同じ位置に注入された。この処置の後、様々な用量のペプチドまたはビヒクル(PBS)の毎日のICV注入を行った。Aβ注入から21日後、新規物体認識アッセイ(NOR,図9)についてラットを試験した。この結果から、100ng/ラットでのP26および10および100ng/ラットでのP34は、識別指数を有意に増加したことが分かる(p<0.01)。このデータから、P26およびP34ペプチドのICV/IH投与は、in vivoにてAβの毒性効果を防ぐことが示されている。
Aβ(1−42)損傷からラットを保護する、V10A1_N+4(P26)ペプチドの末梢(peripheral)注入
実験手順および皮下注入(SC)は上記の実施例5に記述されている。
Aβ毒性からのラットの保護について、皮下(SC)注入によるペプチドの非経口投与をアッセイした。したがって、Aβ(1−42)微量注入ラットモデルが適用され、続いて1mg/kgP26ペプチドならびにコントロールペプチド(cont1:AVAVEAAG配列番号:48,n=10〜11)の毎日の皮下注射が行われた。21日間の注入期間に続いて、モリス水迷路(MWM)およびNOR記憶アッセイが行われた。この結果から、皮下注射された3つのペプチドのうちP26のみが、両方のアッセイにおいて挙動を有意に改善したことが分かる(図10および11)。これらの結果から、P26ペプチドの神経保護効果は、ペプチドが非経口投与により与えられた場合にも確認されることが実証されており、そのペプチドが血液脳関門を通過することができ、かつ関連する脳領域において十分な濃度に達することが示唆される。
P26およびP26−IRの薬物動態
材料および方法
オスのSDラットにおいてペプチドを皮下投与した後に、ペプチドの薬物動態を評価した。ビヒクルとしてリン酸緩衝食塩水(pH7.4)を使用して、ペプチド溶液を調製し、投与体積2mL/kgで用量1mg/kgにて皮下投与した。
ラットに1mg/kgで皮下注射することによって、P26およびP26−IRの薬物動態を試験した(図12)。P26−RIによって、P12の130ng/mlと比較して、見掛けCmax1227ng/mlの向上した皮下(SC)薬物動態が実証された。in vitroでの活性と併せて、P26−IR類似体は10倍の活性向上があることから、P26−IRはP26に比べて低い用量で使用することができることが示唆される。
(他の参考文献は本願に記載されている)
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Claims (14)
- 配列番号26、配列番号34および配列番号45のいずれかのアミノ酸配列からなる、単離ペプチド。
- 活性成分として請求項1の単離ペプチドと、
薬学的に有効な担体と、
含む医薬組成物。 - 請求項1の単離ペプチドの、神経変性疾患治療用の薬剤の製造における使用。
- 前記神経変性疾患が、パーキンソン病、多発性硬化症、ALS、多系統萎縮症、アルツハイマー病、脳卒中、外傷性脳損傷、進行性核上麻痺、第17番染色体に連鎖するパーキンソン症候群を伴う前頭側頭型認知症およびピック病からなる群から選択される、請求項3に記載の使用。
- 前記神経変性疾患が、パーキンソン病である、請求項3に記載の使用。
- 前記神経変性疾患が、アルツハイマー病である、請求項3に記載の使用。
- 前記単離ペプチドが、細胞透過剤に結合されている、請求項1に記載の単離ペプチド。
- 前記細胞透過剤がペプチド剤である、請求項7に記載の単離ペプチド。
- 前記単離ペプチドが、細胞透過剤に結合されている、請求項2に記載の医薬組成物。
- 前記細胞透過剤がペプチド剤である、請求項9に記載の医薬組成物。
- 前記単離ペプチドが、細胞透過剤に結合されている、請求項3〜6のいずれか一項に記載の使用。
- 前記細胞透過剤がペプチド剤である、請求項11に記載の使用。
- 前記薬剤が、皮下投与用に製剤化されたものである、請求項3〜6、11および12のいずれか一項に記載の使用。
- 前記薬剤が、鼻腔内投与用に製剤化されたものである、請求項3〜6、11および12のいずれか一項に記載の使用。
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