JP5957443B2 - フェリチンの製造方法 - Google Patents
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Description
(pKL223ベクターの構築)
プラスミドpTrcHis(インビトロジェン社製、商品名)を鋳型にして、プライマーBsa−lacI−forward(配列番号1)及びBam−lacI−reverse(配列番号2)をプライマーとして用いてPCRを行い、lacIq遺伝子とその制御プロモーターとを含む領域を増幅した。PCRは、KOD−plus−(東洋紡社製、商品名)を用いて次の反応条件で行った。ステップ1:94℃、2分;ステップ2:94℃、15秒;ステップ3:62℃、30秒;ステップ4:68℃、1分;ステップ5:4℃、∞;ステップ2からステップ4を30サイクル繰り返した。得られた約1400bpの増幅断片をBsaAI及びBamHIで二重消化した。消化した増幅断片をプラスミドpKK223−3(GEヘルスケア・ジャパン社製、商品名)のtacプロモーターの上流に位置するBsaAI−BamHIギャップに挿入して、図1に示すプラスミドpKL223を得た。プライマーの配列を以下に示す。
Bsa−lacI−forward:5’−TATCGCTACGTGACTGGGTCATGGCT−3’(配列番号1)
Bam−lacI−reverse:5’−CGGGATCCTCGCGCTAACTCACATTAATTGCGTTGC−3’(配列番号2)
プラスミドpKK223−3を鋳型にして、Bam−Ptac−forward(配列番号3)及びPst−Ptac−reverse(配列番号4)をプライマーとして用いてPCRを行い、tacプロモーターを含む領域を増幅した。PCRは、KOD−plus−(東洋紡社製、商品名)を用いて次の反応条件で行った。ステップ1:94℃、2分;ステップ2:94℃、15秒;ステップ3:60℃、30秒;ステップ4:68℃、1分;ステップ5:4℃、∞;ステップ2からステップ4を30サイクル繰り返した。得られた約280bpの増幅断片をPstIで消化した。プラスミドpACYC177(ニッポンジーン社製、商品名)を、まずBamHIで消化し、Blunting high(東洋紡社製、商品名)を用いて平滑末端化した。次いでPstI消化を行い、約3000bpの断片をアガロースゲル電気泳動により回収した。上記約280bpの増幅断片と上記約3000bpの断片とをライゲーションして図1に示すプラスミドpACT177を得た。プライマーの配列を以下に示す。
Bam−Ptac−forward:5’−GATCCGGAGCTTATCGACTGCACGGTGCAC−3’(配列番号3)
Pst−Ptac−reverse:5’−ACAGCTGCAGGTCGACGGATCCCCGGGAAT−3’(配列番号4)
GenBankのデータベース(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/genbank/)に登録されているウマ由来フェリチンのHサブユニットの構造遺伝子(Accession No.AY112742)を定法により人工合成して配列番号5の配列を有する遺伝子を得た。これを鋳型にして、以下に記す方法によりPCR増幅を行い、4種類の発現用ベクターを構築した。以下に示すプライマーをPCRに用いた。
HFT−forward−EcoRI1(配列番号6):
5’−GTTGAATTCATGACGACCGCGTTCCCCTCGCAGGT−3’
HFT−forward−EcoRI2(配列番号7):
5’−GTTGAATTCAGGAGGTATTATATGACGACCGCGTTCCCCTCGCAGGT−3’
HFT−reverse−HindIII(配列番号8):
5’−ACAGAAGCTTCTTAGCTCTCGTCACACTCTCCCAGGGTGTG−3’
HFT−reverse−NsiI(配列番号9):
5’−GTTACAGATGCATCTTAGCTCTCGTCACACTCTCCCAGGGTGTG−3’
tacプロモーターのSD配列のすぐ下流のEcoRIの直後に開始コドンが繋がるように設計したPCR用プライマーHFT−forward−EcoRI1及びHFT−reverse−HindIIIを用い、人工合成したHサブユニットの遺伝子を鋳型として、Hサブユニット遺伝子をPCR法によって増幅した。PCRは、KOD−plus−Neo(東洋紡社製、商品名)を用いて使用説明書の反応液組成に従い、次の反応条件で行った。ステップ1:94℃、2分;ステップ2:98℃、10秒;ステップ3:68℃、30秒;ステップ4:4℃、∞;ステップ2からステップ3を30サイクル繰り返した。得られたDNA断片をEcoRI及びHindIIIで二重消化した。消化したDNA断片をプラスミドpKL223のtacプロモーターの下流に位置するEcoRI―HindIIIギャップに挿入して、SD配列がAGGAである組換えプラスミドpKLHを構築した。
開始コドンのすぐ上流に大腸菌での翻訳効率を高める為のWSD配列(AGGAGGTATTAT、配列番号10)を付加したPCR用プライマーであるHFT−forward−EcoRI2及びHFT−reverse−HindIIIを設計した。これら2つのプライマーを用い、人工合成したHサブユニットの構造遺伝子を鋳型として、Hサブユニット遺伝子をPCR法によって増幅した。PCRは、pKLHの構築と同様の条件で行った。得られたDNA断片をEcoRI及びHindIIIで二重消化した。消化したDNA断片をプラスミドpKL223のtacプロモーターの下流に位置するEcoRI−HindIIIギャップに挿入して、SD配列がAGGAGGである組換えプラスミドpWKLHを構築した。
PCR用プライマーであるHFT−forward−EcoRI1及びHFT−Reverse−NsiIを用い、人工合成したHサブユニットの遺伝子を鋳型として、Hサブユニット遺伝子をPCR法によって増幅した。PCRは、pKLHの構築と同様の条件で行った。得られたDNA断片をEcoRI及びNsiIで二重消化した。消化したDNA断片をプラスミドpACT177のtacプロモーターの下流に位置するEcoRI−PstIギャップに挿入して、SD配列がAGGAである組換えプラスミドpACHを構築した。
PCR用プライマーであるHFT−forward−EcoRI2及びHFT−Reverse−NsiIを用い、人工合成したHサブユニットの遺伝子を鋳型として、Hサブユニット遺伝子をPCR法によって増幅した。PCRは、pKLHの構築と同様の条件で行った。得られたDNA断片をEcoRI及びNsiIで二重消化した。消化したDNA断片をプラスミドpACT177のtacプロモーターの下流に位置するEcoRI−PstIギャップに挿入して、SD配列がAGGAGGである組換えプラスミドpWCHを構築した。
ウマ由来のフェリチンの天然型のLサブユニットにおいては、論文(Biochimica et Biophysica Acta,1993年,1174巻,p.218−220)に記載のアミノ酸配列からN末端の8アミノ酸残基がプロセッシングの過程で欠損していることが知られている。天然型のLサブユニットを作るために、GenBankのデータベースに登録されているウマ由来のフェリチンのLサブユニットの構造遺伝子(Accession No.D14523)からN末端の8アミノ酸残基をコードする24塩基を削除し、メチオニン1残基をコードする3塩基を付加したLサブユニットをコードする遺伝子を人工合成し、配列番号11の配列を有する遺伝子を得た。これを鋳型にして以下に記す方法でPCR増幅を行い、4種類の発現用プラスミドを構築した。PCRに用いたプライマーを以下に示す。
LSFT−forward−EcoRI1(配列番号12):
5’−GTTGAATTCATGTATTCTACTGAAGTGGAGGCCGCCGT−3’
LSFT−forward−EcoRI2(配列番号13):
5’−GTTGAATTCAGGAGGTATTATATGTATTCTACTGAAGTGGAGGCCGCCGT−3’
LFT−reverse−PstI(配列番号14):
5’−ACAGCTGCAGCTTAGTCGTGCTTGAGGGTGAGCCTTTCAAAG−3’
tacプロモーターのSD配列のすぐ下流のEcoRIの直後に開始コドンが繋がるように設計したPCR用プライマーであるLSFT−forward−EcoRI1及びLFT−reverse−PstIを用い、Lサブユニットをコードする人工合成した遺伝子を鋳型として、ウマ由来のLサブユニット遺伝子をPCR法によって増幅した。PCRは、pKLHの構築と同様の条件で行った。得られたDNA断片をEcoRI及びPstIで二重消化した。消化したDNA断片をプラスミドpKL223のtacプロモーターの下流に位置するEcoRI−PstIギャップに挿入して、SD配列がAGGAである組換えプラスミドpKLSを構築した。
開始コドンのすぐ上流に大腸菌での翻訳効率を高める為のWSD配列を付加したPCR用プライマーであるLSFT−forward−EcoRI2及びLFT−reverse−PstIを設計した。設計した2つのプライマーを用い、人工合成したウマ由来のLサブユニットの構造遺伝子を鋳型として、ウマ由来のLサブユニット遺伝子をPCR法によって増幅した。PCRは、pKLHの構築と同様の条件で行った。得られたDNA断片をEcoRI及びPstIで二重消化した。消化したDNA断片をプラスミドpKL223のtacプロモーターの下流に位置するEcoRI−PstIギャップに挿入して、SD配列がAGGAGGである組換えプラスミドpWKLSを構築した。
PCR用プライマーであるLSFT−forward−EcoRI1及びLFT−reverse−PstIを用い、人工合成したLサブユニットの構造遺伝子を鋳型として、ウマ由来のLサブユニット遺伝子をPCR法によって増幅した。PCRは、pKLHの構築と同様の条件で行った。得られたDNA断片をEcoRI及びPstIで2重消化した。消化したDNA断片をプラスミドpACT177のtacプロモーターの下流に位置するEcoRI−PstIギャップに挿入して、SD配列がAGGAである組換えプラスミドpACSを構築した。
PCR用プライマーであるLSFT−forward−EcoRI2及びLFT−reverse−PstIを用い、人工合成したLサブユニットの構造遺伝子を鋳型として、ウマ由来のLサブユニット遺伝子をPCR法によって増幅した。PCRは、pKLHの構築と同様の条件で行った。得られたDNA断片をEcoRI及びPstIで二重消化した。消化したDNA断片をプラスミドpACT177のtacプロモーターの下流に位置するEcoRI−PstIギャップに挿入して、SD配列がAGGAGGである組換えプラスミドpWCSを構築した。
実施例2及び3で作製したプラスミドを表1に示した組み合わせで用い、それらを同時に大腸菌W3110株へ導入した。その後、アンピシリン50μg/ml及びカナマイシン50μg/mlを含むLB寒天培地(ペプトン1%、酵母エキス0.5%、塩化ナトリウム1%、寒天粉末1.5%、pH7.2)で生育する形質転換した大腸菌W3110株を得た。
50mM トリスヒドロキシメチルアミノメタン塩酸塩(Tris−HCl)緩衝液(pH8.0)で洗浄した大腸菌をその湿重量の5倍量の同緩衝液に再懸濁し、超音波破砕器にて菌体を破砕した。破砕した菌体を含む懸濁液を遠心分離(13000×g、30分間、4℃)し、上清を集め、組換えウマアポフェリチンを含む無細胞抽出液を得た。この無細胞抽出液を75℃で40分間、加熱処理した。次いで、遠心分離(13000×g、30分間、4℃)によって、熱によって変性した夾雑タンパク質の沈殿物を無細胞抽出液から除去した。
Claims (4)
- 互いに異なるアミノ酸配列を有する第1のサブユニット及び/又は第2のサブユニットから構成されるフェリチンの製造方法であって、
前記第1のサブユニットをコードする第1の遺伝子、前記第1の遺伝子の発現を制御するプロモーター、シャイン・ダルガノ配列、複製起点、及び、前記プロモーターの機能を抑制するラクトースリプレッサー遺伝子を含み、前記シャイン・ダルガノ配列が前記プロモーターと前記第1の遺伝子との間に配置されている第1のプラスミドを、単独で、又は、
前記第2のサブユニットをコードする第2の遺伝子、前記第2の遺伝子の発現を制御するプロモーター、シャイン・ダルガノ配列、及び、前記第1のプラスミドの複製起点とは異なる複製起点を含み、前記シャイン・ダルガノ配列が前記プロモーターと前記第2の遺伝子との間に配置されている第2のプラスミドとともに、大腸菌に導入する工程と、
前記大腸菌を培養し、フェリチンを産生させる工程と、
を備え、
前記第1のプラスミド及び第2のプラスミドのプロモーターが、tacプロモーターであり、
前記ラクトースリプレッサー遺伝子が、lacI q 遺伝子であり、
前記大腸菌が、W3110株、又はSCS1株である、
フェリチンの製造方法。 - 前記第1のプラスミド及び前記第2のプラスミドのシャイン・ダルガノ配列をそれぞれ独立に選択することにより、当該フェリチンにおける前記第1のサブユニットと前記第2のサブユニットとの比率が調節される、請求項1に記載の製造方法。
- 前記第1のプラスミド及び第2のプラスミドのシャイン・ダルガノ配列が、AGGA又はAGGAGGである、請求項1又は2に記載の製造方法。
- 前記フェリチンがHサブユニット及びLサブユニットから構成されるウマ由来のフェリチンであり、
前記第1のサブユニットがHサブユニットで、前記第2のサブユニットがLサブユニットであるか、又は、前記第1のサブユニットがLサブユニットで、前記第2のサブユニットがHサブユニットである、請求項1〜3のいずれか一項に記載の製造方法。
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