JP5955322B2 - 抗ｃ−ｍｅｔ抗体及びその使用方法 - Google Patents

抗ｃ−ｍｅｔ抗体及びその使用方法 Download PDF

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Description

肺癌は、米国において男女を問わず癌関連の死亡の主な原因である。米国では２００９年に、約２１９，０００人の新しい肺癌患者が診断され、この疾患のために１６０，０００人の患者が死亡したと推定されている。肺癌には２つの周知の形態、小細胞肺癌（ＳＣＬＣ）及び非小細胞肺癌（ＮＳＣＬＣ）があり、ＮＳＣＬＣが肺癌の略８０％を占める。ＮＳＣＬＣを有する患者の５年間の生存率は約１６パーセントである。外科的切除及び放射線療法と組み合わせた化学療法が、様々な段階のＮＳＣＬＣに適用されるが、予後は依然として良くなく、再発は、初期治療の後、約１０％に達する。
肝細胞増殖因子の受容体であるｃ−Ｍｅｔは、受容体型チロシンキナーゼ（ＲＴＫ）のサブファミリーに属する。通常の生理機能では、ＨＧＦ／ｃ−Ｍｅｔ経路は、細胞の増殖、生存、運動性及び創傷治癒を含む種々の生物学的機能に関与する（バーチメイアー（Ｂｉｒｃｈｍｅｉｅｒ）等著，２００３年）。しかしながら、遺伝子の増幅、変異及び過剰発現を含む異常なｃ−Ｍｅｔの活性化が、血液悪性腫瘍及び大型固形腫瘍を伴う臨床例に報告されている。ｃ−Ｍｅｔの活性化は、癌細胞の増殖、移動及び浸潤を引き起こし、ＨＧＦが内皮細胞の増殖及び移動を直接的に刺激するため、腫瘍血管の血管形成を促進することが報告されている。
米国特許第７７４９４８５号明細書
更に、過剰発現したｃ−Ｍｅｔは、脳、結腸直腸、胃（ｇａｓｔｒｉｃ）、肺、頭頸部、及び胃（ｓｔｏｍａｃｈ）の癌を有する患者に頻繁に観察されている。乏しい臨床転帰が、ｃ−Ｍｅｔの上昇と明瞭な相互関係にあり、ｃ−Ｍｅｔの過剰発現がこれらの癌の種類における腫瘍進行の否定的な予後因子であることを示唆している。
ｃ−Ｍｅｔに結合する抗体、並びに関連する組成物及び使用方法を本明細書に開示する。使用方法には、癌療法及び診断が含まれるが、限定するものではない。ある実施形態では、本発明の抗体は、哺乳類細胞の表面抗原（例えば、癌細胞の表面抗原）に結合する。本抗体はまた、細胞に結合すると取り込まれ得る。本抗体によって標的とされ得る細胞には、例えば、肺、腎臓、肝臓、胃、胸及び脳の癌腫等の癌腫が含まれる。
ｃ−Ｍｅｔタンパク質に結合しファージディスプレイされたｓｃＦｖの選択及び識別に関し、ファージディスプレイされたヒトナイーブｓｃＦｖライブラリを使用してｃ−Ｍｅｔ−Ｆｃタンパク質に結合したファージを選択した（バイオパニング）ことを示す図である。 ｃ−Ｍｅｔタンパク質に結合しファージディスプレイされたｓｃＦｖの選択及び識別に関し、無作為に選択したファージクローンをＥＬＩＳＡによりスクリーニングして様々な結合を明らかにしたことを示す図である。 ｃ−Ｍｅｔタンパク質に結合しファージディスプレイされたｓｃＦｖの選択及び識別に関し、２つの異なる力価を有し、選択されたｃ−Ｍｅｔ−Ｆｃタンパク質に結合したファージクローンのＥＬＩＳＡによる比較結果を示す図である。 ｃ−Ｍｅｔタンパク質に結合しファージディスプレイされたｓｃＦｖの選択及び識別に関し、ファージクローンの相対的なｃ−Ｍｅｔ結合親和性を、ｃ−Ｍｅｔを過剰発現する２９３Ｔ細胞を用いてフローサイトメトリーにより評価したことを示す図である。 ｃ−Ｍｅｔタンパク質に結合しファージディスプレイされたｓｃＦｖの選択及び識別に関し、免疫蛍光染色によるファージクローンの結合特異性の判定結果をスケールバー５０μｍで示す図である。 抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖとｃ−Ｍｅｔに結合したＨＧＦとの競合結果を示す図である。Ａは、ファージディスプレイされた抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖであるＰＣ１、ＰＣ２０及びＰＣ２１を使用して、Ｈ１９９３細胞上に発現したｃ−ＭｅｔへのＨＧＦの結合を阻害したことをＥＬＩＳＡにより示しており、Ｂは、抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖであるＳ１、Ｓ２０及びＳ２１によるｃ−Ｍｅｔタンパク質に結合したＨＧＦの用量依存的阻害を競合的ＥＬＩＳＡを用いて示しており、Ｃは、ヒトＩｇＧ１のＦｃドメインをｃ−Ｍｅｔ932 及びｃ−Ｍｅｔ567 のカルボキシル末端に融合させたヒトｃ−Ｍｅｔタンパク質のドメインを概略的に示しており、Ｄは、抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖのエピトープをＥＬＩＳＡを使用して識別した結果を示しており、Ｅは、癌細胞におけるＨＧＦとの抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖの拮抗効果の判定結果を示している。 共焦点顕微鏡を使用して抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖの取込みを分析した結果を示す図である。Ａは、Ｈ１９９３細胞を、抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖであるＳ１及びＳ２０と共に４℃（ａ及びｂ）又は３７℃（ｃ及びｄ）で３０分間別個に培養し、取り込まれたＳ２０が低倍率で細胞のほとんどに観察され（ｅ）、矢印は細胞内に取り込まれたｓｃＦｖを示しており、Ｂは、細胞内へのＳ２０の取込みがｃ−Ｍｅｔ媒介のエンドサイトーシスを通じて生じ、ｃ−Ｍｅｔ野生型細胞（ａ）及びノックダウンＨ４６０細胞（ＭＥＴ−ＫＤ）（ｃ）を３７℃で３０分間Ｓ２０と共に培養し、細胞に取り込まれた豊富なＳ２０がより高倍率の範囲で示されている（ｂ）。 Ｍｓ２０がヒト肺癌細胞系へのリポソームドキソルビシンの結合及び取込みを向上させたことを示す図である。Ａは、薬物と共に３７℃で４時間培養したＭｓ２０−ＬＤ及びＬＤの肺癌細胞系内への取込みの研究結果を示しており、Ｂは、癌細胞表面上のｃ−Ｍｅｔの発現レベルを、Ｍｓ２０−ＱＤを使用してフローサイトメトリー分析によって判定したことを示しており、Ｃは、リポソーム薬へのＨ１９９３の結合結果を示しており、Ｄは、リポソーム薬の取り込み動態を示しており、Ｅは、３７℃で指定期間培養した後の共焦点顕微鏡で見たＨ１９９３細胞によるＭｓ２０−ＬＤ及びＬＤの取り込み結果を示しており、ドキソルビシンはＭｓ２０−ＬＤとの２時間の培養により細胞質及び核質中に分散しており、Ｍｓ２０−ＬＤとの８時間の培養後、ドキソルビシンは主に細胞核中に蓄積し、ドキソルビシンは、ＬＤで処置した細胞中で非常に弱く検出可能であり、下のパネルは、細胞膜（緑色、擬似色）及び核（青色）染色を合成したドキソルビシン信号（赤色）の画像をスケールバー５０μｍで示している。 Ｍｓ２０媒介性リポソームがドキソルビシン誘発の細胞毒性効果を向上させたことを示す図である。Ａは、様々な濃度のＭｓ２０−ＬＤ及びＬＤで処置したヒト肺癌細胞系のインビトロ細胞毒性アッセイの結果を示しており、Ｂは、ＩＣ50比率を計算してＬＤに対するＭｓ２０−ＬＤの細胞毒性の増強を解析した結果を示しており、Ｃは、２．５μｇ／ｍｌのＭｓ２０−ＬＤ及びＬＤで０、２４、４８及び７２時間夫々処置した後のＨ１９９３細胞のウエスタンブロット分析の結果を示している。 ヒト肺癌異種移植片における抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖの腫瘍ホーミング能力の識別結果を示す図である。Ａは、ヒト肺癌Ｈ４６０異種移植片を有するＳＣＩＤマウスにＰＣ２０及び対照ファージ（Ｃｏｎ−Ｐ）を夫々静脈内注入した結果を示しており、Ｂは、ホーミングアッセイにおける免疫組織化学的染色によるＰＣ２０の局在化の試験結果を示しており、Ｃは、４００ｐｍｏｌｅのＭｓ２０−ＱＤ（量子ドット）（右）又はＱＤ（左）を静脈内注入した後のＨ１９９３ヒト肺腫瘍を有するＳＣＩＤマウスのインビボ画像を示しており、ＮＩＲ蛍光画像を注入の６時間後に取得し（上パネル）、赤色の円は腫瘍の位置を示しており、腫瘍領域の信号強度をＩＶＩＳソフトウェアによって定量化したことを示しており（下パネル）、Ｄは、Ｍｓ２０−ＱＤ及びＱＤの組織分布を注入の２４時間後に判定し、マウスを屠殺し、解剖した器官のＮＩＲ画像を取得し（上パネル）、腫瘍及び器官の信号強度をＩＶＩＳソフトウェアによって測定した（下パネル）ことを示している。 ヒト肺癌異種移植片におけるＭｓ２０−ＬＤの処置効果を示す図である。Ａは、Ｍｓ２０−ＬＤ、ＬＤ又はＰＢＳを投与した、Ｈ４６０由来の肺癌を有するマウスの腫瘍体積を示しており、Ｂは、各群の体重を示しており、Ｃは、処置を終了した際の腫瘍重量を示しており、Ｄは、Ｃに図示された分析結果の代表画像を示しており、Ｅは、腫瘍組織の腫瘍血管の調査結果を示しており、Ｆは、ＴＵＮＥＬアッセイを使用した、腫瘍領域におけるアポトーシス細胞の分析結果をエラーバーＳＥ* 、Ｐ＜０．０５で示している。 可溶性ｃ−Ｍｅｔ932 −Ｆｃタンパク質及び抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖの精製結果を示す図である。Ａは、クマシーブルー染色（左パネル）及び抗ｃ−Ｍｅｔポリクローナル抗体を使用したウエスタンブロット分析（右パネル）をレーン１の全培養培地、レーン２のタンパク質Ｇフロースルー及びレーン３の精製された可溶性ｃ−Ｍｅｔ932 −Ｆｃタンパク質で示しており、Ｂは、可溶性抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖを、ファージ感染した大腸菌ＨＢ２１５１のペリプラズム抽出物から精製し、ウエスタンブロット分析は、可溶性ｓｃＦｖが抗Ｅタグ抗体（下パネル）によって認識されたことを示している。 種々のヒト癌細胞系及び血管内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）に結合する抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖの調査に関し、種々のヒト癌細胞系に対する抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖであるＳ１又はＳ２によるＥＬＩＳＡ結果を示す図である。 種々のヒト癌細胞系及び血管内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）に結合する抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖの調査に関し、フローサイトメトリーによって分析した抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖのＨＵＶＥＣへの結合結果を示す図である。 ヒト肺癌細胞上で内因性ｃ−Ｍｅｔに特異的に結合した抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖを示す図である。Ａは、ウエスタンブロット分析が、レンチウイルスでの感染による、Ｈ４６０細胞（ＭＥＴ−ＫＤ Ｈ４６０細胞）中のｃ−Ｍｅｔの下方制御により、ｃ−Ｍｅｔ ｓｈＲＮＡが発現したことを示しており、Ｂは、ｃ−Ｍｅｔ野生型細胞及びノックダウンＨ４６０細胞に結合する抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖのＦＡＣＳ分析結果を示している。 Ｍｓ２０抱合型リポソームドキソルビシン（Ｍｓ２０−ＬＤ）の合成結果を示す図である。Ａは、カルボキシル末端にＦｌａｇタグ、ヘキサヒスチジン及びシステイン残基を含有するｓｃＦｖタンパク質（Ｍｓ２０）を発現する原核生物ベクターｐＦＨＣ−Ｓ２０の構築を概略的に示しており、Ｂは、Ｎｉ＋ＮＴＡセファロース及びタンパク質Ａアガロースクロマトグラフィーを使用して精製されたＭｓ２０のＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析及びクマシーブルー染色の結果を示しており、ＰＰＥはペリプラズム抽出物を意味し、ＦＬはフロースルーを意味し、Ｃは、概略モデルがマレイミド−ＰＥＧ−ＤＳＰＥ組み込み型ＬＤを用いた還元Ｍｓ２０の抱合手順を示しており、Ｄは、セファロース４Ｂゲル濾過による精製後のＭｓ２０抱合型ＬＤに対するＳＤＳ−ＰＡＧＥ分析及び硝酸銀染色を、レーン３〜８のマレイミド−ＰＥＧ−ＤＳＰＥへの抱合後のＭｓ２０（上バンド）で示している。 Ｍｓ２０−ＱＤを使用したＦＡＣＳ分析による、ヒト肺癌細胞系におけるｃ−Ｍｅｔ発現の識別結果を示す図である。Ａは、ヒト肺癌細胞系を４℃で１時間、１０μＭのＭｓ２０−ＱＤ及びＱＤと共に培養し、ＦＡＣＳ分析を実行して結合活性を評価した結果を示しており、Ｂは、Ｈ１９９３細胞を３７℃で３０分間５０ｎＭのＭｓ２０−ＱＤと共に培養し、Ｈ１９９３細胞によるＭｓ２０−ＱＤの結合及び取り込みを、共焦点顕微鏡法により調べた結果をスケールバー５０μｍで示している。
定義
以下の記載において、細胞培養の分野で従来使用される多くの用語を広く利用している。本明細書、請求項、及びこのような用語に与えられる範囲の明確且つ一貫した理解をもたらすために、以下の定義を提示する。
本明細書に使用される際、「ｃ−Ｍｅｔ」は、肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）に結合することができる受容体型チロシンキナーゼの要素を意味し、「肝細胞増殖因子受容体」（ＨＧＦＲ）又は「ｍｅｔ癌原遺伝子」とも呼ばれる。用語「ｃ−Ｍｅｔ」は、ｃ−Ｍｅｔタンパク質のあらゆる天然のアイソフォームを意味する。ｃ−Ｍｅｔのアミノ酸配列は公知であり、ジェンバンク（ＧｅｎＢａｎｋ）の受託番号ＮＰ＿０００２３６．２及びＮＰ＿００１１２０９７２．１として見出され得る。
用語「ポリペプチド」、「ペプチド」又は「タンパク質」は、隣接する残基のα−アミノ基及びカルボキシ基間のペプチド結合によって互いに連結された線系列のアミノ酸残基を意味し、本明細書に互換的に使用されている。更にアミノ酸は、２０個の「標準的な」遺伝子コード可能なアミノ酸に加えてアミノ酸類似体を含む。
「抗体」は、抗原結合タンパク質を独立して含有する組成物、又は調製物として複数の抗原結合タンパク質を含有する組成物であり、免疫グロブリン遺伝子若しくは免疫グロブリン遺伝子のフラグメントによって遺伝子コード可能な１又は複数のポリペプチド、又はファージディスプレイライブラリから得られるか若しくはファージディスプレイライブラリに由来するＣＤＲを含む１又は複数のポリペプチドを有し、対象の抗原に結合する組成物を包含する。軽鎖は、κ又はλのいずれかとして分類される。重鎖は、γ、μ、α、β又はεとして分類され、順番に免疫グロブリンのクラスであるＩｇＧ、ＩｇＭ、ＩｇＡ、ＩｇＤ及びＩｇＥを夫々定義している。
抗体の一例として、夫々の組が１つの「軽」鎖及び１つの「重」鎖を有する２組のポリペプチド鎖から構成される四量体の構造単位を有する抗体がある。各鎖のＮ末端部分が、抗原結合を媒介する可変領域を画定する。可変軽鎖（ＶL ）及び可変重鎖（ＶH ）という用語は夫々、軽鎖及び重鎖を意味する。
「抗体」はまた、単一のポリペプチドとして共に結合された重鎖及び軽鎖を含む単鎖抗体も包含する。
上述したように、「抗体」は、完全な免疫グロブリン、及び抗体の抗原結合フラグメントを包含する。従って、本明細書に使用される際の用語「抗体」は、全抗体の修飾によって生成可能であるか、又は組み換えＤＮＡ法を使用してデノボ合成可能である抗体の抗原結合部分を含む。一例として、Ｆａｂ’、Ｆａｂ’2 又はｓｃＦｖがあるが、これらに限定されない。
単鎖Ｆｖ（「ｓｃＦｖ」）ポリペプチドは、直接的に結合されるか又はペプチドをコードするリンカーによって結合されるＶH 及びＶL コード配列を含む核酸から発現され得る共有結合したＶH ：：ＶL ヘテロ二量体である。抗体Ｖ領域由来の軽鎖及び重鎖のポリペプチド鎖を、抗原結合部位の構造と略同様の３次元構造に折り畳むｓｃＦｖ分子へと変換するために、多くの構造が利用可能である。ｓｃＦｖは、二重特異性抗体に加えて、三重特異性抗体又は四重特異性抗体として存在してもよい。
尚、種々の抗体フラグメントが完全な抗体の消化に関して定義されるが、当業者は、このようなフラグメントが、化学的に又は組み換えＤＮＡ法を利用してデノボ合成可能であることを理解する。
用語「抗体」は、ポリクローナル抗体及びモノクローナル抗体を包含し、更にあらゆるクラスの抗体をも包含する（例えば、ＩｇＭ、ＩｇＧ及びそれらのサブクラス）。「抗体」は更にハイブリッド抗体、異種抗体、キメラ抗体、ヒト化抗体、及び抗原結合を保持するそれらの機能フラグメントを包含する。抗体は、他の部分に抱合されてもよく、及び／又は、支持体（例えば、固体支持体）、例えばポリスチレンプレート、ビーズ、試験紙等に結合されてもよい。
免疫グロブリンの軽鎖又は重鎖の可変領域は、相補性決定領域又は「ＣＤＲ」とも称される３つの超可変領域によって遮断される「フレームワーク」領域（ＦＲ）から構成されている。フレームワーク領域及びＣＤＲの範囲は、本技術分野では公知であるデータベースに基づいて決定され得る。例えば、ｗｗｗ．ｖｂａｓｅ２．ｏｒｇのＶ Ｂａｓｅ参照。異なる軽鎖又は重鎖のフレームワーク領域の配列は、種内で相対的に保存されている。抗体のフレームワーク領域、すなわち構成の軽鎖及び重鎖が組み合わされたフレームワーク領域は、ＣＤＲを配置し整列するように機能する。ＣＤＲは主に、抗原のエピトープへの結合に関与する。本開示によって提供される全てのＣＤＲ及びフレームワーク領域は、別段の指定がない限りＶ Ｂａｓｅに従って決定される。
「抗ｃ−Ｍｅｔ抗体」は、ｃ−Ｍｅｔに、好ましくは高い親和性で特異的に結合する抗体を意味する。ｃ−Ｍｅｔに特異的な抗体は、ｃ−Ｍｅｔに関連のない他の抗原に対してｃ−Ｍｅｔとの結合のように結合しない。
抗体に関して使用される際の用語「高い親和性」とは、親和性（ＫD ）の値が１０-6Ｍ以下、１０-7Ｍ未満、１０-8Ｍ未満であり、一又は複数の標的に特異的に結合する（「認識する」）抗体を意味する。より低いＫD 値はより高い結合親和性（すなわち、より強い結合）に相当し、１０-7のＫD 値は、１０-6のＫD 値よりも高い結合親和性を示す。
「抗原結合部位」又は「結合部分」は、免疫反応性抗原結合に関与する抗体分子の一部（例えば、免疫グロブリン分子のフラグメント又はｓｃＦｖ）を意味する。抗原結合部位は、重（「Ｈ」）鎖及び／又は軽（「Ｌ」）鎖のＮ末端可変（「Ｖ」）領域のアミノ酸残基によって形成される。重鎖及び軽鎖のＶ領域内の３つの高度に分岐したストレッチが、「フレームワーク領域」又は「ＦＲ」として公知の更に保存された隣接するストレッチ間に挿入される「超可変領域」と称される。従って、用語「ＦＲ」は、免疫グロブリンの超可変領域の間に超可変領域に隣接して天然に見出されるアミノ酸配列を意味する。四量体抗体分子では、軽鎖の３つの超可変領域及び重鎖の３つの可変領域が、抗原結合の「表面」を形成するために３次元空間で互い相対的に配置されている。この表面は、標的である抗原の認識及び結合を媒介する。重鎖及び／又は軽鎖の夫々の３つの超可変領域は、「相補性決定領域」又は「ＣＤＲ」と称される。
「エピトープ」は、抗体が結合する抗原上の部位（例えば、ｃ−ＭｅｔのＳｅｍａ又はＰＳＩドメイン上の部位）である。エピトープは、タンパク質の折り畳み（例えば、３つ折り）により並置される連続したアミノ酸又は非連続のアミノ酸の両方から形成され得る。
「Ｓ２１抗体」又は「クローン２１由来の抗体」は、クローンＳ２１若しくはクローン２１によって発現される抗体、又は他の方法で合成されるが、クローンＳ２１によって発現される抗体と同一のＣＤＲ及び任意には同一のフレームワーク領域を有する抗体を意味する。同様に、抗体Ｓ１（クローン１）及び抗体Ｓ２０（クローン２０）等は、一若しくは複数の対応するクローンによって発現される抗体、並びに／又は他の方法で合成されるが、参照される抗体と同一のＣＤＲ及び任意には同一のフレームワーク領域を有する抗体を意味する。これらの抗体のＣＤＲを以下の表１に示している。
用語「対象」、「個体」及び「患者」は、治療を評価される、及び／又は治療される哺乳動物を意味し、本明細書に互換的に使用されている。一実施形態では、哺乳動物はヒトである。従って、用語「対象」、「個体」及び「患者」は、癌（例えば、肺癌、卵巣又は前立腺の腺癌、乳癌等）を有する個体を包含する。対象は、ヒトであってもよいが、他の哺乳動物、特にはヒト疾患の実験モデルとして有用な哺乳動物、例えば、マウス、ラット等も含む。
本明細書に使用される際、用語「治療」、「治療する」等は、効果を得る目的で、薬剤を投与すること、又は処置（例えば、放射線、外科的処置等）を行うことを意味する。効果は、疾患若しくはその症状を完全若しくは部分的に防止するという意味で予防的であってもよく、並びに／又は疾患及び／若しくはその疾患の症状の部分的若しくは完全な治癒という意味で治療的であってもよい。「治療」は、本明細書に使用される際、哺乳動物、特にはヒトにおけるあらゆる増殖性成長のあらゆる治療を含み、（ａ）（例えば、原発性疾患と関連するか、又は原発性疾患によって引き起こされる可能性のある疾患を含む）疾患の傾向があるが、まだ疾患を有すると診断されてはいない対象に疾患若しくは疾患の症状が発生することを防止すること、（ｂ）疾患を阻害すること、すなわち、その発達を停止させること、及び（ｃ）疾患を軽減すること、すなわち、疾患の退行をもたらすことを含む。腫瘍（例えば、癌）の治療では、治療薬が、腫瘍細胞の転移を直接的に減少させることができる。
用語「細胞培養」又は「培養」は、人工的な生体外環境における細胞の維持を意味する。しかしながら、「細胞培養」は、一般的な用語であり、個別の細胞だけでなく、組織又は器官の培養も包含して使用され得ることを理解すべきである。
用語「腫瘍」は、本明細書に使用される際、悪性又は良性に関わらず、全ての腫瘍性の細胞成長及び増殖、並びに全ての前癌状態の細胞及び組織を意味する。
用語「癌」、「新生物」及び「腫瘍」は、自発的な未制御の増殖を示し、その結果、細胞増殖に対する制御の著しい損失によって特徴付けられる異常増殖の表現型を表す細胞を意味し、本明細書に互換的に使用されている。一般的に、本出願における検出、分析、分類又は治療の対象細胞には、前癌状態（例えば、良性）、悪性、転移前状態、転移性及び非転移性の細胞が含まれる。癌の例には、肺癌、腎臓癌（例えば、腎癌）、胃癌、乳癌、脳腫瘍、肺癌、前立腺癌、肝細胞癌、脾臓癌、子宮頸癌、卵巣癌、肝臓癌、膀胱癌、尿道癌、甲状腺癌、癌腫、黒色腫、頭頸部癌及び結腸癌が挙げられるが、これらに限定されない。
癌の性質に応じて適切な患者試料を得る。本明細書に使用される際、用語「癌性組織試料」は、癌性腫瘍から得られた任意の細胞を意味する。固形腫瘍の場合、外科的に除去された腫瘍に由来する組織試料は通常、従来技術により検査するために得られて調製される。或いは、リンパ液、血液若しくは血清試料等の体液試料、又は癌性器官浸出液等の浸出液試料（例えば、胸部からの浸出液）を分析する試料として収集し使用することができる。白血病の場合、リンパ球又は白血病細胞を得て、適切に調製する。同様に、任意の転移した癌の場合、細胞は、体液、例えばリンパ液、血液、血清又はその末端感染器官若しくは浸出液から取り出されてもよい。
癌の「病状」は、患者の健康を損なう全ての現象を含む。これには、異常又は制御不能な細胞増殖又は細胞転移、隣接する細胞の正常機能の妨害、サイトカイン又は他の分泌産物の異常なレベルでの放出、炎症性又は免疫学的反応の抑制又は悪化、周辺組織又は末端組織又は器官、例えばリンパ節等の新生組織形成、前悪性化、悪性化、浸潤が含まれるが、これらに限定されるものではない。
用語「診断」は、分子状態又は病理学的状態、疾患又は症状の識別、例えば乳癌、前立腺癌又は他の種類の癌の分子のサブタイプの識別を意味して本明細書に使用される。
用語「予後」は、肺、結腸、皮膚又は食道の癌のような腫瘍性疾患の再発、転移拡散及び薬物耐性を含む、癌に起因する死亡又は進行の可能性の予測を意味して本明細書に使用される。用語「予測」は、観察、経験又は科学的理由に基づいて予想するか又は推測する行為を意味して本明細書に使用される。一実施例では、医師は、患者が原発性腫瘍の外科的除去及び／又は化学療法の後、癌の再発なしに一定期間生存する可能性を予測することができる。
本明細書に使用される際、「相関する」又は「と相関する」という用語及び同様の用語は、事象が数字、データセット等を含む場合の２つの事象間の統計的関連を意味する。例えば、事象が数字を伴うとき、（本明細書では「直接相関」とも称される）正相関は、一方が増加するにつれて、もう一方も同様に増加することを意味する。（本明細書では「逆相関」とも称される）負相関は、一方が増加するにつれて、もう一方が減少することを意味する。
用語「単離された」とは、化合物が、本来化合物に付随する構成要素のうちの全て又は一部から分離していることを意味すべく意図している。「単離された」はまた、製造中（例えば、化学的合成、組み換え発現、培養培地等）に化合物に付随する構成要素のうちの全て又は一部から分離した化合物（例えば、タンパク質）の状態も意味する。
「生体試料」は、個体から得られた様々な試料の種類を包含する。この定義は、生体起源の血液及び他の液体試料、固形組織試料、例えば生検標本若しくは組織培養又は生検標本若しくは組織培養に由来する細胞、並びにその後代等を包含する。この定義はまた、試料の調達後に任意の方法、例えば、試薬での処理、洗浄又は癌細胞等の特定の細胞集団の増強によって操作された試料も含む。この定義は更に、特定の種類の分子、例えば核酸、ポリペプチド等が豊富な試料も含む。用語「生体試料」は、臨床試料を包含し、外科的切除によって得られた組織、生検によって得られた組織、培養液中の細胞、細胞上清、細胞溶解物、組織試料、器官、骨髄、血液、血漿、血清等も含む。「生体試料」には、患者の癌細胞から得られた試料、例えば、患者の癌細胞から得られたポリヌクレオチド及び／又はポリペプチドを含む試料（例えば、ポリヌクレオチド及び／又はポリペプチドを含む細胞溶解物又は他の細胞抽出物）、並びに患者由来の癌細胞を含む試料が含まれる。患者由来の癌細胞を含む生体試料には、非癌性細胞も含まれ得る。
ｃ−Ｍｅｔに特異的に結合する抗体、並びに関連する組成物及びその使用方法を本明細書に開示する。使用方法は、癌療法及び診断を包含する。
本抗体は、クローン１、２０又は２１由来の抗体のＶH の少なくとも１つ、２つ又は３つ全てのＣＤＲを含む。本抗体は更に、クローン１、２０又は２１由来の抗体のＶL の少なくとも１つ、２つ又は３つ全てのＣＤＲを含む抗体も包含する。各ＶH 又はＶL のＣＤＲは独立して選択され得る。或いは、本抗体は、ｃ−Ｍｅｔと結合すべく、クローン１、２０又は２１由来の抗体と競合する（例えば、クローン１、２０又は２１由来の抗体と同一のエピトープに結合する）。
本開示の抗体はまた、クローン１、２０又は２１由来の抗体のＶH の全てのＣＤＲ及び／又はＶL の全てのＣＤＲを含んでもよい。本抗体は、クローン１、２０又は２１由来の抗体のＶH の全長を含んでもよい。本抗体はまた、クローン１、２０又は２１由来の抗体のＶL の全長を含んでもよい。
本抗体は、単鎖Ｆｖ（ｓｃＦｖ）、Ｆａｂ、（Ｆａｂ’）2 、（ＳｃＦｖ）2 等であってもよい。本抗体は、ＩｇＧ（例えば、ＩｇＧ2 ）若しくは任意の他のアイソタイプであってもよく、又は二重特異性抗体であってもよい。
本抗体は、血清半減期（例えばＰＥＧ）、エンドサイトーシス等を改善する抗癌剤、標識、部分等に抱合されてもよい。本抗体はまた、薬学的に許容可能な賦形剤の形態で（例えば、単位投与量製剤で）あってもよい。本開示は更に、本明細書に記載の抗体から選択される１つ以上の異なる抗体、及び／又はこれらの抗体に由来する１つ以上のＣＤＲを含む抗体、及び／又はこれらの抗体の変異体若しくは誘導体を含む１つ以上の抗体を含む組成物を提供する。組成物は、クローン１、２０又は２１等の１つ以上の抗体を含むことができる。
本開示の方法は、本明細書に開示されている１つ以上の本発明の抗体を、本発明の抗体によって結合される抗原を発現する癌を有する対象を治療するために効果的な量で投与する方法を含む。本開示によって提供される抗体は、癌の診断及び予後にも使用可能である。
本明細書に提供されている核酸は、本明細書に記載されている１つ以上の抗体をコードする。このような核酸を含む宿主細胞、及び本発明の抗体を（例えば、分泌によって）生成する宿主細胞が本明細書に更に提供されている。キットが、本発明の抗体を含有する組成物を調製するために、又は本発明の方法を実行するために更に提供されている。
抗体
好ましい抗体は、癌細胞の細胞表面に露出可能な膜受容体であるｃ−Ｍｅｔに高い親和性を有する。癌細胞には、例えば、肺癌細胞由来の癌細胞（例えば、Ｈ１９９３又はＨ４４１）及びその他の癌細胞が含まれる。本発明の抗体には、抗原、例えば哺乳類生細胞の表面の抗原に結合する際に、例えば受容体媒介性エンドサイトーシス等のエンドサイトーシスによって細胞内に取り込まれるような抗体が含まれる。
本発明の抗体には、ｃ−Ｍｅｔのエピトープに、クローン１、２０又は２１由来の抗体と競合的に結合する抗体が含まれる。特定の抗体が別の抗体と同一のエピトープを認識する能力は、１つの抗体が、第２の抗体の抗原との結合を競合的に阻害する能力によって決定され得る（例えば、競合的結合アッセイによって決定され得る）。クローン１、２０又は２１由来の抗体と同一のエピトープに結合する本発明の抗体も本明細書に意図されている。
多くの競合的結合アッセイのうち任意のものを使用して、同一の抗原に結合する２つの抗体間の競合を測定することができる。例えば、サンドイッチＥＬＩＳＡアッセイを、このために使用することができる。交差反応をアッセイする手段は当業者に周知である（例えば、ダウベンコ（Ｄｏｗｂｅｎｋｏ）等著，「ジャーナル・オブ・ウィルス（Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．）」，１９８８年，６２巻，p.４７０３−４７１１参照）。
１つの抗体は、抗原との第２の抗体の結合が、第１の抗体の存在下で競合的結合を評価するために使用される複数のアッセイのうち任意のアッセイを使用して少なくとも３０％、通常少なくとも約４０％、５０％、６０％又は７５％、多くの場合少なくとも約９０％低減される場合、第２の抗体の結合を競合的に阻害するとみなされる。
これは、（例えば表面プラズモン共鳴を使用して）固体支持体に付着した１つ以上の単離された標的抗原（例えばｃ−Ｍｅｔの全長又はフラグメント）を準備し、抗体が標的に結合する能力、又は標的と結合すべく本明細書に記載の抗体と競合する能力をアッセイすることによって確認され得る。
抗ｃ−Ｍｅｔ抗体（例えば、クローン１及び２０）によって結合されるエピトープは、ｃ−Ｍｅｔのリガンド（例えば、肝細胞増殖因子）の結合部位に存在する。肝細胞増殖因子の結合部位は、およそ残基位置２５〜５６７のｃ−Ｍｅｔの連続したアミノ酸配列内にある。エピトープはまた、ＳＥＭＡ又はＰＳＩドメイン内の位置によって記述され得る。
或いは、抗ｃ−Ｍｅｔ抗体（例えば、クローン２１）によって結合されるエピトープは、およそ残基位置５６７〜およそ残基位置９３２のｃ−Ｍｅｔの連続したアミノ酸配列内にある。エピトープはまた、ｃ−ＭｅｔのＩｇＧ様ドメイン内の位置によって記述され得る。
上記で使用したｃ−Ｍｅｔの残基位置番号は、ジェンバンク（ＧｅｎＢａｎｋ）受託番号ＮＰ＿０００２３６．２又はＵｎｉＰｒｏｔ受託番号Ｐ０８５８１に記載の配列に基づいている。
ｃ−Ｍｅｔと同様のエピトープを共有する抗原が、本発明の抗体の結合標的であってもよい。本発明の抗体は、ｃ−Ｍｅｔに結合すると、ｃ−Ｍｅｔタンパク質を発現する細胞によって取り込まれ得る。
抗ｃ−Ｍｅｔ抗体が親和性を有するエピトープは、細胞表面が露出し、多くの癌細胞、特には細胞の原形質膜に溶媒接触可能である。エピトープは、細胞が生存しているときに本発明の抗体に接触可能である。例えば、エピトープは、肺、腎臓、肝臓、胃、胸及び脳等に由来する癌細胞に存在し得る。抗ｃ−Ｍｅｔ抗体が親和性を有する癌細胞は、ｃ−Ｍｅｔ発現癌細胞を含む任意の癌であり得る。
上述したように、本発明の抗体は、クローン１、２０又は２１等に由来する抗体のうち１つ以上と競合する抗体を包含する。更に、本抗体は、約１×１０-6ＭのＫD を有する抗体と同程度であるか又はより大きいｃ−Ｍｅｔとの結合親和性を有し得る。ｃ−Ｍｅｔに対する本開示の抗体のＫD は、約１×１０-6Ｍ〜約１×１０-7Ｍ、約１×１０-7Ｍ〜約１×１０-8、約１×１０-8Ｍ〜約１×１０-9Ｍの範囲内であってもよい。例えば、本開示の抗体のＫD は、約５×１０-9Ｍ〜約２×１０-8Ｍの間であってもよい。
本発明の抗体の例には、同一の結合特異性を有し、少なくとも２つのＣＤＲを含み、ＣＤＲが夫々独立して少なくとも約８０％、少なくとも約８７％、少なくとも約９３％、少なくとも約９４％又は最大で１００％のアミノ酸配列の同一性を以下の表１に示されている抗体のＶH のＣＤＲのアミノ酸配列（例えば、クローン２１のＶH のＣＤＲ１）と共有する抗体が包含される。本発明の抗体は更に、表１に示されている夫々の抗体の任意のＶH のＣＤＲに由来する３つ全てのＣＤＲを含むことが可能であり、本発明の抗体のＶH の夫々のＣＤＲは、表１に示されている単一の抗体から選択され、ＶH の夫々のＣＤＲは独立して、少なくとも約８０％、少なくとも約８７％、少なくとも約９３％、少なくとも約９４％又は最大で１００％のアミノ酸配列同一性を表１に示されている抗体のＶH のＣＤＲのアミノ酸配列と共有する。例えば、本発明の抗体の重鎖は、クローン２１のＶH の２つのＣＤＲ又はＶH の３つ全てのＣＤＲを含むことができる。或いは、重鎖は、クローン２１のＶH の２つのＣＤＲ又はＶH の３つ全てのＣＤＲを含んでもよい。
軽鎖についても同様に、本発明の抗体は、同一の結合特異性を有し、少なくとも２つのＣＤＲを含むことが可能であり、ＣＤＲは夫々独立して表１に示されている夫々の抗体のＶL のＣＤＲ（例えば、クローン２１のＶL のＣＤＲ１）のアミノ酸配列と、少なくとも約８０％、少なくとも約８７％、少なくとも約９３％、少なくとも約９４％又は最大で１００％のアミノ酸配列の同一性を有する。本発明の抗体は更に、表１に示されている抗体のうち任意の抗体に由来するＶL の３つ全てのＣＤＲを含んでもよく、ＶL の各ＣＤＲは独立して、少なくとも約８０％、少なくとも約８７％、少なくとも約９３％、少なくとも約９４％又は最大で１００％のアミノ酸配列の同一性を表１に示されている抗体のＶL のＣＤＲのアミノ酸配列と共有する。例えば、本発明の抗体の軽鎖は、クローン２１のＶL の２つのＣＤＲ又はＶL の３つ全てのＣＤＲを含有することができる。或いは、軽鎖は、クローン２１のＶL の２つのＣＤＲ又はＶL の３つ全てのＣＤＲを含んでもよい。
任意には、抗体は、表１に提示されている重鎖又は軽鎖の対応するフレームワーク配列のいずれかで同一の（すなわち、１００％同一性を有する）フレームワーク配列（ＦＲ）、類似のフレームワーク配列（ＦＲ）又は異なるフレームワーク配列（ＦＲ）を含んでもよい。フレームワーク配列が類似している場合、フレームワークは、以下の表１に示されている抗体のいずれかにおける対応するフレームワーク配列に、少なくとも約８５％、少なくとも約８６％、少なくとも約９０％、少なくとも約９３％、少なくとも約９６％、少なくとも約９８％又は最大で１００％の同一性を有する。
従って、本開示の抗体は、表１に示されているＶH 又はＶL の配列の全長と、少なくとも８０％の同一性、少なくとも８５％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、又は最大で１００％のアミノ酸配列の同一性を有するＶH の全長及び／又はＶL の全長の配列を含むことができる。例えば、本発明の抗体は、クローン２１のＶH の全長及び／又はＶL の全長を含んでもよい。或いは、本発明の抗体は、クローン２０のＶH の全長及び／又はＶL の全長を含んでもよい。
抗体の製造方法
本明細書に提供されている情報を使用して、本開示の抗ｃ−Ｍｅｔ抗体を、当業者に周知の標準的な技術を使用して調製する。例えば、本明細書に提供されているポリペプチド配列（例えば、表１参照）を使用して、抗体をコードする適切な核酸配列を決定し、次にその核酸配列を使用してｃ−Ｍｅｔに特異的な１つ以上の抗体を発現することができる。一又は複数の核酸配列は、当業者に周知の標準的な方法に従って種々の発現システムに対する特定のコドン「選好」を反映するように最適化され得る。
提供された配列情報を使用して、当業者に公知の多数の標準的な方法に従って核酸を合成することができる。オリゴヌクレオチド合成は、市販の固相オリゴヌクレオチド合成器で行われるか、又は、例えば固相ホスホラミダイトトリエステル法を使用して手作業で合成されることが好ましい。
本発明の抗体をコードする核酸を合成すると、標準的な方法に従って核酸を増幅する及び／又はクローニングすることができる。このような結果を達成するための分子クローニング技術は本技術分野で公知である。組み換え核酸の構築に適した幅広い種類のクローニング及びインビトロ増幅方法が当業者に公知である。
本開示の抗体をコードする天然又は合成の核酸の発現は、抗体をコードする核酸をプロモーターに（構成的又は誘導的のいずれかで）操作可能に結合し、その構築物を発現ベクターに組み込むことによって達成され得る。ベクターは、原核生物、真核生物又は両方における複製及び統合に好適であり得る。標準的なクローニングベクターは、抗体をコードする核酸の発現の制御に有用な転写・翻訳ターミネーター、開始配列並びにプロモーターを含む。ベクターは任意には、少なくとも１つの独立した終結配列、真核生物及び原核生物の両方でカセットの複製を可能にする配列、すなわちシャトルベクター、並びに原核生物系及び真核生物系の両方に対する選択マーカーを含む一般的な発現カセットを含む。
クローニングされた核酸を高レベルに発現するためには、転写を指示するための強力なプロモーター、翻訳を開始するためのリボソーム結合部分、及び転写・翻訳ターミネーターを典型的には含む発現プラスミドを構築することが一般的である。大腸菌内で形質転換されるＤＮＡベクターに選択マーカーを含むことも有用である。このようなマーカーの例には、アンピシリン、テトラサイクリン又はクロラムフェニコールに対する耐性を特定する遺伝子が含まれる。抗体を発現するための発現系には、例えば、大腸菌、バチルス属菌及びサルモネラが使用可能である。大腸菌系も使用され得る。
抗体（例えば、ｓｃＦｖ）のＣ末端又はＮ末端でタグ（例えば、ヘキサヒスチジン）の付加を可能にする発現ベクター内に一又は複数の抗体遺伝子をサブクローニングして精製を促進することも可能である。哺乳類細胞に遺伝子をトランスフェクトし発現する方法は、本技術分野では公知である。細胞を核酸で形質導入する際に、例えば、ベクターの宿主領域内で、核酸を含むウイルスベクターを細胞と共に培養することを伴う場合がある。組織又は血液試料由来の細胞系及び培養細胞を含む本開示で使用される細胞の培養は、本技術分野において周知である。
本発明の抗体のための核酸を単離してクローニングすると、当業者に公知の種々の組み換え技術によって作られた細胞に核酸を発現することができる。このような細胞の例には、細菌、酵母、糸状菌、昆虫（例えば、バキュロウイルスベクターを用いる昆虫）及び哺乳類細胞が含まれる。
本発明の抗体の単離及び精製は、本技術分野で公知の方法に従って達成され得る。例えば、タンパク質は、構成的に及び／若しくは誘導の際にタンパク質を発現するように遺伝子操作された細胞の溶解物から単離され得るか、又は免疫親和性精製（又はタンパク質Ｇ若しくはタンパク質Ａを使用する沈殿）、非特異的に結合された物質を除去するための洗浄、及び特異的に結合した抗体の溶出によって合成反応混合物から単離され得る。単離した抗体を、透析、及びタンパク質精製方法に通常採用される他の方法によって更に精製することができる。一実施形態では、金属キレートクロマトグラフィー法を使用して抗体を単離してもよい。本開示の抗体は、上述したように単離を促進するために修飾されてもよい。
本発明の抗体は、（例えば、他のポリペプチドを含まない）略純粋の形態又は単離された形態で調製されてもよい。タンパク質は、存在し得る他の構成成分（例えば、他のポリペプチド又は他の宿主細胞の構成成分）と比較して、ポリペプチドが豊富な組成物に存在してもよい。抗体が、他の発現タンパク質を略含まない組成物中に存在するように、例えば、組成物の９０％未満、通常は６０％未満、更に通常では５０％未満が他の発現タンパク質から構成されているように精製された抗体が準備されてもよい。
本開示は更に、本発明の抗体を生成する細胞を提供する。細胞は、生体外で抗体を再生する能力があるハイブリッド細胞又は「ハイブリドーマ」（例えば、ＩｇＧ等のモノクローナル抗体）であってもよい。
ハイブリドーマの生成を回避する抗体分子の抗原結合領域の組み換えＤＮＡ型を作製するための技術も本明細書に意図されている。ＤＮＡは、例えば、細菌（例えばバクテリオファージ）、酵母、昆虫又は哺乳動物の発現系にクローニングされる。好適な技術の一例として、発現抗体（例えば、Ｆａｂ又はｓｃＦｖ）を（細菌の細胞膜と細胞壁との間の）ペリプラズム空間に移動させるか、又は分泌させるリーダー配列を有するバクテリオファージλベクター系が使用される。ｃ−Ｍｅｔに結合するために、多くの機能フラグメント（例えば、ｓｃＦｖ）を迅速に生成することができる。
修飾
本開示は、所望の特性を与えるように、例えば、対象における特定の種類の組織及び／又は細胞への送達の促進、血清半減期の増加、抗癌活性の補足等を行うように修飾された抗体及び核酸を包含する。本開示の抗体は、修飾の有無に関わらず提供されることができ、ヒト抗体、ヒト化抗体及びキメラ抗体を含む。本発明の抗体を修飾する一方法は、別のタンパク質及び／又は薬物又は担体分子等の１つ以上の更なる要素を抗体のＮ末端及び／又はＣ末端で抱合（例えば、結合）することである。
抱合体で修飾された本発明の抗体は、更なる所望の特徴を与えるために抱合体の第２の分子の性質を利用しながら、所望の結合特異性を保持する。例えば、本発明の抗体は、溶解性、保存又は他の取扱特性、細胞透過性、半減期、免疫原生の減少を補助して、特定の細胞（例えば、神経細胞、白血球、腫瘍細胞等）又は細胞の位置（例えば、リソソーム、エンドソーム、ミトコンドリア等）、組織又は他の身体位置（例えば、血液、神経組織、特定の器官等）を標的化することによって放出及び／又は分配を制御する第２の分子に抱合されてもよい。他の例には、アッセイ、追跡等のための染料、フルオロフォア又は他の検出可能な標識若しくは受容体分子の抱合が含まれる。より具体的には、本発明の抗体は、（例えば、還元末端又は非還元末端のいずれかで）ペプチド、ポリペプチド、染料、フルオロフォア、核酸、炭水化物、抗癌剤、脂質等の第２の分子に、Ｎ−オレオイル、脂肪族アミン、例えばドデシルアミン、オレオイルアミン等のＮ脂肪族アシル基を含む脂質分子の付着物として抱合され得る。
例えば、抗体が細胞内に取り込まれ得ることを考慮すると、本開示の抗体又は核酸は、細胞内への送達効率を増加させるか又は減少させるために更に修飾されてもよい。遺伝子送達方法も、本発明の抗体を細胞内に発現する核酸を送達するために本明細書に意図されている。抗体の細胞取り込み（例えば、エンドサイトーシス）の効率は、ペプチド又はタンパク質への結合によって増加させるか又は減少させることができる。例えば、所与の抗体は、別の抗体等、エンドサイトーシス機構によってより容易に取り込まれる標的受容体又は巨大分子のリガンドに結合され得る。抱合体のペイロードは、エンドサイトーシス小胞がリソソームと融合する際に酸加水分解又は酵素活性によって放出され得る。細胞取り込みを減少させるために、抱合体は、細胞の表面に抗体を保持するリガンドを含んでもよく、それによって、細胞取り込みの制御として有用であるか、又は場合によっては１つの細胞型における取り込みを減少させながら他の型で増加させ得る。
抱合された抗体の他の特性には、抱合体が、非抱合抗体と比較して毒性を減少させる特性が含まれる。別の特性は、抱合体が、ある種類の細胞又は器官（例えば、癌性細胞又は癌性組織）を非抱合抗体より効率的に標的化することができるということである。
更なる例には、抗体と関連して補完する、増強する、高まる又は相乗的に動作する１つ以上の分子と抱合された抗体が含まれる。抗体は、例えば、癌の部位へ送達して細胞の殺滅又はクリアランスを更に促進するために、付加された抗癌剤、例えば、抗増殖部分（例えばＶＥＧＦ拮抗薬、例えば抗ＶＥＧＦ抗体）、毒素（例えばドキソルビシン、リシン、緑膿菌外毒素Ａ等）、放射性核種（例えばホウ素中性子捕捉のための90Ｙ、131 Ｉ、177 Ｌ、10Ｂ等）、抗癌剤及び／又はオリゴヌクレオチド（例えば、ｓｉＲＮＡ）を有してもよい。
抗体含有リポソーム
例えば、抗体は、共有結合的又は非共有結合的な修飾によって脂質ナノ粒子（例えば、リポソーム）に調合されてもよい。抗体は、例えば直接的にＦｃ領域を介して脂質ナノ粒子の表面に付着されてもよい。抗体はまた、脂質ナノ粒子の表面にリンカーを介して移植されたポリマーの末端に共有結合的に付着されてもよい。このような抱合型脂質ナノ粒子は、本明細書では「免疫リポソーム」と称される。
本開示の抗体（例えば、Ｓ２０）をコードする遺伝子は、作製されたＣ末端でシステインと融合され得る。このシステイン融合タンパク質は次に、Ｃ末端のシステインを通じてリポソームの外面で部位特異的な抱合を介してマレイミド修飾ＰＥＧ鎖に特異的に結合され得る。免疫リポソームは、１つ以上の抗癌剤、例えば小分子、ペプチド及び／又は核酸（例えば、ｓｉＲＮＡ）、又は本技術分野で公知の任意のもので充填され得る。リポソームは、例えば、ドキソルビシン等の抗癌剤を含有してもよい。免疫リポソーム内の本発明の抗体は、免疫リポソームが、癌細胞の表面でｃ−Ｍｅｔに特異的に結合することを可能にする標的化部分として機能することができる。リポソーム及び免疫リポソーム等の脂質ナノ粒子を作製して充填する方法は、本技術分野では公知である。例えば、米国特許第７７４９４８５号明細書及び米国特許出願公開第２００７／００３１４８４号明細書を参照し、それらの開示は参照により本明細書に組み込まれる。
本開示の抗体は、改善された薬物動態プロファイルを与えるために、任意には（例えば、ペグ化、高グリコシル化等によって）修飾されてもよい。血清半減期を向上することができる修飾が該当する。本発明の抗体を、１つ以上のポリ（エチレングリコール）（ＰＥＧ）分子部分を含むように「ペグ化」してもよい。タンパク質のペグ化に好適な方法及び試薬は、本技術分野で周知であり、米国特許第５８４９８６０号明細書に見出されることができ、その開示が参照により本明細書に組み込まれる。
本発明の抗体が源から単離される場合、本発明のタンパク質は、精製を促進する部分、例えば特異的結合対の要素、例えばビオチン（ビオチン−アビジン特異的結合対の要素）、レシチン等に抱合されてもよい。本発明のタンパク質はまた、ポリスチレンプレート又はビーズ、電磁ビーズ、試験紙、膜等を含むが、これらに限定されない固体支持体に結合（例えば固定化）されてもよい。
抗体がアッセイで検出される場合、本発明のタンパク質は、検出可能な標識、例えば放射性同位体（例えば125 Ｉ、35Ｓ等）、検出可能な生成物を生成する酵素（例えばルシフェラーゼ、β−ガラクトシダーゼ、西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ等）、蛍光タンパク質、発色タンパク質、染料（例えばフルオレセインイソチオシアネート、ローダミン、フィコエリトリン等）、蛍光発光金属、例えば、ＥＤＴＡ等の金属キレート基を通じてタンパク質に付着された152 Ｅｕ又はランタニド系の他のもの、化学発光化合物、例えばルミノール、イソルミノール、アクリジニウム塩等、生物発光化合物、例えばルシフェリン、蛍光タンパク質等を含み得る。間接的な標識は、本発明のタンパク質に特異的な抗体を含んでおり、該抗体は、二次抗体、及び例えばビオチン−アビジン等の特異的結合対の要素を介して検出される。
本発明の抗体を修飾するために使用される上述した要素はいずれも、リンカー、例えば可動性リンカーを介して抗体に結合され得る。存在する場合、リンカー分子は一般的に、抗体及び結合した担体を抗体と担体との間である程度柔軟に移動させるために十分な長さを有する。リンカー分子は一般的に、約６〜５０原子長である。リンカー分子は、例えばアリールアセチレン、２〜１０モノマー単位を含むエチレングリコールオリゴマー、ジアミン、アミノ酸又はそれらの組み合わせであってもよい。
リンカーがペプチドである場合、リンカーは、例えば４個のアミノ酸〜１０個のアミノ酸、５個のアミノ酸〜９個のアミノ酸、６個のアミノ酸〜８個のアミノ酸又は７個のアミノ酸〜８個のアミノ酸を含む、１個のアミノ酸（例えば、Ｇｌｙ）〜２０個以上のアミノ酸、２個のアミノ酸〜１５個のアミノ酸、３個のアミノ酸〜１２個のアミノ酸等の様々な長さのうち任意の好適なものであってもよく、１、２、３、４、５、６又は７個のアミノ酸であってもよい。
可動性リンカーには、グリシンポリマー（Ｇ）n 、（例えば、ｎが少なくとも１の整数である（ＧＳ）n 、ＧＳＧＧＳn （配列番号１）、及びＧＧＧＳn （配列番号２）を含む）グリシン−セリンポリマー、グリシン−アラニンポリマー、アラニン−セリンポリマー、並びに本技術分野では公知の他の可動性リンカーが含まれる。グリシン及びグリシン−セリンポリマーは、比較的構造化されていないアミノ酸が対象である場合に使用可能であり、構成要素間の中間の連結手段として機能することができる。可動性リンカーの例には、ＧＧＳＧ（配列番号３）、ＧＧＳＧＧ（配列番号４）、ＧＳＧＳＧ（配列番号５）、ＧＳＧＧＧ（配列番号６）、ＧＧＧＳＧ（配列番号７）、ＧＳＳＳＧ（配列番号８）等が挙げられるが、これらに限定されない。上述した任意の要素に抱合されるペプチドの設計には、リンカーが、可動性リンカー、及び可動性が低い構造を与える１つ以上の部分を含むことができるように、完全に又は部分的に可動性であるリンカーが含まれることを当業者は理解する。
ヒト改変抗体
本開示の抗体は、免疫グロブリン、例えばヒトＩｇＧの形態であってもよい。例えば、ｓｃＦｖの形態である本開示の抗体は、ヒト定常領域（例えば、Ｆｃ領域）に結合されてヒト免疫グロブリン、例えば完全なＩｇＧ免疫グロブリンにされ得る。
Ｆｃ領域
ｃ−Ｍｅｔに結合する本開示の抗体はＦｃ領域を含むことができる。Ｆｃ領域は、（例えば、免疫グロブリンの任意のクラス又はサブクラスに由来する）ヒト又は他の動物に見られる天然に存在するアイソフォームであり、任意には変化した機能を有するように更に修飾され得る。Ｆｃ領域が非ヒトのものであり、ＣＤＲ及び／又はＦＲ領域がヒトのものである場合、抗体はキメラ抗体として表現され得る。Ｆｃ領域は、例えば細胞媒介性の細胞毒性の開始、又は補体活性（例えば、Ｃ１ｑ結合又は補体依存性細胞毒性）の活性化、細胞表面受容体の下方制御等の増加したエフェクター機能を有するように１つ以上のアミノ酸残基位置で修飾され得る。本開示の抗体として使用可能なＦｃ改変体の詳細は、例えば、米国特許第７４１６７２７号明細書、米国特許第７３７１８２６号明細書、米国特許第７３３５７４２号明細書、米国特許第７３５５００８号明細書、米国特許第７５２１５４２号明細書、及び米国特許第７６３２４９７号明細書に見出されることができ、それらの開示が参照により本明細書に組み込まれる。
組成物
本発明の組成物は、抗体及び／又は抗体をコードする核酸を含んでおり、抗体は、ｃ−Ｍｅｔを発現する癌細胞に結合し、癌細胞により取り込まれる。本開示の組成物は、癌を有する対象（例えば、ヒト）を治療する際に使用され、疾患のあらゆる段階での治療に好適であり得る。
１つ、２つ又はそれ以上の異なる抗体を含む組成物を薬学的組成物として準備し、組成物を必要とする哺乳動物（例えば、ヒト）に投与することができる。本明細書に意図されている組成物は、１つ、２つ、３つ又はそれ以上の異なる本開示の抗体（及び／又は抗体をコードする核酸）を含むことができる。例えば、組成物は、クローン１、２及び３のうち１つ以上を含むことができる。組成物は任意には、このような抗体由来の１つ以上のＣＤＲを含有する抗体、及び／又はこのような抗体の変異体若しくは誘導体を含有する１つ以上の抗体を更に含んでもよい。
本開示の組成物の例には、表１に開示されている抗体のうち任意のものが含まれる。組成物が２つ以上の抗体を含有する場合、各抗体は、同一の若しくは異なるエピトープ又は異なる抗原上のエピトープに特異的であり得る。例えば、組成物は、ｃ−Ｍｅｔのエピトープに特異的な少なくとも１つの抗体、及びＥＧＦＲ等、別の細胞表面抗原に特異的な別の抗体を含むことができる。組成物はまた、二重特異性、多重特異性の抗体、又は抗体をコードする核酸を含んでもよい。
本開示の抗体は、独立して、及び／又は（例えば、二重特異性又は多重特異性の抗体を形成するために）互いに組み合わせて、及び／又は他の公知の抗癌剤（例えば、癌治療のための抗体）と組み合わせて使用され得る。例えば、リポソーム等の組成物は２つ以上の抗体を含むことができ、該抗体のうち少なくとも１つは本開示の抗体である。上述したように、リポソームは、本発明の抗体とは異なる１つ以上の抗体を含んでもよい。このようなリポソームは、本発明の抗体のエピトープに加えて別のエピトープに特異的であるように二重特異性、多重特異性等であってもよい。
組み合わせは、単一の製剤で行われてもよく、又はキットにおける別個の製剤で行われてもよく、別個の製剤は単一の抗体又は２つの抗体を含んでもよい。キットのこのような別個の製剤は、投与の前に組み合わされてもよく、又は別々の注入によって投与されてもよい。
本発明の薬学的組成物は、水溶液、多くの場合食塩水等の溶液であり得る薬学的に許容可能な賦形剤中に含有されることが可能であり、又は粉末形態で提供されてもよい。本発明の組成物は、他の構成成分、例えば医薬品グレードのマンニトール、ラクトース、デンプン、ステアリン酸マグネシウム、サッカリンナトリウム、滑石、セルロース、グルコース、スクロース、マグネシウム、炭酸塩等を含んでもよい。組成物は、生理学的状態に近づけるために必要に応じて薬学的に許容可能な補助物質を含んでもよく、例えばｐＨ調節・緩衝剤、毒性調節剤、例えば酢酸ナトリウム、塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化カルシウム、乳酸ナトリウム等を含んでもよい。
例えば薬学的に許容可能な塩の形態である本発明の抗体は、以下に述べる方法に使用するために、経口、局所又は非経口投与用の製剤とされ得る。ある実施形態では、例えば、抗体が液体注入物質として投与される場合、抗体の製剤は、即座に使用可能な調剤の形態として、又は薬学的に許容可能な担体及び賦形剤から構成される再構築可能な保存安定性を有する粉末若しくは液体として提供される。
本開示の組成物は、治療有効量の本発明の抗体、及び必要に応じて任意の他の適合性がある構成成分を含むことができる。「治療有効量」とは、単回投与、或いは同一の若しくは異なる抗体又は組成物の連続投与の一部としての個体への投与が対象の癌性細胞の増殖及び／又は転移を減少させるために効果的であることを意味する。抗体のこのような治療有効量及び細胞増殖への影響には、１つ以上の他の治療法（例えば免疫療法、化学療法、放射線療法等）と併用して協働的及び／又は相乗的な阻害が含まれる。以下に記載するように、治療有効量は、投与計画及び対象の状態の診断分析（例えば、ｃ−Ｍｅｔに特異的な抗体を使用した細胞表面のエピトープの有無の監視）等に関連して調節され得る。
量及び用量
薬学的製剤内の抗体の濃度は、約０．１重量％未満、通常は又は少なくとも約２重量％から２０重量％〜５０重量％を超える程度で変わることが可能であり、選択される具体的な投与形態及び患者の必要性に応じて主に液量、粘度等によって選択される。結果として得られる組成物は、溶液、懸濁液、錠剤、丸剤、カプセル、粉末、ゲル、クリーム、ローション、軟膏、エアロゾル等の形態であってもよい。
更に、好適な用量及び投与計画は、所望の増殖阻害及び免疫抑制反応に影響を及ぼすことが公知である抗癌剤又は免疫抑制剤との比較によって決定され得る。このような投与量には、著しい副作用なしに細胞増殖の阻害をもたらす低用量での投与量が含まれる。ある化合物の適正量及び好適な投与により、本開示の化合物は、広範な細胞内効果を、例えば細胞増殖の部分的な阻害から本質的に完全な阻害までをもたらすことができる。投与治療は、単回投与計画又は（例えば、変化量又は維持量を含む）多回投与計画であってもよい。以下に示されているように、本発明の組成物は、他の薬剤との併用で投与されてもよく、従って、用量及び計画は、対象の必要性に適合するようにこの点に関して同様に変化し得る。
組み合わせ療法
幅広い種類の癌療法のうちの任意の療法を本発明の抗体を有する組成物に組み合わせることができる。例えば、化学療法治療又は生体応答修飾物質治療に使用される薬剤は、免疫リポソーム等、抗体を含む薬学的組成物中に存在してもよい。本発明の抗体との組み合わせで使用され得る薬剤を以下に簡単に説明する。
化学療法剤は、癌細胞の増殖を減少させる非ペプチド性（すなわち、非タンパク質性）化合物であり、細胞毒性剤及び細胞増殖抑制剤を包含する。化学療法剤の非限定的な例には、アルキル化剤、ニトロソウレア、代謝拮抗剤、抗腫瘍抗生物質、植物性（例えば、ビンカ）アルカロイド、核酸、例えば阻害性核酸（例えば、ｓｉＲＮＡ）及びステロイドホルモンが挙げられる。
代謝拮抗剤には、例えば、葉酸類似体、ピリミジン類似体、プリン類似体及びアデノシンデアミナーゼ阻害剤が挙げられる。
好適な天然産物及びそれらの誘導体（例えば、ビンカアルカロイド、抗腫瘍抗生物質、酵素、リンフォカイン、及びエピポドフィロトキシン）は、抗癌剤として使用可能である。例えば、タキサン、例えばパクリタキセル及び任意の活性なタキサン誘導体又はプロドラッグがある。
他の抗増殖細胞毒性剤は、ナベルビン（ｎａｖｅｌｂｅｎｅ）、ＣＰＴ−１１、アナストラゾール（ａｎａｓｔｒａｚｏｌｅ）、レトラゾール（ｌｅｔｒａｚｏｌｅ）、カペシタビン、ラロキサフィン（ｒｅｌｏｘａｆｉｎｅ）、シクロホスファミド、イフォスアミド（ｉｆｏｓａｍｉｄｅ）及びドロロキサフィン（ｄｒｏｌｏｘａｆｉｎｅ）である。抗増殖活性を有する微小管作用剤も使用に好適である。ホルモン調整剤及びステロイド（合成類似体を含む）が使用に好適である。
治療方法
本開示の抗体を投与することによって癌細胞の増殖を減少させるための方法を更に本明細書に開示する。癌を有する対象、癌を有する疑いのある対象、又は癌が発達する危険性のある対象が、本明細書に開示されている治療法及び診断に意図されている。
本方法は、治療有効量の抗ｃ−Ｍｅｔ抗体を、抗ｃ−Ｍｅｔ抗体を必要とする患者に投与することを伴う。抗体の投与により、患者における癌細胞増殖の阻害、腫瘍重量の減少、転移の減少及び／又は臨床転帰の改善が可能になる。
本方法は、哺乳動物の対象、特にはヒトにおける（癌予防及び診断後の癌療法を含む）種々の癌療法に使用される。腫瘍を有する対象、腫瘍を有する疑いのある対象、又は腫瘍が発達する危険性のある対象が、本明細書に記載の治療法に意図されている。
関連する実施形態では、治療される対象は、ｃ−Ｍｅｔを発現（例えば、過剰発現）する細胞を保有する。ｃ−Ｍｅｔは、癌細胞の表面に発現し、対応する非癌性細胞より高いレベルで存在することが多い。本態様は、本開示の方法との関連において、ｃ−Ｍｅｔを発現するか又は呈する細胞が、本開示の抗体での治療に適用可能であるという点で有益である。本抗体は、例えば抗原の存在が検出不可能な時点で治療を開始する場合に対象に投与されることが可能であるが、制限することを意図するものではない。抗体療法を、疾患症状の最初の兆候が見られる前、可能性のある疾患の最初の兆候が見られた時点、又は疾患の診断の前若しくは後に開始することも可能である。
例えば、本開示の方法によって阻害され得る癌には、腺癌を含む癌腫、特には肺癌（非小細胞及び小細胞）が含まれるが、これらに限定されない。治療可能な他の癌には、脳、結腸直腸、胃（ｇａｓｔｒｉｃ）、頭頸部、胃（ｓｔｏｍａｃｈ）、腎臓、肝臓及び胸における癌性増殖に由来する癌が含まれる。
癌の種類
本方法は、幅広い種類の癌、特には新生血管の形成を伴う癌及び転移性癌を治療するか又は予防するという点において有用である。本開示の方法を使用する治療に適用可能な癌の例を以下に提供する。
本明細書に開示されている方法による治療に適用可能な癌腫には、食道癌、肝細胞癌、基底細胞癌（皮膚癌の形態）、扁平上皮癌（種々の組織）、移行上皮癌（膀胱の悪性新生物）を含む膀胱癌、気管支癌、結腸癌、結腸直腸癌、胃癌、肺の小細胞癌及び非小細胞癌を含む肺癌、副腎皮質癌、甲状腺癌、膵臓癌、乳癌、卵巣癌、前立腺癌、腺癌、汗腺癌、脂腺癌、乳頭癌、乳頭腺癌、嚢胞腺癌、髄様癌、腎細胞癌、原位置の腺管癌又は胆管癌、絨毛癌、精上皮癌、胎生癌種、ウィルムス腫瘍、子宮頸癌、子宮癌、精巣癌、骨原性癌、上皮癌、並びに鼻咽頭癌が含まれるが、これらに限定されない。
本明細書に開示されている方法による治療に適用可能な肉腫には、線維肉腫、粘液肉腫、脂肪肉腫、軟骨肉腫、脊索腫、骨原性肉腫、骨肉腫、血管肉腫、内皮肉腫、リンパ管肉腫、リンパ管内皮肉腫、滑膜腫、中皮腫、ユーイング肉腫、平滑筋肉腫、横紋筋肉腫、及び他の軟部組織肉腫が含まれるが、これらに限定されない。
本明細書に開示されている方法による治療に適用可能な他の固形腫瘍には、膠腫、星状細胞腫、髄芽腫、頭蓋咽頭腫、上衣腫、松果体腫、血管芽細胞腫、聴神経腫、乏突起膠腫、髄膜腫、黒色腫、神経芽細胞腫、及び網膜芽細胞腫が含まれるが、これらに限定されない。
本明細書に開示されている方法による治療に適用可能な他の癌には、異型髄膜腫（脳）、島細胞癌（膵臓）、髄様癌（甲状腺）、間葉腫（腸）、肝細胞癌（肝臓）、肝芽腫（肝臓）、明細胞癌（腎臓）、及び神経線維腫縦隔が含まれる。
本明細書に開示されている方法を使用する治療に適用可能な更なる例示的な癌には、神経外胚葉及び上皮由来の癌が含まれるが、これらに限定されない。神経外胚葉由来の癌の例には、ユーイング肉腫、脊髄腫瘍、脳腫瘍、幼児のテント上原始神経外胚葉性腫瘍、管状嚢胞癌、粘液管状紡錘細胞癌、腎腫瘍、縦隔腫瘍、神経膠腫、神経芽細胞腫、並びに青年及び若年成人の肉腫が挙げられるが、これらに限定されない。上皮由来の癌の例には、小細胞肺癌、胸、眼水晶体、結腸、膵臓、腎臓、肝臓、卵巣及び気管支上皮の癌が挙げられるが、これらに限定されない。
他の癌療法との組み合わせ
抗ｃ−Ｍｅｔ抗体の治療的投与は、更なる標準的な抗癌治療法との併用であってもよく、又は併用でなくてもよい治療計画の一部としての投与を含むことができる。更なる標準的な抗癌治療法は、（例えば、以下に更に記載されているような）免疫療法、化学療法剤及び外科手術を含むが、これらに限定されない。
更に、抗癌治療法が、例えば外科手術、放射線療法、化学療法剤の投与等であり得る場合、抗ｃ−Ｍｅｔ抗体の治療的投与は、抗癌治療法での対象の治療後の治療であってもよい。本開示の線維状タンパク質を使用する癌療法は、免疫療法と組み合わせて使用され得る。他の実施例では、線維状タンパク質は、１つ以上の化学療法剤（例えば、シクロホスファミド、ドキソルビシン、ビンクリスチン及びプレドニゾン（ＣＨＯＰ））との組み合わせ、及び／又は放射線治療との組み合わせ、及び／又は外科的処置（例えば、腫瘍を除去するための外科手術の前又は後）との組み合わせで投与され得る。線維状タンパク質を外科的処置との併用で使用する場合、線維状タンパク質は、癌性細胞を除去するための外科手術の前、その時、又はその後に投与されることができ、全身に又は手術部位に局所的に投与されてもよい。線維状タンパク質単独又は上述した組み合わせを、（例えば静脈経路によって、例えば非経口投与によって）全身に投与することができ、又は局所的に（例えば局所腫瘍部位に、例えば、（例えば固形腫瘍内への、リンパ腫若しくは白血病における関連するリンパ節内への）腫瘍内投与、固形腫瘍を与える血管内への投与により）投与することができる。
幅広い種類の癌療法のうち任意の癌療法を、本明細書に記載の線維状タンパク質治療と組み合わせて使用することができる。このような癌療法には、外科手術（例えば、癌性組織の外科的除去）、放射線療法、骨髄移植、化学療法治療、生体応答修飾物質治療、及び前述の療法の組み合わせが含まれる。
放射線療法には、光線等の外部印加源又は埋め込まれた小型の放射能源から放射されたＸ線又はγ線が含まれるが、これらに限定されない。
化学療法剤は、癌細胞の増殖を減少させる非ペプチド性（すなわち、非タンパク質性）化合物であり、細胞毒性剤及び細胞増殖抑制剤を包含する。化学療法剤の非限定的な例には、アルキル化剤、ニトロソウレア、代謝拮抗剤、抗腫瘍抗生物質、植物性（ビンカ）アルカロイド、及びステロイドホルモンが挙げられる。
細胞増殖を減少させるべく機能する薬剤は、本技術分野で公知であり、幅広く使用されている。このような薬剤には、アルキル化剤、例えばナイトロジェンマスタード、ニトロソウレア、エチレンイミン誘導体、スルホン酸アルキル及びトリアゼンが挙げられ、メクロレタミン、シクロホスファミド（ＣＹＴＯＸＡＮ（登録商標））、メルファラン（Ｌ−サルコリシン）、カルムスチン（ＢＣＮＵ）、ロムスチン（ＣＣＮＵ）、セムスチン（メチル−ＣＣＮＵ）、ストレプトゾシン、クロロゾトシン、ウラシルマスタード、クロルメチン、イホスファミド、クロラムブシル、ピポブロマン、トリエチレンメラミン、トリエチレンチオホスホルアミン、ブスルファン、ダカルバジン及びテモゾロミドが含まれるが、これらに限定されない。
代謝拮抗剤には、葉酸類似体、ピリミジン類似体、プリン類似体及びアデノシンデアミナーゼ阻害剤が挙げられ、シタラビン（ＣＹＴＯＳＡＲ−Ｕ）、シトシンアラビノシド、フルオロウラシル（５−ＦＵ）、フロクスウリジン（ＦｕｄＲ）、６−チオグアニン、６−メルカプトプリン（６−ＭＰ）、ペントスタチン、５−フルオロウラシル（５−ＦＵ）、メトトレキサート、１０−プロパルギル−５，８−ジデアザ葉酸（ＰＤＤＦ、ＣＢ３７１７）、５，８−ジデアザテトラヒドロ葉酸（ＤＤＡＴＨＦ）、ロイコボリン、リン酸フルダラビン、ペントスタチン及びゲムシタビンが含まれるが、これらに限定されない。
好適な天然産物及びそれらの誘導体（例えば、ビンカアルカロイド、抗腫瘍抗生物質、酵素、リンフォカイン及びエピポドフィロトキシン）には、Ａｒａ−Ｃ、パクリタキセル（ＴＡＸＯＬ（登録商標））、ドセタキセル（ＴＡＸＯＴＥＲＥ（登録商標））、デオキシコホルマイシン、マイトマイシン−Ｃ、Ｌ−アスパラギナーゼ、アザチオプリン、ブレキナル、アルカロイド、例えばビンクリスチン、ビンブラスチン、ビノレルビン、ビンデシン等、ポドフィロトキシン、例えばエトポシド、テニポシド等、抗生物質、例えばアントラサイクリン、塩酸ダウノルビシン（ダウノマイシン、ルビドマイシン、セルビジン）、イダルビシン、ドキソルビシン、エピルビシン及びモルホリノ誘導体等、フェノキゾンビスシクロペプチド（ｐｈｅｎｏｘｉｚｏｎｅ ｂｉｓｃｙｃｌｏｐｅｐｔｉｄｅ）、例えばダクチノマイシン、塩基性グリコペプチド、例えばブレオマイシン、アントラキノングリコシド、例えばプリカマイシン（ミトラマイシン）、アントラセンジオン、例えばミトキサントロン、アジリノピロロインドールジオン（ａｚｉｒｉｎｏｐｙｒｒｏｌｏ ｉｎｄｏｌｅｄｉｏｎｅ）、例えばマイトマイシン、大環状免疫抑制剤、例えばシクロスポリン、ＦＫ−５０６（タクロリムス、プログラフ）、ラパマイシン等が挙げられるが、これらに限定されない。
他の抗増殖細胞毒性剤は、ナベルビン（ｎａｖｅｌｂｅｎｅ）、ＣＰＴ−１１、アナストラゾール（ａｎａｓｔｒａｚｏｌｅ）、レトラゾール（ｌｅｔｒａｚｏｌｅ）、カペシタビン、ラロキサフィン（ｒｅｌｏｘａｆｉｎｅ）、シクロホスファミド、イフォスアミド（ｉｆｏｓａｍｉｄｅ）、及びドロロキサフィン（ｄｒｏｌｏｘａｆｉｎｅ）である。
抗増殖活性を有する微小管作用剤も、使用に好適であり、アロコルヒチン（ＮＳＣ４０６０４２）、ハリコンドリンＢ（ＮＳＣ６０９３９５）、コルヒチン（ＮＳＣ７５７）、コルヒチン誘導体（例えば、ＮＳＣ３３４１０）、ドルスタチン１０（ＮＳＣ３７６１２８）、メイタンシン（ＮＳＣ１５３８５８）、リゾキシン（ＮＳＣ３３２５９８）、パクリタキセル（ＴＡＸＯＬ（登録商標））、ＴＡＸＯＬ（登録商標）誘導体、ドセタキセル（ＴＡＸＯＴＥＲＥ（登録商標））、チオコルヒチン（ＮＳＣ３６１７９２）、トリチルシステリン（ｔｒｉｔｙｌｃｙｓｔｅｒｉｎ）、硫酸ビンブラスチン、硫酸ビンクリスチン、エポチロンＡ、エポチロンＢを含むがこれらに限定されない天然エポチロン又は合成エポチロン、ディスコデルモリド、エストラムスチン、ノコダゾール等が含まれるが、これらに限定されない。
使用に好適なホルモン調整剤及びステロイド（合成類似体を含む）には、副腎皮質ステロイド、例えばプレドニゾン、デキサメタゾン等、エストロゲン及びプロゲスチン、例えばカプロン酸ヒドロキシプロゲステロン、酢酸メドロキシプロゲステロン、酢酸メゲストロール、エストラジオール、クロミフェン、タモキシフェン等、並びに副腎皮質抑制剤、例えばアミノグルテチミド、１７α−エチニルエストラジオール、ジエチルスチルベストロール、テストステロン、フルオキシメステロン、プロピオン酸ドロモスタノロン、テストラクトン、メチルプレドニゾロン、メチル−テストステロン、プレドニゾロン、トリアムシノロン、クロロトリアニセン、ヒドロキシプロゲステロン、アミノグルテチミド、エストラムスチン、酢酸メドロキシプロゲステロン、ロイプロリド、フルタミド（ドロゲニル）、トレミフェン（フェアストン）、及びＺＯＬＡＤＥＸ（登録商標）が挙げられるが、これらに限定されない。エストロゲンは増殖及び分化を刺激し、従って、エストロゲン受容体に結合する化合物は、この活性を妨害するために使用される。コルチコステロイドは、Ｔ細胞の増殖を阻害することができる。
他の化学療法剤は、金属錯体、例えばシスプラチン（シス−ＤＤＰ）、カルボプラチン等、尿素、例えばヒドロキシウレア、及びヒドラジン、例えばＮ−メチルヒドラジン、エピドフィロトキシン（ｅｐｉｄｏｐｈｙｌｌｏｔｏｘｉｎ）、トポイソメラーゼ阻害剤、プロカルバジン、ミトキサントロン、ロイコボリン、テガフール等が挙げられる。他の対象の抗増殖剤には、免疫抑制剤、例えばミコフェノール酸、サリドマイド、デスオキシスペルグアリン（ｄｅｓｏｘｙｓｐｅｒｇｕａｌｉｎ）、アザスポリン、エフルノミド、ミゾリビン、アザスピラン（ＳＫＦ１０５６８５）、ＩＲＥＳＳＡ（登録商標）（ＺＤ１８３９、４−（３−クロロ−４−フルオロフェニルアミノ）−７−メトキシ−６−（３−（４−モルホリニル）プロポキシ）キナゾリン）等が挙げられる。
「タキサン」には、パクリタキセル、及びあらゆる活性なタキサン誘導体又はプロドラッグが含まれる。「パクリタキセル」（例えばドセタキセル、ＴＡＸＯＬ、ＴＡＸＯＴＥＲＥ（ドセタキセルの製剤）、パクリタキセルの１０−デスアセチル類似体及びパクリタキセルの３′Ｎ−デスベンゾイル−３′Ｎ−ｔ−ブトキシカルボニル類似体等の類似体、製剤並びに誘導体を含むとして本明細書では理解されるものとする）は、当業者に公知である技術を利用して容易に調製され得る。
パクリタキセルとは、一般的な化学的に利用可能なパクリタキセルの形態を意味するだけでなく、類似体及び誘導体（例えば、上述したＴＡＸＯＴＥＲＥＴＭドセタキセル）並びにパクリタキセル抱合体（例えばパクリタキセル−ＰＥＧ、パクリタキセル−デキストラン又はパクリタキセル−キシロース）も意味すると理解されるものとする。
本開示の方法に従って個体を治療する際に、非悪性細胞のための救出剤との併用で高用量計画を使用することが望ましい場合がある。このような治療では、シトロボラム因子、葉酸誘導体又はロイコボリン等、非悪性細胞を救出する能力があるあらゆる薬剤が採用可能である。このような救出剤は、当業者に周知である。救出剤には、本発明の化合物の、細胞機能を調整する能力を妨げない救出剤が含まれる。
投与の経路
抗ｃ−Ｍｅｔ抗体の投与は、腫瘍内、静脈内、皮内、皮下、経口（例えば、吸入）、経皮（すなわち局所）、経粘膜、腹腔内、動脈内及び直腸内投与を含む身体の様々な部分に種々の方法により達成され得る。他の好適な経路には、錠剤、固形剤、粉末、液体、エアロゾルの形態での組成物の経口、経鼻、鼻咽頭、非経口、経腸、胃内、局所、経皮、皮下、筋肉内への投与、腫瘍内への病巣内注入、腫瘍に隣接した病巣内注入、静脈内注入及び動脈内注入が含まれる。投与は、別の賦形剤の有無に関係なく局所的に又は全身に行われ得る。投与はまた、対象の腫瘍部位で又はその周囲で徐放モードで行われてもよい。
本開示の製剤を、該製剤を必要とする対象又は宿主、例えば患者に投与する種々の好適な方法が利用可能であること、及び特定の製剤を投与するために２以上の経路が使用されてもよいが、１つの特定の経路は別の経路より更に迅速且つ効果的な反応をもたらし得ることを当業者は理解する。
「治療有効量」という用語は、所望の効果を適切な利益／危険性の比率でもたらし、任意の医学的な治療に適用可能な量を意味する。治療有効量は、治療される疾患若しくは症状、投与される特定の標的化された構築物、対象の大きさ又は疾患若しくは症状の重症度等の要因に応じて変化し得る。当業者は、過度の実験を必要とすることなく、特定の化合物の有効量を経験的に決定し得る。
例示的な実施によると、タンパク質は、以下に更に詳細に記載されているように、組成物の一部として投与されてもよい。組成物は、粉末、クリーム、ゲル、軟膏（ｓａｌｖｅ）、軟膏（ｏｉｎｔｍｅｎｔ）、溶液、錠剤、カプセル、スプレー及びパッチを含む種々の形態であってもよい。組成物を患者に与えるために、ビヒクル及び担体の使用が可能である。このような担体には、可溶化剤、希釈剤及び分散媒が含まれる。これらの担体は、生体適合性があり、薬学的に許容可能であり、更に線維状タンパク質の治療特性を変化させることはない。賦形剤、アジュバント及び他の成分も組成物に含まれ得る。
用量
本方法では、有効量の抗ｃ−Ｍｅｔ抗体を、抗ｃ−Ｍｅｔ抗体を必要とする対象に投与する。投与される量は、投与の目標、治療される個体の健康及び身体状態、年齢、治療される個体の分類群（例えば、ヒト、非ヒト霊長類等）、所望の分解程度、抗ｃ−Ｍｅｔ抗体の組成物の製剤、治療する臨床医による医学的状況の評価並びに他の関連する要因に応じて変化する。量は、日常的な試験を通じて決定され得る比較的広い範囲内に収まることが予測される。例えば、癌の転移を阻害するために用いられる抗ｃ−Ｍｅｔ抗体の量は、対象に不可逆的に毒性となり得るおよその量（すなわち、最大耐量）を超えない。他の事例では、量は、毒性閾値付近であるか又は毒性閾値を遥かに下回るが、免疫効果的な濃度範囲内にあるか又は閾値用量と同程度に低い。
個別の用量は一般的には、対象に測定可能な効果をもたらすのに必要な量を下回ることはなく、その副産物の抗ｃ−Ｍｅｔ抗体の吸収、分散、代謝及び排出（「ＡＤＭＥ」）についての薬物動態及び薬理学に基づいて、ひいては対象内での組成物の体内動態に基づいて決定され得る。これには、投与経路及び投与量の検討が含まれ、（作用が主として局所効果に必要とされる場所に直接的に適用される）局所、（消化管の一部に保持される場合、全身又は局所の効果のために消化管を介して適用される）腸内、又は（全身又は局所の効果のために、消化管以外の経路によって適用される）非経口への適用のために調整され得る。例えば、抗ｃ−Ｍｅｔ抗体の投与は一般的には、注射により、多くの場合静脈注射、筋肉注射、腫瘍内注入又はそれらの組み合わせにより行われる。
抗ｃ−Ｍｅｔ抗体は、注入又は局所注入によって投与されることができ、例えば、約７５ｍｇ／時間〜約３７５ｍｇ／時間、約１００ｍｇ／時間〜約３５０ｍｇ／時間、約１５０ｍｇ／時間〜約３５０ｍｇ／時間、約２００ｍｇ／時間〜約３００ｍｇ／時間、約２２５ｍｇ／時間〜約２７５ｍｇ／時間を含む約５０ｍｇ／時間〜約４００ｍｇ／時間の速度での注入によって投与されることができる。例示的な注入速度により、例えば約１ｍｇ／ｍ2 ／日〜約９ｍｇ／ｍ2 ／日、約２ｍｇ／ｍ2 ／日〜約８ｍｇ／ｍ2 ／日、約３ｍｇ／ｍ2 ／日〜約７ｍｇ／ｍ2 ／日、約４ｍｇ／ｍ2 ／日〜約６ｍｇ／ｍ2 ／日、約４．５ｍｇ／ｍ2 ／日〜約５．５ｍｇ／ｍ2 ／日を含む約０．５ｍｇ／ｍ2 ／日〜約１０ｍｇ／ｍ2 ／日の所望の治療用量を達成することができる。（例えば、注入による）投与は、所望の期間に亘って繰り返されることができ、例えば、約１日〜約５日の期間、又は数日毎に１回、例えば約５日毎に１回、約１ヶ月、約２ヶ月等に亘って繰り返されてもよい。他の治療的処置、例えば癌性細胞を除去するための外科的処置の前、その時又はその後に抗ｃ−Ｍｅｔ抗体を投与することもできる。抗ｃ−Ｍｅｔ抗体は組み合わせ療法の一部として投与されることもでき、その場合、（以下に更に詳細に記載されているように）免疫療法、癌化学療法又は放射線療法のうち少なくとも１つが対象に施される。
対象内における抗ｃ−Ｍｅｔ抗体及びその対応する生物活性の体内動態は一般的には、対象の標的に存在する抗ｃ−Ｍｅｔ抗体の画分に対して測定される。例えば、一旦投与された抗ｃ−Ｍｅｔ抗体は、癌細胞及び癌性組織の物質を濃縮する糖抱合体又は他の生物学的標的と共に蓄積し得る。従って、抗ｃ−Ｍｅｔ抗体が経時的に対象の標的内に蓄積するように投与される投与計画は、個別用量を減らし得るための計画の一部となり得る。これは、例えば、生体内ではよりゆっくりと排出される抗ｃ−Ｍｅｔ抗体の用量が、インビトロアッセイから計算された有効濃度と比較して低減され得ることを意味する（例えば、生体外における有効量はｍＭ濃度に近いのに対し、生体内ではｍＭ濃度よりも低い）。
一例として、用量又は投与計画の有効量は、細胞移動を阻害するための所与の抗ｃ−Ｍｅｔ抗体のＩＣ50から測定される。「ＩＣ50」は、生体外での５０％の阻害に必要な薬物の濃度を意味する。或いは、有効量は、所与の抗ｃ−Ｍｅｔ抗体の濃度のＥＣ50から測定されてもよい。「ＥＣ50」は、生体内での最大効果の５０％を得るために必要な血漿濃度を表す。関連する実施形態では、投与量はＥＤ50（有効投与量）に基づいて決定され得る。
一般的に、本開示の抗ｃ−Ｍｅｔ抗体に関して、有効量は通常、計算したＩＣ50の２００倍を上回ることはない。一般的には、投与される抗ｃ−Ｍｅｔ抗体の量は、計算したＩＣ50の約２００倍未満、約１５０倍未満、約１００倍未満であり、多くの実施形態では、約７５倍未満、約６０倍、５０倍、４５倍、４０倍、３５倍、３０倍、２５倍、２０倍、１５倍、１０倍未満であり、約８倍未満又は２倍未満でもある。一実施形態では、有効量は、計算したＩＣ50の約１倍〜５０倍であり、時には計算したＩＣ50の約２倍〜４０倍、約３倍〜３０倍、又は約４倍〜２０倍である。他の実施形態では、有効量は計算したＩＣ50と同一であり、ある実施形態では、有効量は計算したＩＣ50を超える量である。
有効量は、計算したＥＣ50の１００倍を上回ることはない。例えば、投与される抗ｃ−Ｍｅｔ抗体の量は、計算したＥＣ50の約１００倍未満、約５０倍未満、約４０倍、３５倍、３０倍又は２５倍未満であり、多くの実施形態では、約２０倍未満、約１５倍未満であり、約１０倍、９倍、８倍、７倍、６倍、５倍、４倍、３倍、２倍又は１倍未満でもある。有効量は、計算したＥＣ50の約１倍〜３０倍であってもよく、時には計算したＥＣ50の約１倍〜２０倍又は約１倍〜１０倍である。有効量はまた、計算したＥＣ50と同一であるか、又は計算したＥＣ50を上回ってもよい。ＩＣ50は、生体外での細胞移動／浸潤の阻害によって計算され得る。手順は、本技術分野で公知の方法又は以下の実施例に記載の方法によって実行され得る。
用量及び／又は用量計画の有効量は、アッセイ、安全性・段階的増加・用量範囲試験、個別の臨床医−患者の関係、並びにインビトロアッセイ及びインビボアッセイから経験的に容易に決定され得る。
診断方法
本開示は、対象内の生体試料又は対象から単離した試料でｃ−Ｍｅｔ（例えば、全長又はフラグメント）を検出する方法を提供する。本方法は、診断目的及び予後目的の両方に有用である。本発明の方法では一般的に、細胞を含む試料を本開示の抗体と接触させて、抗体を試料内の細胞に結合させる。細胞は生体外に存在してもよく、その場合、細胞は、癌細胞を有する疑いのある対象、癌治療を受けている対象、又は治療に対する脆弱性の検査を受けている対象から得た生体試料中に存在する。細胞は生体内に存在してもよく、例えば、細胞は、癌細胞を有する疑いのある対象、治療を受けている対象、又は治療に対する脆弱性の検査を受けている対象内に存在する。
抗体は、癌性細胞を有する対象又は癌性細胞を有する疑いのある対象の生体試料中でｃ−Ｍｅｔを発現する細胞を、免疫診断技術を利用して検出するために使用され得る。このような診断は、以下に開示されている治療に適用可能な患者を識別するために、及び／又は治療に対する応答を監視するために有用であり得る。
好適な免疫診断技術には、インビトロ（撮像）方法及びインビボ（撮像）方法の両方が挙げられるが、必ずしもこれらに限定されない。例えば、抗ｃ−Ｍｅｔ抗体を検出可能に標識化し、ｃ−Ｍｅｔの細胞表面での発現によって特徴付けられる癌であって、本技術分野で利用可能な撮像方法を使用して検出される検出可能に標識化された抗体に結合される癌を有する疑いのある対象に投与することができる。
本明細書に使用されている用語「インビボ撮像」とは、完全な生きている哺乳動物内の抗体（例えば、検出可能に標識化されたクローン２１）の存在を検出する方法を意味する。蛍光抗体及びルシフェラーゼ抱合抗体等の光学的に検出可能なタンパク質は、インビボ撮像によって検出され得る。生きている動物内の蛍光タンパク質のインビボ撮像は、例えば、ホフマン（Ｈｏｆｆｍａｎ）著，「細胞死及び細胞分化（Ｃｅｌｌ Ｄｅａｔｈ ａｎｄ Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ）」，２００２年，９巻，p.７８６−７８９に記載されている。インビボ撮像を使用して哺乳動物の２次元画像及び３次元画像を提供することができる。電荷結合素子カメラ、ＣＭＯＳ又は３次元断層撮像を使用してインビボ撮像を行ってもよい。例えば、バーデット ジェイイー（Ｂｕｒｄｅｔｔｅ ＪＥ）著，「分子内分泌学のジャーナル（Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｍｏｌ．Ｅｎｄｏｃｒｉｎ．）」，２００８年，４０巻，p.２５３−２６１は、コンピュータ断層撮像、磁気共鳴画像法、超音波検査、陽電子放出断層撮像、単光子放出コンピュータ断層撮像（ＳＰＥＣＴ）等の利用を検討している。上述した方法等の多くのインビボ撮像方法からの情報により、対象における癌細胞の情報が与えられる。
方法がインビトロ方法である場合、生体試料は、癌細胞が存在し得るあらゆる生体試料であってもよく、（全血、血清等を含む）血液試料、組織、全細胞（例えば、完全な細胞）、及び組織又は細胞抽出物が含まれるが、これらに限定されない。例えば、アッセイは、生細胞又は組織学的組織試料内の細胞上でのｃ−Ｍｅｔの検出を伴ってもよい。
特には検出は、生細胞の細胞外表面上で評価され得る。例えば、組織試料は、（例えばホルマリン処理によって）固定されてもよく、支持体（例えばパラフィン）に埋め込まれるか、又は未固定組織を凍結させて提供されてもよい。
アッセイは、競合、直接反応又はサンドイッチ型アッセイ等、幅広い種類の形態で行われ得る。アッセイの例には、ウエスタンブロット、凝集試験、酵素結合免疫測定アッセイ（ＥＬＩＳＡ）等の酵素標的化・媒介性免疫アッセイ、ビオチン／アビジン型アッセイ、放射免疫アッセイ、免疫電気泳動法、免疫沈降法等が含まれる。反応には一般的に、抗体に抱合された検出可能な標識が含まれる。標識には、蛍光、化学発光、放射能、酵素及び／若しくは染料分子、又は、試料中の抗原と、抗原と反応する一又は複数の抗体との複合体の形成を検出するための他の方法等が挙げられる。
固体支持体を使用する場合、抗体が固体支持体に十分に固定されるように、まず、固体支持体を通常、好適な結合条件下で固相構成要素と反応させる。時には、より良好な結合特性を有するタンパク質、又は抗体の結合活性若しくは特異性を著しく損失することなく支持体上への抗体の固定化を提供するタンパク質に抗体をまず結合させることによって支持体への固定を強化することができる。好適な結合タンパク質には、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）を含む血清アルブミン等の巨大分子、キーホールリンペットヘモシアニン、免疫グロブリン分子、チログロブリン、オボアルブミン、及び当業者に周知の他のタンパク質が挙げられるが、これらに限定されない。抗体を支持体に結合するために使用可能な他の分子には、多糖類、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、重合アミノ酸、アミノ酸コポリマー等が挙げられるが、抗体を固定するために使用される分子が、抗原に特異的に結合する抗体の能力に悪影響を及ぼさないことを条件とする。このような分子、及びこのような分子を抗体に結合する方法は当業者に周知である。
ＥＬＩＳＡ法を使用することが可能であり、その場合、マイクロタイタープレートのウェルを本発明の抗体でコーティングする。次に、ｃ−Ｍｅｔを含むか、又はｃ−Ｍｅｔを含む疑いのある生体試料をコーティングされたウェルに添加する。抗体結合を可能にするための十分な培養期間の後、一又は複数のプレートを洗浄して非結合部分を除去し、検出可能に標的化した二次結合分子を添加してもよい。二次結合分子を任意の捕捉した抗原と反応させ、プレートを洗浄し、本技術分野で周知の方法を使用して二次結合分子の有無を検出する。
所望であれば、生体試料中の結合されたｃ−Ｍｅｔの有無を、抗体リガンドに向けられた抗体を含む二次結合剤を使用して容易に検出することができる。例えば、当業者に公知である方法を使用して、西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ又はウレアーゼ等の検出可能な酵素標識に容易に抱合することができる多くの抗ウシ免疫グロブリン（Ｉｇ）分子が本技術分野では公知である。次に、適切な酵素基質が、検出可能な信号を生成するために使用される。別の関連する実施形態では、競合型ＥＬＩＳＡ技術が、当業者に公知の方法を使用して採用され得る。
アッセイは、抗体及び抗原が沈殿条件下で複合体を形成するように溶液中で行われてもよい。抗体がコーティングされた粒子を、好適な結合条件下で標的抗原を含む疑いのある生体試料と接触させて、洗浄及び／又は遠心分離を使用して沈殿させて試料から分離することができる粒子−抗体−抗原の複合凝集体を形成することが可能である。例えば、上述した免疫診断法のような多くの標準的な方法のうち任意の方法を使用して反応混合物を分析して、抗体−抗原の複合体の有無を判断することができる。
或いは、生細胞中の細胞取り込みについてのアッセイは、癌性細胞を確実に識別する別の診断技術であってもよい。本発明の抗体は、ｃ−Ｍｅｔを発現する細胞によって特異的に取り込まれるため、該細胞に抗体を取り込ませることが可能であり、取り込まれない抗体は洗い流され得る（例えば、酸洗浄）。取り込まれた抗体は、細胞に含まれる抗体の標識を介して検出可能である（例えば、ＦＡＣＳ、分光計、放射性同位体計数等）。
本明細書に記載の診断アッセイは、対象が、抗体に基づく治療にある程度適用可能な癌を有するか否かの判断のため、及び対象における治療の進行の監視のために使用され得る。前記診断アッセイは、他の組み合わせ治療の経過を評価するためにも使用され得る。従って、診断アッセイにより、臨床医による治療法の選択及び治療計画が提示され得る。
本開示の抗体を含む、上述したアッセイの試薬は、上述した免疫アッセイを行うために、好適な説明書及び他の必要な試薬と共にキットで提供されてもよい。キットは、使用される特定の免疫アッセイに応じて好適な標識及び他のパッケージ化された試薬及び物質（すなわち、洗浄緩衝液等）を含んでもよい。上述したアッセイ等の標準的な免疫アッセイはこれらのキットを使用して行われ得る。
キット及びシステム
上述したように、本方法を行うために使用されるキット及びシステムが更に提供される。例えば、キット及びシステムは、抗ｃ−Ｍｅｔ抗体（例えば、クローン２０又はクローン２１）、抗ｃ−Ｍｅｔ抗体をコードする核酸（特には、上述した本発明の任意の抗体の重鎖及び／又は軽鎖のＣＤＲをコードする核酸）、又は抗ｃ−Ｍｅｔ抗体を含む細胞等、本明細書に記載の組成物の一又は複数を含むことができる。キットの他の任意の構成要素には、本発明の抗体を投与するため、及び／又は診断アッセイを行うための緩衝液等が含まれる。キットの組み換え核酸は、核酸の定常領域への連結を促進するために、制限部位、多重クローニング部位、プライマー部位等を含んでもよい。キットの種々の構成要素は別個の容器内に備えられてもよく、又はある適合性構成要素は、所望であれば単一の容器内で事前に混合されてもよい。
本方法を行うためのキット及びシステムは、本明細書に記載されている抗体の構成要素を含む１つ以上の薬学的製剤を含んでもよい。このようにして、キットには、１つ以上の単位投与量として単一の薬学的組成物が含まれてもよい。キットはまた、２つ以上の別個の薬学的組成物を含んでもよい。
上述した構成要素に加えて、キットは、本方法を行うための説明書を更に含んでもよい。これらの説明書は、キット内に種々の形態で備えられてもよく、説明書の一又は複数がキット内に又はキット上に備えられてもよい。これらの説明書が備えられ得る１つの形態は、好適な媒体又は基材上の印刷情報であり、例えば、情報が印刷される一又は複数の紙片、キットの包装体の中若しくは上、又は添付文書等の印刷情報である。更なる別の手段は、情報が記録されているコンピュータ可読媒体であり、例えば、ディスケット、ＣＤ等である。存在し得る更なる別の手段は、離れた場所で情報にアクセスするためにインターネットを介して使用可能なウェブサイトのアドレスである。あらゆる簡便な手段をキット内に設けることが可能である。
キットは、細胞増殖性疾患を患う宿主を治療する際に使用され得る。キットには、ｃ−Ｍｅｔに特異的な抗体を含む薬学的組成物と、対象内の癌細胞の増殖を阻害することによって癌症状を患う宿主を治療する方法における薬学的組成物の効果的な使用のための説明書とが含まれる。このような説明書には、適切な取扱特性、投与計画及び投与の方法等が含まれるだけでなく、対象をｃ−Ｍｅｔ関連疾患に関して任意でスクリーニングするための説明書をも含まれ得る。この態様は、癌の種類及び成長段階に応じた治療の時期及び期間を含む、本開示の抗体を用いた治療に対する対象の反応性の可能性をキットの使用者が判断することを支援する。従って、別の実施形態では、キットは、細胞外でアクセス可能な癌細胞の表面上でｃ−Ｍｅｔのエピトープを検出するための抗体又は他の試薬を更に含んでもよい。別の実施形態では、キットには、フルオロフォア等の検出可能な標識との抱合体を含む抗体が含まれる。
本明細書に採用される用語「システム」は、本方法を行うために共に組み合わされ、単一の又は異なる組成物中に存在する、本明細書に記載の抗体及び１つ以上の第２の治療剤の集合体を意味する。例えば、共に組み合わせられて対象に投与され、別個に得られた、ｃ−Ｍｅｔに特異的な抗体及び化学療法剤の投与形態は本開示に係るシステムである。
以下の実施例は、本発明を作製して使用する方法の全ての開示及び説明を当業者に提供するために提示されており、本発明としてみなされるものの範囲を制限することを意図するものではない。
実験的方法
細胞系及び培養
ＰＣ３（前立腺癌）、Ｈ１９９３、Ｈ４６０、Ｈ４４１、Ａ５４９及びＣＬ１−５を含むヒト肺癌細胞を、３７℃で５％のＣＯ2 を含む加湿雰囲気下で１０％のＦＢＳ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を含有するＲＰＭＩ１６４０中で増殖させた。ＳＡＳ（口腔癌）、ＨＣＴ１１６（結腸癌）、Ｍａｈｌａｖｕ（肝臓癌）、ＮＰＣ−ＴＷ０４（鼻咽頭癌）（リー（Ｌｅｅ）等著，「癌研究（Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ）」，２００４年，６４巻，p.８００２−８００８）、ＰａＣａ（膵臓癌）、Ｕ２ＯＳ（骨肉腫）及び２９３Ｔを１０％のＦＢＳと共にＤＭＥＭ上で増殖させた。Ａ４９８（腎細胞癌）をＭＥＭ中で培養した。ＭＤＡ−ＭＢ２３１（乳癌）を、１０％のＣＯ2 雰囲気下で５０％のＤＭＥＭと混合したＦ１２培地で培養した。ＣＬ１−５は、シュー（Ｃｈｕ）等著，「アメリカン・ジャーナル・オブ・レスピラトリー・セル・アンド・モレキュラー・バイオロジー（Ａｍ Ｊ Ｒｅｓｐｉｒ Ｃｅｌｌ Ｍｏｌ Ｂｉｏｌ）」，１９９７年，１７巻，p.３５３−３６０によって確立された。Ｍａｈｌａｖｕ（肝臓癌）は、シャオ エム（Ｈｓｉａｏ Ｍ）博士（ＧＲＣ，アカデミア シニカ（Ａｃａｄｅｍｉａ Ｓｉｎｉｃａ），台湾）から寄贈された。他の細胞系をアメリカ培養細胞系統保存機関（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ）から入手した。ヒト臍静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）及びヒト正常鼻粘膜（ＮＮＭ）細胞の調製は、過去の研究（リー（Ｌｅｅ）等著，「癌研究（Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ）」，２００７年，６７巻，p.１０９５８−１０９６５、及びリー（Ｌｅｅ）等著，「癌研究（Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ）」，２００４年，６４巻，p.８００２−８００８に記載されている。
ファージディスプレイされたヒトナイーブｓｃＦｖライブラリの構築
簡単に言うと、ＳｕｐｅｒｓｃｒｉｐｔＩＩＩ逆転写酵素（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を使用してオリゴｄＴプライマーによって７個の個別のヒト脾細胞の試料のｍＲＮＡ混合物からｃＤＮＡを合成した。ＶH 及びＶL の遺伝子を、ＰＣＲによってＰｆｕＵｌｔｒａポリメラーゼ（ＥＭＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社）を使用して特異的プライマーで増幅した（マークス（Ｍａｒｋｓ）等著，１９９１年）。ＰＣＲ産物を、核酸精製キット（Ｑｉａｇｅｎｅ社）を使用してアガロースゲルから単離して精製した。ＶH 及びＶL 遺伝子コード領域を夫々、（ＧＧＧＧＳ）3 アミノ酸残基をコードするＤＮＡフラグメントによって５’（ＳｆｉＩ）及び３’（ＮｏｔＩ）末端に特異的制限酵素部位を含むプライマーを使用してＰＣＲによって集めた。集めた生成物を、ＳｆｉＩ及びＮｏｔＩ（ＮＥＢ社）によって制限酵素で消化させ、続いてｐＣＡＮＴＡＢ−５Ｅファージミドベクター（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社）に連結させた。ヒトｓｃＦｖ遺伝子含有ｐＣＡＮＴＡＢ−５Ｅベクターを、コンピテントＴＧ１大腸菌細胞内へ電気泳動させた。電気泳動後、ＴＧ１大腸菌細胞を回収し、１００μｇ／ｍｌのアンピシリン及び２％のグルコース（２ＹＴ−ＡＧ）を含有する２ＹＴ培地（ＢＤ社）で培養を継続した。ＴＧ１細胞をＭ１３ＫＯ７ファージによって救出し、次にｓｃＦｖを提示するファージ粒子を培養培地で生成した。
ライブラリバイオパニングによるファージディスプレイされた抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖの選択
特異的な抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖを提示するファージの選択を、タンパク質Ｇダイナビーズ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）によって行った。ｃ−Ｍｅｔ−Ｆｃ組み換えタンパク質（Ｒ＆Ｄ社）を、室温（ＲＴ）で１時間タンパク質Ｇダイナビーズと共に培養した。ｓｃＦｖライブラリ（２×１０9 個の要素）を、タンパク質Ｇダイナビーズ中で非特異的結合に関してサブトラクトし、続いて４℃で１時間ダイナビーズに固定したｃ−Ｍｅｔ−Ｆｃと共に培養した。非結合ファージを、ＰＢＳＴで４回洗浄することにより除去した。ｃ−Ｍｅｔ−Ｆｃに結合したファージを、３７℃で３０分間、大腸菌ＴＧ１細胞で感染させることによって回収した。感染した細胞の一部を連続希釈して力価を判定し、その他の部分をＭ１３ＫＯ７ヘルパーファージ（ＮＥＢ社）によって救出した。救出したファージの力価を判定した後、次の回のバイオパニングを行った。４回目及び５回目のバイオパニングでは、ファージクローンを無作為に選択してＥＬＩＳＡスクリーニングのために培養した。
ｃ−Ｍｅｔを過剰発現する２９３Ｔ細胞への選択されたファージクローンの結合特異性の評価
免疫蛍光染色アッセイのために、２９３Ｔ細胞を８０％の密集度までカバースリップ上で増殖させた。ｐＥＦ−ｃ−Ｍｅｔ発現ベクターでの細胞のトランスフェクションを、製造業者の説明書に従ってリポフェクトアミン２０００（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を使用して行った。トランスフェクションの４８時間後、細胞を、４℃で３０分間１×１０10のファージ力価で、選択された抗ｃ−Ｍｅｔファージ又は対照ファージと共に培養した。細胞をＰＢＳで２回洗浄した後、細胞を４％のパラホルムアルデヒドによって固定し、０．１％のＴｒｉｔｏｎＸ−１００で透過処理して３％のＢＳＡでブロッキングした。細胞をウサギ抗ｍｙｃ抗体（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ社）及びマウス抗Ｍ１３ファージ抗体を使用してプローブし、続いてローダミン標識化ヤギ抗ウサギＩｇＧ及びＦＩＴＣ標識化抗マウスＩｇＧで夫々染色した。核をＤＡＰＩで染色した。蛍光画像を倒立型蛍光顕微鏡（Ｚｅｉｓｓ社製のＡｘｉｏｖｅｒｔ２００Ｍ）によって捕捉した。
フローサイトメトリー分析のために、上述したように、２９３Ｔ細胞を８０％の密集度まで増殖させ、ｐＥＦ−ｃ−Ｍｅｔ発現ベクターでトランスフェクトした。４８時間後、トランスフェクトした細胞を０．０５％のトリプシン−ＥＤＴＡによって採取し、ＦＡＣＳ緩衝液（１％のウシ胎児血清を含有するＰＢＳ）中で４℃で１時間１×１０10のファージ力価によって、選択したファージ又は対照ファージと共に培養した。ＦＡＣＳ緩衝液で細胞を洗浄した後、細胞を４℃で１時間マウス抗Ｍ１３ファージ抗体と共に培養し、続いて４℃で３０分間Ｒ−フィコエリトリン抱合型ヤギ抗マウスＩｇＧ（Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ社）と共に培養した。分析をＦＡＣＳＣａｎｔｏＩＩ（ＢＤ社）を使用して行い、蛍光強度をＦＡＣＳＤｉｖａソフトウェア（ＢＤ社）によって測定して結合親和性を定量的に比較した。
可溶性ｓｃＦｖの発現及び精製
抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖファージクローン１、２０及び２１を大腸菌株ＨＢ２１５１に個別に感染させ、細菌のペリプラズム抽出物を調製した。可溶性ｓｃＦｖを、製造業者の説明書に従ってタンパク質Ｌアガロースカラム（Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）によってペリプラズム抽出物中で精製した。精製したｓｃＦｖをＰＢＳと共に完全に透析し、還元ＳＤＳ−ＰＡＧＥ、続いてクマシーブルー染色及びウエスタンブロット分析によって抗Ｅタグ抗体（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社）を使用してプローブすることにより分析した。
ヒトｃ−Ｍｅｔ遺伝子をコードする哺乳類発現ベクターの構築
全ヒトｃ−ＭｅｔｃＤＮＡ（ＮＭ＿００１１２７５００．１）を、ＳｕｐｅｒｓｃｒｉｐｔＩＩＩ逆転写酵素を使用して特異的プライマーによってＨｅｐＧ２細胞の全ＲＮＡから合成し、次にＰＣＲの鋳型として使用した。ｃ−Ｍｅｔの全長をコードするＤＮＡをＰＣＲによってＰｆｕＵｌｔｒａ酵素を用いて増幅し、インフレームでｍｙｃタグエピトープｐＥＦベクター（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）と連結させ、ｐＥＦ−ｃ−Ｍｅｔ−ｍｙｃを生成した。ｃ−Ｍｅｔのアミノ酸残基１〜９３２及び１〜５６７をコードするＤＮＡフラグメントをＰＣＲによって増幅してｐＥＦベクターにクローニングし、ｐＥＦ−ｃ−ＭｅｔＦ932 及びｐＥＦ−ｃ−ＭｅｔＦ567 を夫々作製した。ヒトＩｇＧ1 のＦｃのコード領域をヒト脾細胞ｃＤＮＡライブラリから得て、続いてｃ−ＭｅｔＦ932 及びｃ−ＭｅｔＦ567 のカルボキシル末端にインフレームでクローニングし、ｐＥＦ−ｃ−ＭｅｔＦ932 −Ｆｃ及びｐＥＦ−ｃ−ＭｅｔＦ567 −Ｆｃを夫々生成した。
ｃ−Ｍｅｔ切断型組み換えタンパク質の生成及び精製
ｃ−ＭｅｔＦ932 −Ｆｃ及びｃ−ＭｅｔＦ567 −Ｆｃ融合タンパク質を、リポフェクトアミン２０００を使用してｐＥＦ−ｃ−ＭｅｔＦ932 −Ｆｃ又はｃ−ＭｅｔＦ567 −Ｆｃと共に一過性にトランスフェクトした２９３Ｔ細胞の培養上清から調製した。トランスフェクションの７２時間後、濾過した上清を１ｍｌのタンパク質Ｇアガロースカラム（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社）に適用した。ＰＢＳで洗浄した後、結合したタンパク質をｐＨ２．８の０．１Ｍグリシン−ＨＣｌで溶出し、続いてｐＨ９．１の１Ｍトリス−ＨＣｌで中和した。溶出液をＰＢＳと共に完全に透析し、Ａｍｉｃｏｎ Ｕｌｔｒａ−４遠心式フィルター（カットオフ１０ｋＤａ、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社）を使用して濃縮した。
共焦点顕微鏡によって見られる抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖの取込み
Ｈ１９９３、Ｈ４６０及びｃ−ＭｅｔノックダウンＨ４６０の細胞をカバースリップに播種し、８０％の密集度まで増殖させた。細胞を、４℃及び３７℃で３０分間抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖであるＳ１又はＳ２０と共に培養した。ＰＢＳで２回洗浄した後、細胞を、４％のパラホルムアルデヒドによって固定し、３％のＢＳＡを添加することによってブロッキングした。細胞を抗Ｆｌａｇ抗体（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ社）により染色し、次いでＦＩＴＣ標識化ヤギ抗マウスＩｇＧ（Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ社）及びＤＡＰＩ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を使用してプローブした。全ての蛍光画像を共焦点顕微鏡（Ｌｅｉｃａ社製のＴＣＳ−ＳＰ５）により得た。
抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖ２０−ｃｙｓ（Ｍｓ２０）を生成するための原核生物発現ベクターの構築
Ｅタグ及びｐＩＩＩ ＤＮＡフラグメントをＮｏｔＩ−ＥｃｏＲＩ酵素消化を介してｐＣＡＮＴＡＢ−５Ｅから除去し、ＦＬＡＧタグ、ヘキサヒスチジン及びシステイン残基をコードして合成されたＤＮＡフラグメントをＮｏｔＩ−ＥｃｏＲＩ部位を通じて挿入することによって原核生物発現ベクターであるｐＦＨＣを生成した。ｐＣＡＮＴＡＢ−５Ｅ−Ｓ２０から消化した抗ｃ−ＭｅｔのＳ２０遺伝子を、ＮｃｏＩ−ＮｏｔＩ部位を介してｐＦＨＣベクターに連結させた。構築したベクターを大腸菌ＢＬ２１（Ｎｏｖａｇｅｎ）内に形質転換して、カルボキシル末端にヘキサヒスチジン及びシステインを含むｓｃＦｖを発現させた。
抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖ２０−ｃｙｓ（Ｍｓ２０）の発現及び精製
大腸菌ＢＬ２１の単一コロニーを、１００μｇ／ｍｌのアンピシリン（ＴＢ−Ａ）を含有するＴｅｒｒｉｆｉｃ Ｂｒｏｔｈ（ＴＢ、ＭＤＢｉｏ社，台湾）に植え付け、３０℃で一晩培養した。一晩の培養物の１／５０体積希釈物を、３０℃で新鮮な２．５リットルのＴＢ−Ａ中でＯＤ６００が０．５に達するまで増殖させた。培養ＩＰＴＧを最終濃度０．４ｍＭまで添加して０．４ＭのスクロースをＴＢ−Ａに直接溶解することによって培養を開始した。培養を、３０℃で１６時間２５０ｒｐｍで振動させながら継続した。
上清を３０分間２０，０００×ｇでの遠心分離によって除去し、次いで細菌ペレットを低温の２００ｍｌのＴＥＳ緩衝液（１０ｍＭトリス、２０％スクロース及び１ｍＭのＥＤＴＡ、ｐＨ８．０、ＥＭＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社）中に再懸濁し、４℃で１時間穏やかに攪拌しながら培養した。浸透圧衝撃画分を、３０分間２２，０００×ｇでの遠心分離によって収集した。氷冷の５ｍＭのＭｇＳＯ4 中で１時間穏やかに振動させながらペレットを培養することによってペリプラズム抽出物を得た。
Ｍｓ２０を最大限回収するために、浸透圧衝撃画分及びペリプラズム抽出物を組み合わせ、組み合わせた試料に、０．５Ｍの最終濃度までＮａＣｌを添加し、０．５ｍＭの最終濃度までイミダゾールを添加した。５ｍｌのＮｉ+ −ＮＴＡセファロースカラム（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社）を１５ｍｌの結合緩衝液（２０ｍＭトリス、０．５ＭのＮａＣｌ及び５ｍＭイミダゾール、ｐＨ７．９）で平衡化し、続いて試料を充填した。結合したＭｓ２０を溶出緩衝液（２０ｍＭトリス、０．５ＭのＮａＣｌ及び１Ｍイミダゾール、ｐＨ７．９）で溶出した。溶出液を２回交換して４℃でＰＢＳに対して完全に透析した。透析後、試料をタンパク質Ａアガロースカラム（２ｍｌ）（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社）で再精製した。再精製したＭｓ２０を２回交換して、ＨＥＰＥＳ緩衝液（２０ｍＭのＨＥＰＥＳ、１５０ｍＭのＮａＣｌ及び１ｍＭのＥＤＴＡ、ｐＨ７．０）に対して透析し、次いで１０ｋＤａのカットオフ管（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社製のＡｍｉｃｏｎ Ｕｌｔｒａ）によって濃縮した。
結合動態の測定
抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖの親和性及び動態をＳＲＰ ｉｎ ＢＩＡｃｏｒｅ Ｘ（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社）によって測定した。ＢＩＡｃｏｒｅフローセルでは、３０μｇ／ｍｌのｃ−ＭｅｔＦ932 −Ｆｃタンパク質をＥＤＣ−及びＮＨＳ−活性化ＣＭ５センサーチップに結合させ、続いて製造業者の指示に従ってエタノールアミンでブロッキングした。結合相及び解離相を夫々、濃度５〜２００ｎＭの範囲内のｓｃＦｖを使用して３０μｌ／分の連続フロー下で３分間及び５分間監視した。再生緩衝液（０．２ＭのＮａＣｌ、１０ｍＭのグリシン、ｐＨ２．７）の注入によって再生を行った。結合定数を決定するために、ＢＩＡｅｖａｌｕａｔｉｏｎソフトウェア（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社）を使用してセンサグラムを試料１：１相互作用モデルに全体的に適合させた。
競合的結合アッセイ
ｓｃＦｖの阻害効果を監視するために、ｃ−ＭｅｔＦ932 −Ｆｃタンパク質を９６ウェルプレートにコーティングし、非特異的結合剤をＰＢＳ中の３％のＢＳＡでブロッキングした。種々の濃度の抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖ又は正常マウスＩｇＧを加えた１ｎＭのヒトＨＧＦ（Ｒ＆Ｄ社）をウェルに適用させた。ｃ−Ｍｅｔに結合したＨＧＦの量をヤギ抗ヒトＨＧＦ（Ｒ＆Ｄ社）を使用して決定し、ＨＲＰ標識化マウス抗ヤギＩｇＧ（Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ社）及びＨ2 Ｏ2 を加えたＯＰＤ基質（Ｓｉｇｍａ）を培養した。吸光度を、マイクロプレートリーダーを使用して４９０ｎｍで測定した。阻害パーセンテージを以下の式によって計算した。［（競合物質なしで結合したＨＧＦの吸光度）−（競合物質ありで結合したＨＧＦの吸光度）］／（競合物質なしで結合したＨＧＦの吸光度）×１００％。
Ｍｓ２０標的化リポソームドキソルビシン（Ｍｓ２０−ＬＤ）の構築
精製されたＭｓ２０が抱合のためにチオール基を確実に還元させるべく、２ｍＭのＴＣＥＰ（トリス（２−カルボキシエチル）ホスフィン、Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ社）を室温で２時間Ｎ2 の雰囲気下で処理し、Ｍｓ２０の分子間ジスルフィド結合を還元した。還元したＭｓ２０を、ＨＥＰＥＳ緩衝液により溶出したＨｉＴｒａｐＧ−２５カラム（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社）によって脱塩した。マレイミド−カルボキシルポリエチレングリコール（Ｍr ２，０００）誘導ジステアロイルホスファチジルエタノールアミン（マレイミド−ＰＥＧ−ＤＳＰＥ、ＮＯＦ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ，日本）のペグ化リポソームドキソルビシンへの取り込み（リー（Ｌｅｅ）等著，２００４年、ロー（Ｌｏ）等著，２００８年）を以下に説明する。マレイミド−ＰＥＧ−ＤＳＰＥをＨＥＰＥＳ緩衝液中に溶解し、リポソームリン脂質の０．５モル％でＬＤに添加し、混合物を６０℃で１時間穏やかに振動させながら培養した。還元したＭｓ２０を、抱合化のために４℃で一晩マレイミド−ＰＥＧ−ＤＳＰＥを挿入したＬＤと共に培養し、１個のリポソーム中に約６０個のＭｓ２０分子を生成した。２−メルカプトエタノール（２ｍＭの最終濃度）を使用して未反応マレイミド基を不活性化させた後、セファロース４Ｂ（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社）ゲル濾過クロマトグラフィーを使用して、放出された遊離薬物、非抱合ｓｃＦｖ及び組み込まれなかった抱合体を除去した。溶出液の画分中のドキソルビシン濃度を、蛍光分光計（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ社製のＳｐｅｃｔｒａ Ｍａｘ Ｍ５）を使用してλEx/Em ＝４８５／５９０ｎｍで測定した。Ｍｓ２０−ＬＤ画分を還元ＳＤＳ−ＰＡＧＥによって分離し、抱合効率の推定のために硝酸銀で染色した。
ヒト肺癌細胞へのＭｓ２０−ＬＤ結合の識別
細胞を９０％の密集度まで１２ウェルプレート上で増殖させた。平板培養された細胞を、４℃で１時間ＬＤ又はＭｓ２０−ＬＤ（０．６２５−１０μｇ／ｍｌのドキソルビシン）の連続希釈物と共に培養した。培養後、細胞をＰＢＳで洗浄し、２００μｌの１％Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００で溶解した。ドキソルビシンを抽出するために、３００μｌのＩＰＡ（イソプロパノール中の０．７５ＮのＨＣｌ）を溶解物に添加し、３０分間振動させた。溶解物を１２，０００ｒｐｍで５分間遠心分離した後、ドキソルビシンについて、λEx/Em ＝４８５／５９０ｎｍで蛍光分光計によって上清を測定した。ドキソルビシンの濃度を、標準曲線を使用して内挿法によって計算した。
ヒト癌細胞によるＭｓ２０−ＬＤの取り込み
腫瘍細胞を１２ウェルプレート上で９０％の密集度まで増殖させ、完全培養培地中の２．５μｇ／ｍｌのＭｓ２０−ＬＤ又はＬＤを添加し、培養を３７℃で指定時間継続した。細胞をＰＢＳで洗浄した後、細胞表面上のＭｓ２０−ＬＤ及びＬＤを１０分間ｐＨ２．８の０．１Ｍのグリシンによって除去した。細胞によるドキソルビシンの取り込み量を上述したように検出した。
Ｍｓ２０−ＬＤの細胞取り込みについての共焦点顕微鏡分析
Ｈ１９９３細胞を中程度の密集度までカバースリップ上で増殖させた。細胞を、３７℃で種々の期間２．５μｇ／ｍｌのＭｓ２０−ＬＤ又はＬＤを含む完全培養培地で培養した。ＰＢＳで２回洗浄した後、細胞を４％のパラホルムアルデヒドで固定し、３％のＢＳＡを添加することによりブロッキングした。細胞膜及び核を夫々、Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ６４７抱合化コムギ胚芽凝集素（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）及びＤＡＰＩ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）で染色した。細胞内ドキソルビシンをλEx/Em ＝４８５／５９０ｎｍで蛍光により検出した。全ての蛍光画像をレーザー走査共焦点顕微鏡（Ｌｅｉｃａ社製のＴＣＳ−ＳＰ５）により捕捉し、ＬＡＳ ＡＦソフトウェア（Ｌｅｉｃａ社）で分析した。
細胞生存率アッセイ
細胞を９６ウェルプレートに１ウェル当たり３，０００個で播種し、３７℃で２４時間種々の濃度（０〜２０μｇ／ｍｌ）で培養培地（１０％ＦＢＳ）においてＭＳ２０−ＬＤ又はＬＤと共に培養した。過剰な薬物を除去した後、細胞をＰＢＳで１回洗浄し、３７℃で４８時間培養培地で培養を継続した。細胞生存率をＭＴＴ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）アッセイにより検出した。細胞を、３７℃で２．５時間０．１ｍｇ／ｍｌのＭＴＴを含有する培養培地で培養した。次に、ホルマザンの結晶をＤＭＳＯ（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ社）中に溶解し、吸光度をマイクロプレートリーダー（ＢｉｏＲａｄ社製のＭｏｄｅｌ６８０）を使用して５４０ｎｍで測定した。各アッセイを３回繰り返した。データは、未処置の対照細胞と比較した生存細胞の割合として提示された。
インビトロ細胞アポトーシス研究
Ｈ１９９３細胞を２４ウェルプレート上に播種して一晩接着させ、次いで１０％のＦＢＳを含有するＲＰＭＩ１６４０中で２．５μｇ／ｍｌのＭｓ２０−ＬＤ又はＬＤと共に個別に培養した。２４、４８及び７２時間薬物と共に培養した後、細胞を溶解緩衝液（Ｃｅｌｌ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ社）から採取し、ウエスタンブロットアッセイに供した。ウサギ抗切断型カスパーゼ９（Ａｓｐ３１５）、ウサギ抗切断型カスパーゼ３（Ａｓｐ１７５）、ウサギ抗ＰＡＲＰ（全てＣｅｌｌ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ社から購入）及びマウス抗α−チューブリン（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ社）の抗体を使用した。化学発光信号を、ＢｉｏＳｐｅｃｔｒｕｍ６００撮像システム（ＵＶＰ社）を使用して検出し、ＶｉｓｉｏｎＷｏｒｋｓＬＳ ソフトウェア（ＵＶＰ社）で定量化した。
ｓｃＦｖ抱合型量子ドット（ＱＤ）の合成
Ｑｄｏｔ７０５及びＱｄｏｔ８００ＩＴＫアミノＰＥＧ量子ドット（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を夫々、インビトロ細胞結合及びインビボ撮像のために本研究に使用した。リガンド抱合型ＱＤの合成手順を過去の報告書（カイ（Ｃａｉ）及びチェン（Ｃｈｅｎ）著，「ネイチャー・プロトコル（Ｎａｔ Ｐｒｏｔｏｃ）」，２００８年，３巻，p.８９−９６）から修正した。簡単に言うと、ＱＤをスルホ−ＳＭＣＣ（スルホシクシンイミジル−４−（Ｎ−マレイミドメチル）シクロヘキサン−１−カルボン酸塩、Ｐｉｅｒｃｅ）と抱合してＱＤ上にマレイミド活性化表面を生成し、遊離スルホ−ＳＭＣＣをＮＡＰ−１０脱塩カラム（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社）によって除去した。Ｍｓ２０をＴＣＥＰによって還元してカルボキシ末端に活性化チオール基を生じさせ、続いて４℃で一晩マレイミド官能化ＱＤと共に培養した。Ｍｓ２０抱合型ＱＤを、ＨＥＰＥＳ緩衝液で溶出したセファロース４Ｂゲル濾過クロマトグラフィーを使用して精製した。ＱＤの濃度を蛍光分光計で調べ、標準曲線を使用して内挿法によって計算した。
ヒト腫瘍異種移植片のインビボ蛍光撮像
６匹の１２週齢のＳＣＩＤ雄性マウスに２×１０6 個のＨ１９９３細胞を皮下移植した。腫瘍寸法が約３００ｍｍ3 に達すると、マウスを無作為に２つの群に分け（各群に３匹のマウス）、４００ｐｍｏｌｅのＭｓ２０−ＱＤ又はＱＤを夫々静脈内注入した。マウスがイソフルラン麻酔下にある間、Ｘｅｎｏｇｅｎ社のＩＶＩＳ２００撮像システム（励起：５２５／５０ｎｍ、放出：８３２／６５ｎｍ）を使用して指定時間に蛍光画像を撮像した。撮像期間の最後にマウスを頸椎脱臼によって屠殺した。器官及び腫瘍をマウスから摘出して蛍光撮像に供した。Ｍｓ２０−ＱＤの腫瘍の蓄積をＱＤの蓄積と定量的に比較するために、蛍光強度を、Ｌｉｖｉｎｇ ｉｍａｇｅソフトウェア（Ｘｅｎｏｇｅｎ社）を使用して背景を引き出すことによって計算した。
インビボファージ標的化アッセイのための動物モデル
６匹のＳＣＩＤマウス（６週齢）に５×１０6 個の肺癌細胞を注入した。腫瘍が約３００ｍｍ3 に達すると、マウスを無作為に２つの群（各群に３匹のマウス）に分け、２×１０9 コロニー形成単位（ｃｆｕ）の抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖファージクローン２０又は対照ファージを静脈内注入した。５０ｍｌのＰＢＳで灌流した後、器官及び腫瘍組織を除去し、低温ＰＢＳで洗浄して計量した。腫瘍組織に結合したファージを、ＴＧ１を増殖させることにより回収し、溶出したファージに対する力価を測定した。
ヒト腫瘍を有するマウスの標的ファージの組織分布を、Ｓｕｐｅｒ Ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ Ｐｏｌｙｍｅｒ−ＨＲＰ ＩＨＣ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ Ｓｙｓｔｅｍ（ＢｉｏＧｅｎｅｘ社）を使用して免疫組織学により評価した。パラフィンを埋め込んだ組織標本をマウス抗Ｍ１３抗体で染色し、ＳｕｐｅｒＥｎｈａｎｃｅｒ試薬及びポリマー西洋ワサビペルオキシダーゼ標識化抗マウスＩｇＧと共に培養した。ＰＢＳＴ（ＰＢＳ中の０．１％のＴｗｅｅｎ２０）で洗浄した後、区分を０．０１％のＨ2 Ｏ2 を加えた３，３’−ジアミノ−ベンジジン（ＤＡＢ）溶液に浸漬してＰＢＳＴで洗浄した。組織区分を、ヘマトキシリンで対比染色し、ＰＢＳ中の５０％グリセロールと共に載置し、正立顕微鏡を使用して調べた（Ｚｅｉｓｓ社製のＡｘｉｏｐｌａｎ ２ Ｉｍａｇｉｎｇ ＭＯＴ）。動物の世話に関しては、アカデミア シニカ（Ａｃａｄｅｍｉａ Ｓｉｎｉｃａ），台北市，台湾の指針に従った。
ｓｃＦｖ標的化療法による抗腫瘍効果の測定のための動物モデル
Ｈ４６０由来の肺癌異種移植片（約７５ｍｍ3 ）を有するＳＣＩＤマウスに、Ｍｓ２０−ＬＤ、ＬＤ又は等量のＰＢＳを４ｍｇ／ｋｇの総ドキソルビシン用量（１ｍｇ／ｋｇ、週１回）で尾静脈に静脈内注入した。腫瘍をキャリパーで毎週２回測定し、薬物毒性の症状としての体重減少に関して日常的に観察した。腫瘍体積を、長さ×（幅）2 ×０．５２の式に従って計算した。
末端デオキシヌクレオチドトランスフェラーゼ媒介のｄＵＴＰ切断末端標識（ＴＵＮＥＬ）アッセイ
処置したマウスから腫瘍を除去し、液体窒素中でＯ．Ｃ．Ｔ化合物（Ｔｉｓｓｕｅ−Ｔｅｋ）に埋め込んだ。凍結した腫瘍組織区分を調製し、製造業者の説明書（Ｒｏｃｈｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ社）に従ってＴＵＮＥＬ試薬で処理し、ＤＡＰＩによって対比染色した。全区分を、ＴｉｓｓｕｅＦＡＸＳ Ｓｙｓｔｅｍ顕微鏡（ＴｉｓｓｕｅＧｎｏｓｔｉｃｓ社）を使用して走査した。ＤＡＰＩを全細胞の識別についてのマスターチャネルとして設定することにより、細胞の反応性をＭｅｔａＭｏｒｐｈソフトウェア（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ社）によって定量化した。
腫瘍血管の染色
凍結腫瘍組織から区分を調製した。区分を１％のパラホルムアルデヒドで固定し、ＰＢＳで洗浄し、正常ウマ血清（Ｖｅｃｔｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社）中でブロッキングし、ラット抗マウスＣＤ３１（ＢＤ社）と共に培養した。０．１％のＴｗｅｅｎ２０を含有するＰＢＳで洗浄した後、区分をＡｌｅｘａＦｌｕｏｒ５９４抱合型抗ＩｇＧ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）で浸漬した。区分をＴｉｓｓｕｅＦＡＸＳ Ｓｙｓｔｅｍ顕微鏡によって走査し、蛍光画像をＭｅｔａＭｏｒｐｈによって分析した。
実施例１
ｃ−Ｍｅｔに結合するファージディスプレイされたｓｃＦｖの識別
ｃ−Ｍｅｔ結合ｓｃＦｖを選択するために、２×１０9 の要素を含む、ファージディスプレイされたヒトナイーブｓｃＦｖライブラリを構築した。ｃ−Ｍｅｔ抱合ダイナビーズによってｃ−Ｍｅｔ結合ファージを選択する前に、まずダイナビーズ結合ファージをライブラリから除去した。５回の親和性選択の後、５回目のファージ回収は１回目のファージ回収の約１０００倍に増加した（図１Ａ）。５９個のファージクローンを無作為に選択し、ＥＬＩＳＡによってｃ−Ｍｅｔ結合について試験した。１４個のファージクローンがｃ−Ｍｅｔ−Ｆｃタンパク質に対して優れた結合活性を有することがわかった（Ａ490 ＞０．２）。対照ファージ（Ｃｏｎ−Ｐ）を陰性対照として使用した。ｃ−Ｍｅｔに特異的に結合したが、ＶＥＧＦＲ２及びＢＳＡ対照タンパク質には結合しなかった１６個のクローンを識別した（図１Ｂ）。全１６個のクローンの配列を決定することによって、３つの固有の抗ｃ−Ｍｅｔファージクローンを識別した（ＰＣ１、ＰＣ２０及びＰＣ２１）。以下の表１参照。
Figure 0005955322
ＶH ドメイン及びＶL ドメインの両方に対する相補性決定領域１〜３（ＣＤＲ１〜３）及びフレームワーク領域１〜４（ＦＷ１〜４）を上記の表１に示している。ＶドメインのファミリーをＶＢＡＳＥ２データベース（ｗｗｗ．ｖｂａｓｅ２．ｏｒｇ）によって配列した。
３つのファージクローンの特異性及び結合親和性を調べるために、同一のファージ力価を使用して競合的ＥＬＩＳＡを行った。ＰＣ１は、ＰＣ２０又はＰＣ２１のいずれよりも強力なｃ−Ｍｅｔ結合親和性を有した（図１Ｃ）。３つのクローンを、ヒトｃ−Ｍｅｔを異所的に発現する２９３Ｔ細胞を使用してフローサイトメトリー及び免疫蛍光アッセイによって細胞表面のｃ−Ｍｅｔへの結合について評価した。ファージ粒子及び外因性ｃ−Ｍｅｔの抗Ｍ１３及び抗ｍｙｃ抗体による夫々の検出に続いて、ファージ粒子をｃ−Ｍｅｔを過剰発現する２９３Ｔ細胞と共に培養した。図１Ｅの代表画像は、ｃ−Ｍｅｔ−ｍｙｃで共局在化された抗ｃ−Ｍｅｔファージを表しており、ｃ−Ｍｅｔを発現した細胞に対する結合特異性を示している。３つ全てのクローンは、過剰発現したｃ−Ｍｅｔを有する２９３Ｔ細胞に結合したが、２９３Ｔ細胞には結合しなかった（図１Ｄ及び図１Ｅ）。しかしながら、同様に、細胞ｃ−Ｍｅｔに対するＰＣ１の結合能力は、ＰＣ２０及びＰＣ２１の結合能力より高かった。続いて、抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖの動態定数を調査するために、ｃ−Ｍｅｔ932 −Ｆｃ組み換えタンパク質と、ＰＣ１、ＰＣ２０及びＰＣ２１に夫々対応するＳ１、Ｓ２０及びＳ２１と称される可溶性抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖとを生成した。可溶性ｃ−Ｍｅｔ932 −Ｆｃタンパク質を、異所的にｃ−Ｍｅｔ932 −Ｆｃを発現する２９３Ｔ細胞の培養培地からタンパク質Ｇセファロースカラムを通して精製した（図８）。可溶性抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖを、ファージ感染させた大腸菌ＨＢ２１５１のペリプラズム抽出物からタンパク質Ｌアガロースクロマトグラフィーによって精製し、タンパク質重量マーカーに対応して３０ｋＤａの周囲に局在化され、精製された抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖタンパク質（Ｓ１、Ｓ２０及びＳ２１）を表すクマシーブルー染色によって評価した（図８の上パネル、パネルＢ）。
ｃ−Ｍｅｔ932 −Ｆｃタンパク質に対する各可溶性ｓｃＦｖの結合動態定数（Ｋon及びＫoff ）並びに親和性をＳｕｒｆａｃｅＰｌａｓｍｏｎＲｅｓｏｎａｎｃｅ（ＳＰＲ）によって測定した。ｃ−Ｍｅｔ932 −Ｆｃに対する各可溶性ｓｃＦｖのＫd 値は、６．８２〜１４．９ｎＭの範囲内であった。以下の表２参照。
Figure 0005955322
精製されたｓｃＦｖを使用してＢＩＡｃｏｒｅのＳＲＰによりＫon及びＫoff を測定し、Ｋd をＢＩＡｅｖａｌｕａｔｉｏｎソフトウェアにより計算した。
実施例２
ヒト癌及びＶＥＧＦ刺激した内皮細胞に結合した抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖ
内因性ｃ−Ｍｅｔに対する抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖの結合活性をＥＬＩＳＡにより癌細胞で分析した（図９Ａ）。対照抗体と比較して、抗ｃ−ＭｅｔのＳ１及びＳ２０のいずれも、ＳＫＯＶ３、Ｍａｈｌａｖｕ、ＳＡＳ、ＰＣ３、ＭＤＡ−ＭＢ−２３１、ＨＣＴ１１６、Ｐａｃａ−２、ＮＰＣ−ＴＷ０４、Ｈ１９９３の細胞を含む複数の種類のヒト癌細胞系に結合することがわかった。しかしながら、ｓｃＦｖは、Ａ４９８、Ｕ２ＯＳ及びＮＮＭの細胞とは反応しなかった。正常マウスＩｇＧを対照抗体として使用した。ＦＡＣＳ分析を実行して、抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖの両方が、ＶＥＧＦで刺激したＨＵＶＥＣにも結合したことを検証した。抗ＣＤ３１抗体及び対照ｓｃＦｖを夫々、陽性対照及び陰性対照として使用した（図９Ｂ）。
抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖがヒト癌細胞上で内因性ｃ−Ｍｅｔに特異的に結合することを更に確認するために、Ｈ４６０細胞及びｃ−ＭｅｔノックダウンＨ４６０細胞をＳ１又はＳ２０のいずれかの抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖで染色し、ＦＡＣＳ分析を実行した（図１０、パネルＢ）。いずれのｓｃＦｖもＨ４６０細胞に結合することができるが、ｓｃＦｖの結合活性はｃ−ＭｅｔノックダウンＨ４６０細胞で劇的に減少した。β−チューブリンは陰性対照として機能し、＊ｂｋｇは図１０のパネルＡにおける背景信号とみなす。
実施例３
抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖによる癌細胞に結合するＨＧＦの競合
３つの抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖがＨＧＦのｃ−Ｍｅｔへの結合を阻害するか否かを検査するために、ヒト肺癌細胞系Ｈ１９９３を選択して競合的ＥＬＩＳＡを行った（ルッターバッハ ビー（Ｌｕｔｔｅｒｂａｃｈ Ｂ）等著，「癌研究（Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ）」，２００７年，６７巻，p.２０８１−２０８８。対照ファージ（Ｃｏｎ−Ｐ）は、同一条件下で結合に影響を及ぼさなかった。競合物質なしでのＨ１９９３細胞へのＨＧＦの結合を１００％とみなした。Ｈ１９９３は、高レベルのｃ−Ｍｅｔを発現することが知られている。Ｈ１９９３細胞をファージクローンの存在下でＨＧＦと共に培養した場合、Ｈ１９９３細胞へのＨＧＦの結合は抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖであるＰＣ１によって９０％を上回って減少した。ＰＣ２０は、ｃ−ＭｅｔへのＨＧＦの結合を５０％を上回って阻害した（図２、パネルＡ）。異なる濃度の可溶性ｓｃＦｖによるＨＧＦの競合的阻害も検査した。正常マウスＩｇＧ（ＮＭＩｇＧ）を陰性対照として使用した。競合物質なしの固定化したｃ−Ｍｅｔタンパク質へのＨＧＦの結合を１００％とみなした。図２のパネルＢに示されているように、ｃ−ＭｅｔへのＨＧＦの結合活性は、Ｓ１及びＳ２０によって用量依存的に阻害されたが、Ｓ２１によってはごく僅かに阻害されただけであった。ｃ−ＭｅｔへのＨＧＦの結合に対するＩＣ50は、Ｓ１及びＳ２０に関して夫々２７．４ｎＭ及び２４９．５ｎＭであった（図２、パネルＢ）。
従って、ｃ−ＭｅｔのＨＧＦ結合ドメイン内に局在化された抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖの結合エピトープを調査した。抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖの結合能力を、ｃ−Ｍｅｔの全細胞外ドメインを含むｃ−Ｍｅｔ932 −Ｆｃタンパク質、並びに、いずれもＨＧＦ結合領域として定義されているＳｅｍａ及びＰＳＩドメインを含むｃ−Ｍｅｔ567 −Ｆｃタンパク質に関して調査した（図２、パネルＣ）。ｃ−Ｍｅｔ組み換えタンパク質をタイターウェルに固定化し、抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖと共に培養した。抗ｃ−Ｍｅｔポリクローナル抗体及び抗Ｅタグ抗体を夫々、陽性対照及び陰性対照として使用した。図２のパネルＤに示されているように、Ｓ２１では、ｃ−Ｍｅｔ932 −Ｆｃに対する結合特性と比較してｃ−Ｍｅｔ567 −Ｆｃに対する結合活性が大幅に減少した。ｃ−Ｍｅｔ932 −Ｆｃに対するＳ１の結合強度は、ｃ−Ｍｅｔ567 −Ｆｃに対する結合強度と同様であった。Ｓ２０は、ｃ−Ｍｅｔ932 −Ｆｃに対する効率より低い効率でｃ−Ｍｅｔ567 −Ｆｃに結合した。これらの結果は、Ｓ１及びＳ２０の結合エピトープがｃ−ＭｅｔのＨＧＦ結合領域内に位置している一方、Ｓ２１はＩｇ様ドメインを通じてｃ−Ｍｅｔを認識していることを示している（図２、パネルＤ）。
抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖであるＳ１が優れた競合能力を示したため、Ｓ１が、癌細胞におけるｃ−Ｍｅｔを活性化するＨＧＦに拮抗するか否かを調べた。Ａ５４９細胞を３７℃で１５分間ＨＧＦ及びＳ１共に共処理した。全細胞溶解物を、抗チロシンリン酸化ｃ−Ｍｅｔ抗体及びｃ−Ｍｅｔβ鎖（ｃ−Ｍｅｔ）に対する抗体を使用してウエスタンブロットに供した。リン酸化されたｃ−Ｍｅｔの定量化は、発光強度に基づき全ｃ−Ｍｅｔで正規化された。ＨＧＦ誘発されたｃ−Ｍｅｔのリン酸化は、Ｓ１によって抑制され、Ｓ１処理なしの癌細胞と比較してｃ−Ｍｅｔのリン酸化を６５．７％阻害した（図２、パネルＥ）。
実施例４
共焦点顕微鏡を使用した抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖの取込みの検査
抗体の取込み能力は、抗体媒介型リポソーム薬の開発にとって重要である（サプラ（Ｓａｐｒａ）及びアラン（Ａｌｌｅｎ）著，「癌研究（Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ）」，２００２年，６２巻，p.７１９０−７１９４。抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖであるＳ１及びＳ２０の取込み研究をＨ１９９３細胞で３７℃で行った。ｓｃＦｖを抗Ｅタグ抗体で検出し、続いて細胞を固定して透過した後にＦＩＴＣ標識化二次抗体と共に培養した。細胞核をＤＡＰＩで染色した。共焦点顕微鏡は、ｓｃＦｖが４℃で細胞膜に結合し（図３Ａ、ａ及びｂ）、ｓｃＦｖの取込みにより３７℃で細胞質内で蛍光信号が発せられたことを示した（図３、パネルＡ、ｃ及びｄ）。Ｓ２０で処理したＨ１９９３細胞における蛍光信号の量はＳ１で処理した細胞より高く、Ｓ２０の取込み能力がＳ１の取込み能力より優れていることを示唆している。低倍率では、Ｓ２０の取込みがほとんどの癌細胞に観察された（図３、パネルＡ、ｅ）。
更に、Ｓ２０の取り込みが細胞表面上でのｃ−Ｍｅｔの発現に依存するか否かを検証するために、取込み実験をＨ４６０細胞及びｃ−ＭｅｔノックダウンＨ４６０細胞中で実行した。共焦点顕微鏡では、Ｈ４６０細胞の細胞質内にＳ２０の蛍光信号が示された（図３、パネルＢ、ａ及びｂ）が、ｃ−ＭｅｔノックダウンＨ４６０細胞には示されなかった（図３、パネルＢ、ｃ）。これらの結果は、抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖであるＳ２０が、ｃ−Ｍｅｔを発現した癌細胞における特異的な取込みを表したことを示している。このように、Ｓ２０を抗体媒介型の細胞内薬物送達の開発に使用することができる。
実施例５
薬物結合、細胞内送達及び細胞毒性を向上させたＭｓ２０抱合型ナノ粒子
Ｓ２０が、ｃ−Ｍｅｔを発現する腫瘍細胞においてリポソーム薬物送達を促進するか否かを調べるために、Ｃ末端でシステインと融合させたＳ２０遺伝子をコードする細菌発現ベクターを作製し、本明細書ではＭｓ２０と称されるこのＳ２０−システイン融合タンパク質を続いて生成した（図１１、パネルＡ及びＢ）。部位特異的な抱合体Ｍｓ２０を、ドキソルビシンを含有するリポソームの外面でそのｃ末端システインを通じて、マレイミド修飾したＰＥＧ鎖に特異的に結合させ、Ｍｓ２０抱合型リポソームドキソルビシン（Ｍｓ２０−ＬＤ）を生成した（図１１、パネルＣ及びＤ）。
Ｍｓ２０抱合型リポソームが癌細胞への薬物送達を増加させるか否かを説明するために、複数のヒト肺癌細胞系を３７℃でＭｓ２０−ＬＤ及びＬＤを用いて処理した。酸性のグリシン緩衝液で洗浄して、表面に結合したリポソーム薬物を除去した後、取り込んだドキソルビシンを定量化した。ドキソルビシンの細胞取り込みは、Ｍｓ２０−ＬＤでの処理によってＨ１９９３、Ｈ４４１及びＡ５４９の細胞では略上昇したが、Ｈ５２０及びＣＬ１−５の細胞では有意な変化はなかった（図４、パネルＡ）。ｃ−Ｍｅｔ発現へのＭｓ２０−ＬＤ取り込みの依存性を更に検証するために、夫々の細胞系における相対ｃ−Ｍｅｔ発現を、Ｍｓ２０標識化量子ドット（Ｍｓ２０−ＱＤ）を使用してフローサイトメトリーによって比較した（図４、パネルＢ）。興味深いことに、Ｈ５２０及びＣＬ１−５の細胞は、最低量のｃ−Ｍｅｔのみを発現したことがわかり（図４、パネルＢ）、これは、Ｍｓ２０−ＬＤの取り込みが乏しいことに相当する（図４、パネルＡ）。この発見は、腫瘍細胞によるＭｓ２０−ＬＤの取り込みが細胞表面でのｃ−Ｍｅｔの発現レベルに依存していたことを示唆している。
Ｍｓ２０が実際に、腫瘍細胞上でＬＤの結合効率を改善する能力があったことを検証するために、Ｈ１９９３細胞を４℃で１時間種々の濃度のＭｓ２０−ＬＤ及び非標的化ＬＤ（ＬＤ）と共に別個に培養した。リポソーム薬物の結合活性を、細胞を溶解した後に蛍光によって定量化した。Ｈ１９９３細胞へのＭｓ２０−ＬＤの結合は、ＬＤと比較して薬物の濃度に応じて１３〜２６倍大幅に増加した（図４、パネルＣ）。同様の結果が、同一の実験条件下でＨ４６０細胞について観察された。Ｍｓ２０が癌細胞への細胞内薬物送達を向上させたことを確認するために、Ｈ１９９３細胞を複数の経過時点でＭｓ２０−ＬＤ及びＬＤと共に培養した。取り込まれなかったリポソーム薬物を表面から除去した後、細胞内ドキソルビシン取り込みを測定した。Ｍｓ２０は、非抱合型ＬＤと比較して各時点で癌細胞への薬物送達を著しく向上させた（図４、パネルＤ）。
Ｍｓ２０がＬＤの細胞毒性を増強したか否かを更に評価するために、Ｍｓ２０−ＬＤの細胞毒性効果を、ＭＴＴアッセイを使用してヒト肺癌細胞に関して調べた（図５、パネルＡ）。細胞生存率を生細胞のパーセンテージとして計算した。赤色の点線は平均５０％の生存率を意味する。各点は４回の実験の平均を表す。Ｍｓ２０−ＬＤは、ＬＤと比較して、癌細胞への薬物細胞毒性を著しく増強させ、Ｈ１９９３及びＨ４４１の細胞で最大半数阻害濃度（ＩＣ50）を６倍減少させた（図５、パネルＢ）。切断ＰＡＲＰ、切断カスパーゼ９及び切断カスパーゼ３等のアポトーシスマーカーの発現も、Ｍｓ２０−ＬＤで処理したＨ１９９３細胞で高められた（図５、パネルＣ）。α−チューブリンを充填対照としてプローブした。デンシトメトリーを使用して、未処理細胞と比較して切断されたＰＡＲＰの倍増を測定し、α−チューブリンによって正規化した（下）。
実施例６
抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖのインビボ腫瘍ホーミング及び撮像
抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖの生体内での腫瘍ホーミング能力を調査するために、Ｈ４６０由来の肺腫瘍異種移植片を有するマウスに抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖであるＰＣ２０又は対照ファージを静脈内注入した。腫瘍から回収したＰＣ２０の力価は、内臓由来のものより高かった。実験を２回行い、同一の結果が得られた。灌流後、結合ファージを回収して腫瘍質量及び正常器官から判定した。結果は、抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖであるＰＣ２０が正常器官より遥かに効率的に腫瘍にホーミングしたことを示した（図６、パネルＡ）。対照ファージはこのようなホーミング能力を示さなかった。更に、抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖであるＰＣ２０の組織分布を、抗ファージ抗体を使用し組織区分を免疫染色して調査した。ＰＣ２０ファージは、ＰＣ２０で処置したマウスに由来する脳、肺及び心臓等の正常器官の組織より腫瘍組織内で選択的に局在化する一方、対照ファージは腫瘍及び正常器官の組織中に検出されなかったことがわかった（図６、パネルＢ）。
抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖであるＳ２０が腫瘍撮像アッセイに適用可能であるか否かを検査するために、Ｍｓ２０抱合型量子ドット（Ｍｓ２０−ＱＤ）又は非抱合型量子ドット（ＱＤ）を、Ｈ１９９３由来の肺腫瘍異種移植片を有するマウスに注入した。注入の６時間後、Ｍｓ２０−ＱＤで処置したマウスの腫瘍組織中に観察された近赤外（ＮＩＲ）蛍光信号強度がＱＤで処置したマウスより５．２倍高かった（図６、パネルＣ）。注入の２４時間後、マウスを屠殺して解剖し、Ｍｓ２０−ＱＤの組織分布を調べた。代表画像は、３回の独立した実験の結果である。図６のパネルＤに示されているように、Ｍｓ２０−ＱＤは、正常器官とは対照的に、腫瘍中に顕著に且つ選択的に蓄積されている。Ｍｓ２０−ＱＤは、ＱＤより５．４倍効果的に腫瘍を標的化した。これらの結果は、抗ｃ−ＭｅｔのｓｃＦｖが腫瘍の画像化における使用に好適であることを示唆している。
実施例７
ヒト肺癌異種移植片におけるＭｓ２０−ＬＤの治療効果
Ｍｓ２０が抗癌剤の化学療法効果を改善することができるか否かを評価するために、標的化した薬物送達システムを、Ｍｓ２０をペグ化したリポソームドキソルビシン（Ｍｓ２０−ＬＤ）と結合させることによって形成した。Ｈ４６０異種移植片（約７５ｍｍ3 ）を有するＳＣＩＤマウスに、４ｍｇ／ｋｇの総ドキソルビシン用量（週１回の間隔で１ｍｇ／ｋｇ）でリポソーム薬物を静脈内注入した。Ｈ４６０由来の肺癌を有するマウスに、Ｍｓ２０−ＬＤ、ＬＤ、及びＰＢＳを投与した。ＬＤ群及び対照ＰＢＳ群のマウスの腫瘍寸法は夫々、Ｍｓ２０−ＬＤ群のものよりも１．９倍及び４．４倍大きかった（ｎ＝８）＊＊、Ｐ＜０．０１。グラフの点は平均腫瘍体積を表す。Ｍｓ２０−ＬＤを投与したマウスの腫瘍は、ＬＤ単独を投与したマウスの腫瘍より体積が小さいことがわかった（Ｐ＜０．０１）（図７、パネルＡ）。ＬＤ群の腫瘍寸法は、２５日目までにＭｓ２０−ＬＤの腫瘍寸法より１．９倍まで徐々に増加した。Ｍｓ２０−ＬＤ群及びＬＤ群は、治療期間中体重に著しい変化がなかった（図７、パネルＢ）。治療の終わりまでに、ＬＤで治療したマウスの０．７３ｇ及びＰＢＳ緩衝液を注入したマウスの１．８ｇと比較すると、Ｍｓ２０−ＬＤで治療したマウスの最終平均腫瘍重量は０．３１ｇであった（図７、パネルＣ及びＤ）。従って、腫瘍重量は、ＬＤ群よりＭｓ２０−ＬＤ群で低かった（ｎ＝８）＊、Ｐ＜０．０５。更に、各群の腫瘍組織を抗ＣＤ３１抗体によって調べて、腫瘍血管及び末端デオキシヌクレオチドトランスフェラーゼｄＵＴＰ切断末端標識（ＴＵＮＥＬ）アッセイを検出してアポトーシス細胞を識別した。区分を、自動化細胞取得（ＴｉｓｓｕｅＧｎｏｓｔｉｃｓ社）を使用して分析し、ＣＤ３１陽性及びＴＵＮＥＬ陽性領域を、ＭｅｔａＭｏｒｐｈソフトウェア（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ社）を使用して定量化した。図７のパネルＥに示されているように、Ｍｓ２０−ＬＤ治療群のＣＤ３１陽性領域では、ＬＤ治療群より大きく減少した。従って、Ｍｓ２０−ＬＤ群におけるＣＤ３１陽性内皮の量はＬＤ群より低かった。Ｍｓ２０−ＬＤ治療群におけるアポトーシス細胞の数は、
ＬＤ治療群より２倍多かった（図７、パネルＦ）。

Claims (18)

  1. 単離された抗ｃ−Ｍｅｔ抗体であって、
    配列識別番号１４の相補性決定領域１、配列識別番号１６の相補性決定領域２及び配列識別番号２５の相補性決定領域３を有する可変重鎖領域と、配列識別番号３５の相補性決定領域１、配列識別番号３７の相補性決定領域２及び配列識別番号４６の相補性決定領域３を有する可変軽鎖領域とを備えていることを特徴とする単離された抗体。
  2. 哺乳類生細胞の表面上でｃ−Ｍｅｔに結合すると、前記哺乳類生細胞によって取り込まれることを特徴とする請求項１に記載の単離された抗体。
  3. 単鎖Ｆｖ（ｓｃＦｖ）、ＩｇＧ、Ｆａｂ、（Ｆａｂ’）2 又は（ｓｃＦｖ’）2 であることを特徴とする請求項１又は２に記載の単離された抗体。
  4. 標識化されていることを特徴とする請求項１乃至３のいずれか一項に記載の単離された抗体。
  5. 抗癌剤に抱合されていることを特徴とする請求項１乃至３のいずれか一項に記載の単離された抗体。
  6. 表面及び内部空間を備えている脂質ナノ粒子であって、前記内部空間に抗癌剤を含み、請求項１乃至３のいずれか一項に記載の単離された抗体が、前記脂質ナノ粒子の前記表面に付着していることを特徴とする脂質ナノ粒子。
  7. 前記脂質ナノ粒子が表面にｃ−Ｍｅｔを発現する細胞と接触すると、前記抗体は、前記表面のｃ−Ｍｅｔに結合し、前記脂質ナノ粒子が取り込まれることを特徴とする請求項６に記載の脂質ナノ粒子。
  8. 薬学的に許容可能な担体と、
    請求項１乃至５のいずれか一項に記載の単離された抗体、又は請求項６若しくは７に記載の脂質ナノ粒子と
    を含むことを特徴とする組成物。
  9. 非経口投与用の製剤としてなることを特徴とする請求項８に記載の組成物。
  10. 静脈内、髄腔内、又は脳室内投与用の製剤としてなることを特徴とする請求項８に記載の組成物。
  11. 癌を有する対象を処理する方法で用いる薬剤を製造するための請求項１乃至３のいずれかに記載の単離された抗体の使用法であって、
    前記抗体は、抗癌剤に抱合されていることを特徴とする使用法。
  12. 前記抗体は癌細胞内に取り込まれることを特徴とする請求項１１に記載の使用法。
  13. 前記癌は肺癌であることを特徴とする請求項１１に記載の使用法。
  14. 癌を有する対象を処理する方法で用いる薬剤を製造するための請求項６又は７に記載の脂質ナノ粒子の使用法。
  15. 前記癌は肺癌であることを特徴とする請求項１４に記載の使用法。
  16. 対象内の癌細胞を検出する方法において、
    請求項１乃至４のいずれか一項に記載の抗体を、癌の疑いがある前記対象の細胞にインビトロで接触させ、
    前記細胞に結合した前記抗体を検出する
    ことを特徴とする方法。
  17. 請求項１又は２に記載の抗体のアミノ酸配列をコードするヌクレオチド配列を含むことを特徴とする単離された核酸。
  18. 請求項１７に記載の核酸を含有することを特徴とする組み換え型宿主細胞。
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