JP5927999B2

JP5927999B2 - 細胞遊走解析用基材および細胞遊走解析方法

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Publication number: JP5927999B2
Application number: JP2012047132A
Authority: JP
Inventors: 智紀赤井; 祐也高杉; 尚毅横山; 寛子渡邉
Original assignee: Dai Nippon Printing Co Ltd
Current assignee: Dai Nippon Printing Co Ltd
Priority date: 2012-03-02
Filing date: 2012-03-02
Publication date: 2016-06-01
Anticipated expiration: 2032-03-02
Also published as: JP2013179912A

Description

本発明は、細胞遊走解析用基材および該細胞遊走解析用基材を用いた細胞遊走解析方法に関する。

細胞の遊走は免疫応答や受精後の胚形態形成、組織修復および再生などの様々な段階に関与している。また、癌やアテローム動脈硬化症、関節炎などの疾患の進行においても極めて重要な役割を持つ。具体的には、血管内皮を通しての細胞の遊走は、炎症、アテローム性動脈硬化症、癌の転移といった状態の病態生理における重要な現象である。そのため、インビトロでの細胞遊走を測定する方法は、長年に渡って開発されてきた。

例えば、一般に市販されている細胞遊走解析装置としては、古典的なボイデンチャンバ、細胞培養インサート、ＦｌｕｏｒｏＢｌｏｃｋ（登録商標）（ＢＤＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）、ＣｅｌｌＭｏｔｉｌｉｔｙＨｉｔＫｉｔ（登録商標）（Ｃｅｌｌｏｍｉｃｓ）がある。

また特許文献１には、導電性領域と絶縁性領域とを有する基材、ならびにその導電性領域上に形成された細胞接着性領域と細胞接着阻害性領域とを備え、導電性領域上において細胞接着性領域と細胞接着阻害性領域とが隣り合っている細胞遊走解析装置が記載されている。この細胞遊走解析装置に細胞を播種し、細胞接着性領域に細胞を接着させ、導電性領域に電圧を印加して導電性領域上の細胞接着阻害性領域を細胞接着性に変化させることにより、細胞接着性領域に接着している細胞の、細胞接着性に変化した細胞接着阻害性領域への遊走を観察することができる。

しかしながら、細胞は、隣接する細胞と接触した際に、ギャップジャンクション等の接合を介して様々な相互作用をすることが知られており、この相互作用は細胞遊走挙動にも大きく影響する。上記のような従来の細胞遊走解析装置は、細胞を集団として取り扱うため、細胞間の相互作用を含めた遊走結果を測定するものでしかなかった。特許文献１には、導電性領域を櫛歯状にパターニングすることにより細胞の遊走方向を制御することが記載されているが、この場合においても前後の細胞同士は接触するため、遊走結果は細胞間の相互作用の影響を受ける。

特開２０１１−１０１６３８号公報

本発明は、細胞間の相互作用の影響を制御し、定量的に細胞遊走を解析することが可能な細胞遊走解析用基材およびこれを用いた細胞遊走解析方法を提供することを目的とする。

本発明者らは、基材表面に、細胞を個別に接着させて遊走させることが可能な１以上の試験領域を設けることにより、細胞間の相互作用の影響を制御し、定量的に細胞遊走を解析することが可能になることを見出した。

すなわち、本発明は以下の発明を包含する。
（１）細胞遊走解析用基材であって、その表面に、
それぞれが、第１の細胞接着性領域と、該第１の細胞接着性領域と接する第１の細胞接着阻害性領域とを含む、１以上の試験領域と、
各試験領域を包囲する第２の細胞接着阻害性領域と
が形成されており、
該基材の、該第１の細胞接着阻害性領域が表面に形成された部分は導電部であり、
該第１の細胞接着阻害性領域は、導電部への電圧印加によって、第２の細胞接着性領域に変化することが可能である、
前記細胞遊走解析用基材。
（２）第１の細胞接着性領域が第１の細胞接着性領域に包囲されている、上記（１）に記載の細胞遊走解析用基材。
（３）第１の細胞接着性領域が、１個の細胞のみが接着可能な面積を有する、上記（１）または（２）に記載の細胞遊走解析用基材。
（４）複数の試験領域が、基材表面に、４〜４×１０^４個／ｃｍ^２の密度で存在する、上記（１）〜（３）のいずれかに記載の細胞遊走解析用基材。
（５）基材の、第２の細胞接着阻害性領域が表面に形成された部分は絶縁部である、上記（１）〜（４）のいずれかに記載の細胞遊走解析用基材。
（６）表面に複数の試験領域が形成されており、
複数の試験領域のそれぞれに対応する、第１の細胞接着阻害性領域が表面に形成されている複数の導電部が、それぞれ、少なくとも１つの他の導電部と、導電性の橋状部を介して電気的に連結されている、上記（１）〜（５）のいずれかに記載の細胞遊走解析用基材。
（７）細胞遊走解析方法であって、
（ｉ）上記（１）〜（６）のいずれかに記載の細胞遊走解析用基材に細胞を播種して、第１の細胞接着性領域に細胞を接着させる工程、
（ｉｉ）導電部に電圧を印加することによって第１の細胞接着阻害性領域を第２の細胞接着性領域に改変する工程、および
（ｉｉｉ）第１の細胞接着性領域に接着させた細胞の第２の細胞接着性領域における移動を観察する工程
を含む、上記方法。

本発明によれば、細胞を個別に接着させて遊走させることが可能となるため、細胞間の相互作用の影響を制御し、定量的に細胞遊走を解析することが可能な細胞遊走解析用基材および細胞遊走解析方法を提供することができる。さらには、本発明によれば、より多くの細胞について効率的に遊走解析を行うことができる。

図１は、本発明の第一の実施形態を示す図である。図２は、本発明の第二の実施形態を示す図である。図３は、本発明の第一の実施形態の一態様を示す図である。

以下、本発明の細胞遊走解析用基材（以下、「本発明の基材」という）の一実施形態について説明する。

第一の実施形態は、基材表面に、
それぞれが、第１の細胞接着性領域と、該第１の細胞接着性領域と接する第１の細胞接着阻害性領域とを含む、複数の試験領域と
各試験領域を包囲する第２の細胞接着阻害性領域と
が形成されており、
該基材の、該第２の細胞接着阻害性領域が表面に形成された部分は絶縁部であり、
該基材の、該試験領域および該絶縁部が表面に形成された部分は導電部であり、
該第１の細胞接着阻害性領域は、導電部への電圧印加によって、第２の細胞接着性領域に変化することが可能である形態である。

第二の実施形態は、基材表面に、
それぞれが、第１の細胞接着性領域と、該第１の細胞接着性領域と接する第１の細胞接着阻害性領域とを含む、複数の試験領域と、
各試験領域を包囲する第２の細胞接着阻害性領域と
が形成されており、
該基材の、該第１の細胞接着阻害性領域が表面に形成された部分は導電部であり、
複数の試験領域のそれぞれに対応する、第１の細胞接着阻害性領域が表面に形成されている複数の導電部が、それぞれ、少なくとも１つの他の導電部と、導電性の橋状部を介して電気的に連結されており、
該第１の細胞接着阻害性領域は、導電部への電圧印加によって、第２の細胞接着性領域に変化することが可能である形態である。

（基体）
本発明の基材は導電部をその表面に形成させるための基体を含んでいてもよい。
本発明の基材に用いられる基体としては、導電部を形成可能な材料で形成されたものであれば特に制限されない。基体は絶縁性材料を含むものであることが好ましい。本明細書において、絶縁性材料を含む基体を絶縁部ともいう。具体的には、ガラス、石英ガラス、ホウケイ酸ガラス、アルミナ、サファイア、セラミクス、フォルステライト、感光性ガラス、セラミック、シリコン、エラストマー、プラスチック（例えば、ポリエステル樹脂、ポリエチレン樹脂、ポリプロピレン樹脂、ＡＢＳ樹脂、ナイロン、アクリル樹脂、フッ素樹脂、ポリカーボネート樹脂、ポリウレタン樹脂、メチルペンテン樹脂、フェノール樹脂、メラミン樹脂、エポキシ樹脂、塩化ビニル樹脂）で代表される有機材料を挙げることができる。基体は透明性の材料を含むものであることが好ましい。その形状も限定されず、例えば、平板、平膜、フィルム、多孔質膜等の平坦な形状、シリンダ、スタンプ、マルチウェルプレート、マイクロ流路等の立体的な形状、ならびに表面に凹凸が形成された形状が挙げられる。フィルムを使用する場合、その厚さは特に制限されないが、通常０．１〜１０００μｍ、好ましくは１〜５００μｍ、より好ましくは１０〜２００μｍである。

基体上に導電部を形成する場合、公知のパターニング技術を利用できる。公知のパターニング技術としては、例えば、グラビア印刷法、スクリーン印刷法、オフセット印刷法、フレキソ印刷法およびコンタクトプリンティング法などの各種印刷法による方法、各種リソグラフィー法を用いる方法、ならびにインクジェット法による方法、他に微細な溝を彫刻等する立体整形の手法などが挙げられる。具体的には、基体、例えばガラス基体に、導電性材料、例えば金属膜または金属酸化物膜を成膜し、これをフォトリソグラフィー技術等の公知の技術を用いてパターニングすることにより、導電部を形成することができる。

基体上への導電性材料の成膜は、公知の方法で行うことができる。例えば、マイクロ波プラズマＣＶＤ（Ｃｈｅｍｉｃａｌｖａｐｏｒｄｅｐｏｓｉｔ）法、ＥＣＲＣＶＤ（Ｅｌｅｃｔｒｉｃｃｙｃｌｏｔｒｏｎｒｅｓｏｎａｎｃｅｃｈｅｍｉｃａｌｖａｐｏｒｄｅｐｏｓｉｔ）法、ＩＣＰ（Ｉｎｄｕｃｔｉｖｅｃｏｕｐｌｅｄｐｌａｓｍａ）法、直流スパッタリング法、ＥＣＲ（Ｅｌｅｃｔｒｉｃｃｙｃｌｏｔｒｏｎｒｅｓｏｎａｎｃｅ）、スパッタリング法、イオン化蒸着法、アーク式蒸着法、レーザー蒸着法、ＥＢ（Ｅｌｅｃｔｒｏｎｂｅａｍ）蒸着法、抵抗加熱蒸着法などが挙げられる。成膜は、塗布により実施してもよい。スピンコートや各種の印刷方式も使用できる。

導電部を構成する導電性材料の膜として、金属膜または金属酸化物膜、金属微粒子や金属ナノファイバーが絶縁体に分散された膜、導電性の有機材料からなる膜などが挙げられる。金属酸化物としては、ＩＴＯ（酸化インジウム錫）、ＩＺＯ（酸化インジウム亜鉛）などが挙げられ、金属微粒子としては、銀、金、銅などの微粒子、金属ナノファイバーとしてはカーボンナノチューブ、導電性の有機材料としては、ポリエチレンジオキシチオフェン（ＰＥＤＯＴ）などが挙げられる。

導電性材料の膜としては特に制限されないが、透明な膜であることが好ましく、例えば、ＩＴＯ膜、ＩＺＯ膜、導電性高分子のポリエチレンジオキシチオフェン膜などが挙げられる。また、電圧印加後も透明な膜であることが好ましい。本発明においては、ＩＴＯ膜をスパッタリング法により成膜して、その後パターニングすることにより、導電部を形成することが好ましい。透明な膜は、細胞の観察において有利である。

導電性材料の膜の厚さは、通常、単分子膜〜１００μｍ程度であり、好ましくは２ｎｍ〜１μｍ、より好ましくは５ｎｍ〜５００ｎｍである。
上記のような導電部のパターニングは、具体的には、成膜した金属膜または金属酸化物膜に、レジスト塗布、フォトマスクを介した露光、現像およびエッチングを行って実施することができる。

（絶縁部）
本発明の基材は導電部上に絶縁部を含んでいてもよい。
本発明の基材に用いられる絶縁部としては、導電部上に形成可能な材料で形成されたものであれば特に制限されない。絶縁部は、その表面に炭素酸素結合を有する有機化合物の被膜を形成することが可能な材料で形成されたものであることが好ましい。具体的には、ガラス、石英ガラス、ホウケイ酸ガラス、アルミナ、サファイア、セラミクス、フォルステライト、感光性ガラス、セラミック、シリコン、エラストマー、プラスチック（例えば、ポリエステル樹脂、ポリエチレン樹脂、ポリプロピレン樹脂、ＡＢＳ樹脂、ナイロン、アクリル樹脂、フッ素樹脂、ポリカーボネート樹脂、ポリウレタン樹脂、メチルペンテン樹脂、フェノール樹脂、メラミン樹脂、エポキシ樹脂、塩化ビニル樹脂）で代表される有機材料を挙げることができる。絶縁部はＳｉＯ_２等の透明性の材料を含むものであることが好ましい。その形状も限定されず、例えば、平板、平膜、フィルム、多孔質膜等の平坦な形状、シリンダ、スタンプ、マルチウェルプレート、マイクロ流路等の立体的な形状、ならびに表面に凹凸が形成された形状が挙げられる。フィルムを使用する場合、その厚さは特に制限されないが、通常０．１〜１０００μｍ、好ましくは１〜５００μｍ、より好ましくは１０〜２００μｍである。

導電部上に絶縁部を形成する場合、公知のパターニング技術を利用できる。公知のパターニング技術としては、例えば、グラビア印刷法、スクリーン印刷法、オフセット印刷法、フレキソ印刷法およびコンタクトプリンティング法などの各種印刷法による方法、各種リソグラフィー法を用いる方法、ならびにインクジェット法による方法、他に微細な溝を彫刻等する立体整形の手法などが挙げられる。

具体的には、導電性材料の成膜およびパターニング後に、絶縁性材料の成膜およびパターニングを公知の方法で行うことにより絶縁部を形成することができる。また、導電性材料の成膜後に絶縁性材料を成膜した後、一括してパターニングを公知の方法で行うか、またはリフトオフ法を用いることにより絶縁部を形成することができる。

（細胞接着性領域と細胞接着阻害性領域）
本発明において、第１の細胞接着性領域と第２の細胞接着性領域を単に細胞接着性領域と称する場合がある。また、本発明において、第１の細胞接着阻害性領域と第２の細胞接着阻害性領域を単に細胞接着阻害性領域と称する場合がある。

本発明において、細胞接着性とは、細胞が接着すること、または細胞が接着しやすいことを意味する。細胞接着阻害性とは、細胞が接着しにくいことまたは細胞が接着しないことを意味する。従って、細胞接着性領域と細胞接着阻害性領域が形成されている基材表面に細胞を播くと、細胞接着性領域には細胞が接着するが、細胞接着阻害性領域には細胞が接着しない。

細胞接着性は、接着しようとする細胞によって異なる場合もあるため、細胞接着性とは、ある種の細胞に対して細胞接着性であることを意味する。従って、細胞遊走解析用基材上には、複数種の細胞に対する複数の細胞接着性領域が存在する場合、すなわち細胞接着性が異なる細胞接着性領域が２水準以上存在する場合もある。

（細胞接着阻害性領域）
細胞接着阻害性領域は、好ましくは、炭素酸素結合を有する有機化合物により形成される親水性膜により形成される。当該親水性膜は、水溶性や水膨潤性を有する、炭素酸素結合を有する有機化合物を主原料とする薄膜であり、酸化される前は細胞接着阻害性を有し、酸化および／または分解された後は細胞接着性を有しているものであれば特に限定されない。また、第２の細胞接着阻害性領域に関しては、細胞非接着性あり、かつ表面に親水性膜が形成されないレジスト部により形成されていてもよい。このようなレジスト部の材料としては、例えばＳＵ−８（ＭｉｃｒｏＣｈｅｍ）を挙げることができる。レジスト部の形成方法は、特に制限されないが、例えば、スピンコートや各種印刷技術による塗布成膜により形成することができる。また、レジスト部の厚さは特に制限されないが、１〜１００μｍであることが好ましい。

本発明において炭素酸素結合とは、炭素と酸素との間に形成される結合を意味し、単結合に限らず二重結合であってもよい。炭素酸素結合としてはＣ−Ｏ結合、Ｃ（＝Ｏ）−Ｏ結合、Ｃ＝Ｏ結合が挙げられる。

主原料としては、水溶性高分子、水溶性オリゴマー、水溶性有機化合物、界面活性物質、両親媒性物質等が挙げられ、これらが相互に物理的または化学的に架橋し、基体または導電部と物理的または化学的に結合することにより親水性薄膜となる。

具体的な水溶性高分子材料としては、ポリアルキレングリコールおよびその誘導体、ポリアクリル酸およびその誘導体、ポリメタクリル酸およびその誘導体、ポリアクリルアミドおよびその誘導体、ポリビニルアルコールおよびその誘導体、双性イオン型高分子、多糖類、等を挙げることができる。分子形状は、直鎖状、分岐を有するもの、デンドリマー等を挙げることができる。より具体的には、ポリエチレングリコール、ポリエチレングリコールとポリプロピレングリコールの共重合体、例えば、ＰｌｕｒｏｎｉｃＦ１０８、ＰｌｕｒｏｎｉｃＦ１２７、ポリ（Ｎ−イソプロピルアクリルアミド）、ポリ（Ｎ−ビニル−２−ピロリドン）、ポリ（２−ヒドロキシエチルメタクリレート）、ポリ（メタクリロイルオキシエチルフォスフォリルコリン）、メタクリロイルオキシエチルフォスフォリルコリンとアクリルモノマーの共重合体、デキストラン、およびヘパリンが挙げられるがこれらには限定されない。

具体的な水溶性オリゴマー材料や水溶性低分子化合物としては、アルキレングリコールオリゴマーおよびその誘導体、アクリル酸オリゴマーおよびその誘導体、メタクリル酸オリゴマーおよびその誘導体、アクリルアミドオリゴマーおよびその誘導体、酢酸ビニルオリゴマーの鹸化物およびその誘導体、双性イオンモノマーからなるオリゴマーおよびその誘導体、アクリル酸およびその誘導体、メタクリル酸およびその誘導体、アクリルアミドおよびその誘導体、双性イオン化合物、水溶性シランカップリング剤、水溶性チオール化合物等を挙げることができる。より具体的には、エチレングリコールオリゴマー、（Ｎ−イソプロピルアクリルアミド）オリゴマー、メタクリロイルオキシエチルフォスフォリルコリンオリゴマー、低分子量デキストラン、低分子量ヘパリン、オリゴエチレングリコールチオール、エチレングリコール、ジエチレングリコール、トリエチレングリコール、テトラエチレングリコール、２−〔メトキシ（ポリエチレンオキシ）−プロピルトリメトキシシラン、およびトリエチレングリコール−ターミネーティッド−チオールが挙げられるがこれらには限定されない。

親水性膜は、処理前は高い細胞接着阻害性を有し、酸化処理および／または分解処理後は細胞接着性を示すものであることが望ましい。
親水性膜の平均厚さは、０．８ｎｍ〜５００μｍが好ましく、０．８ｎｍ〜１００μｍがより好ましく、１ｎｍ〜１０μｍがより好ましく、１．５ｎｍ〜１μｍが最も好ましい。平均厚さが０．８ｎｍ以上であれば、細胞の接着において、基材の表面の親水性薄膜で覆われていない領域の影響を受けにくいため好ましい。また、平均厚さが５００μｍ以下であればコーティングが比較的容易である。

基体または導電部表面への親水性膜の形成方法としては、基体または導電部へ親水性有機化合物を直接吸着させる方法、基体または導電部へ親水性有機化合物を直接コーティングする方法、基体または導電部へ親水性有機化合物をコーティングした後に架橋処理を施す方法、基体または導電部への密着性を高めるために多段階式に親水性薄膜を形成させる方法、基体または導電部との密着性を高めるために基体または導電部上に下地層を形成し、次いで親水性有機化合物をコーティングする方法、基体または導電部表面に重合開始点を形成し、次いで親水性ポリマーブラシを重合する方法等を挙げることができる。

上記成膜方法のうち特に好ましい方法としては、多段階式に親水性薄膜を形成させる方法、ならびに、基体または導電部との密着性を高めるために基体または導電部上に下地層を形成し、次いで親水性有機化合物をコーティングする方法を挙げることができる。これらの方法を用いると、親水性有機化合物の基体または導電部への密着性を高めることが容易だからである。本明細書では「結合層」という用語を用いる。結合層とは、多段階式に親水性有機化合物の薄膜を形成する場合には最表面の親水性薄膜層と基材との間に存在する層を意味し、基体または導電部表面に下地層を設け当該下地層の上に親水性薄膜層を形成する場合には当該下地層を意味する。結合層は、結合部分（リンカー）を有する材料を含む層であることが好ましい。リンカーとリンカーに結合させる材料の末端の官能基の組み合わせとしては、エポキシ基と水酸基、フタル酸無水物と水酸基、カルボキシル基とＮ−ハイドロキシスクシイミド、カルボキシル基とカルボジイミド、アミノ基とグルタルアルデヒド等が挙げられる。それぞれの組み合わせにおいて、いずれがリンカーであってもよい。これらの方法においては、親水性材料によるコーティングを行う前に、基体または導電部上にリンカーを有する材料により結合層を形成する。結合層における前記材料の密度は結合力を規定する重要な因子である。前記密度は、結合層の表面における水の接触角を指標として簡便に評価することができる。例えば、エポキシ基を末端に有するシランカップリング剤（エポキシシラン）を例にとると、エポキシシランを付加した基材の表面の水接触角が典型的には４５°以上、望ましくは４７°以上であれば、次に酸触媒存在下エチレングリコール系材料等を付加することによって十分な細胞接着阻害性を有する基材を作ることができる。なお、本発明において水接触角とは、２３℃において測定される水接触角を指す。

（親水性膜の酸化処理および／または分解処理による第１の細胞接着性領域の形成）
本発明では、第１の細胞接着性領域は、炭素酸素結合を有する有機化合物を含む細胞接着阻害性の親水性膜に酸化処理および／または分解処理を施して細胞接着性とした領域により形成される。

本発明において「酸化」とは狭義の意味であり、有機化合物が酸素と反応して酸素の含有量が反応以前よりも多くなる反応を意味する。

本発明において「分解」とは有機化合物の結合が切断されて１種の有機化合物から２種以上の有機化合物が生じる変化を指す。「分解処理」としては典型的には、酸化処理による分解、紫外線照射による分解などが挙げられるがこれらには限定されない。「分解処理」が酸化を伴う分解（つまり酸化分解）である場合、「分解処理」と「酸化処理」とは同一の処理を指す。

紫外線照射による分解とは、有機化合物が紫外線を吸収し、励起状態を経て分解することを指す。なお、有機化合物が、酸素を含む分子種（酸素、水など）とともに存在している系中に紫外線を照射すると、紫外線が化合物に吸収されて分解が起こる以外に、該分子種が活性化して有機化合物と反応する場合がある。後者の反応は「酸化」に分類できる。そして活性化された分子種による酸化により有機化合物が分解する反応は、「紫外線照射による分解」ではなく「酸化による分解」に分類できる。

以上のように「酸化処理」と「分解処理」は操作としては重複する場合があり、両者を明確に区別することはできない。そこで本明細書では「酸化処理および／または分解処理」という用語を使用する。

酸化処理および／または分解処理の方法としては、親水性膜を紫外線照射処理する方法、光触媒処理する方法、酸化剤で処理する方法などが挙げられる。本発明では、導電部上に第１の細胞接着性領域を形成することから、親水性膜をパターン状に部分的に酸化処理および／または分解処理する。部分的に酸化処理および／または分解処理する場合は、フォトマスクやステンシルマスク等のマスクを用いたり、スタンプを用いたりするとよい。また、紫外線レーザ等のレーザを用いた方式等の直描方式で酸化処理および／または分解処理を施してもよい。

紫外線照射処理の場合は、波長１８５ｎｍや２５４ｎｍの紫外線を出す水銀ランプや波長１７２ｎｍの紫外線を出すエキシマランプなどのＶＵＶ領域からＵＶ−Ｃ領域の紫外線を出すランプを光源として用いることが好ましい。光触媒処理する場合は、波長３６５ｎｍ以下の紫外線を出す光源を用いることが好ましく、波長２５４ｎｍ以下の紫外線を出す光源を用いることがより好ましい。光触媒としては、酸化チタン光触媒、金属イオンや金属コロイドで活性化された酸化チタン光触媒を用いるのが好ましい。酸化剤としては、有機酸や無機酸を特に制限なく用いることができるが、高濃度の酸は取り扱いが難しいので、１０％以下の濃度に希釈して用いるとよい。最適な紫外線処理時間、光触媒処理時間、酸化剤処理時間は、用いる光源の紫外線強度、光触媒の活性、酸化剤の酸化力や濃度などの諸条件に応じて適宜決定することができる。

第１の細胞接着性領域は、炭素酸素結合を有する有機化合物を低密度で含む親水性膜により形成されていてもよい。この態様では、第１の細胞接着性領域と細胞接着阻害性領域とは、ともに炭素酸素結合を有する有機化合物を含む親水性膜で形成されている。２つの領域は前記有機化合物の密度が相違する。同密度が高いほど細胞は接着しにくくなる傾向がある。第１の細胞接着性領域では、前記有機化合物の密度が、細胞が接着できる程度に低い。一方、細胞接着阻害性領域では、前記有機化合物の密度が、細胞が接着できない程度に高い。

親水性有機化合物の密度を制御する方法としては、親水性有機化合物の薄膜と基体または導電部表面との間に結合層を設け、当該結合層の親水性有機化合物との結合力を調整する方法が挙げられる。ここで「結合層」とは上記で定義した通りであり、上記で説明した好ましい材料から構成され得る。結合層の結合力は、結合層におけるリンカーを有する材料の密度が高いほど強くなり、同密度が低いほど弱くなる。結合層におけるリンカーを有する材料の密度は、上述の通り、結合層の表面における水の接触角を指標として簡便に評価することができる。

本発明のこの態様では、第１の細胞接着性領域の結合層における、リンカーを有する材料の密度は低い。第１の細胞接着性領域における、親水性有機化合物の薄膜を形成する前の結合層の表面の水接触角は、リンカーを有する材料としてエポキシ基を末端に有するシランカップリング剤を使用する場合を例にとると、典型的には、１０°〜４３°、望ましくは１５°〜４０°である。このような結合層を形成する方法としては、リンカーを有する材料の被膜（結合層）を基体または導電部表面に形成した後、当該結合層の表面を酸化処理および／または分解処理する方法が挙げられる。結合層表面を酸化処理および／または分解処理する方法としては、結合層表面を紫外線照射処理する方法、光触媒処理する方法、酸化剤で処理する方法などが挙げられる。結合層表面の全面を酸化処理および／または分解処理してもよいし、部分的に処理してもよい。部分的な処理は、フォトマスクやステンシルマスク等のマスクを用いたり、スタンプを用いることにより行うことができる。また、紫外線レーザ等のレーザを用いた方式等の直描方式で酸化処理および／または分解処理を施してもよい。諸条件などについても、親水性膜の酸化処理および／または分解処理により第１の細胞接着性領域を形成する方法の場合と同様の条件を適用できる。こうして形成された結合層上に親水性有機化合物の薄膜を形成することにより、第１の細胞接着性領域が形成できる。

本発明のこの態様では、細胞接着阻害性領域の結合層における、リンカーを有する材料の密度は高い。細胞接着阻害性領域における、親水性有機化合物の薄膜を形成する前の結合層の表面の水接触角は、リンカーを有する材料としてエポキシ基を末端に有するシランカップリング剤を使用する場合を例にとると、典型的には４５°以上、望ましくは４７°以上である。このような結合層は、リンカーを有する材料の被膜を基体または導電部表面に形成することにより得られる。結合層表面を部分的に酸化処理および／または分解処理した場合には、処理を受けない残余の部分が前記水接触角を有する結合層となる。こうして形成された結合層上に親水性有機化合物の薄膜を形成することにより、細胞接着阻害性領域が形成できる。

（細胞接着性領域と細胞接着阻害性領域との比較）
細胞接着性領域（結合層が存在する場合には結合層も含む）の炭素量は、細胞接着阻害性領域（結合層が存在する場合には結合層も含む）の炭素量と比較して低いことが好ましい。具体的には、細胞接着性領域の炭素量が、細胞接着阻害性領域の炭素量に対して２０〜９９％であることが好ましい。この範囲内に該当することは、親水性膜の厚さ（結合層が存在する場合には結合層の厚さと親水性膜の厚さの合計）が１０μｍ以下の場合に特に好適である。「炭素量（ａｔｏｍｉｃｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ、％）」は下記に定義する通りである。

また、細胞接着性領域（結合層が存在する場合には結合層も含む）における炭素のうちで酸素と結合している炭素の割合（％）の値は、細胞接着阻害性領域（結合層が存在する場合には結合層も含む）における炭素のうちで酸素と結合している炭素の割合（％）の値に対して小さい値であることが好ましい。具体的には、細胞接着性領域における炭素のうちで酸素と結合している炭素の割合（％）の値が、細胞接着阻害性領域における炭素のうちで酸素と結合している炭素の割合（％）の値に対して３５〜９９％であることが好ましい。この範囲内に該当することは、親水性膜の厚さ（結合層が存在する場合には結合層の厚さと親水性膜の厚さの合計）が１０μｍ以下の場合に特に好適である。「酸素と結合している炭素の割合（ａｔｏｍｉｃｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ、％）」は下記に定義する通りである。

（親水性薄膜の評価方法）
本発明の親水性薄膜（結合層が存在する場合には結合層も含む）の評価手法としては、接触角測定、エリプソメトリー、原子間力顕微鏡観察、電子顕微鏡観察、オージェ電子分光測定、Ｘ線光電子分光測定、各種質量分析法などを用いることができる。これらの手法の中で、最も定量性に優れているのはＸ線光電子分光測定（ＸＰＳ／ＥＳＣＡ）である。この測定方法で求められるのは相対的定量値であり、一般的に元素濃度（ａｔｏｍｉｃｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ、％）で算出される。以下、本発明におけるＸ線光電子分光分析方法を詳細に説明する。

本発明において親水性薄膜の「炭素量」は、「Ｘ線光電子分光装置を用いて得られるＣ１ｓピークの解析値から求められる炭素量」と定義される。また、本発明において親水性薄膜の「酸素と結合している炭素の割合」は、「Ｘ線光電子分光装置を用いて得られるＣ１ｓピークの解析値から求められる酸素と結合している炭素の割合」と定義される。具体的な測定は、特開２００７−３１２７３６に記載されるとおりに実施できる。

（本発明の基材の製造方法）
本発明の基材は、基材の全面に、炭素酸素結合を有する有機化合物を含む細胞接着阻害性の親水性膜を形成する工程、および導電部上に第１の細胞阻害性領域が形成されるように、親水性膜を酸化処理および／または分解処理して細胞接着性に改変させる工程を含む方法により製造できる。

（細胞）
本発明の基材に播種する細胞としては、血球系細胞やリンパ系細胞などの浮遊細胞でもよいし接着性細胞でもよいが、本発明は、接着性を有する細胞に対して好適に使用される。また遊走する性質を有する細胞に対して好適に使用される。そのような細胞としては、例えば、肝がん細胞、グリオーマ細胞、結腸癌細胞、腎がん細胞、膵がん細胞、前立腺がん細胞、大腸がん細胞、乳癌細胞、肺がん細胞、卵巣がん細胞などのがん細胞、肝臓の実質細胞である肝細胞、クッパー細胞、血管内皮細胞や角膜内皮細胞などの内皮細胞、繊維芽細胞、骨芽細胞、砕骨細胞、歯根膜由来細胞、表皮角化細胞などの表皮細胞、気管上皮細胞、消化管上皮細胞、子宮頸部上皮細胞、角膜上皮細胞などの上皮細胞、乳腺細胞、ペリサイト、平滑筋細胞や心筋細胞などの筋細胞、腎細胞、膵ランゲルハンス島細胞、末梢神経細胞や視神経細胞などの神経細胞、軟骨細胞、骨細胞などが挙げられる。これらの細胞は、組織や器官から直接採取した初代細胞でもよく、あるいは、それらを何代か継代させたものでもよい。さらにこれら細胞は、未分化細胞である胚性幹細胞、多分化能を有する間葉系幹細胞などの多能性幹細胞、単分化能を有する血管内皮前駆細胞などの単能性幹細胞、分化が終了した細胞の何れであってもよい。また、細胞は単一種を培養してもよいし二種以上の細胞を共培養してもよい。

目的の細胞を含む培養試料は、予め、生体組織を細かくして液体中に分散させる分散処理や、生体組織中の目的の細胞以外の細胞その他細胞破片等の不純物質を除去する分離処理などを行っておくことが好ましい。

本発明の基材への細胞の播種に先だって、目的とする細胞を含む培養試料を、予め、各種の培養方法で予備培養して、目的とする細胞を増やすことが好ましい。予備培養には、単層培養、コートディシュ培養、ゲル上培養などの通常の培養方法が採用できる。予備培養において、細胞を支持体表面に接着させて培養する方法の一つに、いわゆる単層培養法として既に知られている手段がある。具体的には、例えば、培養容器に培養試料と培養液を収容して一定の環境条件に維持しておくことにより、特定の生細胞のみが、培養容器などの支持体表面に接着した状態で増殖する。使用する装置や処理条件などは、通常の単層培養法などに準じて行う。細胞が接着して増殖する支持体表面の材料として、ポリリシン、ポリエチレンイミン、コラーゲンおよびゼラチン等の細胞の接着や増殖が良好に行われる材料を選択したり、ガラスシャーレ、プラスチックシャーレ、スライドガラス、カバーガラス、プラスチックシートおよびプラスチックフィルム等の支持体表面に、細胞の接着や増殖が良好に行われる化学物質、いわゆる細胞接着因子を塗布しておくことも行われる。

予備培養後に、培養容器中の培養液を除去することで、培養試料中の支持体表面に接着しない塊状や線維状の不純物等の不要成分が除去され、支持体表面に接着した生細胞のみを回収できる。支持体表面に接着した生細胞の回収には、ＥＤＴＡ−トリプシン処理などの手段が適用できる。

上記のように予備培養した細胞を、培養液中の本発明の基材上に播種する。細胞の播種方法や播種量については特に制限はなく、例えば、朝倉書店発行「日本組織培養学会編組織培養の技術（１９９９年）」２６６〜２７０頁等に記載されている方法が使用できる。細胞遊走解析用基材上で増殖させる必要がない程度に十分な量で、細胞が単層で接着するように播種することが好ましい。通常、培養液１ｍｌ当り１０^４〜１０^６個のオーダーで細胞が含まれるように播種するのが好ましい。

本発明の基材に播種した細胞を培養液中で培養することにより、細胞を第１の細胞接着性領域に接着させることが好ましい。培養液としては、当技術分野で通常用いられる細胞培養用培地であれば特に制限なく用いることができる。例えば、用いる細胞の種類に応じて、ＭＥＭ培地、ＢＭＥ培地、ＤＭＥ培地、αＭＥＭ培地、ＩＭＤＭ培地、ＥＳ培地、ＤＭ−１６０培地、Ｆｉｓｈｅｒ培地、Ｆ１２培地、ＷＥ培地およびＲＰＭＩ１６４０培地等、朝倉書店発行「日本組織培養学会編組織培養の技術第三版」５８１頁に記載されているような基礎培地を用いることができる。さらに、基礎培地に血清（ウシ胎児血清等）、各種増殖因子、抗生物質、アミノ酸などを加えてもよい。また、Ｇｉｂｃｏ無血清培地（インビトロジェン社）等の市販の無血清培地等を用いることができる。

細胞を培養する時間は、培養時の細胞操作の有無などに左右されるが、通常６〜９６時間、好ましくは１２〜７２時間である。培養する温度は、通常３７℃である。ＣＯ_２細胞培養装置などを利用して、５％程度のＣＯ_２濃度雰囲気下で培養するのが好ましい。培養した後、本発明の基材を洗浄することにより、接着していない細胞が洗い流され、第１の細胞接着性領域にのみ細胞を接着させることができる。

（導電部への電圧印加による第２の細胞接着性領域の形成）
本発明では、第２の細胞接着性領域は、導電部に電圧を印加して第１の細胞接着阻害性領域に形成された親水性膜を分解し、剥離して細胞接着性とすることにより形成される。ここで、分解とは有機化合物の結合が切断されて１種の有機化合物から２種以上の有機化合物が生じる変化を指す。本発明では、導電部に電圧を印加することにより、例えば結合層に存在する結合部分（リンカー）が切断され、親水性膜を構成する有機化合物の少なくとも一部が分解または除去されるものと考えられる。

（細胞遊走解析）
上記のように、本発明の基材上に細胞を播種して第１の細胞接着性領域に細胞を接着させた後、導電部に電圧を印加して、導電部上の第１の細胞接着阻害性領域を第２の細胞接着性領域に改変させ、その後の細胞の移動を観察することにより、細胞遊走を解析することができる。

換言すれば、本発明の細胞遊走解析法は、
（ｉ）本発明の基材に細胞を播種して、第１の細胞接着性領域に細胞を接着させる工程、
（ｉｉ）導電部に電圧を印加することによって第１の細胞接着阻害性領域を第２の細胞接着性領域に改変する工程、および
（ｉｉｉ）第１の細胞接着性領域に接着させた細胞の第２の細胞接着性領域における移動を観察する工程
を含む。
（ｉ）の工程においては、細胞を播種した後、細胞培養を行い、第１の細胞接着性領域に細胞を接着させることが好ましく、さらに本発明の基材を洗浄することにより、接着していない細胞を洗い流し、第１の細胞接着性領域にのみ細胞を接着させることが好ましい。
（ｉｉ）の工程において、導電部に印加する電圧は、正電圧であることが好ましい。正電圧を印加することにより、第１の細胞接着阻害性領域を効果的に第２の細胞接着性領域に改変できるとともに、特に導電部がＩＴＯ膜からなる場合に黒変するのを防止することができ、細胞遊走の観察を良好に実施できる。

印加する電圧は、当業者であれば適宜決定することができるが、通常１〜１０Ｖ、好ましくは２〜５Ｖであり、印加する時間は、通常０．５〜６０分間、好ましくは１〜１０分間である。

印加する電圧は、電極が接している溶媒の種類や、電極の材質、電極の形状によって、適切な値が変わるが、通常、第１の細胞接着阻害性領域を第２の細胞接着性領域に改変可能な電圧以上で、細胞に悪影響を与えない程度に低い電圧を加えるのがよい。

電圧は、基材平面内の導電部間（例えば、ＩＴＯとＩＴＯ間）に印加してもよいし、基材平面内に、Ｐｔ等の対抗電極を設けて導電部と対向電極の間（例えば、ＩＴＯとＰｔ間）に印加してもよい。また、電圧を精密に制御するため、基材平面内にＡｇ／ＡｇＣｌ等の参照電極を設けてもよい。上記の対抗電極や参照電極は、基材平面内でなくてもよい（培養液に電極を浸漬する形態でもよい）。

細胞の移動の観察には、細胞が移動する速度の計測、ならびに遊走方向、遊走時の細胞形態、および細胞同士のコネクションなどの観察が含まれる。細胞が移動する速度の計測は、第２の細胞接着性領域、例えば長方形の第２の細胞接着性領域において、細胞が浸潤していく面積や距離を測定することにより、実施できる。

本発明の基材において、限定された数（例えば１個または２個）の細胞を所定の第１の細胞接着性領域に接着させることができるため、遊走解析前に細胞を所定の位置に配置し、かつ細胞間の相互作用を制御して細胞遊走をさせることができ、よって遊走評価を有利に実施できる。

以下、本発明の基材の一実施形態について、図を参照することにより説明する。
第一の実施形態
図１に本発明の基材の第一の実施形態が示されている。

第一の実施形態に係る基材１０は、基材表面に、
それぞれが、第１の細胞接着性領域１３と、該第１の細胞接着性領域１３と接する第１の細胞接着阻害性領域１１とを含む、複数の試験領域と
各試験領域を包囲する第２の細胞接着阻害性領域１２と
が形成されており、
該基材１０の、該第２の細胞接着阻害性領域１２が表面に形成された部分は絶縁部ｂであり、
該基材１０の、該試験領域および該絶縁部ｂが表面に形成された部分は導電部ｃであり、
該第１の細胞接着阻害性領域１１は、導電部ｃへの電圧印加によって、第２の細胞接着性領域１４に変化することが可能である。

図１左上は、基材１０（電圧印加前）の表面を図示したものである。
第一の実施形態に係る基材１０において、第１の細胞接着阻害性領域１１が第１の細胞接着性領域１３と接するように配置され、第１の細胞接着性領域１３と一体となって試験領域を形成している。第１の細胞接着阻害性領域１１は、電圧印加後に第２の細胞接着性領域１４に変化した際に、第１の細胞接着性領域１３から第２の細胞接着性領域１４へ細胞が移動することができるように、第１の細胞接着性領域１３と接していればよい。好ましくは、第１の細胞接着阻害性領域１１は第１の細胞接着性領域１３を包囲するように配置される。また、第１の細胞接着性領域１３は第１の細胞接着阻害性領域１１の中央または中心に位置することが好ましい。

第１の細胞接着性領域１３は、基材１０に細胞を播種した際に、１個の細胞のみが第１の細胞接着性領域１３に配置されるように、１個の細胞のみが接着可能な面積を有することが好ましい。これにより、細胞間の相互作用の影響を受けずに遊走解析を行うことができる。この場合、第１の細胞接着性領域１３の面積は、解析しようとする細胞の種類により異なるが、例えば、第１の細胞接着性領域１３が円形または正方形である場合、直径または１辺が１μｍ〜５０μｍであることが好ましく、約１０μｍであることが特に好ましい。あるいは、複数個の細胞を解析する場合には、第１の細胞接着性領域１３は、該複数個の細胞のみが接着可能な面積を有することが好ましい。これにより、細胞間の相互作用を当該細胞間のものに限定して遊走解析を行うことができる。例えば、２個の細胞について解析する場合、第１の細胞接着性領域１３は、解析しようとする細胞の種類により異なるが、例えば、第１の細胞接着性領域１３が円形または正方形である場合、直径または１辺が２μｍ〜１００μｍであることが好ましく、約２０μｍであることが特に好ましい。

第２の細胞接着阻害性領域１２は試験領域を包囲するように配置されている。これにより、基材１０に細胞を播種した際に、第１の細胞接着性領域１３にのみ細胞を配置することができる。

図１左下は、基材１０（電圧印加前）の断面を図示したものである。基材１０において、導電部ｃ上の第２の細胞接着阻害性領域１２に対応する領域に絶縁部ｂが形成されている。そして、導電部ｃの一部および絶縁部ｂの全部の上に親水性膜ａが形成されている。親水性膜ａが形成されている領域は、第１の細胞接着阻害性領域１１および第２の細胞接着阻害性領域１２に対応する。導電部ｃの下には、図示されるように基体ｄが配置されていてもよく、配置されていなくともよい（図示せず）。

導電部ｃに電圧を印加した場合、導電部ｃ上に形成されている親水性膜ａが剥離し、第１の細胞接着阻害性領域１１が第２の細胞接着性領域１４に変化する（図１右上および右下参照）。これにより、第１の細胞接着性領域１３に細胞を接着させた後、電圧印加により形成された第２の細胞接着性領域１４上を細胞が遊走することが可能となるので、細胞遊走解析において、細胞を遊走させる前の位置を予め設定し、さらに細胞を遊走させる領域および方向を制御することができる。尚、第２の細胞接着性領域１４は、炭素酸素結合を有する有機化合物を含む細胞接着阻害性の親水性膜ａに酸化処理および／または分解処理を施して得られる第１の細胞接着性領域１３とは、詳細な表面性状が異なる場合がある。

基材１０の表面において、第１の細胞接着阻害性領域１１（または第２の細胞接着性領域１４）の形状としては、細胞の遊走が可能であれば特に限定されないが、例えば、長方形、正方形、円形等が挙げられる。細胞遊走解析を一次元で簡便に行う場合には、細長い帯状の形状、例えば、長方形であることが好ましい（図３参照）。第１の細胞接着阻害性領域１１（または第２の細胞接着性領域１４）の大きさに関しては、解析しようとする細胞の細胞分裂周期における移動を妨げないスペースを提供可能であれば特に制限されず、例えば、第１の細胞接着阻害性領域１１（または第２の細胞接着性領域１４）が円形または正方形である場合、直径または１辺が４０μｍ〜４０００μｍであることが好ましく、約２００μｍであることが好ましい。また、一次元で解析する目的で形状を長方形とする場合、短辺は細胞の大きさに対応する長さであることが好ましく、具体的には１μｍ〜５０μｍであることが好ましく、また長辺は、細胞の細胞分裂周期における移動距離の２倍に対応することが好ましく、具体的には４０μｍ〜４０００μｍであることが好ましい。

基材１０の表面において、１以上、好ましくは複数の試験領域が基材１０の表面に島状に配置されている。基材１０を用いて、より多くの細胞を効率的に解析する観点から、試験領域は、基材１０の表面の面積、例えば試験領域とこれを包囲する第２の細胞接着阻害性領域１２を合わせた面積に対し、好ましくは４〜４×１０^４個／ｃｍ^２、特に好ましくは１６〜４００個／ｃｍ^２の密度で存在することが好ましい。試験領域を上記のような密度で存在させることにより、細胞を含む培養液を希釈して播種することにより１個または複数の細胞について遊走試験を行う場合と比較して、より多くの細胞を効率的に試験することができる。

第一の実施形態に係る基材において、絶縁部ｂ、導電部ｃおよび基体ｄに使用する材料の組合せとしては、透過観察を行うことができるという観点から、それぞれ透明性材料であるＳｉＯ_２、ＩＴＯおよびガラスを用いることが好ましい。また、試験領域だけを透過観察しやすいという観点から、絶縁部ｂのみに不透明性の材料を用いるか、またはＳｉＯ_２等の透明性材料を用いて形成した絶縁部ｂ上にさらに金属膜等を積層する（図示せず）ことが好ましい。

第一の実施形態に係る基材の製造方法について説明する。先ず、基体の全面に導電部ｃを形成し、次に、導電部ｃ上に第２の細胞接着阻害性領域１２に対応する形状の絶縁部ｂを形成する。続いて、表出している導電部ｃおよび絶縁部ｂの全面に炭素酸素結合を有する有機化合物を含む細胞接着阻害性の親水性膜ａを形成する。そして、第１の細胞接着性領域１３の領域に対応する領域の親水性膜を酸化処理および／または分解処理して細胞接着性に改変させる。

第二の実施形態
図２に本発明の基材の第二の実施形態が示されている。この実施形態における、基材の形状等の諸条件は、この節において特に規定していない限り、第一の実施形態について述べた諸条件と同様である。

第二の実施形態に係る基材２０は、基材表面に、
それぞれが、第１の細胞接着性領域２３と、該第１の細胞接着性領域２３と接する第１の細胞接着阻害性領域２１とを含む、複数の試験領域と、
各試験領域を包囲する第２の細胞接着阻害性領域２２と
が形成されており、
該基材２０の、該第１の細胞接着阻害性領域２１が表面に形成された部分は導電部ｃであり、
複数の試験領域のそれぞれに対応する、第１の細胞接着阻害性領域２１が表面に形成されている複数の導電部ｃが、それぞれ、少なくとも１つの他の導電部ｃと、導電性の橋状部ｅを介して電気的に連結されており、
該第１の細胞接着阻害性領域２１は、導電部ｃへの電圧印加によって、第２の細胞接着性領域２６に変化することが可能である。

図２左上は、基材２０（電圧印加前）の表面を図示したものである。
第二の実施形態に係る基材２０において、第１の細胞接着阻害性領域２１が第１の細胞接着性領域２３と接するように配置され、第１の細胞接着性領域２３と一体となって試験領域を形成している。そして、第２の細胞接着阻害性領域２２が試験領域を包囲するように配置されている。

基材２０において、導電部ｃは基体ｄの第１の細胞接着阻害性領域２１および第１の細胞接着性領域２３に対応する領域に配置されている。また、導電部ｃ間（Ａ領域２４に対応する位置）に、基材２０表面に沿って伸びる導電性の橋状部ｅが配置されている。そして、導電部ｃの一部、基体ｄの一部および導電性の橋状部ｅの上に親水性膜ａが形成されている。親水性膜ａが形成されている領域は、第１の細胞接着阻害性領域２１、第２の細胞接着阻害性領域２２およびＡ領域２４に対応する。

ここで、各導電部ｃは、導電性の橋状部ｅにより電気的に連結されている。これにより、各導電部ｃを効率よく電圧印加することができる。導電性の橋状部ｅは、図示するように導電部ｃと一体に形成されていてもよく、または導電部ｃと別の部材であってもよい（図示せず）。

導電性の橋状部ｅの材料としては、導電性の材料であれば特に制限はされず、例えば導電部ｃに関して上述した導電性材料を含むものが挙げられるが、十分な導電率を得るために、金、銀、アルミニウム、銅、白金、カーボン等の導電率の高い材料を用いることが好ましい。あるいは、導電性の橋状部ｅの材料は、導電部ｃに電圧を印加した場合にＡ領域２４の親水性膜ａの剥離を促進しない導電性材料や細胞接着阻害性の導電性材料であってもよい。また、導電性の橋状部ｅの材料は、導電部ｃに用いられる材料と同一であっても、異なっていてもよい。

ここで、特に、導電部ｃに電圧を印加した場合にＡ領域２４の親水性膜ａが剥離されるような導電性材料を用いる場合には、電圧印加により形成された接着性領域（Ｂ領域２５）を細胞が遊走することにより細胞遊走解析に悪影響を与えないよう、導電性の橋状部ｅの形状を線状にし、また、導電性の橋状部ｅを各導電部ｃの隅に配置することが好ましい。この場合、線状の導電性の橋状部ｅの短辺の長さは、１〜１０μｍであることが好ましく、約５μｍであることが特に好ましい。

第二の実施形態に係る基材において、導電部ｃ、基体ｄおよび導電性の橋状部ｅに使用する材料の組合せとしては、透過観察を行うことができ、かつ製造コストの面で経済的であるという観点から、透明性材料であるＩＴＯを導電部ｃおよび導電性の橋状部ｅとして用い、基体ｄとしてガラスを用いることが好ましい。また、高い導電性を確保することにより本願基材の面積を拡大し、より多くの細胞の遊走解析を行うことが可能であるという観点から、上記の組合せにおいて導電性の橋状部ｅのみを金等の導電率の高い材料とすることが好ましい。また、隣り合う試験領域間で細胞同士が交じり合うことなく、正確に試験を行うことが可能であるという観点から、導電性の橋状部ｅとして、細胞接着阻害性の材料、または電圧印加しても親水性膜ａの剥離を促さずに細胞接着阻害性を維持することができる化学的性質を持つ材料を用いることが好ましい（図示せず）。

第二の実施形態に係る基材の製造方法について説明する。先ず、基体ｄの第１の細胞接着阻害性領域２１および第１の細胞接着性領域２３に対応する領域に導電部ｃを形成する。続いて、導電部ｃおよび表出している基体ｄの全面に炭素酸素結合を有する有機化合物を含む細胞接着阻害性の親水性膜ａを形成する。そして、第１の細胞接着性領域２３の領域の親水性膜ａを酸化処理および／または分解処理して細胞接着性に改変させる。
以下、本発明を実施例により説明するが、本発明は実施例の範囲に限定されない。

［実施例１］
１．細胞遊走解析用基材の作製
（導電部および絶縁部の形成）
長さ×幅が１２５ｍｍ×８５ｍｍの無アルカリガラス基板上に透明電極（ＩＴＯ）を膜厚１５０ｎｍで全面にスパッタ成膜した。ついで、絶縁性材料としてＳｉＯ_２を膜厚３００ｎｍで全面にスパッタ成膜し、フォトリソグラフィーによって、試験領域以外および外部配線用のコンタクトパッド部以外を残すようにパターニングした。試験領域は２００μｍ角の四角パターンとし、ピッチ３００μｍで試験領域が正方状にならぶよう、幅１００μｍのグリッド状に絶縁部を形成した。

（親水性膜の形成）
トルエン３９．０ｇおよびエポキシシランＴＳＬ８３５０（ＧＥ東芝シリコーン製）７５０μＬの混合液を攪拌しながら触媒量のトリエチルアミンを加え、さらに室温で数分間攪拌した。ＵＶ洗浄した基板を、上記のエポキシシラン溶液に浸漬し、１９時間室温で振盪した。その後、下地処理された基板をエタノールで洗浄し、次いで水洗し、乾燥した。

次に、ポリエチレングリコール１５ｇを攪拌しながら、触媒量の濃硫酸をゆっくり添加し、さらに室温で数分間攪拌した。上記のエポキシシラン処理された基板を上記のポリエチレングリコールに浸漬し、８０℃で６０分間反応させた。反応後、基板をよく水洗いし、次いで乾燥した。これにより親水性膜が形成された基板が得られた。

（酸化処理による第１の細胞接着性領域の形成）
表面全域に酸化チタン系光触媒を塗布したフォトマスクを作製した。フォトマスクは、１０μｍ角の開口部が３００μｍピッチで形成された四角パターンのものを用いた。あらかじめ露光機の照度を３５０ｎｍの波長で計測し、露光時間の設定の目安とした。照度は２５ｍＷ／ｃｍ^２であった。親水性薄膜が形成された基板と上記触媒付き石英板を、親水性薄膜とフォトマスクの光触媒層が対向するように設置し、フォトマスクの裏面側から光が照射されるよう露光機内に設置した。絶縁部により形成された試験領域の中央にフォトマスクの開口部が位置するようアライメントを合わせて、１２０秒間露光し、酸化処理を行った。
得られた基板を２５ｍｍ角に切断し、中央部に穴のあいた３５ｍｍディッシュの裏面側から接着剤で接合することにより細胞遊走解析用基材を作成した。

２．細胞培養
細胞遊走解析用基材をエチレンオキサイドガスで滅菌した。各ウェルの中に５×１０^４個のウシ血管内皮細胞を播種した。１０％血清を含むＤＭＥＭ培地を用いて、３７℃、５％ＣＯ_２濃度のインキュベータ内で２４時間培養した。位相差顕微鏡で観察したところ、細胞が細胞接着性領域に１細胞ずつ接着している箇所を確認できた。さらに、接着していない細胞を取り除くため、培養液を交換して遊走試験の準備を行った。

３．電圧印加
培養液中へ対向電極を差し入れ、対向電極とＩＴＯ電極間に、ＩＴＯ電極側が正となるよう２Ｖの電圧を２分間印加した。

４．遊走試験
電圧印加後、顕微鏡付きのインキュベータ内で５時間培養しながら、観察を行った。その結果、１細胞ずつ接着していた細胞が、他の細胞と接着することなく、試験領域内を遊走している様子を観察することができた。

［実施例２］
長さ×幅が１２５ｍｍ×８５ｍｍの無アルカリガラス基板上に透明電極（ＩＴＯ）を膜厚１５０ｎｍで全面にスパッタ成膜した。ついで、フォトリソグラフィーによって、試験領域、橋状部、外部配線用のコンタクトパッド部のみ残すようにＩＴＯをパターニングした。試験領域は２００μｍ角の四角パターンとし、ピッチ３００μｍで試験領域が正方状にならぶように形成した。また、幅１０μｍ、長さ１００μｍの長方形状の橋状部によって試験領域の端部同士を連結した。

その後、実施例１と同様にして、親水性膜の形成、酸化処理による第１の細胞接着性領域の形成、基板の切断、貼付け等を行い、細胞遊走解析用基材を作成した。

そして、実施例１と同様にして細胞培養、電圧印加、遊走試験についても実施した結果、１細胞ずつ接着していた細胞が、他の細胞と接着することなく、試験領域内を遊走している様子を観察することができた。

１０、１０’：基材
１１：第１の細胞接着阻害性領域
１２、１２’：第２の細胞接着阻害性領域
１３、１３’：第１の細胞接着性領域
１４：第２の細胞接着性領域
２０、２０’：基材
２１：第１の細胞接着阻害性領域
２２、２２’：第２の細胞接着阻害性領域
２３、２３’：第１の細胞接着性領域
２４：Ａ領域
２５：Ｂ領域
２６：第２の細胞接着性領域
ａ：親水性膜
ｂ：絶縁部
ｃ：導電部
ｄ：基体
ｅ：橋状部

Claims

細胞遊走解析用基材であって、その表面に、
それぞれが、第１の細胞接着性領域と、該第１の細胞接着性領域と接する第１の細胞接着阻害性領域とを含む、１以上の試験領域と、
各試験領域を包囲する第２の細胞接着阻害性領域と
が形成されており、
該基材の、該第１の細胞接着阻害性領域が表面に形成された部分は導電部であり、
該基材の、該第１の細胞接着性領域が表面に形成された部分は導電部であり、
該基材の、該第２の細胞接着阻害性領域が表面に形成された部分は絶縁部であり、
該第１の細胞接着阻害性領域は、導電部への電圧印加によって、第２の細胞接着性領域に変化することが可能であり、
該第１の細胞接着性領域が第１の細胞接着阻害性領域に包囲されている、
前記細胞遊走解析用基材。
第１の細胞接着性領域が、１個の細胞のみが接着可能な面積を有する、請求項１に記載の細胞遊走解析用基材。
複数の試験領域が、基材表面に、４〜４×１０^４個／ｃｍ^２の密度で存在する、請求項１または２に記載の細胞遊走解析用基材。
表面に複数の試験領域が形成されており、
複数の試験領域のそれぞれに対応する、第１の細胞接着阻害性領域が表面に形成されている複数の導電部が、それぞれ、少なくとも１つの他の導電部と、導電性の橋状部を介して電気的に連結されている、請求項１〜３のいずれか１項に記載の細胞遊走解析用基材。
細胞遊走解析方法であって、
（ｉ）請求項１〜４のいずれか１項に記載の細胞遊走解析用基材に細胞を播種して、第１の細胞接着性領域に細胞を接着させる工程、
（ｉｉ）導電部に電圧を印加することによって第１の細胞接着阻害性領域を第２の細胞接着性領域に改変する工程、および
（ｉｉｉ）第１の細胞接着性領域に接着させた細胞の第２の細胞接着性領域における移動を観察する工程
を含む、上記方法。